ES2574905T3 - Uso de un agente para potenciar la resistencia a la enfermedad de la planta Cucurbitaceae y un procedimiento para controlar enfermedades de las plantas usando el agente - Google Patents

Uso de un agente para potenciar la resistencia a la enfermedad de la planta Cucurbitaceae y un procedimiento para controlar enfermedades de las plantas usando el agente Download PDF

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Abstract

Uso de ácido glutámico y treonina en un agente para potenciar la resistencia a una enfermedad de una planta Cucurbitaceae.

Description

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Treinta minutos y 90 minutos después del inicio de la reacción en el experimento usando cotiledones de pepino, 90 minutos y 120 minutos después del inicio de la reacción en los experimentos usando las hojas verdaderas de pepino, calabaza y melón, o 60 minutos y 120 minutos después del inicio de la reacción en el experimento usando las hojas verdaderas de sandía, se añadieron 100 µl de tampón Gly 1 M/NaOH (pH 10,2) a la mezcla de reacción para terminar la reacción. Se lograron la reacción y la terminación de la reacción en la placa de 96 pocillos en un volumen de reacción final de 200 µl. Después de retirar completamente las burbujas en la superficie de la mezcla de reacción, se midió la intensidad de fluorescencia usando un lector de placas para detección de fluorescencia, SpectraMax M2 (Molecular Devices). En esta fluorometría, se realizó la medida a 360 nm (excitación) y 450 nm (emisión). En base al valor estándar calculado usando 4MU (4-metilumbeliferona) como sustancia estándar, se definió la cantidad de la enzima que cataliza la reacción para 1 µmol del sustrato por 1 minuto como 1 unidad.
(4) Resultados
Las soluciones de un solo tipo de aminoácido a una concentración 100 mM para varios aminoácidos se aplicaron cada una a cotiledones de pepino, y se midió la actividad enzimática después de 48 horas. Los resultados se muestran en la fig. 1. Los valores del promedio y DE para los resultados de los experimentos llevados a cabo por triplicado se muestran en la fig. 1. Se descubrió que el glutamato de sodio (en adelante denominado "ácido glutámico"), serina y prolina tuvieron un efecto de incremento de la actividad quitinasa, que es un marcador de inducción de resistencia a la enfermedad.
Se aplicaron las soluciones de un solo tipo de aminoácido a una concentración 20 mM para varios aminoácidos a hojas verdaderas de pepino como cada solución o una mezcla de las soluciones, y se midió la actividad de la enzima después de 48 horas. Los resultados se muestran en la fig. 2. Los valores del promedio y DE para los resultados de los experimentos llevados a cabo por triplicado se muestran en la fig. 1. Se descubrió que la treonina tuvo un efecto de incremento de la actividad quitinasa, que es un marcador de inducción de resistencia a la enfermedad. También se descubrió que se potenció la actividad añadiendo alanina o treonina a ácido glutámico.
Las soluciones de un solo tipo de aminoácido a una concentración 20 mM para varios aminoácidos se aplicaron cada una a hojas verdaderas de calabaza, melón y sandía, y se midió la actividad de la enzima después de 48 horas. Los resultados se muestran en las figs. 3, 4 y 5, respectivamente. Los valores del promedio y DE para los resultados de los experimentos llevados a cabo por triplicado se muestran en las figs. 3, 4 y 5. Se descubrió que el ácido glutámico, treonina, serina y prolina tuvieron un efecto de incremento de la actividad quitinasa, que es un marcador de inducción de resistencia a la enfermedad.
Las soluciones mezcladas de ácido glutámico (5 mM o 10 mM) y alanina o treonina (2 mM o 5 mM) se aplicaron cada una a cotiledones de pepino, y se midió la actividad de la enzima después de 48 horas. Los resultados se muestran en la fig. 6. Los valores del promedio para los resultados de los experimentos llevados a cabo por duplicado se indican con barras, y los valores para cada resultado se indican con círculos. Mientras que apenas se observó el efecto con ácido glutámico solo a las concentraciones mencionadas anteriormente, el efecto se observó claramente con las soluciones mezcladas que contienen además alanina o treonina (2 mM o 5 mM).
