ES2323066T3 - Secrecion mejorada de neublastina. - Google Patents
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Abstract
Método para producir un polipéptido de neublastina biológicamente activo, que comprende cultivar una célula que comprende un vector de expresión que comprende un ácido nucleico que comprende una secuencia promotora operativamente unida a una secuencia de nucleótidos que codifica para un péptido señal y un polipéptido de neublastina, en el que dicha secuencia de nucleótidos no codifica para una pro-región de neublastina, y en el que dicho péptido señal es un péptido señal de inmunoglobulina, un péptido señal de TGF-beta, un péptido señal de GDF, un péptido señal de IGF, un péptido señal de BMP, un péptido señal de neurotrofina, un péptido señal de PDGF, un péptido señal de EGF, un péptido señal de insulina, un péptido señal de ADH, un péptido señal de LH, un péptido señal de FSH, un péptido señal de ACTH, un péptido señal de MSH, un péptido señal de TSH, un péptido señal de DHEA, un péptido señal de interleucina, un péptido señal de neurturina, un péptido señal de GDNF, un péptido señal de persefina, un péptido señal de NGF, un péptido señal que es el péptido señal contenido en SEQ ID NO:70, o un péptido señal de neublastina nativa.
Description
Secreción mejorada de neublastina.
La presente invención se refiere a métodos y
composiciones para producir un polipéptido de neublastina así como
a la liberación local de neublastina a regiones específicas del
sistema nervioso incluyendo el sistema nervioso central y el ojo,
por ejemplo, mediante terapia génica. La invención incluye la
liberación de neublastina a partir de células transducidas o
transfectadas encapsuladas dentro de una macrocápsula con una
membrana semipermeable. La invención se refiere adicionalmente a
células de mamífero que pueden producir neublastina en cantidades
aumentadas.
Las células tienen formas para dirigir las
proteínas sintetizadas de novo a diversos compartimentos de
las células y al espacio extracelular. Los péptidos señal se
encuentran en la parte codificante del ADN cromosómico y se
sintetizan como parte de la proteína mediante el aparato ribosómico.
Los péptidos señal constituyen el extremo
N-terminal y provocan que los polipéptidos recién
sintetizados se dirijan hacia el retículo endoplasmático rugoso. En
éste, el péptido señal se escinde a partir del polipéptido y la
proteína madura se secreta hacia el entorno. Por tanto, el péptido
señal permanece dentro de la célula.
La pro-parte de la proteína se
escinde de la parte madura de la proteína y acaba fuera de la
célula. Para algunos factores neurotróficos, por ejemplo NGF, la
pro-parte de la proteína es bioactiva como
neuropéptido.
En terapia génica, cuando el gen insertado
codifica para una proteína que va a secretarse, se necesitará
colocar una secuencia señal en frente de la proteína madura para
garantizar su procesamiento apropiado a través del retículo
endoplasmático rugoso y el aparato de Golgi. La primera elección es
casi invariablemente la secuencia señal nativa de la proteína en
cuestión, debido a que generalmente se desea que la proteína se
secrete y/o procese en la misma forma que se secreta y procesa por
la célula nativa. Para algunos usos también se desea que la
cantidad de proteína expresada sea la misma que en la célula nativa.
Además, no puede excluirse la posibilidad de que la secuencia señal
escindida desempeñe un papel en el metabolismo de la célula.
Finalmente, un experto en la técnica elegiría utilizar la parte de
la pre-pro-proteína para garantizar
un procesamiento y plegado correctos de la proteína madura.
En muchos casos ha resultado que las células
transducidas y transfectadas in vivo que se supone que
secretan un factor terapéutico no secretan el factor terapéutico en
cantidades terapéuticamente suficientes y durante un tiempo
suficiente. Esto también puede ser un problema en la terapia génica
ex vivo en la que las células se transfectan o transducen
fuera del organismo y se insertan en el paciente tras la
modificación genética.
El estado de la técnica no proporciona mucha
información con respecto al acoplamiento del péptido señal con
proteínas heterólogas en mamíferos. Para la expresión heteróloga de
proteínas de mamífero en hongos o levaduras, es una práctica común
sustituir el péptido señal de mamífero por uno que es funcional en
la especie productora.
Sah et al. (documento WO 02/078730)
demuestran la administración sistémica de un polipéptido de
neublastina para la preparación de una composición farmacéutica
para tratar, prevenir o retrasar el dolor neuropático.
La presente invención se refiere a un método
para producir un polipéptido de neublastina biológicamente activo,
que comprende cultivar una célula que comprende un vector de
expresión que comprende un ácido nucleico que comprende una
secuencia promotora operativamente unida a una secuencia de
nucleótidos que codifica para un péptido señal y un polipéptido de
neublastina, en el que dicha secuencia de nucleótidos no codifica
para una pro-región de neublastina, y en el que
dicho péptido señal es un péptido señal de inmunoglobulina, un
péptido señal de TGF-beta, un péptido señal de GDF,
un péptido señal de IGF, un péptido señal de BMP, un péptido señal
de neurotrofina, un péptido señal de PDGF, un péptido señal de EGF,
un péptido señal de insulina, un péptido señal de ADH, un péptido
señal de LH, un péptido señal de FSH, un péptido señal de ACTH, un
péptido señal de MSH, un péptido señal de TSH, un péptido señal de
DHEA, un péptido señal de interleucina, un péptido señal de
neurturina, un péptido señal de GDNF, un péptido señal de persefina,
un péptido señal de NGF, un péptido señal que es el péptido señal
contenido en SEQ ID NO:70, o un péptido señal de neublastina
nativa.
La presente invención proporciona una solución
al problema de ausencia casi completa de secreción del factor
neurotrófico, incluyendo neublastina, frecuentemente experimentada
tras la transducción de células de mamífero con vectores virales
tanto in vivo como in vitro. También se observa el
fenómeno para vectores de expresión basados en plásmidos. Por
algunas razones desconocidas, se bloquea frecuentemente en las
células de mamífero la secreción del factor neurotrófico codificado
por el vector. Una explicación posible podría ser que el
procesamiento correcto de las proteínas secretadas es específico de
la célula. Esto representa un grave problema en el uso de terapia
génica con vector viral. Actualmente, la terapia génica con vectores
virales se considera el método más preferido (si no el único
relevante) para terapia génica in vivo o ex vivo
debido a que los vectores virales garantizan la integración estable
en el genoma de la célula transducida.
La invención proporciona la expresión eficaz de
una neublastina humana madura, o un truncamiento biológicamente
activo de una neublastina humana madura, es decir, un polipéptido
secretado de neublastina, como una pre-proteína, en
vez de como una pre-pro-proteína.
Una pre-proteína de neublastina según la invención
comprende generalmente dos componentes: un polipéptido secretado de
neublastina (como se definió anteriormente) y una secuencia señal
heteróloga.
Además, los presentes inventores han mostrado
que mediante la sustitución del péptido señal nativo de neublastina
por un péptido señal alternativo a partir de otras proteínas, tal
como a partir de la región variable de la cadena pesada de la
inmunoglobulina, la secreción de neublastina se potencia
adicionalmente, especialmente a partir de las células
transducidas.
Además, los presentes inventores han mostrado
que mediante la eliminación de la secuencia de nucleótidos que
codifica para la pro-región de la secuencia de
nucleótidos que codifica para el péptido señal así como el
polipéptido de neublastina, es posible entonces expresar y tener una
mayor cantidad de neublastina secretada, que si se incluyera la
pro-región.
Se ha encontrado que aunque la
pro-región es necesaria para que se plieguen
correctamente muchas proteínas, es posible producir un polipéptido
de neublastina biológicamente activo sin una
pro-región.
En un aspecto adicional, la invención se refiere
a la secuencia de nucleótidos que codifica para el péptido señal y
el polipéptido de neublastina, al vector de expresión que comprende
la secuencia de nucleótidos, a una composición farmacéutica que
comprende el vector según la invención y uno o más adyuvantes,
excipientes, vehículos y/o diluyentes farmacéuticamente aceptables.
La composición farmacéutica puede utilizarse para terapia génica
in vivo y ex vivo.
En un aspecto adicional la invención se refiere
a una célula huésped aislada transducida o transfectada con el
vector según la invención.
Ha resultado que tales células huésped
genéticamente modificadas producen cantidades inesperadamente
elevadas de neublastina en comparación con las células transducidas
o transfectadas con vectores que codifican para neublastina con su
secuencia señal nativa. Por tanto estas células huésped transducidas
o transfectadas constituyen una fuente prometedora de células
productoras para la producción de neublastina a escala industrial.
Las células secretoras de neublastina también pueden utilizarse
para trasplante en sujetos mamíferos como fuente de neublastina.
Una aplicación particular es la terapia génica ex vivo.
En un aspecto adicional, la invención se refiere
a una línea celular de empaquetamiento que puede producir una
partícula de vector infectiva, comprendiendo dicha partícula de
vector un genoma derivado de retrovirus que comprende una LTR
retroviral en 5', un sitio de unión a ARNt, una señal de
empaquetamiento, un promotor operativamente unido a una secuencia
polinucleotídica que codifica para una proteína de fusión que
comprende neublastina y un péptido señal de inmunoglobulina, un
origen de síntesis de la segunda hebra de ADN y una LTR retroviral
en 3'.
