HU193267B - Process and equipment for the detection of contaminants - Google Patents
Process and equipment for the detection of contaminants Download PDFInfo
- Publication number
- HU193267B HU193267B HU822332A HU233282A HU193267B HU 193267 B HU193267 B HU 193267B HU 822332 A HU822332 A HU 822332A HU 233282 A HU233282 A HU 233282A HU 193267 B HU193267 B HU 193267B
- Authority
- HU
- Hungary
- Prior art keywords
- nutrient
- culturing
- liquid
- sampling
- solid
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 17
- 239000000356 contaminant Substances 0.000 title claims abstract description 10
- 238000001514 detection method Methods 0.000 title description 5
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims abstract description 46
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims abstract description 22
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims abstract description 22
- 238000012258 culturing Methods 0.000 claims abstract description 19
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 claims abstract description 17
- 238000005070 sampling Methods 0.000 claims abstract description 17
- 238000012360 testing method Methods 0.000 claims abstract description 13
- 239000011521 glass Substances 0.000 claims abstract description 11
- 235000013305 food Nutrition 0.000 claims abstract description 6
- 239000002253 acid Substances 0.000 claims description 8
- 230000035784 germination Effects 0.000 claims description 6
- 230000000694 effects Effects 0.000 claims description 5
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 claims description 5
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 claims description 5
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 4
- 238000002845 discoloration Methods 0.000 claims description 2
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 claims description 2
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims description 2
- 239000000725 suspension Substances 0.000 abstract description 8
- 238000011109 contamination Methods 0.000 abstract description 7
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 abstract description 4
- 244000005700 microbiome Species 0.000 abstract description 4
- 238000012545 processing Methods 0.000 abstract description 2
- CTBUVTVWLYTOGO-UWVJOHFNSA-N 2-[(11z)-11-[3-(dimethylamino)propylidene]-6h-benzo[c][1]benzoxepin-2-yl]acetaldehyde Chemical compound C1OC2=CC=C(CC=O)C=C2C(=C/CCN(C)C)\C2=CC=CC=C21 CTBUVTVWLYTOGO-UWVJOHFNSA-N 0.000 abstract 1
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 14
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 9
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 6
- 244000052616 bacterial pathogen Species 0.000 description 6
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 5
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 5
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 3
- 235000013361 beverage Nutrition 0.000 description 2
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 2
- 238000011161 development Methods 0.000 description 2
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 2
- 238000011049 filling Methods 0.000 description 2
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 2
- 239000012535 impurity Substances 0.000 description 2
- 235000015122 lemonade Nutrition 0.000 description 2
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M sodium hydroxide Inorganic materials [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- FRPHFZCDPYBUAU-UHFFFAOYSA-N Bromocresolgreen Chemical compound CC1=C(Br)C(O)=C(Br)C=C1C1(C=2C(=C(Br)C(O)=C(Br)C=2)C)C2=CC=CC=C2S(=O)(=O)O1 FRPHFZCDPYBUAU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920000742 Cotton Polymers 0.000 description 1
- GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N Lactose Natural products OC[C@H]1O[C@@H](O[C@H]2[C@H](O)[C@@H](O)C(O)O[C@@H]2CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N 0.000 description 1
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 description 1
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 1
- 239000012080 ambient air Substances 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 238000005842 biochemical reaction Methods 0.000 description 1
- 238000009640 blood culture Methods 0.000 description 1
- UDSAIICHUKSCKT-UHFFFAOYSA-N bromophenol blue Chemical compound C1=C(Br)C(O)=C(Br)C=C1C1(C=2C=C(Br)C(O)=C(Br)C=2)C2=CC=CC=C2S(=O)(=O)O1 UDSAIICHUKSCKT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000012512 characterization method Methods 0.000 description 1
- 230000014670 detection of bacterium Effects 0.000 description 1
- 230000033629 detection of yeast Effects 0.000 description 1
