FI106265B - Menetelmä ksylitolin valmistamiseksi ksyloosia sisältävistä seoksista - Google Patents

Menetelmä ksylitolin valmistamiseksi ksyloosia sisältävistä seoksista Download PDF

Info

Publication number
FI106265B
FI106265B FI913376A FI913376A FI106265B FI 106265 B FI106265 B FI 106265B FI 913376 A FI913376 A FI 913376A FI 913376 A FI913376 A FI 913376A FI 106265 B FI106265 B FI 106265B
Authority
FI
Finland
Prior art keywords
process according
xylitol
fermentation
xylose
solution
Prior art date
Application number
FI913376A
Other languages
English (en)
Swedish (sv)
Other versions
FI913376A0 (fi
Inventor
Heikki Heikkilae
Leena Rahkila
Juha Nurmi
Marja Toeyrylae
Original Assignee
Xyrofin Oy
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=23147762&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=FI106265(B) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Xyrofin Oy filed Critical Xyrofin Oy
Priority to FI913376A priority Critical patent/FI106265B/fi
Publication of FI913376A0 publication Critical patent/FI913376A0/fi
Application granted granted Critical
Publication of FI106265B publication Critical patent/FI106265B/fi

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/02Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group
    • C12P7/04Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic
    • C12P7/18Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic polyhydric
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/145Fungal isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/16Yeasts; Culture media therefor
    • C12N1/165Yeast isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645Fungi ; Processes using fungi
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645Fungi ; Processes using fungi
    • C12R2001/72Candida
    • C12R2001/74Candida tropicalis
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02EREDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
    • Y02E50/00Technologies for the production of fuel of non-fossil origin
    • Y02E50/10Biofuels, e.g. bio-diesel
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/80Elimination or reduction of contamination by undersired ferments, e.g. aseptic cultivation
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/803Physical recovery methods, e.g. chromatography, grinding
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/911Microorganisms using fungi
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/911Microorganisms using fungi
    • Y10S435/921Candida
    • Y10S435/924Candida tropicalis

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Seasonings (AREA)
  • Nitrogen Condensed Heterocyclic Rings (AREA)
  • Luminescent Compositions (AREA)

