ES2963516T3 - Polinucleótidos que codifican anticuerpos de roedores con idiotipos humanos y animales que los contienen - Google Patents

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Abstract

La invención se refiere a polinucleótidos, particularmente polinucleótidos quiméricos útiles para la producción óptima de inmunoglobulinas funcionales con idiotipos humanos en roedores. La invención se refiere además a roedores que comprenden tales polinucleótidos. (Traducción automática con Google Translate, sin valor legal)

Description

DESCRIPCIÓN
Polinucleótidos que codifican anticuerpos de roedores con idiotipos humanos y animales que los contienen
La invención se refiere a roedores transgénicos y métodos útiles para la producción de inmunoglobulinas con idiotipos humanos en roedores.
Antecedentes de la invención
Los anticuerpos monoclonales humanos han demostrado ser invaluables en aplicaciones terapéuticas, ya sea como IgG de tamaño convencional, cadenas simples o módulos de dominio12. A pesar de los éxitos, todavía existen grandes deficiencias en su producción, que se basa en la selección de especificidad del material humano disponible y la posterior modificación de productos individuales, o la inmunización de la disponibilidad limitada de animales transgénicos, principalmente ratones3. Las restricciones de antígeno objetivo están ampliamente establecidas para el uso de ratones transgénicos, así como para animales transgénicos grandes como el ganado, y el desarrollo de nuevas especificidades está controlado por la compañía4-7.
El reordenamiento del ADN y la expresión de genes de inmunoglobulina (Ig) humana en ratones transgénicos fue pionero hace más de 20 años mediante la inserción estable de genes de cadena pesada en la configuración de la línea germinal8. Aunque se obtuvieron repertorios de anticuerpos humanos en estos primeros animales, las mejoras importantes, que dieron como resultado niveles de expresión más altos y producción exclusiva de Ig humana, combinaron dos nuevas estrategias: desactivación de genes en células madre embrionarias (ES)9 y extensión de locus en cromosomas artificiales10.
El silenciamiento de los genes de Ig endógenos mediante la selección de genes en células ES produjo varias líneas de ratón inactivas sin la capacidad de reorganizar su locus de IgH e IgK o sin producir productos IgH, IgK o IgA completamente funcionales (resumidos en3). Más recientemente, las nucleasas de dedos de zinc (ZFN) se diseñaron para generar rupturas de doble cadena específicas del sitio en los genes de Ig, lo que permitió la ruptura del gen por eliminación y reparación del ADN no homólogo. La inyección de plásmidos de ZFN en óvulos fertilizados produjo ratas y conejos con silenciamiento de Ig con rompimientos de IgH e IgL11-13.
La expresión eficiente de anticuerpos requiere elementos reguladores funcionales en varias ubicaciones en loci de inmunoglobulina. Las secuencias potenciadoras se han identificado cerca de muchos genes activos por digestión con nucleasas e hipersensibilidad a la degradación. Los sitios hipersensibles pueden preceder a las secuencias promotoras y la intensidad de su actividad se correlacionó con la secuencia de ADN. El enlace con los genes informadores mostró una transcripción elevada si la función potenciadora estaba presente (Mundt et al., J. Immunol., 166, 3315 [2001]). En el locus IgH se han identificado dos importantes reguladores de la transcripción o expresión, E|j y el 3'E al final del locus (Pettersson et al., Nature, 344, 165 [1990]). En el ratón, la eliminación de toda la región reguladora 3' (que contiene hs3a, hs1,2, hs3b y hs4) permite el desarrollo temprano de células B, pero anula la recombinación de cambio de clase (Vincent-Fabert et al., Blood, 116, 1895 [2010]) y posiblemente impide la optimización de la hipermutación somática (Pruzina et al., Protein Engineering, Design and Selection, 1, [ 2011]). La función reguladora para lograr una expresión de isotipo óptima es particularmente deseable cuando se usan genes de IgH humanos transgénicos. Sin embargo, en varios laboratorios, los constructos transgénicos con una región 3'E incompleta, que típicamente proporciona solo el elemento hs1, 2, condujeron a niveles de expresión decepcionantes en ratones transgénicos, incluso cuando el locus de IgH endógeno fue desactivado. Esta puede ser una de las razones por las que la generación de IgG completamente humanas específicas de antígeno a partir de ratones genéticamente modificados ha sido ineficiente hasta el momento (Lonberg et al., Nature 368, 856 [1994]; Nicholson et al., J. Immunol., 163, 6898 [1999]; Davis et al., Cancer Metastasis Rev. 18, 421 [1999]; Pruzina et al., Pritein Engeeniering, Design and Selection, 1 ,[2011]. El documento WO 2008/151081 (OMT Inc) describe animales transgénicos que carecen de Ig endógena y son capaces de producir anticuerpos transgénicos, así como métodos para fabricar los mismos. Los documentos WO 2011/004192 y WO 2011/158009 divulgan métodos para la generación de anticuerpos quiméricos humanos-no humanos.
En la rata, la región 3'E solo ha sido mal analizada. Una comparación de las secuencias de ratones y ratas no permite la identificación de hs4, el cuarto elemento crucial E con secuencias reguladoras adicionales importantes más adelante (Chatterjee et al., J. Biol. Chem., 286, 29303 [2011]). Esto podría significar que la región no está presente en la rata, y quizás no es tan importante como en el ratón, o podría estar ausente en las secuencias analizadas del genoma de la rata.
Aún se necesitan métodos y materiales para la producción óptima de inmunoglobulinas o anticuerpos que tengan idiotipos humanos que usan animales transgénicos, que sean útiles para tratar humanos en una amplia gama de áreas de enfermedad.
Resumen de la invención
La presente invención proporciona un roedor transgénico, en donde el roedor comprende en su línea germinal un locus de inmunoglobulina de cadena pesada que comprende, en orden 5' a 3', segmentos de genes de la región variable (V), de diversidad (D) y de unión (J) de la cadena pesada humana no reorganizada, una región constante de la cadena pesada de roedor, y un potenciador 3' de rata que comprende la secuencia establecida como SEQ ID NO: 1, en donde el locus de inmunoglobulina de cadena pesada no comprende un gen de región constante de inmunoglobulina humana, y en donde el roedor es un ratón o una rata. La presente invención también proporciona un método para producir un anticuerpo que tiene una región variable humana y una región constante de roedor que comprende exponer un roedor transgénico a un antígeno, en donde el roedor comprende en su línea germinal un locus de inmunoglobulina de cadena pesada que comprende, en orden 5' a 3', segmentos de genes de las regiones variable (V), de diversidad (D) y de unión (J) de la cadena pesada humana no reorganizada, una región constante de la cadena pesada de roedor, y un potenciador 3' de rata que comprende la secuencia establecida como SEQ ID NO: 1, en donde el locus de inmunoglobulina de cadena pesada no comprende un gen de región constante de inmunoglobulina humana, en donde la exposición al antígeno es tal que el roedor transgénico produce un anticuerpo contra el antígeno, el anticuerpo tiene una región variable de cadena pesada humana y una región constante de cadena pesada de roedor, y en donde el roedor es un ratón o una rata. En el presente documento se describen nuevos polinucleótidos que comprenden secuencias de ácido nucleico que codifican cadenas de inmunoglobulina quiméricas, particularmente cadenas pesadas quiméricas para usar en la creación de animales transgénicos. Los polinucleótidos descritos en el presente documento proporcionan ventajosamente una expresión óptima debido, al menos en parte, a la inclusión de un potenciador 3' ya que los transloci que carecen de este potenciador 3' dan como resultado un cambio de isotipo deteriorado y una baja expresión de IgG. Por consiguiente, los polinucleótidos quiméricos descritos en el presente documento pueden comprender una secuencia potenciadora 3' de rata, un gen de región constante de Ig y al menos un gen de región de unión (J) de inmunoglobulina (Ig) humana. La secuencia potenciadora 3' de rata comprende la secuencia establecida como la SEQ ID NO: 1.
Los polinucleótidos quiméricos establecidos en el presente documento pueden comprender además al menos un gen variable (V) humano, al menos un gen de diversidad (D), o una combinación de los mismos. El gen de la región constante del polinucleótido quimérico descrito en el presente documento se selecciona del grupo que consiste en un gen de región constante humana y un gen de región constante de rata. En una realización preferida, el gen de la región constante es un gen de región constante de rata. En otra realización preferida, el gen de la región constante se selecciona del grupo que consiste en C|j y Cy.
El polinucleótido quimérico descrito en el presente documento puede comprender una secuencia de ácido nucleico sustancialmente homóloga al cromosoma artificial bacteriano (BAC) Annabel divulgado en el presente documento (por ejemplo, la SEQ ID NO: 10), o una porción del mismo, y opcionalmente puede comprender además al menos un gen de Ig variable humano aislable de BAC6-V<h>3-11 y BAC3.
Los polinucleótidos quiméricos contemplados en el presente documento pueden comprender secuencias de ácido nucleico (a) y (b) en orden de 5' a 3': (a) una región variable de Ig humana que comprende genes de V humanos en configuración natural aislables de BAC6-V<h>3-11 y/o BAC3, y (b) una región de unión de Ig humana que comprende genes J humanos en configuración natural aislables del BAC Annabel.
Como se describe en el presente documento, cada una de la región variable de Ig humana, la región de diversidad de Ig humana, la región de unión de Ig humana, la región constante de Ig y la región potenciadora 3' de rata de un polinucleótido quimérico como el divulgado en el presente documento pueden estar en las posiciones relativas como se muestra en la Figura 1a. Como se describe en el presente documento, un polinucleótido quimérico como el divulgado puede tener una secuencia que comprende o es sustancialmente homóloga a la secuencia establecida como la SEQ ID NO: 2 o una porción de la misma. Como se describe en el presente documento, un polinucleótido quimérico como el divulgado puede tener una secuencia que comprende o es sustancialmente homóloga a la secuencia establecida como la SEQ ID NO: 11, o una porción de la misma. Como se describe en el presente documento, un polinucleótido quimérico como el divulgado en el presente documento puede comprender las regiones V-D-J reorganizadas, en el que dichas regiones V-D-J reorganizadas codifican un exón de dominio variable de cadena pesada.
En el presente documento también se divulgan polinucleótidos que codifican genes de cadena ligera kappa humana. Un polinucleótido como el divulgado en el presente documento puede tener una secuencia de ácido nucleico que comprende o es sustancialmente homóloga a una secuencia de ácido nucleico seleccionada del grupo que consiste en RP11-1156D9 (establecida como la SEQ ID NO: 3) y RP11-1134E24 (establecida como la SEQ ID NO: 4).
Como se describe en el presente documento, el polinucleótido aislado puede comprender secuencias de ácido nucleico (a) y (b) en el orden 5' a 3': (a) una región variable de Ig humana que comprende genes de V humanos en configuración natural aislables de cromosomas artificiales bacterianos (BAC) RP11-156D9 y/o RP11-1134E24; (b) una región de unión de Ig humana que comprende genes J humanos en configuración natural aislables de los cromosomas artificiales bacterianos (BAC) RP11-1134E24 y/o RP11-344F17 (establecida como la SEQ ID NO: 5). En una realización preferida, cada una de la región variable de Ig humana, la región de unión de Ig humana y la región constante de Ig humana están en posición relativa como se muestra en la Figura 1b. Un polinucleótido quimérico como el divulgado puede tener una secuencia que comprende o es sustancialmente homóloga a la secuencia establecida como la SEQ ID NO: 6 o una porción de la misma.
También se describe en el presente documento una célula de roedor que comprende uno o más polinucleótidos como se describen en el presente documento.
Por ejemplo, en el presente documento se describe una célula de roedor que comprende un polinucleótido como se describe en el presente documento que comprende una secuencia de ácido nucleico que codifica una cadena pesada quimérica, por ejemplo, una secuencia de ácido nucleico que codifica una secuencia potenciadora 3' de rata, un gen de la región constante de Ig y al menos un gen de la región J humana, y opcionalmente, que comprende una secuencia de ácido nucleico sustancialmente homóloga a la secuencia de ácido nucleico seleccionada del grupo que consiste en RP11-1156D9, RP11-1134E24 y porciones de las mismas. La célula de roedor contemplada en el presente documento puede comprender además un polinucleótido que codifica una cadena ligera funcional, por ejemplo, que tiene una secuencia de ácido nucleico que comprende o es sustancialmente homóloga a una secuencia de ácido nucleico seleccionada del grupo que consiste en la secuencia mostrada en la Figura 1b (establecida como la SEQ ID NO: 6), la secuencia mostrada en la Figura 1c (establecida como la SEQ ID NO: 7), y porciones de las mismas. Uno o más de los polinucleótidos descritos en el presente documento pueden estar integrados en el genoma de la célula de roedor.
Breve descripción de los dibujos
Figura 1: Loci integrados de Ig humana. (a) La región quimérica de IgH humana-rata contiene 3 BAC que se superpone con 22 segmentos V<h>humanos diferentes y potencialmente funcionales. BAC6-3 se ha ampliado con V<h>3-11 para proporcionar una superposición de 10.6 kb a BAC3, que superpone 11.3 kb a través de V<h>6-1 con la región C de BAC Hu-Rata Annabel. Esta última es quimérica y contiene todos los segmentos D y J<h>humanos seguidos por la región C de rata con las secuencias potenciadoras completas. (b) Los BAC de Igk humana con 12 Vk y todos los Jk proporcionan una superposición de ~ 14 kb en la región Vk y ~ 40 kb en Ck para incluir el KDE. (c) La región de Ig1 humana con 17 Vl y todos los J-Cl, incluido el potenciador 3', es de un YAC33.
Figura 2: Análisis por citometría de flujo de células de bazo y médula ósea dependientes de linfocitos de ratas de 3 meses de edad. La tinción superficial para IgM y CD45R (B220) reveló un número similar de células B inmaduras y maduras en la médula ósea y el bazo de ratas HC14 y de tipo silvestre, mientras que los animales JKO/JKO no mostraron desarrollo de células B. El gráfico hacia adelante (FSC) contra la dispersión del sitio (SSC) mostró un número comparable de poblaciones de linfocitos (dependientes), en relación con el tamaño y la forma. La tinción de la superficie de las células del bazo con anti-IgG (isotipo G1, G2a, G2b, G2c) graficada contra el recuento celular (x 102) reveló números casi normales de expresadores de IgG+ en ratas HC14 en comparación con las de tipo silvestre. En la médula ósea, A se refiere a células B pro/pre (CD45R+ IgM-) y B se refiere a células B inmaduras (CD45R+ IgM+). En el bazo, A se refiere a las células B de transición (CD45R+ IgM-), B a las células B foliculares (CD45R+ IgM+) y C a las células B de la zona marginal (CD45RbajoIgM+).