Ejemplo 2: Efecto de controlar el moho pulverulento del pepino y la antracnosis del pepino
(1)
Procedimientos para el cultivo de plantas y rociado
Para el experimento, se usaron plantas de pepino (variedad: "Yotsuba") cultivadas durante dos semanas después de la siembra en abono para horticultura (Power Soil, Kureha Chemical Industry Co., Ltd.). Se cultivaron las plantas en una cámara de cultivo a una temperatura de 23 a 25 °C con periodicidad diurna de período de luz de 14 horas a una intensidad de luz de aproximadamente 100 µmol/m2/s. Cuarenta y ocho horas después de la aplicación foliar de cada solución de muestra, se inoculó cada uno de los microbios patógenos descritos a continuación por pulverización. A la solución para rociado, se le añadió Approach BI (Kao Corp.) en una cantidad 1/1000.
(2)
Evaluación para el control de moho pulverulento del pepino
Se aisló el hongo del moho pulverulento del pepino (Sphaerotheca fuliginea) de una superficie de una hoja crecida de forma natural en un campo. Se mantuvo el microbio patógeno obtenido por infección en una planta el día 11 después de la siembra cada 2 semanas en una incubadora termorregulada a 23-25 °C, y se usó en el siguiente experimento.
Las soluciones de ácido glutámico 50 mM o 20 mM, serina 20 mM y alanina 20 mM, y una solución mezclada de ácido glutámico 20 mM y alanina 20 mM se rociaron cada una sobre las primeras hojas verdaderas de plantas de pepino dos semanas después de la siembra, y 48 horas después del rociado, se inoculó el hongo del moho pulverulento del pepino (Erysiphe polygoni). Se realizó la inoculación pulverizando una suspensión de conidios (2 x 105 conidios/ml) sobre las superficies de las hojas. Se realizó la evaluación contando el número de colonias que surgieron en cada hoja tratada 10 días después de la inoculación. Los resultados se muestran en la fig. 7. Se muestran los valores de promedio y DE de los resultados de los experimentos llevados a cabo por de triplicado a
8 5
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sextuplicado. Se demostró que, en comparación con el resultado del control, la infección del microbio patógeno se pudo suprimir significativamente por la aplicación foliar de ácido glutámico, serina y la solución mezclada de ácido glutámico y alanina. Por otra parte, también se demostró que la infección del microbio patógeno no se pudo controlar por la aplicación foliar de alanina.
(3) Evaluación del control de la antracnosis del pepino
Una solución de ácido glutámico 50 mM, una solución mezclada de ácido glutámico 20 mM y alanina 20 mM, y soluciones de ácido glutámico 20 mM, serina 20 mM, y treonina 20 mM se pulverizaron cada una sobre las primeras hojas verdaderas de plantas de pepino dos semanas después de la siembra, y 48 horas después de la pulverización, se inoculó el hongo de antracnosis de la planta Cucurbitaceae (Colletotrichum lagenarium (syn: C. orbiculare). Se realizó la inoculación pulverizando una suspensión de conidios (1 x 105 conidios/ml) sobre las superficies de las hojas. Después de la inoculación por pulverización, se infectó el hongo de antracnosis de la planta Cucurbitaceae en las plantas, dejando las plantas inoculadas colocadas en un lugar oscuro y húmedo durante 24 horas. Se realizó la evaluación contando el número de lesiones patológicas que surgieron en cada hoja tratada 7 días después de la inoculación. Los resultados se muestran en la fig. 8. Se muestran los valores de promedio y DE de cada experimento llevado a cabo por triplicado. Como se muestra en la fig. 8, se demostró que, en comparación con el resultado del control, la infección del microbio patógeno se pudo suprimir significativamente por la aplicación foliar de ácido glutámico, una solución mezclada de ácido glutámico y alanina, serina, o treonina.
Ejemplo 3: Efecto de control de la antracnosis del melón (1)
Procedimientos para el cultivo de plantas y rociado