Estas líneas celulares de empaquetamiento pueden
utilizarse para producir los vectores virales según la invención.
También pueden utilizarse para terapia génica in vivo cuando
se encapsulan y trasplantan al SNC.
En un aspecto adicional, la invención se refiere
a un mamífero transgénico no humano que comprende al menos una
célula que se transduce o transfecta con el vector según la
invención. Tales animales que sobreexpresan neublastina pueden
utilizarse para obtener el perfil genético y en la selección y el
desarrollo de fármacos.
Preferiblemente, la célula transducida o
transfectada tiene el genotipo del animal individual, es decir, no
es un trasplante alogénico o xenogénico.
En un aspecto adicional, la invención se refiere
a un dispositivo implantable para cultivo celular, comprendiendo el
dispositivo:
una membrana semipermeable que permite la
difusión de un factor neurotrófico a su través; y
al menos una célula huésped aislada según la
invención.
Estas cápsulas pueden utilizarse para la
liberación local de neublastina tras el trasplante en el sistema
nervioso central. La liberación localizada y prolongada del factor
de crecimiento es un método de administración preferido para el
tratamiento de varios trastornos del SNC, incluyendo pero sin
limitarse a enfermedad de Parkinson, enfermedad de Alzheimer,
enfermedad de Huntington, accidente cerebrovascular y esclerosis
lateral amiotrófica (ELA). Las cápsulas pueden utilizarse asimismo
para la liberación local y prolongada de neublastina para tratar
trastornos periféricos incluyendo pero sin limitarse a neuropatía y
dolor neuropático. Las indicaciones adicionales incluyen trastornos
oculares.
Las cápsulas de esta invención proporcionan la
liberación de partículas virales en un sitio deseado en un paciente
utilizando un enfoque capsular. La encapsulación de las líneas
celulares que producen el vector permite la liberación continua de
la partícula viral al sitio diana, en contraposición a una única
infusión. Además, es posible la terapia repetida, con probabilidad
reducida de ataque inmunitario. Las cápsulas tienen poros lo
suficientemente grandes como para permitir el paso de partículas
virales liberadas a partir de las células de empaquetamiento,
aunque impiden el paso de la célula huésped hacia la cápsula.
Este enfoque capsular aumenta la seguridad y el
control de la terapia debido a que los dispositivos pueden
retirarse fácilmente (terminando el tratamiento de transducción) o
extraerse y reimplantarse (modificando el tratamiento). Además, se
reduce la posibilidad de infección debido a que el dispositivo
capsular no se abre ni externaliza.
Finalmente, debido a que la encapsulación impide
que las células de empaquetamiento migren dentro del paciente, y
prolonga la viabilidad de las células de empaquetamiento tras el
implante, probablemente se necesitan menos células para esta
terapia. Esto puede ser ventajoso en la disminución adicional de una
reacción inmunitaria en el paciente.
En un aspecto adicional, la invención se refiere
al uso del vector según la invención como medicamento.
Todavía en un aspecto adicional, la invención se
refiere al uso del vector según la invención para la preparación de
un medicamento para el tratamiento de un trastorno del sistema
nervioso.
En otro aspecto, la invención se refiere al uso
del vector según la invención para la preparación de un medicamento
para el tratamiento de un trastorno del SNC.
Además, la invención se refiere a un método de
tratamiento de una enfermedad del sistema nervioso, comprendiendo
dicho método administrar a un individuo que necesita del mismo:
una cantidad terapéuticamente eficaz del vector
de la invención; o
una cantidad terapéuticamente eficaz de la
composición farmacéutica que comprende el vector.
Según este aspecto de la invención, se
proporcionan métodos mejorados de terapia génica in vivo para
el tratamiento de enfermedades del sistema nervioso. Tal como se
demuestra mediante los ejemplos adjuntos, la transducción con los
vectores virales de la presente invención da como resultado la
secreción no observada hasta la fecha de la neublastina codificada
y como consecuencia un efecto terapéutico mejorado.
Todavía en un aspecto adicional, la invención se
refiere a un método de tratamiento de una enfermedad del sistema
nervioso, comprendiendo dicho método trasplantar a un individuo que
necesita del mismo:
- una cantidad terapéuticamente eficaz de las
células transducidas de la invención; o
- un dispositivo implantable según la invención
o
Este aspecto proporciona otra forma de
tratamiento de trastornos del sistema nervioso basado en terapia
génica ex vivo e implante de células terapéuticas que pueden
secretar cantidades aumentadas de neublastina.
El método actualmente preferido para la
producción a gran escala de neublastina es la expresión heteróloga
en E. coli, posterior lisis, extracción, purificación,
replegado y opcionalmente escisión de la proteína. Un método
alternativo que se utiliza para la producción de cantidades a escala
de investigación incluye el cultivo de una célula productora de
mamífero tal como células CHO que secretan neublastina correctamente
procesada y plegada en el medio de cultivo, del que puede aislarse
de manera relativamente fácil. Las células de mamífero de la
presente invención producen neublastina en cantidades superiores que
las observadas anteriormente para las células de mamífero y, por
tanto, representan una fuente mejorada de células para producir
neublastina bioactiva, que es neublastina correctamente procesada y
plegada.
Figura 1: Alineamiento de las secuencias de IgSP
de diversos mamíferos.
Figura 2: Mapa de vector del constructo de
vector lentiviral pHsC.IgSP.hNBN.W utilizado para los experimentos
de transducción en el ejemplo 2.
Figura 3: Mapa de vector del pNS1n.IgSP.hNBN. La
misma secuencia de IgSP-NBN que pHsC.IgSP.hNBN.W
entre los sitios de restricción BamHI y XhoI utilizados en el
ejemplo 1.
Figura 4: Determinación de la actividad de NBN
en el ELISA de RetL3 (muestras duplicadas). (a) Se determinaron las
actividades de NBN en los sobrenadantes celulares utilizando
artemina recombinante de ratón producida en E. coli (mART)
como patrón, (b) análisis de los sobrenadantes de células
transfectadas, (c) análisis de los sobrenadantes de células
transducidas.
Figura 5: Análisis de
Western-blot con el anticuerpo
anti-NBN nº 378. (a) Análisis de afinidad de
GFR[alfa]3 por NBN purificada a partir de células
CHO-NBN16 (CHO-NBN) y 20 ng de NBN
recombinante de rata (rNBN). (b) Análisis de sobrenadantes de
ARPE-19 transfectadas o transducidas con constructos
de expresión de IgSP-NBN y dos clones de células
CHO que sobreexpresan de manera estable NBN a partir de un
constructo de tipo salvaje (CHO-NBN25c y
CHO-NBN16). Las flechas indican la posición de los
monómeros de neublastina glicosilados y no glicosilados tras la
reducción por el anticuerpo nº 378.
Figura 6: Predicción de la escisión del péptido
señal mediante SignalP. Para una explicación véase el ejemplo
4.
Figura 7: La figura 7A muestra el plásmido pHs
C.hNBN.W y la figura 7B muestra el plásmido pHsCXW. Para una
explicación véase el ejemplo 6.
Figura 8: La figura 8A muestra el medio
condicionado por la liberación de NBN relativa y las figuras 8B y
8C muestran NBN en diferentes líneas celulares, véase también el
ejemplo 7.
La figura 9 representa la secuencia de los 104
aminoácidos carboxilo (C) terminales del polipéptido de neublastina
nativa humana (SEQ ID NO: 19) y la secuencia de ADN correspondiente
que codifica para los 104 aminoácidos C terminales de la
neublastina nativa humana (SEQ ID NO: 58) alineada con un gen
sintético que codifica para los 104 aminoácidos C terminales de la
neublastina nativa humana optimizada para su expresión en células
CHO (SEQ ID NO: 59). Los nucleótidos en el gen sintético que se han
cambiado con respecto a la secuencia nativa están indicados
(*).
La figura 10 representa la secuencia de
neublastina dentro del plásmido pNBN026-35 (SEQ ID
NO: 60). Inmediatamente en sentido 5' de la secuencia presentada se
encuentra un dinucleótido "CT" que contribuye a un sitio de
restricción XhoI. Inmediatamente en sentido 3' se encuentra un
sitio de restricción BamHI.
La figura 11 representa la secuencia de ADN (SEQ
ID NO: 61) y de aminoácidos (SEQ ID NO: 62) de los 104 aminoácidos
C terminales de neublastina fusionados a una secuencia señal
sintética. La secuencia señal está subrayada.
La figura 12 representa la secuencia de ADN (SEQ
ID NO: 63) y de aminoácidos (SEQ ID NO: 64) de los 104 aminoácidos
C terminales de neublastina fusionados a una secuencia señal de
neublastina. La secuencia señal está subrayada.
La figura 13A representa la secuencia de ADN
(SEQ ID NO: 65) y de aminoácidos (SEQ ID NO: 66) de los 104
aminoácidos C terminales de neublastina fusionados a una secuencia
señal de albúmina. La secuencia señal está subrayada.
