ES2334555T3 - Oxidos de hierro coloidal recubiertos estables frente al calor. - Google Patents
Oxidos de hierro coloidal recubiertos estables frente al calor. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2334555T3 ES2334555T3 ES00914867T ES00914867T ES2334555T3 ES 2334555 T3 ES2334555 T3 ES 2334555T3 ES 00914867 T ES00914867 T ES 00914867T ES 00914867 T ES00914867 T ES 00914867T ES 2334555 T3 ES2334555 T3 ES 2334555T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- reduced
- dextran
- polysaccharide
- complex
- iron oxide
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
Classifications
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B82—NANOTECHNOLOGY
- B82Y—SPECIFIC USES OR APPLICATIONS OF NANOSTRUCTURES; MEASUREMENT OR ANALYSIS OF NANOSTRUCTURES; MANUFACTURE OR TREATMENT OF NANOSTRUCTURES
- B82Y5/00—Nanobiotechnology or nanomedicine, e.g. protein engineering or drug delivery
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K33/00—Medicinal preparations containing inorganic active ingredients
- A61K33/24—Heavy metals; Compounds thereof
- A61K33/26—Iron; Compounds thereof
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
- A61K47/50—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
- A61K47/51—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent
- A61K47/56—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule
- A61K47/61—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule the organic macromolecular compound being a polysaccharide or a derivative thereof
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
- A61K47/50—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
- A61K47/69—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the conjugate being characterised by physical or galenical forms, e.g. emulsion, particle, inclusion complex, stent or kit
- A61K47/6921—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the conjugate being characterised by physical or galenical forms, e.g. emulsion, particle, inclusion complex, stent or kit the form being a particulate, a powder, an adsorbate, a bead or a sphere
- A61K47/6923—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the conjugate being characterised by physical or galenical forms, e.g. emulsion, particle, inclusion complex, stent or kit the form being a particulate, a powder, an adsorbate, a bead or a sphere the form being an inorganic particle, e.g. ceramic particles, silica particles, ferrite or synsorb
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K49/00—Preparations for testing in vivo
- A61K49/06—Nuclear magnetic resonance [NMR] contrast preparations; Magnetic resonance imaging [MRI] contrast preparations
- A61K49/18—Nuclear magnetic resonance [NMR] contrast preparations; Magnetic resonance imaging [MRI] contrast preparations characterised by a special physical form, e.g. emulsions, microcapsules, liposomes
- A61K49/1818—Nuclear magnetic resonance [NMR] contrast preparations; Magnetic resonance imaging [MRI] contrast preparations characterised by a special physical form, e.g. emulsions, microcapsules, liposomes particles, e.g. uncoated or non-functionalised microparticles or nanoparticles
- A61K49/1821—Nuclear magnetic resonance [NMR] contrast preparations; Magnetic resonance imaging [MRI] contrast preparations characterised by a special physical form, e.g. emulsions, microcapsules, liposomes particles, e.g. uncoated or non-functionalised microparticles or nanoparticles coated or functionalised microparticles or nanoparticles
- A61K49/1824—Nuclear magnetic resonance [NMR] contrast preparations; Magnetic resonance imaging [MRI] contrast preparations characterised by a special physical form, e.g. emulsions, microcapsules, liposomes particles, e.g. uncoated or non-functionalised microparticles or nanoparticles coated or functionalised microparticles or nanoparticles coated or functionalised nanoparticles
- A61K49/1827—Nuclear magnetic resonance [NMR] contrast preparations; Magnetic resonance imaging [MRI] contrast preparations characterised by a special physical form, e.g. emulsions, microcapsules, liposomes particles, e.g. uncoated or non-functionalised microparticles or nanoparticles coated or functionalised microparticles or nanoparticles coated or functionalised nanoparticles having a (super)(para)magnetic core, being a solid MRI-active material, e.g. magnetite, or composed of a plurality of MRI-active, organic agents, e.g. Gd-chelates, or nuclei, e.g. Eu3+, encapsulated or entrapped in the core of the coated or functionalised nanoparticle
- A61K49/1851—Nuclear magnetic resonance [NMR] contrast preparations; Magnetic resonance imaging [MRI] contrast preparations characterised by a special physical form, e.g. emulsions, microcapsules, liposomes particles, e.g. uncoated or non-functionalised microparticles or nanoparticles coated or functionalised microparticles or nanoparticles coated or functionalised nanoparticles having a (super)(para)magnetic core, being a solid MRI-active material, e.g. magnetite, or composed of a plurality of MRI-active, organic agents, e.g. Gd-chelates, or nuclei, e.g. Eu3+, encapsulated or entrapped in the core of the coated or functionalised nanoparticle having a (super)(para)magnetic core coated or functionalised with an organic macromolecular compound, i.e. oligomeric, polymeric, dendrimeric organic molecule
- A61K49/1863—Nuclear magnetic resonance [NMR] contrast preparations; Magnetic resonance imaging [MRI] contrast preparations characterised by a special physical form, e.g. emulsions, microcapsules, liposomes particles, e.g. uncoated or non-functionalised microparticles or nanoparticles coated or functionalised microparticles or nanoparticles coated or functionalised nanoparticles having a (super)(para)magnetic core, being a solid MRI-active material, e.g. magnetite, or composed of a plurality of MRI-active, organic agents, e.g. Gd-chelates, or nuclei, e.g. Eu3+, encapsulated or entrapped in the core of the coated or functionalised nanoparticle having a (super)(para)magnetic core coated or functionalised with an organic macromolecular compound, i.e. oligomeric, polymeric, dendrimeric organic molecule the organic macromolecular compound being a polysaccharide or derivative thereof, e.g. chitosan, chitin, cellulose, pectin, starch
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P1/00—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
- A61P1/04—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system for ulcers, gastritis or reflux esophagitis, e.g. antacids, inhibitors of acid secretion, mucosal protectants
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P35/00—Antineoplastic agents
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P39/00—General protective or antinoxious agents
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P7/00—Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
- A61P7/06—Antianaemics
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P7/00—Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
- A61P7/08—Plasma substitutes; Perfusion solutions; Dialytics or haemodialytics; Drugs for electrolytic or acid-base disorders, e.g. hypovolemic shock
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Public Health (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Nanotechnology (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Inorganic Chemistry (AREA)
- Ceramic Engineering (AREA)
- Medical Informatics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Diabetes (AREA)
- Radiology & Medical Imaging (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
- Toxicology (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
- Compounds Of Iron (AREA)
- Thermotherapy And Cooling Therapy Devices (AREA)
- Cookers (AREA)
- Chemical Treatment Of Metals (AREA)
- Magnetic Resonance Imaging Apparatus (AREA)
- Materials Applied To Surfaces To Minimize Adherence Of Mist Or Water (AREA)
Abstract
Un complejo de óxido de hierro polisacárido reducido derivado esterilizable en autoclave concebido para su administración a un sujeto mamífero, caracterizado porque puede obtenerse: haciendo reaccionar un polisacárido con una sal de borohidruro o hidrógeno en presencia de un catalizador de hidrogenación para producir un polisacárido reducido; derivando el polisacárido reducido; el polisacárido reducido derivado estando producido a una temperatura inferior a 50ºC; formando un complejo con el polisacárido reducido derivado y una sal de hierro para producir un complejo de óxido de hierro polisacárido reducido derivado; comprendiendo el complejo la adición de una mezcla de sales férricas y ferrosas, el enfriamiento de la solución resultante y la incorporación de hidróxido de amonio para neutralizar la solución; y esterilizando el complejo mediante autoclave; siendo dicho complejo estable a una temperatura de al menos 100ºC.
Description
Óxidos de hierro coloidal recubiertos estables
frente al calor.
La invención se refiere a composiciones que son
polisacáridos reducidos con carboximetilo, y a procedimientos para
su uso como extensores de plasma y para recubrimiento de partículas
de óxido de hierro, y a composiciones compuestas por óxidos de
hierro superparamagnético y no superparamagnético recubiertos con un
polisacárido reducido o un polisacárido reducido derivado, y
procedimientos para su uso como agentes de contraste de formación
de imágenes por resonancia magnética (IRM) y hematínicos.
Desde la invención de la formación de imágenes
por resonancia magnética (IRM), se ha desarrollado una tecnología
paralela de químicos inyectables llamados agentes de contraste. Los
agentes de contraste juegan un rol importante en la práctica de la
medicina puesto que ayudan a producir imágenes IRM más útiles para
la formulación de diagnósticos. En particular, en la práctica
clínica se han desarrollado y adoptado dos clases de agentes de
formación de imagen. Estos son: complejos de gadolinio de bajo peso
molecular como Magnvist®; y óxidos de hierro coloidal. Ninguno de
estos dos tipos de agente es el ideal. La Tabla 1 muestra los
problemas que presentan estos agentes, que incluyen: costo de los
componentes; ineficiencia de la síntesis; pérdida de recubrimiento
frente a la esterilización por autoclave; rango estrecho de
captación en órganos para toma de imágenes; efectos secundarios;
restricción de uso tanto en el primer paso como en la dosificación
de equilibrio y otros descritos en la presente invención. Los
agentes que resuelven estos problemas y que combinan las propiedades
de estos dos tipos de agentes de contraste son altamente
deseables.
Por ejemplo, se puede hacer referencia al
documento WO-A-91/09678, relacionado
con partículas organometálicas recubiertas para uso en
separaciones, y al documento
WO-A-96/09840, que refiere a agentes
de contraste.
En una primera realización, la presente
invención comprende un complejo de óxido de hierro polisacárido
reducido derivado esterilizable en autoclave para administración a
un sujeto mamífero, caracterizado porque puede obtenerse:
- haciendo reaccionar un polisacárido con borohidruro de sodio o hidrógeno en presencia de un catalizador de hidrogenación para producir un polisacárido reducido;
- derivando el polisacárido reducido;
- produciendo el polisacárido reducido derivado a una temperatura inferior a 50ºC;
- formando un complejo con el polisacárido reducido derivado y una sal de hierro para producir un complejo de óxido de hierro polisacárido reducido derivado; comprendiendo el complejo la adición de una mezcla de sales férricas y ferrosas, el enfriamiento de la solución resultante y la incorporación de hidróxido de amonio para neutralizar la solución;
- y
- esterilizando el complejo mediante autoclave;
siendo dicho complejo estable a una temperatura
de al menos 100ºC.
\vskip1.000000\baselineskip
En una segunda realización, la presente
invención comprende un procedimiento para producir dicho complejo
de la manera anteriormente descrita.
En otros aspectos, el complejo de acuerdo con la
presente invención o producido mediante un procedimiento de acuerdo
con la presente invención tiene la forma de un agente de contraste
destinado para IRM in vivo de un mamífero o de un agente
hematínico destinado para tratamiento de un mamífero con deficiencia
de hierro.
Habiéndose establecido el alcance de la presente
invención, ahora se procederá a describirla e ilustrarla en
términos más generales.
En general, la invención se refiere a un
procedimiento para la obtención de un complejo de óxido de hierro
para la administración a un mamífero, comprendiendo el
procedimiento: la producción de un complejo de óxido de hierro
polisacárido reducido y la esterilización del complejo mediante
autoclave. En general, el polisacárido reducido es un polímero de
glucosa reducido. Un ejemplo de un polímero de glucosa reducido es
un dextrano reducido.
El polisacárido reducido se produce mediante la
reacción de un polisacárido con un reactivo seleccionado del grupo
que comprende una sal de borohidruro o hidrógeno en presencia de un
catalizador de hidrogenación. El óxido de hierro es preferentemente
superparamagnético.
La invención también se refiere a un
procedimiento para la obtención de un complejo de óxido de hierro
para la administración a un mamífero, comprendiendo el
procedimiento la producción de un complejo de óxido de hierro
polisacárido reducido derivado y la esterilización del complejo
mediante autoclave. De acuerdo con este procedimiento, la
producción del complejo puede incluir la derivación de un
polisacárido reducido mediante carboxialquilación, por ejemplo,
cuando la carboxialquilación es una carboximetilación. Asimismo, de
acuerdo con este procedimiento, el polisacárido reducido puede ser
un dextrano reducido. El polisacárido reducido derivado puede ser
aislado como la sal de sodio y no contiene un pico de absorción
infrarrojo en la región de 1650-1800 cm^{-1}. En
un aspecto del procedimiento, la producción del polisacárido
reducido derivado se logra a una temperatura menor a
aproximadamente 50ºC. En otro aspecto del procedimiento, la
producción del polisacárido reducido derivado se logra a una
temperatura menor a aproximadamente 40ºC. Incluso en otro aspecto
del procedimiento, el óxido de hierro es superparamag-
nético.
nético.
Asimismo, la invención se refiere a un
procedimiento para la formulación de un complejo de óxido de hierro
recubierto con un polisacárido reducido. Esta composición es para
uso farmacológico y la composición tiene una toxicidad reducida en
comparación con un complejo de óxido de hierro análogo recubierto
con un polisacárido nativo. El procedimiento para la formulación de
dicho complejo de óxido de hierro comprende: la producción de un
complejo de óxido de hierro polisacárido reducido y la
esterilización del complejo mediante autoclave. La formulación
proporciona un polisacárido producido mediante la reacción del
polisacárido con uno de los agentes reductores seleccionado del
grupo compuesto por una sal de borohidruro o hidrógeno en presencia
de un catalizador de hidrogenación. El complejo de óxido de hierro
polisacárido reducido tiene dicha toxicidad reducida. En otro
aspecto adicional del procedimiento, el óxido de hierro es
superparamagnético.
La invención también se refiere a un
procedimiento para la formulación de un complejo de óxido de hierro
recubierto con un polisacárido derivado reducido. Esta composición
es para uso farmacológico y la composición tiene una toxicidad
reducida en comparación con un complejo de óxido de hierro análogo
recubierto con un polisacárido derivado nativo. El procedimiento
para la formulación de dicho complejo de óxido de hierro comprende:
la producción de un complejo de óxido de hierro polisacárido
derivado reducido; y la esterilización del complejo mediante
autoclave. De acuerdo con este procedimiento, la producción del
complejo puede incluir la derivación de un polisacárido reducido
mediante carboxialquilación, por ejemplo, en la que la
carboxialquilación es una carboximetilación. Asimismo, de acuerdo
con este procedimiento, el polisacárido reducido puede ser un
dextrano reducido. El polisacárido reducido derivado puede ser
aislado como la sal de sodio y no contiene un pico de absorción
infrarrojo en la región de 1650-1800 cm^{-1}. En
un aspecto del procedimiento, la producción del polisacárido
reducido derivado se logra a una temperatura menor a
aproximadamente 50ºC. En otro aspecto del procedimiento, la
producción del polisacárido reducido derivado se logra a una
temperatura menor a aproximadamente 40ºC. En otro aspecto adicional
del procedimiento, el óxido de hierro es superparamagnético.
La invención también se refiere a un complejo de
óxido de hierro polisacárido derivado reducido con propiedades de
relajación T1 y T2, las cuales permiten mejorar la señal del agente
de contraste con secuencias T1 y disminuir la señal con secuencias
T2. Otro aspecto de la presente invención se refiere al hecho de que
el óxido de hierro polisacárido derivado reducido puede ser
administrado múltiples veces para la toma de imágenes secuenciales
en un único examen. Incluso otro aspecto del agente es que puede ser
usado para tomar imágenes de múltiples sistemas de órganos,
incluidos el sistema vascular, el hígado, el bazo, la médula ósea y
los ganglios linfáticos.
La invención también se refiere a un complejo de
óxido de hierro polisacárido reducido para ser usado como
suplemento de hierro intravenoso.
La invención también se refiere a un complejo de
óxido de hierro polisacárido derivado reducido para ser usado como
suplemento de hierro intravenoso.
Asimismo, la invención se refiere a un
procedimiento mejorado para la administración a un mamífero de un
complejo de óxido de hierro polisacárido reducido esterilizable en
autoclave. El procedimiento de administración mejorado comprende la
inyección de un complejo de óxido de hierro polisacárido reducido
esterilizable en autoclave en un volumen de 15 ml o inferior. En
otro aspecto el volumen inyectado es inyectado como un bolo. En otro
aspecto adicional del procedimiento, el óxido de hierro es
superparamagnético. En otro aspecto el volumen inyectado
proporciona una calidad de imagen mejorada.
Asimismo, la invención se refiere a un
procedimiento mejorado para la administración a un mamífero de un
complejo de óxido de hierro polisacárido reducido derivado
esterilizable en autoclave. El procedimiento de administración
mejorado comprende: la inyección de un complejo de óxido de hierro
polisacárido derivado reducido esterilizable en autoclave en un
volumen de 15 ml o inferior. En otro aspecto el volumen inyectado es
inyectado como un bolo. En otro aspecto adicional del
procedimiento, el óxido de hierro es superparamagnético. En otro
aspecto de éste, el volumen inyectado proporciona una calidad de
imagen mejorada.
La invención también se refiere a un
procedimiento mejorado para administración en mamíferos de un
complejo de hierro polisacárido reducido de manera tal que la
composición proporciona una toxicidad reducida, en el que la mejora
comprende la utilización de un polisacárido reducido en la
formulación de la composición. En otro aspecto adicional del
procedimiento, el óxido de hierro es superparamagnético.
La invención también se refiere a un
procedimiento mejorado para la administración a un mamífero de un
complejo de hierro polisacárido derivado reducido de manera tal que
la composición proporciona una toxicidad reducida, en el que la
mejora comprende la utilización de un polisacárido derivado reducido
en la formulación de la composición. En otro aspecto adicional del
procedimiento, el óxido de hierro es superparamagnético.
La invención también se refiere a un complejo de
óxido de hierro polisacárido reducido, en el que el polisacárido
reducido es derivado, por ejemplo, el polisacárido derivado reducido
es un polisacárido de carboxialquilo. El carboxialquilo se
selecciona del grupo que consiste en carboximetilo, carboxietilo y
carboxipropilo. Asimismo, el polisacárido reducido puede ser un
dextrano reducido, por ejemplo, el dextrano reducido puede ser un
dextrano reducido de carboximetilo. Otro aspecto del mismo es que
el nivel de derivación del dextrano reducido es de al menos 750
\mumol pero inferior a 1500 \mumol de grupos carboxilos por
gramo de polisacárido, en el que dicha composición tiene una
toxicidad reducida con relación a la composición con respecto a
niveles menores de derivación.
La invención también se refiere a un complejo de
óxido de hierro polisacárido reducido, siendo dicho complejo
estable a una temperatura de al menos 100ºC aproximadamente.