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 1
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 1
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- 238000004868 gas analysis Methods 0.000 description 1
- 239000008101 lactose Substances 0.000 description 1
- 238000009630 liquid culture Methods 0.000 description 1
- 238000011068 loading method Methods 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 238000012009 microbiological test Methods 0.000 description 1
- 238000006386 neutralization reaction Methods 0.000 description 1
- 238000005580 one pot reaction Methods 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 230000000644 propagated effect Effects 0.000 description 1
- 235000014214 soft drink Nutrition 0.000 description 1
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 1
- 239000008223 sterile water Substances 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
- 150000003457 sulfones Chemical class 0.000 description 1
- 210000003462 vein Anatomy 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
- C12Q1/04—Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
- C12M23/02—Form or structure of the vessel
- C12M23/08—Flask, bottle or test tube
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M33/00—Means for introduction, transport, positioning, extraction, harvesting, peeling or sampling of biological material in or from the apparatus
- C12M33/04—Means for introduction, transport, positioning, extraction, harvesting, peeling or sampling of biological material in or from the apparatus by injection or suction, e.g. using pipettes, syringes, needles
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M41/00—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation
- C12M41/30—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of concentration
- C12M41/34—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of concentration of gas
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M41/00—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation
- C12M41/46—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of cellular or enzymatic activity or functionality, e.g. cell viability
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/02—Food
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2304/00—Chemical means of detecting microorganisms
- C12Q2304/40—Detection of gases
Description
A találmány tárgya eljárás szennyezők kimutatására, különösen az élelmiszeripar számára, amelynek során csírákat tartalmazó folyadékot kombinált mintavevő és kultiváló készülék segítségével előre meghatározott mennyiségű tápanyaggal keverünk össze. Tárgya még a találmánynak az ugyanilyen célú berendezés is kombinált mintavevő és kultiváló készülékkel, amelynek kultiválóedénye, letörhető üveghegye, fecskendőtűje és törőgyűrűje, valamint folyékony és szilárd tápanyaga van.
A szennyezők kimutatására már különböző módszerek váltak ismeretessé, amelyeknek révén valamely termék vagy berendezés-, illetve gépegység csíraszennyezettségének jellegzetességeiből lehet következtetéseket levonni. A szennyezők kimutatása azonban több fázisban történik.
A folyadék vagy a szuszpenzió meghatározott mintatérfogatának a kivevése a tartályból a laboratóriumban steril készülék, például pipetta segítségével történik, hogy a minták megfelelő mennyiségével alkalmas szilárd és/vagy folyékony tápanyagon kultúrákat lehessen létrehozni. Ez a tartály üvegflakon vagy szállítóedény lehet, amelybe steril körülmények között a laboratóriumon kívül juttatják be a mintát. A minta megítélése a mikroszkopikus kép alapján csak viszonylag nagy szennyezettség esetén lehetséges. A szükségessé váló készülékek nagy száma, valamint a környezeti levegővel való érintkezés folytán fennáll a szekunder kontamináció veszélye.
Az italok esetében azonban a tartóssági vizsgálatok számára az igen kis mennyiségben előforduló szennyezők kimutatására is fontos. Ebből a célból nagyobb próbamenynyiséget membránon szűrnek át és ezt helyezik szilárd tápanyagra. Az ilyen módszerek segítségével azonban csak három-négy napos szaporítás után lehet kielégítő eredményt kapni, mert az érzékeny csírák a szilárd táptalajon csak lassabban nőnek, mint a folyékony kultúrákban. Ez az úgynevezett Koch-féle lemezes eljárás esetében is igaz.
A membránszűrőkön visszamaradt mikroorganizmusok megfestése és ezután következő megszámlálása, valamint jellemzése a mikroszkóp segítségével csak jól felszerelt munkahelyeken lehetséges és ennek megfelelően képzett szakembereket kíván. A közvetlen számlálás során ráadásul csak feltételesen lehet az élő és a halott csírák között különbséget tenni.
