ES2367128T3 - Procedimiento para preparar una variante del antígeno protector de superficie de erysipelothrix rhusiopathiae en e. coli. - Google Patents
Procedimiento para preparar una variante del antígeno protector de superficie de erysipelothrix rhusiopathiae en e. coli. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2367128T3 ES2367128T3 ES05709866T ES05709866T ES2367128T3 ES 2367128 T3 ES2367128 T3 ES 2367128T3 ES 05709866 T ES05709866 T ES 05709866T ES 05709866 T ES05709866 T ES 05709866T ES 2367128 T3 ES2367128 T3 ES 2367128T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- amino acid
- terminus
- substituted
- encompasses
- signal sequence
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
- 241000186810 Erysipelothrix rhusiopathiae Species 0.000 title claims abstract description 67
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 47
- 239000000427 antigen Substances 0.000 title description 4
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 title description 4
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 title description 4
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims abstract description 320
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims abstract description 242
- 150000001413 amino acids Chemical group 0.000 claims abstract description 105
- 210000003000 inclusion body Anatomy 0.000 claims abstract description 71
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 claims abstract description 70
- DHMQDGOQFOQNFH-UHFFFAOYSA-N Glycine Chemical group NCC(O)=O DHMQDGOQFOQNFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 65
- 108010076504 Protein Sorting Signals Proteins 0.000 claims abstract description 60
- 238000006467 substitution reaction Methods 0.000 claims abstract description 55
- AYFVYJQAPQTCCC-UHFFFAOYSA-N Threonine Natural products CC(O)C(N)C(O)=O AYFVYJQAPQTCCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 33
- 239000004473 Threonine Substances 0.000 claims abstract description 33
- 239000004471 Glycine Substances 0.000 claims abstract description 25
- 101710194807 Protective antigen Proteins 0.000 claims abstract description 19
- AYFVYJQAPQTCCC-GBXIJSLDSA-N L-threonine Chemical group C[C@@H](O)[C@H](N)C(O)=O AYFVYJQAPQTCCC-GBXIJSLDSA-N 0.000 claims abstract description 18
- ZDXPYRJPNDTMRX-UHFFFAOYSA-N glutamine Natural products OC(=O)C(N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 17
- 230000005847 immunogenicity Effects 0.000 claims abstract description 17
- 125000000404 glutamine group Chemical group N[C@@H](CCC(N)=O)C(=O)* 0.000 claims abstract description 15
- 125000003630 glycyl group Chemical group [H]N([H])C([H])([H])C(*)=O 0.000 claims abstract description 13
- 125000000341 threoninyl group Chemical group [H]OC([H])(C([H])([H])[H])C([H])(N([H])[H])C(*)=O 0.000 claims abstract description 11
- 230000002829 reductive effect Effects 0.000 claims abstract description 9
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 claims description 114
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 claims description 113
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims description 46
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 claims description 19
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 claims description 18
- 230000035772 mutation Effects 0.000 claims description 18
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 claims description 15
- 230000001681 protective effect Effects 0.000 claims description 15
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 14
- 238000012217 deletion Methods 0.000 claims description 12
- 230000037430 deletion Effects 0.000 claims description 12
- 238000011084 recovery Methods 0.000 claims description 9
- FWMNVWWHGCHHJJ-SKKKGAJSSA-N 4-amino-1-[(2r)-6-amino-2-[[(2r)-2-[[(2r)-2-[[(2r)-2-amino-3-phenylpropanoyl]amino]-3-phenylpropanoyl]amino]-4-methylpentanoyl]amino]hexanoyl]piperidine-4-carboxylic acid Chemical compound C([C@H](C(=O)N[C@H](CC(C)C)C(=O)N[C@H](CCCCN)C(=O)N1CCC(N)(CC1)C(O)=O)NC(=O)[C@H](N)CC=1C=CC=CC=1)C1=CC=CC=C1 FWMNVWWHGCHHJJ-SKKKGAJSSA-N 0.000 claims description 8
- 230000002163 immunogen Effects 0.000 claims description 7
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims description 7
- 239000013604 expression vector Substances 0.000 claims description 5
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 claims description 5
- 239000002904 solvent Substances 0.000 claims description 4
- 230000001131 transforming effect Effects 0.000 claims description 4
- 239000004480 active ingredient Substances 0.000 claims description 2
- HSRJKNPTNIJEKV-UHFFFAOYSA-N Guaifenesin Chemical group COC1=CC=CC=C1OCC(O)CO HSRJKNPTNIJEKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 abstract 1
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 description 220
- 235000001014 amino acid Nutrition 0.000 description 68
- 229940024606 amino acid Drugs 0.000 description 44
- 239000013612 plasmid Substances 0.000 description 44
- 125000003275 alpha amino acid group Chemical group 0.000 description 30
- 239000000047 product Substances 0.000 description 24
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 22
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 description 21
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 16
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 15
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 15
- 238000002415 sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis Methods 0.000 description 11
- 108091008146 restriction endonucleases Proteins 0.000 description 10
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 10
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 10
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 9
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 8
- 230000003053 immunization Effects 0.000 description 8
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 8
- 230000008569 process Effects 0.000 description 8
- 238000000527 sonication Methods 0.000 description 8
- 239000013589 supplement Substances 0.000 description 8
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 8
- 238000010367 cloning Methods 0.000 description 7
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 7
- 238000002741 site-directed mutagenesis Methods 0.000 description 7
- 125000000539 amino acid group Chemical group 0.000 description 6
- 238000002649 immunization Methods 0.000 description 6
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 6
- 239000011534 wash buffer Substances 0.000 description 6
- 108091081062 Repeated sequence (DNA) Proteins 0.000 description 5
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 5
- 208000024949 Swine Erysipelas Diseases 0.000 description 5
- 210000004899 c-terminal region Anatomy 0.000 description 5
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 5
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 5
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 description 5
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 4
- 102000016943 Muramidase Human genes 0.000 description 4
- 108010014251 Muramidase Proteins 0.000 description 4
- 108010062010 N-Acetylmuramoyl-L-alanine Amidase Proteins 0.000 description 4
- 241000282898 Sus scrofa Species 0.000 description 4
- 229920004890 Triton X-100 Polymers 0.000 description 4
- XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N Urea Chemical compound NC(N)=O XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 229940024546 aluminum hydroxide gel Drugs 0.000 description 4
- SMYKVLBUSSNXMV-UHFFFAOYSA-K aluminum;trihydroxide;hydrate Chemical compound O.[OH-].[OH-].[OH-].[Al+3] SMYKVLBUSSNXMV-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 4
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 4
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 4
- 238000001962 electrophoresis Methods 0.000 description 4
- -1 glycine; amino acid Chemical class 0.000 description 4
- 229960000274 lysozyme Drugs 0.000 description 4
- 239000004325 lysozyme Substances 0.000 description 4
- 235000010335 lysozyme Nutrition 0.000 description 4
- 239000013598 vector Substances 0.000 description 4
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 4
- QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol;hydron;chloride Chemical compound Cl.OCC(N)(CO)CO QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 229920000936 Agarose Polymers 0.000 description 3
- 241001198387 Escherichia coli BL21(DE3) Species 0.000 description 3
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 238000012408 PCR amplification Methods 0.000 description 3
- 239000013504 Triton X-100 Substances 0.000 description 3
- AVKUERGKIZMTKX-NJBDSQKTSA-N ampicillin Chemical compound C1([C@@H](N)C(=O)N[C@H]2[C@H]3SC([C@@H](N3C2=O)C(O)=O)(C)C)=CC=CC=C1 AVKUERGKIZMTKX-NJBDSQKTSA-N 0.000 description 3
- 229960000723 ampicillin Drugs 0.000 description 3
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 3
- 238000003776 cleavage reaction Methods 0.000 description 3
- NKLPQNGYXWVELD-UHFFFAOYSA-M coomassie brilliant blue Chemical compound [Na+].C1=CC(OCC)=CC=C1NC1=CC=C(C(=C2C=CC(C=C2)=[N+](CC)CC=2C=C(C=CC=2)S([O-])(=O)=O)C=2C=CC(=CC=2)N(CC)CC=2C=C(C=CC=2)S([O-])(=O)=O)C=C1 NKLPQNGYXWVELD-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 3
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 3
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 3
- 230000009977 dual effect Effects 0.000 description 3
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 3
- 235000010482 polyoxyethylene sorbitan monooleate Nutrition 0.000 description 3
- 229920000053 polysorbate 80 Polymers 0.000 description 3
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 3
- 230000006798 recombination Effects 0.000 description 3
- 230000007017 scission Effects 0.000 description 3
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 3
- 238000007920 subcutaneous administration Methods 0.000 description 3
- GUBGYTABKSRVRQ-XLOQQCSPSA-N Alpha-Lactose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)O[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-XLOQQCSPSA-N 0.000 description 2
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 2
- 241000534630 Brevibacillus choshinensis Species 0.000 description 2
- 241000283153 Cetacea Species 0.000 description 2
- 238000007400 DNA extraction Methods 0.000 description 2
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 description 2
- WHUUTDBJXJRKMK-UHFFFAOYSA-N Glutamic acid Natural products OC(=O)C(N)CCC(O)=O WHUUTDBJXJRKMK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N Lactose Natural products OC[C@H]1O[C@@H](O[C@H]2[C@H](O)[C@@H](O)C(O)O[C@@H]2CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N 0.000 description 2
- 108010052285 Membrane Proteins Proteins 0.000 description 2
- 108091034117 Oligonucleotide Proteins 0.000 description 2
- 241000286209 Phasianidae Species 0.000 description 2
- 239000012722 SDS sample buffer Substances 0.000 description 2
- 206010070834 Sensitisation Diseases 0.000 description 2
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 2
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 2
- 108020005038 Terminator Codon Proteins 0.000 description 2
- 230000003321 amplification Effects 0.000 description 2
- 230000000692 anti-sense effect Effects 0.000 description 2
- 230000000890 antigenic effect Effects 0.000 description 2
- 206010003246 arthritis Diseases 0.000 description 2
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 2
- 239000004202 carbamide Substances 0.000 description 2
- 235000013330 chicken meat Nutrition 0.000 description 2
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 description 2
- 239000000356 contaminant Substances 0.000 description 2
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 2
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 2
- 235000013922 glutamic acid Nutrition 0.000 description 2
- 239000004220 glutamic acid Substances 0.000 description 2
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 2
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 2
- HNDVDQJCIGZPNO-UHFFFAOYSA-N histidine Natural products OC(=O)C(N)CC1=CN=CN1 HNDVDQJCIGZPNO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229940031551 inactivated vaccine Drugs 0.000 description 2
- 238000001802 infusion Methods 0.000 description 2
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 2
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 2
- 238000004255 ion exchange chromatography Methods 0.000 description 2
- BPHPUYQFMNQIOC-NXRLNHOXSA-N isopropyl beta-D-thiogalactopyranoside Chemical compound CC(C)S[C@@H]1O[C@H](CO)[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O BPHPUYQFMNQIOC-NXRLNHOXSA-N 0.000 description 2
- 239000008101 lactose Substances 0.000 description 2
- 229940124590 live attenuated vaccine Drugs 0.000 description 2
- 229940023012 live-attenuated vaccine Drugs 0.000 description 2
- 239000002480 mineral oil Substances 0.000 description 2
- 235000010446 mineral oil Nutrition 0.000 description 2
- 238000002703 mutagenesis Methods 0.000 description 2
- 231100000350 mutagenesis Toxicity 0.000 description 2
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 description 2
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 2
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 2
- 230000007918 pathogenicity Effects 0.000 description 2
- 239000003755 preservative agent Substances 0.000 description 2
- 238000011160 research Methods 0.000 description 2
- 230000028327 secretion Effects 0.000 description 2
- 230000008313 sensitization Effects 0.000 description 2
- 238000013207 serial dilution Methods 0.000 description 2
- 239000003381 stabilizer Substances 0.000 description 2
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 2
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 description 2
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 2
- 230000009466 transformation Effects 0.000 description 2
- QCDWFXQBSFUVSP-UHFFFAOYSA-N 2-phenoxyethanol Chemical compound OCCOC1=CC=CC=C1 QCDWFXQBSFUVSP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 1
- 108010011667 Ala-Phe-Ala Proteins 0.000 description 1
- XRUJOVRWNMBAAA-NHCYSSNCSA-N Ala-Phe-Ala Chemical compound OC(=O)[C@H](C)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@@H](N)C)CC1=CC=CC=C1 XRUJOVRWNMBAAA-NHCYSSNCSA-N 0.000 description 1
- 239000004475 Arginine Substances 0.000 description 1
- 101710117545 C protein Proteins 0.000 description 1
- 108020004705 Codon Proteins 0.000 description 1
- 208000035473 Communicable disease Diseases 0.000 description 1
- 102000012410 DNA Ligases Human genes 0.000 description 1
- 108010061982 DNA Ligases Proteins 0.000 description 1
- 230000006820 DNA synthesis Effects 0.000 description 1
- 238000002965 ELISA Methods 0.000 description 1
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 1
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 1
- 206010015146 Erysipeloid Diseases 0.000 description 1
- 241000186811 Erysipelothrix Species 0.000 description 1