Description

1 106265
Menetelmä ksylitolin valmistamiseksi ksyloosia sisältävistä seoksista
S
Tämä keksintö koskee menetelmää ksylitolin valmis-5 tamiseksi ksyloosia ja/tai ksylaania sisältävästä materiaalista ja erityisesti biomassahemiselluloosahydrolysaa-teista. Eräs erityinen puoli tätä keksintöä koskee menetelmää ksylitolin valmistamiseksi fermentoimalla biomassa-hemiselluloosahydrolysaatteja hiivakannalla, joka kykenee 10 muuntamaan ksyloosin ksylitoliksi, ja kohottamalla ksyli-tolipitoisuuksia kiteytystä varten kromatografisella erotuksella.
Viisiarvoinen alkoholi ksylitoli on sokerialkoholi, joka on peräisin ksyloosin (C5H1005) pelkistymisestä. Ksyli-15 toli on luonnossa esiintyvä, viisi hiiliatomia sisältävä sokerialkoholi, jolla on sama makeus ja energiasisältö kuin sokerilla (17 J/g). Ksylitolia esiintyy pieniä määriä monissa hedelmissä ja vihanneksissa sekä syntyy ihmisen elimistössä normaalin aineenvaihdunnan aikana. Ksylitolil-20 la on tietyt tunnetut metaboliset, dentaaliset ja tekniset ominaispiirteet, jotka tekevät siitä houkuttelevan sokerin korvikkeen monissa eri yhteyksissä.
Ksylitoli metaboloituu insuliinista riippumattomasti, joten sitä voivat nauttia turvallisesti sellaiset dia-; 25 beetikot, jotka eivät ole insuliinista riippuvaisia. Li säksi ksylitolin on osoitettu hidastavan mahalaukun tyhjenemistä ja mahdollisesti alentavan ravinnon vastaanottoa, mikä merkitsee sitä, että sillä voi olla tärkeä osa painoa alentavissa ruokavalioissa.
30 Ksylitoli on myös hammasmätää aiheuttamaton (ei- kariogeeninen) aine ja mahdollisesti jopa kariostaattinen aine. Sakkaroosi ja muut hiilihydraatit fermentoituvat suussa Streptococcuc mutansin ja muiden bakteerien vaikutuksesta tuottaen happoa, joka alentaa pH:ta, deminerali-35 soi hammaskiillettä ja johtaa hammasmätään. S. mutans ja 2 106265 muut bakteerit eivät kuitenkaan fermentoi ksylitolia ja synnytä siten fermentaation happamia sivutuotteita, jotka edistävät hammasmätää. Tutkimukset ovat myös antaneet tuloksia, jotka viittaavat siihen, että ksylitoli saattaa 5 jopa vähentää aktiivisesti uuden hammasmädän kehittymistä ja saattaa jopa "korjata" olemassa olevia vaurioita indusoimalla uudelleen mineralisoitumisen.
Mitä makuun tulee, ksylitolilla ei tyypillisesti ilmene epämiellyttävää jälkimakua kuten muilla sokerin 10 korvaajilla ja sen suuren energian vuoksi, jonka yhden ksylitoligramman liuottaminen vaatii, se saa aikaan miellyttävän "jäähdyttävän" vaikutuksen.
Ksylitolin eduista huolimatta sen hyväksikäyttöä kaupallisessa mitassa on rajoittanut sen suhteellisen kor-15 kea hinta, joka johtuu sen kaupallisessa mitassa tuottamisen vaikeudesta. Ksylitolia valmistetaan yleensä ksylaania sisältävistä materiaaleista, erityisesti hemiselluloosien hydrolyysituotteista. Hemiselluloosat ovat suuri ryhmä hyvin karakterisoituja polysakkarideja, joita esiintyy 20 kaikkien maakasvien ja makean veden kasvien primaarisissa ja sekundaarisissa soluseinissä. Hemiselluloosat koostuvat sokeriryhmistä, mm. D-ksyloosista, ja muita ryhmiä ovat D-mannoosi, D-glukoosi, D-galaktoosi sekä L-arabinoosi.
Aikaisemmissa menetelmissä ksylitolia on valmistet-; 25 tu ksylaanisia sisältävästä materiaalista hydrolysoimalla kyseinen materiaali monosakkarideja, ksyloosi mukaan luettuna, sisältävän seoksen aikaansaamiseksi. Ksyloosi muunnetaan ksylitoliksi yleensä nikkelikatalysaattorin, kuten esimerkiksi raneynikkelin, ollessa läsnä. Alan aikaisempi 30 kirjallisuus paljastaa monia menetelmiä ksyloosin ja/tai ksylitolin valmistamiseksi ksylaania sisältävästä materi aalista. Sellaista menetelmiä kuvaavaa alan aikaisempaa kirjallisuutta ovat US-patenttijulkaisu 3 784 408 (Jaffe et ai.), US-patenttijulkaisu 4 066 711 (Melaja et ai.), 35 US-patenttijulkaisu 4 075 405 (Melaja et ai.), US-patent- 3 106265 tijulkaisu 4 008 285 (Melaja et ai. ) ja US-patenttijulkai-su 3 586 537 (Steiner et ai.).
Nämä aikaisemmat menetelmät ovat kuitenkin monimutkaisia, monivaiheisia sekä suhteellisen kalliita ja tehot-5 tornia menetelmiä. Alan aikaisemmassa kirjallisuudessa myönnetään yhden suurimmista ongelmista tässä suhteessa olevan ksyloosin ja/tai ksylitolin erottaminen polyoleista ja muista hydrolyysin sivutuotteista riittävän puhtaan ksylitolin aikaansaamiseksi. Tästä perusasiasta huolehti-10 minen edellyttää usein monivaiheista erotustekniikkaa mekaaninen suodatus ja kromatografinen erotus mukaan luettuina. Lisäksi alan kirjallisuudessa esitetään muiden puhdistusmenetelmien käyttämistä, kuten esimerkiksi happojen käyttämistä ligniinien saostamiseen, mikä yleensä pidentää 15 kaupallisessa mitassa tapahtuvan ksylitolin tuotannon vaatimaa aikaa ja kohottaa sen kustannuksia.
On tunnettua, että eräät hiivat sisältävät ksyloo-sireduktaasientsyymiä, joka katalysoi D-ksyloosin pelkistymistä ksylitolista ensimmäisenä vaiheena D-ksyloosin 20 metaboliaa. Kokeellisessa mitassa tehdyissä tutkimuksissa on käytetty hyväksi hiivasoluja, jotka kykenevät fermen-toimaan D-ksyloosia, tai soluista vapaita uutteita, jotka sisältävät ksyloosireduktaasia, ksylitolin tuottamiseen runsaasti D-ksyloosia sisältävästä lähtömateriaalista.
• 25 Gong et ai., Quantitative Production of Xylitol from D- a 1,1
Xylose by a High Xylitol Producing Yeasti Mutant Candida Tropicalis HXP2, Biotechnology Letters 3 (1981), nro 3, 125 - 130; Kitpreechavanich, V. et ai-. Conversion of D-Xylose into Xylitol by Xylose Reductase from Candida Pel-30 liculosa Coupled with the Oxido-reductase System of Methanogen Strain HU, Biotechnology Letters 10 (1984) 651 - 656; McCracken ja Gong, Fermentation of Cellulose and Hemicellulose Carbohydrates by Thermotolerant Yeasts, Biotechnology and Bioengineering Symp. No. 12, s. 91 - 112 35 (Wiley & Sons). Vaikka on olemassa hiivakantoja, jotka ky- 4 106265 kenevät tuottamaan ksylitolia suurella saannolla D-ksyloo-sia fermentoimalla, kokonaista menetelmää ksylitolin valmistamiseksi kaupallisessa mitassa esimerkiksi biomassahe-miselluloosahydrolysaateista, jotka sisältävät ksyloosia 5 heksoosien ja muiden epäpuhtauksien lisäksi, ei alan aikaisemmassa kirjallisuudessa ole esitetty.
Tämä keksintö tuo kuitenkin esiin yksinkertaisen ja tehokkaan menetelmän puhtaan ksylitolin valmistamiseksi ksyloosia sisältävästä lähtömateriaalista, jossa menetel-10 mässä käytetään hyväksi sellaisia hiivakantoja, jotka kykenevät muuntamaan ksyloosin ksylitoliksi ja useimmat läsnä olevat heksoosit etanoliksi; sellaisessa fermentoinnis-sa syntyy runsaasti ksylitolia sisältävä liuos, josta ksylitoli voidaan puhdistaa yksikertaisella ja tehokkaalla 15 tavalla turvautumatta mihinkään laajoihin ja kalliisiin erotuskeinoihin. Yleensä ksylitoli voidaan puhdistaa yhdessä vaiheessa kromatografisella erotuksella ja kiteyttää sen jälkeen, jolloin muodostuu puhdasta ksylitolia. Pienet määrät etanolia saadaan poistetuksi helposti haihduttamal-20 la tai muilla samankaltaisilla keinoilla, jolloin vältetään laajamittaiset menettelyt ksylitolin erottamiseksi heksitoleista ja muista sokereista, joita hydrolysointi ja tavanomainen hydraus tuottavat ja joita on mukana runsaasti ksylitolia sisältävässä liuoksessa.