A korábban ismertté vált megoldások fontos hátránya továbbá az is, hogy a szennyezettség! fokon kívül egyúttal a szennyező organizmusok más fontos jellemző tulajdonságát, például a gázképződést, az erjedési aktivitást, a savképződést, az anaerob körülmények közötti növekedést nem lehet meghatározni. -Az élelmiszeriparban és a hasonló ipari ágazatokban viszont döntő jelentőségűek az olyan csírák, amelyek képesek anae2 rob körülmények között gázt és savat fejleszteni, és amelyek anaerob körülmények között növekedésre képesek.
Az ismert eljárások esetében a gázképződést vagy kvalitatív módon bizonyítják vagy pedig külön kultiváló készüléket, például csíráztató csövecskéket használnak hozzá. A hagyományos eljárások azzal is terhelik a laboratórium dolgozóit, hogy sterilizált készülékeket és a tápanyagot készenlétben tartsák és rendelkezésre bocsássák. Ez komoly nehézséggel jár a kisebb műhelyek, üzemek számára.
Az orvostudományból ezen túlmenően ismertek még a vérvételre és a vérminták további feldolgozására szolgáló eljárások és rendszerek. Az US 3635061 számú és a DE 2835101 számú szabadalmi leírás szerint megvan arra a lehetőség, hogy a paciens vénájába szúrt fecskendőtűrendszerre előzetesen vákuum alá helyezett mintavevő csövecskét csatlakoztassanak, ami vagy a mintaszállítás során szolgál tartályként vagy a biokémiai reakciók edényeként, vagy kultiváló edényként használható fel. A DE 2411651 számú szabadalmi leírásban ismertetett megoldás esetében a vérvételi rendszer belsejében a gázképződést nyomásérzékeny, g-ázhatlan zárral jelzik, mimellett a gázanalízis céljából való csatlakozás lehetősége is megvan.
A DE 3012056 számú szabadalmi leírás kombinált vérvételi és tenyésztő rendszert ismertet baktériumok vizsgálata számára, amely lehetővé teszi az egyidejű szaporítást szilárd és folyékony tápanyagon. A vért itt mintavevő-rendszer útján adagolt mennyiségben vérkultúrarendszer vákuummal vagy gáztöltéssel ellátott edényébe szívják, miközben megtörténik a folyékony tápanyag és a szilárd táptalaj beoltása is. A pH-függo indikátor a növekedéssel együttjáró savképződést is láthatóvá teszi.
A szaporítás a rendszer ferde helyzetében történik, aminek során a mintavevő fecskendőtű steril elasztomer dugó segítségével lezárva marad.
Ezeket a rendszereket azonban az élelmiszeripar területén nem lehet alkalmazni.
A találmánnyal megoldandó feladat az ismert megoldások hátrányainak kiküszöbölése mellett olyan eljárás és berendezés kidolgozása szennyezők kimutatására,.amelynek segítségével mennyiségi szempontból gyorsabban, kombinált módon lehet a szenynyezettségi fokot és a szennyezők fontos tulajdonságait egyutas edények alkalmazásával is kimutatni. Az új megoldásnak lehetővé kell tennie a munka- és időráfordítás csökkentését, valamint a vizsgálható anyagok körének szélesítését.
Az eljárás találmány szerinti továbbfejlesztése értelmében a tápanyag és a csírák szuszpenziójának kultiválását olyan mintavevő és kultiválókészülékben végezzük, amelynek lefelé nyitott kifolyónyílása, a kultiválás során a vizsgált organizmusok általi gázképződés
-2193267 mellet a tápanyag és a csírák szuszpenziójának a gázképződés mértékével arányos mennyiséget folyatjuk ki és ezt a mennyiséget mérjük, eközben megállapítjuk az indikátort is tartalmazó tápanyag zavarosodását és színváltozását és ezzel egyidejűleg kvantitative értékeljük analóg értékek segítségével a szennyező organizmusok csiratartalmát, gázképződést, erjedési aktivitását és savképződését.