La figura 13B representa la secuencia de ADN
(SEQ ID NO: 69) y de aminoácidos (SEQ ID NO: 70) de los 104
aminoácidos C terminales de neublastina fusionados a una secuencia
señal de albúmina modificada. La secuencia señal está
subrayada.
La figura 14 representa la secuencia de ADN (SEQ
ID NO: 67) y la secuencia de aminoácidos (SEQ ID NO: 68) de los 104
aminoácidos C terminales de neublastina fusionados a una secuencia
señal de hormona de crecimiento humana. La secuencia señal, que
contiene un intrón, está subrayada.
La figura 15 representa los resultados del
espectrómetro de masas de neublastina secretada a partir de células
CHO utilizando la secuencia señal de albúmina (15A) o la secuencia
señal de hormona de crecimiento humana (15B) (15C). Los picos a
11.156 y 11.157 daltons corresponden a un fragmento C terminal de
neublastina de 104 aminoácidos. Los picos a 11.084 y 11.085 daltons
corresponden a un fragmento C terminal de neublastina de 103
aminoácidos. La figura 15A representa la neublastina deglicosilada a
partir de la secreción dirigida por albúmina. La figura 15B
representa la neublastina deglicosilada a partir de la secreción
dirigida por hormona de crecimiento humana. La figura 15C
representa neublastina a partir de la secreción dirigida por
hormona de crecimiento humana. Los picos con masas más grandes
corresponden a la presencia de diversas glicoformas.
La figura 16 representa los resultados del
ensayo KIRA que demuestran la actividad de la neublastina producida
de manera recombinante en células CHO.
La figura 17A representa la secuencia de
aminoácidos de la neublastina de longitud completa incluyendo la
proteína madura, el pro-dominio y el péptido señal
(SEQ ID NO: 10). La figura 17B representa la secuencia de
aminoácidos del péptido señal de neublastina nativa de longitud
completa. La figura 17C representa la secuencia de aminoácidos del
pro-dominio de neublastina de longitud completa.
"Aminoácidos C-terminales",
tal como se utiliza en el presente documento, significa una serie de
aminoácidos contiguos en la parte más distal de una cadena
polipeptídica con respecto al extremo amino (N) terminal del
polipéptido.
"Pro-región de neublastina"
significa una región que comprende al menos aminoácidos que
corresponden a los aminoácidos -41 a -11 de SEQ ID NO: 10, 11,
12.
"Polipéptido de
pre-pro-neublastina" (SEQ ID NO:
10), tal como se utiliza en el presente documento, significa un
polipéptido que consiste en neublastina madura humana, es decir, los
113 aminoácidos C-terminales de neublastina
(aminoácidos 108 a 220 de SEQ ID NO: 10), el
pro-dominio de neublastina humana de longitud
completa, es decir, los 68 aminoácidos proximales al extremo
N-terminal de la neublastina madura (aminoácidos 40
a 107 de SEQ ID NO: 10), y el péptido señal de neublastina humana,
es decir, los 39 aminoácidos proximales al extremo
N-terminal del pro-dominio de
neublastina (aminoácidos 1 a 39 de SEQ ID NO: 10).
Péptido señal - péptido señal eucariótico. Un
péptido señal eucariótico es un péptido presente en proteínas que
están destinadas o bien a secretarse o bien a componentes de la
membrana. Habitualmente, está en posición
N-terminal en la proteína. En el presente contexto,
todos los péptidos señal identificados en SignalP (versión 2.0 o
preferiblemente versión 3.0) se consideran un péptido señal.
"Péptido señal de neublastina funcional",
tal como se utiliza en el presente documento, significa los primeros
39 aminoácidos de SEQ ID NO: 10 o cualquier parte de la misma que
efectúa la secreción de la neublastina madura a partir de una
célula.
"Secuencia señal de neublastina funcional"
significa una secuencia de ácido nucleico que codifica para un
péptido señal de neublastina funcional.
Un péptido señal de mamífero es un péptido señal
derivado de una proteína de mamífero secretada a través del RE
(retículo endoplasmático).
Polipéptido de neublastina madura humana tal
como se utiliza en la presente invención significa los 113
aminoácidos C-terminales de neublastina nativa
humana, es decir, aminoácidos 108-220 de SEQ ID No.
10.
Polipéptido de neublastina madura de ratón tal
como se utiliza en el presente documento significa los 113
aminoácidos C-terminales de neublastina nativa de
ratón, es decir, aminoácidos 112-224 de SEQ ID No.
11.
Polipéptido de neublastina madura de rata tal
como se utiliza en el presente documento significa los 113
aminoácidos C-terminales de neublastina nativa de
rata, es decir, aminoácidos 112-224 de SEQ ID No.
12.
Polipéptido de neublastina tal como se utiliza
en el presente documento significa un polipéptido que comprende los
99-140 aminoácidos C-terminales de
neublastina nativa humana, los 99-144 aminoácidos
C-terminales de neublastina nativa de rata o de
ratón. Más preferiblemente, un polipéptido de neublastina comprende
los 99-113 aminoácidos C-terminales
de neublastina nativa humana, los 99-113 aminoácidos
C-terminales de neublastina nativa de rata o los
99-113 aminoácidos C-terminales de
neublastina de ratón, cada una con hasta 15 sustituciones de
aminoácidos en la secuencia nativa. En ciertos contextos se
entenderá que "polipéptido de neublastina secretado" significa
un polipéptido que va a secretarse en contraposición a uno que ya se
ha secretado. El polipéptido de neublastina secretado no contiene
una pro-región de neublastina.
El prodominio de neublastina funcional es un
péptido ubicado entre el péptido señal y el péptido maduro,
propéptido que puede escindirse del péptido maduro mediante furina
tras escindir el péptido señal.
Bioactividad: capacidad de unirse cuando se
dimeriza junto con GFR\alpha3 a RET e inducir dimerización y
autofosforilación de RET. Medida con ensayos de Elisa Kira o Elisa
RET L3.
"Heterólogo", tal como se utiliza cuando se
refiere a una secuencia de ácido nucleico o una secuencia de
aminoácidos, significa una secuencia que se origina a partir de una
fuente externa a la célula huésped particular, o, si es a partir de
la misma célula huésped, se modifica con respecto a su forma
original.
Péptido señal heterólogo; un péptido señal que
no está operativamente unido de manera natural a un polipéptido de
neublastina.
La invención se refiere a un método para
producir un polipéptido de neublastina en el que la secuencia de
nucleótidos que codifica para el polipéptido de neublastina no
codifica para una pro-región. En el presente
contexto, una pro-región comprende al menos los
aminoácidos -41 a -11 de SEQ. ID. NO.: 10, 11 ó 12. Más
preferiblemente, la pro-región comprende al menos
los aminoácidos -41 a -1 de cualquiera de SEQ. ID. NO.: 10, 11 ó 12.
Más preferiblemente, la pro-región comprende al
menos los aminoácidos -41 a 10 de cualquiera de SEQ. ID. NO.: 10,
11 o 12, lo más preferiblemente comprende el
pro-dominio de las secuencias, que corresponde a los
aminoácidos -41 a 27 de SEQ ID NO: 10, o aminoácidos -41 a 31 de
SEQ ID NO: 11, o de SEQ ID NO: 12.
El vector de expresión según la invención
comprende un ácido nucleico que comprende una secuencia promotora
que puede cultivar una célula transducida con un vector de expresión
que comprende un ácido nucleico que comprende una secuencia
promotora que puede dirigir la expresión de una secuencia de
nucleótidos que codifica para un péptido señal operativamente unido
a un polipéptido de neublastina, en el que dicha secuencia de
nucleótidos no codifica para una pro-región de un
polipéptido de neublastina.
Durante el proceso de secreción, el péptido
señal de la pre-proteína de neublastina se escinde
por la célula huésped produciendo el polipéptido de neublastina.
Aunque el sitio de escisión generalmente está definido, un experto
en la técnica apreciará que puede existir variabilidad en el sitio
de escisión del péptido señal. Por consiguiente, las realizaciones
que tienen cierta ambigüedad con respecto al sitio de escisión
exacto se encuentran dentro del alcance de la invención.
El péptido señal puede ser cualquier péptido
señal funcional, tal como un péptido señal heterólogo, tal como un
péptido señal de mamífero. El péptido señal puede ser de cualquier
especie adecuada, tal como de ser humano, ratón, rata, mono, cerdo,
perro, gato, vaca o caballo.
El péptido señal está unido al polipéptido de
neublastina, y preferiblemente se fusiona directamente a dicho
polipéptido de neublastina, tal como el extremo
C-terminal del péptido señal que se fusiona al
extremo N-terminal del polipéptido de
neublastina.
Tal como se demuestra mediante los ejemplos
adjuntos, el uso de este péptido señal en general da como resultado
una secreción mejorada de neublastina tanto in vitro como
in vivo. Los resultados fueron reproductibles tanto con
células transducidas con lentivirus (in vivo e in
vitro) como con células transfectadas con plásmidos (in
vitro). Las células producen la proteína madura como una
proteína biológicamente activa cuando el gen del péptido señal se
fusiona directamente al gen que codifica para la proteína madura (es
decir, excluyendo la pro-parte).