- 206010015149 Erysipelothrix infections Diseases 0.000 description 1
- 108700005480 Erysipelothrix rhusiopathiae SpaA Proteins 0.000 description 1
- 241000672609 Escherichia coli BL21 Species 0.000 description 1
- ODKSFYDXXFIFQN-BYPYZUCNSA-N L-arginine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCCN=C(N)N ODKSFYDXXFIFQN-BYPYZUCNSA-N 0.000 description 1
- CKLJMWTZIZZHCS-REOHCLBHSA-N L-aspartic acid Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CC(O)=O CKLJMWTZIZZHCS-REOHCLBHSA-N 0.000 description 1
- AGPKZVBTJJNPAG-WHFBIAKZSA-N L-isoleucine Chemical compound CC[C@H](C)[C@H](N)C(O)=O AGPKZVBTJJNPAG-WHFBIAKZSA-N 0.000 description 1
- FFEARJCKVFRZRR-BYPYZUCNSA-N L-methionine Chemical compound CSCC[C@H](N)C(O)=O FFEARJCKVFRZRR-BYPYZUCNSA-N 0.000 description 1
- QIVBCDIJIAJPQS-VIFPVBQESA-N L-tryptophane Chemical compound C1=CC=C2C(C[C@H](N)C(O)=O)=CNC2=C1 QIVBCDIJIAJPQS-VIFPVBQESA-N 0.000 description 1
- 239000006142 Luria-Bertani Agar Substances 0.000 description 1
- 102000018697 Membrane Proteins Human genes 0.000 description 1
- 238000009004 PCR Kit Methods 0.000 description 1
- 206010033733 Papule Diseases 0.000 description 1
- 206010040047 Sepsis Diseases 0.000 description 1
- 241000282887 Suidae Species 0.000 description 1
- 102400000368 Surface protein Human genes 0.000 description 1
- 108010008038 Synthetic Vaccines Proteins 0.000 description 1
- QIVBCDIJIAJPQS-UHFFFAOYSA-N Tryptophan Natural products C1=CC=C2C(CC(N)C(O)=O)=CNC2=C1 QIVBCDIJIAJPQS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 1
- PEJLNXHANOHNSU-UHFFFAOYSA-N acridine-3,6-diamine;10-methylacridin-10-ium-3,6-diamine;chloride Chemical compound [Cl-].C1=CC(N)=CC2=NC3=CC(N)=CC=C3C=C21.C1=C(N)C=C2[N+](C)=C(C=C(N)C=C3)C3=CC2=C1 PEJLNXHANOHNSU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000001154 acute effect Effects 0.000 description 1
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 1
- 239000002671 adjuvant Substances 0.000 description 1
- 238000001042 affinity chromatography Methods 0.000 description 1
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 1
- 239000003513 alkali Substances 0.000 description 1
- 239000012670 alkaline solution Substances 0.000 description 1
- WNROFYMDJYEPJX-UHFFFAOYSA-K aluminium hydroxide Chemical compound [OH-].[OH-].[OH-].[Al+3] WNROFYMDJYEPJX-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- ILRRQNADMUWWFW-UHFFFAOYSA-K aluminium phosphate Chemical compound O1[Al]2OP1(=O)O2 ILRRQNADMUWWFW-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 229940024545 aluminum hydroxide Drugs 0.000 description 1
- ODKSFYDXXFIFQN-UHFFFAOYSA-N arginine Natural products OC(=O)C(N)CCCNC(N)=N ODKSFYDXXFIFQN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960003121 arginine Drugs 0.000 description 1
- 229960003589 arginine hydrochloride Drugs 0.000 description 1
- 235000003704 aspartic acid Nutrition 0.000 description 1
- 230000002238 attenuated effect Effects 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 1
- 229960000686 benzalkonium chloride Drugs 0.000 description 1
- 229960003872 benzethonium Drugs 0.000 description 1
- UREZNYTWGJKWBI-UHFFFAOYSA-M benzethonium chloride Chemical compound [Cl-].C1=CC(C(C)(C)CC(C)(C)C)=CC=C1OCCOCC[N+](C)(C)CC1=CC=CC=C1 UREZNYTWGJKWBI-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- CADWTSSKOVRVJC-UHFFFAOYSA-N benzyl(dimethyl)azanium;chloride Chemical compound [Cl-].C[NH+](C)CC1=CC=CC=C1 CADWTSSKOVRVJC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- OQFSQFPPLPISGP-UHFFFAOYSA-N beta-carboxyaspartic acid Natural products OC(=O)C(N)C(C(O)=O)C(O)=O OQFSQFPPLPISGP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 210000004556 brain Anatomy 0.000 description 1
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 1
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 description 1
- 239000002738 chelating agent Substances 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 230000001684 chronic effect Effects 0.000 description 1
- 230000015271 coagulation Effects 0.000 description 1
- 238000005345 coagulation Methods 0.000 description 1
- 238000009833 condensation Methods 0.000 description 1
- 230000005494 condensation Effects 0.000 description 1
- 238000012790 confirmation Methods 0.000 description 1
- 239000012636 effector Substances 0.000 description 1
- 238000004520 electroporation Methods 0.000 description 1
- 206010014665 endocarditis Diseases 0.000 description 1
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 1
- 239000000945 filler Substances 0.000 description 1
- 229960004279 formaldehyde Drugs 0.000 description 1
- 108020001507 fusion proteins Proteins 0.000 description 1
- 102000037865 fusion proteins Human genes 0.000 description 1
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 1
- 238000001502 gel electrophoresis Methods 0.000 description 1
- 230000002068 genetic effect Effects 0.000 description 1
- 229960000789 guanidine hydrochloride Drugs 0.000 description 1
- PJJJBBJSCAKJQF-UHFFFAOYSA-N guanidinium chloride Chemical compound [Cl-].NC(N)=[NH2+] PJJJBBJSCAKJQF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000002209 hydrophobic effect Effects 0.000 description 1
- 229910052588 hydroxylapatite Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000000568 immunological adjuvant Substances 0.000 description 1
- 230000006872 improvement Effects 0.000 description 1
- 239000000411 inducer Substances 0.000 description 1
- 238000007918 intramuscular administration Methods 0.000 description 1
- 238000007912 intraperitoneal administration Methods 0.000 description 1
- 229960000310 isoleucine Drugs 0.000 description 1
- AGPKZVBTJJNPAG-UHFFFAOYSA-N isoleucine Natural products CCC(C)C(N)C(O)=O AGPKZVBTJJNPAG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000003902 lesion Effects 0.000 description 1
- 244000144972 livestock Species 0.000 description 1
- 239000006166 lysate Substances 0.000 description 1
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 description 1
- 230000002503 metabolic effect Effects 0.000 description 1
- 229930182817 methionine Natural products 0.000 description 1
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 1
- 238000010369 molecular cloning Methods 0.000 description 1
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 1
- 150000007523 nucleic acids Chemical group 0.000 description 1
- 230000005257 nucleotidylation Effects 0.000 description 1
- 230000036961 partial effect Effects 0.000 description 1
- XYJRXVWERLGGKC-UHFFFAOYSA-D pentacalcium;hydroxide;triphosphate Chemical compound [OH-].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O XYJRXVWERLGGKC-UHFFFAOYSA-D 0.000 description 1
- 239000008194 pharmaceutical composition Substances 0.000 description 1
- 229960005323 phenoxyethanol Drugs 0.000 description 1
- WVDDGKGOMKODPV-ZQBYOMGUSA-N phenyl(114C)methanol Chemical compound O[14CH2]C1=CC=CC=C1 WVDDGKGOMKODPV-ZQBYOMGUSA-N 0.000 description 1
- 229920001223 polyethylene glycol Polymers 0.000 description 1
- 239000000244 polyoxyethylene sorbitan monooleate Substances 0.000 description 1
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 description 1
- 229940068968 polysorbate 80 Drugs 0.000 description 1
- 230000002335 preservative effect Effects 0.000 description 1
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 1
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 1
- 230000002035 prolonged effect Effects 0.000 description 1
- 239000003223 protective agent Substances 0.000 description 1
- 229940023143 protein vaccine Drugs 0.000 description 1
- 210000001938 protoplast Anatomy 0.000 description 1
- 230000009257 reactivity Effects 0.000 description 1
- 229940124551 recombinant vaccine Drugs 0.000 description 1
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 1
- 238000012827 research and development Methods 0.000 description 1
- 230000000717 retained effect Effects 0.000 description 1
- 230000002441 reversible effect Effects 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 1
- 230000001235 sensitizing effect Effects 0.000 description 1
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 1
- 230000037432 silent mutation Effects 0.000 description 1
- 238000005063 solubilization Methods 0.000 description 1
- 230000007928 solubilization Effects 0.000 description 1
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 1
- 238000011146 sterile filtration Methods 0.000 description 1
- 239000004094 surface-active agent Substances 0.000 description 1
- 208000024891 symptom Diseases 0.000 description 1
- RTKIYNMVFMVABJ-UHFFFAOYSA-L thimerosal Chemical compound [Na+].CC[Hg]SC1=CC=CC=C1C([O-])=O RTKIYNMVFMVABJ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 229940033663 thimerosal Drugs 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- 239000012137 tryptone Substances 0.000 description 1
- 229940045136 urea Drugs 0.000 description 1
- 238000001262 western blot Methods 0.000 description 1
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 description 1
- 206010048282 zoonosis Diseases 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/195—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P19/00—Drugs for skeletal disorders
- A61P19/02—Drugs for skeletal disorders for joint disorders, e.g. arthritis, arthrosis
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/04—Antibacterial agents
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P37/00—Drugs for immunological or allergic disorders
- A61P37/02—Immunomodulators
- A61P37/04—Immunostimulants
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P43/00—Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
Abstract
Un procedimiento para preparar una variante de la proteína SpaA del antígeno protector de superficie de Erysipelothrix rhusiopathiae o de una forma reducida de la misma, la proteína ΔSpaA, donde al menos aproximadamente 1/3 del extremo C de la proteína SpaA es suprimido, teniendo dicha variante inmunogenicidad y siendo expresada en E. coli en forma de cuerpos de inclusión, que comprende mutar un gen que codifica dicha proteína SpaA o ΔSpaA de manera que se pueda introducir una sustitución de aminoácido en la secuencia de aminoácidos de dicha proteína SpaA o ΔSpaA, permitiendo que el gen mutado resultante sea expresado en E. coli, y seleccionando dicha variante que formaba cuerpos de inclusión entre las variantes expresadas, donde dicha sustitución de aminoácido es una o una combinación de más de una seleccionada del grupo que consiste en (1) a (7) descritos más abajo: (1) el 69 o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina; (2) el 154 o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina; (3) el 203 o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por treonina; (4) el 214 o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glutamina; (5) el 253 o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por treonina; (6) el 278 o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina; y (7) el 531 o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina; o donde dicha sustitución de aminoácido es una seleccionada del grupo que consiste en (a) a (h) descritos más abajo: (a) el 69 o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina; (b) el 203 o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por treonina; (c) el 214 o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glutamina; (d) el 278 o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina; (e) el 531 o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina; (f) el 154 o y el 203 o aminoácidos del extremo N terminal que abarca la secuencia señal son sustituidos por glicina y treonina, respectivamente; (g) el 214 o y el 253 o aminoácidos del extremo N terminal que abarca la secuencia señal son sustituidos por glutamina y treonina, respectivamente; y (h) el 69 o , el 154 o y el 203 o aminoácidos del extremo N terminal que abarca la secuencia señal son sustituidos por glicina, glicina y treonina, respectivamente.
Description
La presente invención hace referencia a un procedimiento para preparar una variante del antígeno protector de superficie de Erysipelothrix rhusiopathiae (también referido en adelante como "SpaA") con Escherichia coli como anfitrión. Más concretamente, la presente invención hace referencia a un procedimiento para preparar una variante de SpaA o una forma reducida de SpaA (también referida en adelante como "ΔSpaA"), donde al menos aproximadamente 1/3 del extremo C de la proteína SpaA es suprimido, con la introducción de una sustitución de aminoácidos como se define en las reivindicaciones, donde dicha variante puede ser expresada como cuerpos de inclusión insolubles cuando es expresada dentro de las células de E. coli, y a una variante de una proteína SpaA o ΔSpaA recombinante obtenida por medio de dicho procedimiento.
La erisipela porcina es una enfermedad de suídos causada por la infección con Erysipelothrix rhusiopathiae donde el súido infectado padece síntomas tales como sepsis en los casos agudos, pápulas en los casos subagudos, o endocarditis y artritis en los casos crónicos. Se ha informado de que alrededor de 3.000 súidos al año tienen la enfermedad, lo que representa un perjuicio enorme para un ganadero. Erysipelothrix rhusiopathiae es patógeno para animales de consumo tales como jabalíes salvajes, ballenas, pollos y pavos, además de súidos y está especificado como una de las enfermedades infecciosas a supervisar en el Protective Act of Livestock Diseases. La erisipela porcina también es una zoonosis que ocasiona erisipeloide en seres humanos y tiene importancia desde el punto de vista de la higiene de la carne. Existen numerosos serotipos de Erysipelothrix rhusiopathiae, de los cuales los serotipos 1 y 2 causan la mayor parte de las erisipelas porcinas en súidos.
Para la protección frente a infecciones de erisipela porcina, se han utilizado hasta ahora vacunas vivas atenuadas, esto es, vacunas vivas liofilizadas preparadas utilizando la cepa Koganei que es una cepa atenuada de Erysipelothrix rhusiopathiae preparada subcultivando Erysipelothrix rhusiopathiae virulento en un medio con un suplemento de acriflavina durante un período prolongado; las vacunas inactivadas, esto es, las vacunas de bacterias preparadas tratando un cultivo de Erysipelothrix rhusiopathiae virulento con formalina y haciendo que todas las células y los productos extracelulares sean adsorbidos sobre gel de hidróxido de aluminio; y las vacunas de componentes, esto es, aquellas que comprenden una fracción de proteínas de superficie no purificadas de las células extraídas de células completas con una solución acuosa de álcali. Se piensa que las vacunas vivas atenuadas son mucho menos costosas puesto que pueden ser eficaces con una única administración en una pequeña cantidad. No obstante, se indica que también resultan problemáticas ya que son patógenas en ratones induciendo artritis, muestran efectos secundarios graves en súidos con un bajo nivel de anticuerpo o súidos SPF, y la cepa de la vacuna se aísla de la lesión de súidos que padecen erisipela porcina.