Preferentemente, dicho complejo es estable a una temperatura de
aproximadamente 121ºC. En un aspecto aun más preferente del complejo
de óxido de hierro polisacárido reducido, dicho complejo es estable
a una temperatura de al menos 121ºC aproximadamente durante un
período suficiente como para esterilizar el complejo. En otro
aspecto adicional del procedimiento, el óxido de hierro es
superparamagnético.
La invención también se refiere a un complejo de
óxido de hierro polisacárido derivado reducido, siendo dicho
complejo estable a una temperatura de al menos 100ºC
aproximadamente. Preferentemente, dicho complejo es estable a una
temperatura de aproximadamente 121ºC. En un aspecto aun más
preferente del complejo de óxido de hierro polisacárido reducido,
dicho complejo es estable a una temperatura de al menos 121ºC
durante un período suficiente como para esterilizar el complejo. En
otro aspecto adicional del procedimiento, el óxido de hierro es
superparamagnético.
La invención se refiere preferentemente a un
procedimiento de formulación para uso farmacológico de un complejo
de óxido de hierro polisacárido reducido habiendo aumentado la
estabilidad del pH en comparación con el óxido de hierro dextrano
nativo correspondiente, comprendiendo el procedimiento: la
producción de dextrano; y la reacción de dextrano con una sal de
borohidruro o hidrógeno en presencia de un catalizador de
hidrogenación, haciendo reaccionar el dextrano reducido con sales
de hierro para producir una formulación con pH estable.
La invención se refiere preferentemente a un
procedimiento de formulación para uso farmacológico de un complejo
de óxido de hierro polisacárido derivado reducido habiendo aumentado
la estabilidad de pH en comparación con el óxido de hierro de
dextrano nativo correspondiente, comprendiendo el procedimiento: la
producción de dextrano; y la reacción de dextrano con una sal de
borohidruro o hidrógeno en presencia de un catalizador de
hidrogenación, haciendo reaccionar el dextrano reducido con sales
de hierro para producir una formulación con pH estable.
La invención también se refiere a un
procedimiento de formulación de una composición de dextrano derivado
reducido para uso farmacológico en el que la composición tiene una
toxicidad reducida en comparación con el dextrano nativo,
comprendiendo: la producción de un polisacárido derivado reducido; y
la esterilización del producto mediante autoclave. De acuerdo con
este procedimiento, el polisacárido reducido es obtenido mediante
la reacción de un polisacárido nativo con uno de los diversos
agentes reductores que se seleccionan del grupo que consiste en una
sal de borohidruro o hidrógeno en presencia de un catalizador de
hidrogenación. En un aspecto preferido de esto, el polisacárido es
dextrano.
La producción de la composición puede incluir la
derivación de un polisacárido reducido mediante carboxialquilación,
por ejemplo, cuando la carboxialquilación es una carboximetilación.
Asimismo, de acuerdo con este procedimiento, el polisacárido
reducido puede ser un dextrano reducido. El polisacárido reducido
derivado puede ser aislado como sal de sodio y no contener pico de
absorción infrarrojo en la región de 1650-1800
cm^{-1}. En un aspecto del procedimiento, la producción del
polisacárido reducido derivado se logra a una temperatura de menos
de aproximadamente 50ºC. En otro aspecto del procedimiento, la
producción del polisacárido reducido derivado se logra a una
temperatura de menos de aproximadamente 40ºC.
La invención también se refiere a un
procedimiento mejorado para la administración a un mamífero de un
polisacárido derivado reducido de manera tal que la composición
proporciona una toxicidad reducida, en el que la mejora comprende
la utilización de un polisacárido reducido en la formulación de la
composición.
La invención también se refiere a un
polisacárido reducido, en el que el polisacárido reducido es
derivado, por ejemplo, el polisacárido derivado reducido es un
polisacárido de carboxialquilo. El carboxialquilo se selecciona del
grupo que consiste en carboximetilo, carboxietilo y carboxipropilo.
Asimismo, el polisacárido reducido puede ser un dextrano reducido.
Otro aspecto del mismo es que el nivel de derivación del dextrano
reducido es de al menos 750 micromolar de grupos carboxilo por gramo
de polisacárido, en el que dicha composición tiene una toxicidad
reducida con respecto a la composición con niveles inferiores de
derivación.
La invención también se refiere a un
procedimiento de formulación de una composición de dextrano para uso
farmacológico, presentando una toxicidad reducida en comparación
con el dextrano nativo, comprendiendo el procedimiento la obtención
de dextrano; y la reacción del dextrano obtenido con una sal de
borohidruro o hidrógeno en presencia de un catalizador de
hidrogenación seguido por carboximetilación, reduciendo la toxicidad
de dextrano carboximetilado reducido.
La invención también se refiere a un
procedimiento mejorado de administración a un mamífero de una
composición de polisacáridos del tipo en el que la composición
incluye dextrano de manera tal que la composición proporciona una
toxicidad reducida, en el que la mejora comprende la utilización de
dextrano carboximetilado reducido en lugar de dextrano en la
formulación. La invención también se refiere a un procedimiento
mejorado para la administración a un mamífero de un polisacárido de
manera tal que la composición proporciona una toxicidad reducida,
en el que la mejora comprende la utilización de un polisacárido
carboximetilado reducido en la formulación de la composición.
La invención también se refiere a un
procedimiento de uso de dextranos derivados reducidos como
expansores de sangre.
La Figura 1 muestra un análisis espectrográfico
infrarrojo por transformada de Fourier (FTIR) de sal de sodio de
dextrano reducido de carboximetilo (CMRD) obtenida con el Ejemplo
5.
La Figura 2 muestra un análisis espectrográfico
FTIR de óxido de hierro superparamagnético ultra pequeño recubierto
con sal de sodio de CMRD (USPIO; ver Patente de los EE.UU.
5.055.288) obtenido en el Ejemplo 31.
La Figura 3 es un gráfico que muestra la
cantidad de grupos carboximetilo (micromoles) por gramo de producto,
en la ordenada, como una función de la cantidad de ácido
bromoacético en mg/gramo usado en las reacciones con dextrano
reducido como material de partida, en la abscisa. El gráfico se
realizó con datos obtenidos de la Tabla 2.
La Figura 4 muestra farmacocinética de USPIO
recubierto con CMRD en la sangre de tres ratas macho luego de la
administración intravenosa de 2,2 mg de hierro por kg de peso
corporal. Las muestras (0,25 ml) de sangre se tomaron en los
tiempos indicados en la abscisa, y los tiempos de relajación se
midieron con un espectrómetro Brucker Minispec.
La Figura 5 muestra el gráfico usado para
determinar la semivida (67 minutos) de USPIO recubierto con CMRD en
la sangre de ratas. Los datos de la Figura 4 se usaron para generar
el gráfico de la Figura 5. El rango de semivida de 61 a 75 minutos
estuvo dentro del nivel de confianza del 95%.
La Figura 6 muestra IRM en ratas, previa
administración (A) y post administración (B) de agentes de
contraste, porción anterior arriba. Se administró USPIO recubierto
con CMRD (5 mg de hierro por kg de peso corporal) en la vena
femoral antes de la toma de imagen de contraste post administración.
La figura ilustra una visualización mejorada del corazón y las
arterias y venas circundantes como consecuencia de la administración
de USPIO recubierto con CMRD. La toma de imágenes se realizó con un
reproductor de imágenes de resonancia magnética General Electric 2
Tesla.
La Figura 7 muestra imágenes IRM de un cerdo,
previa administración (B) de un agente de contraste, porción
anterior arriba. Se administró USPIO recubierto con CMRD (Ejemplo
31; 4 mg de hierro por kg de peso corporal) en la vena femoral
antes de la toma de imagen de contraste post administración. La
figura presenta una visualización mejorada del corazón y las
arterias y venas circundantes como consecuencia de la administración
de USPIO recubierto con CMRD. La toma de imágenes se realizó con un
reproductor de imágenes de resonancia magnética Siemans 1.5T
Magnatom Vision.
La Figura 8 muestra imágenes IRM de la porción
anterior de un ser humano normal previa administración (A) y post
administración (B) de un agente de contraste de imagen. Se
administró USPIO recubierto con CMRD (4 mg de hierro por kg de peso
corporal) como un bolo en la vena del brazo antes de la toma de
imagen de contraste post administración. La reproducción de
imágenes se realizó 15 a 30 minutos después de la administración del
agente de contraste. La imagen presenta una visualización mejorada
del corazón y las arterias y venas circundantes.
La Figura 9 muestra la cinética de depuración de
sangre del agente de imagen en humanos. Se administró USPIO
recubierto con CMRD (4 mg de hierro por kg de peso corporal) como un
bolo en la vena del brazo antes de la toma de muestras de sangre.
Las muestras se analizaron para una relajación de 1/T2 para
determinar la concentración en sangre de USPIO recubierto con CMRD.
El gráfico muestra la concentración de USPIO recubierto con CMRD
(ordenada) como una función de tiempo (abscisa).
La Tabla 1 resume las características de dos
clases de agentes de contraste de IRM que han sido anteriormente
descritos y muestra una comparación de sus características con las
de un agente de contraste ideal. Los agentes de la invención
representan las características ideales, como se demuestra en la
presente.
Sorprendentemente, el desarrollo y la síntesis
de preparaciones de óxido de hierro superparamagnético ultra
pequeño (USPIO) recubierto con dextranos reducidos polisacáridos y
derivados de dextranos reducidos, tales como los agentes con las
propiedades deseadas aquí descritas, derivan de un cambio en la
naturaleza química de un componente, el dextrano T10. Este cambio
supuso la reducción de un grupo aldehído terminal a un alcohol del
polisacárido empleado en su síntesis al alcohol (Esquema 1). El
Esquema 1 muestra el cambio químico de un polisacárido tal como
dextrano al ser tratado con borohidruro de sodio. La forma
hemiacetal del polisacárido (estructura 1) está en equilibrio con
la forma del aldehído del polisacárido (estructura 2). La estructura
2 representa menos del 0,01% de la mezcla de equilibrio (Brucker,
G. (1974) Organic Chemistry: Amino Acids, Peptides and
Carbohydrates, Tankonykiado Press, Budapest, p. 991). El tratamiento
de la estructura 2 con borohidruro de sodio da como resultado una
conversión irreversible a la forma poliol lineal del polisacárido
(estructura 3). El equilibrio dinámico entre las estructuras 1 y 2
permite la completa conversión, cuando es tratado con borohidruro
de sodio, en poliol lineal (estructura 3).
Esquema
1
\vskip1.000000\baselineskip
Las partículas de óxido de hierro
superparamagnéticas recubiertas con dextrano presentan un interés
particular como agentes de contraste en imágenes por resonancia
magnética (MRI) debido a su capacidad para mejorar las imágenes del
hígado y la linfa. Feridex LV® (Advanced Magnetics, Inc., Cambridge
MA) es un agente de contraste MRI de óxido de hierro
superparamagnético recubierto con dextrano, y está aprobado para su
uso en humanos. Combidex® (Advanced Magnetics, Inc.) es un óxido de
hierro superparamagnético ultra pequeño (USPIO) recubierto con
dextrano que ha completado la Fase III de ensayos clínicos para la
reproducción de imágenes del hígado y la Fase III de ensayos para la
reproducción de imágenes de la linfa. Combidex® tiene un diámetro
medio más pequeño (20 nm) que Feridex LV® (60 nm), lo cual le otorga
una biodistribución diferente en humanos. Combidex® está fabricado
mediante la adición de una base a una solución compuesta por
dextrano, cloruro férrico y cloruro ferroso. El proceso de síntesis
comprende la combinación de ingredientes, el calentamiento y la
purificación mediante ultrafiltración. Sin embargo, el producto de
dextrano agregado a las partículas en la reacción no es eficiente.
El dextrano de grado farmacéutico es el componente más costoso de la
síntesis de Combidex®. Es deseable un uso más eficiente del dextrano
en la síntesis de Combidex® para poder disminuir los costos de
producción.
La esterilización terminal (autoclave) es un
procedimiento preferente para la esterilización de fármacos
inyectables. Sin embargo, muchos de los coloides de óxido de hierro
superparamagnético empleados como agentes de contraste en IRM son
sintetizados con revestimientos y recubrimientos de polímeros que
modifican la biodistribución y eliminación de estos coloides. Al
exponerse al calor durante todo el proceso de autoclave, el
revestimiento polimérico puede disociarse de los núcleos de óxido
de hierro. Las consecuencias funcionales de la disociación del
polímero del óxido de hierro son cambios físicos en el material,
tales como aglutinación, cambios de biodistribución (cambios en la
semivida en plasma) y cambios en el perfil de toxicidad (aumentos
potenciales frente a eventos adversos). Por ejemplo, una
disminución sustancial en el pH de la solución puede ser detectada
luego de la esterilización por autoclave de las partículas de
dextrano de hierro y el pH continúa disminuyendo al dejar en
reposo.
Diversas soluciones han sido descritas respecto
al problema de la resistencia frente al estrés por calor. Palmaci
et al., Patente de los EE.UU. 5.262.176, empleó dextrano
entrecruzado para estabilizar el recubrimiento de las partículas de
óxido de hierro previo al autoclave. El proceso de entrecruzado
utiliza agentes nocivos tales como epiclorohidrina y
epibromohidrina, los cuales deben ser eliminados del coloide luego
de la reacción de entrecruzado.
También se han descrito procedimientos para
prevenir el aglutamiento del coloide inducido por el estrés por
calor que no tienen efecto sobre la disociación del recubrimiento.
Estos procedimientos generalmente incluyen el uso de excipientes
durante el proceso de autoclave. Groman et al., Patente de
los EE.UU. 4.827.945, y Lewis et al., Patente de los EE.UU.
5.055.288, emplean citrato para evitar el aglutamiento de las
partículas al disociarse el recubrimiento. Groman et al.,
Patente de los EE.UU. 5.102.652, emplea carbohidratos de bajo peso
molecular tal como manitol para evitar el aglutamiento durante el
proceso de autoclave. Estos excipientes aumentan el costo y la
complejidad de la fabricación del producto y no resuelven el
problema de disociación del polímero de la partícula de hierro.
Josephson et al., Patente de los EE.UU.
5.160.726, evita el estrés por calor en el recubrimiento mediante
el uso de esterilización por filtro en lugar de calentamiento para
esterilizar el coloide. La esterilización de filtro es costosa ya
que tanto el proceso de esterilización como el cierre del recipiente
deben llevarse a cabo en un ambiente libre de gérmenes. Además, la
esterilización de filtro tiene un grado mayor de fracaso que el
proceso de autoclave, lo cual refleja la incapacidad para obtener un
ambiente para el paso de la filtración que esté totalmente libre de
gérmenes.
Maruno et al., Patente de los EE.UU.
5.204.457, describe una partícula recubierta con dextrano de
carboximetilo con una estabilidad mejorada hasta los 80ºC por un
período extendido de tiempo pero no enseña el uso de esterilización
terminal mediante autoclave. Hasegawa et al. (Japan J. Appl.
Phys., Parte 1, 37(3A):1029-1032, 1998)
describe partículas de hierro recubiertas con dextrano de
carboximetilo con estabilidad térmica a 80ºC, pero no enseña el uso
de una partícula recubierta con dextrano reducido de carboximetilo y
tampoco enseña el uso de esterilización terminal mediante
autoclave.
Los agentes para imágenes por resonancia
magnética actúan mediante la afectación de los tiempos de relajación
normales, principalmente en los protones del agua. Hay dos tipos de
relajación: una conocida como longitudinal o relajación T1 y la
otra conocida como transversal o relajación T2. La relajación T1 en
general provoca una mayor luminosidad de la imagen producto de un
aumento en la señal. Los procesos T1 son más útiles en la
reproducción de imágenes del sistema vascular. La relajación T2 en
general provoca un oscurecimiento de la imagen producto de una
disminución en la señal. Los procesos T2 son más útiles para la
reproducción de imágenes de órganos como el hígado, el bazo o
ganglios linfáticos que contengan lesiones tales como tumores. Todos
los agentes de contraste tienen propiedades T1 y T2; sin embargo
tanto la relajación T1 como T2 pueden caracterizar la propiedad de
relajación dominante de un agente de contraste particular. Los
agentes de contraste basados en gadolinio de bajo peso molecular
son agentes T1 y tienen su aplicación principal en la reproducción
de imágenes de problemas médicos vasculares como accidentes cerebro
vasculares y aneurismas y del cerebro. Los agentes de contraste
coloidal basados en óxido de hierro son agentes T2 y tienen su
aplicación principal en la reproducción de imágenes de tumores del
hígado y de los ganglios linfáticos (próstata y cáncer de mama). Es
deseable un agente que contenga los dos tipos de propiedades: T1 y
T2. La utilización de dicho agente (i) ofrecería un único fármaco
para todas las aplicaciones y simplificaría el inventario de la
farmacia, (ii) simplificaría la toma de imágenes en la habitación
de IRM, y (iii) mejoraría el cuidado del paciente permitiendo el
estudio simultáneo de diversos problemas médicos en un único
paciente mediante un único estudio, en lugar de requerir el uso de
uno de los dos agentes de contraste T1 o T2.
Un dextrano puede suscitar una respuesta
anafiláctica, en ocasiones fatal, al ser administrado por vía
intravenosa (i.v.) en hombres (Briseid, G. et al., Acta
Pharmcol. et Toxicol., 1980, 47:119-126; Hedin, H.
et al., Int. Arch. Allergy and Immunol., 1997:
113:358-359). También se han observado reacciones
adversas relacionadas con la administración de coloides de óxido de
hierro recubiertos con dextrano magnético. Estos coloides de óxido
de hierro recubiertos con dextrano no magnético que tienen utilidad
como hematínicos, en particular como un complemento al tratamiento
con eritropoyetina para pacientes de diálisis renal en etapa final,
pueden tener efectos secundarios.