Az egyik találmány szerinti célszerű foganatosítási mód szerint a kultiválóedény elkülönített részébe pótlólagosan legalább egy szilárd tápanyagot viszünk be, ezzel a vizsgálandó folyadék bevezetése után a vizsgált csírák kolónia/fűszerű növekedését váltjuk ki a szilárd tápanyagon és a kultiválás után mikroszkopikus elrendezéshez és/vagy további vizsgálatokhoz, valamint az organizmusok további neveléséhez mintákat veszünk ki.
A berendezés találmány szerinti továbbfejlesztése értelmében a fecskedőtű a vizsgálandó folyadék számára szívócsonkként és ezzel egyidejűleg a gázképződés során kiszorított tápanyag/csíra szuszpenzió számára kifolyócsőnkként van kialakítva. 3 tnmnél kisebb átmérőjű és steril dugó útján térfogatbeosztásos mérőedényben van rögzítve.
Az egyik célszerű kiviteli alak esetében a folyékony tápanyag kultiválóedényen kívül üvegedény van elrendezve legalább egy szilárd tápanyag számára.
A találmány értelmében célszerű az a kiviteli alak is, amelyben az üvegedény leválasztott edényként a kultiválóedény csökkentett nyomású vagy gázzal töltött tere mellett van elhelyezve és a szilárd tápanyag számára tartóval van ellátva.
A találmány további részleteit kiviteli, valamint foganatosítási példa kapcsán a mellékelt rajzra való hivatkozással mutatjuk be. A rajzon az
1. ábra üdítőben csírák által keltett gázfejlődést mutatja ml-ben, a napok függvényében, a
2. ábra limonádé alapanyagban a csírák által keltett gázképződést mutatja ml-ben, a napok függvényében, a
3a ábra a találmány szerinti berendezés egyik célszerű kiviteli alakja nyitott edényrendszerrel és dugattyúval a folyékony tápanyag számára, a
3b ábra másik kiviteli alak nyitott edényrendszerrel és dugattyúval a folyékony és szilárd tápanyag számára, a
4a ábra további kiviteli alak zárt edényrendszerrel folyékony tápanyag számára, a
4b ábra további kiviteli alak zárt edényrendszerrel folyékony és szilárd tápanyag számára.
Az erjedő és a savat képző organizmusoknak üdítőitalokban történő egyidejű kimutatásához a szennyezőkre irányuló vizsgálat előtt az italt - ahogy az általában a mikrobiológiai vizsgálatok esetében szokásos - szénsavmentesíteni kell.
A vizsgálati mintába steril indikátor oldatot helyezünk, amihez a mintavevő és kultiváló rendszer tápanyagában alkalmazott indikátort használjuk fel. A mintához annyi steril n-nátronlúgot adunk, amennyi az indikátor színét megváltoztatja a meglévő sav tökéletes semlegesítése következtében.
Ezután a mintavevő és kultiváló készülék szívócsonkját az így előkészített vizsgálandó mintába merítjük és a tápanyagtartállyal való összeköttetést létrehozzuk. Az utóbbiban lévő vákuum hatására a vizsgálati folyadék a tápanyagba áramlik. A beoltott készüléket óvatosan elfordítjuk és ezzel létrehozzuk a minta és a tápanyag belső keveredését. Ezután a készüléket függőleges helyzetbe állítjuk és az esetleges maradék csöppek lecsőpögtetése után a nyitott szívócsonkkal üres, steril vattadugóval lezárt kalibrált mérőedényre helyezzük, miközben a csonk a vattadugón át halad. Az egész készüléket azután állványba helyezzük és 30°C mellett szaporítjuk a csírákat.