Los inventores han descubierto que no solamente
el péptido señal de neublastina nativa funciona como péptido señal,
sino que también los péptidos señal heterólogos son útiles y
frecuentemente proporcionan un rendimiento superior que el péptido
señal nativo. El péptido señal heterólogo puede seleccionarse del
grupo que consiste en un péptido señal de factor de crecimiento, un
péptido señal de hormona, un péptido señal de citocina y un péptido
señal de inmunoglobulina.
Por tanto, ejemplos de péptidos señal son
péptidos señal seleccionados del grupo que consiste en péptidos
señal de TGF\beta, péptidos señal de GDF, péptidos señal de IGF,
péptidos señal de BMP, péptidos señal de neurotrofina, péptido
señal de PDGF y péptido señal de EGF, péptidos señal seleccionados
de un péptido señal de hormona, seleccionándose dicha hormona del
grupo que consiste en hormona de crecimiento, insulina, ADH, LH,
FSH, ACTH, MSH, TSH, T3, T4 y DHEA, o un péptido señal de
interleucina.
En una realización, el péptido señal se
selecciona del grupo que consiste en péptido señal de neurturina,
péptido señal de GDNF, péptido señal de persefina y péptido señal de
NGF.
En otra realización, el péptido señal se
selecciona del grupo que consiste en péptido señal de albúmina,
péptido señal de albúmina modificado y péptido señal de hormona de
crecimiento, tal como un péptido señal seleccionado del grupo que
consiste en péptido señal de albúmina de rata, péptido señal de
albúmina de rata modificado y péptido señal de hormona de
crecimiento humana, tal como péptido señal de albúmina de rata y
péptido señal de hormona de crecimiento humana.
Por tanto, en algunas realizaciones, el
polipéptido de neublastina secretado se fusiona a un péptido señal
de albúmina de rata nativo. Esto se muestra a modo de ejemplo
mediante SEQ ID NO: 66. En otras realizaciones, el polipéptido de
neublastina secretado se une a una secuencia señal de albúmina de
rata modificada. Esto se muestra a modo de ejemplo mediante SEQ ID
NO: 70. En otras realizaciones, el polipéptido de neublastina
secretado se fusiona a una secuencia señal de hormona de crecimiento
humana. Esto se muestra a modo de ejemplo mediante SEQ ID NO:
68.
Aún en otra realización, el péptido señal es un
péptido señal de inmunoglobulina, tal como el péptido señal de la
cadena pesada de la inmunoglobulina. En particular, un péptido señal
de inmunoglobulina puede ser un péptido señal seleccionado del
grupo que consiste en IgSP de ratón (SEQ ID NO 4), IgSP de rata (SEQ
ID NO 6), IgSP porcino (SEQ ID NO 5), IgSP de simio (SEQ ID NO 2 ó
3), IgSP humano (SEQ ID NO 1), tal como IgSP de ratón (SEQ ID NO 4)
o IgSP humano (SEQ ID NO 1).
El péptido señal de inmunoglobulina (IgSP) es un
péptido pequeño de 19 aminoácidos conocido de un gran grupo de
mamíferos. Las secuencias de ser humano, mono rhesus, tití, rata,
ratón y cerdo se alinean en la figura 1. El porcentaje de identidad
de secuencia en comparación con IgSP humano varia desde el 21
(cerdo) hasta el 68 (tití) por ciento. Esta variación relativamente
grande indica que la secuencia específica puede alterarse hasta un
grado importante sin que cambie sustancialmente la función biológica
del péptido señal. También se observa que existe reactividad
cruzada entre especies tal como se demuestra mediante los ejemplos
adjuntos. Éstos se llevaron a cabo con el IgSP de ratón que era
funcional en rata (experimentos in vivo) y en células
humanas (células ARPE-19).
Preferiblemente, el IgSP es de origen humano o
de ratón debido a que se sabe que el IgSP de ratón es funcional en
ratón, rata y seres humanos. Para su uso en seres humanos, el IgSP
preferiblemente es de origen humano con el fin de reducir el riesgo
de cualquier efecto secundario entre especies.
En otra realización, el péptido señal es un
péptido señal de neublastina nativa tal como un péptido señal de
neublastina nativa humana. En este contexto, el último constructo
del péptido señal de neublastina nativa y un polipéptido de
neublastina se denomina delta-proneublastina.
Aún en otra realización, el péptido señal es un
péptido señal sintético, tal como el péptido señal que tiene la
secuencia de aminoácidos de AA1-AA38 de SEQ ID NO
62. (MetSerTrpAlaTrpAlaAlaCysProProCysProThrAlaLeu
GlyLeuGlyGlySerAlaLeuTrpProThrLeuAlaAlaLeuAlaLeuLeuSerSerValAlaGluAla).
GlyLeuGlyGlySerAlaLeuTrpProThrLeuAlaAlaLeuAlaLeuLeuSerSerValAlaGluAla).
\vskip1.000000\baselineskip
Los polipéptidos de neublastina son proteínas
que promueven la supervivencia, mantienen la diferenciación
fenotípica, previenen la degeneración, promueven la regeneración y
restablecen la actividad de células neuronales y tejidos. La
neublastina (inicialmente descrita, por ejemplo, en el documento WO
00/01815) se ha denominado alternativamente "artemina" (véase,
por ejemplo, el documento WO 00/18799) y "enovina" (véase, por
ejemplo, el documento WO 00/04050).
La neublastina se ha clasificado como un miembro
distante de la superfamilia de TGF-\beta
(Massague, et al,. 1994, Trends in Cell Biology, 4:
172-178) y es un miembro de la familia del ligando
de factor neurotrófico derivado de la línea de células gliales
("GDNF"; documento WO 93/06116), en la familia que incluye
GDNF, persefina ("PSP"; Milbrandt et al., 1998, Neuron
20: 245253) y neurturina ("NTN"; documento WO 97/08196). Los
ligandos de la subfamilia de GDNF tienen en común su capacidad para
inducir la señalización a través del receptor tirosina cinasa RET.
Estos tres ligandos de la subfamilia de GDNF difieren en sus
afinidades relativas por una familia de receptores neurotróficos,
los receptores de GFR[alfa]. La neublastina actúa
preferiblemente a través del complejo
GFR[alfa]3-RET. Baudet et al.,
Development, 127, páginas 4335-44 (2000); Baloh
et al., Neuron, 21, páginas 1291-1302
(1998); Airaksinen et al., Mol. Cell. Neuroscience, 13,
páginas 313-325 (1999).
En la tabla 1 se muestra una comparación de la
secuencia de aminoácidos de neublastina (SEQ ID NO: 10) con los
miembros de la subfamilia de GDNF neurturina, persefina y GDNF. Los
polipéptidos de neublastina útiles en esta invención
preferiblemente mantienen la huella genética de la subfamilia de
GDNF, es decir, los residuos de aminoácidos subrayados en la tabla
1.
A partir del alineamiento de la secuencia de
aminoácidos mostrada en la tabla 1, puede observarse que la
neublastina tiene siete residuos de cisteína en ubicaciones que
están conservadas dentro de la superfamilia de TGF-[beta].
Basándose en este alineamiento de secuencias, se mostró que la
neublastina es un miembro de la subfamilia de GDNF de factores
neurotróficos
(LGLG-FR(Y/F)CSGSC-QxCCRP-SAxxCGC,
la huella genética de la subfamilia de GDNF, subrayada en la tabla
1).
Los polipéptidos de neublastina útiles en el
presente documento pueden proporcionarse en cualquier forma
bioactiva, incluyendo la forma de pre-proteínas,
proteínas maduras, proteínas glicosiladas, proteínas fosforiladas,
formas truncadas o cualquier otra proteína modificada
postraduccionalmente. Se supone que una neublastina bioactiva se
encuentra en forma dimerizada para cada variante de NBN, debido a
que la formación del dímero se requiere para la actividad. Se
observa de poca a ninguna actividad en un polipéptido de NBN
monomérico. Un polipéptido de neublastina bioactiva incluye un
polipéptido dimerizado que, en presencia de un cofactor (tal como
GFR[alfa]3 o RET), se une a GFR[alfa]3
o a un complejo de GFR[alfa]3 y RET, induce la
dimerización de RET y la autofosforilación de RET. Por
consiguiente, un "polipéptido de neublastina", tal como se
utiliza en el presente documento, es un polipéptido que tiene
actividad neurotrófica (por ejemplo, tal como se describe en el
documento WO 00/01815).
Los polipéptidos de neublastina producidos
mediante los métodos de esta invención presentan al menos una
actividad biológica de neublastina nativa. La actividad biológica
para los fines de esta invención puede determinarse mediante
cualquier método adecuado. Un polipéptido de neublastina
biológicamente activo es un polipéptido que, cuando se dimeriza,
puede unirse, junto con GFR\alpha3, a RET e inducir dimerización
de RET y autofosforilación. (Véase por ejemplo Sanicola et
al., 1997, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 94: 6238). Puede
utilizarse cualquier método de determinación de la unión al
receptor y autofosforilación del receptor para evaluar la actividad
biológica del polipéptido de neublastina producido mediante los
métodos de la invención. Por ejemplo, puede utilizarse el ensayo
KIRA (ELISA) descrito en el ejemplo 17 para evaluar la actividad
biológica de la neublastina. (Véase también, Sadick et al.,
1996, Anal. Biochem., 235 (2): 207).