Se puede obtener información relacionada con las
propiedades anatómicas del sistema vascular mediante el uso de
agentes de contraste de dos maneras distintas. Cuando se administra
por primera vez el agente de contraste en forma de bolo, pasa
inicialmente a través del árbol vascular como una masa relativamente
coherente. La coordinación del momento de captura de imagen de la
propiedad anatómica deseada con el momento en que el bolo pasa por
ese lugar puede producir información útil. Esta técnica basada en el
uso de agente de contraste es llamada imagen del primer paso. Más
tarde, el bolo se diluye y se mezcla, logrando una concentración
equilibrada en el sistema vascular. Bajo determinadas
circunstancias, este equilibrio o estado estable puede ofrecer
información útil. La reproducción de imágenes puede realizarse en
una fase temprana, a pocos minutos de la inyección del agente de
contraste ("primer paso"), y en una fase tardía, luego de diez
minutos de la inyección del agente de contraste (fase de
equilibrio). Los agentes gadolinios son adecuados solamente para la
reproducción de imagen de primer paso debido a su pronta difusión
desde el sistema vascular hacia los espacios intersticiales de los
tejidos. Los óxidos de hierro coloidal anteriormente descritos son
útiles para el equilibrio ya que requieren una administración
diluida a lo largo de un período de tiempo prolongado. Los óxidos de
hierro coloidal no se pasan al espacio intersticial pero pueden
permanecer en el sistema vascular durante horas. Es deseable un
agente que ofrezca la posibilidad de realizar tanto la imagen de
primer paso como la imagen de equilibrio.
Durante la administración en un entorno médico
de un agente de contraste para imagen de "primer paso", el
tiempo de reproducción de imagen y el pasaje del "primer paso"
del agente de contraste puede no ser coincidente. Si no se obtiene
una imagen útil, es deseable la administración de una segunda dosis
de agente de contraste para obtener otra imagen de "primer
paso". En otras ocasiones, los radiólogos encuentran útil
estudiar varios volúmenes para el paciente que requiera un régimen
de dosificación múltiple de agente de contraste con el fin de
obtener imágenes de "primer paso" en cada uno de los múltiples
lugares de interés. Con agentes de contraste gadolinios, esta
aplicación de "primer paso" de administración múltiple no es
posible debido a que el gadolinio se escapa del espacio vascular
produciendo un fondo confuso alrededor de los vasos sanguíneos de
interés. Los agentes de contraste coloidal de óxido de hierro
comunes no son adecuados ya que no son administrados como un bolo
sino como una solución diluida a lo largo de un período de tiempo
largo, obviando las aplicaciones de "primer paso".
El diagnóstico del progreso del tumor en
pacientes con cáncer es importante para caracterizar la etapa de la
enfermedad y para evaluar el tratamiento. Para minimizar el costo y
la incomodidad del paciente, es deseable que en un estudio IRM se
administre una única dosis de agente de contraste que permita la
evaluación de sistemas de órganos múltiples que estén afectados por
la enfermedad. Por ejemplo, en un cáncer de mama primario, es
deseable evaluar el estado del tumor en las mamas y en sitios
metastáticos múltiples incluyendo el hígado, bazo, médula ósea y
ganglios linfáticos. La administración de agentes de contraste a
base de gadolinio puede no satisfacer este requerimiento debido a
su corta semivida en el cuerpo, su filtración al sistema vascular y
su incapacidad para concentrarse en los órganos de interés. Los
agentes de contraste a base de coloide de óxido de hierro tal como
Combidex® pueden servir en esta capacidad múltiple mientras que
Feridex I.V.®, otro agente de contraste de coloide de óxido de
hierro, está limitado a la reproducción de imagen del hígado y
bazo.
La administración de un agente de contraste en
un volumen pequeño (inferior a 5 ml) es deseable ya que, la
administración de un volumen pequeño mejora la resolución obtenida
en la imagen de primer paso y minimiza el tiempo de inyección e
incomodidad al paciente. Los agentes de contraste a base de
gadolinio se administran en volúmenes de aproximadamente 30 ml
debido a limitaciones causadas por la solubilidad y potencia de
estos agentes. Actualmente, los agentes de contraste basados en
óxido de hierro se administran como una solución diluida en gran
volumen (50-100 ml) a lo largo de un período de
tiempo prolongado (30 minutos). Estas limitaciones surgen a partir
de temas de seguridad asociados con la administración rápida y
concentrada de agentes a base de óxido de hierro. La inyección de
bolos es deseable ya que permite imágenes de primer paso y acorta el
tiempo de contacto entre el paciente y el prestador de servicios
médicos. Asimismo, la inyección de bolos permite al profesional
administrar el agente de contraste mientras la persona está en el
aparato de IRM durante el estudio, optimizando así el uso eficiente
del instrumento de imagen. Los agentes a base de gadolinio pueden
ser administrados como un bolo.
Los agentes de contraste a base de gadolinio
comprenden una molécula quelante y un catión de gadolinio. El
gadolinio es un elemento tóxico y debe ser expulsado del cuerpo para
evitar toxicidad. Los óxidos de hierro coloidal no son expulsados
del cuerpo pero son procesados en el hígado y otros órganos hasta
convertirse en hierro metabólico, tal como el hierro en la
hemoglobina. De esta forma, las composiciones de la invención
pueden servir como un complemento de hierro para pacientes que
sufren de anemia y son especialmente útiles para pacientes bajo
tratamiento con eritropoyetina.
Una realización de la invención proporciona un
procedimiento para la síntesis de un coloide de un óxido de hierro
asociado con un recubrimiento polisacárido soluble en agua de manera
que mitigue la disociación del recubrimiento del óxido de hierro
cuando el material esté sujeto a estrés por calor.
De la forma que se utiliza en la presente y en
las reivindicaciones adjuntas, el "estrés por calor" se define
como el calentamiento del coloide hasta aproximadamente 121ºC o más
durante aproximadamente 30 minutos con pH neutro, u otras
combinaciones de tiempo, temperatura y pH que son bien conocidas en
la técnica para esterilizar en autoclave (o esterilización
terminal) un fármaco inyectable.
Un procedimiento que es una realización de la
invención incluye los pasos de tratamiento de un polisacárido con
un agente de reducción tal como una sal de borohidruro o hidrógeno
en presencia de un catalizador de hidrogenación como Pt o Pd para
obtener el polisacárido reducido, de forma tal que el azúcar de
reducción terminal haya sido reducida para producir una estructura
polihídrica. El polisacárido reducido puede ser una
arabinogalactana, un almidón, una celulosa, un hidroxietil almidón
(HES), una inulina o un dextrano. Además, el polisacárido puede
funcionalizarse adicionalmente antes de la formación de partículas.
El procedimiento comprende además la mezcla del polisacárido
reducido con sales de hierro en una solución ácida seleccionada
entre el grupo compuesto por sales férricas, sales ferrosas o una
mezcla de sales férricas y ferrosas, el enfriamiento de la solución
y la neutralización de la solución con una base y la recuperación
del coloide de óxido de hierro recubierto.
De acuerdo con otra realización de la invención,
las bases que pueden emplearse para la etapa de neutralización del
coloide son: hidróxido de sodio, carbonato de sodio y más
preferentemente hidróxido de amonio. En otra realización de la
invención, el derivado polisacárido es dextrano reducido y las sales
de hierro pueden ser sales ferrosas y férricas, lo cual produce un
coloide de óxido de hierro superparamagnético con un recubrimiento
soluble al agua que no se disocia del núcleo del óxido de hierro
frente al estrés por calor durante la esterilización terminal.
En otra realización de la invención, únicamente
las sales férricas son utilizadas, produciendo una partícula no
superparamagnética.
En otra realización, se puede preparar un
coloide recubierto mediante la adición de un polisacárido a un sol
de óxido de hierro (una dispersión coloidal en un líquido) ajustando
el pH entre 6-8 y recuperando el coloide de óxido
de hierro recubierto.
El término "coloide" de la forma que se
utiliza en esta memoria descriptiva y en las reivindicaciones
adjuntas incluirá cualquier macromolécula o partícula de tamaño
menor a aproximadamente 250 nm. Los coloides polisacáridos de óxido
de hierro de la invención han mejorado sustancialmente las
características físicas y el proceso de fabricación en comparación
con los materiales anteriormente descritos. Las características
físicas mejoradas se evidencian en la capacidad del coloide de
soportar el estrés por calor, como se demostró al someter el
coloide a una temperatura de 121ºC durante 30 minutos. Las
partículas de coloide realizadas de acuerdo con la invención
muestran menor evidencia de disociación del polisacárido frente al
estrés, permaneciendo coloidal y sin exhibir cambios apreciables de
tamaño.
Durante la fabricación, el proceso que
constituye una realización de la invención emplea típicamente una
décima parte o menos de la cantidad de polisacáridos requeridos en
las preparaciones previas a base de polisacáridos no reducidos, lo
cual implica un ahorro sustancial en el costo de materias primas
gracias a la mejor eficiencia del proceso de invención.
La variación en factores tales como la
concentración de derivados polisacáridos, concentración de bases y/o
concentración de Fe(III)/Fe(II) puede producir
coloides con diferentes susceptibilidades magnéticas y tamaños. El
cambio de los índices Fe(III)/Fe(II) modifica el
tamaño de partícula y altera la susceptibilidad magnética. Los
índices superiores (por ejemplo, 2,0 mol/mol) tienden a disminuir la
susceptibilidad mientras que los índices inferiores (por ejemplo,
menor a 1,5 mol/mol) tienden a aumentar el tamaño de la
partícula.
El proceso puede ser ajustado para producir
coloides con diferentes propiedades biológicas mediante el cambio
de tipo de polisacárido y continuando la derivación de la partícula
luego de la síntesis.
Los coloides que constituyen una realización de
la invención pueden ser usados como agentes de contraste para las
imágenes por resonancia magnética (IRM) o en otras aplicaciones tal
como fraccionamiento magnético de células, inmuno ensayos,
administración de fármacos de alcance magnético y como complemento
terapéutico de hierro inyectable. Estos coloides son especialmente
adecuados para administración parenteral ya que la esterilización
final es típicamente por autoclave, un procedimiento preferente
porque elimina la viabilidad de todas las formas de vida celular
incluyendo las esporas bacterianas y los virus. Los procedimientos
anteriores de realización de coloides requerían la adición de
excipientes como citrato o polisacáridos de bajo peso molecular como
estabilizadores durante el proceso de autoclave (ver Patente de los
EE.UU. 4.827.945 y Patente de los EE.UU. 5.102.652) o evitaban por
completo el estrés por calor mediante la esterilización de filtro
(ver Patente de los EE.UU. 5.150.726). De esta forma, las
realizaciones de la presente invención que son los procedimientos
para la síntesis de coloides y las realizaciones de la presente
invención que comprenden las composiciones de coloides, presentan
utilidades significativamente mejoradas como agentes de contraste
IRM y agentes hematínicos que son complementos de hierro. Las
mejoras presentadas por estos agentes en relación a la técnica
anterior, quedan demostradas en los siguientes ejemplos: los
agentes que son realizaciones de la presente invención se pueden
esterilizar mediante autoclave y por lo tanto son óptimos para la
conservación a largo plazo a temperatura ambiente; estos agentes no
requieren la adición de excipientes para el mantenimiento de la
estabilidad durante el proceso de esterilización o conservación;
los agentes no son tóxicos para los mamíferos, incluyendo los
humanos; una dosis efectiva de los agentes usada para la
reproducción de imagen supone una cantidad más pequeña de material
que los agentes descritos en la técnica; y la farmacocinética
posterior a la administración es tal que las dosis sucesivas
reiteradas administradas luego de un breve intervalo posterior a la
administración de una primera dosis, pueden ser usadas para obtener
imágenes adicionales durante una única visita clínica y un único
uso del aparato de imagen.
En el caso del dextrano y los derivados del
mismo, las formulaciones preparadas siguiendo este procedimiento
son menos inmuno receptivas en mamíferos, como se demuestra en los
datos obtenidos usando un modelo de rata y en ensayos clínicos
realizados en seres humanos. Las partículas de hierro recubiertas de
dextrano y de derivados de dextrano, mejoraron las imágenes del
corazón, pulmones, riñones y otros órganos y sistemas en tres
especies de mamíferos: ratas, cerdos y humanos. Las partículas de
hierro recubiertas de dextrano o derivados de dextrano también
pueden utilizarse como agentes hematínicos para producir hierro en
un formato de absorción más eficiente que el real en complementos
de hierro a grupos de pacientes con carencias crónicas de hierro
como por ejemplo los pacientes de diálisis, pacientes con cáncer,
pacientes con gastroenteritis y receptores de eritropoyetina. Los
dextranos reducidos derivados también pueden ser usados como
extensores de plasma que, a diferencia de la sangre y de las
fracciones sanguíneas, no tienen que ser inmunológicamente
reticulados, y a diferencia de la preparación de la albúmina de
suero humano, pueden ser esterilizados de manera tal que los virus,
incluyendo las cepas de hepatitis, CMV y VIH, encefalitis
espongiformes y otros agentes infecciosos, son destruidos. Los
extensores de plasma de la invención no tienen que ser refrigerados
o almacenados fuera de la luz y el calor y por lo tanto son
ventajosos en situaciones de emergencias médicas, como tratamientos
de shock causado por pérdida de sangre como traumatismo, incluso en
climas tropicales.
Los Ejemplos 1, 2 y 3 muestran los
procedimientos para la realización de dextranos reducidos del tipo
T1, T5 y T10 respectivamente. El Ejemplo 4 describe la preparación
de pululano reducido.
Los Ejemplos 5-9 describen la
síntesis de dextrano reducido de carboximetilo T10 con diferentes
grados de carboximetilación, a partir del dextrano nativo T10
(Tabla 2).
Los Ejemplos 10-15 describen la
síntesis de dextrano reducido de carboximetilo T10 con diferentes
grados de carboximetilación, partiendo de dextrano reducido T10
(Tabla 3).
Los Ejemplos 16-18 describen la
síntesis de dextrano de carboximetilo T10, T40 y T70 a partir de
dextrano
nativo.
nativo.
Los Ejemplos de comparación
19-26 describen la preparación de óxidos de hierro
recubiertos con dextrano nativo y reducido. Las condiciones para
las reacciones de estos ejemplos fueron elegidas para producir USPIO
recubiertos con polisacáridos reducidos o no reducidos. Las
condiciones de reacción para las preparaciones de óxido de hierro
dextrano nativo fueron las mismas que para las preparaciones de
dextrano reducido de igual peso molecular, permitiendo así, la
comparación de la efectividad de los dextranos respectivos en el
recubrimiento de partículas. El diámetro de volumen medio (DVM) y
la susceptibilidad magnética de las preparaciones de óxido de hierro
obtenidas mediante el uso de polisacáridos reducidos en comparación
con polisacáridos nativos (preparados en estos ejemplos) están
resumidos en la Tabla 4.
Los Ejemplos de comparación
27-29 describen un procedimiento para la preparación
de USPIO con dextranos nativos T1, T5 y T10, para obtener coloides
de óxido de hierro con un diámetro de partícula menor a 30 nm. En la
Tabla 5 se muestra una comparación de los efectos de los dextranos
nativos (Ejemplos 27-29) y sus respectivos
dextranos reducidos (Ejemplos 19, 21 y 23) en la síntesis y las
propiedades de los coloides de óxido de hierro.
Los Ejemplos 30-31 describen la
preparación de USPIO recubierto con dextrano nativo de carboximetilo
T10 y dextrano reducido de carboximetilo T10.
Los ejemplos 32-41 describen la
preparación de USPIO recubierto con preparaciones de dextrano
reducido de carboximetilo T10 con distintos alcances de
carboximetilación. La Tabla 6 muestra el efecto del alcance de la
carboximetilación de CMRD sobre el tamaño de USPIO. La Tabla 7
muestra el efecto del alcance de la carboximetilación de CMRD sobre
la solubilidad de una solución de cloruro férrico/ferroso.
Los Ejemplos 42-48 describen la
síntesis de soles de óxido de hierro y su estabilización con
dextranos nativos y reducidos y CMRD. El Ejemplo 49 describe la
preparación de coloide de óxido de hierro no magnético cubierto con
CMRD empleando una precipitación base de cloruro férrico y CMRD.
El Ejemplo 50 estudia el efecto del proceso de
esterilización mediante autoclave de diversas preparaciones de
USPIO recubierto con dextranos nativos o reducidos sobre las
propiedades de estas partículas. Los resultados se muestran en las
Tablas 8 y 9.
El Ejemplo 51 presenta las propiedades de
relajación de diversos agentes de contraste comparando estas
propiedades para agentes de contraste a base de gadolinio y USPIO
preparados con dextrano nativo y dextrano reducido de carboximetilo
T10 (Tabla 10).
En los Ejemplos 52-53 se
determinó la presencia de síntomas de toxicidad en ratas de USPIO
recubierto con dextrano reducido y no reducido (nativo) con
respuesta a una reacción anafiláctica. El alcance de la reacción de
tipo anafiláctica se determinó mediante el volumen de edema de
patas. Se realizaron estudios similares utilizando dextranos
nativos, reducidos y reducidos carboximetilados. Los resultados
están resumidos en las Tablas 11-14.
El Ejemplo 54 y las Figuras 4 y 5 muestran la
cinética de depuración de un USPIO recubierto con CMRD en la
circulación de una rata. Se determinó la semivida del agente.
En el Ejemplo 55 y la Figura 6 se muestra un
escaneo de IRM mejorado posterior a la administración de USPIO
recubierto con CMRD, el escaneo muestra imágenes del corazón, la
aorta y otras arterias cardíacas de una rata. El Ejemplo 56 y la
Figura 7 muestran un escaneo mejorado con USPIO recubierto con CMRD
de la porción anterior de un cerdo. El Ejemplo 57 muestra que la
inyección de USPIO recubierto con CMRD en seres humanos como parte
de un ensayo clínico, no produjo efectos adversos. El Ejemplo 57
describe la biodistribución (Figura 8), la cinética de imagen
(Figura 9 y Tabla 15) y la ausencia de fondo en el uso de IRM de
este material en humanos. Los datos de este ejemplo muestran la
capacidad del profesional de la invención para realizar
administraciones múltiples y obtener imágenes posteriores dentro de
un tiempo real de visita al consultorio o a una instalación de
IRM.
\vskip1.000000\baselineskip
Los polisacáridos reducidos fueron preparados
mediante tratamiento con exceso de borohidruro de sodio y
generalmente purificados mediante cinco ciclos de ultrafiltración.
En todos los ejemplos se utilizó agua destilada. En el caso de
polisacárido pululano, la mezcla de reducción se utilizó sin
purificación adicional. En todos los casos, los productos mostraron
menos de 5% de contenido aldehído residual. La concentración de
aldehído residual fue determinada mediante la aplicación de un
ensayo azul de tetrazolio modificado (Jue, C. K. et al., J.