Figura 3: Cambios mutacionales en las transcripciones de IgH e IgL de PBL. Los únicos (VHDJH) y los VL provenían de amplificaciones con cebadores específicos del grupo V: IGHV1, 2, 3, 4 y 6 en combinación con el cebador inverso universal yCH2, IGLV2, 3 y 4 con cebador CA inverso; e IGKV1, 3, 4 y 5 con cebador Ck inverso (Tabla complementaria 1). Se identificaron productos de conmutación transmutados para Cy2a VH-rata humano (4) y Cy2c VH-rata humano (2).
Figura 4: Purificación de Ig de rata con idiotipos humanos y comparación con los niveles de Ig humana y de rata normal. Se usó suero OmniRat y suero de control de tipo silvestre humano o de rata, 100 |<j>L cada uno, para la purificación de IgM/G. (a) Se capturó IgM con matriz anti-IgM, que identificó 14 jg en rata de tipo silvestre, y 30 jg y 10 jg en OmniRat [HC14 (a) y HC14 (c)]. (b) La IgG se purificó en columnas de proteína A y proteína G, con un rendimiento de hasta ~3 mg/mL para OmniRat (Proteína A: HC14 (a) 1000 jg/mL; HC14 (b) 350 jg/mL; rata de tipo silvestre 350 jg/mL; Proteína G: HC14 (a) 2970 jg/mL; HC14 (b) 280 jg/mL; rata de tipo silvestre 1010 jg/mL). (c) IgK humana y (d) IgA humana se purificaron en matriz anti-IgK y anti-IgA, respectivamente. No se obtuvo ningún producto de purificación usando suero de rata de tipo silvestre (no mostrado). La Ig purificada, ~3 jg (concentración determinada por NanoDrop, se separó en SDS-PAGE al 4-15% en condiciones reductoras. Comparación mediante valoración por ELISA de (e) niveles de IgK humana y (f) IgA humana en OmniRat individuales (8531, 8322, 8199, 8486, 8055), suero humano y de rata tipo silvestre. La dilución del suero (1:10, 1:100, 1:1.000, 1:10.000) se graficó contra la unión medida por adsorción a 492 nm. Los nombres/números coincidentes se refieren a muestras de la misma rata.
Descripción detallada
En este documento se describen polinucleótidos quiméricos que codifican una cadena o loci de inmunoglobulina recombinante o artificial. Como se describió anteriormente, los polinucleótidos quiméricos divulgados en el presente documento son útiles para la transformación de roedores para incluir genes de Ig humana y para la producción de inmunoglobulinas o anticuerpos que tienen idiotipos humanos usando tales roedores.
Polinucleótidos
La inmunoglobulina se refiere a una proteína que consiste en uno o más polipéptidos codificados sustancialmente por genes de inmunoglobulina. Los genes de inmunoglobulina humana reconocidos incluyen los genes de región constante kappa, lambda, alfa (IgA1 e IgA2), gamma (IgG1, IgG2, IgG3, IgG4), delta, épsilon y mu, así como los genes de la región variable de inmunoglobulina Myriad. Las "cadenas ligeras" de inmunoglobulina de longitud completa (aproximadamente 25 Kd, o 214 aminoácidos) generalmente comprenden un dominio variable codificado por un exón que comprende uno o más genes de región variable y uno o más genes de región de unión en el terminal NH<2>(aproximadamente 110 aminoácidos) y dominio constante codificado por un gen de región constante kappa o lambda en el terminal COOH. Las "cadenas pesadas" de inmunoglobulina de longitud completa (aproximadamente 50 Kd, o 446 aminoácidos), comprenden de manera similar (1) un dominio variable (aproximadamente 116 aminoácidos) codificado por un exón que comprende uno o más genes de región variable, una o más genes de región de diversidad y uno o más genes de región de unión, y (2) uno de los dominios constantes mencionados anteriormente que comprende uno o más genes de región constante, por ejemplo, alfa, gamma, delta, épsilon o mu (que codifica aproximadamente 330 aminoácidos). Los genes de la región constante de la cadena pesada de inmunoglobulina codifican para la clase de anticuerpo, es decir, el isotipo (por ejemplo, IgM o IgG1).
Como se usa en el presente documento, el término "anticuerpo" se refiere a una proteína que comprende al menos uno, y preferiblemente dos, dominios variables de cadena pesada (H) (abreviados en el presente documento como VH), y al menos uno y preferiblemente dos dominios variables de cadena ligera (L) (abreviados en el presente documento como VL). Un experto en la materia reconocerá que el dominio variable de una cadena inmunológica está codificado en segmentos de genes que primero deben someterse a una recombinación somática para formar un exón completo que codifique el dominio variable. Hay tres tipos de regiones o segmentos de genes que se reorganizan para formar el dominio variable: la región variable que comprende genes variables, la región de diversidad que comprende genes de diversidad (en el caso de una cadena pesada de inmunoglobulina) y la región de unión que comprende genes de unión. Los dominios VH y VL se pueden subdividir además en regiones de hipervariabilidad, denominadas "regiones determinantes de complementariedad" ("CDR") intercaladas con regiones que están más conservadas, denominadas "regiones marco" ("FR"). La extensión de las FR y las CDR se ha definida con precisión (véase Kabat et al., (1991) Sequences of Proeins of Immunological Interest, quinta edición, Departamento de Salud y Servicios Humanos de los EE. UU., Publicación de los NIH No. 91-3242; y Chothia et al., (1987) J. Mol. Biol. 196: 901-17). Cada dominio VH y VL generalmente está compuesto por tres<c>D<r>y cuatro FR, dispuestos desde el terminal amino al terminal carboxilo en el siguiente orden: FR1, CDR1, FR2, CDR2, FR3, CDR3, FR4. El fragmento de unión a antígeno de un anticuerpo (o simplemente "porción de anticuerpo" o "fragmento"), como se usa en el presente documento, se refiere a uno o más fragmentos de un anticuerpo de longitud completa que retienen la capacidad de unirse específicamente a un antígeno (por ejemplo, CD3).
Los ejemplos de fragmentos de unión incluidos en el término "fragmento de unión a antígeno" de un anticuerpo incluyen (i) un fragmento Fab, un fragmento monovalente que consiste en los dominios VL, VH, CL y CH1; (ii) un fragmento F(ab')<2>, un fragmento bivalente que comprende dos fragmentos Fab unidos por un puente disulfuro en la región bisagra; (iii) un fragmento Fd que consiste en los dominios VH y CH1; (iv) un fragmento Fv que consiste en los dominios VL y VH de un solo brazo de un anticuerpo, (v) un fragmento dAb (Ward et al., (1989) Nature 341: 544 46), que consiste en un dominio VH; y (vi) una región determinante de complementariedad (CDR) aislada. Además, aunque los dos dominios del fragmento Fv, VL y VH, están codificados por genes separados, pueden unirse, mediante métodos recombinantes, por un conector sintético que les permite formarse como una cadena de proteínas única en la que las regiones VL y VH se emparejan para formar moléculas monovalentes (conocidas como Fv de cadena sencilla (scFv); véase, por ejemplo, Bird et al., (1988) Science 242: 423-26; y Huston et al., (1988) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85: 5879-83). Dichos anticuerpos de cadena sencilla también están destinados a estar incluidos en el término "fragmento de unión a antígeno" de un anticuerpo. Estos fragmentos de anticuerpos se obtienen usando técnicas convencionales conocidas por los expertos en la técnica, y los fragmentos se seleccionan por su utilidad de la misma manera que los anticuerpos intactos.
Un anticuerpo puede incluir además un dominio constante de cadena pesada y/o ligera para formar de ese modo una cadena de inmunoglobulina pesada y ligera, respectivamente. En una realización, el anticuerpo es un tetrámero de dos cadenas pesadas de inmunoglobulina y dos cadenas ligeras de inmunoglobulina, en las que las cadenas pesada y ligera de inmunoglobulina están interconectadas, por ejemplo, mediante enlaces disulfuro. El dominio constante de la cadena pesada está compuesto por tres segmentos de genes, CH1, CH2 y CH3. El dominio constante de la cadena ligera está compuesto por un gen, CL. Los dominios variables de las cadenas pesadas y/o ligeras contienen un dominio de unión que interactúa con un antígeno. Los dominios constantes de los anticuerpos típicamente median la unión del anticuerpo a los tejidos o factores del huésped, incluidas varias células del sistema inmune (por ejemplo, células efectoras) y el primer componente (C1q) del sistema de complemento clásico.
Por polinucleótido que codifica un locus de inmunoglobulina artificial o una cadena de inmunoglobulina artificial se entiende un polinucleótido recombinante que comprende múltiples regiones de inmunoglobulina, por ejemplo, una región variable (V) o segmento génico que comprende genes de V, una región del gen de unión (J) o un segmento génico que comprende genes J, una región de diversidad (D) o segmento de gen que comprende genes D en el caso de un locus de cadena pesada y/o al menos una región constante (C) que comprende al menos un gen C. Preferiblemente, cada región del dominio variable, por ejemplo, región V, D o J, comprende o abarca al menos dos genes del mismo tipo. Por ejemplo, una región variable como se usa en el presente documento comprende al menos dos genes variables, una región de unión comprende al menos dos genes de unión y una región de diversidad comprende dos genes de diversidad. Una región constante puede comprender solo un gen constante, por ejemplo, un gen k o gen A, o múltiples genes, por ejemplo, CH1, CH2 y CH3.
"Secuencias potenciadoras" o "potenciadora" como se usa en el presente documento se refiere a secuencias que se han identificado cerca de muchos genes activos por digestión con nucleasas e hipersensibilidad a la degradación. Los sitios hipersensibles pueden preceder a las secuencias promotoras y la intensidad de su actividad se correlacionó con la secuencia de ADN. El enlace con los genes informadores mostró una transcripción elevada si la función potenciadora estaba presente (Mundt et al., J. Immunol., 166, 3315 [2001]). En el locus de IgH se han identificado dos importantes reguladores de la transcripción o expresión, E|j y el 3'E al final del locus (Pettersson et al., Nature, 344, 165 [1990]). En el ratón, la eliminación de toda la región reguladora 3' (que contiene hs3a, hs1,2, hs3b y hs4) permite el desarrollo temprano normal de las células B pero anula la recombinación de cambio de clase (Vincent-Fabert et al., Blood, 116, 1895 [ 2010]) y posiblemente evita la optimización de la hipermutación somática (Pruzina et al., Protein Engineering, Design and Selection, 1, [2011]). La función reguladora para lograr una expresión de isotipo óptima es particularmente deseable cuando se usan genes transgénicos de IgH humana. Los constructos transgénicos con una región 3'E incompleta, que generalmente solo proporciona el elemento hs1,2, condujeron a niveles de expresión decepcionantes en ratones transgénicos, incluso cuando el locus endógeno de IgH estaba desactivado. Como consecuencia, solo se han aislado algunas IgG completamente humanas específicas de antígeno de constructos producidas en los últimos 20 años (Lonberg et al., Nature 368, 856 [1994]; Nicholson et al., J. Immunol., 163, 6898 [1999 ]; Davis et al., Cancer Metastasis Rev. 18, 421 [1999]; Pruzina et al., Protein Engineering, Design and Selection, 1, [2011]). En el locus de IgH de rata, la región 3'E solo ha sido pobremente analizada. Una comparación de las secuencias de ratones y ratas no permitió la identificación de hs4, el cuarto elemento crucial con secuencias reguladoras importantes adicionales más adelante (Chatterjee et al., J. Biol. Chem., 286, 29303 [2011]). Los polinucleótidos descritos en el presente documento proporcionan ventajosamente una expresión óptima debido, al menos en parte, a la inclusión de un potenciador 3' de rata, ya que los polinucleótidos quiméricos que carecen de este potenciador 3' dan como resultado un cambio de isotipo deteriorado y una baja expresión de IgG. El potenciador 3' de rata tiene una secuencia que comprende la secuencia establecida como la SEQ ID NO: 1.
Como se usa en el presente documento, un polinucleótido que tiene una secuencia que comprende o es sustancialmente homóloga a una porción, por ejemplo, menor que la totalidad, de la segunda secuencia (por ejemplo, la SEQ ID NO: 1, la SEQ ID NO: 2, etc.) preferiblemente retiene la actividad biológica de la segunda secuencia (por ejemplo, retiene la actividad biológica de un potenciador 3' para proporcionar una expresión óptima y/o cambio de isotipo de inmunoglobulinas, es capaz de reorganizarse para proporcionar una cadena pesada quimérica humanizada, etc.). Como se describe en el presente documento, un ácido nucleico que comprende una secuencia que comprende o es sustancialmente homóloga a una porción de la SEQ ID NO: 1 puede comprender al menos 8 kB, preferiblemente al menos 10 kB de ácidos nucleicos continuos que son sustancialmente homólogos a la SEQ ID NO: 1.
El "locus de Ig artificial" como se usa en el presente documento puede referirse a polinucleótidos que (por ejemplo, una secuencia que comprende las regiones V, D y/o J en el caso de la cadena pesada, o regiones V y/o J en el caso de cadena ligera, y opcionalmente una región constante para una o ambas cadenas pesadas y ligeras) que no están reorganizadas, parcialmente reorganizadas o reorganizadas. Los loci de Ig artificial incluyen loci de cadena ligera de Ig artificial y loci de cadena pesada de Ig artificial. En una realización, un locus de inmunoglobulina artificial de la invención es funcional y capaz de reorganizarse y producir un repertorio de cadenas de inmunoglobulina. El dominio variable o parte del mismo de un polinucleótido divulgado en el presente documento puede comprender genes en configuración natural, es decir, secuencias que se producen naturalmente de un segmento del gen de Ig humano, formas degeneradas de secuencias que se producen naturalmente de un segmento del gen de Ig humano, así como secuencias sintéticas que codifican una secuencia polipeptídica sustancialmente idéntica al polipéptido codificado por una secuencia natural de un segmento del gen de Ig humana. El polinucleótido descrito en el presente documento puede comprender un dominio variable o una porción del mismo en una configuración natural que se encuentra en humanos. Por ejemplo, un polinucleótido que codifica una cadena pesada de Ig artificial como se divulga en el presente documento puede comprender en configuración natural al menos dos genes de V humanos, al menos dos genes D, al menos dos genes J o una combinación de los mismos.