\ 25 Tämä keksintö koskee menetelmää suurin piirtein puhtaan ksylitolin valmistamiseksi ksyloosin vesiliuoksesta, joka voi sisältää myös heksooseja, kuten esimerkiksi glukoosia, sekä muita epäpuhtauksia. Keksintö koskee mainitun liuoksen fermentointia sellaista hiivakantaa käyttä-30 en, joka kykenee muuntamaan suurin piirtein kaiken maini-' tun ksyloosin ksylitoliksi ja suurimman osan mainituista vapaista heksooseista etanoliksi. Fermentaatiotuote puhdistetaan poistamalla liuoksesta hiivasolut suodattamalla, sentrifugoimalla tai muilla sopivilla keinoilla ja poista-35 maila etanoli haihduttamalla tai tislaamalla. Kromatogra- 5 106265 finen erotus tuottaa tulokseksi runsaasti ksylitolia sisältävän jakeen tai runsasksylitolisia jakeita, josta/ joista puhdas ksylitoli voidaan kiteyttää.
Joissa tapauksissa käytetään hyväksi ksyloosin ve-5 siliuoksen esikäsittelyä. Sellainen esikäsittely voi sisältää jälkihydrolysointi- ja/tai erotusvaiheen sellaisten aineosien poistamiseksi, jotka saattavat olla myrkyllisiä ja/tai vahingollisia ksyloosin muuntamiseen ksylitoliksi käytettävälle hiivalle, tai muiden sellaisten epäpuhtauk-10 sien poistamiseksi, jotka saattavat vaikuttaa haitallisesti myöhempiin fermentointi- ja erotusvaiheisiin. Sellaisiin esikäsittelyihin voi sisältyä kromatografisia erotus-menettely j ä.
Tässä keksinnössä käytetään hyväksi hiivoja, jotka 15 kykenevät pelkistämään ksyloosin ksylitoliksi ja heksoosit etanoliksi. Sellaisia hiivoja ovat Candida-, Pichia- ja Pachysolen- sekä Debaryomyces-suvun hiivat, mutta ne eivät rajoitu kyseisiin hiivoihin. Näistä suvuista Candida ja Debaryomyces ovat edullisia Candida tropicalisin ja 20 Debaryomyces hanseniin ollessa erityisen edullisia. Yksi hyvä esimerkki on Candida tropicalis -kanta, joka on tallennettuna American Type Culture Collection -kokoelmaan tulonumerolla 9968.
Edullisen toteutusmuodon yksityiskohtainen kuvaus 25 A. Yleistä 1. Lähtömateriaalit Tämän keksinnön mukaisten menetelmien yhteydessä käytettäviksi soveltuviin lähtömateriaaleihin kuuluvat lähes kaikki ksylaania sisältävät materiaalit. Potentiaa-30 lisiä lähtömateriaaleja ovat lehtipuut (kuten esimerkiksi ~ ·' koivu, pyökki, poppeli, leppä ja vastaavat) sekä sellaiset kasvit tai kasvien osat kuin maissi, kauran kuoret, mais-sintähkät ja maissin korret, pähkinänkuoret, oljet, bagas-si ja puuvillansiementen kuoret. Käytettäessä lähtömateri-35 aalina puuta se on edullista jauhaa hakkeeksi, puruksi, 6 106265 lastuiksi tai vastaavaksi ja hydrolysoida se tai höyryrä-jäyttää ja hydrolysoida se, jolloin syntyy tämän keksinnön yhteydessä käyttökelpoista hemiselluloosamateriaalia.
Edellä lueteltujen materiaalien lisäksi tehokkaita 5 lähtömateriaaleja ovat myös puunjalostusprosesseista peräisin olevat, runsaasti ksylaania tai ksyloosia sisältävät sivutuotteet. Esimerkiksi jäteliemi, jota syntyy jäte-tuotteena valmistettaessa puumassaa sulfiittimenetelmällä ja joka tunnetaan "sulfiittijäteliemenä", sisältää liuke-10 nemattomia puun kiintoaineita, ligniinejä, heksooseja ja pentooseja ksyloosi mukaan luettuna ja on tehokas lähtömateriaali ksylitolin valmistukseen. Myös muita paperin tai massan valmistuksesta peräisin olevia, runsaasti ksylaania tai ksyloosia sisältäviä sivutuotteita tai jätetuotteita 15 voidaan käyttää.
Tämän keksinnön mukaisten menetelmien hyväksi käyttämiseksi tarvitaan vesiliuos, joka sisältää vapaata ksyloosia. Sen vuoksi saattaa olla tarpeen hydrolysoida lähtömateriaali hapoilla tai entsyymeillä ksylaanin hajotta-20 miseksi ksyloosiksi. Esimerkiksi edullisesti US-patentti- julkaisuissa 3 784 408 (Jaffe et ai.) ja 3 586 537 (Steiner et ai. ) on esitetty menetelmiä ksylaania sisältävän materiaalin hydrolysoimiseksi niin, että saadaan aikaan runsaasti ksyloosia sisältäviä liuoksia.
], 25 2. Ksyloosia sisältävien vesiliuosten fermentointi Lähtömateriaali voidaan tarvittaessa käsitellä ennen fermentointia kaikkien sellaisten aineosien poistamiseksi siitä, jotka saattaisivat olla myrkyllisiä ja muuten vahingollisia fermentointiin käytettävälle hiivalle. Se, 30 onko sellainen esikäsittely tarpeen, riippuu käytettävästä ·' lähtömateriaalista ja siitä hiivasta, jota fermentoinnissa käytetään. Raaka-aineen sopiva esikäsittely voi sisältää jälkihydrolysointi- ja/tai erotusvaiheen. Fermentointiin soveltuva ksyloosin pitoisuus vesiliuoksessa riippuu käy- 7 106265 tettävästä lähtömateriaalista mutta on edullisesti noin 50 - 300 g/1.
Fermentaation toteuttamiseen käytetään tässä kek-sinössä hiivakantaa, joka kykynee muuntamaan ksyloosin 5 ksylitoliksi ja useimmat läsnä olevat heksoosit etanoliksi. Etanoli voidaan saada helposti talteen haihduttamalla, tislaamalla tai muilla tunnetuilla keinoilla paljon yksinkertaisemmalla ja tehokkaammalla tavalla kuin on ksyloosin ja/tai ksylitolin erotus muista sokereista.
10 Yksi esimerkki tässä yhteydessä sopivasta hiivasta on Candida tropicalis, joka on tallennettuna American Type Culture Collection -kokoelmaan (nro 9968). Muita hiivakan-toja ovat sukuihin Candida, Pichia, Pachysolen ja Debaryo-myces kuuluvat kannat (ks. N. J. W. Kregr-van Rij, The 15 Yeast. A Taxonomic Study, 3. painos, Elsevier Science Publishers B.V., 1984), jotka kykenevät muuntamaan ksyloosin ksylitoliksi ja heksoosit etanoliksi.
Ennen runsaasti ksyloosia sisältävän liuoksen fer-mentointia liuokselle voidaan tehdä kromatografinen ero-20 tuskäsittely suurten molekyylien ja ionisoituneiden aineiden erottamiseksi ja poistamiseksi, kun raaka-aineena käytetään nesteitä, joiden puhtausaste on alhainen. Esimerkiksi käytettäessä lähtömateriaalina sulfiittijäteliemiä saattaa fermentointia edeltävä kromatografinen erotus olla ; 25 edullinen.
Runsaasti ksyloosia sisältävän liuoksen fermentoin-ti voidaan toteuttaa useimmissa kaupallisesti saatavissa olevissa panosfermenttereissä, jotka on edullisesti varustettu ilmastuksella, sekoituksella ja pH:n säädöllä, esi-30 merkiksi Braun Biostat -fermentterissä (malli E). Edullinen fermentointilämpötila on noin 20 - 40 °C noin 30 °C:n lämpötilan ollessa erityisen edullinen. Hiivasolut lisätään runsaasti ksyloosia sisältävään liuokseen; yleensä fermentoituminen tapahtuu sitä nopeammin, mitä suurempi 35 hiivapitoisuus on. Edullisimmat hiivapitoisuudet riippuvat β 106265 ksyloosiliuoksesta ja sen karakteristisista ominaisuuksista sekä ksyloosin pitoisuudesta liuoksessa. Olemme havainneet edulliseksi lisätä hiivasoluja niin, että pitoisuudeksi tulee noin 0,1 - 10 g kuivaa hiivaa/1 substraattia 5 (kuivana), kun ksyloosipitoisuus on noin 50 - 300 g/1.