Biochem. Biophys. Methods, 1985, 11:109-15). La
concentración de dextrano se determinó mediante un ensayo de ácido
fenólico/sulfúrico (Kitchen, R., Proc. Sugar Process. Res. Conf.,
1983, 232-47). En aquellos casos en los que la
ultrafiltración fue omitida, quedó demostrado que, salvo el dextrano
T1, las sales de borato residuales no afectaron la formación de
partículas. Los Ejemplos 1 al 4 presentan procedimientos de síntesis
de dextranos T1, T5 y T10 polisacáridos reducidos y pululano,
respectivamente. Los tiempos de retención se determinaron con una
columna Ultrahydrogel 250 de Waters, SN T52262A33, con solución
salina tamponada con fosfato 20 mM, con una velocidad de flujo de
0,4 ml/min.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano T1 (10 g) en 100 ml de agua
a 25ºC, se agregó 1,0 g de borohidruro de sodio y la mezcla se
agitó durante 12 h. El pH se llevó a 5,0 con HCl 6M y se agregaron
200 ml de etanol (anhidro). El precipitado se obtuvo mediante
centrifugación. Se decantó la capa etanol/agua y el residuo se
disolvió en 100 ml de agua. Se utilizó la adición de 200 ml de
etanol absoluto para lograr una segunda precipitación y el
etanol/agua fue nuevamente decantado. El producto precipitado se
disolvió en agua y fue sometido a liofilización para producir un
sólido blanco con un rendimiento de 60%. Los tiempos de retención
(min) de HPLC observados fueron: para el dextrano reducido, 24,4; y
para el dextrano nativo, 24,4.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano T5 (4 g) en 25 ml de agua a
25ºC, se agregaron 83 mg de borohidruro de sodio y la mezcla se
agitó durante 12 h. El pH se llevó a 5,0 con HCl 6M. Se ultrafiltró
la mezcla con un filtro de membrana de corte de peso molecular
(MWCO) de 1 kDa. El producto fue liofilizado para producir un sólido
blanco y se obtuvo un rendimiento del 70%. Los tiempos de retención
(min) de HPLC observados fueron: para el dextrano reducido, 22,9; y
para el dextrano nativo, 21,9.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano T10 (5,003 g) en 26,011 g
de agua. Se agregó borohidruro de sodio (52,5 g) y la mezcla se
agitó durante 24 horas. El pH se ajustó a 7,1 con HCl 6N. El
producto se purificó mediante ultrafiltración repetida con una
membrana de ultrafiltración de 3 kDa y se liofilizó para producir un
sólido blanco. Rendimiento: 3.129 g. Los tiempos de retención (min)
de HPLC observados fueron: para el dextrano reducido, 21,6; y para
el dextrano nativo, 21,1.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió pululano (90 g) en 0,8 ml de agua a
25ºC y se agregó 1 mg de borohidruro de sodio. La mezcla se agitó
durante 12 h y se utilizó directamente en la preparación de
USPIO.
Procedimientos generales para la síntesis de
un dextrano reducido de carboximetilo usando dextrano nativo T10
como sustrato.
Los Ejemplos 5-9 describen la
síntesis de dextranos reducidos de carboximetilo a partir de
dextrano nativo. Se presentan dos procedimientos generales de
síntesis, un procedimiento con baja concentración de dextrano
(Ejemplo 5), en el cual la concentración de partida del dextrano
nativo fue de 70 mg/g y un procedimiento con una concentración de
dextrano (Ejemplos 6-9) en el cual la concentración
de partida del dextrano nativo fue de 240 mg/g.
\vskip1.000000\baselineskip
Se prepararon y enfriaron a 5ºC las siguientes
soluciones: La solución A conteniendo 4.200 g de hidróxido de sodio
en 10,5 litros de agua; y la solución B conteniendo 2.310 g de ácido
bromoacético en 5.700 ml de agua. La solución C que contenía 3.000
g de dextrano T10 en 7.500 ml de agua se calentó a 38ºC.
Se disolvió hidróxido de sodio (600 g) en 7,5
litros de agua y se calentó a 38ºC. Se agregó borohidruro de sodio
(60 g) y la mezcla se agitó durante 2 min antes de agregar la
Solución C e inmediatamente después, se agregó una segunda porción
de borohidruro de sodio (60 g). La mezcla se agitó a 38ºC durante 30
min y luego se dejó enfriar a 15ºC. Se agregó la Solución A
manteniendo la temperatura de la solución por debajo de los 25ºC.
Se agregó la Solución B y la temperatura de la solución se mantuvo
por debajo de los 25ºC. La mezcla se agitó durante 2 horas a
temperatura ambiente y se neutralizó a pH 7,5 con HCl 6M enfriado a
5ºC manteniendo la temperatura de la solución por debajo de los
35ºC. La mezcla se filtró a través de un filtro de 0,2 \mum y se
diluyó en 80 litros. El producto se purificó mediante
ultrafiltración reiterada a través de una membrana de ultrafiltrado
MWCO de 3 kDa, se filtró nuevamente a través de un filtro de 0,2
\mum y se sometió a liofilización.
El sólido recuperado, 2.560 g de dextrano
reducido de carboximetilo T10 (sal de sodio) presentó un contenido
de carboxilo fue de aproximadamente 1.265 micromoles de carboxilos
por gramos de producto, como se determinó mediante valoración. El
uso de ácido bromoacético permitió a la reacción proceder a una
temperatura menor en comparación con el uso de ácido cloroacético y
produjo un producto más limpio como se demuestra en el espectro
FTIR (Figura 1). La Figura 1 muestra que no hay absorción de
carbonilo aparte de la del carboxilato a 1.600 cm^{-1} a
diferencia del FTIR del producto de la Patente de los EE.UU.
5.204.457 que se preparó con ácido cloroacético.
\vskip1.000000\baselineskip
Se agregó borohidruro de sodio (0,4 g) y 0,5 g
de una solución al 50% peso/peso de hidróxido de sodio en agua, a
una solución de 25 g de dextrano en 50 g de agua. La mezcla se agitó
durante 4 horas a temperatura ambiente, se agregó 19,5 g de una
solución de hidróxido de sodio 1:1 y 6,2 g de ácido bromoacético y
se mantuvo la temperatura por debajo de los 25ºC utilizando un baño
helado. Luego, la mezcla se agitó durante 16 horas a temperatura
ambiente.
Para purificar el producto, el pH de la mezcla
se ajustó a pH 6,2 con HCl 6M y se agregaron 120 ml de etanol. Se
formó un precipitado y se dejó reposar, y el sobrenadante se eliminó
mediante decantación. El residuo se disolvió en 60 ml de agua y se
agregaron 200 mg de cloruro de sodio y luego 30 ml de etanol y el
dextrano reducido de carboximetilo se dejó reposar. La secuencia de
adición de agua y cloruro de sodio seguida por la disolución del
precipitado y la precipitación del etanol, se repitió dos veces más.
El residuo se disolvió en 60 ml de agua y se agregó 1 litro de
etanol. El dextrano reducido de carboximetilo se dejó reposar
nuevamente y el sólido se recuperó en un filtro de vidrio poroso
medio. El sólido blanco se secó 24 horas a 50ºC. El rendimiento fue
de 27 g de producto con 1108 micromoles de carboxilo por gramo como
se determinó mediante valoración (Tabla 2).
\vskip1.000000\baselineskip
Se agregó borohidruro de sodio (0,4) g y 0,5 g
de hidróxido de sodio al 50% a una solución de 25 g de dextrano en
50 g de agua. La mezcla se agitó durante 4 horas a temperatura
ambiente, se agregó 20,0 g de hidróxido de sodio al 50% y 6,95 g de
ácido bromoacético mientras la temperatura se mantenía por debajo de
los 25ºC utilizando un baño helado mientras que la mezcla se agitó
durante 16 horas a temperatura ambiente. El producto se purificó de
la forma descrita en el Ejemplo 6. El rendimiento fue de 23,9 g de
producto con 1262 micromoles de carboxilo por gramo como se
determinó mediante valoración (Tabla 2).
\vskip1.000000\baselineskip
Se agregó borohidruro de sodio (0,4) g y 0,5 g
de hidróxido de sodio al 50% a una solución de 25 g de dextrano en
50 g de agua. La mezcla se agitó durante 4 horas a temperatura
ambiente, se agregó 20,67 g de hidróxido de sodio al 50% y 7,65 g
de ácido bromoacético mientras la temperatura se mantenía por debajo
de los 25ºC utilizando un baño helado. La mezcla se agitó durante
16 horas a temperatura ambiente. El producto se purificó de la
forma descrita en el Ejemplo 6. El rendimiento fue de 24,5 g de
producto con 1404 micromoles de carboxilo por gramo, como se
determinó mediante valoración (Tabla 2).
\vskip1.000000\baselineskip
Se agregó borohidruro de sodio (0,4 g) y 0,5 g
de una solución al 50% de hidróxido de sodio, a una solución de 25
g de dextrano en 50 g de agua. La mezcla se agitó durante 4 horas a
temperatura ambiente, se agregaron 20,67 g de hidróxido de sodio al
50% y 7,65 g de ácido bromoacético mientras se mantuvo la
temperatura por debajo de los 25ºC utilizando un baño helado. La
mezcla se agitó durante 16 horas a temperatura ambiente y el
producto se purificó de la forma descrita en el Ejemplo 6. El
rendimiento fue de 23,4 g de producto con 1528 micromoles de
carboxilo por gramo de producto como se determinó mediante
valoración (Tabla 2).
La relación entre la cantidad de ácido
bromoacético utilizado en la síntesis y la incorporación resultante
de micromoles de grupos carboxilos en el dextrano fue estudiada
mediante la aplicación del procedimiento de concentración alta de
dextrano. La relación resultó ser lineal (ver Tabla 2 y Figura 3).
Las masas de los reactivos y los rendimientos de carboximetilo de
los Ejemplos 6 al 9 se muestran en la Tabla 2.
Síntesis de preparaciones de dextrano
reducido con carboxietilo utilizando dextrano reducido T10 mediante
el procedimiento de base alta de dextrano bajo.
Los Ejemplos 10-14 describen la
síntesis de dextranos reducidos de carboximetilo con grados
variables de sustitución comenzando con una baja concentración de
dextrano reducido. En el presente procedimiento, la concentración
de partida de dextrano reducido fue de 70 mg/g y el NaOH fue de al
menos aproximadamente 107 mg/g. La Tabla 3 muestra que el alcance
de la sustitución del carboximetilo aumentó al aumentar la cantidad
de ácido bromoacético usado en la reacción.
Se disolvió dextrano reducido T10 (15 g) en 72
ml de agua y se agregaron 72 ml de hidróxido de sodio 8M. La mezcla
se llevó a 25ºC y se agregó una solución de 1,15 g de ácido
bromoacético en 3 ml de agua. La mezcla se agitó a temperatura
ambiente durante 1 hora y luego se agregó a un volumen de 75 ml de
hielo molido. El pH de la solución se llevó a pH 6,0 con HCl 6M.
Luego de ultrafiltración reiterada con una membrana de ultrafiltrado
de 3 kDa, el producto se liofilizó. El rendimiento fue de 13,25 g
de producto. El sólido recuperado, dextrano reducido de
carboximetilo T10 (sal de sodio) presentó un contenido de carboxilo
fue de aproximadamente 110 micromoles de carboxilos por gramo como
se determinó mediante valoración (Tabla 3).
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano reducido T10 (150 g) en 720
ml de agua y se agregaron 720 ml de hidróxido de sodio 8M. La
mezcla se llevó a 25ºC y se agregó una solución de 11,5 g de ácido
bromoacético en 140 ml de agua. La mezcla se agitó a temperatura
ambiente durante 1 hora, y luego se agregó a un volumen de 750 ml de
hielo molido y el pH de la solución se llevó a pH 6,0 con HCl 6M.
Luego de ultrafiltración reiterada sobre una membrana de
ultrafiltrado MWCO de 3 kDa, el producto se liofilizó. El
rendimiento fue de 126,21 g de dextrano reducido de carboximetilo
T10 (sal de sodio) sólido recuperado, presentando un contenido de
carboxilo fue de aproximadamente 130 micromoles de carboxilos por
gramo de producto como se determinó mediante valoración (Tabla
3).
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano reducido T10 (150 g) en 720
ml de agua y se agregaron 720 ml de hidróxido de sodio 8M. La
mezcla se llevó a 25ºC, se agregó una solución de 26,6 g de ácido
bromoacético en 140 ml de agua y la mezcla se agitó a temperatura
ambiente durante 1 hora y se agregó a un volumen de 750 ml de hielo
molido. El pH de la solución se llevó a pH 6,0 con HCl 6M. Luego de
ultrafiltración reiterada sobre una membrana de ultrafiltrado MWCO
de 3 kDa, el producto se liofilizó. El rendimiento no fue
determinado. El sólido recuperado, dextrano reducido de
carboximetilo T10 (sal de sodio) presentó un contenido de carboxilo
fue de aproximadamente 280 micromoles de carboxilos por gramo de
producto como se determinó mediante valoración (Tabla 3).
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano reducido T10 (15 g) en 72
ml de agua y se agregaron 72 ml de hidróxido de sodio 8M. La mezcla
se llevó a 25ºC y se agregó una solución de 3,45 g de ácido
bromoacético en 8 ml de agua. La mezcla se agitó a temperatura
ambiente durante 1 hora y luego se agregó a un volumen de 75 ml de
hielo molido. El pH de la solución se llevó a pH 6,0 con HCl 6M.
Luego de ultrafiltración reiterada sobre membranas de ultrafiltrado
de 3 kDa, el producto se liofilizó. El rendimiento fue de 9,4 g de
dextrano reducido de carboximetilo T10 (sal de sodio) sólido
recuperado, presentando un contenido de carboxilo fue de
aproximadamente 450 micromoles de carboxilos por gramo de producto
como se determinó mediante valoración (Tabla 3).
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano reducido T10 (150 g) en 720
ml de agua y se agregaron 720 ml de hidróxido de sodio 8M. La
mezcla se llevó a 25ºC y se agregó una solución de 58,8 g de ácido
bromoacético en 140 ml de agua. La mezcla se agitó a temperatura
ambiente durante 1 hora y luego se agregó a un volumen de 750 ml de
hielo molido. El pH de la solución se llevó a pH 6,0 con HCl 6M.
Luego de ultrafiltración reiterada sobre una membrana de
ultrafiltrado MWCO de 3 kDa, el producto se liofilizó. El
rendimiento fue de 127,88 g de dextrano reducido de carboximetilo
T10 (sal de sodio) sólido recuperado, presentando un contenido de
carboxilo fue de aproximadamente 580 micromoles de carboxilos por
gramo de producto como se determinó mediante valoración (Tabla
3).
La Tabla 3 muestra que el alcance de la
sustitución de carboximetilo observada estuvo en función de la
cantidad de ácido bromoacético usado en la reacción. Los datos
muestran que, en general, el aumento de la cantidad de ácido
bromoacético presente en la reacción, produce un aumento en los
niveles de COOH del producto. El rendimiento de la incorporación de
carboximetilo también estuvo afectado por condiciones tales como,
por ejemplo, la escala de la reacción, como se indica en los
Ejemplos 13 y 14.
El dextrano reducido de carboximetilo fue
adquirido en Amersham- Pharmacia. El sólido presentó un contenido
de carboxilo fue de aproximadamente 1887 micromoles de carboxilo por
gramo de producto como se determinó mediante valoración.
Los Ejemplos 16-18 describen la
síntesis de dextrano de carboximetilo a partir de dextrano nativo no
reducido T-10, T-40 y
T-70 respectivamente.
\vskip1.000000\baselineskip
Se prepararon y enfriaron a 5ºC las siguientes
soluciones: Solución A: 105,2 g de hidróxido de sodio en 250 ml de
agua; Solución B: 58,0 g de ácido bromoacético en 142,5 ml de agua;
y Solución C: 75,7 g de dextrano T10 en 187,5 ml de agua.
Se agregó hidróxido de sodio (14,4 g) disuelto
en 187,5 ml de agua en la Solución C y en la Solución A manteniendo
la temperatura de la solución por debajo de los 25ºC. Se agregó la
Solución B, manteniendo la temperatura por debajo de los 25ºC y la
solución resultante se agitó durante 2 horas a temperatura ambiente,
luego se neutralizó en pH 7,5 con HCl 6M (enfriado a 5ºC)
manteniendo la temperatura de la solución por debajo de los 35ºC.
La mezcla se pasó a través de un filtro con tamaño de poro de 0,2
\mum y se diluyó en 2 litros. El producto se purificó mediante
ultrafiltración reiterada a través de una membrana de ultrafiltrado
MWCO de 3 kDa, se filtró nuevamente a través de un filtro de 0,2
\mum y se sometió a liofilización. El rendimiento fue de 53,17 g
y el dextrano de carboximetilo T10 sólido recuperado (sal de sodio),
presentó un contenido de carboxilo fue de aproximadamente 1220
micromoles de carboxilo por gramo de producto como se determinó
mediante valoración.
\vskip1.000000\baselineskip
Se prepararon y enfriaron a 5ºC las siguientes
soluciones: Solución A: 154 g de hidróxido de sodio en 480 ml de
agua; Solución B: 77 g de ácido bromoacético en 260 ml de agua; y
Solución C: 100 g de dextrano T40 en 400 ml de agua.
La Solución A se incorporó en la Solución C de
una sola vez. Luego de 5 minutos, se agregó la Solución B y la
solución combinada se agitó durante 120 min manteniendo la
temperatura entre 20ºC y 25ºC. La mezcla se neutralizó con HCl 6M,
se filtró a través de un filtro de 0,2 \mum y se diluyó en 2
litros. El producto se purificó mediante ultrafiltración reiterada
a través de una membrana de ultrafiltrado MWCO de 3 kDa, se filtró
nuevamente a través de un filtro de 0,2 \mum y se sometió a
liofilización. El rendimiento fue de 105,1 g de dextrano de
carboximetilo T40 sólido recuperado (sal de sodio), presentando un
contenido de carboxilo fue de alrededor de 1390 micromoles de
carboxilo por gramo de producto como se determinó mediante
valoración.
\vskip1.000000\baselineskip
Se prepararon y enfriaron a 5ºC las siguientes
soluciones: Solución A: 154 g de hidróxido de sodio en 480 ml de
agua; Solución B: 77 g de ácido bromoacético en 260 ml de agua; y
Solución C: 100 g de dextrano T70 en 400 ml de agua.