Mintavevő és kultiváló rendszerként a találmány szerinti berendezés a 3a és 3b ábrán mutatott kiviteli alakja szolgál, amelynek módosított kiömlő csonkja van, kalibrált térfogatbeosztással ellátott mérőedény csatlakoztatásának lehetőségével a kifutó tápanyag-csíraszuszpenzió számára. Naponta ellenőrizzük a folyékony tápanyag zavarosodását, a mintavevő és kultiváló készülékből kiszorított tápanyag-csíraszuszpenzió térfogatát, valamint az indikátor színárnyalatának a változását. A vizsgálati eredményt az 1. ábra szemlélteti, ahol az eltelt napok függvényében a képződött gáz. teljes mennyisége milliliterben van megadva zavarosodás nélkül és savképződés nélkül.
Ha limonádé alapanyagban akarjuk az erjedő és savképző organizmusok jelenlétét egyidejűleg kimutatni, akkor a vizsgálat előtt az alapanyagot előbb steril vízzel hígítjuk, az imént ismertetett eljárásmód szerint steril indikátoroldattal látjuk el és a pH-értékét steril π-nátronlúg segítségével beállítjuk. Az ezután következő eljárási lépések is megegyeznek az előzőekben leírtakkal. A csíraterhelés megállapításakor a hígítás mértékét figyelembe kell venni. A vizsgálati eredményt a 2. ábra mutatja, ahol a napok függvényében szintén a képződött gáz teljes menynyisége milliliterben van megadva zavarosodás nélkül és savképződés nélkül.
Koli-szerű csírák kimutatásakor a mintavevő és kultiváló rendszert speciális tápanyaggal, például gentiana-epe-laktóz oldattal töltjük meg. A minták előkészítése, illetve a vizsgálandó folyadék betöltése és a csírák ez3
-3Utáni szaporítása szintén ugyanúgy történik, mint ahogy az előbb ismertettük.
Dugattyú vagy a rendszerben uralkodó vákuum segítségével a minta pontosan meghatározott mennyiségét szívjuk fel a mintave- 5 vő és kultiváló készülékbe, amely mennyiség például 1 ml vagy 5 ml lehet. A minta szaporítása és kiértékelése után elmaradó gázképződés esetén a minta nem tartalmaz koli-szerű csírát 1 ml vagy 5 ml mintatérfogatban. 10 .A szennyezők kimutatására szolgáló készülék 1 kultiválóedénnyel és 7 törőgyűrünél letörhető 2 tűheggyel, valamint 3 fecskendőtüvel van ellátva. Ez a 3 fecskendőtű egyúttal a vizsgálandó folyadékminta beszívócsonkja és a gázképződés során kiszorított tápanyag-csíraszuszpenzió kifolyócsonkja is. Átmérője célszerűen 3 mm-nél kisebb és a kultiválás során steril 13 dugó segítségével térfogatbeosztással ellátott 4 mérőedényben álló 20 helyzetbén.
Az 1 kutiválóedényben folyékony 5 tápanyag található, az 1 kultiválóedényen kívüli 10 üvegedényben viszont egy vagy több szilárd 6 tápanyag van elrendezve. Ez a 10 üveg- 25 edény leválasztott edényként az 1 kultiválóedény vákuummal vagy gázzal töltött 9 tere mellett van elrendezve és a szilárd 6 tápanyag rögzítésére szolgáló 11 tartóval van ellátva.
A szaporítás utáni szilárd 6 tápanyag csíra- 30 vizsgálatához a mintát a 10 üvegedényből vesszük, amit 8 törőgyűrünél nyitunk fel.
A találmány szerinti megoldás különösen baktériumok, élesztőgombák és penészgombák kimutatására alkalmas. Gáztöltés al- 35 kalmazása esetén például CO2-t vagy N2-t használunk.
A szennyező mikroorganizmusok savképző képességét pH-függő indikátorrendszer, például brómkrezoízöld /3'.5'.3.5'- tetrabróm- 40 -m-kresol-sulfonphthalein/ vagy brómfenolkék /tetrabróm-phenol-sulfonphthalein/ segítségével tesszük láthatóvá.