Un locus de Ig artificial descrito en el presente documento puede comprender un gen de la región C no humana y es capaz de producir un repertorio de inmunoglobulinas que incluyen inmunoglobulinas quiméricas que tienen una región C no humana. Un locus de Ig artificial descrito en el presente documento puede comprender un gen de la región C humana y es capaz de producir un repertorio de inmunoglobulinas que incluyen inmunoglobulinas que tienen una región C humana. En una realización, un locus de Ig artificial comprende un "gen de región constante artificial", por lo que se entiende un gen de región constante que comprende secuencias de nucleótidos derivadas de genes de regiones constantes humanas y no humanas. Por ejemplo, un ejemplo de un gen de región constante artificial C es un gen de región constante que codifica un dominio CH1 de IgG humana y un dominio CH2 y CH3 de IgG de rata.
Un locus de Ig artificial descrito en el presente documento puede comprender secuencias potenciadoras 3', que incluyen hs1,2, hs3a, hs3b y secuencias (500-2500 nt) secuencia abajo de hs3b. En animales transgénicos, los loci artificiales que comprenden la región 3'E completa de ~30 kb desde Calfa hasta 3'hs3b dan como resultado una expresión de IgG de alto nivel, hipermutación extensa y grandes cantidades de hibridomas específicos de antígeno de alta afinidad (pM). Sin embargo, las secuencias potenciadoras más cortas reducen la expresión de Ig.
Un locus de Ig artificial descrito en el presente documento puede comprender la secuencia potenciadora 3' mostrada en la Figura 1a. Esta secuencia se deriva del locus de la cadena pesada de Ig de rata y contiene aproximadamente 30 kb de la región 3' desde Calfa hasta 3'hs3b. La secuencia de la secuencia potenciadora 3' de rata se establece como la SEQ ID NO: 1. El locus de Ig artificial comprende una secuencia que comprende la secuencia establecida como la SEQ ID NO: 1
En algunas realizaciones, un locus de cadena pesada de Ig artificial carece de CH1, o una secuencia equivalente que permite que la inmunoglobulina resultante evite la asociación típica de inmunoglobulina: chaperona. Tales loci artificiales proporcionan la producción de anticuerpos solo de cadena pesada en animales transgénicos que carecen de un locus de cadena ligera de Ig funcional y, por lo tanto, no expresan la cadena ligera de Ig funcional. Tales loci de cadena pesada de Ig artificial se usan en métodos contemplados en el presente documento para producir animales transgénicos que carecen de un locus de cadena ligera de Ig funcional, y que comprenden un locus de cadena pesada de Ig artificial, que los animales son capaces de producir anticuerpos solo de cadena pesada. Alternativamente, un locus de Ig artificial puede manipularsein situpara alterar CH1 o una región equivalente y generar un locus de cadena pesada de Ig artificial que proporciona la producción de anticuerpos solo de cadena pesada. Con respecto a la producción de anticuerpos solo de cadena pesada en ratones deficientes en cadena ligera, véase, por ejemplo, Zou et al., JEM, 204: 3271-3283, 2007.
Por "idiotipo humano" se entiende una secuencia de polipéptidos presente en un anticuerpo humano codificado por un segmento del gen V de inmunoglobulina. El término "idiotipo humano", como se usa en el presente documento, incluye tanto secuencias naturales de un anticuerpo humano como secuencias sintéticas sustancialmente idénticas al polipéptido encontrado en anticuerpos humanos naturales. Por "sustancialmente" se entiende que el grado de identidad de secuencia de aminoácidos es al menos aproximadamente del 85%-95%. Preferiblemente, el grado de identidad de secuencia de aminoácidos es mayor que 90%, más preferiblemente mayor que 95%.
Por "anticuerpo quimérico" o "inmunoglobulina quimérica" se entiende una molécula de inmunoglobulina que comprende una porción de una secuencia de polipéptidos de inmunoglobulina humana (o una secuencia de polipéptidos codificada por un segmento del gen de Ig humana) y una porción de una secuencia del polipéptido de inmunoglobulina no humana. Las moléculas de inmunoglobulina quimérica descritas en el presente documento son inmunoglobulinas con regiones Fc no humanas o regiones Fc artificiales, e idiotipos humanos. Dichas inmunoglobulinas pueden aislarse de animales de la invención que han sido modificadas para producir moléculas de inmunoglobulinas quiméricas.
Por "región de Fc artificial" se entiende una región de Fc codificada por un gen de región constante artificial.
El término "segmento del gen de Ig", como se usa en el presente documento, se refiere a regiones de ADN que codifican diversas porciones de una molécula de Ig, que están presentes en la línea germinal de animales no humanos y humanos, y que se unen en células B para formar los genes Ig reorganizados. Por lo tanto, los segmentos del gen de Ig como se usan en el presente documento incluyen segmentos del gen V, segmentos del gen D, segmentos del gen J y segmentos del gen C.
El término "segmento del gen de Ig humana", como se usa en el presente documento, incluye tanto secuencias naturales de un segmento del gen de Ig humana, formas degeneradas de secuencias naturales de un segmento del gen de Ig humana, así como secuencias sintéticas que codifican una secuencia de polipéptidos sustancialmente idéntica al polipéptido codificado por una secuencia natural de un segmento del gen Ig humana. Por "sustancialmente" se entiende que el grado de identidad de secuencia de aminoácidos es al menos aproximadamente 85%-95%. Preferiblemente, el grado de identidad de secuencia de aminoácidos es mayor que 90%, más preferiblemente mayor que 95%.
Los polinucleótidos relacionados con la presente invención pueden comprender ADN o ARN y pueden ser total o parcialmente sintéticos. La referencia a una secuencia de nucleótidos como se establece en el presente documento abarca una molécula de ADN con la secuencia especificada, y abarca una molécula de ARN con la secuencia especificada en la que U está sustituido por T, a menos que el contexto requiera lo contrario.
Los cálculos de "homología" o "identidad de secuencia" entre dos secuencias (los términos se usan indistintamente en el presente documento) se realizan de la siguiente manera. Las secuencias se alinean para fines de comparación óptimos (por ejemplo, se pueden introducir huecos en uno o ambos de una primera y segunda secuencia de aminoácidos o de ácido nucleico para una alineación óptima y se pueden descartar secuencias no homólogas para fines de comparación). En una realización preferida, la longitud de una secuencia de referencia alineada para fines de comparación es al menos 30%, preferiblemente al menos 40%, más preferiblemente al menos 50%, incluso más preferiblemente al menos 60% e incluso más preferiblemente al menos 70%, 80%, 90%, 100% de la longitud de la secuencia de referencia. Luego se comparan los residuos de aminoácidos o nucleótidos en las posiciones de aminoácidos o posiciones de nucleótidos correspondientes. Cuando una posición en la primera secuencia está ocupada por el mismo residuo de aminoácido o nucleótido que la posición correspondiente en la segunda secuencia, entonces las moléculas son idénticas en esa posición (como se usa en el presente documento, la "identidad" de aminoácidos o ácidos nucleicos es equivalente a "homología" de aminoácidos o ácidos nucleicos). El porcentaje de identidad entre las dos secuencias es una función del número de posiciones idénticas compartidas por las secuencias, teniendo en cuenta el número de huecos y la longitud de cada hueco, que deben introducirse para una alineación óptima de las dos secuencias.
La comparación de secuencias y la determinación del porcentaje de identidad de secuencia entre dos secuencias se puede lograr usando un algoritmo matemático. En una realización preferida, el porcentaje de identidad entre dos secuencias de aminoácidos se determina usando el algoritmo de Needleman y Wunsch ((1970) J. Mol. Biol. 48: 444 53), que se ha incorporado al programa GAP en el paquete de software GCG (disponible en línea en gcg.com), utilizando una matriz Blossum 62 o una matriz PAM250, y un peso de hueco de 16, 14, 12, 10, 8, 6 o 4 y un peso de longitud de 1, 2, 3, 4, 5 o 6. En otra realización preferida más, el porcentaje de identidad entre dos secuencias de nucleótidos se determina usando el programa gAp en el paquete de software GCG (disponible en www_gcg_com), usando una matriz NWSgapdna_CMP y un peso de hueco de 40, 50, 60, 70 u 80 y un peso de longitud de 1, 2, 3, 4, 5 o 6. Un conjunto de parámetros particularmente preferido (y el que debe usarse si el profesional no está seguro sobre qué parámetros deben aplicarse para determinar si una molécula está dentro de una identidad de secuencia o limitación de homología de la invención) es una matriz de puntuación Blossum 62 con una penalización por hueco de 12, una penalización por extensión de hueco de 4 y una penalización de hueco por cambio de marco de 5. El porcentaje de identidad entre dos secuencias de aminoácidos o nucleótidos también puede determinarse usando el algoritmo de Meyers y Miller ((1989) CABIOS 4: 11-17), que se ha incorporado al programa ALIGN (versión 2.0), utilizando una tabla de residuos de peso PAM120, una penalización de longitud de hueco de 12 y una penalización de hueco de 4.
Loci de Ig artificial
La presente invención se dirige además a loci de Ig artificiales y su uso en la fabricación de animales transgénicos capaces de producir inmunoglobulinas que tienen un idiotipo humano. Cada locus de Ig artificial comprende múltiples segmentos del gen de inmunoglobulina, que incluyen al menos un segmento del gen de la región V, uno o más segmentos del gen J, uno o más segmentos del gen D en el caso de un locus de la cadena pesada y uno o más genes de la región constante. En el presente documento invención, al menos uno de los segmentos del gen V codifica una línea germinal o una secuencia de aminoácidos de la región V humana hipermutada. Por consiguiente, tales animales transgénicos tienen la capacidad de producir un repertorio diversificado de moléculas de inmunoglobulina, que incluye anticuerpos que tienen un idiotipo humano. En loci de cadena pesada, pueden incluirse segmentos del gen D derivados de humanos o no humanos en los loci de Ig artificial. Los segmentos de genes en tales loci se yuxtaponen entre sí en una configuración no reorganizada (o "la configuración de la línea germinal"), o en una configuración parcial o totalmente reorganizada. Los loci de Ig artificial tienen la capacidad de experimentar un reordenamiento de genes (si los segmentos del gen no están completamente reorganizados) en el animal en cuestión, produciendo por lo tanto un repertorio diversificado de inmunoglobulinas que tienen idiotipos humanos. Los elementos reguladores como promotores, potenciadores, regiones de conmutación, señales de recombinación y similares pueden ser de origen humano o no humano. Lo que se requiere es que los elementos sean operables en las especies animales en cuestión, para volver funcionales los loci artificiales. Los elementos reguladores preferidos se describen con más detalle en el presente documento.
En un aspecto descrito en el presente documento, hay constructos transgénicos que contienen un locus de cadena pesada artificial capaz de sufrir una reorganización de genes en el animal huésped produciendo así un repertorio diversificado de cadenas pesadas que tienen idiotipos humanos. Un locus de cadena pesada artificial del transgén contiene una región V con al menos un segmento del gen V humano. Preferiblemente, la región V incluye al menos aproximadamente 5-100 segmentos del gen V de cadena pesada humana (o "VH"). Como se describió anteriormente, un segmento VH humano abarca secuencias naturales de un segmento del gen VH humano, formas degeneradas de secuencias naturales de un segmento del gen VH humano, así como secuencias sintéticas que codifican una secuencia de polipéptidos sustancialmente (es decir, al menos aproximadamente 85%-95%) idéntica a un polipéptido del dominio V de cadena pesada humana.
En una realización preferida, el locus de cadena pesada artificial contiene al menos uno o varios genes de región constante de rata, por ejemplo, C5, C|j y Cy (incluyendo cualquiera de las subclases de Cy).
En otra realización preferida, el locus de cadena pesada artificial contiene genes de región constante artificial. En una realización preferida, tales genes de región constante artificial codifican un dominio CH1 humano y dominios CH2 CH3 de rata, o dominios CH1 humano y CH2, CH3 y CH4 de rata. Una cadena pesada híbrida con un dominio CH1 humano se empareja efectivamente con una cadena ligera completamente humana.
Un locus de Ig artificial descrito en el presente documento puede comprender secuencias potenciadoras 3', que incluyen hs1,2, hs3a, hs3b y secuencias entre Calfa y 3'hs3b de rata.
En otra realización preferida, el locus de cadena pesada artificial contiene genes artificiales de región constante que carecen de dominios CH1. En una realización preferida, tales genes artificiales de región constante codifican IgM y/o IgG truncadas que carecen del dominio CH1 pero que comprenden dominios CH2 y CH3, o CH1, CH2, CH3 y<c>H4. Las cadenas pesadas que carecen de dominios c H1 no pueden emparejarse eficazmente con las cadenas ligeras de Ig y formar anticuerpos sólo de cadena pesada.
En otro aspecto, se describen en el presente documento constructos transgénicos que contienen un locus de cadena ligera artificial capaz de sufrir un reordenamiento génico en el animal huésped produciendo así un repertorio diversificado de cadenas ligeras que tienen idiotipos humanos. Un locus de cadena ligera artificial del transgén contiene una región V con al menos un segmento del gen V humano, por ejemplo, una región V que tiene al menos un gen VL humano y/o al menos un segmento VJ humano reordenado. Preferiblemente, la región V incluye al menos aproximadamente 5-100 segmentos del gen V de la cadena ligera humana (o "VL"). Consistentemente, un segmento VL humano abarca secuencias naturales de un segmento del gen VL humano, formas degeneradas de secuencias naturales de un segmento del gen VL humano, así como secuencias sintéticas que codifican una secuencia de polipéptido sustancialmente (es decir, al menos aproximadamente 85% - 95%) idéntica a un polipéptido del dominio V de cadena ligera humana. En una realización, el locus de Ig de cadena ligera artificial tiene una región C que tiene al menos un gen C de rata (por ejemplo, CA o Ck de rata).
En este documento se describen métodos para elaborar un vector transgénico que contiene un locus de Ig artificial. Dichos métodos implican aislar loci de Ig o fragmentos de los mismos, y combinarlos, con uno o varios fragmentos de ADN que comprenden secuencias que codifican elementos de la región V humana. El segmento o segmentos del gen de Ig se insertan en el locus de Ig artificial o una porción del mismo mediante ligadura o recombinación homóloga de tal manera que retengan la capacidad del locus para experimentar una reorganización de genes efectiva en el animal en cuestión.