La Solución A se incorporó a la Solución C de
una sola vez. Luego de 5 minutos, se agregó la Solución B y la
solución combinada se agitó manteniendo la temperatura entre 20ºC y
25ºC utilizando un baño helado. Luego de 120 minutos, la solución
se neutralizó con HCl 6M. La solución se filtró a través de un
filtro de 0,2 \mum y se diluyó en 2 litros. El producto se
purificó mediante ultrafiltración reiterada a través de una membrana
de ultrafiltrado MWCO de 3 kDa, se filtró nuevamente a través de un
filtro de 0,2 \mum y se sometió a liofilización. El rendimiento
fue de 106,9 g de dextrano de carboximetilo T70 sólido recuperado
(sal de sodio), presentando un contenido de carboxilo fue de
alrededor de 1380 micromoles de carboxilo por gramo de producto como
se determinó mediante valoración.
Procedimiento general para la preparación de
coloides superparamagnéticos para comparación de las propiedades de
las preparaciones de USPIO recubiertas con polisacáridos reducidos o
no reducidos.
Los Ejemplos 19-26 se llevaron a
cabo para comparar los productos de óxido de hierro recubiertos con
polisacáridos obtenidos a partir de pares de polisacáridos nativos
y reducidos de idéntico peso molecular. Se utilizaron
procedimientos idénticos para la preparación de coloides de USPIO
para cada par de polisacáridos nativos y reducidos de idéntico peso
molecular. En particular, se utilizó el mismo polisacárido de la
relación de hierro y concentración de hierro para cada par de peso
molecular. La relación entre el polisacárido y el hierro y la
concentración de hierro utilizadas para cada par de polisacárido
nativo y reducido fue elegido para obtener un USPIO filtrable a
través de 0,2 \mum con un diámetro menor a 30 nm y una
susceptibilidad magnética mayor a 20.000 x 10^{-6} cgs con el
polisacárido reducido.
El procedimiento general involucró la adición de
hidróxido de amonio excedente a una solución de sales de hierro
(Fe^{+3}/Fe^{+2}) y polisacárido, luego se calentó realizando 6
ciclos de ultrafiltración sobre agua empleando un filtro de
membrana MWCO de 100 kDa. Luego de la ultrafiltración, las
preparaciones de USPIO formadas con polisacárido reducido, se
filtraron a través de un filtro de 0,2 \mum y se conservaron a
4ºC.
Se observó que en los óxidos de hierro
preparados con un polisacárido nativo, únicamente el óxido de hierro
recubierto con dextrano nativo T10 pudo filtrarse a través de un
filtro de 0,2 \mum. Luego se midió el tamaño y la susceptibilidad
magnética de las muestras, excepto por las muestras que contenían
materiales particulados. Los tamaños de partículas se determinaron
mediante la medición de dispersión liviana dinámica en un
instrumento Microtrac® UPA (Honeywell IAC Microtrac, Fort
Washington, PA) y se presentan como el diámetro de volumen medio
(DVM). La susceptibilidad magnética se determinó con una balanza de
susceptibilidad magnética de Matthey Johnson. Las concentraciones
de hierro se determinaron con un ensayo bipiridilo (Kumar K., J.
Liq. Chromatogr. Relat. Technol., 1997, 20,
3351-3364).
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano T1 reducido (1,7 g) en 20
ml de agua y se agregó una solución de 3 g de cloruro férrico
hexahidratado y 1,5 g de cloruro ferroso tetrahidratado en 32 g de
agua. La mezcla se purgó con nitrógeno durante 30 minutos, se dejó
enfriar a 5ºC y se agregaron 12,7 g de hidróxido de amonio al 28%
con agitación durante un período de 2 minutos. La mezcla se calentó
a 60ºC manteniendo la temperatura durante 40 min., luego se incubó
a 80ºC durante 2 h. El producto fue sometido a seis ciclos de
ultrafiltración sobre agua empleando un filtro de membrana MWCO de
100 kDa. Luego de la ultrafiltración, el producto se filtró a través
de un filtro de 0,2 \mum y se conservó a 4ºC. Se observaron las
siguientes propiedades en el producto: el diámetro de volumen medio
(determinado con el Analizador de Tamaño de Partícula Microtrac) fue
de 18 nm; la susceptibilidad magnética fue de 13.323 x
10^{-6} cgs/g Fe.
10^{-6} cgs/g Fe.
\vskip1.000000\baselineskip
Se preparó óxido de hierro de dextrano T1 nativo
mediante el procedimiento anteriormente descrito para el dextrano
reducido en el Ejemplo 19, excepto que se usó dextrano T1 nativo en
lugar de dextrano T1 reducido. Se observaron las siguientes
propiedades en el producto: el diámetro de volumen medio
(determinado con el Analizador de Tamaño de Partícula Microtrac)
fue de 2764 nm; la susceptibilidad magnética fue de 1.953 x
10^{-6} cgs/g Fe.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano T5 reducido (0,45 g) en 13
ml de agua y se agregó una solución de 0,5 g de cloruro ferroso
hexahidratado y 0,25 g de cloruro ferroso tetrahidratado en 4,5 g de
agua. La mezcla se purgó con nitrógeno durante 30 min, se dejó
enfriar a 5ºC y se agregó 1,42 g de hidróxido de amonio al 28% con
agitación durante un período de 2 min. La mezcla se calentó a 80ºC
durante 2 h y se purificó de la manera descrita en el Ejemplo 19.
Se observaron las siguientes características en el producto: el
diámetro de volumen medio (determinado con el Analizador de Tamaño
de Partícula Microtrac) fue de 16 nm; la susceptibilidad magnética
fue de 33.943 x 10^{-6} cgs/g Fe.
\vskip1.000000\baselineskip
El óxido de hierro de dextrano T5 nativo se
preparó mediante el procedimiento anteriormente descrito para el
dextrano reducido en el Ejemplo 21, excepto que se usó dextrano T5
nativo en lugar de dextrano T5 reducido. Se observaron las
siguientes propiedades en el producto: El diámetro de volumen medio
(determinado con el Analizador de Tamaño de Partícula Mircrotrac)
fue de 1.916 nm.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano reducido T10 (2,7 g) en 70
ml de agua y se agregó una solución de 2,0 g de cloruro férrico
hexahidratado y 1,0 g de cloruro ferroso tetrahidratado en 27 g de
agua. La mezcla se purgó con nitrógeno durante 30 min, se dejó
enfriar a 5ºC y se agregaron 8,5 g de hidróxido de amonio al 28% con
agitación durante un período de 2 min. La mezcla se calentó a 80ºC
durante 2 h y se purificó de la manera descrita en el Ejemplo 19.
Se observaron las siguientes características en el producto: el
diámetro de volumen medio (determinado con el Analizador de Tamaño
de Partícula Microtrac) fue de 12 nm; la susceptibilidad magnética
fue de 31.743 x 10^{-6} cgs/g Fe.
\vskip1.000000\baselineskip
El óxido de hierro de dextrano nativo T10 se
preparó mediante el procedimiento anteriormente descrito para el
dextrano reducido en el Ejemplo 23, excepto que se usó dextrano
nativo T10 en lugar de dextrano reducido T10. Se observaron las
siguientes propiedades en el producto: el diámetro de volumen medio
(determinado con el Analizador de Tamaño de Partícula Microtrac)
fue de 757 nm; la susceptibilidad magnética fue de 31.252 x
10^{-6} cgs/g Fe.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió pululano reducido (0,045 g) en 0,4
ml de agua y se agregó una solución de 0,106 g de cloruro férrico
hexahidratado y 0,05 g de cloruro ferroso tetrahidratado en 1,3 g de
agua. La mezcla se purgó con nitrógeno durante 30 min, se dejó
enfriar a 5ºC y se agregaron 0,044 g de hidróxido de amonio al 28%
mediante agitación durante un período de 2 min. La mezcla se
calentó a 80ºC durante 0,67 h y se purificó de la manera descrita
en el Ejemplo 19. Se observaron las siguientes características en el
producto: el diámetro de volumen medio (determinado con el
Analizador de Tamaño de Partícula Microtrac) fue de 20 nm; la
susceptibilidad magnética fue de 27.066 x 10^{-6} cgs/g Fe.
\vskip1.000000\baselineskip
El óxido de hierro de pululano nativo se preparó
mediante el procedimiento anteriormente descrito para el dextrano
reducido en el Ejemplo 25, excepto que se usó pululano nativo en
lugar de pululano reducido. Se observaron las siguientes
propiedades en el producto: el diámetro de volumen medio
(determinado con el Analizador de Tamaño de Partícula Mircrotrac)
fue de 1.184 nm.
Propiedades de preparaciones de óxido de
hierro obtenido empleando polisacáridos reducidos en oposición a
nativos (comparación de datos obtenidos en los Ejemplos
19-26).
En general, para los agentes de contraste IRM,
se prefiere un agente de contraste de óxido de hierro de partícula
pequeña, por ejemplo, una partícula con un diámetro en el rango de
10 a 50 nm. Asimismo, se prefiere un óxido de hierro de mayor
susceptibilidad magnética y de mayor homogeneidad.
A partir de los datos de los Ejemplos
19-26 se observa que la presencia de un azúcar
terminal reducido de un polisacárido (polisacárido reducido) usado
para recubrir un óxido de hierro, tuvo un efecto inesperado y
sustancial en el diámetro de las partículas de cada uno de los
coloides resultantes, en comparación con óxidos de hierro
producidos de forma similar hechos con polisacárido no reducido
nativo. La Tabla 4 muestra el tamaño de las partículas formadas
para cada par de polisacáridos nativos y reducidos, como se indica
mediante los diámetros de volumen medio (DVM). La concentración de
polisacáridos reducidos y nativos se mantuvo constante dentro de
cada grupo de peso molecular. Las concentraciones se seleccionaron
para optimizar la síntesis de USPIO con polisacárido reducido. En
todos los polisacáridos, el uso de polisacárido no reducido nativo
produjo una partícula consistentemente más grande que el uso de
dextrano reducido, de forma tal, que el polisacárido reducido
produjo consistentemente la partícula más pequeña preferida.
Asimismo, para cada par de polisacáridos de un
peso molecular dado, sintetizado y probado, la preparación de USPIO
recubierto con polisacáridos reducidos demostró un valor de
susceptibilidad magnética superior que la preparación de óxido de
hierro correspondiente sintetizada con polisacárido nativo, salvo
los coloides obtenidos con dextrano T10 para los cuales las
susceptibilidades magnéticas de los recubrimientos reducidos y
nativos fue equivalente.
Estos datos indican que el uso de un
polisacárido reducido en la preparación de coloides de USPIO
recubiertos, produce partículas preferentes de menor tamaño sin
sufrir pérdida de susceptibilidad magnética. La información indica
el efecto sorprendente que tiene la reducción del aldehído de un
polisacárido sobre la síntesis de un USPIO recubierto con
polisacárido.
\vskip1.000000\baselineskip
Propiedades de óxidos de hierro preparados
con dextranos T1, T5 y T10 nativos no reducidos de diámetro de
volumen medio menor a 30 nm.
Los Ejemplos 27 al 29 muestran la preparación de
óxidos de hierro obtenida a partir de dextranos T1, T5 y T10
nativos. Los coloides se prepararon con dextranos (nativos) no
reducidos, de la forma descrita para los dextranos reducidos
(Ejemplos 19, 21 y 23) excepto que la preparación de estas
partículas de dextrano nativo no reducido involucró de 10 a 34
veces más dextrano que su correspondiente contraparte de dextrano
reducido, para producir óxidos de hierro de tamaño correspondiente.
El requerimiento del uso incrementado de dextrano se muestra
mediante la comparación de dextrano con la proporción de hierro de
los productos para los correspondientes pares de peso molecular de
óxidos de hierro mostrados (Tabla 5).
Los datos indican que las propiedades magnéticas
y la eficiencia del uso de dextrano durante la síntesis de las
partículas de hierro preparadas con cada uno de los dextranos
nativos T1, T5 y T10 fue inferior en relación a las propiedades
correspondientes a las partículas preparadas con cada dextrano
reducido de la contraparte.
\vskip1.000000\baselineskip
Se filtró una mezcla de 0,42 g de cloruro
férrico hexahidratado, 0,21 g de cloruro ferroso tetrahidratado y
7,27 g de agua a través de un filtro de 0,2 \mum. Se agregó una
porción de 1,0 g de esta mezcla a 10 ml de una solución acuosa de
0,1 g de dextrano T1/g agua. La mezcla se purgó con nitrógeno antes
de incorporar 0,22 ml de una solución de hidróxido de amonio al
28%. La mezcla se calentó a 80ºC durante 1 hora, se dejó enfriar a
temperatura ambiente y se filtró a través de un filtro de 0,2
\mum. Se observaron las siguientes propiedades en el producto: el
diámetro de volumen medio (determinado con el Analizador de Tamaño
de Partícula Microtrac) fue de 27 nm; la susceptibilidad magnética
fue de 2325 x 10^{-6} cgs/g Fe.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano T5 (0,8 g) en 9 ml de agua
y se agregaron 0,63 ml de una solución de 51,8 mg de cloruro
férrico hexahidratado y 25,9 mg de cloruro ferroso tetrahidratado
filtrada a través de un filtro de 0,2 \mum, en 9,2 ml de agua. La
mezcla se purgó con nitrógeno antes de incorporar 1,4 ml de una
solución de hidróxido de amonio al 28%. La mezcla se calentó a 80ºC
durante 1 hora, se dejó enfriar a temperatura ambiente y se filtró
a través de un filtro de 0,2 \mum. Se observaron las siguientes
propiedades en el producto: el diámetro de volumen medio
(determinado con el Analizador de Tamaño de Partícula Microtrac) fue
de 20 nm; la susceptibilidad magnética fue de 1285 x
10^{-6} cgs/g Fe.
10^{-6} cgs/g Fe.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano T10 (9420 g) en 14915 g de
agua. Se filtró una porción de 14915 g de esta mezcla a través de
un filtro de 0,2 \mum y se incorporó al recipiente de reacción. Se
disolvió cloruro férrico hexahidratado (891 g) en 713 g de agua. Se
filtró una porción de 1129 g a través de un filtro de 0,2 \mum y
se incorporó al recipiente de reacción que contenía el dextrano. La
mezcla se enfrió a 5ºC mediante agitación durante la noche y
burbujeando nitrógeno en su interior. Antes de los 30 min finales
del purgado con nitrógeno, se incorporó una porción de 580 g de una
solución de 359 g de cloruro ferroso tetrahidratado filtrado en
filtro de 0,2 \mum, a 477 g de agua. A esta mezcla se le
agregaron 786 g de una solución de hidróxido de amonio al 28%,
enfriado a 5ºC. La mezcla se calentó a 80ºC, se incubó a 80ºC
durante 2 horas y luego se volcó sobre 80 litros de agua calentada
a 80ºC. La mezcla se dejó entibiar durante la noche, se filtró a
través de un filtro de 0,2 \mum y se purificó mediante
ultrafiltración utilizando una membrana de ultrafiltración de 100
kDa. El producto se filtró a través de un filtro de 0,2 \mum. Se
observaron las siguientes propiedades en el producto: el diámetro
de volumen medio (determinado con el Analizador de Tamaño de
Partícula Microtrac) fue de 21 nm; la susceptibilidad magnética fue
de 32.712 x 10^{-6} cgs/g Fe.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(Tabla pasa a página
siguiente)
Preparación de USPIO recubierto con dextrano
de carboximetilo T10 nativo y dextrano de carboximetilo T10 reducido
con grados variables de carboximetilación.
Los Ejemplos 30 y 31 describen la preparación de
USPIO recubierto con dextrano de carboximetilo T10 nativo y
reducido, respectivamente. Los ejemplos 32-36
describen la síntesis de composiciones de USPIO recubiertas con
preparaciones de dextrano de carboximetilo T10 reducido conteniendo
grados variables de carboximetilación. Los Ejemplos
37-41 describen la solubilidad de las preparaciones
que contienen cloruro férrico y dextrano de carboximetilo T10
reducido con diferentes grados de carboximetilación.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano de carboximetilo T10 (60 g
preparado según el procedimiento del Ejemplo 16) en 532 g de agua.
Se filtró una solución de 14,7 g de cloruro férrico hexahidratado,
7,2 g de cloruro ferroso tetrahidratado y 100 ml de agua a través
de un filtro de 0,2 \mum y se incorporó. La mezcla se enfrió a
10ºC, se purgó con nitrógeno y se le agregaron 52,2 ml de una
solución de hidróxido de amonio al 28% mediante agitación. La
mezcla se calentó a 75ºC, se mantuvo a 75ºC durante 30 min, si
diluyó con 2,5 litros de agua y se filtró a través de un filtro de
0,2 \mum. El producto se purificó mediante ultrafiltración
reiterada sobre membrana MWCO de 100 kDa, se concentró a 20 mg
Fe/ml y filtró nuevamente a través de un filtro de 0,2 \mum. Se
observaron las siguientes propiedades en el producto: el DVM
(determinado con el uso de un Analizador de Tamaño de Partícula
Microtrac) fue de 19 nm; la susceptibilidad magnética fue de 27.835
x 10^{-6} cgs/g Fe; y el contenido de carboxilo fue de 1.220
micromoles por gramo de CMRD. Para determinar la estabilidad en
respuesta a la esterilización por autoclave, se colocó una muestra
del producto en una ampolla de vidrio de 5 ml y se calentó a 121ºC
durante 30 min (ver Tabla 9).
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano de carboximetilo T10
reducido (40 g preparado en el Ejemplo 5) en 1.038 ml de agua y se
filtró a través de un filtro con un tamaño de poro de 0,2 \mum.
Una solución filtrada en filtro de 0,2 \mum de 30 g de cloruro
férrico hexahidratado y 15 g de cloruro ferroso tetrahidratado en
374 ml de agua se incorporó al dextrano mediante un lavado con agua
de 31 ml. La solución se enfrió a 10ºC y se agregaron 114 g de
hidróxido de amonio al 28%. La mezcla coloidal se calentó a 78ºC y
se mantuvo en esa temperatura durante una hora. Luego, la solución
se diluyó hasta 3 litros con agua, se enfrió a 10ºC y se ultrafiltró
6 veces con una membrana de filtro YM-100 (MWCO de
100 kDa). Se obtuvo una concentración final de 21,1 mg Fe/g. Se
observaron las siguientes propiedades en el producto: el diámetro de
volumen medio (Analizador de Tamaño de Partícula Microtrac) fue de
21 nm; la susceptibilidad magnética fue de 32.732 x 10^{-6} cgs/g
Fe; y el contenido de carboxilo fue de 1.265 micromoles por gramo de
CMRD. Se determinó que el contenido de la partícula era de
alrededor de 50% Fe y 50% dextrano. Para determinar la estabilidad
en respuesta a la esterilización por autoclave, se colocó una
muestra del producto en una ampolla de vidrio de 5 ml y se calentó a
121ºC durante 30 min (ver Tabla 9).