Fermentoitumista edistää ravinteiden lisääminen ja se jatkuu, kunnes suurin osa ksyloosista on muuttunut ksylitoliksi ja suurin piirtein kaikki heksoosit ovat muuttuneet etanoliksi; tyypillisesti fermentointi kestää noin 10 24 - 144 tuntia noin 24 - 72 tunnin fermentointiajan ol lessa erityisen edullinen. Tämän keksinnön mukaista menetelmää käyttämällä on mahdollista muuntaa yli 90 % ksyloosista ksylitoliksi.
3. Fermentointia seuraava puhdistus ja ksylitolin 15 erotus
Fermentoinnin jälkeen liuos kirkastetaan ennen ksylitolin erotusta. Panosfermentointiprosessissa hiivasolut poistetaan fermentoinnin päättymisen jälkeen. Hiivasolujen poisto voidaan toteuttaa sentrifugoimalla, suodattamalla 20 tai muilla samankaltaisilla keinoilla. Kun hiivasolut on poistettu ja liuos on kirkas, fermentoitumisen tuottama etanoli voidaan poistaa tässä vaiheessa haihduttamalla, tislaamalla tai muilla keinoilla.
Hiivasolujen (ja mahdollisesti etanolin) poiston : 25 jälkeen fermentoidun liuoksen ksylitolipisoituutta noste taan kromatografisen erotuksen avulla. Sellainen kromatografinen erotus tehdään edullisesti pylväässä, joka on täytetty sulfonoidulla polystyreenihartsilla, joka on silloitettu divinyylibentseeneillä ja joka on alkali-/maa-30 alkalimetallimuodossa. Erästä menetelmää, joka on tarkoi-' tettu suuressa mitassa toteuttavaan kromatografiseen kä sittelyyn ja joka soveltuu käytettäväksi tässä yhteydessä, kuvataan US-patenttijulkaisussa 3 928 193 (Melaja et ai.). Kromatografinen erotus voidaan toteuttaa myös jatkuvalla 35 menetelmällä käyttämällä hyväksi simuloitua liikkuvaker- « 9 106265 rosprosessia, joka on esitetty US-patenttijulkaisussa 2 985 589 ja jossa myös käytetään DVB-silloitettua sulfo-noitua polystyreenihartsia.
Kromatografisesta erotuksesta peräisin olevista, ’ 5 runsaasti ksylitolia sisältävävistä jakeista voidaan ksy litoli tämän jälkeen kiteyttää suurella saannolla käyttämällä hyväksi tavanomaisia kiteytysmenettelytapoja kiteytys jäähdyttämällä ja kiehuvaksi kuumentamalla mukaan luettuina. Jos käytetään jäähdytyskiteytystä, runsaasti ksy-10 litolia sisältään jakeeseen lisätään kiteytymiskeskuksiksi ksylitolikiteitä, joiden keskiläpimitta on noin 30 pm, ja liuoksen lämpötilaa alennetaan asteittain. Tuloksena olevat kiteet, joiden keskiläpimitta on edullisesti noin 250 - 650 pm, erotetaan sentrifugoimalla ja pestään vedel-15 lä, jolloin saadaan talteen suurin piirtein puhdasta kiteistä ksylitolia.
B. Kokeellinen osa
Esimerkki 1: Ksylitolin valmistus "sulfiittijäte-liemestä" 20 Ksylitolia tuotettiin lehtipuusta valmistetusta "sulfiittijäteliemestä" käyttämällä hyväksi fermentointia Debaryomyces hansenii -hiivalla, joka oli vahvistettu sellaiseksi kannaksi, joka kykeni fermentoimaan ksyloosin ksylitoksi ja useimmat heksoosit etanoliksi. Sulfiittijät-: 25 eliemipanos (joka oli peräisin koivupuumassan valmistuk- f sesta) käsiteltiin US-patenttijulkaisussa 4 631 129 kuvatulla tavalla runsaasti ksyloosia sisältävän jakeen aikaansaamiseksi. Tämän jakeen analyysi oli seuraavanlainen (hiilihydraattikoostumus mitattiin kaasu-nestekromatogra-30 fia-analyysillä): ' · Kuiva-aine: 30,4 paino-% pH: 2,5
Kalsium (Ca**): 2,0 % kuiva-aineeksi laskettuna (tästä eteenpäin "k.a.") 35 Natrium (Ma*): 0,1 % k.a.
10 106265
Hiilihydraatit:
Ksyloosi: 39,3 % k.a.
Arabinoosi: 1,0 % k.a.
Ramnoosi: 1,2 % k.a.
5 Glukoosi: 2,5 % k.a.
Mannoosi: 0,1 % k.a.
Galaktoosi: 2,0 % k.a.
Jae neutraloitiin kalsiumoksidilla suunnilleen pH-arvoon 6,2 lisäämällä litraa kohden jaetta 10 g CaO:a. Jae 10 laimennettiin sen jälkeen pitoisuuteen 51 g ksyloosia/lit-ra liuosta ja fermentoitiin sitten hiivasoluilla. Fermen-tointi toteutettiin "ravistettavissa" pulloissa (200 ml) noin 25 °C:ssa fermentointiajan ollessa noin 48 tuntia. Lisätty hiivasolumäärä oli 1,7 x 10® solua/ml jaetta, jotka 15 hiivasolut olivat fermentointiliuokseen sopeutettuja runsaasti ksyloosia sisältävässä liuoksessa toteutetun alku-viljelyn jälkeen. 48 tunnin kuluttua hiivasolut poistettiin sentrifugoimalla ja tulokseksi saatu kirkas liuos käsiteltiin kromatografisesti fermentoitumisen tuottaman 20 ksylitolin erottamiseksi seuraavissa olosuhteissa:
Liuoksen koostumus Kuiva-aine: 24,0 paino-% pH: 5,9
Hiilihydraatit: 25 Ksylitoli: 24,7 % k.a.
Ksyloosi: 0,3 % k.a.
Glukoosi: 2,1 % k.a.
Arabinoosi: 0,6 % k.a.
Kalsiumasetaatti: 2,5 % k.a.
30 Pylväs
Halkaisija: 10 cm Korkeus: 200 cm
Hartsi: Zerolit 225, polystyreeni-DVB-kationinvaihtohart-si, jonka keskimääräinen hiukkaskoko on 0,32 mm ja divi- 11 106265 nyylibentseenisisältö ("DVB"-sisältö) 3,5 %, kalsiumioni-muodossa
Virtausnopeus: 50 ml/min Lämpötila: 65 °C 5 Syöttömäärä: 500 ml
Eluoitumista pylväästä kuvaava käyrä on esitetty kuviossa 1. Ulosvirtauksesta otettiin näytteitä ja niistä analysoitiin kuiva-ainemäärä ja koostumus, jotka on esitetty alla olevassa taulukossa I, jakaen eluaatti kolmeen 10 jakeeseen:
Taulukko I
Jae nro 1 Jae nro 2 Jae nro 3 #1 #2 #3 15 Kuiva-aine (g) 134 10 58
Pitoisuus (g/1) 12 10 16
Ksylitoli (% k.a.) 0,7 40,0 79,0
Edellä kuvatulla fermentointimenetelmällä tuotetun 20 ksylitolin kiteytys toteutettiin seuraavasti: Runsaasti ksylitolia sisältävä jae valmistettiin edellä kuvatulla tavalla. Käytetyn ksylitolijakeen koostumus oli seuraava: Kuiva-aine: 20 g/1 Ksylitoli: 86,6 % k.a.
: 25 Muut: 13,4 % k.a.
Tästä liuoksesta saatiin ksylitoli talteen jäähdy-tyskiteytyksellä. Liuos haihdutettiin ensin niin, että kuiva-ainepitoisuudeksi tuli 86,5 % ja siirrettiin kiteyt-timeen, joka oli varustettu jäähdytysjärjestelmällä ja 30 sekoittimella. Alkulämpötila oli noin 65 °C ja pH noin ’ 5,3. Liuokseen lisättiin kiteytymiskeskuksiksi ksylitoli- kiteitä, joiden läpimitta oli noin 30 pm, isopropanoliin suspendoituina. Lämpötila laskettiin 3 tunnin aikana noin 65 eC:sta noin 50 °C:seen. Näissä olosuhteissa ksylitoli-35 kiteet kasvoivat niin, että niiden keskiläpimitta oli « 12 106265 250 pm. Kiteet erotettiin liuoksesta sentrifugoimalla ja pestiin vedellä. Talteen saadut kiteet koostuivat yli 99-%:isesti puhtaasta ksylitolista.
Esimerkki 2: Ksylitolin valmistus höyryräjäytetystä 5 koivupuusta
Raaka-aineena tässä esimerkissä oli höyryräjäytetty koivupuuhydrolysaatti, joka jälkihydrolysoitiin ksylaanin hajottamiseksi vapaaksi ksyloosiksi. Mitä hydrolyysin parametreihin tulee, tutustukaa artikkeliin Enzymatic hydro-10 lysis of steam-pretreated lignocellulosic material, Poutanen, K. ja Puls, J., Proc. 3rd Eur. Congr. Biotechnol., Munchen 1984, osa II, s. 217 - 222. Tulokseksi saadun, runsaasti ksyloosia sisältävän liuoksen koostumus oli seu-raava: 15 Aineosa Pitoisuus (g/1)
Ksyloosi 76
Glukoosi 3,6
Ramnoosi 1,3