En cuanto a un nuevo tipo de vacunas, están en marcha la investigación y el desarrollo de vacunas recombinantes por medio del uso de técnicas de recombinación genética. Galan y Timony inmunizaron ratones con un producto lisado de E. coli transfectado con un fago recombinante que expresa genes de una porción del genoma de Erysipelothrix rhusiopathiae y realizaron un ensayo de sensibilización con Erysipelothrix rhusiopathiae para observar que de 14 a 17% de los ratones inmunizados se libraron de morir después de la infección. Además, revelaron que las proteínas codificadas por los genes tenían un peso molecular de 66, 64, y 43 kDa a partir de su reactividad con un suero inmunitario contra el producto lisado y demostraron que estas proteínas podían ser antígenos protectores para la infección por Erysipelothrix rhusiopathiae (véase la referencia no de patente Núm. 1).
Makino et al. expresaron un gen que codificaba una proteína de superficie con un peso molecular de 64 kDa (denominada "SpaA") a partir de la cepa tama 96 de Erysipelothrix rhusiopathiae de tipo 2 en E. coli, inmunizaron ratones con las células vivas de E. coli recombinante resultantes, y realizaron un ensayo de sensibilización con Erysipelothrix rhusiopathiae para demostrar que la proteína SpaA tenía actividad protectora frente a la infección. También revelaron que la proteína SpaA tenía una secuencia de 606 residuos aminoácido donde, en el extremo N-terminal, se encuentra un péptido señal que consiste en 29 residuos aminoácido y en el extremo C-terminal se encuentran ocho secuencias de repetición homólogas que consisten en 20 aminoácidos exceptuando la 8ª repetición que consiste en 19 aminoácidos (véase la referencia no de patente 2).
Imada et al. investigaron la proteína SpaA de la cepa Fujisawa de tipo 1 correspondiente a la proteína SpaA anterior y un gen que codificaba dicha proteína para revelar que dicha proteína SpaA de la cepa Fujisawa de tipo 1 es una que tiene un peso molecular de 69 kDa que tiene una secuencia de 626 residuos aminoácido con una secuencias de repetición homóloga más, esto es, nueve, en su extremo C terminal, en comparación con la proteína SpaA de tipo 1, consistiendo la 9ª repetición en 19 aminoácidos. Demostraron que una proteína de fusión de SpaA completa, SpaA con una deleción de las secuencias de repetición homólogas en el extremo C terminal, o SpaA con una deleción de una porción de las secuencias N terminal y las secuencias de repetición homólogas del extremo C terminal, con un hexámero de histidina, mostraba un efecto protector frente a la infección (véanse las referencias no de patente 3 y 4).
Watanabe et al. también informaron de que un polipéptido de 46,5 kDa preparado suprimiendo las secuencias de repetición homólogas en el extremo C terminal y una secuencia señal de secreción en el extremo N terminal de la proteína SpaA de Erysipelothrix rhusiopathiae podría ser un antígeno protector para la infección (antígeno protector de 46,5 kDa; denominado "46,5 KPA")(véase, p. ej., la referencia de patente 1).
Por otra parte, se ha intentado promover la productividad de una proteína candidato para vacunas. Por ejemplo, existe un informe de que 46,5 KPA podía ser expresada satisfactoriamente para la secreción fuera de las células utilizando Brevibacillus choshinensis como célula anfitriona (véase, p. ej., la referencia de Patente 2). Con este sistema de expresión, aproximadamente el 50% de la proteína expresada se vuelve insoluble debido a su coagulación en el cultivo. De acuerdo con el informe, la purificación de dicho 46,5 KPA se realizó filtrando un cultivo con una membrana de ultrafiltración, suspendiendo la materia insoluble recuperada sobre la membrana en una solución alcalina, y recuperando 46,5 KPA. De este modo, este procedimiento de purificación requiere al menos tres etapas: (1) condensación por medio de ultrafiltración en condiciones de neutras a alcalinas suaves (pH 7 a 9,5); (2) recuperación de una fracción de filtración por medio de ultrafiltración en condiciones fuertemente alcalinas (pH 10,0 a 12,0); y (3) purificación de la fracción de ultrafiltración mediante cromatografía de intercambio iónico.
Cuando el gen de SpaA es expresado en E. coli, la mayor parte de la proteína puede ser expresada como una proteína soluble y por consiguiente puede no aplicarse el procedimiento de purificación para la materia insoluble, descrito más arriba. Un cultivo puede contener, además de la proteína SpaA de interés, diferentes contaminantes tales como desechos celulares de E. coli, componentes de un medio de cultivo, productos metabólicos producidos durante el cultivo, etc. No es fácil recuperar y purificar eficazmente la proteína SpaA soluble de interés a partir de tales mezclas de contaminantes. Kesik et al. describen que se pueden utilizar los cuerpos de inclusión de bacterias recombinantes como un sistema novedoso para la liberación de antígenos para vacuna por la ruta oral (Kesik et al., Immunology Letters 91 (2004), 197-204). En general, una vacuna para animales, a diferencia de una vacuna para seres humanos, no sería aceptada por un ganadero a menos que tenga un precio bajo así como una elevada pureza y una elevada calidad. Por consiguiente, un fabricante de una vacuna para animales siempre requiere una mejora en el procedimiento de producción y un procedimiento de recuperación y purificación que permita un tratamiento a gran escala y una reducción del coste de producción.
referencia de Patente 1: publicación de patente Japonesa Núm. 2000-279179 referencia de Patente 2: publicación de patente Japonesa Núm. 2002-34568 referencia no de Patente 1: Garan, J. E. et al., (1990) Infect. Immun., 58. págs. 3116-3121 referencia no de Patente 2: Makino, S. et al., (1998) Microb. Pathog. 25, pág. 101-109 referencia no de Patente 3: Imada, Y. et al. (1999) Proc. Jpn. Pig. Vet. Soc. 34, p.12-$ referencia no de Patente 4: Imada, Y. et al. (1999) Infect. Immun. 67 (9), págs. 4376-4382
Como se ha descrito más arriba, cuando el gen SpaA de Erysipelothrix rhusiopathiae es expresado en E. coli o Brevibacillus choshinensis como anfitrión, la proteína es expresada en forma de una proteína SpaA soluble o una mezcla de proteínas solubles e insolubles, lo que hace engorrosa su producción y no permite esperar un elevado rendimiento.
La presente invención se ha completado en vista de la necesidad basada en los antecedentes técnicos o industriales descrita más arriba. De este modo, un objeto de la presente invención es proporcionar un procedimiento para preparar SpaA o una forma reducida de SpaA (ΔSpaA) donde al menos aproximadamente 1/3 de la proteína SpaA C terminal es suprimido, que comprende introducir una sustitución de aminoácidos como se define en las reivindicaciones en la secuencia de aminoácidos de la proteína SpaA o ΔSpaA de manera que la proteína SpaA o ΔSpaA intrínsecamente soluble pueda ser expresada como cuerpos de inclusión en el interior de las células de E. coli, y recuperar y purificar los cuerpos de inclusión.
Otro objeto de de la presente invención es proporcionar una proteína SpaA o ΔSpaA obtenida introduciendo las sustituciones de aminoácidos definidas en las reivindicaciones con una pureza elevada.
Los autores de la presente invención han continuado investigando asiduamente con el fin de lograr los objetos descritos más arriba y como consecuencia han encontrado que existen clones que pueden formar cuerpos de inclusión insolubles entre las células de E. coli en las cuales es expresada la proteína SpaA o ΔSpaA, que se producía una sustitución de aminoácidos en un sitio específico de la secuencia de aminoácidos de la proteína SpaA
o ΔSpaA que formaba los cuerpos de inclusión, y que la introducción artificial de dicha sustitución de aminoácidos puede permitir la acumulación de proteína SpaA o ΔSpaA soluble en forma de cuerpos de inclusión dentro de las células. Además, los autores de la presente invención han descubierto que la proteína SpaA o ΔSpaA soluble conservaba la inmunogenicidad incluso después de la formación de los cuerpos de inclusión para completar de ese modo la presente invención. A modo de ejemplo, se pueden formar cuerpos de inclusión cuando el aminoácido 69ª de la proteína SpaA o ΔSpaA de la cepa SE-9 es sustituido por glicina; el aminoácido 214o aminoácido es sustituido por glutamina; el aminoácido 278o es sustituido por glicina; el aminoácido 531o es sustituido por glicina; los aminoácidos 154o y 203o son sustituidos por glicina y treonina, respectivamente; los aminoácidos 214o y 253o son sustituidos por glutamina y treonina, respectivamente; o los aminoácidos 69o, 154o y 203o son sustituidos por glicina, glicina y treonina, respectivamente.
La presente invención proporciona generalmente un procedimiento para preparar una variante de la proteína SpaA del antígeno protector de superficie de Erysipelothrix rhusiopathiae o de una forma de SpaA reducida (ΔSpaA) donde al menos aproximadamente 1/3 del extremo C de la proteína SpaA es suprimido, teniendo dicha variante inmunogenicidad y siendo expresada en E. coli en forma de cuerpos de inclusión, que comprende mutar un gen que codifica dicha proteína SpaA o ΔSpaA de manera que la sustitución de aminoácidos definida en las en las reivindicaciones pueda ser introducida en la secuencia de aminoácidos de dicha proteína SpaA o ΔSpaA, permitiendo que el gen mutado resultante sea expresado en E. coli, y seleccionando tales variantes que formaban los cuerpos de inclusión entre las variantes expresadas. De este modo, el procedimiento de acuerdo con la presente invención se caracteriza porque la proteína SpaA o ΔSpaA, cuya propiedad intrínsecamente soluble ha dificultado la recuperación y la purificación de dicha proteína, puede ser expresada en E. coli en forma de cuerpos de inclusión preparando una variante de la proteína SpaA o ΔSpaA por medio de la sustitución de aminoácidos como se define en las reivindicaciones que permite la expresión de dicha proteína en forma de cuerpos de inclusión insolubles para facilitar de ese modo la recuperación y la purificación de dicha proteína.
En una realización, el procedimiento de la presente invención comprende las siguientes etapas (A) a (D):
- 1.
- (A) introducir una mutación en un gen que codifica una proteína AspA o ΔSpaA del antígeno protector de superficie de Erysipelothrix rhusiopathiae soluble de manera que se pueda introducir la sustitución de aminoácidos;
- 2.
- (B) transformar las células de E. coli con un vector de expresión que contiene el gen mutado resultante;
- 3.
- (C) seleccionar las células de E. coli que formaron los cuerpos de inclusión insolubles entre las células de E. coli transformadas anteriores; y
- 4.
- (D) cultivar las células de E. coli seleccionadas para la recuperación de los cuerpos de inclusión en el interior de las células.
Para confirmar que una variante de la proteína SpaA o ΔSpaA recombinante obtenida mediante el procedimiento de la presente invención conserva una actividad protectora (inmunogenicidad) frente a la infección por Erysipelothrix rhusiopathiae, la variante puede ser sometida adicionalmente a las siguientes etapas (E) a (F):
- 1.
- (E) administrar los cuerpos de inclusión o los cuerpos de inclusión tratados con un agente solubilizante a un animal sensible a la infección por Erysipelothrix rhusiopathiae y después atacar a dicho animal con una cepa virulenta de Erysipelothrix rhusiopathiae; y
- 2.
- (F) observar la supervivencia o muerte del animal sensible a Erysipelothrix rhusiopathiae para evaluar de ese modo la presencia de una actividad protectora (inmunogenicidad) frente a la infección por Erysipelothrix rhusiopathiae.
El procedimiento de la presente invención se caracteriza porque la proteína SpaA o ΔSpaA, que s intrínsecamente soluble, puede ser convertida en su variante que puede ser expresada en E. coli en forma de cuerpos de inclusión insolubles para facilitar de ese modo la recuperación y la purificación de dicha proteína. De acuerdo con el procedimiento de la presente invención, para la expresión de la proteína SpaA o ΔSpaA en forma de cuerpos de inclusión insolubles, un gen que codifica la proteína SpaA o ΔSpaA es mutado para introducir una sustitución de aminoácidos como se define en las reivindicaciones en la secuencia de aminoácidos de dicha proteína SpaA o ΔSpaA. Entre las variantes de la proteína SpaA o ΔSpaA preparadas de este modo con la sustitución de aminoácidos se incluyen aquellas que pueden ser expresadas formando cuerpos de inclusión, que después son seleccionados. Por consiguiente, la mutación introducida en un gen que codifica la proteína SpaA o ΔSpaA o la sustitución de aminoácidos causada en la secuencia de aminoácidos de dicha proteína SpaA o ΔSpaA puede ser cualquier mutación o sustitución de aminoácidos con tal que de como resultado una variante de la proteína SpaA o ΔSpaA que pueda ser expresada formando cuerpos de inclusión.
La sustitución de aminoácidos de acuerdo con la presente invención incluye una o una combinación de más de una seleccionadas del grupo que consiste en (1) a (7) como se describe más abajo:
- 1.
- (1) el 69o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina;
- 2.
- (2) el 154o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina;
- 3.
- (3) el 203o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por treonina;
- 4.
- (4) el 214o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glutamina;
- 5.
- (5) el 253o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por treonina;
- 6.
- (6) el 278o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina; y
- 7.
- (7) el 531o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina.
Una sustitución de aminoácidos adicional de acuerdo con la presente invención incluye: el 1541o y el 203o aminoácidos del extremo N terminal que abarca la secuencia señal son sustituidos por glicina y treonina, respectivamente; el 214o y el 253o aminoácidos del extremo N terminal que abarca la secuencia señal son sustituidos por glutamina y treonina, respectivamente; y el 69o, el 154o y el 203o aminoácidos del extremo N terminal que abarca la secuencia señal son sustituidos por glicina, glicina y treonina, respectivamente.
La secuencia de aminoácidos de la proteína SpaA o ΔSpaA puede ser la secuencia representada en el SEQ ID NO: 2 o la secuencia representada en el SEQ ID NO: 2 con una deleción en su extremo C terminal donde se puede introducir una sustitución de aminoácidos deseada, en particular las descritas más arriba.