Az eljárás segítségével lehetőség van az alkalmazott gyártási élesztő erjedési akti- 45 vitásának a vizsgálatára. Külön vizsgálatok esetében a felfogócsövecskéből és a kultiválás után vagy a folyékony és/vagy a szilárd tápanyagból is mintát veszünk.
A találmány szerinti megoldás révén egy- 50 idejüleg lehetőség van a savképző és a gázképző mikroorganizmusok meglétének megállapítására is. A megoldás alkalmazása esetén tehát nincs szükség külön gázmintavevő készülék rendszeresítésére, hiszen a tápanyag- 55 nak a mintavevő csonkon keresztüli kijutása jelzi a gázképződést is. Az ismert eljárásokkal ellentétben a találmány szerinti megoldás révén az erjedési aktivitással rendelkező élesztők megléte esetében már a minták tenyész- qq tése során mintát lehet venni a további vizsgálatok céljára. A rendszer nem csak a szenynyező élesztők kimutatására alkalmas, hanem a gyártási élesztő erjedési aktivitásának megállapítására is képes.
További jelentős előnye a megoldásnak, hogy a minta anyagának szennyeződése aligalig léphet fel, hiszen a mintavétel közvetlen vételezéssel, például membránok átszúrásával történik.
Claims (4)
1. Eljárás szennyezők kimutatására, elsősorban az élelmiszeripar számára, amelynek során csírákat tartalmazó folyadékot kombinált mintavevő és kultiváló készülék segítségével előre meghatározott mennyiségű tápanyaggal keverünk össze, azzal jellemezve, hogy a tápanyag és a csírák keverékének kultiválását olyan mintavevő és kultiváló-edényben (1) végezzük, amelynek lefelé nyitott kifolyónyílása van, a kultiválás során a vizsgált organizmusok általi gázképződés mellett a tápanyag és a csírák keverékének a gázképződés mértékével arányos mennyiségét folyatjuk ki, és ezt a mennyiséget mérjük, eközben megállapítjuk az indikátort is tartalmazó tápanyag zavarosodását és színváltozását, és ezzel egyidejűleg kvantitative értékeljük analóg értékek segítségével a szennyező organizmusok csíratartalmát, gázképzését, erjedési aktivitását és savképzését.
2. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a kultiválóedény (1) elkülönített üvegedény (6) részébe pótlólagosan legalább egy szilárd tápanyagot viszünk be, ezzel a vizsgálandó folyadék bevezetése után a vizsgált csírák kolónia/fűszerű növekedését váltjuk ki a szilárd tápanyagon és a kultiválás után mikroszkopikus ellenőrzéshez és/vagy további vizsgálatokhoz, valamint az organizmusok további neveléséhez mintákat veszünk.
3. Berendezés szennyezők kimutatására kombinált mintavevő és kultiváló készülékkel, melynek kultiválóedénye, letörhető üveghegye, fecskendőtűje és törögyürüje, valamint folyékony és szilárd tápanyaga van, azzal jellemezve, hogy a mintavevő fecskendőtűje (3) a vizsgálandó folyadék számára szívócsonkként és ezzel egyidejűleg a gázképződés során kiszorított tápanyag-csírakeverék számára kifolyócsőnkként van kialakítva, 3 mm-nél kisebb átmérőjű és steril dugó (13) útján térfogatbeosztásos mérőedényben (4) van rögzítve.
4. A 3. igénypont szerinti berendezés, azzal jellemezve, hogy a mintavevő folyékony tápanyag (5) kultiválóedényen (1) kívül üveg edény (10) van elrendezve legalább egy szilárdtápanyag (6) számára leválasztott edényként a kultiválóedény (1) csökkentett nyomású vagy gázzal töltött tere (9) mellett és a szilárd tápanyag (6) számára tartóval (11) van ellátva.