Mannoosi 2,1 20 Galaktoosi 2,4
Arabinoosi 0,8
Kokonaiskuiva-ainepitoisuus oli 15 paino-% liuoksesta.
Liuos fermentoitiin Candida tropicalis -hiivalla (ATCC 9968). Liuoksen pH säädettiin 25-%:ista NaOH:a li-; 25 säämällä suunnilleen arvoon 6 ja siihen inokuloitiin 3 g hiivaa/litra; ravintoaineiksi lisättiin 3 g mallasuutet-ta/litra ja 5 g peptonia/litra. Inokulaatti valmistettiin viljelemällä hiivaa 5-%:isessa ksyloosiliuoksessa ravintoaineiden lisäyksen ollessa sama. Lämpötila oli fermentoin-30 nin aikana noin 30 °C. Fermentointi toteutettiin Braun *. Biostat -fermentterissä (malli E), joka oli varustettu * « ilmastuksella (0,18 1/min) ja sekoituksella (200 kierros-ta/min) ja pH:n säädöllä (25-%:inen NaOH) pH-arvon 6 säilyttämiseksi; fermentterin työtilavuus oli 8 litraa ja 35 kokonaistilavuus 10 litraa. Vaahtoamista säädeltiin Mazu * 13 106265 6000 -vaahdonestoaineella. Fermentteristä otettujen näytteiden analyysi on esitetty taulukossa II. Fermentaatio-näytteiden koostumus määritettiin suuren erotuskyvyn nes-tekromatografiällä.
5
Taulukko II
Hiiva Ksyloosi Ksylitoli Etanoli
Aika (h) (g/l) (g/1) (g/l) (g/l) 0 1,2 75,8 0,0 0,0 10 24 1,4 66,5 4,8 3,7 48 2,0 55,2 14,1 6,9 72 2,6 37,3 29,4 7,7 96 2,8 18,7 54,2 7,6 120 (ei mitattu) 9,4 61,9 8,5 15 144 (ei mitattu) 3,0 52,7 6,7
Fermentoimalla saatu ksylitolia sisältävä liuos väkevöitiin kromatografisella erotuksella runsaasti ksylitolia sisältäviksi jakeiksi ja ksylitoli kiteytti!, jol-20 loin saatiin 99-%risesti puhdasta ksylitolia samoin kuin esimerkissä 1.
Esimerkki 3: Ksylitolin valmistus höyryräjäytetystä koivupuusta
Raaka-aineena esimerkissä 3 oli koivupuusta esimer-j 25 kissä 2 käsiteltyjä parametreja noudattaen saatu höyryrä-jäytetty jälkihydrolysaatti. Liuoksen koostumus oli seu-raava:
Aineosa Pitoisuus (g/l)
Ksyloosi 110,00 30 Glukoosi 3,1
Ramnoosi 3,5
Mannoosi 3,4
Galaktoosi 1,5
Arabinoosi 1,6 35 Kokonaiskuiva-ainepitoisuus oli 15 paino-% liuoksesta.
« 106265 14
Ennen fermentointia liuokselle tehtiin kromatografinen erotuskäsittely suurimman osan suurista molekyyleistä ja ionisoituneista aineista poistamiseksi. Kromatografinen erotus tehtiin pylväässä, joka oli täytetty Amber-5 lite BH-1 -hartsilla (polystyreeni-divinyylihartsi), joka oli natriumionimuodossa. Olosuhteet olivat seuraavat: Hartsi: Amberlite BH-1, sulfonoitu polystyreeni-divinyyli-bentseenihartsi, joka on silloitettu 5,5 %:lla DVB:ä, natriumionimuodossa; hiukkaskoko 0,40 mm 10 Pylväs: halkaisija 0,225 m, korkeus 5,0 m Lämpötila: 65 °C Virtausnopeus: 0,04 m3/h
Syöttömäärä: 18 1 liuosta, jonka väkevyys oli 31,2 paino-% Edellä kuvatun kromatografisen erotuksen tulokset 15 on esitetty graafisesti kuviossa 2. Näytteitä otettiin 5 minuutin välein. Vaiheen kokonaiskestoaika oli 170 minuuttia. Erotuspylvääseen syötetyn liuoksen koostumus oli seu-raava:
Arabinoosi: 0,6 % k.a.
20 Ramnoosi: 0,5 % k.a.
Ksyloosi: 37,8 % k.a.
Mannoosi: 1,2 % k.a.
Galaktoosi: 1,6 % k.a.
Glukoosi: 1,6 % k.a.
: 25 Muut: 57,3 % k.a.
Eluentti jaettiin 5 jakeeseen. Jae 2 poistettiin prosessista ja jae 4 otettiin talteen fermentointivaihetta varten. Loput jakeet palautettiin kromatografiseen erotukseen syötettävään liuokseen erotuksen saannon kohottami-30 seksi. Jakeiden koostumus on esitetty alla taulukossa III.
1S 106265 ίο
Taulukko III
Jae 1 2 3 4 5
Aika (min) (katkaisupiste) 15 100 115 140 155 5 Arabinoosi 1,3 0,1 0,2 1,0 2,1
Ramnoosi 0,0 0,0 1,2 0,9 0,0
Ksyloosi 24,8 3,4 57,6 71,2 46,6
Mannoosi 0,8 0,1 1,9 2,2 1,6
Galaktoosi 0,8 0,1 2,0 2,0 1,4 10 Glukoosi 0,5 0,5 4,7 1,9 0,7
Muut 71,9 95,8 32,3 20,3 47,6 (Luvut ilmaisevat prosenttiosuuden kuiva-aineesta.)
Fermentointi toteutettiin Candida tropicalis -hii-15 vasoluilla kuten esimerkissä 2. Fermentoinnin tulokset on esitetty graafisesti kuviossa 3. Saavutettu ksylitolin saanto oli yli 90 g/1 ksyloosiliuoksesta, jonka väkevyys oli 100 g/1. Tässä kokeessa käytettiin ravintoaineena 15 g hiivauutetta (Gistex)/litra. Inokulaattia viljeltiin ve-20 dellä laimennetussa (1:10) hydrolysaatissa, johon oli lisätty 3 % glukoosia ja 3 % hiivauutetta.
Runsaasti ksylitolia sisältävästä liuoksesta saatiin ksylitoli talteen kromatografisella erotuksella käyttäen koelaitoskokoa olevaa pylvästä, jonka karakteristiset : 25 tiedot olivat seuraavat: «
Pylväs: korkeus 4,5 m, halkaisija 0,225 m Hartsi: sulfonoitu polystyreenipolymeeri, joka oli silloitettu 5,5 %:lla divinyylibentseeniä, natriumionimuodossa; keskimääräinen hiukkaskoko 0,37 mm 30 Virtausnopeus: 0,03 m3/h Lämpötila 65 °C
Syöttöliuos: 24 kg 24-painoprosenttista liuosta (5,76 kg kuiva-ainetta) 16 106265
Syöttöliuoksen koostumus:
Ksylitoli: 64,0 % k.a.
Ksyloosi: 2,0 % k.a.
Arabinoosi + mannoosi: 1,4 % k.a.
5 Galaktoosi + ramnoosi: 1,2 % k.a.
Glukoosi: 0,4 % k.a.
Mannitoli: 0,9 % k.a.
Muut: 30,1 % k.a.
Erotus on esitetty graafisesti kuviossa 4. Otettiin 10 talteen 5 jaetta. Niiden koostumus on esitetty alla taulukossa IV. Jae 4 oli tuotejae, josta puhdas ksylitoli kiteytettiin edellä esimerkissä 1 esitetyllä tavalla.
Taulukko IV
15 Jae 1 2 3 4 5
Aika (min) (katkaisupiste) 10 100 105 155 165
Ksylitoli 8,7 4,9 56,3 85,0 55,6
Ksyloosi 0,2 2,0 4,4 2,0 0,4 20 Arabinoosi + mannoosi 3,6 0,5 1,4 1,7 4,2
Galaktoosi + ramnoosi 0,3 0,6 3,8 1,4 0,5
Glukoosi 0,0 0,1 1,9 0,4 0,0 25 Mannitoli 0,2 0,2 2,0 1,1 0,7
Muut 87,1 81,8 30,2 8,5 38,5 (Luvut ilmaisevat prosenttiosuuden kuiva-aineesta.)
Esimerkki 4: Ksylitolin kiteytys fennentoidusta 30 liuoksesta
’ Ksylitoli kiteytettiin runsaasti ksylitolia sisäl- A
tävästä liuoksesta, joka saatiin talteen tekemällä fermen-toidulle liuokselle kromatografinen erotuskäsittely. Liuos, joka sisälsi 82,5 % ksylitolia kuiva-aineesta lasket-35 tuna, haihdutettiin 65 °C:n lämpötilassa niin, että sen • 17 106265 väkevyydeksi tuli 92 %. 2200 g:aan haihdutettua liuos lisättiin kiteytymiskeskuksiksi ksylitolisiemenkiteitä, joiden läpimitta oli 0,04 mm. Siemenkiteiden määrä oli 0,03 %. Liuoksen lämpötila laskettiin 55 tunnissa 5 45 °C:seen ennalta määrätyn ohjelman mukaisesti: T * Tj - (t : t1) x (Tx - T2) jossa T = liuoksen lämpötila (°C) T2 lämpötila siemenkiteitä lisättäessä (65 °C) 10 T2 * lopullinen lämpötila (45 °C) t = siemenkiteiden lisäyksestä kulunut aika (h) t1 = kokona!skiteytysaika (55 h)
Kiteytys toteutettiin sekoittimella varustetussa pystykiteyttimessä. Kiteet erotettiin liuoksesta sentrifu-15 goimalla (5 min, 2000 G) ja pestiin vedellä. Talteen saatujen kiteiden mediaaninen koko oli 0,37 mm ja puhtaus 99,4 % (HPLC).
Edellä esitetyn yleisen selityksen ja kokeellisten esimerkkien on tarkoitus valaista tätä keksintöä, eikä 20 niitä pidä käsittää rajoittaviksi. Muut tämän keksinnön hengen ja suoja-alan piiriin kuuluvat muunnelmat ovat mahdollisia, ja sellaisia tulee kyllä alan ammatti-ihmisten mieleen.
«