En otra realización, la presente invención proporciona una proteína SpaA o ΔSpaA de la variante del antígeno protector de superficie de Erysipelothrix rhusiopathiae que es inmunogénica y se expresa en los cuerpos de inclusión de E. coli. La variante de la proteína SpaA o ΔSpaA de la presente invención se prepara preferiblemente mediante el procedimiento descrito en la presente memoria. El término "una variante de la proteína SpaA o ΔSpaA del antígeno protector de superficie de Erysipelothrix rhusiopathiae" según se utiliza en la presente memoria hace referencia a una proteína insoluble mutada a partir de la proteína SpaA o ΔSpaA del antígeno protector de superficie de Erysipelothrix rhusiopathiae soluble por medio de una sustitución de aminoácidos específica. El término "inmunogenicidad" o "inmunogénico" representa la capacidad de inducir la producción de un anticuerpo protector o la capacidad de proteger frente a la infección por Erysipelothrix rhusiopathiae.
En otra realización más, la presente invención proporciona una composición que comprende como ingrediente activo una variante de la proteína SpaA o ΔSpaA del antígeno protector de superficie de Erysipelothrix rhusiopathiae de la presente invención. La variante de la proteína SpaA o ΔSpaA de la presente invención contenida en dicha composición se prepara preferiblemente por medio del procedimiento descrito en la presente memoria.
En otra realización más, la presente invención proporciona un gen que codifica una variante de la proteína SpaA o ΔSpaA del antígeno protector de superficie de Erysipelothrix rhusiopathiae que es inmunogénica y se expresa en E. coli en forma de cuerpos de inclusión. El gen que codifica una variante de la proteína SpaA o ΔSpaA de la presente invención se prepara preferiblemente mediante el procedimiento descrito en la presente memoria. El gen que codifica una variante de la proteína SpaA o ΔSpaA de la presente invención incluye al menos una sustitución de nucleótido como se define en las reivindicaciones en comparación con un gen que codifica la proteína SpaA o ΔSpaA. Dicha al menos una sustitución de nucleótido no obstante no debe ser una mutación silenciosa si no que debe inducir al menos una sustitución de aminoácido (mutación puntual) en la proteína SpaA o ΔSpaA como se define en las reivindicaciones.
Un ejemplo de un gen que codifica una variante de la proteína SpaA o ΔSpaA de la presente invención incluye, por ejemplo, una secuencia de nucleótidos o una secuencia de nucleótidos con una deleción de una porción del extremo 3', que incluye una o una combinación de más de una sustitución de nucleótidos en el SEQ ID NO: 1 seleccionadas del grupo que consiste en (1) a (7) descritas más abajo:
- 1.
- (1) el 206o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es G;
- 2.
- (2) el 461o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es G;
- 3.
- (3) el 608o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es C;
- 4.
- (4) el 642o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es G;
- 5.
- (5) el 758o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es C;
- 6.
- (6) el 833o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es G; y
- 7.
- (7) el 1591o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es G.
Otro ejemplo de un gen que codifica una variante de la proteína SpaA o ΔSpaA de la presente invención incluye, por ejemplo, una secuencia de nucleótidos o una secuencia de nucleótidos con una deleción de una porción del extremo 3', que incluye cualquiera de las sustituciones de nucleótidos del SEQ ID NO: 1 seleccionada del grupo que consiste en (a) a (h) descritas más abajo:
- 1.
- (a) el 206o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es G;
- 2.
- (b) el 608o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es C;
- 3.
- (c) el 642o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es G;
- 4.
- (d) el 833o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es G; y
- 5.
- (e) el 1591o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es G;
- 6.
- (f) el 461o y 608o nucleótidos de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 son G y C, respectivamente;
- 7.
- (g) el 642o y el 758o nucleótidos de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 son G y C, respectivamente; y
- 8.
- (h) el 206o, el 461o y el 608o nucleótidos de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 son G, G y C, respectivamente.
En otra realización más, la presente invención proporciona un método para utilizar una variante de la proteína SpaA
o ΔSpaA del antígeno protector de superficie de Erysipelothrix rhusiopathiae de la presente invención como una vacuna para la erisipela porcina. La variante de la proteína SpaA o ΔSpaA de la presente invención utilizada en dicho método se prepara preferiblemente mediante el procedimiento descrito en la presente memoria.
El Erysipelothrix rhusiopathiae para su uso en la preparación de una variante de la proteína SpaA o ΔSpaA del antígeno protector de superficie de Erysipelothrix rhusiopathiae de la presente invención incluye, por ejemplo, la cepa Fujisawa, la cepa Koganai para el tipo 1, y la cepa Tama 96, la cepa SE-9 o la cepa Shizuoka 63 para el tipo 2, pero en la presente invención se puede utilizar el gen SpaA de cualquier cepa de Erysipelothrix rhusiopathiae.
De acuerdo con la presente invención, se proporciona un procedimiento para expresar la proteína SpaA o ΔSpaA soluble en E. coli en forma de cuerpos de inclusión insolubles. La expresión en E. coli en forma de cuerpos de inclusión permite la purificación de la proteína SpaA o ΔSpaA fácilmente con una elevada pureza simplemente mediante procedimientos de centrifugación y lavado. Los cuerpos de inclusión de la proteína SpaA o ΔSpaA obtenidos de este modo, después de la solubilización, tienen una pureza y una inmunogenicidad suficientes para su uso como vacuna solamente si son diluidos. Así, se proporciona un procedimiento simple y eficaz para preparar la vacuna de proteína SpaA o ΔSpaA. Con el uso de la proteína SpaA o ΔSpaA obtenida mediante este procedimiento, se puede reducir la oportunidad de una infección por Erysipelothrix rhusiopathiae en seres humanos en comparación con un método para preparar una vacuna inactivada o una vacuna de componentes que emplea Erysipelothrix rhusiopathiae como sustancia de partida. La presente invención también elude los problemas de la restauración de la patogenicidad en Erysipelothrix rhusiopathiae, los graves efectos secundarios encontrados en súidos con un bajo título de anticuerpo o en súidos SPF, y similares.
La Fig. 1 muestra un vector de expresión para la proteína SpaA o ΔSpaA. a: Plásmido pET11d/SpaA en el que se inserta un gen que codifica la proteína SpaA derivada de la cepa SE-9 de Erysipelothrix rhusiopathiae; b: Plásmido pET11d/ΔSpaA en el que se inserta un gen que codifica la proteína ΔSpaA.
La Fig. 2A muestra los resultados de la SDS-PAGE realizada con una proteína SpaA derivada de la cepa SE-9 de Erysipelothrix rhusiopathiae y una proteína ΔSpaA. M: Marcador; Calle 1: cultivo de E. coli que no expresa una proteína foránea; Calle 2: cultivo de E. coli que expresa la proteína SpaA; Calle 3: cultivo de E. coli que expresa la proteína ΔSpaA.
La Fig. 2B muestra los resultados de la SDS-PAGE realizada con una proteína ΔSpaA derivada de Erysipelothrix rhusiopathiae. M: Marcador; Calle 1: cultivo de E. coli que no expresa una proteína foránea; Calle 2: cultivo de E. coli que expresa la proteína ΔSpaA derivada de la cepa Fujisawa; Calle 3: cultivo de E. coli que expresa la proteína ΔSpaA derivada de la cepa Tama 96; Calle 4: cultivo de E. coli que expresa la proteína ΔSpaA derivada de Koganai; Calle 5: cultivo de E. coli que expresa la proteína ΔSpaA derivada de la cepa SE-9.
La Fig. 3 muestra los resultados de la SDS-PAGE realizada con proteínas ΔSpaA soluble e insoluble (cuerpos de inclusión) derivadas de la cepa SE-9 de Erysipelothrix rhusiopathiae. M: Marcador; Calle 1: sobrenadante de centrifugación de cultivo de E. coli que expresa la proteína ΔSpaA soluble sometido a sonicación; Calle 2: productos precipitados de la centrifugación de cultivo de E. coli que expresa la proteína ΔSpaA soluble sometido a sonicación; Calle 3: sobrenadante de la centrifugación de cultivo de E. coli que expresa la proteína ΔSpaA insoluble sometido a sonicación; Calle 4: productos precipitados de la centrifugación de cultivo de E. coli que expresa la proteína ΔSpaA insoluble sometido a sonicación.
La Fig. 4A muestra los sitios mutados y los sitios de escisión para las enzimas de restricción encontrados en el gen SpaA en los plásmidos extraídos de células transformantes de E. coli (tres clones; Núm. 1, Núm. 2 y Núm. 3) que expresan la proteína ΔSpaA insoluble (cuerpos de inclusión) de la comparación con el SEQ ID NO: 7.
La Fig. 4B muestra los sitios mutados y los sitios de escisión para las enzimas de restricción encontrados en el gen SpaA en el plásmido extraído de células transformantes de E. coli (un clon; Núm. 4) que expresa la proteína SpaA insoluble (cuerpos de inclusión) de la comparación con el SEQ ID NO: 7.
La Fig. 5 muestra los resultados de la SDS-PAGE realizada con proteínas SpaA soluble e insoluble (cuerpos de inclusión) derivadas de la cepa SE-9 de Erysipelothrix rhusiopathiae. M: Marcador; Calle 1: sobrenadante de centrifugación del cultivo de E. coli que expresa la proteína SpaA soluble sometido a sonicación; Calle 2: productos precipitados de la centrifugación del cultivo de E. coli que expresa la proteína SpaA soluble sometido a sonicación; Calle 3: sobrenadante de centrifugación del cultivo de E. coli que expresa la proteína SpaA insoluble sometido a sonicación; Calle 4: productos precipitados de la centrifugación del cultivo de E. coli que expresa la proteína SpaA insoluble sometido a sonicación.
La Fig. 6 muestra los resultados de la SDS-PAGE realizada con proteínas SpaA y ΔSpaA insolubles (cuerpos de inclusión) derivadas de la cepa SE-9 de Erysipelothrix rhusiopathiae después de la purificación. M: Marcador; Calle
1: proteína SpaA; Calle 2: proteína ΔSpaA.
La presente invención se caracteriza por un procedimiento para expresar la proteína SpaA o ΔSpaA en E. coli en forma de cuerpos de inclusión sustituyendo un residuo aminoácido de un sitio específico de la secuencia de aminoácidos como se define en las reivindicaciones de dicha proteína por un aminoácido específico, y preparar de ese modo la proteína SpaA o ΔSpaA.
Para Erysipelothrix rhusiopathiae, existen principalmente dos serotipos que muestran una fuerte patogenicidad para los súidos que se clasifican en dos tipos 1 y 2. El tipo 1 incluye la cepa Fujisawa y la cepa Koganai, mientras el tipo 2 incluye la cepa Tama 96, la cepa SE-9 y la cepa Shizuoka 63. No obstante, se puede utilizar un gen de SpaA de cualquier cepa de Erysipelothrix rhusiopathiae en la presente invención. Estas células se pueden hacer crecer con los medios de cultivo disponibles en el mercado de acuerdo con las instrucciones adjuntas. Por ejemplo, se puede suspender una cantidad fijada de células en Caldo de Infusión de Cerebro Corazón con un suplemento de Tween 80 al 0,1% e incubar la suspensión a 37°C durante 16 a 48 horas.
Se puede obtener un gen que codifica la proteína SpaA o ΔSpaA mediante PCR con los ADN extraídos de las células como se ha descrito más arriba como molde utilizando cebadores diseñados a partir de la secuencia (SEQ ID NO: 1) descrita por Imada, Y. et al. (1999) Infect. Immun. 67 (9), págs. 4376-4382. El SEQ ID NO: 1 representa una secuencia de nucleótidos completa del gen de SpaA derivado de la cepa Fujisawa mientras el SEQ ID NO: 2 representa una secuencia de aminoácidos de una proteína SpaA completa derivada de la cepa Fujisawa que abarca un péptido señal. El SEQ ID NO: 7 representa una porción de una secuencia de nucleótidos completa del gen de SpaA derivado de la cepa SE-9, que corresponde a la secuencia desde los residuos de los nucleótidos 107o a 1854o del SEQ ID NO: 1. Se puede preparar un ADN molde con un kit de extracción de ADN disponible en el mercado, p. ej. Isoplant (NIPPON GENE CO., LTD.), de acuerdo con las instrucciones adjuntas. Los cebadores de la PCR pueden ser fácilmente asequibles a partir de servicios contratados para la síntesis de ADN, p. ej. QIAGEN, mediante solicitud, y se añaden preferiblemente a una secuencia de un sitio de escisión para una enzima de restricción apropiado en el extremo 5'. Específicamente, se pueden utilizar ADN sintéticos en los que se añade un sitio NcoI al SEQ ID NO: 2 o se añade un sitio BamHI al SEQ ID NO: 4 o al SEQ ID NO: 5. Los cebadores representados en el SEQ ID NO: 3 y el SEQ ID NO: 5 se pueden utilizar para la amplificación de un fragmento de ADN que codifica la proteína SpaA mientras los cebadores representados en el SEQ ID NO: 3 y el SEQ ID NO: 4 se pueden utilizar para la amplificación de un fragmento de ADN que codifica la proteína ΔSpaA. El fragmento de ADN resultante que codifica la proteína SpaA o ΔSpaA tendrá una adición de doce nucleótidos que codifica una Met derivada de la enzima de restricción NcoI y los tres aminoácidos del extremo C (Ala-Phe-Ala). El fragmento de ADN que codifica la proteína ΔSpaA puede ser un gen de SpaA parcial hasta el nucleótido 1260o y que codifica una forma reducida de la proteína SpaA con la deleción de 207 residuos de aminoácido en el extremo C. La proteína ΔSpaA es una proteína en la que se ha suprimido al menos aproximadamente 1/3 del extremo C de la proteína SpaA. El tamaño y el sitio de la proteína ΔSpaA en la que se ha suprimido una porción de la proteína SpaA se puede determinar arbitrariamente según demande la ocasión alterando una posición de las secuencias de los cebadores. La reacción de PCR se puede realizar con un kit LA-Taq disponible en el mercado (TAKARA SHUZO CO.), un kit para PCR Advantage HF-2 (BC Bioscience), etc. de acuerdo con los protocolos adjuntos. Se puede determinar la secuencia de nucleótidos de los fragmentos de ADN obtenidos mediante PCR con un secuenciador de ADN, p. ej. ABI PRISM310 Genetic Analyzer (PE Biosystems), después de clonarlo en un kit de clonación TA (Invitrogen).