Preferiblemente, se aísla un locus de Ig no humano seleccionando una biblioteca de plásmidos, cósmidos, YAC o BAC, y similares, preparados a partir del ADN genómico de los mismos. Los clones de YAC pueden transportar fragmentos de ADN de hasta 2 megabases, por lo que un locus completo de cadena pesada de o una gran parte del mismo puede aislarse en un clon de YAC, o reconstruirse para que esté contenido en un clon de YAC. Los clones de BAC son capaces de transportar fragmentos de ADN de tamaños más pequeños (aproximadamente 50-500 kb). Sin embargo, múltiples clones de BAC que contienen fragmentos superpuestos de un locus de Ig pueden alterarse por separado y posteriormente inyectarse juntos en una célula receptora animal, en la que los fragmentos superpuestos se recombinan en la célula animal receptora para generar un locus de Ig continuo.
Los segmentos de genes de Ig humana pueden integrarse en el locus de Ig en un vector (por ejemplo, un clon de BAC) mediante una variedad de métodos, que incluyen la ligadura de fragmentos de ADN o la inserción de fragmentos de ADN por recombinación homóloga. La integración de los segmentos del gen de Ig humana se realiza de tal manera que el segmento del gen de Ig humana está operativamente unido a la secuencia del animal huésped en el transgén para producir un locus de Ig humanizado funcional, es decir, un locus de Ig capaz de reorganizar genes que conducen a la producción de un repertorio diversificado de anticuerpos con idiotipos humanos. La recombinación homóloga se puede realizar en bacterias, levaduras y otras células con una alta frecuencia de eventos de recombinación homóloga. Los YAC y BAC modificados pueden aislarse fácilmente de las células y usarse para elaborar animales transgénicos.
Ovocitos de roedores y animales transgénicos que comprenden loci de Ig artificiales y capaces de producir anticuerpos que tienen idiotipos humanos
En un aspecto, la invención proporciona animales transgénicos capaces de producir inmunoglobulinas que tienen idiotipos humanos, así como métodos para fabricarlos.
Los animales transgénicos utilizados son roedores, que son ratas o ratones.
Los animales transgénicos usados para la producción de anticuerpos humanizados en la invención portan mutaciones de línea germinal en loci de Ig endógenos. En una realización preferida, los animales transgénicos son homocigotos para genes de cadena pesada de Ig y/o cadena ligera de Ig endógenos mutados. Además, estos animales portan al menos un locus de Ig artificial que es funcional y capaz de producir un repertorio de moléculas de inmunoglobulina en el animal transgénico. Los loci de Ig artificiales utilizados en la invención incluyen al menos un segmento del gen V humano.
En una realización preferida, los animales transgénicos transportan al menos un locus de cadena pesada de Ig artificial y al menos un locus de cadena ligera de Ig artificial que son funcionales y capaces de producir un repertorio de moléculas de inmunoglobulina en el animal transgénico, cuyo repertorio de moléculas de inmunoglobulina incluye anticuerpos que tienen un idiotipo humano. En una realización, se utilizan loci artificiales que incluyen al menos un gen C no humano, y se proporcionan animales capaces de producir anticuerpos quiméricos que tienen un idiotipo humano y una región constante no humana. Se describen loci artificiales que incluyen al menos un gen C humano, y se describen animales capaces de producir anticuerpos que tienen un idiotipo humano y una región constante humana.
En otra realización preferida, los animales transgénicos transportan al menos un locus de cadena pesada de Ig artificial, y carecen de un locus de cadena ligera de Ig funcional. Tales animales encuentran uso en la producción de anticuerpos sólo de cadena pesada.
La producción de tales animales transgénicos implica la integración de uno o más loci de Ig de cadena pesada artificial y uno o más loci de Ig de cadena ligera artificial en el genoma de un animal transgénico que tiene al menos un locus de Ig endógeno que ha sido o será inactivado por la acción de una o más meganucleasas. Preferiblemente, los animales transgénicos son nulos para la cadena pesada de Ig endógena y/o la cadena ligera de Ig endógena y, por consiguiente, incapaces de producir inmunoglobulinas endógenas. Independientemente de la ubicación en el cromosoma, un locus de Ig artificial descrito en el presente documento tiene la capacidad de sufrir un reordenamiento génico y, por lo tanto, producir un repertorio diversificado de moléculas de inmunoglobulina. Un locus de Ig que tiene la capacidad de sufrir un reordenamiento génico también se denomina en el presente documento como un locus de Ig "funcional", y los anticuerpos con una diversidad generada por un locus de Ig funcional también se denominan en este documento anticuerpos "funcionales" o un repertorio "funcional" de anticuerpos.
Los loci artificiales utilizados para generar tales animales transgénicos incluyen cada uno múltiples segmentos del gen de inmunoglobulina, que incluyen al menos un segmento del gen de la región V, uno o más segmentos del gen J, uno o más segmentos del gen D en el caso de un locus de cadena pesada, y uno o más genes de región constante. En el presente documento invención, al menos uno de los segmentos del gen V codifica una línea germinal o una secuencia de aminoácidos de la región V humana hipermutada. Por consiguiente, tales animales transgénicos tienen la capacidad de producir un repertorio diversificado de moléculas de inmunoglobulina, que incluyen anticuerpos que tienen un idiotipo humano.
En una realización, los loci artificiales utilizados pueden comprender al menos un segmento génico de la región C no humana. Por consiguiente, tales animales transgénicos tienen la capacidad de producir un repertorio diversificado de moléculas de inmunoglobulina, que incluyen anticuerpos quiméricos que tienen un idiotipo humano.
Los loci artificiales descritos en el presente documento pueden comprender al menos un segmento génico de la región C humana. En consecuencia, dichos animales transgénicos como se describen en el presente documento tienen la capacidad de producir un repertorio diversificado de moléculas de inmunoglobulina, que incluyen anticuerpos que tienen un idiotipo humano y una región constante humana.
En una realización, los loci artificiales utilizados comprenden al menos un gen de región constante artificial. Por ejemplo, un ejemplo de gen de región constante C artificial es un gen de región constante que codifica un dominio CH1 de IgG humana y un dominio CH2 y CH3 de IgG de rata. Por consiguiente, tales animales transgénicos tienen la capacidad de producir un repertorio diversificado de moléculas de inmunoglobulina, que incluyen anticuerpos que tienen un idiotipo humano y una región constante artificial que comprende componentes humanos y no humanos. El vector transgénico que contiene un locus de Ig artificial se introduce en la célula o células receptoras y luego se integra en el genoma de la célula o células receptoras mediante integración aleatoria o mediante integración dirigida. Para la integración aleatoria, un vector transgénico que contiene un locus de Ig artificial puede introducirse en una célula receptora mediante tecnología transgénica estándar. Por ejemplo, un vector transgénico puede inyectarse directamente en el pronúcleo de un ovocito fertilizado. También se puede introducir un vector transgénico mediante la incubación conjunta de esperma con el vector transgénico antes de la fertilización del ovocito. Los animales transgénicos pueden desarrollarse a partir de ovocitos fertilizados. Otra forma de introducir un vector transgénico es mediante transfección de células madre embrionarias u otras células pluripotentes (por ejemplo, células germinales primordiales) y luego inyectando las células genéticamente modificadas en embriones en desarrollo. Alternativamente, un vector transgénico (desnudo o en combinación con reactivos facilitadores) puede inyectarse directamente en un embrión en desarrollo. Finalmente, los animales transgénicos quiméricos se producen a partir de los embriones que contienen el transgén Ig artificial integrado en el genoma de al menos algunas células somáticas del animal transgénico. El vector transgénico descrito en el presente documento puede introducirse en el genoma de una célula y un animal se deriva de la célula transfectada mediante clonación por transferencia nuclear.
En una realización preferida, un transgén que contiene un locus de Ig artificial puede integrarse aleatoriamente en el genoma de las células receptoras (tales como los ovocitos fertilizados o los embriones en desarrollo). En una realización preferida, se obtienen descendientes que son nulizigotos para la cadena pesada de Ig y/o la cadena ligera de Ig endógena y, en consecuencia, incapaces de producir inmunoglobulinas endógenas y capaces de producir inmunoglobulinas transgénicas.
Para la integración dirigida, se puede introducir un vector transgénico en células receptoras apropiadas tales como células madre embrionarias, otras células pluripotentes o células somáticas ya diferenciadas. Posteriormente, las células en las que el transgén se ha integrado en el genoma animal se pueden seleccionar por métodos estándar. Las células seleccionadas pueden fusionarse luego con células de unidad de transferencia nuclear enucleadas, por ejemplo, ovocitos o células madre embrionarias, células que son totipotentes y capaces de formar un neonato funcional. La fusión se realiza de acuerdo con técnicas convencionales que están bien establecidas. Véase, por ejemplo, Cibelli et al., Science (1998) 280: 1256; Zhou et al., Science (2003) 301: 1179. La enucleación de los ovocitos y la transferencia nuclear también se pueden realizar mediante microcirugía usando pipetas de inyección (véase, por ejemplo, Wakayama et al., Nature (1998) 394: 369). Las células resultantes se cultivan en un medio apropiado y se transfieren a receptores sincronizados para generar animales transgénicos. Alternativamente, las células genéticamente modificadas seleccionadas pueden inyectarse en embriones en desarrollo que posteriormente se desarrollan en animales quiméricos.
En una realización, se utiliza una meganucleasa para aumentar la frecuencia de recombinación homóloga en un sitio objetivo a través de la escisión de ADN de doble cadena. Para la integración en un sitio específico, se puede usar una meganucleasa específica del sitio. En una realización, se utiliza una meganucleasa dirigida a un locus de Ig endógeno para aumentar la frecuencia de recombinación homóloga y reemplazo de un locus de Ig endógeno, o partes del mismo con un locus de Ig artificial, o partes del mismo. En una realización, el animal transgénico carece de un locus de cadena ligera de Ig funcional y comprende un locus de cadena pesada de Ig artificial.
Inmunoglobulinas que tienen un idiotipo humano.
Una vez que se elabora un animal transgénico capaz de producir inmunoglobulinas que tienen un idiotipo humano, se pueden obtener fácilmente inmunoglobulinas y preparaciones de anticuerpos contra un antígeno inmunizando al animal con el antígeno. La "composición de antisueros policlonales" como se usa en el presente documento incluye preparaciones de anticuerpos policlonales purificados por afinidad.
Se puede usar una variedad de antígenos para inmunizar un animal transgénico. Dichos antígenos incluyen, entre otros, microorganismos, por ejemplo, virus y organismos unicelulares (tales como bacterias y hongos), vivos, atenuados o muertos, fragmentos de microorganismos o moléculas antigénicas aisladas de los microorganismos. Los antígenos bacterianos preferidos para usar en la inmunización de un animal incluyen antígenos purificados deStaphylococcus aureustales como polisacáridos capsulares tipo 5 y 8, versiones recombinantes de factores de virulencia tales como toxina alfa, proteínas de unión a adhesina, proteínas de unión a colágeno y proteínas de unión a fibronectina. Los antígenos bacterianos preferidos también incluyen una versión atenuada de S.aureus, Pseudomonas aeruginosa,enterococos, Enterobacter yKlebsiella pneumoniae,o sobrenadante de cultivo de estas células bacterianas. Otros antígenos bacterianos que pueden usarse en la inmunización incluyen lipopolisacárido purificado (LPS), antígenos capsulares, polisacáridos capsulares y/o versiones recombinantes de las proteínas de membrana externa, proteínas de unión a fibronectina, endotoxina y exotoxina dePseudomonas aeruginosa,enterococos, Enterobacter y Klebsiella pneumoniae.
Los antígenos preferidos para la generación de anticuerpos contra hongos incluyen la versión atenuada de hongos o proteínas de la membrana externa de los mismos, que incluyen, pero no se limitan a,Candida albicans, Candida parapsilosis, Candida tropicalisyCryptococcus neoformans.
Los antígenos preferidos para su uso en la inmunización para generar anticuerpos contra virus incluyen las proteínas de envoltura y las versiones atenuadas de virus que incluyen, entre otros, el virus sincitial respiratorio (RSV) (particularmente la proteína F), el virus de la hepatitis C (HCV), virus de Hepatitis B (HBV), citomegalovirus (CMV), EBV y HSV.
Se pueden generar anticuerpos específicos para el cáncer inmunizando animales transgénicos con células tumorales aisladas o líneas celulares tumorales, así como antígenos asociados a tumores que incluyen, pero no se limitan a, antígeno Her-2-neu (anticuerpos contra los cuales son útiles para el tratamiento del cáncer de mama); antígenos CD20, CD22 y CD53 (anticuerpos contra los cuales son útiles para el tratamiento de linfomas de células B), antígeno de membrana específico de próstata (PMSA) (anticuerpos contra los cuales son útiles para el tratamiento del cáncer de próstata) y molécula 17-1A (anticuerpos contra los cuales son útiles para el tratamiento del cáncer de colon).
Los antígenos pueden administrarse a un animal transgénico de cualquier manera conveniente, con o sin un adyuvante, y pueden administrarse de acuerdo con un programa predeterminado.
Para fabricar un anticuerpo monoclonal, las células del bazo se aíslan del animal transgénico inmunizado y se usan en fusión celular con líneas celulares transformadas para la producción de hibridomas, o los ADNc que codifican anticuerpos se clonan mediante técnicas estándar de biología molecular y se expresan en células transfectadas. Los procedimientos para fabricar anticuerpos monoclonales están bien establecidos en la técnica. Véase, por ejemplo, la solicitud de patente europea 0583980 A1 ("Método para generar anticuerpos monoclonales a partir de conejos"), la patente de los Estados Unidos No. 4,977,081 ("Hibridomas estables de conejo-ratón y productos de secreción de los mismos"), documento WO 97/16537 ("Línea estable de células B de pollo y método de uso de la misma"), y el documento EP 0 491 057 B1 ("Hibridoma que produce inmunoglobulina G aviar específica"). La producciónin vitrode anticuerpos monoclonales a partir de moléculas de ADNc clonadas ha sido descrita por Andris-Widhopf et al., "Methods for the generation of chicken monoclonal antibody fragments by phage display", J Immunol Methods 242: 159 (2000), y por Burton, DR, "Phage display", Immunotechnology 1: 87 (1995).
Una vez que se han generado anticuerpos monoclonales quiméricos con idiotipos humanos, dichos anticuerpos quiméricos se pueden convertir fácilmente en anticuerpos completamente humanos usando técnicas estándar de biología molecular. Los anticuerpos monoclonales completamente humanos no son inmunogénicos en humanos y son apropiados para su uso en el tratamiento terapéutico de sujetos humanos.