Claims (25)

1. Menetelmä ksylitolin valmistamiseksi ksyloosin vesiliuoksesta, tunnettu siitä, että ksyloosin 5 vesiliuos fermentoidaan sellaista hiivakantaa käyttäen, joka kykenee muuttamaan vapaan ksyloosin ksylitoliksi ja liuoksessa läsnä olevat vapaat heksoosit etanoliksi, riittävän pitkään ksylitolia sisältävän fermentoidun liuoksen aikaansaamiseksi, ja runsaasti ksylitolia sisältävä jae 10 tai jakeet erotetaan kromatografisesti fermentoidusta liuoksesta .
2. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että hiivasuku on Candida tai De-barvomyces.
3. Patenttivaatimuksen 2 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että hiivakanta on Candida tropi-calis.
4. Patenttivaatimuksen 3 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että hiivakanta on Candida tropi- 20 calis, ATCC 9968.
5. Patenttivaatimuksen 2 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että hiivakanta on Debaryomyces hansenii.
6. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, • 25 tunnettu siitä, että ksylitoli otetaan talteen runsaasti ksylitolia sisältävästä jakeesta tai jakeista.
7. Patenttivaatimuksen 6 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että ksylitoli otetaan talteen runsaasti ksylitolia sisältävästä jakeesta tai jakeista 30 kiteyttämällä.
8. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, - tunnettu siitä, että fermentointi toteutetaan noin 30 °C:ssa ja sen kestoaika on noin 48 tuntia. 106265
9. Patenttivaatimuksen 7 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että fermentointi kestää noin 48 tuntia.
10. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, 5 tunnettu siitä, että hiivasolut erotetaan fermen-toinnin jälkeen ja ennen kromatografista erotusta sentri-fugoimalla.
11. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että hiivasolut erotetaan fermen- 10 toinnin jälkeen ja ennen kromatografista erotusta suodattamalla .
12. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että kromatografisessa erotuksessa käytetään pylvään täytteenä kationinvaihtohartsia.
13. Patenttivaatimuksen 12 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että hartsilla on divinyylibent-seenillä silloitettu, sulfonoitu polystyreenirunko.
14. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että kromatografisessa erotuksessa 20 käytetään eluenttina vettä.
15. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että ksyloosin vesiliuos on hemi-selluloosahydrolysaatti.
16. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, • 25 tunnettu siitä, että ksyloosin vesiliuos on sulfi- dijäteliemestä saatu runsaasti ksyloosia sisältävä jae.
17. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että etanoli poistetaan fermen-toinnin jälkeen haihduttamalla tai tislaamalla.
18. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, t tunnettu siitä, että fermentointi toteutetaan alustassa, jossa ksyloosin pitoisuus on 50 - 300 g/1.
19. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että fermentointi toteutetaan pH- 35 alueella 3-9. 106265
20. Patenttivaatimuksen 19 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että fermentointi toteutetaan pH-alueella 5-7.
21. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, 5 tunnettu siitä, että fermentointi toteutetaan noin 10 - 45 °C:n lämpötilassa.
22. Patenttivaatimuksen 21 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että fermentointi toteutetaan noin 25 - 35 °C:n lämpötilassa.
23. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että fermentointi toteutetaan syöttäen rajoitetusti happea.
24. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että aineosat, jotka voivat olla 15 myrkyllisiä fermentoinnissa käytettävälle hiivalle, sekä muut epäpuhtaudet erotetaan ksyloosin vesiliuoksesta ennen fermentointia.
25. Patenttivaatimuksen 24 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että erotus tehdään kromatografi- 20 sesti. « * « « s « 21 106265
FI913376A 1989-01-17 1991-07-11 Menetelmä ksylitolin valmistamiseksi ksyloosia sisältävistä seoksista FI106265B (fi)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FI913376A FI106265B (fi) 1989-01-17 1991-07-11 Menetelmä ksylitolin valmistamiseksi ksyloosia sisältävistä seoksista