El gen obtenido de este modo que codifica la proteína SpaA o ΔSpaA es clonado. Específicamente, los productos de la PCR descrita más arriba son digeridos con las enzimas de de restricción NcoI y BamHI, los fragmentos escindidos son insertados en un plásmido adecuado, p. ej. pET11d (Novagen), que ha sido digerido previamente con las mismas enzimas de restricción, y el plásmido resultante es introducido en E. coli. Entre las colonias de E. coli, se seleccionan aquellos clones que tienen ADN que codifican la proteína deseada. Para la E. coli anfitriona, se pueden utilizar HB101, JM109, LE392, TB1, BL21 y similares, preferiblemente JM109. El método para la introducción de un gen incluye electroporación, protoplastos, PEG, etc. y se puede utilizar cualquiera de estas técnicas. La clonación de un gen deseado se puede confirmar mediante purificación del plásmido y determinación de la secuencia de nucleótidos. Se puede realizar una serie de estos procedimientos para la recombinación genética de acuerdo con una técnica general para la recombinación genética como describen Sambrook et al., Molecular Cloning, A Laboratory Manual Segunda Edición, Cold Spring Harbor Laboratory Press, N.Y., 1989. En la práctica, se puede realizar con un kit disponible en el mercado de acuerdo con las instrucciones adjuntas.
Realizando una mutación puntual en un sitio específico en el gen clonado que codifica la proteína SpaA o ΔSpaA e introduciendo el gen resultante en E. coli, se puede expresar una proteína SpaA o ΔSpaA intrínsecamente soluble en forma de cuerpos de inclusión insolubles.
La mutación puntual se puede realizar mediante mutagénesis dirigida al sitio. En la práctica, se puede utilizar un kit disponible en el mercado, incluyendo Site-Directed Mutagenesis System de Takara (Mutan-Super Express Km, Mutan-Express Km, Mutan-K, etc.), QuickChange Multi Site-Directed Mutagenesis Kit o QuickChange XL Site-Directed Mutagenesis Kit de Stratagene, o GeneTailor Site-Directed Mutagenesis System de Invitrogen, de acuerdo con las instrucciones adjuntas. La mutación puntual también puede ser producida remplazando un fragmento de ácido nucleico de un tamaño adecuado en el cual se ha introducido una mutación puntual.
Alternativamente, como la sustitución de nucleótidos de un número no especificado en sitios no especificados se puede producir en los genes amplificados a una cierta velocidad cuando se realiza una PCR normal, ésta se puede realizar para la introducción de una sustitución de nucleótidos. Si los nucleótidos sustituidos afectan a los codones de aminoácidos, se puede producir una mutación de un aminoácido, posibilitando de este modo la aparición de clones que forman cuerpos de inclusión. Seleccionando estos clones, se pueden obtener los cuerpos de inclusión.
Una proteína SpaA o ΔSpaA soluble es expresada en E. coli en forma de cuerpos de inclusión insolubles p. ej. mediante sustitución en el 69o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal por glicina; la sustitución del 154o aminoácido por glicina; la sustitución del 203o aminoácido por treonina; la sustitución del 214o aminoácido por glutamina; la sustitución del 253o aminoácido por treonina; el 278o aminoácido por glicina; y/o la sustitución del 531o aminoácido por glicina. De este modo, la mutación puntual del gen de SpaA se realiza de manera que se pueden producir estas sustituciones de aminoácidos. Los cuerpos de inclusión se forman introduciendo una mutación de aminoácido en al menos uno de los sitios descritos más arriba pero es posible que la mutación de aminoácido sea introducida en todos estos sitios con tal que los mutantes resultantes sigan siendo inmunogénicos. Preferiblemente, la mutación puntual en el gen de SpaA se realiza de manera que el 69o aminoácido de la proteína SpaA o ΔSpaA es sustituido por glicina; el 214o aminoácido es sustituido por glutamina; el 278o aminoácido es sustituido por glicina; el 531o aminoácido es sustituido por glicina; el 154o y el 203o aminoácidos son sustituidos por glicina y treonina, respectivamente; el 214o y el 253o aminoácidos son sustituidos por glutamina y treonina, respectivamente; o el 69o, el 154o y el 203o aminoácidos son sustituidos por glicina, glicina y treonina, respectivamente.
La región y el tamaño de la proteína ΔSpaA, obtenida mediante deleción de una porción de la proteína SpaA, no están sometidos a restricción con tal que la proteína ΔSpaA siga siendo inmunogénica y, cuando se introduzca la sustitución de aminoácido, sea capaz de formar cuerpos de inclusión y a través de lo cual se puede utilizar en la presente memoria una proteína ΔSpaA en la que al menos aproximadamente 1/3 del extremo C-terminal de la proteína SpaA está suprimido. Preferiblemente, la proteína ΔSpaA comprende 420 residuos aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal por deletion de 207 aminoácidos en el extremo C.
Alternativamente, también es posible transformar a la inversa la proteína SpaA o ΔSpaA insoluble en una proteína SpaA o ΔSpaA soluble introduciendo una sustitución de aminoácido de una manera inversa a la descrita más arriba. De este modo, de acuerdo con el procedimiento de la presente invención, cualquiera de las proteínas SpaA o ΔSpaA soluble o insoluble puede ser obtenida sin restricción según demande la ocasión.
La expresión del gen que codifica la proteína SpaA o ΔSpaA en la que se ha realizado una mutación puntual se puede llevar a cabo como se ha descrito más arriba para la clonación del gen. El vector de expresión puede ser uno disponible en el mercado y se selecciona como anfitrión una E. coli apropiada. Por ejemplo, se puede utilizar BL21(DE3) o DH5α(DE3) para un vector con un promotor de T7; HB101, DH5α o JM109 para un vector con un promotor de triptófano. Preferiblemente, se puede utilizar una combinación de un vector pET11d (Novagen), que permite la clonación concomitante y la expresión de una proteína deseada, con la cepa BL21 de E. coli.
La E. coli recombinante que expresa la proteína SpaA o ΔSpaA puede ser escrutada como se describe más abajo. En presencia de un inductor de la expresión (en el caso de un sistema de expresión como el utilizado en la presente invención, se utiliza IPTG), las células cultivadas y desarrolladas se recogen por centrifugación a una velocidad baja y se suspenden en una cantidad de agua destilada. Las células se desorganizan mediante sonicación o por medio de un homogeneizador tal como Prensa French, Manton Galling y se centrifugan a alta velocidad (15.000 rpm, 15 minutos) para recuperar los cuerpos de inclusión en los productos precipitados. Se puede añadir apropiadamente agua destilada con un tensioactivo (p. ej. Triton X100), un agente quelante (p. ej. EDTA), lisozima, etc. De nuevo, el producto precipitado se suspende en una cantidad adecuada de agua destilada y se aplica una cantidad de la suspensión a una electroforesis en gel de SDS-poliacrilamida. Después de teñir con Azul Brillante de Coomassie, se confirma la expresión de la proteína SpaA o ΔSpaA por el tamaño molecular y la imagen teñida. Se puede determinar la cantidad de cuerpos de inclusión formados comparando las cantidades de proteína SpaA o ΔSpaA en el sobrenadante y en los productos precipitados después de la centrifugación como se ha descrito más arriba. De acuerdo con la presente invención, se puede encontrar en los productos precipitados aproximadamente 90% o más de proteína SpaA o ΔSpaA. Para la confirmación (o detección) de la proteína SpaA o ΔSpaA, también se pueden utilizar procedimientos basados en una reacción antígeno-anticuerpo tal como ELISA, transferencia Western, transferencia puntual, y similares además de los basados en el tamaño molecular. Estos han sido utilizados comúnmente para la detección de una proteína foránea expresada en E. coli y cualquiera de estos puede ser seleccionado adecuadamente según demande la ocasión.
Para la purificación de la proteína SpaA o ΔSpaA a partir de las células de E. coli que expresan la proteína SpaA o ΔSpaA obtenidas de este modo, se puede utilizar el método descrito en la publicación de patente Japonesa Núm. 2002-34568 o los procedimientos de purificación comúnmente utilizados en la química de las proteínas tales como, p. ej. centrifugación, precipitación por adición de sal, ultrafiltración, precipitación isoeléctrica, electroforesis, cromatografía de intercambio iónico, cromatografía de afinidad, cromatografía hidrófoba, cromatografía con hidroxiapatita, o una combinación de los mismos. De acuerdo con el procedimiento de la presente invención, se puede lograr una pureza de 90% o más de la proteína SpaA o ΔSpaA tratando un cultivo de células de E. coli que expresan la proteína SpaA o ΔSpaA con cualquiera o con ambos de una enzima (p. ej. lisozima) y/o sonicación (p. ej. un homogeneizador celular de tipo haz de sonido), seguido de repetición de la centrifugación (p. ej. 15.000 rpm, 15 minutos) y suspensión en un tampón de lavado (p. ej. Tris-HCl 20 mM pH 7,5, EDTA 10 mM, Triton X-100 al 1%).
La inmunogenicidad de la proteína SpaA o ΔSpaA obtenida de este modo se puede determinar inmunizando ratones u otros animales, infectados por Erysipelothrix rhusiopathiae, con estas proteínas y sensibilizando a los animales con una cepa virulenta de Erysipelothrix rhusiopathiae. También se puede determinar el modo de inmunización, p. ej., la ruta de administración tal como subcutánea, intramuscular o intraperitoneal, el período de la inmunización, etc., comúnmente utilizados para investigar la inmunogenicidad de una vacuna. Más específicamente, la proteína antigénica se diluye seriadamente 5 veces en solución salina con un suplemento de gel de hidróxido de aluminio al 25% (vol/vol) para preparar una dilución seriada que se utiliza para la inmunización de 5 a 10 ratones (ddy, 5 semanas de edad, hembra) por dilución mediante administración subcutánea. Tres semanas después de la inmunización, los ratones recibieron una inyección transdérmica de células vivas de la cepa Fujisawa, una cepa virulenta de Erysipelothrix rhusiopathiae, y se observó la supervivencia o muerte de los ratones durante 10 días. Los efectos inmunizantes de la proteína antigénica se pueden evaluar por medio de una dosis protectora mediana (DP50).
La proteína SpaA o ΔSpaA de la presente invención, después de la purificación en una forma insoluble, puede ser solubilizada con un agente solubilizante tal como urea, hidrocloruro de guanidina o hidrocloruro de arginina, sometida a filtración estéril a través de un filtro de membrana etc., y utilizada como sustancia para preparar una vacuna para la protección de animales sensibles tales como p. ej. jabalíes salvajes, ballenas, pollos, pavos y seres humanos frente a la infección por Erysipelothrix rhusiopathiae u otros patógenos. La proteína SpaA o ΔSpaA preparada de este modo puede ser formulada en una composición farmacéutica mezclándola apropiadamente con un coadyuvante inmunológico tal como hidróxido de aluminio, fosfato de aluminio, aceite mineral o aceite no mineral, un agente estabilizante tal como Polisorbato 80, un aminoácido o azúcares tales como lactosa o sacarosa, y un agente conservante tal como formalina, timerosal, 2-fenoxietanol, alcohol bencílico, cloruro de benzetonio o cloruro de benzalconio. Cuando se añaden azúcares tales como lactosa o sacarosa como cargas, también se puede formular en forma de una dosificación liofilizada.
La presente invención se explica con más detalle por medio de los siguientes Ejemplos. En los siguientes Ejemplos, se utilizaron los reactivos fabricados por Wako Pure Chemical Industries, Ltd., TAKARA SHUZO CO., LTD. o Difco a menos que se mencione de otro modo.
Ejemplo 1
(1) Clonación de genes que codifican proteínas SpaA y ΔSpaA
Se cultivaron Erysipelothrix rhusiopathiae, cepa Fujisawa y cepa Koganai de tipo 1, y cepa Tama 96 y cepa SE-9 de tipo 2, en medio de Infusión Cerebro-Corazón (Difco) con un suplemento de Tween 80 al 0,1% a 37°C durante 16 a 48 horas. El cultivo (aproximadamente 1,5 a 3,0 mL) se centrifugó. Se extrajo el ADN del genoma total a partir del producto precipitado obtenido (aproximadamente 0,03 g o más) con un kit de extracción de ADN (Isoplant, NIPPON GENE CO., LTD.).
Con el ADN del genoma total como molde, se realizó la PCR utilizando cebadores sintéticos (un par de SEQ ID NO: 3 y 4, un par de SEQ ID NO: 3 y 5), preparados basándose en la secuencia de nucleótidos del SEQ ID NO: 1, y LAPCR Kit (TAKARA). La solución de reacción se mantuvo a 94°C durante 3 minutos y después se repitió durante 30 ciclos un ciclo de 94°C durante 60 segundos, 56°C durante 30 segundos y 72°C durante 60 segundos. El cebador de SEQ ID NO: 3 se diseñó para amplificar la región aguas abajo desde el 79o nucleótido del gen de SpaA en el que se había añadido un sitio NcoI en su extremo 5'. Los cebadores de los SEQ ID NO: 4 y 5 se diseñaron para amplificar la región hasta el 1260o y el 1881o (codón de terminación del gen de SpaA) nucleótidos del gen de SpaA, respectivamente, en el que se había añadido el sitio BamHI en su extremo 5'. La PCR proporciona un gen de SpaA que tiene la secuencia de nucleótidos desde el 79o al 1881o y el gen de ΔSpaA que tenía la secuencia de nucleótidos desde el 79o al 1260o.