Los anticuerpos de la invención incluyen anticuerpos sólo de cadena pesada
En una realización, los animales transgénicos que carecen de un locus funcional de cadena ligera de Ig, y que comprenden un locus artificial de cadena pesada, se inmunizan con antígeno para producir anticuerpos sólo de cadena pesada que se unen específicamente al antígeno.
En el presente documento se describen células productoras de anticuerpos monoclonales derivadas de tales animales, así como ácidos nucleicos derivados de los mismos. También se proporcionan hibridomas derivados de los mismos. También se proporcionan anticuerpos totalmente humanos sólo de cadena pesada, así como ácidos nucleicos codificadores, derivados de los mismos.
Las enseñanzas sobre los anticuerpos solo de cadena pesada se encuentran en la técnica. Por ejemplo, véanse las publicaciones PCT WO02085944, WO02085945, WO2006008548 y WO2007096779. Véanse también los documentos US 5,840,526; US 5,874,541; US 6,005,079; US 6,765,087; US 5,800,988; EP 1589107; WO 9734103; y US 6,015,695.
Composiciones farmacéuticas
Los anticuerpos monoclonales o policlonales purificados descritos en el presente documento pueden mezclarse con un vehículo farmacéutico apropiado adecuado para la administración a pacientes, para proporcionar composiciones farmacéuticas.
Los pacientes tratados con las composiciones farmacéuticas descritas en el presente documento son preferiblemente mamíferos, más preferiblemente humanos, aunque también se contemplan usos veterinarios.
Los vehículos farmacéuticamente aceptables que pueden emplearse en las presentes composiciones farmacéuticas pueden ser todos y cada uno de los disolventes, medios de dispersión, agentes isotónicos y similares. Excepto en la medida en que cualquier medio, agente, diluyente o vehículo convencional sea perjudicial para el receptor o para la efectividad terapéutica de los anticuerpos contenidos en él, su uso en las composiciones farmacéuticas descritas en este documento es apropiado.
El vehículo puede ser líquido, semisólido, por ejemplo, pastas o portadores sólidos. Los ejemplos de vehículos incluyen aceites, agua, soluciones salinas, alcohol, azúcar, gel, lípidos, liposomas, resinas, matrices porosas, aglutinantes, rellenos, recubrimientos, conservantes y similares, o combinaciones de los mismos.
Métodos de tratamiento
En el presente documento se describen métodos para tratar una enfermedad en un vertebrado, preferiblemente un mamífero, preferiblemente un primate, siendo los sujetos humanos especialmente preferidos, administrando una composición de anticuerpo purificada como se describe en el presente documento deseable para tratar dicha enfermedad.
Las composiciones de anticuerpos se pueden usar para unir y neutralizar o modular una entidad antigénica en los tejidos del cuerpo humano que causa o contribuye a la enfermedad o que provoca respuestas inmunes no deseadas o anormales. Una "entidad antigénica" se define en el presente documento para abarcar cualquier molécula soluble o unida a la superficie celular que incluye proteínas, así como células u organismos o agentes infecciosos que causan enfermedades que son al menos capaces de unirse a un anticuerpo y preferiblemente también son capaces de estimular una respuesta inmune.
La administración de una composición de anticuerpos contra un agente infeccioso como monoterapia o en combinación con quimioterapia da como resultado la eliminación de partículas infecciosas. Una sola administración de anticuerpos disminuye el número de partículas infecciosas generalmente de 10 a 100 veces, más comúnmente más de 1000 veces. De manera similar, la terapia con anticuerpos en pacientes con una enfermedad maligna empleada como monoterapia o en combinación con quimioterapia reduce el número de células malignas, generalmente de 10 a 100 veces, o más de 1000 veces. La terapia puede repetirse durante un período de tiempo prolongado para asegurar la eliminación completa de partículas infecciosas, células malignas, etc. En algunos casos, la terapia con preparaciones de anticuerpos continuará durante períodos prolongados en ausencia de cantidades detectables de partículas infecciosas o células indeseables.
De manera similar, el uso de terapia con anticuerpos para la modulación de respuestas inmunes puede consistir en administraciones únicas o múltiples de anticuerpos terapéuticos. La terapia puede continuarse por períodos prolongados en ausencia de síntomas de enfermedad.
El tratamiento del sujeto puede emplearse junto con quimioterapia con dosis suficientes para inhibir enfermedades infecciosas o tumores malignos. En pacientes con enfermedades autoinmunes o receptores de trasplantes, la terapia con anticuerpos se puede emplear junto con la terapia inmunosupresora en dosis suficientes para inhibir las reacciones inmunes.
Ejemplos
En ratones transgénicos para loci de inmunoglobulina (Ig) humana, la eficacia subóptima en el suministro de anticuerpos completamente humanos se ha atribuido a la interacción imperfecta entre las regiones constantes de cadenas de IgH de membrana humana y la maquinaria de señalización celular de ratón. Para evitar este problema, se describe en el presente documento una cepa de rata humanizada (OmniRatMR) que transporta un locus quimérico de IgH humano/rata [que comprende 22 V<h>humanos, todos los segmentos D y J<h>humanos en configuración natural pero unidos al locus de C<h>de rata] junto con loci de cadena ligera completamente humanos [12 V<k>s unidos a Jk-Ck y 16 VA unidos a JA-CA]. Los loci de Ig de rata endógenos fueron silenciados por nucleasas de dedo de zinc de diseñador. Después de la inmunización, las OmniRat se desempeñan tan eficientemente como las ratas normales para producir IgG en suero de alta afinidad. Los anticuerpos monoclonales, que comprenden regiones variables completamente humanas con afinidad antigénica sub-nanomolar y que transportan mutaciones somáticas extensas, son fácilmente obtenibles, de manera similar al rendimiento de anticuerpos convencionales de ratas normales. Materiales y métodos
Construcción de loci de Ig humanos modificados en YAC y BAC
a) loci de IgH
Los genes de V de IgH humana estaban cubiertos por 2 BAC: BAC6-VH3-11 que contenía la región auténtica que abarcaba desde VH4-39 hasta VH3-23 seguido de VH3-11 (modificado a partir de un clon de BAC comercialmente disponible 3054M17 CITB) y BAC3 que contiene la región auténtica que abarca desde VH3-11 hasta VH6-1 (811L16 RPCI-11). Se construyó un BAC denominado Annabel uniendo genes de la región CH de la rata inmediatamente secuencia abajo de la región VH6-1-Ds-JHs humana (Figura 1). Todos los clones de BAC que contenían parte del locus de IgH humano o de rata se adquirieron a través de Invitrogen.
Tanto BAC6-VH3-11 como Annabel se construyeron inicialmente en S.cerevisiaecomo YAC circulares (cYAC) y luego se verificaron y mantuvieron enE. colicomo BAC. Los detalles de la construcción se pueden encontrar en www.ratltd.net.
A diferencia de los YAC, las preparaciones de plásmidos BAC producen grandes cantidades del ADN deseado. Para convertir un YAC lineal en un cYAC o ensamblar fragmentos de ADN con extremos superpuestos en un solo cYAC en S.cerevisiae,que también se puede mantener como un BAC enE. coli,se construyeron dos vectores lanzadera de S.cerevisiae /E coliautorreplicantes, pBelo-CEN-URA y pBelo-CEN-HYG. En resumen, se cortó CEN4 de S.cerevisiaecomo un fragmento AvrII de pYAC-RC39 y se ligó a pAP59940 linealizado con Spel. El plásmido resultante contiene CEN4 clonado entre URA3 de S.cerevisiaey un casete de expresión de resistencia a la higromicina (HygR). A partir de este plásmido, se cortó un fragmento ApaLI-BamHIque contenía URA3 seguido por CEN4 o un fragmento de PmLI-SphI que contenía CEN4 seguido por HygR, y se ligó a ApaLI y BamHI o pBACBelo11 doblemente digerido con HpaI y SphI (New England Biolabs) para producir pBelo-CEN -URA y pBelo-CEN-HYG. Para construir BAC6-VH3-11, inicialmente se cortaron dos fragmentos, un NotI-PmeI de 115 kb y un RsrII-SgrAI de 110 kb, a partir del clon de BAC 3054M17 CITB. El extremo 3' del primer fragmento se superpone a 22 kb con el extremo 5' del último. El fragmento NotI-PmeI se ligó a un brazo de YAC NotI-BamHI que contenía CEN4 de S.cerevisiaeasí como TRP1/ARS1 de pYAC-RC, y el fragmento RsrII-SgrAI se ligó a un brazo YAC SgrAI-BamHI que contenía URA3 de S.cerevisiae,también de pYAC-RC. Posteriormente, la mezcla de ligación se transformó en células AB 1380 de S.cerevisiaemediante la transformación de esferoplasto41, y se seleccionaron clones de levadura URA+ TRP+. Los clones, denominados YAC6, que contienen la región lineal de VH4-39 a VH3-23 humana se confirmaron mediante análisis de transferencia Southern. YAC6 se extendió adicionalmente mediante la adición de un fragmento 3' de 10.6 kb de VH3-23, y conversión a un cYAC. La extensión de 10.6 kb contiene VH3-11 humano y también ocurre en el extremo 5' de BAC3. Se construyó pBeloHYG-YAC6+ BAC3 (5') para la modificación de YAC6. En resumen, se prepararon 3 fragmentos con extremos superpuestos por PCR: 1) un fragmento de 'material' que contiene TRP1-ARS1 de S.cerevisiaeflanqueado por sitios Hpal con cola 5' que coincide con la secuencia, secuencia arriba de VH4-39 y cola 3' que coincide secuencia abajo de VH3 -23 en<y>AC6 (usando oligos largos 561 y 562, y pYAC-RC como plantilla), 2) el fragmento de extensión de 10.6 kb con una cola 5' que coincide con la secuencia, secuencia abajo de VH3-23 como se describió anteriormente y un sitio AscI único en su extremo 3' (usando oligos largos 570 y 412, y ADN genómico humano como plantilla), y 3) el vector pBelo-CEN-HYG con el CEN4 unido secuencia abajo con una cola de homología que coincide con el extremo 3' del fragmento de extensión de 10.6 kb y el HygR unido secuencia arriba con una cola que coincide con la secuencia, secuencia arriba de VH4-39 como se describió anteriormente (usando oligos largos 414 y 566, y pBelo-CEN-HYG como plantilla). Posteriormente, los 3 fragmentos de PCR se ensamblaron en un pequeño cYAC que confiere HYGR y TRP+ en S.cerevisiaemediante recombinación homóloga asociada con la transformación de esferoplastos, y este cYAC se convirtió además en el BAC pBcloHYG-YAC6+BAC3(5'). Finalmente, el pBeloHYG-YAC6+BAC3(5') digerido con Hpal se usó para transformar células de levadura que portaban YAC6, y mediante recombinación homóloga se generó cYAC BAC6-VH3-11 que confiere solo HYGR. A través de la transformación, véase más abajo, este cYAC se introdujo como un BAC enE. coli.Los genes de VH humano en BAC6-VH3-11 se cortaron como un fragmento de AsiSI-(que ocurre naturalmente en el HygR)-AscI, de ~182 kb y los genes de VH en BAC3 se cortaron como un fragmento de NotI de ~173 kb (Figura 1 parte superior).
Para el ensamblaje de la región C con la superposición de VH, la región VHC-1-Ds-JHs humana tuvo que unirse con la secuencia genómica de rata inmediatamente secuencia debajo de la último JH seguida por las C de rata para producir una cY AC/BAC. Para lograr esto, se prepararon 5 restricciones superpuestas, así como fragmentos de PCR; un fragmento 5' de 6.1 kb de VH6-1 humano (usando oligos 383 y 384, y ADN genómico humano como plantilla), un fragmento PvuI-PacI de ~78 kb que contenía la región VH6-1-Ds-JHs humana cortada de BAC1 (RP11645E6), un fragmento de 8.7 kb que une el JH6 humano con la secuencia genómica de rata inmediatamente secuencia abajo del último JH y que contiene parte de la secuencia de codificación |j de rata (usando oligos 488 y 346, y ADN genómico de rata como plantilla), un fragmento NotI de ~52 kb de Pmel que contiene la región auténtica j , 5 y<y>2<c>de rata cortada de BAC M5 (CH230-408M5) y el vector pBelo-CEN-URA con el URA3 unido secuencia abajo con una cola de homología que coincide con el extremo 3' de la región y2c de rata y el CEN4 se unió secuencia arriba con una cola que coincidía con la región 5' del VH6-1 humano como se describió (usando oligos largos 385 y 550, y pBelo-CEN-URA como plantilla). El ensamblaje correcto mediante recombinación homóloga en S.cerevisiaese analizó por PCR y el cYAC purificado de los clones correctos se convirtió en un BAC enE. coli.
Para el ensamblaje de Annabel, se usaron partes del cYACBAC anterior que contenía VH6-1-Ds-JH humano seguido de la región auténtica j , 5 y y2c de rata, así como fragmentos de pCr . Cinco fragmentos superpuestos contenían el fragmento de 6.1 kb en el extremo 5' del VH6-1 humano como se describió anteriormente, un fragmento Spel de ~83 kb que comprende VH6-1-Ds-JHs humano seguido inmediatamente por la secuencia genómica de rata secuencia abajo del último JH y que contiene parte de C j de rata, un fragmento de 5.2 kb que une el extremo 3' de j de rata con el extremo 5'<y>1 de rata (usando oligos 490 y 534, y ADN genómico de rata como plantilla), un fragmento de Notl-SgrAI de ~118 kb que contiene la región auténtica potenciadora de IgH y1, Y2b, £, a y 3'E de rata cortada de BAC 18 (CH230-162I08), y el vector pBelo-CEN-URA con el URA3 unido secuencia abajo con una cola de homología que coincide con el extremo 3' del 3'E de rata y el CEN4 unidos secuencia arriba con una cola que coincide con el extremo 5' del VH6-1 humano como se describió anteriormente. Existe una superposición de 10.3 kb entre las regiones VH6-1 humanas tanto en BAC3 como en Annabel. Las VH6-1-Ds-JHs seguidos por la región CH de rata junto con el URA3 de S.cerevisiaeen Annabel pueden cortarse como un solo fragmento de NotI de ~183 kb (véase la Figura 1 en la parte superior).