Applications Claiming Priority (6)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US29779189A 1989-01-17 1989-01-17
US29779189 1989-01-17
FI9000015 1990-01-15
PCT/FI1990/000015 WO1990008193A1 (en) 1989-01-17 1990-01-15 Method for the production of xylitol from mixtures containing xylose
FI913376A FI106265B (fi) 1989-01-17 1991-07-11 Menetelmä ksylitolin valmistamiseksi ksyloosia sisältävistä seoksista
FI913376 1991-07-11

Publications (2)

Publication Number Publication Date
FI913376A0 FI913376A0 (fi) 1991-07-11
FI106265B true FI106265B (fi) 2000-12-29

Family

ID=23147762

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
FI913376A FI106265B (fi) 1989-01-17 1991-07-11 Menetelmä ksylitolin valmistamiseksi ksyloosia sisältävistä seoksista

Country Status (18)

Country Link
US (1) US5081026A (fi)
EP (1) EP0454702B1 (fi)
JP (1) JP2947609B2 (fi)
AT (1) ATE136588T1 (fi)
AU (1) AU651061B2 (fi)
BR (1) BR9007009A (fi)
CA (1) CA2046595C (fi)
CS (1) CS24090A3 (fi)
DE (1) DE69026499T2 (fi)
DK (1) DK0454702T3 (fi)
ES (1) ES2088425T3 (fi)
FI (1) FI106265B (fi)
NO (1) NO300851B1 (fi)
PL (1) PL163719B1 (fi)
RU (1) RU2108388C1 (fi)
SK (1) SK281607B6 (fi)
WO (1) WO1990008193A1 (fi)
ZA (1) ZA90254B (fi)

Families Citing this family (48)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7109005B2 (en) * 1990-01-15 2006-09-19 Danisco Sweeteners Oy Process for the simultaneous production of xylitol and ethanol
FI86440C (fi) 1990-01-15 1992-08-25 Cultor Oy Foerfarande foer samtidig framstaellning av xylitol och etanol.
FI913197A0 (fi) * 1991-07-01 1991-07-01 Xyrofin Oy Nya jaeststammar med reducerad foermaoga att metabolisera xylitol, foerfarande foer bildande av dessa och deras anvaendning vid framstaellning av xylitol.
US20080038779A1 (en) * 1992-11-05 2008-02-14 Danisco Sweeteners Oy Manufacture of Five-Carbon Sugars and Sugar Alcohols
US7226761B2 (en) 1992-11-05 2007-06-05 Danisco Sweeteners Oy Manufacture of five-carbon sugars and sugar alcohols
EP0672161B1 (en) * 1992-11-05 1999-09-22 Xyrofin Oy Recombinant method and host for manufacture of xylitol
US6723540B1 (en) 1992-11-05 2004-04-20 Xyrofin Oy Manufacture of xylitol using recombinant microbial hosts
FI96225C (fi) 1993-01-26 1996-05-27 Cultor Oy Menetelmä melassin fraktioimiseksi
US6663780B2 (en) 1993-01-26 2003-12-16 Danisco Finland Oy Method for the fractionation of molasses
FI932108A (fi) * 1993-05-10 1994-11-11 Xyrofin Oy Menetelmä sulfiittikeittoliemen fraktioimiseksi
FR2720406B1 (fr) * 1994-05-27 1996-08-14 Agronomique Inst Nat Rech Composition de microorganismes et procédé pour la production de xylitol.
US5795398A (en) 1994-09-30 1998-08-18 Cultor Ltd. Fractionation method of sucrose-containing solutions
KR0153091B1 (ko) * 1995-10-27 1998-10-15 담철곤 산소분압의 조절을 이용한 자일리톨의 생물공학적 제조방법
US6224776B1 (en) * 1996-05-24 2001-05-01 Cultor Corporation Method for fractionating a solution
KR100199819B1 (ko) * 1997-03-21 1999-06-15 정기련 천연으로부터 분리한 신균주 캔디다 트롭피칼리스에 의한 자일리톨의 제조방법
EP1075795B1 (en) * 1999-08-10 2003-04-09 Ajinomoto Co., Inc. Process for producing xylitol of high purity
FI117465B (fi) 2000-02-03 2006-10-31 Danisco Sweeteners Oy Menetelmä pureskeltavien ytimien kovapinnoittamiseksi
US6365732B1 (en) * 2000-07-10 2002-04-02 Sweet Beet Incorporated Process for obtaining stereoisomers from biomass
US6894199B2 (en) 2001-04-27 2005-05-17 Danisco Sweeteners Oy Process for the production of xylitol
FI20010977A (fi) * 2001-05-09 2002-11-10 Danisco Sweeteners Oy Kromatografinen erotusmenetelmä
US20040138445A1 (en) * 2001-07-10 2004-07-15 Thorre Doug Van Process for obtaining bio-functional fractions from biomass
FI20011889A (fi) 2001-09-26 2003-03-27 Xyrofin Oy Menetelmä ksylitolin valmistamiseksi
BR0301678A (pt) * 2003-06-10 2005-03-22 Getec Guanabara Quimica Ind S Processo para a produção de xilose cristalina a partir de bagaço de cana-de-açucar, xilose cristalina de elevada pureza produzida através do referido processo, processo para a produção de xilitol cristalino a partir da xilose e xilitol cristalino de elevada pureza assim obtido
US7812153B2 (en) * 2004-03-11 2010-10-12 Rayonier Products And Financial Services Company Process for manufacturing high purity xylose
CN100556874C (zh) * 2004-03-26 2009-11-04 珀杜研究基金会 木糖醇的制备方法
EP2386625A2 (en) 2004-05-19 2011-11-16 Biotech Research And Development Corporation Methods for production of xylitol in microorganisms
ES2275437B1 (es) * 2005-11-22 2008-03-01 Universidad De Vigo Proceso para la purificacion de xilitol contenido en medios fermentados obtenidos por bioconversion de hidrolizados de biomasa vegetal.
KR101108789B1 (ko) * 2007-02-09 2012-03-13 씨제이제일제당 (주) 열대과일 바이오매스 부산물로부터 제조된 자일로스와아라비노스를 포함하는 가수분해 당화액을 이용한자일리톨의 제조방법
JP2012511918A (ja) * 2008-12-17 2012-05-31 ボレガード インダストリーズ リミテッド ノルゲ リグノセルロース系バイオマス変換
CN101857886B (zh) * 2009-04-09 2012-12-26 华北制药康欣有限公司 一种木糖醇联产l-阿拉伯糖的制备方法
WO2011161685A2 (en) 2010-06-26 2011-12-29 Hcl Cleantech Ltd. Sugar mixtures and methods for production and use thereof
IL206678A0 (en) 2010-06-28 2010-12-30 Hcl Cleantech Ltd A method for the production of fermentable sugars
IL207945A0 (en) 2010-09-02 2010-12-30 Robert Jansen Method for the production of carbohydrates
EP3401322B1 (en) 2011-04-07 2022-06-08 Virdia, LLC Lignocellulose conversion processes and products
US9617608B2 (en) 2011-10-10 2017-04-11 Virdia, Inc. Sugar compositions
CN104672468B (zh) 2012-05-03 2019-09-10 威尔迪亚公司 用于处理木质纤维素材料的方法
US20150159180A1 (en) 2012-07-16 2015-06-11 Council Of Scientific & Industrial Research Process for production of crystalline xylitol using pichia caribbica and its application for quorum sensing inhibition
EP2890799B1 (en) * 2012-08-28 2020-09-30 Privi Biotechnologies Pvt. Ltd. A selective microbial production of xylitol from biomass based sugar stream with enriched pentose component
US9850512B2 (en) 2013-03-15 2017-12-26 The Research Foundation For The State University Of New York Hydrolysis of cellulosic fines in primary clarified sludge of paper mills and the addition of a surfactant to increase the yield
US9951363B2 (en) 2014-03-14 2018-04-24 The Research Foundation for the State University of New York College of Environmental Science and Forestry Enzymatic hydrolysis of old corrugated cardboard (OCC) fines from recycled linerboard mill waste rejects
ES2673865T3 (es) 2014-06-18 2018-06-26 Roquette Frères Producción de xilitol a partir de glucosa mediante una cepa recombinante
ES2764499T3 (es) 2015-01-07 2020-06-03 Virdia Inc Métodos para extraer y convertir azúcares de hemicelulosa
US11091815B2 (en) 2015-05-27 2021-08-17 Virdia, Llc Integrated methods for treating lignocellulosic material
PL3416740T3 (pl) * 2016-02-19 2021-05-17 Intercontinental Great Brands Llc Procesy tworzenia wielu strumieni wartości ze źródeł biomasy
US10435721B2 (en) 2016-12-21 2019-10-08 Creatus Biosciences Inc. Xylitol producing metschnikowia species
BR112019013007A2 (pt) 2016-12-21 2019-10-08 Creatus Biosciences Inc organismo microbiano não natural, método de produção de um composto bioderivado, composto bioderivado e composição
CN108676819A (zh) * 2018-05-21 2018-10-19 山东绿爱糖果股份有限公司 一种酶解复合物理活化改性的木糖醇及其制造方法
CN108676820A (zh) * 2018-05-21 2018-10-19 山东绿爱糖果股份有限公司 一种采用酶与微生物方法制造的活性木糖醇及其制造方法