Los fragmentos de ADN amplificados mediante PCR fueron digeridos dualmente con NcoI y BamHI y los productos digeridos resultantes fueron ligados con un plásmido pET11d (Novagen), que había sido digerido dualmente con anterioridad con NcoI y BamHI, utilizando ADN ligasa de T4. Esta solución de reacción se mezcló con E. coli JM109. La mezcla se dejó reposar en hielo durantes varias decenas de segundos, se aplicó agar LB (Triptona al 1,0%, Extracto de Levadura al 0,5%, NaCl al 1,0%, agar al 1,5%, pH 7,0) con un suplemento de 50 µg/ml de ampicilina y se dejó reposar a 37°C durante la noche. Se inoculó una sola colonia en 1 a 5 mL de medio LB con un suplemento de 50 µg/ml de ampicilina y el medio se sacudió de 30 a 37°C, seguido de un tratamiento rutinario para extraer los plásmidos que contienen el gen que codifica las proteínas SpaA y ΔSpaA de las células (Figs. 1-a y 1-b).
Como se describe en el Ejemplo 1-(1), los plásmidos de cada una de las diferentes cepas fueron introducidos en E. coli BL21(DE3) para dar colonias individuales del transformante. Las colonias individuales fueron inoculadas en 1 a 5 5 mL de medio LB con un suplemento de 50 µg/ml de ampicilina y cultivadas mientras se sacudía de 30 a 37°C hasta que la D.O. a 600 nm del cultivo alcanzó de 0,6 a 1,0. Se añadió 1/100 del volumen de IPTG (100 mM) al cultivo y el cultivo con sacudimiento continuó a 37°C durante 2 a 3 horas. El cultivo se mezcló con un volumen equivalente de 2×tampón de muestra SDS y, después de calentar a 100°C durante 2 minutos, la mezcla se aplicó a una electroforesis en gel de poliacrilamida-SDS (SDS-PAGE) y se tiñó con Azul Brillante de Coomassie (Nacalai
10 Tesque). Para todas las cepas, se detectaron bandas de alrededor de 70 y 45 kD, a partir de las cuales se confirmó la expresión de las proteínas SpaA y ΔSpaA mediante la imagen teñida. La Fig. 2A muestra los resultados de la SDS-PAGE para las proteínas SpaA y ΔSpaA derivadas de la cepa SE-9; la Fig. 2B muestra los resultados de la SDS-PAGE para las proteínas SpaA y ΔSpaA derivadas de la cepa Fujisawa, la cepa Tama 96, la cepa Koganai y la cepa SE-9.
15
Se investigó si se habían formado cuerpos de inclusión de las proteínas SpaA y ΔSpaA como se describe más abajo. El cultivo del Ejemplo 1-(2) se centrifugó a 10.000 rpm durante 5 minutos y el producto precipitado resultante 20 se añadió a 1/5 - 1/10 del volumen, basándose en el cultivo, de un tampón de lavado (Tris-HCl 20 mM pH 7,5, EDTA 10 mM, Triton X-100 al 1%) o agua destilada y las células se suspendieron hasta su uniformidad. A la suspensión se le añadió 1/100 del volumen de una solución de lisozima (10 mg/ml) durante la reacción a 30°C durante 15 minutos. La mezcla enfriada con hielo se sometió a sonicación con un sonicador manual (fabricante: Tomy; Modelo: UR-20P; Rendimiento: 5; Tiempo: 15 segundos, 2 a 4 veces) y se centrifugó a 15.000 rpm durante 15 minutos. Una vez que 25 se hubo recogido el sobrenadante, el producto precipitado se añadió a un volumen equivalente, basándose en la mezcla sometida a sonicación antes de la centrifugación, de un tampón de lavado y de nuevo las células se suspendieron hasta su uniformidad. A cada uno del sobrenadante y el producto precipitado recogidos se les añadió un volumen equivalente de 2x tampón de muestra SDS. Después de calentar, se aplicó cada una de las mezclas a una SDS-PAGE y se tiñó con Azul Brillante de Coomassie. Si se encontraba proteína ΔSpaA en la suspensión de
30 producto precipitado, se evaluaba dicha proteína ΔSpaA para determinar la formación de cuerpos de inclusión (Fig. 3). Como resultado, se detectó la formación de cuerpos de inclusión en varios clones de la cepa SE-9 (Tabla 1). La Tabla 1 muestra el número de clones que formaban cuerpos de inclusión entre el número de clones investigados. NR significa "no realizado".
35 Tabla 1
- imagen1
- Clones que forman cuerpos de inclusión/Clones que expresan ΔSpaA Clones que forman cuerpos de inclusión/Clones que expresan SpaA
- Cepa Fujisawan
- 0/3 NR
- (tipo 1)
-
imagen1 imagen1
- Cepa SE-9
- 3/30 1/15
- (tipo 2)
-
imagen1 imagen1
- Cepa Tama 96
- 0/3 NR
- (tipo 2)
-
imagen1 imagen1
- Cepa Koganai
- 0/3 NR
- (tipo 1)
-
imagen1 imagen1
40 A continuación, se extrajeron los plásmidos de los cuatro clones de la cepa SE-9 de la Tabla 1 que formaban cuerpos de inclusión (Núm. 1, Núm. 2, Núm. 3 y Núm. 4) y se analizó la secuencia de nucleótidos del gen que codificaba la proteína ΔSpaA encargándoselo a TAKARA BIO INC., centro de servicios personalizados. Al comparar con la secuencia del SEQ ID NO: 7, se observaron sustituciones de aminoácidos debidas a las mutaciones de nucleótidos representadas en la Tabla 2.
45
Tabla 2
- Posición de Nucleótido
- Sustitución de Nucleótido Clon
- (sustitución de aminoácido correspondiente)
- 206o
- de A a G (el 69o ácido glutámico a glicina) Núm. 2
- 461o
- de A a G (el 154o ácido glutámico a glicina) Núm.2
- 608o
- de T a C (la 203a isoleucina a treonina) Núm. 2
- 642o
- de T a G (la 214a histidina a glutamina) Núm. 1
- 758o
- de T a C (la 253a metionina a treonina) Núm.1
- 833o
- de A a G (el 278o ácido aspártico a glicina) Núm. 3
- 1591o
- de A a G (la 531a arginina a glicina) Núm. 4
(1) Expresión de proteínas en forma de cuerpos de inclusión mediante sustitución de aminoácidos de la proteína ΔSpaA
10 Se construyeron plásmidos en los cuales los fragmentos de ADN con las sustituciones de nucleótidos representadas en la Tabla 2 producidos escindiendo los plásmidos a partir de los clones que formaban cuerpos de inclusión en el Ejemplo 1-(4) con las enzimas de restricción adecuadas fueron remplazados por la correspondiente región del gen que codificaba la proteína ΔSpaA en los plásmidos extraídos de los clones (cepa SE-9) que expresaban la proteína ΔSpaA soluble.
15 Específicamente,
1. (a) el plásmido del clon Núm. 1, después de la digestión dual con las enzimas de restricción EcoRI y ClaI, fue aplicado a una electroforesis en agarosa para aislar y separar un fragmento EcoRI-ClaI que comprendía el gen que
20 codificaba la proteína ΔSpaA abarcando desde el 587o al 1152o nucleótidos (Fig. 4A-1). El fragmento obtenido fue insertado en el plásmido a partir de los clones (cepa SE-9) que expresaban la proteína ΔSpaA soluble previamente tratada con EcoRI y ClaI para preparar de ese modo un plásmido que comprendía el gen que codificaba la proteína ΔSpaA en la cual los nucleótidos 642o y 758o estaban sustituidos.
25 De la misma manera, se construyeron
2. (b) un plásmido en el cual se había insertado un fragmento EcoRI-ClaI que comprendía el gen que codificaba la proteína ΔSpaA abarcando desde los nucleótidos 587o a 1152o (Fig. 4A-b) del clon Núm. 3 (sustitución en el 833o nucleótido);
30
3. (c) un plásmido en el cual se había insertado un fragmento KpnI-ClaI que comprendía el gen que codificaba la proteína ΔSpaA abarcando desde los nucléótidos 266o a 1152o (Fig. 4A-c) del clon Núm. 2 (sustituciones en los nucleótidos 461o y 608o); y
35 4. (d) un plásmido en el cual se había insertado un fragmento EcoRI-ClaI que comprendía el gen que codificaba la proteína ΔSpaA abarcando desde los 587o 1152o (Fig. 4A-d) del clon Núm. 2 (sustitución en el nucleótido 608o).
5. (e) Se construyó un plásmido que comprendía el gen que codificaba la proteína ΔSpaA en el cual el 206o nucleótido había sido sustituido insertando un fragmento KpnI-ClaI que comprendía el gen que codificaba la proteína
40 ΔSpaA soluble abarcando desde los nucleótidos 266o a 1152o (Fig. 4A-e) en el plásmido del clon Núm. 2 tratado con KpnI y ClaI.
6. (f) Se construyó un plásmido que comprendía el gen que codificaba la proteína ΔSpaA en el cual el nucleótido 642o había sido sustituido mediante mutagénesis dirigida al sitio (Takara, Mutan-Super Express Km). 45 Específicamente, el plásmido (Fig. 1-b) de los clones (cepa SE-9) que expresaban la proteína ΔSpaA fue digerido dualmente con EcoRI y HindIII y el fragmento EcoRI-HindIII resultante (967 pb), que comprendía el en que codificaba la proteína ΔSpaA que abarcaba desde los nucleótidos 587o a 1260o y una porción del plásmido pET11d, fue clonado en un plásmido vector pKF18k (Takara). Utilizando este plásmido como molde, se realizó la PCR como se describe en el Ejemplo 1-(1) con el oligonucleótido sintético para la mutagénesis del SEQ ID NO: 6, que
50 comprendía una secuencia desde los nucleótidos 632o a 657o del gen que codificaba la proteína ΔSpaA en la cual el nucléotido T 642o había sido sustituido por G, 5 pmoles de los cebadores de selección anclados al Kit Mutan-Super Express Km de Takara, 5 µl de 10× tampón LAPCR (+Mg2+), 8 µl de una mezcla de dNTP, 0,5 µl de una solución de polimerasa LA-Taq y agua destilada esterilizada hasta hacer un volumen total de 50 µl. La solución de PCR resultante, tras la precipitación/lavado con etanol, fue clonada en la cepa MV1184 de E. coli (Takara). El plásmido obtenido con la mutagénesis fue digerido dualmente con EcoRI y BamHI para separar y aislar un fragmento EcoRI-BamHI que comprendía el gen que codificaba la proteína ΔSpaA que abarcaba desde los nucleótidos 587o a 1260o. Este fragmento fue insertado en la correspondiente región del plásmido de los clones (cepa SE-9) que expresaban la proteína ΔSpaA soluble, una sustancia de partida, para dar el plásmido deseado. Del mismo modo, se construyó un plásmido que comprendía el gen que codificaba la proteína ΔSpaA en el cual el 642o nucleótido T había sido sustituido por G para la cepa Fujisawa y la cepa Tama 96 por medio del mismo procedimiento.
Los plásmidos obtenidos de este modo se utilizaron para la transformación de E. coli BL21(DE3) y se analizó la forma de las proteínas ΔSpaA expresadas. Como resultado, se encontró que cada proteína ΔSpaA de los transformantes con cualquiera de los plásmidos formaba cuerpos de inclusión.
Se construyeron plásmidos en los cuales los fragmentos de ADN con las sustituciones de nucleótidos representadas en la Tabla 2 producidos escindiendo los plásmidos de los clones que formaban cuerpos de inclusión en el Ejemplo 1-(4) con las enzimas de restricción adecuadas fueron remplazados por la correspondiente región en el gen que codificaba la proteína SpaA en los plásmidos extraídos de los clones (cepa SE-9) que expresaban la proteína SpaA soluble.
Específicamente,
- 1.
- (a) el plásmido del clon Núm.4, tras la digestión dual con las enzimas de restricción ClaI y BamHI, fue aplicado a una electroforesis en agarosa para aislar y separar un fragmento ClaI-BamHI (Fig. 4B-a) que comprendía una secuencia desde los nucleótidos 1152o a 1881o (codón de terminación del gen que codificaba la proteína SpaA) del gen que codificaba la proteína SpaA. El fragmento obtenido se insertó en el plásmido de los clones (cepa SE-9) que expresaban la proteína SpaA completa soluble tratados con ClaI y BamHI para preparar de ese modo un plásmido que comprendía el gen que codificaba la proteína SpaA en el cual el nucleótido 1591o había sido sustituido.
- 2.
- (b) el plásmido obtenido en el Ejemplo 2-(1)-(a), tras la digestión dual con PstI y ClaI, fue aplicado a una electroforesis en agarosa para aislar y separar un fragmento PstI-ClaI (Fig. 4A-f) que comprendía una secuencia desde los nucleótidos 611o a 1152o del gen que codificaba la proteína ΔSpaA. El fragmento obtenido fue insertado en el plásmido de los clones (cepa SE-9) que expresaban la proteína SpaA completa soluble previamente tratados con PstI y ClaI para preparar de ese modo un plásmido que comprendía el gen que codificaba la proteína SpaA en el cual los nucleótidos 642o y 758o habían sido sustituidos.
Los plásmidos obtenidos de este modo se utilizaron para la transformación de E. coli BL21(DE3) y se analizó la forma de las proteínas SpaA expresadas. Como resultado, se encontró que cada proteína SpaA de los transnformantes con cualquiera de los plásmidos formaba cuerpos de inclusión (Fig. 5).