La neublastina en forma bioactiva también puede
detectarse utilizando el ensayo ELISA de RetL3 descrito en el
ejemplo 1. La neublastina sin función biológica no se detectará
mediante el ensayo de ELISA de RetL3.
Las siguientes secuencias de longitud completa
representan la pre-pro-neublastina
de tipo salvaje con péptido señal de tipo salvaje. Tras la
transducción o transfección en células de mamífero, las neublastinas
maduras resultantes solamente se secretan en cantidades muy
pequeñas. El péptido señal nativo de neublastina humana, de ratón y
de rata está representado por los primeros 39 aminoácidos.
- -AA_{-80}-AA_{140}
de SEQ ID NO: 10 (prepro humana "salvaje"),
- -AA_{-80}-AA_{144}
de SEQ ID No. 11 (prepro de ratón),
- -AA_{-80}-AA_{144}
de SEQ ID NO: 12 (prepro de rata),
El polipéptido de neublastina secretado según la
invención puede variar en longitud. Aunque el polipéptido de
neublastina madura humana normalmente consiste en los 113
aminoácidos C-terminales de
pre-pro-neublastina, no todos los
113 aminoácidos se requieren para lograr una actividad biológica
útil de la neublastina. El truncamiento amino terminal es
aceptable. Por tanto, el polipéptido de neublastina secretado
corresponde a los 99-113 aminoácidos
C-terminales de neublastina nativa humana, es decir,
su longitud puede ser de 99, 100, 101, 102, 103, 104, 105, 106,
107, 108, 109, 110, 111, 112 ó 113 aminoácidos. La selección de la
longitud exacta del polipéptido de neublastina que va a secretarse
es una elección de diseño, que puede realizar un experto en la
técnica. Un polipéptido de neublastina humana secretado que
consiste en los 104 aminoácidos C-terminales de
neublastina nativa humana se muestra a modo de ejemplo en los
ejemplos de trabajo proporcionados a continuación. Además de variar
en longitud, el polipéptido de neublastina humana secretado puede
variar en secuencia.
Las siguientes secuencias de aminoácidos
("aa" o "AA") de neublastina "salvaje" son a modo de
ejemplo de aquéllas que son útiles en los métodos y composiciones
de esta invención:
- -AA_{1}-AA_{140} de
SEQ ID NO: 10 (140AA madura; en lo sucesivo "140NBN"),
- -AA_{25}-AA_{140} de
SEQ ID NO: 10 (116AA madura; en lo sucesivo "116NBN"),
- -AA_{28}-AA_{140} de
SEQ ID NO: 10 (113AA madura (SEQ ID No. 14); en lo sucesivo
"113NBN"),
- -AA_{1}-AA_{144} de
SEQ ID NO: 11 (144AA madura de ratón),
- -AA_{1}-AA_{144} de
SEQ ID NO: 12 (144AA madura de rata),
- -Péptidos con una secuencia
C-terminal expuesta en
AA_{107}-AA_{140} de SEQ ID No. 10, más
preferiblemente AA_{76}-AA_{140} de SEQ ID NO.
10, y que conserva los 7 residuos de Cys característicos de la
familia de GDNF y de la superfamilia de
TGF-beta.
En una realización, el polipéptido de
neublastina preferido contiene (siete) cisteínas conservadas como en
SEQ ID NO. 10 en las posiciones 43, 70, 74, 107, 108, 136 y 138. Se
sabe que estos siete residuos de cisteína conservados dentro de la
superfamilia de TGF forman tres enlaces disulfuro intramonoméricos
(contemplados, por ejemplo, en SEQ ID No. 10 entre los residuos de
cisteína 43-108, 70-136 y
74-138) y un enlace disulfuro intermonomérico
(contemplado, por ejemplo, en SEQ ID NO. 10 entre los residuos de
cisteína 107-107), que junto con la región de hebra
beta extendida constituye el motivo estructural conservado para la
superfamilia de TGF-[beta]. Véase, por ejemplo, Daopin et
al., Proteins 1993, 17: 176-192.
Preferiblemente, el polipéptido de neublastina
es una de las formas maduras de la proteína de tipo salvaje.
Actualmente, se cree que la ausencia de la
pro-región es importante para lograr elevados
niveles de secreción en células de mamífero genéticamente
modificadas.
Los polipéptidos de neublastina útiles en la
presente invención también incluyen formas truncadas de la molécula
de neublastina de longitud completa. En tales moléculas truncadas,
uno o más aminoácidos se han delecionado del extremo
N-terminal o el C-terminal,
preferiblemente el extremo N-terminal. El
polipéptido de neublastina truncada puede obtenerse proporcionando
un polipéptido de neublastina madura y poniendo en contacto el
polipéptido de neublastina madura con al menos una proteasa en
condiciones suficientes para producir el polipéptido de neublastina
truncada. Preferiblemente, al menos una proteasa es una exoproteasa,
y ponerla en contacto con el polipéptido de neublastina madura da
como resultado la formación de un producto de digestión con
exopeptidasa del polipéptido de neublastina que puede digerirse
adicionalmente con una dipeptidil peptidasa. Más preferiblemente,
según la presente invención
la proteína codificada por los vectores de expresión es la forma truncada y no necesita procesamiento adicional.
la proteína codificada por los vectores de expresión es la forma truncada y no necesita procesamiento adicional.
Los polipéptidos de neublastina truncada
descritos en el presente documento incluyen preferiblemente una
secuencia polipeptídica que abarca los siete residuos de cisteína
conservados en la secuencia de neublastina madura. En ciertas
realizaciones preferidas, el polipéptido de neublastina truncada
incluye al menos los 85 aminoácidos
carboxilo-terminales del polipéptido de neublastina
113NBN madura. En realizaciones más preferidas, el polipéptido de
neublastina truncada incluye al menos los 98 aminoácidos
carboxilo-terminales de 113NBN madura humana.
Una forma truncada incluye los 97 aminoácidos
desde el primero hasta el último de los siete residuos de cisteína
de la neublastina madura. Esto corresponde a los aminoácidos número
2 a 97 de SEQ ID No 20.
Otras variantes de neublastina incluyen formas
de NBN truncada. Los ejemplos de éstas incluyen:
(i) La secuencia polipeptídica de 112AA
designada en el presente documento como NBN 112, que tiene los 112
aminoácidos carboxilo-terminales de un polipéptido
de neublastina madura, por ejemplo, aminoácidos
29-140 de SEQ ID NO. 10.
(ii) La secuencia polipeptídica de 111 AA
designada en el presente documento como NBN111, que tiene los 111
aminoácidos carboxilo-terminales de un polipéptido
de neublastina madura, por ejemplo, aminoácidos
30-140 de SEQ ID NO. 10.
(iii) La secuencia polipeptídica de 110 AA
designada en el presente documento como NBN110, que tiene los 110
aminoácidos carboxilo-terminales de un polipéptido
de neublastina madura, por ejemplo, aminoácidos
31-140 de SEQ ID NO. 10.
(iv) La secuencia polipeptídica de 109 AA
designada en el presente documento como NBN109, que tiene los 109
aminoácidos carboxilo-terminales de un polipéptido
de neublastina madura, por ejemplo, aminoácidos
32-140 de SEQ ID NO. 10.
(v) La secuencia polipeptídica de 108 AA
designada en el presente documento como NBN108, que tiene los 108
aminoácidos carboxilo-terminales de un polipéptido
de neublastina madura, por ejemplo, aminoácidos
33-140 de SEQ ID NO. 10.
(vi) La secuencia polipeptídica de 107 AA
designada en el presente documento como NBN107, que tiene los 107
aminoácidos carboxilo-terminales de un polipéptido
de neublastina madura, por ejemplo, aminoácidos
34-140 de SEQ ID NO. 10.
(vii) La secuencia polipeptídica de 106 AA
designada en el presente documento como NBN106, que tiene los 106
aminoácidos carboxilo-terminales de un polipéptido
de neublastina madura, por ejemplo, aminoácidos
35-140 de SEQ ID NO. 10.
(viii) La secuencia polipeptídica de 105 AA
designada en el presente documento como NBN105, que tiene los 105
aminoácidos carboxilo-terminales de un polipéptido
de neublastina madura, por ejemplo, aminoácidos
36-140 de SEQ ID NO. 10.
(ix) La secuencia polipeptídica de 104 AA
designada en el presente documento como NBN104, que tiene los 104
aminoácidos carboxilo-terminales de un polipéptido
de neublastina madura, por ejemplo, aminoácidos
37-140 de SEQ ID NO. 10 (también expuesta como SEQ
ID No. 19).