BAC6-VH3-11, BAC3 y Annabel se comprobaron exhaustivamente mediante análisis de restricción y secuenciación parcial para verificar su autenticidad.
b) loci de IgL
El locus de IgA humano en un YAC de ~410 kb se obtuvo mediante ensamblaje de recombinación de un YAC de VA con 3 CA que contienen cósmidos25. El reordenamiento y la expresión se verificaron en ratones transgénicos derivados de células ES que contenían una copia de un YAC de IgA humano completo38. Este YAC de IgA se acortó mediante la generación de un YAC circular que eliminaba ~100 kb de la región 5' de VA3-27. El vector pYAC-RC se digirió con ClaI y BspEI para eliminar URA3 y se ligó con un fragmento ClaI/NgoMIV de pAP 599 que contenía HYG. La PCR de la región que contenía el centrómero de levadura y el gen marcador de higromicina del nuevo vector (pYAC-RC-HYG) se realizó con cebadores con extremos 5' homólogos a una región 5' de VA3-27 (cebador 276) y dentro del gen marcador ADE2 en el brazo de YAC (cebador 275). El fragmento de PCR (3.8 kb) se integró en el YAC de IgA usando un método de transformación de acetato de litio de alta eficiencia42 y selección en placas de YPD que contenían higromicina. El ADN se preparó a partir de los clones (kit de purificación de ADN de levadura Epicenter MasterPure) y se analizó la unión correcta por PCR usando los siguientes oligos: 243 278 y extremo R de Hyg 238. Se elaboraron tapones43 y los cromosomas de levadura se eliminaron por PFGE (Gel de agarosa al 0.8% (PFC) (Biorad) [6 V/cm, tiempos de pulso de 60 s durante 10 h y 10 s durante 10 h, 8 °C) dejando el cromosoma artificial de levadura circular atrapado en el bloque de agarosa44. Los bloques fueron retirados y digeridos con NruI. En resumen, los bloques se incubaron previamente con tampón de enzima de restricción en exceso hasta una concentración final 1X durante 1 hora en hielo. Se eliminó el exceso de tampón dejando solo lo suficiente para cubrir los tapones, se añadió enzima de restricción a una concentración final de 100 U/mL y el tubo se incubó a 37 °C durante 4-5 horas. El YAC linealizado se retiró de los bloques por PFGE, cortado del gel como una tira y purificado como se describe a continuación.
Para el locus de IgK humana se eligieron 3 BAC (RP11-344F17, RP11-1134E24 y RP11-156D9, Invitrogen), que cubrían una región de más de 300 kb de 5' V<k>1-17 a 3' KDE45. En las digestiones y análisis de secuencia se identificaron tres fragmentos superpuestos: de Vk1-17 a Vk3-7 (Notl de 150 kb con una superposición de ~14 kb), de Yk3-7 a 3' de Ck (Notl de 158 kb con superposición de ~40 kb) y de Ck a 3' del KDE (Pacl de 55 kb con superposición de 40 kb). Las regiones superpuestas generalmente pueden favorecer la integración conjunta cuando se inyectan conjuntamente en los ovocitos24.
Análisis en gel y purificación de ADN.
El ADN purificado de YAC y BAC se analizó mediante digestión de restricción y separación en geles de agarosa al 0.7% convencionales46. Los fragmentos más grandes, 50-200 kb, se separaron por PFGE (Biorad Chef MapperMR) a 80 °C, utilizando Agarosa PFC al 0.8% en TBE al 0.5%, con un tiempo de conmutación de 2-20 segundos durante 16 h, 6V/cm, 10 mA. La purificación permitió una comparación directa de los fragmentos resultantes con el tamaño predicho obtenido del análisis de secuencia. Las alteraciones se analizaron por PCR y secuenciación.
Los YAC lineales, los YAC circulares y los fragmentos de BAC después de las digestiones, se purificaron por electroelución usando ElutrapMR (Schleicher y Schuell)47 de tiras cortadas de geles de agarosa al 0.8% corridos convencionalmente o de electroforesis en gel de campo pulsado (PFGE). La concentración de ADN generalmente era de varios ng/|jL en un volumen de ~100 |<j>L. Para fragmentos de hasta ~200 kb, el ADN se precipitó y se redisolvió en tampón de microinyección (Tris-HCl 10 mM pH 7.5, EDTA 100 mM pH 8 y NaCl 100 mM pero sin Espermina/Espermidina) a la concentración deseada.
La purificación de YAC circulares a partir de levadura se realizó usando resina de intercambio aniónico con base en sílice Nucleobond AX (Macherey-Nagel, Alemania). Brevemente, los esferoplastos se elaboraron usando zimoliasa o liticasa y se sedimentaaron20. Luego, las células se sometieron a lisis alcalina, uniéndose a la columna AX100 y eluyendo como se describe en el método de Nucleobond para un plásmido de baja copia. El ADN cromosómico de levadura contaminante se hidrolizó usando DNasa dependiente de ATP Plamid-SafeMR (Epicenter Biotechnologies) seguido de una etapa de limpieza final usando SureClean (Bioline). Luego se transformó una alícuota de células electrocompetentes DH10 (Invitrogen) con el YAC circular para obtener colonias de BAC. Para la microinyección, el inserto de ADN (150-200 kb), se separó del ADN del vector BAC (~10 kb) usando una etapa de filtración con sefarosa 4B-CL 48.
Derivación de ratas y cría.
El ADN purificado que codifica los loci de inmunoglobulina recombinante se resuspendió en tampón de microinyección con espermina 10 mM y espermidina 10 mM. El ADN se inyectó en ovocitos fertilizados a diversas concentraciones de 0.5 a 3 ng/jL.
Se inyectaron ADN plasmídico o ARNm que codifica ZFN específicos para genes de inmunoglobulina de rata en ovocitos fertilizados a diversas concentraciones de 0.5 a 10 ng/jL.
Se realizaron microinyecciones en las instalaciones de Caliper Life Sciences. Los animales de la cepa exogámica SD/Hsd (Tipo silvestre) se alojaron en jaulas microaisladoras estándar bajo protocolos aprobados de cuidado de animales en instalaciones de animales acreditados por la Asociación para la Evaluación y Acreditación de Cuidado de Animales de Laboratorio (AAALAC). Las ratas se mantuvieron en un ciclo de luz/oscuridad de 14-10 h con acceso libre a alimentos y agua. A las ratas hembra SD/Hsd de cuatro a cinco semanas de edad se les inyectó 20-25 Ul de PMSG (Sigma-Aldrich) seguido 48 horas más tarde con 20-25 Ul de hCG (Sigma-Aldrich) antes de la cría con machos SD/Hsd exogámicos. Se recogieron embriones fertilizados en etapa de 1 célula para la posterior microinyección. Los embriones manipulados se transfirieron a ratas hembras SD/Hsd seudopreñadas para llevarlas al parto.
Se analizaron ratas con Ig humana de múltiples características (IgH, IgK e IgA humanas en combinación con J KO,<k>KO y A KO de rata) y tipo silvestre, como control, a las 10-18 semanas de edad. Los animales fueron criados en Charles River en condiciones específicas libres de patógenos.
PCR y RT-PCR
Las ratas transgénicas se identificaron por PCR a partir del ADN de la cola o un fragmento de la oreja usando un minikit de ADN genómico (Bioline). Para las PCR de IgH <1 kb, se utilizó la mezcla maestra GoTaq Green (Promega) bajo las siguientes condiciones: 94 °C durante 2 minutos, 32 x (94 °C por 30 segundos, 54-67 °C (véase la Tabla complementaria 1 para los cebadores y las temperaturas específicas de hibridación) 30 segundos, 72 °C durante 1 min), 72 °C durante 2 min. Para las PCR de IgH >1 kb se usó KOD polimerasa (Novagen) bajo las siguientes condiciones: 95 °C durante 2 minutos, 32 x (95 °C durante 20 segundos, 56-62 °C (Tabla complementaria 1) durante 20 segundos, 70 °C durante 90 segundos), 70 °C durante 2 min. Para PCR de IgK e IgA, todas <1 kb, se usaron las condiciones anteriores, excepto la extensión a 72 °C durante 50 segundos.
El ARN se extrajo de la sangre usando el kit para sangre RiboPure (Ambion) y para la extracción de ARN del bazo, la médula ósea o los ganglios linfáticos se utilizó el mini kit RNASpin. (GE Healthcare). El ADNc se elaboró usando Oligo dT y transcriptasa inversa Promega a 42 °C durante 1 hora. Las reacciones de PCR de GAPDH (oligos 429 430) determinaron la concentración.
Las RT-PCR se configuraron usando cebadores líderes VH con cebadores |<j>CH2 de rata o yCH2 de rata (Tabla 1 complementaria). La amplificación con la mezcla maestra GoTaq Green fue de 94 °C durante 2 minutos, 34 x (94 °C durante 30 segundos, 55-65 durante 30 °C segundos, 72 °C durante 50-60 segundos), 72 °C durante 2 minutos. Los productos de PCR del tamaño esperado se purificaron mediante gel o QuickClean (Bioline) y se secuenciaron directamente o se clonaron en pGemT (Promega).
Purificación de proteínas
La IgM se purificó en una matriz de afinidad anti-IgM (BAC B.V., Países Bajos, CaptureSelect # 2890.05) como se describe en el protocolo. De manera similar, se purificaron IgK e IgA humanas en una matriz de afinidad de cadena anti-L (CaptureSelect anti-IgK # 0833 y anti-IgA, # 0849) de acuerdo con el protocolo.
Para la purificación de IgG de rata, se usó agarosa de proteína A y proteína G (Innova, Cambridge, Reino Unido, # 851-0024 y # 895-0024). El suero se incubó con la resina y se facilitó la unión a fosfato de sodio 0.1 M pH 7 para la proteína G y pH 8 para la proteína A con una mezcla suave. Las columnas polyprep (Bio-Rad) se empacaron con la mezcla y se lavaron ampliamente con PBS pH 7.4. El tampón de elución fue de citrato de sodio 0.1 M pH 2.5 y el tampón de neutralización fue Tris-HCl 1 M pH 9.
La electroforesis se realizó en SDS-PAGE al 4-15% y se usó azul brillante de Coomassie para la tinción. Los estándares de PM fueron el marcador de proteína preteñido HyperPage (# BIO-33066, Bioline).
Análisis por citometría de flujo y FISH
Las suspensiones celulares se lavaron y se ajustaron a 5 x 105 células/100<j>L en PBS-BSA al 1%-Azida al 0,1%. Se identificaron diferentes subconjuntos de células B utilizando mAb de ratón marcado con FITC anti-IgM de rata (MARM 4, Jackson Immunoresearch Laboratories) en combinación con mAb conjugado con PE CD45R anti-células B (B220 de rata) (His 24, BD biosciences) o mAb conjugado con PE anti-IgD (MARD-3, Abd Serotec). Para el análisis se utilizó un citómetro de flujo FACS CantoII y el software FlowJo (Becton Dickinson, Pont de Claix, Francia). La hibridaciónin situcon fluorescencia se llevó a cabo en linfocitos de sangre fijados usando BAC purificados de la región C de IgH e IgL como se describió49.
Inmunización, fusión celular y medición de afinidad.
Las inmunizaciones se realizaron con 125 jg de PG en CFA, 150 jg de hGHR en CFA, 200 jg de Tau/KLH en CFA, 150 jg de HEL en CFA, 150 jg de OVA en CFA en la base de la cola y las células de los ganglios linfáticos ilíacos mediales se fusionaron con células de mieloma P3X63Ag8.653 de ratón 22 días después como se describió50. Para inmunizaciones múltiples, se administró proteína 125 jg de PG o HEL, o 100 jg de hGHR o CD14 en adyuvante GERBU (www.Gerbu.com) por vía intraperitoneal de la siguiente manera: día 0, día 14, día 28 y día 41 sin adyuvante, seguido de fusión de células del bazo con células P3x63Ag8.653, 4 días después49.
La cinética de unión se analizó mediante resonancia de plasmón superficial usando un Biacore 2000 con los antígenos inmovilizados directamente como se describió23.