Ejemplo 3
(1) Purificación de la proteína SpaA o ΔSpaA que forma cuerpos de inclusión
Se cultivaron cada una de las células de E. coli que expresaban la proteína ΔSpaA en forma de cuerpos de inclusión obtenidas en el Ejemplo 2-(1) y las células de E. coli que expresaban la proteína SpaA completa en forma de cuerpos de inclusión obtenidas en el Ejemplo 2-(2). Se centrifugaron 100 ml de los cultivos a 10.000 rpm durante 5 minutos y el producto precipitado resultante se añadió a 1/5 - 1/10 del volumen, basándose en el cultivo, de un tampón de lavado (Tris-HCl 20 mM pH 7,5, EDTA 10 mM, Triton X-100 al 1%) y las células se suspendieron hasta su uniformidad. A la suspensión se añadió 1/100 del volumen de una solución de lisozima (10 mg/ml) para que reaccionara a 30°C durante 15 minutos. La mezcla enfriada con hielo se sometió a sonicación con un homogeneizador celular de tipo haz de sonido (fabricante: Branson Sonic Power Co.,; Modelo: 350; Rendimiento: 4; Ciclo Pesado; 30%; Tiempo: 5 a 15 minutos) y se centrifugó a 15.000 rpm durante 15 minutos. Una vez recogido el sobrenadante, al producto precipitado se le añadió un volumen equivalente, basado en la mezcla sonicada antes de la centrifugación, de un tampón de lavado (o agua destilada esterilizada) y las células se suspendieron de nuevo hasta su uniformidad. La suspensión se centrifugó a 15.000 rpm durante 15 minutos. Después de recoger el sobrenadante, al producto precipitado se le añadió a un tampón de lavado (o agua destilada esterilizada). Este procedimiento de centrifugación/lavado se repitió de tres a cinco veces. Para el procedimiento de lavado final, se suspendió el producto precipitado después de la centrifugación en agua destilada esterilizada. La suspensión se centrifugó de nuevo a 15.000 rpm durante 15 minutos. Una vez recogido el sobrenadante, el producto precipitado se suspendió en 10 ml de urea 8 M. Mientras se sacudía suavemente a la temperatura ambiente durante 2 horas y después a 5°C durante 18 horas, la proteína de los cuerpos de inclusión se solubilizó para dar la proteína SpaA o ΔSpaA purificada. Tras la SDS-PAGE el gel se tiñó con Azul Brillante de Coomassie. La determinación con un densitómetro demostró que las proteínas SpaA y ΔSpaA obtenidas de este modo tenían una pureza de 90% o más (Fig. 6).
5 La inmunogenicidad de la proteína SpaA o ΔSpaA se determinó como se describe más abajo. A 4 ml de una solución de la proteína SpaA o ΔSpaA purificada en el Ejemplo 3-(1) se añadieron 11 ml de solución salina y 5 ml de coadyuvante de gel de hidróxido de aluminio (ALHYDROGEL "85", Superfos Biosector) y la mezcla se agitó a la temperatura ambiente durante 2 horas para dar una solución de vacuna. Esta solución de vacuna se diluyó
10 seriadamente 5 veces en solución salina con un suplemento de gel hidróxido de aluminio al 25% (vol/vol) para preparar una dilución seriada que se utilizó para la inmunización de 10 ratones (ddy, 5 semanas de edad, hembra) por dilución mediante la administración subcutánea de 0,5 ml. Tres semanas después de la inmunización, los ratones fueron sensibilizados mediante inyección transdérmica de aproximadamente 1.000 células bacterianas vivas de la cepa Fujisawa, una cepa virulenta de Erysipelothrix rhusiopathiae. La supervivencia o muerte de los ratones se
15 observó durante 10 días y se determinó una dosis protectora mediana (DP50) de la proteína purificada SpaA o ΔSpaA. Como se muestra en la Tabla 3, la proteína SpaA o ΔSpaA purificada mostró una inmunogenicidad extremadamente alta, esto es una dosis protectora mediana (DP50) de 0,0621 a 0,1885 µg. La dosis protectora mediana (dosis eficaz del 50%) en ratones fue calculada por el método de Behrens-Karber como describe Karber G: Beitrag zur kollektiven Behandlung pharmakologischer Reihenversuche. Arch. Exp. Path. Pharm., 162:480, 1931;
20 "Saikingaku Jisshu Teiyo" [Summary Practice in Bacteriology], 5a ed., Ed. por "alumni association of Ikagakukenkyusho" [Medical Science Laboratory], Maruzen, p.564-565, y de acuerdo con la siguiente ecuación:
Dosis protectora mediana en ratones (μg) = 10m, m = X4-[(h0+h1) (X1-X0) x 1/2 + (h1+h2)
25 (X2–X1) x 1/2 + (h2+h3) (X3-X2) x 1/2 + (h4+h3) (X4-X3) x 1/2]
donde cada uno de X0, X1,...X4, representa el logaritmo de las dosis respectivas, y cada uno de h0, h1,...h4 representa la correspondiente tasa de eficacia (número de supervivientes/número de sensibilizados) mediante la medida real. El logaritmo (X) de las respectivas dosis puede venir dado por la ecuación: X= Log10 [concentración de proteína de
30 una muestra (µg/ml) × dosis en ratones (ml) ÷ veces de dilución].
Tabla 3
- Proteína purificada
- ΔSpaA Spa
- Sitio de sust. en el gen de SpaA
- 642o 206o 833o 1591o 642o
- 758o
- 461o
- 758o
- 608o
- Conc. proteína (mg/ml)
- 2,30 1,91 2,33 2,11 2,28
- Veces de dilución
- Núm. de supervivientes/ Núm. de sensibilizados Núm. de supervivientes/ Núm. de sensibilizados Núm. de supervivientes/ Núm. de sensibilizados Núm. de supervivientes/ Núm. de sensibilizados Núm. de supervivientes/ Núm. de sensibilizados
- 625
- 10/10 10/10 10/10 10/10 10/10
- 3125
- 9/10 8/10 10/10 10/10 10/10
- 15625
- 5/10 0/10 4/10 4/10 6/10
- 78125
- 0/10 0/10 0/10 0/10 0/10
- Dosis protectora mediana en ratones (µg)
- 0,0864 0,1885 0,0875 0,0793 0,0621
De acuerdo con la presente invención, se proporciona un procedimiento para preparar una proteína SpaA o ΔSpaA soluble en E. coli en forma de cuerpos de inclusión insolubles. La aplicación del procedimiento de la presente 5 invención a un procedimiento para la preparación de una proteína soluble permite el establecimiento de un procedimiento para preparar la proteína SpaA o ΔSpaA a nivel práctico, lo que asegura la provisión estable de la proteína SpaA o ΔSpaA en el mercado comercial. La proteína SpaA o ΔSpaA recombinante obtenida mediante el procedimiento de la presente invención conserva una inmunogenicidad equivalente a la de la proteína soluble original y se puede utilizar como sustancia para preparar una vacuna para la infección por Erysipelothrix
10 rhusiopathiae sola o mezclada con diferentes aditivos tales como un agente estabilizante, un agente protector, un agente conservante, y similares. También se puede utilizar como antígeno para preparar un anticuerpo monoclonal/policlonal o como sustancia de búsqueda para investigar la unión entre anticuerpos anti-SpaA o antiΔSpaA y Erysipelothrix rhusiopathiae. Como tal, la proteína SpaA o ΔSpaA obtenida mediante el procedimiento de la presente invención contribuiría enormemente al campo médico y de la investigación.
15
- LISTA DE SECUENCIAS
- <110> FUNDACIÓN JURÍDICA DEL INSTITUTO DE INVESTIGACIÓN QUIMIO-SERO-TERAPÉUTICA
- 5
- <120> Un método para la producción del antígeno protector de superficie de Erysipelothrix rhusiopathiaeEscherichia coli en
- <130> 664968
- 10
- <140> JP 2004-53882 <141> 2004-02-27
- <160> 7
- 15 20
- <170> PatentIn versión 3.1 <210> 1 <211> 1881 <212> ADN <213> Erysipelothrix rhusiopathiae <400> 1
<210> 3
<211> 37
<212> ADN
<213> Artificial
<220> <223> Cebador efector diseñado para la preparación de la proteína SpaA y ΔSpaA mediante amplificación por PCR
<400> 3 catgccatgg ctttcgctga ttcgacagat atttctg 37
<210> 4
<211> 33
<212> ADN
<213> Artificial
<220>
<223> Cebador antisentido diseñado para la preparación de la proteína ΔSpaA mediante amplificación por PCR
<400> 4 cgcggatcct tatactttaa cgggactttc agg 33
<210> 5
<211> 38
<212> ADN
<213> Artificial
<220>
<223> Cebador antisentido diseñado para la preparación de la proteína SpaA mediante amplificación por PCR
<400> 5 cgcggatccg tctattttaa acttccatcg ttcttaaa 38
<210> 6
<211> 24
<212> ADN
<213> Artificial
<220>
<223> oligonucleótido diseñado para la preparación de la proteína SpaA con una mutación puntual mediante mutagénesis dirigida al sitio
<400> 6 ctgaagcgca ggaggatttc ttag 24
<210> 7
<211> 1748
<212> ADN z
<213> Erysipelothrix rhusiopathiae
<400> 7
Claims (17)
- REIVINDICACIONES1. Un procedimiento para preparar una variante de la proteína SpaA del antígeno protector de superficie de Erysipelothrix rhusiopathiae o de una forma reducida de la misma, la proteína ΔSpaA, donde al menos aproximadamente 1/3 del extremo C de la proteína SpaA es suprimido, teniendo dicha variante inmunogenicidad y siendo expresada en E. coli en forma de cuerpos de inclusión, que comprende mutar un gen que codifica dicha proteína SpaA o ΔSpaA de manera que se pueda introducir una sustitución de aminoácido en la secuencia de aminoácidos de dicha proteína SpaA o ΔSpaA, permitiendo que el gen mutado resultante sea expresado en E. coli, y seleccionando dicha variante que formaba cuerpos de inclusión entre las variantes expresadas, donde dicha sustitución de aminoácido es una o una combinación de más de una seleccionada del grupo que consiste en (1) a
- (7)
- descritos más abajo:
- (1)
- el 69o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina;
- (2)
- el 154o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina;
- (3)
- el 203o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por treonina;
- (4)
- el 214o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glutamina;
- (5)
- el 253o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por treonina;
- (6)
- el 278o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina; y
- (7)
- el 531o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina; o donde dicha sustitución de aminoácido es una seleccionada del grupo que consiste en (a) a (h) descritos más abajo:
- (a)
- el 69o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina;
- (b)
- el 203o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por treonina;
- (c)
- el 214o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glutamina;
- (d)
- el 278o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina;
- (e)
- el 531o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina;
- (f)
- el 154o y el 203o aminoácidos del extremo N terminal que abarca la secuencia señal son sustituidos por glicina y treonina, respectivamente;
- (g)
- el 214o y el 253o aminoácidos del extremo N terminal que abarca la secuencia señal son sustituidos por glutamina y treonina, respectivamente; y
- (h)
- el 69o, el 154o y el 203o aminoácidos del extremo N terminal que abarca la secuencia señal son sustituidos por glicina, glicina y treonina, respectivamente.
- 2. El procedimiento de la reivindicación 1, que comprende las siguientes etapas (A) a (D):
- (A)
- introducir una mutación en un gen que codifica la proteína SpaA o ΔSpaA del antígeno protector de superficie de Erysipelothrix rhusiopathiae soluble de manera que se pueda introducir una sustitución de aminoácido;
- (B)
- transformar las células de E. coli con un vector de expresión que contiene el gen mutado resultante;
- (C)
- seleccionar las células de E. coli que formaron cuerpos de inclusión insolubles entre las células de
- E.
- coli transformadas anteriores; y
- (D)
- cultivar las células de E. coli seleccionadas para la recuperación de los cuerpos de inclusión en el interior de las células.
- 3. El procedimiento de la reivindicación 2, que después de la etapa (D) comprende adicionalmente las etapas (E) a (F):
- (E)
- administrar los cuerpos de inclusión o los cuerpos de inclusión tratados con un agente solubilizante a un animal sensible a infección por Erysipelothrix rhusiopathiae y después atacar dicho animal con una cepa virulenta de Erysipelothrix rhusiopathiae; y
- (F)
- observar la supervivencia o muerte del animal sensible a Erysipelothrix rhusiopathiae para evaluar de ese modo la presencia de actividad protectora (inmunogenicidad) frente a la infección por Erysipelothrix rhusiopathiae.
-
- 4.
- El procedimiento de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3 donde dicho Erysipelothrix rhusiopathiae se selecciona del grupo que consiste en la cepa Fujisawa, la cepa Koganai, la cepa Tama 96, la cepa SE-9 y la cepa Shizuoka 63.
-
- 5.
- El procedimiento de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4, donde la proteína SpaA o ΔSpaA antes de la introducción de dicha sustitución de aminoácido tiene la secuencia de aminoácidos representada en el SEQ ID NO: 2 o la secuencia representada en el SEQ ID NO: 2 con una deleción en su extremo C, respectivamente.
-
- 6.
- Una variante de la proteína SpaA o de una forma reducida de la misma, ΔpaA del antígeno protector de superficie de Erysipelothrix rhusiopathiae donde al menos aproximadamente 1/3 del extremo C de la proteína SpaA es suprimido, donde la sustitución de aminoácido es una o una combinación de más de una seleccionada del grupo que consiste en (1) a (7) descritas más abajo:
- (1)
- el 69o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina;
- (2)
- el 154o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina;
- (3)
- el 203o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por treonina;
- (4)
- el 214o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glutamina;
- (5)
- el 253o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por treonina;
- (6)
- el 278o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina; y
- (7)
- el 531o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina, que es inmunogénica y se expresa en E. coli en forma de cuerpos de inclusión.