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DD81231829A DD206683A3 (de) | 1981-07-16 | 1981-07-16 | Verfahren und vorrichtung zum nachweis von kontaminanten |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| HU193267B true HU193267B (en) | 1987-09-28 |
Family
ID=5532388
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| HU822332A HU193267B (en) | 1981-07-16 | 1982-07-16 | Process and equipment for the detection of contaminants |
Country Status (12)
| Country | Link |
|---|---|
| AT (1) | AT384679B (hu) |
| BE (1) | BE893844A (hu) |
| BG (1) | BG42105A1 (hu) |
| CH (1) | CH661285A5 (hu) |
| DD (1) | DD206683A3 (hu) |
| DE (1) | DE3223715A1 (hu) |
| DK (1) | DK315982A (hu) |
| ES (1) | ES8402019A1 (hu) |
| FR (1) | FR2509750B1 (hu) |
| GB (1) | GB2102947B (hu) |
| HU (1) | HU193267B (hu) |
| IT (1) | IT1189317B (hu) |
Families Citing this family (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| GB8303096D0 (en) * | 1983-02-04 | 1983-03-09 | Oxoid Ltd | Bacterial testing |
| US5432061A (en) * | 1992-09-01 | 1995-07-11 | Becton Dickinson And Company | Method and apparatus for detecting microorganisms |
| US5583044A (en) * | 1993-06-11 | 1996-12-10 | Ruksenas; M. A. | Fluid sampler and testing unit |
| SE518174C2 (sv) * | 1999-11-16 | 2002-09-03 | Appliedsensor Sweden Ab | Detektionsförfarande av oönskad mikrobiell infektion i animaliecellodling |
| CN110804644A (zh) * | 2019-11-22 | 2020-02-18 | 阮雁春 | 一种用于检测食品中多种微生物的方法及装置 |
Family Cites Families (11)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE919841C (de) * | 1952-05-24 | 1954-11-04 | Asta Werke Ag Chem Fab | Verfahren zur Gewinnung von frischen, lebenden Reinkulturen von therapeutisch oder industriell anzuwendenden Mikroorganismen an der Verwendungsstelle |
| US3536061A (en) * | 1967-12-05 | 1970-10-27 | Tri Stopper Corp | Evacuated blood collecting apparatus |
| BE791340A (fr) * | 1972-01-06 | 1973-03-01 | Becton Dickinson Co | Nouveaux procede et appareil de prelevement de culture et d'identification de micro-organismes des humeurs |
| US3875012A (en) * | 1974-01-30 | 1975-04-01 | Wadley Res Inst & Blood Bank | Apparatus and method for the detection of microbial pathogens |
| US4038150A (en) * | 1976-03-24 | 1977-07-26 | J. K. And Susie L. Wadley Research Institute And Blood Bank | Sample mixing and centrifugation apparatus |
| FR2381103A1 (fr) * | 1977-02-18 | 1978-09-15 | Pasteur Institut | Recipient pour culture biologique |
| US4154229A (en) * | 1977-08-10 | 1979-05-15 | Becton, Dickinson And Company | Blood collection system with venipuncture indicator |
| US4164449A (en) * | 1977-11-03 | 1979-08-14 | J. K. And Susie L. Wadley Research Institute And Blood Bank | Surface separation technique for the detection of microbial pathogens |
| DE2828982C2 (de) * | 1978-07-01 | 1982-01-07 | Kernforschungsanlage Jülich GmbH, 5170 Jülich | Vorrichtung zur Durchführung von Tests mit Mikroorganismen |
| DE2922871A1 (de) * | 1978-07-25 | 1980-02-21 | Dresden Arzneimittel | Pruefroehrchen fuer mikrobiologische untersuchungen |
| DE3012056A1 (de) * | 1979-03-28 | 1980-10-09 | Neuhaus Pharmaglas | Verfahren, vorrichtung und naehrmedium zum nachweis von bakteriaemien |
-
1981
- 1981-07-16 DD DD81231829A patent/DD206683A3/de not_active IP Right Cessation