Tabla complementaria 1: Condiciones de PCR* y RT-PCR* para detectar la integración y expresión de IgH e IgL humana
Cebadores
úme Secuencia de Oligonucleótidos 5’-3’
162 GGGGCCAAGGCCCCGAGAGATCTCAGG
163 CACTGGGTTCAGGGTTCTTTCCACC
168 GTGGTACAGAAGTTAGAGGGGATGTTGTTCC
169 TCTTCTACAAGCCCTTCTAAGAACACCTGG
170 AGCACAATGCTGAGGATGTTGCTCC
171 ACTGACCCTGATCCTGACCCTACTGC
172 AAACACCCCTCTTCTCCCACCAGC
173 CGCTCATGGTGAACCAGTGCTCTG
203 GCTATTTAAGACCCACTCCCTGGCA
204 AAAACCTGCAGCAAGGATGTGAGG
205 GCTCCTTCAGCACATTTCCTACCTGGA
206 C CAT ATATGG CAAAAT GAGT CAT GCAGG
211 CTCTGCTGCTCCTCACCCTCCTCACTCAGG
212 GAGAGTGCTGCTGCTTGTATATGAGCTGCA
213 TGGCT CACT CTCCT CACT CTTTGCAT AGGTT
214 GATGGTTACCACTGCTGTCCCGGGAGTTAC
215 ATCCCTCTCCTGCTCCCCCTCCTCATTCTCTG
216 TGATGGTCAAGGTGACTGTGGTCCCTGAGCTG
238 AACAAGTGCGTGGAGCAG
241 GTACT GTT GACATTGCGAAGAGC
243 TGGTTGACATGCTGGCTAGTC
253 TGTCTGGCTGGAATACACTC
275 AAATGAGCTTCAAATTGAGAAGTGACGCAAGCATCAATGGTATAATGTCC
276 AGAGTT GT GAGGCCTTGGGGACT GT GTGCCGAAC AT GCT C
CCAGCACTGTTCAATCACAGTATGATGAGCCTAATGGGAATCCCACTAGG
CTAGTCTAGTCACCACATTAAAGCACGTGGCCTCTTATCG
278 TGACCATTGCTTCCAAGTCC
307 GAGGAAAGAGAGAAACCACAGGTGC
308 CACCCAAGGGCAGAACTTTGTTACT
309 T GTCCAGGT AT GTT GAAGAAT GTCCTCC
310 TGGACTCTGTTCAACTGAGGCACCAG
311 GGCCTTCATGCTGTGTGCAGACTA
312 CAGGTCGCACTGATTCAAGAAGTGAGT
313 TTCAGGCAGGCTCTTACCAGGACTCA
314 TGCTCTGACCTCTGAGGACCTGTCTGTA
329 TCACGT GACT GT GATCCCT AGAA
330 CACT GTT ATGCCAACT GAACAGC
331 CGTAGCAGTCCCCATCTGTAATC
332 ATGTCAGAGGAGCAGGAGAGAGA
333 CACGCCTCACATC CAAT ATGTTA
334 ATACCCTCCTGACATCTGGTGAA
345 GCTTTCAGTGATGGTCAGTGTGCTTATGAC
346 TGGAAGACCAGGAGATATTCAGGGTGTC
359 TTGCTTAACTCCACACCTGCTCCTG
360 TGCTTGGAACTGGATCAGGCAGTC
368 CACCCTGGTCACCGTCTCC
369 AGACAGTGACCAGGGTGCCAC
371 TGAGGAACGGATCCTGGTTCAGTC
372 ATCTCCTCAGCCCAGCACAGC
383 CCTCCCAT GATTCCAACACT G
384 CTCACCGTCCACCACTGCTG
385 CTGTGCCACAAACATGCAAAGATAAGTTCCATGTGACAAGTCTGAACTCA
GTGTTGGAATCATGGGAGGCGGCCGCGTTATCTATGCTGTCTCACCATAG
387 TGCTCAGGCGTCAGGCTCAG
388 TGCTCAGGCGTCAGGCTCAG
390 ATGGACTGGACCTGGAGGATCC
391 TCCACGCTCCTGCTGCTGAC
392 ATGGAGTTTGGGCTGAGCTGG
393 TGAAACACCTGTGGTTCTTCC
394 TCATCTTCCTGCCCGTGCTGG
396 GACT CGACT CTT GAGGGACG
398 ATGTGGCCACAGGCTAGCTC
400 AT GAGGGT CCCCGCT CAG
401 ATGGAAGCCCCAGCTCAGC
(continuación)
Número Secuencia de Oligonucleótidos 5’-3’
402 CCT GGGAGTT ACCCGATTGG
412 GGCGCGCCAAGCATCATGTCCTACCTGGCTG
414 CAAAGTACGTGGCACCTCCCTCGTCTTTCTTCCTCCTGCTCCAGCCAGGTA GGACATGATGCTTGGCGCGCCGTTATCTATGCTGTCTCACCATAG
429 CAGTGCCAGCCTCGTCTCAT
430 AGGGGCCAT CCACAGT CTT C
448 CTT CACT GTGT GTT CTTGGGAT AC
459 GTGTAATGCTTTGGACGGTGTGTTAGTCTC
461 GCAT AGCGGCGCGCCAAGCAT CAT GT CCT ACCT GGCT G
474 GACAT GAGAGT CCT CGCT CAGC
475 AAGCCCCAGCGCAGCTTC
476 AT GGT GTT GCAGACCCAGGT C
477 GT CCCAGGTT CACCT CCT CAG
478 TCCT CASYCT CCT CACT CAGG
479 CGT CCTT GCTT ACT GCACAG
480 AGCCT CCTT GCT CACTTT ACAG
481 CCT CCT CAYTYT CT GCACAG
482 GCT CACT CT CCT CACT CTTTGC
483 CCT CCT CT CT CACT GCACAG
484 GCCACACT CCTGCT CCCACT
485 AT GGCCT GGGTCT CCTT CT AC
488 ATTACTACTACTACTACTACATGGACGTCTGGGGCAAAGGGACCACGGTC ACCGTCTCCTCAGGAAGAATGGCCTCTCCAGGTC
490 CTGT CGTT GAGAT GAACCCCAAT GT GAG
534 GGAACTGATGTGATCTC AGT CACACAGCT AAT GCAAAGGT CAGCAGGCT GTTTACTGCCTGGAGGTTCATCGCCCAATTCCAAAGTCAC
535 CT AGT CT GCATGGGT CT CCGCAAAC
550 CTGGTATAATCATAAGTCTCCACTTAATAGTTCTGTAGACAGAATCTTCAT TTAGACTTACAGACCGCGGCCGCACCGCAGGGTAATAACTG
561 GCAACCCTTCTTGCCACTCATGTCCCAGCTCTCACCATGTGACATAGCCTG TTAACAATTCGGTCGAAAAAAGAAAAGGAGAG
562 AATGTTCTTAGTATATATAAACAAGCTACTCCCAATTCATAGTCAACTAA
GTT AAC ATT CC AC AT GTT AAAATAGT GAAGGAG
566 TT AAC AGGCTAT GT C AC AT GGT GAG AGCT GGGAC AT GAGT GGC AAGAAG
GGTT GCC AGACT CCCCCTTTACCTCTATAT CGT GTTC
570 CTTAGTTGACTATGAATTGGGAGTAGCTTGTTTATATATACTAAGAACATT TGTCAGAAGCTCTTTCTTGTTTATTCCCAGTTTGC
583 CAT GT CCGT AT GTT GCAT CTGC
682 GGGAAGAT GAAGACAGAT G
761 TGGAGTGGATTGGGAGT
Resultados
Los loci IgH e IgL humanas
La construcción de los loci de Ig humanos empleó tecnologías establecidas para ensamblar grandes segmentos de ADN usando YAC y BAC1619’ 24-21. Como las modificaciones múltiples de BAC enE. colifrecuentemente eliminaban regiones repetitivas tales como secuencias de cambio y potenciadores, se desarrolló un método para ensamblar secuencias con extremos superpuestos en S.cerevisiaetal como YAC circular (cYAC) y, posteriormente, convertir dicho cYAC en un BAC. Las ventajas de los YAC incluyen su gran tamaño, la facilidad de alteraciones homólogas en el huésped de levadura y la estabilidad de la secuencia, mientras que los BAC propagados enE. coliofrecen las ventajas de una preparación fácil y un gran rendimiento. Además, el mapeo de restricción detallado y el análisis de secuenciación se pueden lograr mejor en BAC que en YAC.
El análisis de secuencia y las digestiones identificaron grupos de genes de interés y aseguraron la integridad y funcionalidad del locus para asegurar la reordenación y el cambio de ADN en una amplia región. El diseño de la IgH humana (segmentos VH, D y JH humanos seguidos de genes C de rata), loci de IgK e IgA se representan en la Figura 1a-c. Como se mostró anteriormente, las regiones superpuestas generalmente pueden favorecer la integración conjunta cuando se inyectan conjuntamente en los ovocitos24. De este modo, la inserción de BAC6-VH3-11, un fragmento de AsiSI-AscI de 182 kb, con BAC3, un fragmento de Notl de 173 kb, y BAC3-1N12M5I8 (Annabel de Hu-Rata), un fragmento de Notl de 193 kb, condujo a la reconstitución de un loci de IgH transgénico completamente funcional en el genoma de la rata. Del mismo modo, el locus de IgK humano se integró mediante superposiciones homólogas. El locus de IgA humano se aisló intacto como un YAC de ~300 kb y también se insertó completamente en un cromosoma de rata. El éxito de la integración se identificó mediante un análisis de transcripción que mostró recombinaciones V(D)J-C desde el extremo más 5' hasta más 3' del locus inyectado. Se identificaron múltiples copias mediante qPCR (no se muestra) y es probable que ocurrieran integraciones de la cabeza a la cola. En todos los casos, los animales transgénicos con integraciones de un solo sitio se generaron mediante reproducción.
Reproducción para homocigosidad
La derivación de ratas transgénicas por microinyección de ADN en ovocitos, su reproducción e inmunización es comparable a la del ratón. Sin embargo, la tecnología de ZFN para obtener genes desactivados solo se ha informado recientemente11, 13. Se ha descrito el silenciamiento del locus de IgH de rata por eliminación de J<h>usando tecnología ZFN KO12 y se está preparando un manuscrito que describe el silenciamiento de los loci de IgL de rata, el direccionamiento de Cx y la eliminación de genes J-CA. Se derivaron múltiples fundadores con loci de Ig humano integrados y producción de Ig endógena silenciada; todos analizados por<p>C<r>y FISH con integración completa de translocus seleccionada y entrecruzada (Tabla 2). Varias ratas fundadoras portaban bajos números de copias de translocus; con el gen C de rata BAC en OmniRat probablemente integrado completamente en 5 copias según lo determinado por qPCR de productos de C|j y Ca (no mostrados). La identificación por FISH de la inserción de una sola posición en muchas líneas confirmó que la propagación o la integración múltiple de mezclas de BAC eran raras; una ventaja para la reproducción para homocigosidad, que se logró.
T l 2: Lín r n r : in r i n r n ni iv i n n
Las ratas que portaban los transloci humanos individuales, IgH, IgK e IgA, se cruzaron con éxito hasta la homocigosidad con ratas con locus de Ig KO. Esto produjo una nueva línea con múltiples características altamente eficiente (OmniRatMR) con regiones V<h>-D-J<h>humanas de más de 400 kb que contienen 22 V<h>funcionales y una región C de rata de ~116 kb. El reordenamiento del ADN, los niveles de expresión, el cambio de clase y la hipermutación fue muy similar entre los diferentes fundadores y comparable a las ratas tipo silvestre. Este es probablemente el resultado de la región constante de rata asociada que acomoda varios C y con la región 3'E (control de potenciador) en configuración auténtica.
Desarrollo de células B en el ambiente desactivado
Para evaluar si los loci de Ig humanos introducidos eran capaces de reconstituir el desarrollo de células B normales, se realizaron análisis de citometría de flujo. Se analizaron etapas de diferenciación particulares en linfocitos de bazo y médula ósea (Figura 2), que previamente mostraron una falta de desarrollo de células B en ratas JKO/JKO12, y ninguna expresión de IgL correspondiente en animales kKO/kKO, así como en AKO/AKO (datos no mostrados). Lo más sorprendente fue la recuperación completa del desarrollo de células B en OmniRat en comparación con animales de tipo silvestre, con números similares de linfocitos B220 (CD45R)+ en la médula ósea y el bazo. La expresión de IgM en una gran proporción de células B CD45R+ marcó un sistema inmunitario completamente reconstituido. La separación del tamaño y la forma de las células del bazo era indistinguible entre OmniRat y animales tipo silvestre y, por lo tanto, se restauró con éxito en las ratas transgénicas que expresan idiotipos humanos con la región C de rata. Además, la pequeña población de linfocitos sIgG+ estaba presente en OmniRat (Figura 2 derecha).
El análisis de otros tejidos de linfocitos OmniRat mostró que no se podían distinguir de los controles de tipo silvestre y, por ejemplo, los subconjuntos de células T se conservaron por completo (datos no mostrados), lo que respalda aún más la idea de que la función inmune óptima ha sido completamente restaurada.
Diversas transcripciones de cadenas H y L humanas
Se llevó a cabo un análisis transcripcional extenso usando linfocitos sanguíneos o células de bazo de ratas transgénicas con loci de Ig endógenos funcionales. La RT-PCR del grupo V<h>humano específico hacia los cebadores inversos C|j o C<y>mostró el uso de V<h>DJ<h>humano. Para el grupo de análisis de la cadena L, se usaron cebadores directos Vk o VA humanos específicos con cebadores inversos Ck o CA. Los resultados (Tabla 3) mostraron el uso de todos los genes de V<h>humanos integrados considerados funcionales27 en combinación con el uso diverso de segmentos D y todos los segmentos J<h>.
El análisis de cambio de clase e hipermutación (Figura 3) en el ambiente de JKO/JKO mostró que estos mecanismos esenciales y altamente deseables son completamente operativos en OmniRat. La amplificación de los productos de cambio de IgG de los PBL reveló una tasa extensa de mutación (> 2 cambios de aa) en la mayoría de las células, ~80%, y en cantidades casi iguales de cadenas H de y1 y Y2b. También se identificó un pequeño porcentaje de secuencias de cambio trans, y2a y 2c (Figura 3), lo que respalda la observación de que el translocus es igualmente activo, pero que proporciona (V<h>-D-J<h>) humanos, como el locus de IgH endógeno28. El número de secuencias de cadenas L de IgY e IgK humanas mutadas es de ~30% y, por lo tanto, considerablemente menor que las cadenas H de IgG. La razón es la amplificación general de la cadena L de todas las células productoras en lugar de la IgG+ o las células plasmáticas diferenciadas.
Niveles de Ig en suero
Para obtener información inequívoca sobre la producción de anticuerpos, se compararon la calidad y cantidad de Ig en suero de OmniRat y animales de tipo silvestre normales. La purificación de IgM e IgG separadas en SDS-PAGE en condiciones reductoras (Figura 4) mostró el tamaño esperado, ~75 kDa para |j, ~55 kDa para cadenas H de<y>, y ~25 kDa para cadenas L, que parecían indistinguibles entre los animales OmniRat y los de tipo silvestre. Se determinó que el rendimiento de Ig del suero estaba entre 100-300 jg/mL para IgM y 1-3 mg/mL para IgG para ambos varios OmniRat y animales de tipo silvestre. Sin embargo, como la purificación de IgG de rata en la proteína A o G se considera subóptima29, los niveles de Ig de rata pueden estar subrepresentados. Teniendo en cuenta que estas ratas jóvenes (~3 meses de edad) fueron alojadas en instalaciones libres de patógenos y no habían sido inmunizadas, esto se compara bien con los niveles de IgM de 0.5-1 mg/mL y los niveles de IgG de varios mg/mL reportados para ratas mantenidas en instalaciones abiertas30, 31. Curiosamente, se pudo visualizar la movilidad específica de clase de los isotipos de IgG de rata en SDS-PAGE como se demostró para monoclonales29. En las separaciones de IgG (Figura 4b), es visible una banda distinta inferior de cadena H de y en Ig de tipo silvestre pero no en OmniRat. Esta banda se ha atribuido a las cadenas H de y2a, que no están presentes en el translocus OmniRat (HC14). Como los niveles de IgG son similares entre los animales OmniRat y los de tipo silvestre, se asumió que el cambio de clase es igualmente eficiente. La razón por la que la falta de Cy2a en las OmniRat no es limitante puede ser que varias copias del locus transgénico aumentan favorablemente el nivel de productos de cambio. La purificación de IgK e IgA humanas mediante la captura con anti-cadena L también fue exitosa (Figura 4c y d) y las bandas de cadena H y L predichas tenían el tamaño esperado. La confirmación de los títulos de IgM/G también se obtuvo mediante ELISA, que determinó la distribución del isotipo de tipo silvestre y OmniRat e identificó cantidades comparables de IgG1 e IgG2b (no mostradas).