- 7. Una variante de la proteína SpaA o de una forma reducida de la misma, ΔSpaA del antígeno protector de superficie Erysipelothrix rhusiopathiae donde al menos aproximadamente 1/3 del extremo C de la proteína SpaA es suprimido, donde se introduce una sustitución de aminoácido que es una seleccionada del grupo que consiste en (a) a (h) descritos más abajo:
- (a)
- el 69o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina;
- (b)
- el 203o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por treonina;
- (c)
- el 214o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glutamina;
- (d)
- el 278o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina;
- (e)
- el 531o aminoácido del extremo N terminal que abarca la secuencia señal es sustituido por glicina;
- (f)
- el 154o y el 203o aminoácidos del extremo N terminal que abarca la secuencia señal son sustituidos por glicina y treonina, respectivamente;
- (g)
- el 214o y 253o aminoácidos del extremo N terminal que abarca la secuencia señal son sustituidos por glutamina y treonina, respectivamente; y
- (h)
- el 69o, 154o y 203o aminoácidos del extremo N terminal que abarca la secuencia señal son sustituidos por glicina, glicina y treonina, respectivamente, que es inmunogénica y se expresa en E. coli en forma de cuerpos de inclusión.
-
- 8.
- La variante de la reivindicación 6 o 7 que se prepara mutando un gen que codifica la proteína SpaA o ΔSpaA para introducir una sustitución de aminoácido en la secuencia de aminoácidos de dicha proteína SpaA o ΔSpaA, expresando el gen mutado de este modo en E. coli, y seleccionando entre las variantes expresadas aquellas que formaban cuerpos de de inclusión.
-
- 9.
- La variante de una cualquiera de las reivindicaciones 6 a 8 que se prepara mediante las siguientes etapas (A) a (D):
- (A)
- introducir una mutación en un gen que codifica la proteína SpaA o ΔSpaA del antígeno protector de superficie de Erysipelothrix rhusiopathiae soluble de manera que se pueda introducir la sustitución de aminoácido;
- (B)
- transformar las células de E. coli con un vector de expresión que contiene el gen mutado resultante;
- (C)
- seleccionar las células de E. coli que formaban cuerpos de inclusión insolubles entre las células de E. coli transformadas anteriores; y
- (D)
- cultivar las células de E. coli seleccionadas para la recuperación de los cuerpos de inclusión en el interior de las células.
- 10. La variante de la reivindicación 9, que se prepara mediante las siguientes etapas (E) a (F) posteriores a la etapa (D):
- (E)
- administrar los cuerpos de inclusión o los cuerpos de inclusión tratados con un agente solubilizante a un animal sensible a infección por Erysipelothrix rhusiopathiae y después atacar dicho animal con una cepa virulenta de Erysipelothrix rhusiopathiae; y
- (F)
- observar la supervivencia o muerte del animal sensible a Erysipelothrix rhusiopathiae para evaluar de ese modo la presencia de una actividad protectora (inmunogenicidad) frente a la infección por Erysipelothrix rhusiopathiae.
-
- 11.
- La variante de una cualquiera de las reivindicaciones 6 a 10, que tiene la secuencia de aminoácidos representada en el SEQ ID NO: 2 o la secuencia representada en el SEQ ID NO: 2 con la deleción de su extremo C donde se introduce la sustitución de aminoácido.
-
- 12.
- La variante de una cualquiera de las reivindicaciones 6 a 11, donde dicha proteína SpaA o ΔSpaA deriva de una seleccionada del grupo que consiste en la cepa Fujisawa, la cepa Koganai, la cepa Tama 96, la cepa SE-9 y la cepa Shizuoka 63.
-
- 13.
- Una composición que comprende como ingrediente activo la variante de una cualquiera de las reivindicaciones 6 a 12.
-
- 14.
- Un gen que codifica la variante de una cualquiera de las reivindicaciones 6 a 12.
-
- 15.
- El gen de la reivindicación 14, que tiene una secuencia de nucleótidos o una secuencia de nucleótidos por deleción de una porción del extremo 3', que incluye una o una combinación de más de una sustitución de nucleótidos en el SEQ ID NO: 1 seleccionada del grupo que consiste en (1) a (7) descritas más abajo:
- (1)
- el 206o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es G;
- (2)
- el 461o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es G;
- (3)
- el 608o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es C;
- (4)
- el 642o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es G;
- (5)
- el 758o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es C;
- (6)
- el 833o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es G; y
- (7)
- el 1591o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es G.
- 16. El gen de la reivindicación 14, que tiene una secuencia de nucleótidos o una secuencia de nucleótidos por deleción de una porción del extremo 3', que incluye cualquier sustitución de nucleótidos en el SEQ ID NO: 1 seleccionada del grupo que consiste en (a) a (h) descritas más abajo:
- (a)
- el 206o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es G;
- (b)
- el 608o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es C;
- (c)
- el 642o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es G;
- (d)
- el 833o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es G; y
- (e)
- el 1591o nucleótido de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 es G;
- (f)
- el 461o y el 608o nucleótidos de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 son G y C, respectivamente;
- (g)
- el 642o y el 758o nucleótidos de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 son G y C, respectivamente; y
- (h)
- el 206o, el 461o y el 608o nucleótidos de la secuencia de nucleótidos representada en el SEQ ID NO: 1 son G, G y C, respectivamente.
- 17. El uso de la variante de una cualquiera de las reivindicaciones 6 a 12, para la preparación de una vacuna para la infección por Erysipelothrix rhusiopathiae.
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2004-53882 | 2004-02-27 | ||
| JP2004053882 | 2004-02-27 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| ES2367128T3 true ES2367128T3 (es) | 2011-10-28 |
Family
ID=34908767
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| ES05709866T Active ES2367128T3 (es) | 2004-02-27 | 2005-02-08 | Procedimiento para preparar una variante del antígeno protector de superficie de erysipelothrix rhusiopathiae en e. coli. |
Country Status (8)
| Country | Link |
|---|---|
| US (2) | US8277820B2 (es) |
| EP (1) | EP1724342B1 (es) |
| JP (1) | JP4755977B2 (es) |
| CN (1) | CN101031647B (es) |
| AT (1) | ATE513909T1 (es) |
| DK (1) | DK1724342T3 (es) |
| ES (1) | ES2367128T3 (es) |
| WO (1) | WO2005083072A1 (es) |
Families Citing this family (11)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2008054673A (ja) * | 2006-08-03 | 2008-03-13 | Hokkaido Univ | 組み換え蛋白質の製造方法 |
| JP2014000016A (ja) * | 2012-06-15 | 2014-01-09 | National Agriculture & Food Research Organization | 豚丹毒菌の新規な抗原タンパク質、その遺伝子、及び組換えベクターとその利用 |
| KR101535704B1 (ko) * | 2012-12-28 | 2015-07-27 | 한국생명공학연구원 | 항원성 단백질 고정화를 통한 돈단독 백신 제조방법 |
| CN103941002B (zh) * | 2013-03-15 | 2016-03-16 | 河南省农业科学院 | 猪丹毒杆菌抗原快速检测试纸条 |
| CN103397023B (zh) * | 2013-08-20 | 2014-12-10 | 广东温氏食品集团股份有限公司 | 猪丹毒杆菌的pcr引物及其应用 |
| CN106995489B (zh) * | 2016-01-22 | 2018-11-06 | 华中农业大学 | 一种猪链球菌截短蛋白Sao及应用 |
| TWI638827B (zh) | 2017-07-25 | 2018-10-21 | 國立屏東科技大學 | 交叉保護性重組抗原及含彼之動物疫苗組成物 |
| CN110183520B (zh) * | 2019-05-25 | 2022-12-20 | 青岛易邦生物工程有限公司 | 一种猪丹毒SpaA蛋白及其在制备疫苗中的应用 |
| CN113388624A (zh) * | 2020-09-21 | 2021-09-14 | 浙江理工大学 | 一种猪丹毒SpaA抗原蛋白及其优化克隆的制备方法 |
| CN115850404B (zh) * | 2022-12-13 | 2024-02-09 | 中国兽医药品监察所 | 一种串联优势表位的重组猪丹毒杆菌表面保护抗原a及其应用 |
| CN116284274A (zh) * | 2022-12-13 | 2023-06-23 | 中国兽医药品监察所 | 一种重组猪丹毒杆菌表面抗原SpaA蛋白及其应用 |
Family Cites Families (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN1040923A (zh) * | 1989-06-08 | 1990-04-04 | 易超伦 | 血清组合物及其配制方法 |
| JPH0630771A (ja) | 1992-07-14 | 1994-02-08 | Ajinomoto Co Inc | バクテリアルトランスグルタミナーゼの製造法及び関連物 |
| WO2000047744A1 (en) * | 1999-02-10 | 2000-08-17 | The Rockefeller University | Antigen of erysipelothirx rhusiopathiae comprising an immuno-protective epitope |
| JP3072345B1 (ja) | 1999-03-31 | 2000-07-31 | 農林水産省家畜衛生試験場長 | 豚丹毒菌の組換えサブユニットワクチン |
| CN1281731A (zh) * | 1999-07-22 | 2001-01-31 | 李六金 | 猪用免疫球蛋白注射液 |
| JP3532510B2 (ja) | 2000-07-21 | 2004-05-31 | 独立行政法人農業・生物系特定産業技術研究機構 | 組換え豚丹毒菌防御抗原の回収精製法 |
| JP2002306163A (ja) | 2001-04-11 | 2002-10-22 | Chemo Sero Therapeut Res Inst | 大腸菌を宿主とする遺伝子組換えヒトトロンビンの調製方法 |
-
2005
- 2005-02-08 ES ES05709866T patent/ES2367128T3/es active Active
- 2005-02-08 WO PCT/JP2005/001814 patent/WO2005083072A1/ja active Application Filing
- 2005-02-08 CN CN2005800135953A patent/CN101031647B/zh active Active
- 2005-02-08 DK DK05709866.7T patent/DK1724342T3/da active
- 2005-02-08 AT AT05709866T patent/ATE513909T1/de not_active IP Right Cessation
- 2005-02-08 US US10/590,896 patent/US8277820B2/en active Active
- 2005-02-08 JP JP2006510389A patent/JP4755977B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 2005-02-08 EP EP05709866A patent/EP1724342B1/en active Active
-
2010
- 2010-11-18 US US12/949,606 patent/US8361749B2/en active Active
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CN101031647A (zh) | 2007-09-05 |
| EP1724342A4 (en) | 2008-08-13 |
| US20080286309A1 (en) | 2008-11-20 |
| ATE513909T1 (de) | 2011-07-15 |
| DK1724342T3 (da) | 2011-07-18 |
| JPWO2005083072A1 (ja) | 2007-11-22 |
| US20110059021A1 (en) | 2011-03-10 |
| CN101031647B (zh) | 2010-12-29 |
| US8277820B2 (en) | 2012-10-02 |
| EP1724342B1 (en) | 2011-06-22 |
| WO2005083072A1 (ja) | 2005-09-09 |
| EP1724342A1 (en) | 2006-11-22 |
| JP4755977B2 (ja) | 2011-08-24 |
| US8361749B2 (en) | 2013-01-29 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| ES2367128T3 (es) | Procedimiento para preparar una variante del antígeno protector de superficie de erysipelothrix rhusiopathiae en e. coli. | |
| ES2597439T3 (es) | Antígenos recombinantes del VSR | |
| ES2360296T3 (es) | Vacunas y proteínas de setreptococcus pneumoniae. | |
| JP7072921B2 (ja) | Ａ群レンサ球菌ワクチン | |
| JP5746333B2 (ja) | カンピロバクター感染を減少させるワクチン及び方法 | |
| JP3072345B1 (ja) | 豚丹毒菌の組換えサブユニットワクチン | |
| US20110236470A1 (en) | GLUTAMYL tRNA SYNTHETASE (GtS) FRAGMENTS | |
| US20120034239A1 (en) | Proteins with improved solubility and methods for producing and using same | |
| Agterberg et al. | Outer membrane protein PhoE as a carrier for the exposure of foreign antigenic determinants at the bacterial cell surface | |
| JP5568017B2 (ja) | 組換え鶏伝染性コリーザワクチン及びその製造方法 | |
| RU2691302C1 (ru) | Иммуногенная композиция на основе рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц, а также на основе белковых антигенов и способ получения иммуногенной композиции | |
| JP2015515276A (ja) | ヘパリン結合性赤血球凝集素（ｈｂｈａ）融合タンパク質とその用途をコードする組換え型マイコバクテリウム | |
| JP2015515486A (ja) | 抗原および抗原の組み合わせ | |
| JP2023503058A (ja) | ヘモフィルス・パラスイスに対する新規ワクチン | |
| CN113226361A (zh) | 疫苗多肽组合物及方法 | |
| KR101125244B1 (ko) | 돼지생식기호흡기증후군 바이러스(ｐｒｒｓｖ)의 ｇｐ5를 발현하는 약독화된 보르데텔라 브론키셉티카 균주를 포함하는 ｐｒｒｓｖ 감염증 예방 또는 치료용 조성물, 및 그의 제조 방법 | |
| WO2022055375A1 (es) | Vacuna viva recombinante para sars-cov-2 basada en salmonella enteritidis recombinante | |
| TW202221012A (zh) | 減毒之豬流行性下痢病毒 | |
| BR102022000733A2 (pt) | Processo de produção de proteína quimérica, proteína quimérica, gene, composição imunogênica, e usos | |
| JP2018134074A (ja) | ヘパリン結合性赤血球凝集素（ｈｂｈａ）融合タンパク質とその用途をコードする組換え型マイコバクテリウム | |
| BR102016016891B1 (pt) | Fosfatase ácida recombinante rcp01850 de corynebacterium pseudotuberculosis e seu uso em vacinas de subunidade para a linfadenite caseosa | |
| BR102016016891A2 (pt) | Fosfatase ácida recombinante rcp01850 de corynebacterium pseudotuberculosis e seu uso em vacinas de subunidade para a linfadenite caseosa | |
| WO2017009511A1 (es) | Proteína recombinante del receptor de la ferri-piscibactina y su aplicación para la producción de una composición inmunogénica frente a la pasteurelosis |