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano de carboximetilo T10
reducido (4 g, preparado en el Ejemplo 10) en 85 ml de agua. A esto,
se le agregó una mezcla filtrada con un filtro de 0,2 \mum de
2,99 g de cloruro férrico hexahidratado, 1,49 g de cloruro ferroso
tetrahidratado y 37,3 ml de agua. La mezcla se enfrió a 10ºC, se
purgó con nitrógeno y se le incorporaron 11,4 g de una solución de
hidróxido de amonio al 28% con agitación. La mezcla se calentó a
90ºC, se mantuvo a 78ºC durante 60 minutos y luego se mantuvo a 78ºC
mientras se burbujeó aire en su interior. La mezcla se diluyó en
1,5 litros de agua y se filtró a través de un filtro de 0,2 \mum.
El producto se purificó mediante ultrafiltración reiterada a través
de una membrana MWCO de 100 kDa y se filtró nuevamente a través de
un filtro de 0,2 \mum.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano de carboximetilo T10
reducido (40 g, preparado en el Ejemplo 11) en 850 ml de agua. A
esto, se le agregó una mezcla filtrada con un filtro de 0,2 \mum
de 29,9 g de cloruro férrico hexahidratado, 14,9 g de cloruro
ferroso tetrahidratado y 373 ml de agua. La mezcla se enfrió a 10ºC,
se purgó con nitrógeno y se le incorporaron 114 ml de una solución
de hidróxido de amonio al 28% con agitación. La mezcla se calentó a
90ºC, se mantuvo a 78ºC durante 60 min y luego se mantuvo a 78ºC
mientras se burbujeó aire en su interior. La mezcla se diluyó en
1,5 litros de agua y se filtró a través de un filtro de 0,2 \mum.
El producto se purificó mediante ultrafiltración reiterada a través
de una membrana MWCO de 100 kDa, se concentró a 20 mg Fe/ml y se
filtró nuevamente a través de un filtro de 0,2 \mum.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano de carboximetilo T10
reducido (4 g, preparado en el Ejemplo 12) en 85 ml de agua. A esto,
se le agregó una mezcla filtrada con un filtro de 0,2 \mum de
2,99 g de cloruro férrico hexahidratado, 1,49 g de cloruro ferroso
tetrahidratado y 37,3 ml de agua. La mezcla se enfrió a 10ºC y se
purgó con nitrógeno. A la mezcla se le incorporaron, con agitación,
11,4 g de una solución de hidróxido de amonio al 28%. La mezcla se
calentó a 90ºC y se mantuvo a 78ºC durante 60 min, y luego se
mantuvo a 78ºC mientras se burbujeaba aire a través de la mezcla.
La mezcla se diluyó en 1,5 litros de agua y se filtró a través de un
filtro de 0,2 \mum. El producto se purificó mediante
ultrafiltración reiterada a través de una membrana MWCO de 100 kDa
y se volvió a filtrar con un filtro de 0,2 \mum.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano de carboximetilo T10
reducido (4 g, preparado en el Ejemplo 13) en 85 ml de agua. A esto,
se le agregó una mezcla filtrada con un filtro de 0,2 \mum
formada por 2,99 g de cloruro férrico hexahidratado, 1,49 g de
cloruro ferroso tetrahidratado y 37,3 ml de agua. La mezcla se
enfrió a 10ºC, se purgó con nitrógeno y se le agregaron 11,4 g de
una solución de hidróxido de amonio al 28% con agitación. La mezcla
se calentó a 90ºC, se mantuvo a 78ºC durante 60 min y luego se
mantuvo a 78ºC mientras se burbujeaba aire a través de la mezcla.
La mezcla se diluyó con 1,5 litros de agua, se filtró sobre filtro
de 0,2 \mum y se purificó mediante ultrafiltración reiterada
sobre una membrana MWCO de 100 kDa y se volvió a filtrar con un
filtro de 0,2 \mum.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano de carboximetilo T10
reducido (40 g, preparado en el Ejemplo 14) en 85 ml de agua. A
esto se le agregó una solución filtrada con un filtro de 0,2 \mum
compuesta por 29,9 g de cloruro férrico hexahidratado, 14,9 g de
cloruro ferroso tetrahidratado y 373 ml de agua. La mezcla se enfrió
a 10ºC, se purgó con nitrógeno y se le agregaron 11,4 g de una
solución de hidróxido de amonio al 28% con agitación. La mezcla se
calentó a 90ºC, se mantuvo a 78ºC durante 60 min y luego se mantuvo
a 78ºC mientras se burbujeaba aire a través de la mezcla. La mezcla
se diluyó con 1,5 litros de agua, se filtró sobre filtro de 0,2
\mum y se purificó mediante ultrafiltración reiterada sobre
membrana MWCO de 100 kDa y se volvió a filtrar con un filtro de 0,2
\mum.
Se comparó el efecto del grado de
carboximetilación de USPIO recubierto con CMRD sobre el tamaño de
coloide. Ejemplos 31-36, Tabla 6. Los valores de
DVM de los coloides resultantes fueron razonablemente uniformes
entre las preparaciones de CMRD compuestas por 110 a 1265
micromoles de carboxilo por gramo de producto.
\vskip1.000000\baselineskip
Como un paso en la síntesis de partículas, se
disolvió cloruro férrico (0,3 g) en 15 ml de agua y se filtró a
través de un filtro con un tamaño de poro de 0,2 \mum. Se
incorporó dextrano reducido de carboximetilo (preparado en el
Ejemplo 6), la mezcla se agitó y enfrió a 10ºC. No se observó
precipitado.
Se disolvió cloruro férrico (0,3 g) en 15 ml de
agua y se filtró a través de un filtro con un tamaño de poro de 0,2
\mum. Se incorporó dextrano reducido de carboximetilo (preparado
en el Ejemplo 7), la mezcla se agitó y enfrió a 10ºC. No se observó
precipitado.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió cloruro férrico (0,3 g) en 15 ml de
agua y se filtró a través de un filtro con un tamaño de poro de 0,2
\mum. Se incorporó dextrano reducido de carboximetilo (preparado
en el Ejemplo 8), la mezcla se agitó y enfrió a 10ºC. No se observó
precipitado.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió cloruro férrico (0,3 g) en 15 ml de
agua y se filtró a través de un filtro con un tamaño de poro de 0,2
\mum. Se incorporó dextrano reducido de carboximetilo (preparado
en el Ejemplo 9), la mezcla se agitó y enfrió a 5ºC. Se observó un
precipitado blanco anaranjado.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió cloruro férrico hexahidratado (30,3
g) y cloruro ferroso (14,8 g) en 402,9 ml de agua y se filtró a
través de un filtro con tamaño de poro de 0,2 \mum. Se incorporó
dextrano de carboximetilo T10 reducido (40,3 g en 1.033 ml,
preparado en el Ejemplo 15), la mezcla se agitó y enfrió a 5ºC. Se
observó un precipitado blanco anaranjado.
Se analizó el efecto de los grados variables de
carboximetilación de CMRD sobre el primer paso de las síntesis de
USPIO-CMRD, es decir, combinando las mezclas acuosas
de CMRD con las soluciones de cloruro de hierro. Se mezclaron las
distintas preparaciones de CMRD con sales de hierro con una
concentración de hierro fija, difiriendo las preparaciones de CMRD
únicamente en el grado de carboximetilación, como se describe en los
Ejemplos 37-41. De 1.108 hasta 1.404 micromoles de
carboxilo por gramo de dextrano, el CMRD formó una mezcla homogénea
en presencia de cloruro férrico (Tabla 7).
Por encima de los 1.404 micromoles de carboxilo
por gramo de dextrano, la incorporación de cloruro férrico, en
iguales condiciones y grado de concentración que la síntesis de
USPIO, a la solución CMRD produjo un precipitado blanco anaranjado.
Incluso a temperaturas superiores, cuando muchos compuestos pueden
ser solubles, los precipitados persistieron. Los datos de la Tabla
7 indican que hay un nivel superior en la modificación de CMRD que
puede ser usado en el procedimiento preferido de la síntesis de
USPIO-CMRD.
\vskip1.000000\baselineskip
Para preparar un sol magnético, se agregaron 60
g de hidróxido de amonio al 28% a 25ºC a una solución compuesta por
30,0 g de cloruro férrico hexahidratado y 15,1 g de cloruro ferroso
tetrahidratado en 321 g de agua. Después de mezclar 5 minutos, se
agregó HCl concentrado suficiente para obtener un pH de 1,6. El sol
se ultrafiltró con un filtro de membrana MWCO de 100 kDa para
obtener un pH de 3,25 utilizando agua como diluyente. El sol
magnético se pasó a través de un filtro con tamaño de poro de 0,2
\mum, luego se concentró a 50 mg Fe/g y se conservó a 5ºC. El
rendimiento de hierro fue de 55% y se observó que el producto tenía
un DVM de 16 nm.
\vskip1.000000\baselineskip
Se agregaron 10 ml de NaOH 10M a una solución de
2,9 g de cloruro férrico hexahidratado en 30 ml de agua. La mezcla
se agitó durante 5 min, se diluyó hasta 200 ml con agua y el
producto se recuperó mediante filtración. El residuo se mezcló
nuevamente con agua y se filtró. El residuo se incorporó a 40 ml de
agua y el pH se ajustó a 2,0. Se observó que el producto tenía un
DVM de 10 nm.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano reducido T10 (60 mg;
Ejemplo 3) en 1,74 ml de agua y se combinó con 0,24 ml de sol
magnético (13 mg Fe) preparado de acuerdo con el Ejemplo 42. La
mezcla se incubó durante 15 min y el pH se ajustó a 7,4 con
hidróxido de sodio. Se determinó el tamaño de partícula (DVM) de 85
nm.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano nativo T10 (60,8 mg) en
1,74 ml de agua y se combinó con 0,24 ml de sol magnético (13 mg
Fe) preparado de acuerdo con el Ejemplo 42. La mezcla se incubó
durante 15 min y el pH se ajustó a 7,4 con hidróxido de sodio. Se
determinó el tamaño de partícula (DVM) en 1.973 nm.
\vskip1.000000\baselineskip
Se agregaron 75 mg de CMRD T10 (Ejemplo 5)
disuelto en 1,34 ml de agua a 0,66 ml de sol magnético (33 mg Fe)
preparado de acuerdo con el Ejemplo 42. La mezcla se incubó durante
15 min a 37ºC y el pH se ajustó a 7,95 (más/menos 0,4) con
hidróxido de sodio. La mezcla se concentró usando un filtro de
ultrafiltración de 300 kDa. Se observó que el producto tenía un DVM
de 41 nm.
\vskip1.000000\baselineskip
El pH de un sol magnético preparado en el
Ejemplo 42 se ajustó a 7,4. Se observó un precipitado.
\vskip1.000000\baselineskip
Un sol no magnético preparado de acuerdo con el
Ejemplo 43 (35 ml) se agregó por goteo a 35 ml de una solución
acuosa 50 mg/g de CMRD T10 preparada de acuerdo con el Ejemplo 5. El
pH se ajustó a 7,0 con NaOH 1N, la solución se calentó hasta
ebullición, se llevó a temperatura ambiente y se centrifugó a 6.000
rpm durante 20 min. El sobrenadante se pasó a través de un filtro
con un tamaño de poro de 0,2 \mum y se esterilizó mediante
autoclave a 121ºC durante 30 min. Se observó que el producto tenía
un DVM de 86 nm.
Los Ejemplos 42-48 muestran que
frente a la ausencia de dextrano o en presencia de un dextrano
nativo, se forma un precipitado de hierro bruto. Únicamente el
dextrano reducido y CMRD produjeron un sol magnético como un
coloide estable.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvió dextrano de carboximetilo T10
reducido (19,2 g) (Ejemplo 5) en 300 g de agua, se filtró a través
de un filtro de 0,2 \mum y se incorporaron 160,8 g adicionales de
agua. Esta solución se agregó a 120 ml de cloruro férrico
hexahidratado 0,3M acuoso filtrado con un filtro de 0,2 \mum. A
esta mezcla se agregaron 32 ml de hidróxido de sodio 6N acuoso. La
mezcla se calentó a 100ºC durante 3 horas, se enfrió a temperatura
ambiente y se ultrafiltró hasta un volumen final de 50 ml. Se
observó que el producto tenía un DVM de 30 nm. Se colocó una
porción de este material en una botella bajo nitrógeno durante 30
min a 121ºC. El producto esterilizado por autoclave presentó un DVM
de 69 nm.
\vskip1.000000\baselineskip
Las preparaciones de coloide, cada una con una
concentración de 20 mg Fe/g, se esterilizaron por autoclave durante
30 min a 121ºC. Luego del autoclave, se realizaron mediciones del
dextrano combinado, calculado como la diferencia entre el dextrano
total y el dextrano libre, empleando un ensayo de ácido
fenol/sulfúrico. El dextrano libre se separó del coloide mediante
ultrafiltración. La Tabla 8 muestra que las preparaciones de
coloide con USPIO cubiertos con un dextrano reducido poseen mayor
estabilidad que los USPIO cubiertos con dextrano nativo. El USPIO
recubierto con dextrano reducido mantuvo su tamaño pequeño luego del
autoclave y el DVM del material luego del autoclave aumentó
únicamente 1,3 veces en relación a el DVM del material antes de la
esterilización por autoclave. En oposición, el USPIO recubierto con
dextrano nativo aumentó su tamaño 28 veces luego del autoclave. Los
datos muestran que luego del autoclave, el dextrano reducido
permanece más firmemente unido a la partícula de hierro que
el
dextrano nativo.
dextrano nativo.
Un segundo tipo de aumento de estabilidad
logrado en la presente invención mediante el uso de dextrano
reducido para recubrir USPIO es la propiedad del pH del disolvente
a granel. El pH de USPIO recubierto con dextrano reducido cayó 0,9
unidades de pH luego de la esterilización por autoclave mientras que
el USPIO recubierto con dextrano nativo cayó 1,6 unidades de
pH.
Incluso, se observó una mayor estabilidad en el
proceso de esterilización por autoclave en las partículas
recubiertas con dextrano reducido de carboximetilo en relación al
dextrano de carboximetilo nativo. La información de la Tabla 9
indica que el USPIO cubierto con dextrano de carboximetilo nativo no
reducido mostró un aumento de 10-50 veces en la
cantidad de materia particulada luego del autoclave. En contraste,
el USPIO recubierto con dextrano reducido de carboximetilo no
presentó cambios en el tamaño o en la cantidad de materia
particulada al ser sometido al autoclave. Otra indicación del
efecto de estabilización que confieren los recubrimientos
polisacáridos reducidos con carboximetilo sobre la suspensión
coloide y el disolvente a granel fue la estabilidad del pH del
disolvente. La información de las Tablas 8 y 9 muestra que las
partículas recubiertas con dextrano reducido tienen una estabilidad
de pH significativamente mayor en el autoclave en relación a las que
están recubiertas con dextrano nativo.
\newpage
Las mediciones magnéticas nucleares (MN) (0,47
T) se obtuvieron con un analizador de muestras NM de mesa pc 120
Bruker Instruments operando a 20 MHZ (Protón). Se colocó medio
milímetro de cada muestra en los tubos NM de 10 mm para mediciones
de relajación en el minispec. Se optimizó la colocación de las
muestras en la cámara de muestras. Se corrieron los estándares y se
anotaron sus valores en el registro.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Se utilizaron procedimientos estándares para las
determinaciones T1 y T2 y se registraron los valores. El T1 se
midió con una técnica de recuperación por inversión (RI). De acuerdo
con la técnica de RI, la muestra es expuesta a un pulso de 180º y
luego a un pulso de 90º para colocar la magnetización en el plano de
detección. Luego del muestreo, el tiempo entre los pulsos de 180 y
90 grados es modificado y muestreado una vez más. Esto se realiza
para varias duraciones. Las señales resultantes se rigen por la
ecuación [M_{\infty}-M(t)]/M_{\infty} =
(1-cos\Theta) exp (-t/T1). Cuando se realiza un
ajuste de información de 3 parámetros, se calcula M_{\infty},
\Theta y T1. El T2 se midió mediante una técnica de CPMG, mediante
la cual se otorga a la muestra un tren lineal de pulsos de 180º de
longitud variable. Se midió la amplitud de cada segundo eco. Se
realizó un ajuste en la información recabada mediante un ajuste de
dos parámetros (M_{0} y T2). Cuando M(t) =
M_{0}exp(-t/T2), la gráfica de In (M(t)) versus t es lineal
con una pendiente de -1/T2. Se graficó la inversa de T1 y T2 con
respecto a la concentración de hierro de la muestra. Se determinó la
relajación a partir de la pendiente de la línea con mejor
ajuste.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Las ratas y una fracción pequeña pero
significativa de población humana, pueden mostrar una reacción de
tipo choque anafiláctico frente al dextrano (Squire, J.R et
al., "Dextran, Its Properties and Use in Medicine",
Charles C. Thomas, Springfield, IL, 1955). La reacción se parece a
un choque anafiláctico pero no requiere sensibilización previa y en
las ratas se caracteriza por el rápido desarrollo de postración,
vasodilatación periférica difusa y edema de patas, hocico y lengua
(Voorhees, A.B. et al., Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1951,
76:254). Cuando es acompañada de anestesia barbitúrica, produce
marcada hipotensión y cianosis (Hanna, C.H. et al., Am, J.
Physiol. 1957, 191:615).
Se utilizó un procedimiento para medir el
alcance de la respuesta del edema de patas en ratas para determinar
si la presencia de dextranos reducidos o sus derivados, a diferencia
de los dextranos nativos no reducidos, presentes en el
recubrimiento de coloides de óxido de hierro podían disminuir o
eliminar las potenciales reacciones humanas adversas frente a la
inyección intravenosa. Se midió el edema de patas en ratas como el
volumen de la pata antes y luego de la inyección del material de
prueba, usando un pletismómetro, un dispositivo de medición de
volumen diferencial. Se inyectó la dosis del material de prueba y se
realizó una segunda lectura luego del intervalo designado y se
calculó el porcentaje de cambio en el volumen de patas. La dosis
administrada en estos estudios fue de 100 mg Fe/kg de peso
corporal, una dosis mucho mayor a la usada como agente de imagen en
ratas, cerdos y humanos (ver
Ejemplos 53-56).