(x) La secuencia polipeptídica de 103 AA
designada en el presente documento como NBN103, que tiene los 103
aminoácidos carboxilo-terminales de un polipéptido
de neublastina madura, por ejemplo, aminoácidos
38-140 de SEQ ID NO. 10.
(xi) La secuencia polipeptídica de 102 AA
designada en el presente documento como NBN 102, que tiene los 102
aminoácidos carboxilo-terminales de un polipéptido
de neublastina madura, por ejemplo, aminoácidos
39-140 de SEQ ID NO. 10.
(xii) La secuencia polipeptídica de 101 AA
designada en el presente documento como NBN101, que tiene los 101
aminoácidos carboxilo-terminales de un polipéptido
de neublastina madura, por ejemplo, aminoácidos
40-140 de SEQ ID NO. 10.
(xiii) La secuencia polipeptídica de 100 AA
designada en el presente documento como NBN100, que tiene los 100
aminoácidos carboxilo-terminales de un polipéptido
de neublastina madura, por ejemplo, aminoácidos
41-140 de SEQ ID NO. 10.
(xiv) La secuencia polipeptítida de 99 AA
designada en el presente documento como NBN99, que tiene los 99
aminoácidos carboxilo-terminales de un polipéptido
de neublastina madura, por ejemplo, aminoácidos
42-140 de SEQ ID NO. 10 (también expuesta como SEQ
ID No. 20).
Se entiende que las formas truncadas de
neublastina dadas a conocer en el presente documento (por ejemplo,
las formas de 112 AA a 99 AA) tienen actividad neurotrófica.
En las realizaciones más preferidas, el
polipéptido de neublastina truncada es los aminoácidos 99 aa, 100
aa, 101 aa, 102 aa, 103 aa, 104 aa, 105 aa, 106 aa, 107 aa, 108 aa,
109 aa, 110 aa, 111 aa o 112 aa carboxilo-terminales
del polipéptido de neublastina de 113 AA madura (es decir, NBN99,
NBN100, NBN101, NBN102, NBN103, NBN104, NBN105, NBN106, NBN107,
NBN108, NBN109, NBN110, NBN111 o NBN112, respectivamente). Las
secuencias también pueden encontrarse en los polipéptidos de
neublastina de ratón y de rata como los 99 aa, 100 aa, 101 aa, 102
aa, 103 aa, 104 aa, 105 aa, 106 aa, 107 aa, 108 aa, 109 aa, 110 aa,
111 aa ó 112 aa carboxilo-terminales,
respectivamente, en SEQ ID No. 11 y 12. Estos ejemplos más
preferidos de formas truncadas de NBN son bioactivos (denominados
"polipéptidos de neublastina truncada bioactiva") puesto que se
ha demostrado que tienen actividad neurotrófica. Tal como se
estableció anteriormente, se requiere la dimerización de NBN para la
bioactividad, puesto que se observó de poca a ninguna actividad con
el polipéptido monomérico de NBN.
También se contemplan formas truncadas de las
neublastinas de ratón y de rata. Éstas pueden consistir en los 99,
100, 101, 102, 103, 104, 105, 106, 107, 108, 109, 110, 111, 112,
113, 114, 115, ó 116 aminoácidos C-terminales de
SEQ ID No 16 (ratón) o pueden consistir en los 99, 100, 101, 102,
103, 104, 105, 106, 107, 108, 109, 110, 111 ó 112 aminoácidos
C-terminales de SEQ ID No 18 (rata).
Por tanto, la invención abarca un polipéptido de
neublastina seleccionado del grupo que consiste en NBN madura
seleccionada de neublastina que tiene una secuencia identificada
como los aminoácidos 1-140 de SEQ ID No 10, o
aminoácidos 1-144 de SEQ ID No 11 ó 12, SEQ ID No
13, 14, 15, 16, 17 ó 18, NBN truncada en el extremo
N-terminal, NBN mutada, o NBN mutada y
N-truncada, tal como una NBN madura seleccionada del
grupo que consiste en neublastina que tiene una secuencia
identificada por SEQ ID No 13, 14, 15, 16, 16, 17 ó 18), más
particularmente un polipéptido de neublastina seleccionado del
grupo que consiste en neublastina truncada en el extremo
N-terminal con los 106, 104, 102 ó 99 aminoácidos
C-terminales de SEQ ID NO 10 o un polipéptido de
neublastina seleccionado del grupo que consiste en los 116
aminoácidos C-terminales de neublastina humana, los
113 aminoácidos C-terminales de neublastina humana,
los 104 aminoácidos C-terminales de neublastina
humana y los 116 aminoácidos C-terminales de
neublastina humana, un polipéptido de neublastina que tiene la
secuencia de aminoácidos de SEQ ID No 19 o un polipéptido de
neublastina que contiene los 99 aminoácidos de SEQ ID NO 20.
Las NBNs útiles en esta invención incluyen
también aquellos polipéptidos de NBN que tienen una secuencia de
aminoácidos con similitud o identidad sustancial con respecto a los
diversos polipéptidos de "neublastina" prepro, pro, madura y
truncada expuestos anteriormente. Preferiblemente, el polipéptido de
neublastina utilizado tiene al menos el 70%, más preferiblemente el
85%, todavía más preferiblemente el 90%, o todavía más
preferiblemente de manera adicional el 95% de identidad o similitud
con respecto al péptido maduro de los polipéptidos de neublastina
en SEQ ID NO. 10-23. Lo más preferiblemente, el
polipéptido de neublastina utilizado tiene al menos el 99% de
similitud o identidad con respecto a los péptidos maduros de los
polipéptidos de neublastina en SEQ ID No. 10-23.
El grado hasta el que un polipéptido candidato
comparte homología con un polipéptido de neublastina de la
invención se determina como el grado de similitud o identidad entre
dos secuencias de aminoácidos.
Un alto nivel de identidad de secuencia indica
la probabilidad de que la primera secuencia se derive de la segunda
secuencia. La identidad de secuencia de aminoácidos requiere
secuencias de aminoácidos idénticas entre dos secuencias alineadas.
Por tanto, una secuencia candidata que comparte el 70% de identidad
de aminoácidos con una secuencia de referencia, requiere que, tras
el alineamiento, el 70% de los aminoácidos en la secuencia
candidata sean idénticos a los aminoácidos correspondientes en la
secuencia de referencia. La identidad se determina mediante
análisis informático, tal como, sin limitaciones, el programa de
alineamiento informático ClustalX (Thompson JD, Gibson TJ, Plewniak
F, Jeanmougin F, & Higgins DG: "The ClustalX windows
interface: flexible strategies for multiple sequence alignment
aided by quality analysis tools"; Nucleic Acids Res. 1997, 25
(24): 4876-82), y los parámetros por defecto
sugeridos en ese documento. Utilizando este programa, la parte
madura de un polipéptido codificado por una secuencia de ADN análoga
de la invención presenta un grado de identidad de al menos el 70%,
más preferiblemente del 85%, todavía más preferiblemente del 90% o
todavía más preferiblemente del 95%, lo más preferiblemente de al
menos el 99% con las secuencias de aminoácidos presentadas en el
presente documento como SEQ ID NO: 10 (NBN humana), SEQ ID NOS: 11 y
12 (NBN de roedor).
Se conocen otras herramientas de alineamiento,
tales como el algoritmo de programación dinámica descrito en
Needleman et al., J. Mol. Biol. 48:443 (1970), y el programa
Align, un paquete de software comercial producido por DNAstar, Inc.
Una vez que se realiza y se refina el alineamiento entre la
secuencia candidata y de referencia, se calcula una puntuación de
homología en tanto por ciento. Los aminoácidos individuales de cada
secuencia se comparan secuencialmente según su similitud entre
sí.
Los factores de similitud incluyen carga
eléctrica, forma y tamaño similares. Un método particularmente
preferido para determinar similitudes de aminoácidos es la matriz
PAM250 descrita en Dayhoff et al., Atlas of protein sequence
and structure 345-352 (1978 & Supp.). Se calcula
en primer lugar una puntuación de similitud como la suma de las
puntuaciones de similitud de aminoácidos por parejas alineados. Las
inserciones y deleciones se ignoran para los fines de determinar la
homología e identidad en tanto por ciento. Por consiguiente, no se
utilizan penalizaciones por hueco en este cálculo.
Entonces se normaliza la puntuación sin tratar
dividiéndola entre la media geométrica de las puntuaciones del
compuesto candidato y el esqueleto de siete cisteínas de los
polipéptidos de neublastina. La media geométrica es la raíz
cuadrada del producto de estas puntuaciones. La puntuación sin
tratar normalizada es la homología en tanto por ciento.
Tal como se indicó anteriormente, los
polipéptidos de neublastina de la invención incluyen polipéptidos
variantes. En el contexto de esta invención, la expresión
"polipéptido variante" incluye un polipéptido (o proteína) que
tiene una secuencia de aminoácidos que difiere del péptido maduro
presentado como parte de SEQ ID NO. 10, 13, 14, 19, 20, 21, 22 ó 23
(NBN humana), o SEQ ID No. 11, 12, 15-18 (NBN de
roedor), en una o más posiciones de aminoácido. Tales polipéptidos
variantes incluyen los polipéptidos modificados descritos
anteriormente, así como sustituciones conservativas, variantes de
corte y empalme, isoformas, homólogos de otras especies y
polimorfismos.