-
1982
- 1982-06-25 DE DE19823223715 patent/DE3223715A1/de not_active Withdrawn
- 1982-06-25 CH CH3918/82A patent/CH661285A5/de not_active IP Right Cessation
- 1982-06-28 AT AT0250482A patent/AT384679B/de active
- 1982-07-05 BG BG8257275A patent/BG42105A1/xx unknown
- 1982-07-13 FR FR8212302A patent/FR2509750B1/fr not_active Expired
- 1982-07-14 DK DK315982A patent/DK315982A/da not_active Application Discontinuation
- 1982-07-14 IT IT48809/82A patent/IT1189317B/it active
- 1982-07-15 BE BE0/208594A patent/BE893844A/fr not_active IP Right Cessation
- 1982-07-16 ES ES514069A patent/ES8402019A1/es not_active Expired
- 1982-07-16 HU HU822332A patent/HU193267B/hu unknown
- 1982-07-16 GB GB08220668A patent/GB2102947B/en not_active Expired
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| BG42105A1 (en) | 1987-10-15 |
| ES514069A0 (es) | 1984-01-01 |
| DE3223715A1 (de) | 1983-02-03 |
| ATA250482A (de) | 1987-05-15 |
| FR2509750A1 (fr) | 1983-01-21 |
| CH661285A5 (de) | 1987-07-15 |
| GB2102947B (en) | 1985-11-06 |
| IT1189317B (it) | 1988-02-04 |
| AT384679B (de) | 1987-12-28 |
| DD206683A3 (de) | 1984-02-01 |
| GB2102947A (en) | 1983-02-09 |
| BE893844A (fr) | 1982-11-03 |
| DK315982A (da) | 1983-01-17 |
| ES8402019A1 (es) | 1984-01-01 |
| FR2509750B1 (fr) | 1985-11-29 |
| IT8248809A0 (it) | 1982-07-14 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| EP2114571B1 (en) | Liquid testing assembly | |
| AU723048B2 (en) | Method for quantification of biological material in a sample | |
| US4829005A (en) | Sedimentation filtration microorganism growth culture system | |
| EP2401355B1 (en) | Method for the bacteriological investigation of a biological sample and relative device | |
| KR20130004771U (ko) | 무균검사 방법 및 이에 사용된 밀폐식 집균앰플배양기 | |
| EP0101398B1 (en) | Method of concentrating and measuring unicellular organisms | |
| US5897993A (en) | Method of determining the number of bacteria quickly and a device for determining the number of bacteria | |
| US5550032A (en) | Biological assay for microbial contamination | |
| US4248830A (en) | Device for microbiological testing | |
| JP2008136440A (ja) | シリンジ型微生物培養デバイス | |
| FI83432B (fi) | Foerfarande och anordning foer detektering av biologiskt aktiva aemnen. | |
| JP2006509514A (ja) | 細菌を同定するための方法および装置 | |
| US20100136608A1 (en) | Multiple Filter Array Assay | |
| US4046138A (en) | Diagnostic device for liquid samples | |
| HU193267B (en) | Process and equipment for the detection of contaminants | |
| Mulvany | Chapter VII Membrane Filter Techniques in Microbiology | |
| US4397945A (en) | Test method and apparatus for the presence of microorganism in syringe | |
| EP0964913B1 (en) | Device for urine testing | |
| EP0841403A2 (en) | Coloring composition for microorganisms, filter tool for entrapping bacteria, and kit for measuring the number of bacteria | |
| US20120183991A1 (en) | Method for testing drug sensitivity of mycobacterium tuberculosis, application of indicator, and solid medium | |
| WO1990013624A1 (en) | Microorganism growth culture system, method and filtration unit utilized therewith | |
| JP2604908Y2 (ja) | 細菌検出器具 | |
| CN216404384U (zh) | 一种用于微生物mpn检测的试管 | |
| CN110274896B (zh) | ATP生物荧光lgCB-lgIB标曲法评价液体消毒剂真菌杀灭效果的方法 | |
| JPH07227297A (ja) | 中空糸を用いた微生物の検査方法及びその装置 |