Ejemplos 53-56).
Los resultados observados luego de la
administración de óxidos de hierro cubiertos con cada uno de los
dextranos T10 reducidos y no reducidos, se muestran en la Tabla 11.
Se observó una marcada disminución en la respuesta anafiláctica
edematosa en aquellas ratas en que se administró una preparación de
USPIO con recubrimiento de dextranos reducidos o derivados de
dextranos reducidos, en oposición a las ratas en las que se
administró una preparación de USPIO con recubrimiento de dextrano
nativo no reducidos.
La Tabla 12 muestra el efecto de las
preparaciones de USPIO-CMRD con niveles mejorados de
sustitución de carboximetilo sobre el alcance de la respuesta
anafiláctica, medido como edema porcentual. La información indica
que el nivel de umbral de sustitución fue necesario para reducir la
respuesta edematosa y que, una vez que este umbral de sustitución
es alcanzado, la disminución en la respuesta de las ratas al
dextrano supuso una eliminación sorprendente de la respuesta
edematosa. Esto es, no se observó ningún edema a 1.265 micromoles de
carboxilo por gramo.
\vskip1.000000\baselineskip
Se aplicó el procedimiento usado en el Ejemplo
52 para determinar si el recubrimiento por si solo, esto es,
dextranos reducidos o sus derivados y no los dextranos nativos no
reducidos, podía eliminar las potenciales reacciones humanas
adversas al ser inyectado por vía intravenosa. Se midió el edema de
patas en ratas como el volumen de las patas antes y después de la
inyección, como en el Ejemplo 52. La dosis administrada en estos
estudios fue, como se indicó anteriormente, 100 mg de sustancia de
prueba/kg de peso corporal.
Los resultados observados luego de la
administración de dextrano reducido T10 y no reducido fueron
similares para cada material (Tabla 13). El dextrano reducido T10
suscitó el mismo alcance de edema que el dextrano nativo T10. La
eliminación o disminución del edema no puede ser meramente atribuida
a la reducción de dextrano.
La Tabla 14 muestra el efecto de los niveles
mayores de sustitución de carboximetilo de dextrano reducido sobre
el alcance de la respuesta anafilactoide medida como edema
porcentual. La información indica que por encima del nivel de
umbral de sustitución de carboximetilo, el edema disminuye o se
elimina. En el caso de los dextranos que están por encima de este
nivel de umbral de sustitución, la disminución en la respuesta
tóxica de las ratas al dextrano fue una eliminación sorprendente de
respuesta, esto es, no se observó edema.
\vskip1.000000\baselineskip
Se anestesiaron tres ratas macho CD® (Charles
River Laboratories, Wilmington, MA: rango de peso de 272 a 290 g)
via intraperitoneal con una anestesia de largo efecto, Inactin (100
mg por kg de peso corporal). La vena y arteria femoral se
expusieron mediante una pequeña incisión en la articulación del
fémur de cadera y se introdujo una cánula en la arteria con un tubo
PE50 conectado a una jeringa de 1 ml con solución salina
heparinizada (10 unidades por ml). Para servir como una línea base,
se recolectó 0,25 ml de sangre arterial a la hora cero y se inyectó
USPIO cubierto con CMRD (Ejemplo 31) en la arteria femoral. Se
tomaron muestras de sangre de 0,25 ml en los tiempos indicados en
las Figuras 4 y 5.
Se midieron los tiempos de relajación magnética
T2 en cada muestra y se calculó la relajación (1/T2). La cinética
de reacción de primer orden se utilizaron para determinar la
semivida de la muestra en la sangre (t_{1/2}). La ecuación usada
para fijar la información fue:
1/T2 -
1/T_{l\text{í}nea \ base} = A \
e^{-kt}
donde 1/T2 es la relajación de la
sangre en el momento t posterior a la inyección; 1/T_{l\text{í}nea
\ base} es la relajación de la línea base y A e^{-kt} representa
la disminución de primer orden del material de prueba de la sangre.
Considerando el logaritmo natural de cada lado de esta ecuación,
produce:
In \ (1/T2 -
1/T_{l\text{í}nea \ base}) = -kt +
InA_{0}
\newpage
De acuerdo con esta segunda ecuación, la gráfica
de In (1/T2-1/T_{l\text{í}nea \ base}) versus
tiempo, t, da una línea recta con una pendiente -k (constante de
tasa de primer orden) e intercepta InA_{0} (que es igual a In
(1/T2-1/T_{l\text{í}nea \ base} en el momento
cero) si la tasa de eliminación de USPIO de la sangre sigue a la
cinética de primer orden. La Figura 5 muestra que se obtuvo una
línea recta. La semivida (t_{1/2}) que es el período de tiempo en
que la cantidad de USPIO cubierto con CMRD disminuyó a la mitad de
su cantidad de concentración en la sangre, se determinó en 67 min,
con un rango de 61 a 75 min con un nivel de confianza del 95%.
\vskip1.000000\baselineskip
Un escaneo IRM de una rata realizado poco
después de la administración de 5 mg de USPIO cubierto con CMRD
(Ejemplo 31) por kg de peso corporal se muestra en la Figura 6B. Se
determinó que el corazón, la aorta y la arteria coronaria eran
fácilmente reproducidas utilizando este agente. Se incluye una
imagen de la rata, tomada antes de la administración del agente
(Figura 6A) para ilustrar el aumento sustancial del contraste
producido por la administración de la sustancia de prueba.
\vskip1.000000\baselineskip
La Figura 7 ilustra una visualización mejorada
de IRM del corazón y arterias circundantes, así como también de los
pulmones y riñones del cerdo. Se administró cada una de las cuatro
dosis de 0,4, 0,8, 1,6 y 2,2 mg de hierro/kg de peso corporal de
muestra (Ejemplo 31) a un cerdo en orden secuencial. Cada dosis fue
seguida por la administración de 20 ml de solución salina
fisiológica y luego de cada dosis se obtuvo una imagen IRM. La
imagen mostrada en la Figura 7B es representativa de las imágenes
obtenidas luego de cada administración. Se incluye una imagen
previa del cerdo (Fig. 7A) para ilustrar el aumento sustancial en el
contraste provocado por el agente.
Un problema asociado con los agentes de contaste
a base de gadolinio de bajo peso molecular es que se filtran del
espacio vascular hacia el espacio intersticial creando un fondo
borroso. Este fondo borroso interfiere con el uso efectivo de la
segunda y tercera inyección de agente de contraste administrado
durante un único examen. Esta pérdida extravascular, no tiene lugar
con el uso de USPIO recubierto con dextrano reducido de
carboximetilo debido al tamaño relativamente grande de la partícula
en comparación con el tamaño de partículas del agente de contraste
de gadolinio.
Esta expectativa se confirmó mediante la toma de
imágenes en ratas (Ejemplo 55) y los datos obtenidos por las
imágenes del cerdo (Figura 7B). No se observó ningún fondo borroso
luego del uso de composiciones de USPIO-CMRD de la
presente invención. Esta observación permitió la realización de
pruebas de imágenes vasculares adicionales luego de la
administración secuencial de dosis adicionales. Al administrarse por
vía intravenosa, el USPIO recubierto con CMRD, el cual constituye
una realización de la invención, se movió rápidamente como un bolo
en las arterias, órganos y venas y obtuvo una distribución uniforme
en la sangre luego de 20 minutos. Al administrarse un segundo bolo
del agente, se obtuvieron buenas imágenes adicionales. Se
administraron una tercera y cuarta inyección con resultados
similares, esto es, se obtuvieron buenas imágenes. Por lo tanto, se
demostró el proceso de inyección de un bolo y la aplicación de
primer paso de USPIO recubierto con CMRD. Asimismo, también se
demostró la aplicación de un protocolo de inyección múltiple dentro
de un período de tiempo razonable después de la primera
administración, cumpliendo la totalidad del protocolo en un período
de tiempo equivalente a la visita de un ser humano a las
instalaciones de imagenología.
Las ventajas principales de la posibilidad de
realizar inyecciones múltiples de bolos en un único estudio, son
las oportunidades de corregir deficiencias en la toma de imágenes
que puedan surgir luego de la inyección y de capturar imágenes de
múltiples partes del cuerpo durante un único examen. De esta manera,
se pueden tomar imágenes de sitios adicionales del cuerpo humano
dentro de un período corto de tiempo después del escaneo y del
análisis de imágenes anteriores y se pueden utilizar inyecciones
posteriores de agente de contraste para obtener distintas vistas o
para extender la vista en una o más dimensiones físicas. Por
ejemplo, se puede realizar un análisis detallado de la ubicación y
el tamaño de un coágulo ubicado en un miembro como la pierna,
utilizando una serie de vistas tomadas en el primer y segundo paso
así como en los pasos posteriores.
La capacidad de lograr pasos múltiples
adicionales de administración de una composición de la invención y
obtener rondas adicionales de información de IRM mas allá de una
primera dosis, presenta importantes ventajas de las composiciones
que constituyen realizaciones de la presente invención. En el
pasado, los análisis de IRM han estado limitados por la duración
física de la función anatómica que requería la toma de imagen y por
los números de estructuras que pueden ser captadas utilizando una
unidad de instrumento de detección en un determinado período de
tiempo.
Los resultados obtenidos en los cerdos, fueron
observados también en seres humanos (Ejemplos 57 y 58).
\vskip1.000000\baselineskip
El diseño de prueba empleó treinta y cinco seres
humanos, a cada uno de los cuales se le administró una dosis de
USPIO recubierto con CMRD T10 preparado conforme al Ejemplo 31
(i.v.; 1-4 mg de hierro/kg de peso corporal). Los
objetivos de los Ejemplos 57 y 58 fueron examinar humanos ante
cualquier efecto secundario potencial del tratamiento, para obtener
información sobre la composición como un agente de contraste para
IRM y determinar la semivida de la composición en la sangre.
No se observó ninguna reacción adversa
atribuible a la administración de la composición con ninguna dosis
entre los humanos tratados, incluyendo la dosis más alta (4
mg/kg).
\vskip1.000000\baselineskip
Una inyección de bolo vía intravenosa inicial en
seres humanos de USPIO recubierto con CMRD, preparada conforme al
Ejemplo 31, produjo una IRM brillante de la porción arterial del
sistema circulatorio dentro de los 12 segundos posteriores a la
administración (Figura 8B). En los 15 segundos siguientes, las
exposiciones de IRM produjeron imágenes brillantes de órganos y
venas. Se logró el equilibrio del agente a través del sistema
vascular en menos de 20 minutos.
Los órganos capaces de ser capturados mediante
imagen en la primera fase luego de la administración de USPIO
cubierto con CMRD de la presente invención incluye el corazón, las
arterias y venas. Asimismo, además de los grandes elementos del
sistema circulatorio, se puedo observar arteriolas y vénulas de las
extremidades (dedos de manos y pies). Este nivel de resolución
permite aplicaciones a diagnósticos de problemas circulatorios en
las extremidades, incluyendo la detección y localización de un área
de flebitis. Otros órganos que pueden ser fácilmente reproducibles
incluyen el cerebro, riñones, hígado, bazo y médula ósea. Los
ganglios linfáticos pudieron ser reproducidos hasta varias horas
más tarde de la administración de una dosis efectiva. Se observó
que la semivida del agente en la sangre fue de alrededor de
10-14 horas (ver Tabla 15 y Figura 9).
Finalmente las partículas se eliminaron de la
circulación mediante la absorción por el sistema reticuloendotelial.
Durante la presencia de la composición en la fase temprana en el
sistema vascular y también en la fase vascular tardía y posterior
en el sistema reticuloendotelial (RES), no se observó que esta
composición entrara en los espacios intersticiales entre las
células. Por lo tanto, un fondo confuso, recurrente en el uso de
otras composiciones, por ejemplo, agentes de contraste MR a base de
gadolinio tal como Magnevist® y DOTOREM®, es evitable mediante el
uso de composiciones de USPIO-CMRD, de la manera que
se sintetizó de acuerdo con los procedimientos de los Ejemplos aquí
descritos.
Claims (9)
1. Un complejo de óxido de hierro polisacárido
reducido derivado esterilizable en autoclave concebido para su
administración a un sujeto mamífero, caracterizado porque
puede obtenerse:
- haciendo reaccionar un polisacárido con una sal de borohidruro o hidrógeno en presencia de un catalizador de hidrogenación para producir un polisacárido reducido;
- derivando el polisacárido reducido;
- el polisacárido reducido derivado estando producido a una temperatura inferior a 50ºC; formando un complejo con el polisacárido reducido derivado y una sal de hierro para producir un complejo de óxido de hierro polisacárido reducido derivado; comprendiendo el complejo la adición de una mezcla de sales férricas y ferrosas, el enfriamiento de la solución resultante y la incorporación de hidróxido de amonio para neutralizar la solución;
- y
- esterilizando el complejo mediante autoclave;
- siendo dicho complejo estable a una temperatura de al menos 100ºC.
\vskip1.000000\baselineskip
2. Un complejo de acuerdo con la reivindicación
1 de forma que es estable a una temperatura de al menos 121ºC
durante un período efectivo para esterilizar el complejo.
3. Un complejo de acuerdo con la reivindicación
1 o la reivindicación 2 en el que el complejo es
superparamagnético.
4. Un complejo de acuerdo con la reivindicación
1 en el que la derivación comprende la carboalquilación de un
polisacárido reducido.
5. Un complejo de acuerdo con la reivinidicación
4 en el que el grupo carboxialquilo se selecciona de carboximetilo,
carboxietilo y carboxipropilo, y preferentemente es
carboximetilo.
6. Un complejo de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 5 en el que el polisacárido es dextrano.
7. Un procedimiento para producir un complejo de
óxido de hierro polisacárido reducido derivado esterilizable en
autoclave para su administración a un sujeto mamífero,
caracterizado porque el procedimiento comprende:
- hacer reaccionar un polisacárido con una sal de borohidruro o hidrógeno en presencia de un catalizador de hidrogenación para producir un polisacárido reducido;
- derivar el polisacárido reducido;
- el polisacárido reducido derivado siendo producido a una temperatura inferior a 50ºC; formar un complejo con el polisacárido reducido derivado y una sal de hierro para producir un complejo de óxido de hierro polisacárido reducido derivado; comprendiendo el complejo la adición de una mezcla de sales férricas y ferrosas, el enfriamiento de la solución resultante y la incorporación de hidróxido de amonio para neutralizar la solución;
- y
- esterilizar el complejo mediante autoclave;
- siendo dicho complejo estable a una temperatura de al menos 100ºC.
\vskip1.000000\baselineskip
8. Un complejo esterilizable mediante autoclave
de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6 o
proporcionado por un procedimiento de acuerdo con la reivindicación
7 en la forma de agente de contraste destinado para IRM in
vivo de un sujeto mamífero.