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3619369A (en) * 1968-10-31 1971-11-09 Noda Inst For Scientific Res Process for producing xylitol by fermentation
US4096036A (en) * 1976-06-15 1978-06-20 Standard Brands Incorporated Method for the separation of water soluble polyols
US4368268A (en) * 1981-05-15 1983-01-11 Purdue Research Foundation Direct fermentation of D-xylose to ethanol by a xylose-fermenting yeast mutant
JPS60145095A (ja) * 1984-01-10 1985-07-31 Jujo Paper Co Ltd 固定化微生物によるキシリト−ルの製造法
FI76377C (fi) * 1987-01-15 1989-05-10 Farmos Oy Mikrobiologisk framstaellningsmetod.
JPS6463291A (en) * 1987-09-03 1989-03-09 Matsushita Electric Ind Co Ltd Heat cooking apparatus
DE3825040A1 (de) * 1988-07-20 1990-01-25 Schering Ag 5- oder 6-ring- enthaltende makrocyclische polyaza-verbindungen, verfahren zu ihrer herstellung und diese enthaltende pharmazeutische mittel

Also Published As

Publication number Publication date
AU4836690A (en) 1990-08-13
NO912798D0 (no) 1991-07-17
EP0454702B1 (en) 1996-04-10
DE69026499T2 (de) 1996-09-19
NO912798L (no) 1991-07-17
AU651061B2 (en) 1994-07-14
EP0454702A1 (en) 1991-11-06
DE69026499D1 (de) 1996-05-15
PL163719B1 (pl) 1994-04-29
BR9007009A (pt) 1991-11-12
ES2088425T3 (es) 1996-08-16
SK281607B6 (sk) 2001-05-10
US5081026A (en) 1992-01-14
FI913376A0 (fi) 1991-07-11
RU2108388C1 (ru) 1998-04-10
CA2046595C (en) 1999-03-23
ZA90254B (en) 1990-11-28
JP2947609B2 (ja) 1999-09-13
JPH04503750A (ja) 1992-07-09
ATE136588T1 (de) 1996-04-15
CA2046595A1 (en) 1990-07-18
NO300851B1 (no) 1997-08-04
WO1990008193A1 (en) 1990-07-26
CS24090A3 (en) 1992-01-15
DK0454702T3 (da) 1996-05-06

Similar Documents

Publication Publication Date Title
FI106265B (fi) Menetelmä ksylitolin valmistamiseksi ksyloosia sisältävistä seoksista
FI86440C (fi) Foerfarande foer samtidig framstaellning av xylitol och etanol.
EP1306442B1 (en) A process for the simultaneous production of xylitol and ethanol
Dominguez et al. Pretreatment of sugar cane bagasse hemicellulose hydrolysate for xylitol production by yeast
CN101497904B (zh) 一种同时生产木糖醇与阿拉伯糖的方法
CN101497903A (zh) 一种选择性转化分流生物制品的方法
JPS6013677B2 (ja) シュクロ−スの酵素的トランスフルクトシレ−ション法
Feher et al. Integrated process of arabinose biopurification and xylitol fermentation based on the diverse action of Candida boidinii
Ho Park et al. A new method for the preparation of crystalline L-arabinose from arabinoxylan by enzymatic hydrolysis and selective fermentation with yeast
Parajó et al. Xylitol from wood: study of some operational strategies
US20060110811A1 (en) Novel candida tropicalis cj-fid(kctc 10457bp) and manufacturing method of xylitol thereby
Kusakabe et al. Preparation of β-1, 4-mannobiose from white copra meal by a mannanase from Penicillium purpurogenum
JP5317262B2 (ja) ケカビによるエタノールの製造法
Varejão New uses for hemicellulose
KR0180986B1 (ko) 옥수수 속대의 가수분해물질로부터 미생물 발효에 의한 자일리톨의 제조방법
PARK et al. A New Method for the Preparation of β-1, 4-Mannotriose from Brown Copra Meal Using the Crude Enzyme from Penicillium prupurogenum
SK281153B6 (sk) Spôsob výroby d-galaktózy a etanolu