Para el experimento, se usaron plantas de melón (variedad: "Lenon") cultivadas durante dos semanas después de la siembra en abono para horticultura (Power Soil, Kureha Chemical Industry Co., Ltd.). Se cultivaron las plantas en una cámara de cultivo a una temperatura de 23 a 25 °C con periodicidad diurna de período de luz de 14 horas a una intensidad de luz de aproximadamente 100 µmol/m2/s. Cuarenta y ocho horas después de la aplicación foliar de cada solución de muestra, se inoculó el microbio patógeno descrito a continuación por pulverización. A las soluciones para rociado, se le añadió Approach BI (Kao Corp.) en una cantidad 1/1000.
(2) Evaluación para el control de la antracnosis del melón
Las soluciones de ácido glutámico 20 mM, serina 20 mM y treonina 20 mM se pulverizaron cada una sobre las primeras hojas verdaderas de plantas de melón dos semanas después de la siembra, y 48 horas después de la pulverización, se inoculó el hongo de la antracnosis de la planta Cucurbitaceae [Colletotrichum lagenarium] (syn.: C. orbiculare). Se realizó la inoculación pulverizando una suspensión de conidios (1 x 105 conidios/ml) sobre las superficies de las hojas. Después de la inoculación por pulverización, se infectó el hongo de antracnosis de la planta Cucurbitaceae en las plantas, dejando las plantas inoculadas colocadas en un lugar oscuro y húmedo durante 24 horas. Se realizó la evaluación comparando la proporción de brote numéricamente indicado de la enfermedad como la gravedad de la enfermedad. Esto es, se clasificó la gravedad en las 4 etapas siguientes indicadas con las puntuaciones de la misma [0: ningún síntoma, 1: brote en menos de un 20 % de las hojas, 2: brote en un 20 % o más de las hojas, 3: atizonado parcial]. Los resultados se muestran en la tabla 1. Se aplicó cada solución a tres individuos, y se muestra cada una de las gravedades de los individuos. Como se muestra en la tabla 1, se demostró que, en comparación con el control, la infección del microbio patógeno se pudo suprimir significativamente por la aplicación foliar de ácido glutámico, treonina o serina.
Tabla 1
Solución de tratamiento
Proporción de brote en cada individuo
Control
2 2 3
Glu 20 mM
1 1 1
Thr 20 mM
1 1 1
Ser 20 mM
1 1 1
Ejemplo 4: Efecto de la aplicación en la rizosfera de aminoácido para el control de la antracnosis de la planta Cucurbitaceae en pepino
Se sumergieron raíces de plantas de pepino dos semanas después de la siembra en una solución de ácido glutámico 10 mM, y 48 horas después de la inmersión, se inoculó el hongo de antracnosis de la planta Cucurbitaceae [Colletotrichum lagenarium] (syn.: C. orbiculare). Se realizó la inoculación pulverizando una suspensión de conidios (1 x 105 conidios/ml) sobre las superficies de las hojas. Después de la inoculación por pulverización, se infectó el hongo de antracnosis de la planta Cucurbitaceae en las plantas, dejando las plantas
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Families Citing this family (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP6007360B2 (ja) * 2011-03-24 2016-10-12 国立研究開発法人農業・食品産業技術総合研究機構 青枯病抵抗性誘導剤及び青枯病防除方法
JP6049352B2 (ja) * 2012-08-23 2016-12-21 国立大学法人京都大学 炭疽病菌による宿主感染を抑制する活性を評価する方法、及び前記活性を有する物質をスクリーニングする方法
JP5963143B2 (ja) * 2012-11-07 2016-08-03 国立大学法人広島大学 きゅうりうどん粉病の防除薬及び防除方法
JP6306252B1 (ja) * 2017-07-31 2018-04-04 タキイ種苗株式会社 セイヨウカボチャ植物のうどんこ病抵抗性マーカー、うどんこ病抵抗性セイヨウカボチャ植物、それを用いたうどんこ病抵抗性セイヨウカボチャ植物の製造方法、およびセイヨウカボチャ植物へのうどんこ病抵抗性の付与方法
CN107810950B (zh) * 2017-10-19 2020-12-04 广西壮族自治区金秀瑶族自治县科学技术情报研究所 一种八角炭疽病的防治方法
JP7375743B2 (ja) * 2018-03-05 2023-11-08 味の素株式会社 植物の病害抵抗性誘導用または植物の病害防除用の組成物
EP3984362A4 (en) 2019-06-17 2023-07-12 Resonac Corporation PLANT VITALIZERS WITH CELLO-OLIGOSACCHARIDE AND USE OF THIS PLANT VITALIZERS
JPWO2020255932A1 (es) * 2019-06-17 2020-12-24
TWI768374B (zh) * 2019-06-17 2022-06-21 日商昭和電工股份有限公司 含有胺基酸或其鹽與寡醣之植物活力劑及其使用
CN111387195B (zh) * 2020-04-21 2021-05-28 吴文君 一种防治植物白粉病的方法
CN111937884B (zh) * 2020-08-24 2022-01-07 江苏明德立达作物科技有限公司 一种用于黄瓜的植物生长调节组合物、制备方法及其应用
CN114009433A (zh) * 2021-12-13 2022-02-08 云南硕农农业科技有限公司 一种能防治植物白粉病的组合物及其应用