Tal como se define en el presente documento, la
expresión "sustituciones conservativas" indica la sustitución
de un residuo de aminoácido por otro residuo, biológicamente
similar. Normalmente, la similitud biológica, tal como se hizo
referencia anteriormente, refleja sustituciones en la secuencia de
tipo salvaje con aminoácidos conservados.
Los sustitutos para un aminoácido dentro de la
secuencia del polipéptido de neublastina pueden seleccionarse de
otros miembros de la clase a la que pertenece el aminoácido (véase
la tabla 1). Además, diversos aminoácidos se sustituyen comúnmente
por aminoácidos neutros, por ejemplo, alanina, leucina, isoleucina,
valina, prolina, fenilalanina, triptófano y metionina. (Véase por
ejemplo MacLennan et al., 1998, Acta Physiol. Scand. Suppl.,
643: 55-67; Sasaki et al., 1998, Adv.
Biophys., 35: 1-24). Las sustituciones múltiples se
encuentran dentro del alcance de la invención; sin embargo, todos
los polipéptidos de neublastina de la invención deben tener al
menos una actividad de neublastina nativa tal como se describe a
continuación en la sección C, véase también la siguiente tabla:
\vskip1.000000\baselineskip
Por ejemplo, podría esperarse que las
sustituciones de aminoácidos conservativas tengan poco o ningún
efecto sobre la actividad biológica, particularmente si representan
menos del 10% del número total de residuos en el polipéptido o la
proteína. Preferiblemente, las sustituciones de aminoácidos
conservativas representan cambios en menos del 5% del polipéptido o
la proteína, lo más preferiblemente menos del 2%-del polipéptido o
la proteína.
El polipéptido de neublastina en una realización
comprende hasta 15 sustituciones de aminoácidos, tal como hasta 12
sustituciones de aminoácidos, tal como hasta 10 sustituciones de
aminoácidos, tal como hasta 8 sustituciones de aminoácidos, tal
como hasta 5 sustituciones de aminoácidos. Por ejemplo, cuando se
calculan según, por ejemplo, la 113NBN humana, las sustituciones
conservativas más preferidas representarían menos de tres
sustituciones de aminoácidos en la secuencia de aminoácidos madura
de tipo salvaje. En una realización particularmente preferida,
existe una única sustitución de aminoácido en la secuencia madura,
en la que tanto los aminoácidos sustituidos como de sustitución son
no cíclicos. Otros ejemplos de sustituciones particularmente
conservativas incluyen la sustitución de un residuo hidrófobo por
otro, tal como isoleucina, valina, leucina o metionina, o la
sustitución de un residuo polar por otro, tal como la sustitución
de arginina por lisina, ácido glutámico por aspártico, o glutamina
por asparagina, y similares.
La expresión sustitución conservativa también
incluye el uso de un residuo de aminoácido sustituido en lugar de
un residuo de aminoácido original no sustituido siempre que los
anticuerpos generados frente al polipéptido sustituido también sean
inmunorreactivos con el polipéptido no sustituido.
Las modificaciones de esta secuencia de
aminoácidos primaria pueden dar como resultado proteínas, que tienen
actividad sustancialmente equivalente en comparación con el
polipéptido equivalente no modificado, y por tanto pueden
considerarse análogos funcionales de las proteínas originales. Tales
modificaciones pueden ser intencionadas, por ejemplo como mediante
mutagénesis dirigida al sitio, o pueden producirse de manera
espontánea, e incluyen variantes de corte y empalme, isoformas,
homólogos de otras especies y polimorfismos. Tales análogos
funcionales también se contemplan según la invención.
\newpage
A continuación se muestra un alineamiento de 99
aminoácidos C-terminales de seres humanos, ratones y
ratas:
Preferiblemente, las sustituciones se llevan a
cabo en posiciones que no se conservan marcadas con "sin
asterisco", "." o ":".
Otras posiciones preferidas para la sustitución
se indican con "%".
\vskip1.000000\baselineskip
Además, las modificaciones de la secuencia de
aminoácidos primaria pueden dar como resultado proteínas que no
conservan la actividad biológica de la proteína original, incluyendo
formas dominantes negativas, etc. Una proteína dominante negativa
puede interferir con la proteína de tipo salvaje uniéndose a, o
secuestrando de otra manera agentes reguladores, tales como
componentes en sentido 5' o en sentido 3', que normalmente
interaccionan funcionalmente con el polipéptido. Dichas formas
dominantes negativas también se contemplan según la invención.
Las formas biológicamente activas de neublastina
truncada se conocen a partir del documento WO 02/072826 (NsGene y
Biogen). Las moléculas de neublastina truncada y mutada también se
conocen a partir del documento WO 02/060929 (Biogen), especialmente
neublastina mutada que comprende una secuencia de aminoácidos
derivada de los aminoácidos 8-113 de SEQ ID No. 14,
en la que el polipéptido de neublastina variante incluye una o más
de las sustituciones de aminoácidos seleccionadas del grupo que
consiste en: un aminoácido diferente a la arginina en la posición
14 en la secuencia de aminoácidos de dicho polipéptido variante, un
aminoácido diferente a la arginina en la posición 39 en la
secuencia de aminoácidos de dicho polipéptido variante, un
aminoácido diferente a la arginina en la posición 68 de dicho
polipéptido variante y un aminoácido diferente a la asparagina en la
posición 95 de dicho polipéptido variante, por ejemplo a un residuo
de lisina, en el que las posiciones de dichos aminoácidos están
numeradas según la secuencia polipeptídica de SEQ ID NO: 10. Las
formas mutadas pueden estar truncadas tal como se describió
anteriormente o incluir la longitud completa de la proteína madura
(aminoácidos 1-113 de SEQ ID NO 14).
Preferiblemente el aminoácido en la posición 14, 39 ó 68 es una
lisina.
\vskip1.000000\baselineskip
Antes de decidir la forma de neublastina
específica que va a incorporarse en un constructo de expresión,
puede comprobarse la posibilidad de escisión del péptido señal, tal
como Igsp, usando herramientas de predicción del estado de la
técnica. Una herramienta preferida para la predicción de este tipo
es el software SignalP disponible en el servidor de WWW de SignalP
(http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP-2.0/),o o
preferiblemente, la versión 3.0 más nueva disponible del mismo
servidor
(http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP-3.0/).
El servidor de WWW de SignalP devolverá
tres puntuaciones entre 0 y 1 para cada posición en la
secuencia:
- \quad
- Puntuación C (puntuación del sitio de escisión sin tratar)
La puntuación de salida a partir de redes
entrenadas para reconocer sitios de escisión frente a otras
posiciones de secuencia. Entrenadas para ser:
- \quad
- altas en la posición +1 (inmediatamente tras el sitio de escisión)
- \quad
- bajas en todas las otras posiciones.
- \quad
- Puntuación S (puntuación del péptido señal)
La puntuación de salida a partir de redes
entrenadas para reconocer el péptido señal frente a posiciones de
péptido no señal. Entrenadas para ser:
- \quad
- altas en todas las posiciones antes del sitio de escisión en las 30 posiciones tras el sitio de escisión y
- \quad
- bajas en los extremos N-terminales de las proteínas no secretoras.
- \quad
- Puntuación Y (puntuación del sitio de escisión combinada).
La predicción de la ubicación del sitio de
escisión se optimiza observando dónde la puntuación C es alta y la
puntuación S cambia desde un valor alto hasta uno bajo. La
puntuación Y formaliza esto mediante la combinación de la altura de
la puntuación C con la pendiente de la puntuación S.
Específicamente, la puntuación Y es un promedio geométrico entre la
puntuación C y un derivado homogéneo de la puntuación S (es decir,
la diferencia entre la puntuación S media a lo largo de d
posiciones antes y d posiciones tras la posición actual,
variando d con el conjunto de red elegido).
Las tres puntuaciones son el promedio de cinco
redes entrenadas en diferentes particiones de los datos.
Para cada secuencia, SignalP notificará
las puntuaciones C, S e Y máximas, y la puntuación S media entre el
sitio de escisión predicho y el extremo N-terminal.
Estos valores se utilizan para distinguir entre péptidos señal y
péptidos no señal. Si se predice que la secuencia tiene un péptido
señal, se predice que el sitio de escisión se encuentra
inmediatamente antes de la posición con la puntuación Y máxima.
Para un péptido señal típico, las puntuaciones C
e Y serán altas en la posición +1, mientras que la puntuación S
será alta antes del sitio de escisión y baja tras el mismo.
Para la comparación, se puede comparar la
predicción con la escisión predicha del péptido señal de neublastina
de tipo salvaje (escisión entre los aminoácidos número 39 y 40 de
pre-pro-NBN).
Las neublastinas preferidas son aquellas que
tienen una escisión predicha entre el péptido señal y la neublastina
o bien en el programa SignalP-NN o bien en el
SignalP-HMM. Éstas incluyen pero no se limitan a
NBN113, NBN106, NBN104, NBN102 y NBN99. Se prefieren
particularmente neublastinas que tienen un péptido señal predicho en
esta posición tanto en SignalP-NN como en
SignalP-HMM. Éstas incluyen NBN113 y NBN99.