9. Un complejo esterilizable mediante autoclave
de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6 o
proporcionado por un procedimiento de acuerdo con la reivindicación
7 en la forma de agente hematínico concebido para tratar un sujeto
mamífero con deficiencia de hierro.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US12857999P | 1999-04-09 | 1999-04-09 | |
US128579P | 1999-04-09 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2334555T3 true ES2334555T3 (es) | 2010-03-12 |
Family
ID=22436002
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES00914867T Expired - Lifetime ES2334555T3 (es) | 1999-04-09 | 2000-03-08 | Oxidos de hierro coloidal recubiertos estables frente al calor. |
Country Status (11)
Country | Link |
---|---|
US (2) | US6599498B1 (es) |
EP (1) | EP1169062B1 (es) |
JP (2) | JP5064612B2 (es) |
AT (1) | ATE446108T1 (es) |
CY (1) | CY1109527T1 (es) |
DE (1) | DE60043188D1 (es) |
DK (1) | DK1169062T3 (es) |
ES (1) | ES2334555T3 (es) |
LU (1) | LU92114I2 (es) |
PT (1) | PT1169062E (es) |
WO (1) | WO2000061191A2 (es) |
Families Citing this family (69)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7871597B2 (en) | 1999-04-09 | 2011-01-18 | Amag Pharmaceuticals, Inc. | Polyol and polyether iron oxide complexes as pharmacological and/or MRI contrast agents |
US7169618B2 (en) * | 2000-06-28 | 2007-01-30 | Skold Technology | Magnetic particles and methods of producing coated magnetic particles |
DE10046514A1 (de) * | 2000-09-15 | 2002-04-25 | Diagnostikforschung Inst | Verfahren zur bildlichen Darstellung und Diagnose von Thromben mittels Kernspintomographie unter Verwendung partikulärer Kontrastmittel |
US6690962B2 (en) | 2000-09-15 | 2004-02-10 | Institut fur Diagnostikforshung GmbH | Process for graphic visualization and diagnosis of thrombi by means of nuclear spin tomography with use of particulate contrast media |
AU2002220280A1 (en) * | 2000-12-07 | 2002-06-18 | Ad "Zdravlje" Farmaceutsko - Hemijska Industrija, Centar Za Istrazivanje I Razvoj | Polynuclear complex fe(iii) with pullulan oligomers, process of its obtaining, and pharmaceutical preparations on the basis of the complex |
CN1522161A (zh) | 2001-06-29 | 2004-08-18 | �Ȱ�ά����ķ�ɷݹ�˾ | 批量高压灭菌方法 |
ATE536993T1 (de) | 2002-01-02 | 2011-12-15 | Visen Medical Inc | Aminfunktionalisierte superparamagnetisierte nanoteilchen für die synthese von biokonjugaten |
DE10249552A1 (de) | 2002-10-23 | 2004-05-13 | Vifor (International) Ag | Wasserlösliche Eisen-Kohlenhydrat-Komplexe, deren Herstellung und diese enthaltende Arzneimittel |
US20060018835A1 (en) * | 2004-04-02 | 2006-01-26 | General Electric Company | Nanoparticles with inorganic core and methods of using them |
US20060014938A1 (en) * | 2004-07-14 | 2006-01-19 | Groman Ernest V | Stable aqueous colloidal lanthanide oxides |
US20060140867A1 (en) * | 2004-12-28 | 2006-06-29 | Helfer Jeffrey L | Coated stent assembly and coating materials |
WO2006122083A2 (en) | 2005-05-09 | 2006-11-16 | The General Hospital Corporation | Water relaxation-based sensors |
WO2007027843A2 (en) * | 2005-08-31 | 2007-03-08 | T2 Biosystems, Inc. | Nmr device for detection of analytes involving magnetic particles |
US20070077313A1 (en) * | 2005-10-04 | 2007-04-05 | U.S. Pharmaceutical Corporation | Toleration iron supplement compositions |
US9913917B2 (en) | 2005-12-22 | 2018-03-13 | Visen Medical, Inc. | Biocompatible fluorescent metal oxide nanoparticles |
CN101365458B (zh) | 2006-01-06 | 2012-09-05 | 卢特波尔德药品公司 | 用于铁给药的方法和组合物 |
AU2013206429B2 (en) * | 2006-01-06 | 2016-04-28 | Vifor (International) Ag | Methods and compositions for administration of iron |
AU2016205002C1 (en) * | 2006-01-06 | 2020-09-24 | Vifor (International) Ag | Methods and compositions for administration of iron |
NO329127B1 (no) * | 2006-09-12 | 2010-08-30 | Epitarget As | Sporbart partikulaert materiale for legemiddelavlevering omfattende et matriseeller membranmateriale, et legemiddel, og et T1- og et T2*- magnetisk resonanskontrastmiddel |
CA2669045A1 (en) | 2006-11-08 | 2008-05-15 | T2 Biosystems, Inc. | Nmr systems for in vivo detection of analytes |
US9375495B2 (en) * | 2007-04-12 | 2016-06-28 | Industry-Academic Cooperation Foundation, Yonsei University | Magnetic resonance imaging contrast agents comprising zinc-containing magnetic metal oxide nanoparticles |
US20120003160A1 (en) * | 2007-06-29 | 2012-01-05 | Amag Pharmaceuticals, Inc. | Macrophage-Enhanced MRI (MEMRI) in a Single Imaging Session |
US8421458B2 (en) | 2007-09-28 | 2013-04-16 | T2 Biosystems, Inc. | NMR diagnostics by means of a plastic sample container |
WO2009061481A1 (en) | 2007-11-06 | 2009-05-14 | T2 Biosystems, Inc. | Small magnet and rf coil for magnetic resonance relaxometry |
JP2011503232A (ja) | 2007-11-20 | 2011-01-27 | ザ ブリガム アンド ウィメンズ ホスピタル インコーポレイテッド | 免疫応答の調節 |
CA2721256A1 (en) * | 2008-04-16 | 2009-10-22 | Stemcell Technologies Inc. | Magnetic particles |
JP5926958B2 (ja) | 2008-10-29 | 2016-05-25 | ティー2 バイオシステムズ,インコーポレーテッド | 凝固時間のnmr検出 |
US8840868B2 (en) | 2009-02-04 | 2014-09-23 | The Regents Of The University Of Colorado, A Body Corporate | Non-invasive detection of complement-mediated inflammation using CR2-targeted nanoparticles |
CA2756170C (en) | 2009-03-23 | 2019-04-02 | The Brigham And Women's Hospital, Inc. | Glycoconjugate vaccines |
NZ595597A (en) | 2009-03-25 | 2013-05-31 | Pharmacosmos Holding As | A stable iron oligosaccharide compound |
WO2011005496A2 (en) | 2009-06-22 | 2011-01-13 | Massachusetts Eye & Ear Infirmary | Islet1 (isl1) and hearing loss |
JP2013526616A (ja) | 2010-05-26 | 2013-06-24 | ザ ジェネラル ホスピタル コーポレイション | 磁性ナノ粒子 |
US9636423B2 (en) | 2010-06-02 | 2017-05-02 | The General Hospital Corporation | Optical sensor conjugates for detecting reactive oxygen and/or reactive nitrogen species in vivo |
CN106176808A (zh) | 2010-10-19 | 2016-12-07 | 长春纳米生技公司 | 金属离子纳米簇组合物 |
US8563298B2 (en) | 2010-10-22 | 2013-10-22 | T2 Biosystems, Inc. | NMR systems and methods for the rapid detection of analytes |
BR122020001802B1 (pt) | 2010-10-22 | 2021-05-18 | T2 Biosystems, Inc | métodos para detectar a presença de um patógeno em uma amostra de sangue total e para detectar um analito em uma amostra |
US8409807B2 (en) | 2010-10-22 | 2013-04-02 | T2 Biosystems, Inc. | NMR systems and methods for the rapid detection of analytes |
CN102086232B (zh) * | 2010-12-15 | 2012-05-23 | 吕辉 | 一种多糖铁的制备方法 |
CN103917658B (zh) | 2011-07-13 | 2016-09-21 | T2生物系统公司 | 用于监测血块形成的nmr方法 |
DK2741765T3 (en) | 2011-08-10 | 2016-06-13 | Adocia | Injectable solution of at least one type of basal insulin |
WO2013043858A1 (en) | 2011-09-21 | 2013-03-28 | T2 Biosystems, Inc. | Nmr methods for endotoxin analysis |
US9958416B2 (en) | 2011-11-23 | 2018-05-01 | The General Hospital Corporation | Analyte detection using magnetic hall effect |
BR112014016889A8 (pt) | 2012-01-09 | 2017-07-04 | Adocia | composição sob a forma de uma solução aquosa injetável, sujo ph está compreendido entre 6,0 e 8,0 e, formulação de dose unitária com ph compreendido entre 7 e 7,8 |
EP2647389A1 (en) | 2012-04-04 | 2013-10-09 | Charité - Universitätsmedizin Berlin | Magnetic nanoparticle dispersion, its preparation and diagnostic and therapeutic use |
EP3524692A1 (en) | 2012-04-20 | 2019-08-14 | T2 Biosystems, Inc. | Compositions and methods for detection of candida species |
US10274490B2 (en) | 2012-06-12 | 2019-04-30 | The General Hospital Corporation | Magnetic labeling of bacteria |
EP2864051B1 (en) | 2012-06-25 | 2020-09-23 | The General Hospital Corporation | Sorting particles using high gradient magnetic fields |
US9675640B2 (en) * | 2012-08-07 | 2017-06-13 | Southwest Research Institute | Magnetic calcium phosphate nanoparticles, applications and methods of preparation thereof |
US20150314003A2 (en) | 2012-08-09 | 2015-11-05 | Adocia | Injectable solution at ph 7 comprising at least one basal insulin the isoelectric point of which is between 5.8 and 8.5 and a hydrophobized anionic polymer |
US9739733B2 (en) | 2012-12-07 | 2017-08-22 | T2 Biosystems, Inc. | Methods for monitoring tight clot formation |
EP2968503B1 (en) | 2013-03-15 | 2018-08-15 | Intrinsic LifeSciences LLC | Anti-hepcidin antibodies and uses thereof |
US9370202B2 (en) | 2013-03-15 | 2016-06-21 | LG Bionano, LLC | Encapsulated metal ion nanoclusters |
EP3058316B1 (en) | 2013-10-18 | 2019-03-13 | The General Hospital Corporation | Microfluidic sorting using high gradient magnetic fields |
US9566216B2 (en) | 2013-11-18 | 2017-02-14 | Southwest Research Institute | Bone cements containing magnetic calcium phosphate nanoparticles |
KR20150078375A (ko) | 2013-12-30 | 2015-07-08 | 한화케미칼 주식회사 | 철산화물 나노입자를 포함하는 철결핍증의 예방 또는 치료용 약학 조성물 |
US10898581B2 (en) | 2014-01-16 | 2021-01-26 | The Brigham And Women's Hospital, Inc. | Targeted delivery of immunoregulatory drugs |
TWI689310B (zh) | 2014-07-11 | 2020-04-01 | 巨生生醫股份有限公司 | 治療鐵缺乏症之方法 |
CA2961917A1 (en) | 2014-09-22 | 2016-03-31 | Intrinsic Lifesciences Llc | Humanized anti-hepcidin antibodies and uses thereof |
JP6757723B2 (ja) | 2014-11-03 | 2020-09-23 | ザ ジェネラル ホスピタル コーポレイション | ミクロ流体装置における粒子の濃縮 |
CN105597105B (zh) * | 2014-11-19 | 2020-03-10 | 连云港润众制药有限公司 | 一种菲立莫妥的制备方法 |
EP3274053A4 (en) | 2015-03-23 | 2018-12-05 | The Brigham and Women's Hospital, Inc. | Tolerogenic nanoparticles for treating diabetes mellitus |
US10258647B2 (en) | 2015-09-01 | 2019-04-16 | Particle Dynamics International, Llc | Iron-polysaccharide complexes and methods for the preparation thereof |
WO2017127731A1 (en) | 2016-01-21 | 2017-07-27 | T2 Biosystems, Inc. | Nmr methods and systems for the rapid detection of bacteria |
CN105708792A (zh) * | 2016-01-28 | 2016-06-29 | 山西普德药业股份有限公司 | 一种还原型羧烷基葡聚糖铁注射液及其制备方法 |
CN105616372A (zh) * | 2016-01-28 | 2016-06-01 | 山西普德药业股份有限公司 | 一种还原型羧烷基葡聚糖铁片剂 |
CN105708805A (zh) * | 2016-01-28 | 2016-06-29 | 山西普德药业股份有限公司 | 一种还原型羧烷基葡聚糖铁及其制备方法 |
TR201703251A2 (tr) | 2017-03-03 | 2017-07-21 | Berna Buelbuel | Kansizliğin transdermal yoldan tedavi̇si̇nde kullanilacak demi̇r oksi̇t nanokri̇stalleri̇ i̇çeren solüsyon |
CN108403716B (zh) * | 2018-06-25 | 2021-11-05 | 博瑞生物医药(苏州)股份有限公司 | 一种超顺磁氧化铁的制备方法 |
US11028176B2 (en) | 2019-02-13 | 2021-06-08 | The Brigham And Women's Hospital, Inc. | Anti-peripheral lymph node addressin antibodies and uses thereof |
Family Cites Families (27)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US2885393A (en) * | 1956-02-24 | 1959-05-05 | R K Laros Company | Dextran-iron complex and process for making same |
US2862920A (en) * | 1956-06-07 | 1958-12-02 | Ohio Commw Eng Co | Ferrous carboxymethyl dextran |
US3000872A (en) * | 1956-06-15 | 1961-09-19 | Ohio Commw Eng Co | Preparation of carboxymethyl dextran-iron complexes |
US2856398A (en) * | 1956-06-15 | 1958-10-14 | Ohio Commw Eng Co | Carboxymethyl dextran-iron complexes |
US2856366A (en) * | 1956-07-30 | 1958-10-14 | Ohio Commw Eng Co | Stable alkaline metal solutions containing carboxymethyl dextran |
US3151107A (en) * | 1960-12-22 | 1964-09-29 | Central Pharmacal Company | Water-soluble iron complexes of carboxymethyl dextran |
GB1019513A (en) * | 1961-08-07 | 1966-02-09 | Chemicals Inc | Iron dextran complexes |
US3234209A (en) * | 1963-09-13 | 1966-02-08 | Chemicals Inc | Process for making iron hydrogenated dextran |
JPS5913521B2 (ja) * | 1975-06-19 | 1984-03-30 | メイトウサンギヨウ カブシキガイシヤ | 磁性酸化鉄・デキストラン複合体の製造法 |
US4180567A (en) * | 1977-09-02 | 1979-12-25 | Pharmachem Corporation | Iron preparations and methods of making and administering the same |
US4452773A (en) * | 1982-04-05 | 1984-06-05 | Canadian Patents And Development Limited | Magnetic iron-dextran microspheres |
EP0230768B1 (en) | 1985-12-20 | 1992-03-18 | Syntex (U.S.A.) Inc. | Particle separation method |
US5076950A (en) | 1985-12-20 | 1991-12-31 | Syntex (U.S.A.) Inc. | Magnetic composition for particle separation |
US5055288A (en) | 1987-06-26 | 1991-10-08 | Advanced Magnetics, Inc. | Vascular magnetic imaging method and agent comprising biodegradeable superparamagnetic metal oxides |
US4827945A (en) | 1986-07-03 | 1989-05-09 | Advanced Magnetics, Incorporated | Biologically degradable superparamagnetic materials for use in clinical applications |
US5262176A (en) | 1986-07-03 | 1993-11-16 | Advanced Magnetics, Inc. | Synthesis of polysaccharide covered superparamagnetic oxide colloids |
US5102652A (en) | 1986-07-03 | 1992-04-07 | Advanced Magnetics Inc. | Low molecular weight carbohydrates as additives to stabilize metal oxide compositions |
US5160726A (en) | 1990-02-15 | 1992-11-03 | Advanced Magnetics Inc. | Filter sterilization for production of colloidal, superparamagnetic MR contrast agents |
US4770183A (en) | 1986-07-03 | 1988-09-13 | Advanced Magnetics Incorporated | Biologically degradable superparamagnetic particles for use as nuclear magnetic resonance imaging agents |
GB8808305D0 (en) * | 1988-04-08 | 1988-05-11 | Nycomed As | Compositions |
JP2726520B2 (ja) * | 1989-10-20 | 1998-03-11 | 名糖産業株式会社 | 有機磁性複合体 |
EP0506880A1 (en) | 1989-12-22 | 1992-10-07 | Molecular Bioquest, Inc. | Organo-metallic coated particles for use in separations |
GB9416767D0 (en) * | 1994-08-18 | 1994-10-12 | Nycomed Innovation Ab | Compositions |
AU687093B2 (en) | 1994-09-27 | 1998-02-19 | Nycomed Imaging As | Contrast agent |
DE69725746T2 (de) | 1996-08-30 | 2004-05-13 | Meito Sangyo K.K., Nagoya | Zusammensetzung enthaltend ein polysaccharidderivat und magnetisches eisenoxid |
DK172860B1 (da) * | 1998-03-25 | 1999-08-16 | Pharmacosmos Holding As | Jerndextranforbindelse til anvendelse som komponent i et terapeutisk middel til forebyggelse af eller behandling af jernman |
DK173138B1 (da) | 1998-11-20 | 2000-02-07 | Pharmacosmos Holding As | Fremgangsmåde til fremstilling af en jerndextranforbindelse, jerndextranforbindelse fremstillet efter fremgangsmåden, farma |
-
2000
- 2000-03-08 DK DK00914867.7T patent/DK1169062T3/da active
- 2000-03-08 US US09/521,264 patent/US6599498B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-03-08 JP JP2000610523A patent/JP5064612B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 2000-03-08 WO PCT/US2000/006047 patent/WO2000061191A2/en active Application Filing
- 2000-03-08 PT PT00914867T patent/PT1169062E/pt unknown
- 2000-03-08 ES ES00914867T patent/ES2334555T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2000-03-08 DE DE60043188T patent/DE60043188D1/de not_active Expired - Lifetime
- 2000-03-08 EP EP00914867A patent/EP1169062B1/en not_active Revoked
- 2000-03-08 AT AT00914867T patent/ATE446108T1/de active
-
2003
- 2003-03-11 US US10/386,394 patent/US7553479B2/en not_active Expired - Fee Related
-
2009
- 2009-12-01 CY CY20091101262T patent/CY1109527T1/el unknown
-
2010
- 2010-12-09 JP JP2010275172A patent/JP2011046752A/ja not_active Withdrawn
-
2012
- 2012-12-14 LU LU92114C patent/LU92114I2/fr unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DK1169062T3 (da) | 2010-01-25 |
LU92114I2 (fr) | 2013-12-14 |
PT1169062E (pt) | 2009-12-17 |
WO2000061191A2 (en) | 2000-10-19 |
US7553479B2 (en) | 2009-06-30 |
WO2000061191A9 (en) | 2001-06-21 |
EP1169062B1 (en) | 2009-10-21 |
CY1109527T1 (el) | 2014-08-13 |
EP1169062A2 (en) | 2002-01-09 |
US6599498B1 (en) | 2003-07-29 |
WO2000061191A3 (en) | 2001-05-25 |
JP5064612B2 (ja) | 2012-10-31 |
JP2011046752A (ja) | 2011-03-10 |
DE60043188D1 (de) | 2009-12-03 |
US20030225033A1 (en) | 2003-12-04 |
JP2002541218A (ja) | 2002-12-03 |
ATE446108T1 (de) | 2009-11-15 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
ES2334555T3 (es) | Oxidos de hierro coloidal recubiertos estables frente al calor. | |
US8926947B2 (en) | Polyol and polyether iron oxide complexes as pharmacological and/or MRI contrast agents | |
DE69332952T2 (de) | Diagnostische und therapeutische Einheiten enthaltende biokompatible Polymere | |
US4822594A (en) | Contrast enhancing agents for magnetic resonance images | |
ES2131067T5 (es) | Composicion que contiene particulas ultrafinas de oxido metalico magnetico. | |
HUT77993A (hu) | Vastartalmú, kettős bevonatú nanorészecskék, ezek előállítása és alkalmazása a diagnosztikában, és a gyógykezelésben | |
Sena et al. | Magnetic resonance lymphangiography with a nano-sized gadolinium-labeled dendrimer in small and large animal models | |
EP2968619A1 (en) | Enteric ct contrast material based on low-z atoms | |
US20230087639A1 (en) | Biogenic hemin-based mri contrast agents, and compositions and methods thereof | |
JP2013535560A (ja) | ヨードを含有した放射形状の高分子化合物、その製造方法及びそれを含有するct用造影剤組成物 | |
JPH06502177A (ja) | 磁気共鳴映像用ポリマー−デフェロキサミン−第2鉄付加物 | |
ES2864829T3 (es) | Conjugados de tetrapirrol como agentes de contraste IRM | |
WO2020037752A1 (zh) | 一种被修饰的吲哚菁绿及其制备方法和应用 | |
Lee et al. | Molecular imaging of CD44-overexpressing gastric cancer in mice using T2 MR imaging | |
EP1522318A2 (en) | Heat stable coated colloidal iron oxides | |
EP1106186A2 (en) | Non-covalent bioconjugates useful for magnetic resonance imaging | |
Dong et al. | Ultrasmall catechol-PEG-anchored ferrite nanoparticles for highly sensitive magnetic resonance angiography | |
Yang et al. | Enhanced sensitivity of spectral CT imaging in vivo by using Ytterbium chelate | |
CN106390144A (zh) | 蔗糖铁注射液在用于制备磁共振造影剂中的用途 | |
JPH09227414A (ja) | 造影剤組成物 | |
CN112891565A (zh) | 锌-二甲基吡啶胺在制备诊断血栓性疾病药物中的应用 | |
JPH04224523A (ja) | Mri用造影剤 |