Family Cites Families (23)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP3078893B2 (ja) * 1991-08-30 2000-08-21 中島 滋江 植物成長促進、鮮度維持剤
JP3386489B2 (ja) 1992-05-29 2003-03-17 大日本製薬株式会社 ファイトアレキシンの誘導剤
JPH0680530A (ja) 1992-09-01 1994-03-22 Mitsui Toatsu Chem Inc 植物病害防除方法
JP2846610B2 (ja) 1995-11-02 1999-01-13 株式会社植物防御システム研究所 稲にファイトアレキシンの生成を誘導するエリシターのスクリーニング方法及び稲病害防除剤
JP4041186B2 (ja) 1997-07-09 2008-01-30 独立行政法人科学技術振興機構 ファイトアレキシン誘導剤
JP4287515B2 (ja) 1998-09-22 2009-07-01 博 河合 植物病害の予防用組成物およびその使用方法
US6331505B1 (en) * 1998-10-29 2001-12-18 Emerald Bioagriculture Corporation Method for increasing plant productivity using glutamic acid and glycolic acid
US6124241A (en) * 1998-10-29 2000-09-26 Auxien Corporation Method for increasing plant productivity using glutamic acid and glycolic acid
JP3515935B2 (ja) * 2000-01-14 2004-04-05 株式会社耕山ハイテク研究所 植物成長促進剤
CN1155543C (zh) 2000-06-16 2004-06-30 广西化工生物技术研究所 氨基酸复合液体肥
JP2002204623A (ja) * 2001-01-09 2002-07-23 Toho Leo Co 果物等の植物の糖度を上昇させる糖度調整剤と、その糖度調整剤を用いた糖度上昇方法
JP4833448B2 (ja) 2001-07-17 2011-12-07 株式会社テイエス植物研究所 植物病害防除方法
CN1328769A (zh) 2001-07-26 2002-01-02 张世家 一种含有水溶性壳聚糖的农用组合物
JP3781733B2 (ja) * 2002-03-20 2006-05-31 昭和電工株式会社 キトサンを含む植物の耐病性及び成長を向上する組成物
JP2006219372A (ja) 2003-01-17 2006-08-24 Meiji Seika Kaisha Ltd 植物病害防除剤およびその剤を用いた植物病害防除法
CN100486419C (zh) 2004-12-28 2009-05-13 中国农业科学院蔬菜花卉研究所 防治植物真菌病害的方法
CN1316893C (zh) 2006-01-06 2007-05-23 胡小安 一种植物生长调节剂
JP2008044854A (ja) * 2006-08-10 2008-02-28 Kyoei Seika:Kk 植物成長活性剤およびその植物成長活性剤を用いた植物生育方法
JP4741547B2 (ja) * 2007-04-26 2011-08-03 学校法人東京農業大学 梅漬調味廃液の農業利用法
CN101182270B (zh) 2007-10-22 2011-03-09 李海涛 农作物用有机酸无机盐复合剂及其制备方法
CN101142925B (zh) 2007-11-02 2011-06-29 祖小力 一种植物抗逆增产制剂
EP2241186B1 (en) 2008-01-11 2014-05-07 Ajinomoto Co., Inc. Use of disease resistance enhancer for plants and method of controlling plant disease by using the same
JP2012010694A (ja) * 2010-06-01 2012-01-19 Ajinomoto Co Inc 植物のアレロパシー効果、および/またはファイトアレキシン生産の増強用薬剤

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