Una comparación directa de los títulos de la cadena L de Ig humana en las valoraciones en fase sólida (Figura 4e y f) reveló niveles 5-10 veces más bajos en OmniRat que en el suero humano. Sin embargo, esto se esperaba ya que el suero de control humano de adultos maduros a veces puede contener niveles de Ig más de 10 veces más altos que en niños hasta la adolescencia32, lo que sería similar a los títulos de IgK e IgA humanos en ratas jóvenes. Curiosamente, las ratas de tipo silvestre producen muy poca IgA endógena, mientras que las ratas transgénicas pueden expresar eficientemente ambos tipos de cadena L humana, IgK e IgA.
IgG completamente humana específica de antígeno
Se llevaron a cabo varias fusiones celulares, usando un esquema de inmunización rápida y recogiendo ganglios linfáticos o, alternativamente, usando inmunizaciones de refuerzo y células de bazo (Tabla 2). Por ejemplo, se obtuvo un número considerable de hibridomas estables después de una inmunización con progranulina humana (PG) y fusión de mieloma 22 días después. Aquí se observó crecimiento celular en -3.520 y ~1.600 pozos en clones de control SD y de hibridoma de OmniRat, respectivamente. La IgG específica anti-progranulina, caracterizada por mediciones de biosensores, fue producida por 148 clones de OmniRat. La dilución limitante, para excluir pozos mixtos, y repetir las mediciones de afinidad revelaron que los clones de OmniRat conservan su especificidad antigénica. Una comparación de las tasas de asociación y disociación de anticuerpos de clones de SD y de OmniRat mostró afinidades similares entre 0,3 y 74 nM (Tabla 4 y datos no mostrados). Las inmunizaciones únicas con receptor de hormona de crecimiento humano (hGHR), receptor TAU acoplado a hemocianina de lapa de ojo de cerradura (TAU/KLH), lisozima de huevo de gallina (HEL) u ovoalbúmina (OVA), seguido de fusiones de ganglios linfáticos también produjeron muchos anticuerpos humanos de alta afinidad a menudo en números similares en comparación con el tipo silvestre.
Además, las inmunizaciones de refuerzo convencionales con PG humana, hGHR, CD14 humano y HEL dieron como resultado altas afinidades (intervalo pM) de IgG con idiotipos humanos. Las OmniRat siempre mostraron el aumento esperado de títulos de 4 a 5 log de IgG sérica específica de antígeno, similar y tan pronunciada como las ratas de tipo silvestre (Tabla 4a). Aunque los resultados podrían variar de un animal a otro, se obtuvieron cantidades comparables de hibridomas que producen anticuerpos específicos de antígeno con afinidades similarmente altas de animales de tipo silvestre (SD y otras cepas) y OmniRat. En la Tabla 4b se presenta un resumen de los clones de fusión de células de bazo y ganglios linfáticos productores de IgG individuales, que muestran sus diversas características y afinidades de V<h>-D-J<h>humana, V<k>-J<k>humana o YA-J<y>. Los resultados de inmunización y fusión mostraron que las afinidades muy por debajo de 1 nM (determinado por análisis de biosensores) se obtuvieron frecuentemente de OmniRat inmunizadas con antígenos PG, CD14, Tau, HEL y OVA. En resumen, los hibridomas específicos de antígeno de OmniRat podrían generarse tan fácilmente como a partir de animales de tipo silvestre que producen numerosos mAb con afinidad sub-nanomolar incluso después de una única inmunización.
Tabla 4a. Divers s hibridomas de I G de rata es ecíficos de antí eno con idioti os com letamente humanos3
Discusión
Una combinación de genes humanos y de rata para ensamblar un nuevo locus de IgH ha dado como resultado una expresión casi normal de anticuerpos altamente eficiente con idiotipos humanos. Además, la integración de los loci de IgK e IgA humanos reveló que la Ig quimérica con especificidad completamente humana se produce fácilmente y que la asociación de regiones C de rata con cadenas L humanas no es perjudicial. Las ventajas de usar parte del locus de IgH de rata son que las regiones C específicas de la especie y los elementos de control del potenciador se mantienen en su configuración natural, trasplantando esencialmente solo la región VhDJh humana diversa. Además, la expresión de anticuerpos con regiones Fc de rata permite el ensamblaje normal del receptor de células B y la activación óptima de la ruta de señalización secuencia abajo esencial para el inicio de respuestas inmunes altamente eficientes. En particular, la calidad de una respuesta inmune al desafío del antígeno se basa en acciones combinadas de muchos componentes de señalización y modificadores asociados al receptor (véase: www.biocarta.com/pathfiles/h_bcrpathway.asp).
El enfoque de usar YAC y BAC, y el intercambio entre los dos, tiene ambas ventajas, velocidad y capacidad de verificar la integridad al hacer constructos de grandes regiones mediante la superposición de la homología. Varias ratas fundadoras portaban números bajos de copias de translocus; con el gen C de rata BAC en OmniRat probablemente integrado completamente en 5 copias según lo determinado por qPCR de productos de C|j y Ca (no mostrados). La identificación por FISH de la inserción de una sola posición en muchas líneas (véase Tabla 1d) confirmó que la propagación o la integración múltiple de mezclas de BAC eran raras; una ventaja para la reproducción para homocigosidad, que se logró. Poco se sabía si las regiones superpuestas extensas se integrarían, como para mantener la funcionalidad completa, esencial para la reorganización del ADN. Anteriormente, se ha informado una integración superpuesta, pero para regiones mucho más pequeñas (<100 kb)24, 33 y estos resultados sugieren que la integración deseada por homología o en tándem es un evento frecuente. Esto facilita sustancialmente la tecnología transgénica ya que no se debe realizar una laboriosa integración de YAC grandes en las células madre y su posterior derivación animal a partir de ellas debe realizarse1819. Además, la tecnología de ZFN, también realizada mediante inyección de ADN1112, produjo cepas de Ig KO fácilmente y bien podría ser la tecnología de elección futura para las alteraciones y el reemplazo de genes. La expresión del gen de Ig endógena silenciada en OmniRat, que contiene el loci de IgH humana-rata e IgL humana, tiene la ventaja de que ninguna Ig de rata interferente o indeseable podría dar lugar a productos mixtos. Curiosamente, la inmunización y la generación de hibridoma en OmniRat que todavía producían Ig de tipo silvestre revelaron que muchos productos eran completamente humanos, IgH humana-rata e IgL humana, a pesar de los Ig KO incompletos. En el presente documento, a pesar de la gran cantidad de genes de V de tipo silvestre, fue notable que los genes humanos introducidos se amplificaran fácilmente y, por lo tanto, demostraran ser competidores de expresión eficientes. Esto está en línea con la observación de niveles de expresión generalmente buenos de todos los transgenes integrados, que compiten favorablemente con los loci endógenos. Anteriormente en ratones que expresaban un repertorio de anticuerpos humanos, las Ig KO eran esenciales, ya que se encontró poca expresión de productos humanos cuando se libera Ig de tipo silsestre818
Es posible que la producción de loci de Ig completamente humanos incluso en ratones Ig KO sea subóptima ya que se requieren secuencias de acción cis específicas de la cepa para la expresión de alto nivel. En el ratón, una región potenciadora secuencia abajo de Ca juega un papel vital en la recombinación de cambio de clase34 y es probable que los elementos en esa región puedan facilitar la hipermutación23. Esta puede ser la razón por la cual las respuestas inmunes y la generación de diversos hibridomas a alta frecuencia pueden ser difíciles en ratones que transportan incluso un gran locus completamente humano35, 36 Como el locus quimérico de IgH humano-rata facilita los niveles cercanos de diferenciación y expresión de tipo silvestre en OmniRat, se puede concluir que la región C endógena de rata y, de hecho, la secuencia potenciadora 3' de -30 kb de Ca están proporcionando un control óptimo del locus para expresar y madurar genes de Vh humano. Otra región, C5 con su grupo de motivos de control 3'26, se ha eliminado del BAC quimérico de la región C porque el silenciamiento o la falta de IgD no parecen reducir la función inmune37 y las referencias aw lacias Normalmente, las células B maduras IgM+ IgD+ subregulan IgD tras el contacto con el antígeno, lo que inicia la recombinación de cambio de clase37. Por lo tanto, el cambio puede incrementarse sin el control de IgD, lo que está respaldado por el hallazgo de que las transcripciones de IgG y los niveles séricos son significativamente más bajos cuando la región C5 se retiene en constructos transgénicos (datos no mostrados).
La producción de IgG específica en OmniRat es particularmente alentadora ya que se descubrió que en diversas inmunizaciones, los mAb con diversidad en secuencia y epítopo, comparables a lo que se produjo en controles de tipo silvestre, podían aislarse mediante fusión de bazo y ganglios linfáticos. En el gen V, la diversidad de D y J fue la esperada y se encontró que casi todos los segmentos se usaron productivamente como se predijo27. Esto estaba en marcado contraste con los ratones que portaban transloci completamente humanos en los que la expansión clonal de unas pocas células B precursoras producía poca diversidad23. Dado que el número de genes de V trasplantados es solo aproximadamente la mitad de lo que se usa en humanos, se anticipó encontrar respuestas inmunes restringidas y diversidad limitada al comparar OmniRat con animales de tipo silvestre. Sin embargo, este no fue el caso y una comparación de la diversidad de CDR3 en más de 1000 clones (se pueden proporcionar secuencias) reveló las mismas diferencias de unión extensivas en OmniRat que en animales de tipo silvestre. Las pocas combinaciones idénticas de segmentos genéticos se diversificaron aún más mediante adiciones o eliminaciones de la secuencia N en las uniones Vh a D y/o D a Jh y también por hipermutación. Por lo tanto, está claro que la secuencia de la región C de la rata es altamente eficiente en el control de la reorganización del ADN y la expresión de V<h>DJ<h>humano. También se observó una gran diversidad para los loci de IgK; e IgA humanos introducidos, similar a lo que se ha mostrado previamente en ratones 222338 Por lo tanto, se ha superado una eficiencia sustancialmente reducida en la producción de anticuerpos humanos a partir de ratones en OmniRat, que diversifica las cadenas H reorganizadas de manera confiable y extensiva mediante cambio de clase e hipermutación para producir anticuerpos de alta afinidad en masa en lugar de ocasionalmente. El rendimiento de IgG transgénica y el nivel de hipermutación, utilizado de manera impresionante en mAb específicos de antígeno, mostraron que la diversificación clonal y el nivel de producción son similares entre OmniRat y animales de tipo silvestre. La generación rutinaria de especificidades de alta afinidad en el intervalo subnanomolar se logró incluso mediante diferentes inmunizaciones individuales y nuevamente se compara favorablemente con los animales de tipo silvestre; resultados que no se han mostrado en ratones transgénicos que producen repertorios de anticuerpos humanos a partir de loci completamente humanos18. En resumen, para maximizar la producción de anticuerpos humanos, un locus de IgH que utiliza genes humanos para la especificidad de anticuerpos pero genes de roedores para el control de la diferenciación y la alta expresión deben considerarse esenciales. La flexibilidad de la cadena L es una ventaja, ya que permite un ensamblaje de IgH/IgL humano altamente eficiente incluso cuando está presente Ig de tipo silvestre. Para aplicaciones terapéuticas, las cadenas H quiméricas se pueden convertir fácilmente en Ab completamente humanos mediante el reemplazo del gen de C sin comprometer la especificidad.
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Claims (9)

REIVINDICACIONES
1. Un roedor transgénico, en donde el roedor comprende en su línea germinal un locus de inmunoglobulina de cadena pesada que comprende, en orden 5' a 3', segmentos de genes de la región variable (V), de diversidad (D) y de unión (J) de la cadena pesada humana no reorganizada, una región constante de la cadena pesada de roedor, y un potenciador 3' de rata que comprende la secuencia establecida como SEQ ID NO: 1, en donde el locus de inmunoglobulina de la cadena pesada no comprende un gen de la región constante de inmunoglobulina humana, y en donde el roedor es un ratón o una rata
2. El roedor de acuerdo con la reivindicación 1, en donde los segmentos de genes de la región variable, de diversidad y de unión de la cadena pesada humana están contenidos en un segmento de ADN que es aproximadamente de 50 a 500 kb o mayor, o en donde los segmentos de genes de la región variable, de diversidad y de unión de la cadena pesada humana están contenidos en un segmento de ADN de hasta 2 megabases.
3. El roedor de acuerdo con la reivindicación 1 o de la reivindicación 2, en donde el roedor es una rata.
4. El roedor de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, en donde la región constante de la cadena pesada de roedor es una región Fc de roedor.
5. Un método de producción de un anticuerpo que tiene una región variable humana y una región constante de roedor que comprende la exposición de un roedor transgénico a un antígeno, en donde el roedor comprende en su línea germinal un locus de inmunoglobulina de cadena pesada que comprende, en orden 5' a 3', segmentos de genes de la región variable (V), de diversidad (D) y de unión (J) de la cadena pesada humana no reorganizada, una región constante de la cadena pesada de roedor, y un potenciador 3' de rata que comprende la secuencia establecida como SEQ ID NO: 1, en donde el locus de inmunoglobulina de cadena pesada no comprende un gen de la región constante de inmunoglobulina humana, en donde la exposición al antígeno es tal que el roedor transgénico produce un anticuerpo contra el antígeno, teniendo el anticuerpo una región variable de la cadena pesada humana y una región constante de la cadena pesada de roedor, y en donde el roedor es un ratón o una rata.
6. El método de acuerdo con la reivindicación 5, en donde los segmentos de genes de la región variable, de diversidad y de unión de la cadena pesada humana están contenidos en un segmento de ADN que es aproximadamente de 50 a 500 kb o mayor, o en donde los segmentos de genes de la región variable, de diversidad y de unión de la cadena pesada humana están contenidos en un segmento de ADN de hasta 2 megabases.
7. El método de acuerdo con la reivindicación 5 o la reivindicación 6, en donde el roedor es una rata.
8. El método de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 5 a 7, en donde la región constante de la cadena pesada de roedor es una región Fc de roedor.
9. El método de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 5 a 8, que comprende además el paso de preparar un hibridoma a partir del roedor transgénico, comprendiendo el hibridoma ADN que codifica el anticuerpo, en donde el hibridoma se prepara a partir del bazo del roedor transgénico.
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