La versión más nueva (3.0) también incluye una
nueva puntuación D o Dmax (puntuación de discriminación) que
describe la "propiedad de péptido señal" que se correlaciona
con el nivel de secreción utilizando dicho péptido señal con la
proteína en cuestión.
Se prefiere que un péptido señal utilizado en la
presente invención presente un valor Dmax de al menos 0,5, tal como
al menos 0,6, tal como al menos 0,7, tal como al menos 0,8, con el
polipéptido de neublastina seleccionado.
Bibliografía: Henrik Nielsen, Jacob
Engelbrecht, Søren Brunak y Gunnar von Heijne:
Identification of prokaryotic and eukaryotic signal peptides and
prediction of their cleavage sites. Protein Engineering, 10,
1-6 (1997). Para el modelo de salida
SignalP-HMM: Henrik Nielsen y Anders
Krogh: Prediction of signal peptides and signal anchors by a
hidden Markov model. En Proceedings of the Sixth International
Conference on Intelligent Systems for Molecular Biology (ISMB 6),
AAAI Press, Menlo Park, California, páginas
122-130 (1998). Improved prediction of
signal peptides - SignalP 3.0. Jannick Dyrløv Bendtsen,
Henrik Nielsen, Gunnar von Heijne y Søren
Brunak. JMB (2004). Prediction of signal
peptides and signal anchors by a hidden Markov model. Henrik
Nielsen y Anders Krogh. Proceedings of the Sixth
International Conference on Intelligent Systems for Molecular
Biology (ISMB 6), AAAI Press, Menlo Park, California, páginas
122-130, 1998.
\vskip1.000000\baselineskip
En un aspecto la invención se refiere al uso del
vector según la invención para la preparación de un medicamento
para el tratamiento de un trastorno del sistema nervioso. El
trastorno del sistema nervioso puede ser un trastorno del sistema
nervioso periférico o del sistema nervioso central. La neublastina
es útil para el tratamiento de un defecto en una neurona,
incluyendo sin limitación neuronas lesionadas y neuronas con
traumatismo. Los nervios periféricos que experimentan traumatismo
incluyen, pero no se limitan a, nervios del bulbo raquídeo o de la
médula espinal. La neublastina es útil en el tratamiento de
trastornos del SNC, tales como una enfermedad neurodegenerativa,
por ejemplo, daño neuronal isquémico cerebral; neuropatía, por
ejemplo, neuropatía periférica, enfermedad de Alzheimer, enfermedad
de Huntington, esclerosis lateral amiotrófica (ELA). La neublastina
se contempla adicionalmente para su uso en el tratamiento de
memoria deteriorada, por ejemplo, deterioro de memoria asociada con
demencia.
En un aspecto adicional, la invención se refiere
al uso del vector según la invención para la preparación de un
medicamento para el tratamiento de neublastina. La neublastina
también se conoce como un candidato terapéutico para el tratamiento
de neuropatías periféricas, tales como dolor neuropático en un
mamífero. El dolor neuropático puede estar asociado con daño
nervioso inducido por toxina, daño nervioso inducido por patógeno,
daño nervioso inducido por traumatismo, daño nervioso inducido por
fármaco, neuropatía idiopática, neuropatía diabética, daño nervioso
inducido por inflamación, o neurodegeneración. La neublastina
también puede utilizarse para el tratamiento de la neuropatía
periférica en un mamífero. La neuropatía periférica puede incluir el
grupo que consiste en neuropatías inducidas por traumatismo,
neuropatías inducidas por agentes virales, neuropatías inducidas
por quimioterapia, neuropatías inducidas por toxina, neuropatías
inducidas por fármaco, neuropatías inducidas por deficiencia de
vitaminas; neuropatías idiopáticas y neuropatías diabéticas. Los
métodos y las composiciones para el tratamiento del dolor
neuropático utilizando neublastina se dan a conocer en el documento
WO 02/078730 (Biogen).
Preferiblemente, la neublastina se utiliza para
el tratamiento de un trastorno seleccionado del grupo que consiste
en neuropatía periférica incluyendo dolor neuropático, lesión de
médula espinal, avulsión de la raíz espinal, tic doloroso,
causalgia, heridas corneales y retinopatías.
Según una realización preferida de la invención,
la enfermedad neurodegenerativa que va a tratarse es la enfermedad
de Parkinson. Se sabe que la neublastina aumenta la supervivencia de
las neuronas dopaminérgicas (documento WO 00/01815 NsGene; Baloh
et al 1998 Neuron 21: 1291-1302).
Los vectores, las cápsulas y las composiciones
de la presente invención también pueden utilizarse para el
tratamiento de enfermedades oculares, tales como retinitis
pigmentosa, degeneración macular, glaucoma y retinopatía diabética.
La neublastina también puede utilizarse en el tratamiento de heridas
y úlceras corneales (documento EP 1 223 966 Biopharm).
Las enfermedades del sistema nervioso pueden
tratarse mediante la administración a un individuo que lo necesita
de una cantidad terapéuticamente eficaz del vector de la invención;
o una cantidad terapéuticamente eficaz de la composición
farmacéutica de la invención.
También se proporcionan coordenadas
estereotáxicas para las partes del cerebro a las que va a
transducirse o en las que van a trasplantarse células desnudas o
encapsuladas (tabla II):
\vskip1.000000\baselineskip
En la tabla anterior: las dimensiones
medial-lateral son con respecto a la línea media del
cerebro; las dimensiones anterior-posterior son con
respecto al punto medio entre la comisura anterior y la comisura
posterior indicando el signo negativo la dirección posterior; las
dimensiones dorsal-ventral son con respecto a una
línea que conecta los puntos medios de las comisuras anterior y
posterior siendo el signo negativo ventral a dicha línea; todas las
dimensiones son en centímetros; y Gpe significa segmento externo del
globo pálido; Gpi significa segmento interno del globo pálido; Snr
significa parte reticular de la sustancia negra, STN significa
núcleo subtalámico; NBM significa núcleo basal de meynert; y
caudado significa el núcleo caudado.
En lugar de la transducción in vivo, las
enfermedades del sistema nervioso pueden tratarse mediante
trasplante a un individuo que necesita del mismo de:
- i.
- una cantidad terapéuticamente eficaz de células transducidas o transfectadas según la invención; o
- ii.
- un dispositivo implantable que comprende células transducidas o transfectadas.
Preferiblemente el trasplante comprende células
o dispositivos implantables.
Dicho trasplante puede comprender un trasplante
autólogo, un trasplante alogénico o un trasplante xenogénico.
Un parámetro importante es la selección de un
tejido diana adecuado. Se selecciona una región del cerebro por su
grado de respuesta retenida a factores neurotróficos. La selección
como diana de una zona puede lograrse mediante la liberación de una
unidad de dosificación de un vector de terapia génica tal como se
describe en el presente documento o mediante el implante de células
desnudas o encapsuladas según la invención.
En seres humanos, las neuronas del SNC que
retienen el grado de respuesta a factores neurotróficos hasta la
edad adulta incluyen las neuronas colinérgicas del prosencéfalo
basal, las neuronas de la corteza entorhinal, las neuronas del
tálamo, las neuronas del locus cerúleo, las neuronas sensitivas
espinales y las neuronas motoras espinales.
Puede realizarse un barrido inicial, tal como un
barrido por MRI, en el paciente para determinar la ubicación
precisa del sitio de tratamiento. Por ejemplo, en el tratamiento de
la enfermedad de Parkinson, los ganglios basales, incluyendo la
sustancia negra, son sitios de tratamiento. Las zonas afectadas del
cerebro serán probablemente de un tamaño tal que la selección de 5
o menos sitios de liberación será suficiente para el
restablecimiento de un número clínicamente significativo de
neuronas dopaminérgicas. El mismo número de sitios de liberación
puede ser válido fuera del cerebro.
Para terapia génica in vivo, la
liberación puede ser sistémica o local. Por liberación sistémica se
pretende la administración de un vector de terapia génica por vía
intramuscular, por vía subcutánea o por vía intraperitoneal, que
dará como resultado una liberación continua de la neublastina al
sistema circulatorio.
Para terapia génica in vivo, se
seleccionan los sitios específicos para la liberación de genes in
vivo de modo que se agrupen en una zona de pérdida neuronal o
terminal. Dichas zonas pueden identificarse clínicamente utilizando
varias técnicas conocidas, incluyendo formación de imagen por
resonancia magnética (MRI) y biopsia. En seres humanos, se
preferirán los métodos no invasivos, in vivo para formación
de imagen tales como MRI. Una vez que se identifican las zonas de
pérdida neuronal o terminal, los sitios de liberación se seleccionan
para distribución estereotáxica de manera que cada dosificación
unitaria de neublastina se libera al cerebro o a la médula espinal
en, o dentro de 500 \mum a partir de, una célula diana, y no más
de aproximadamente 10 mm a partir de otro sitio de liberación.
Dentro del cerebro, puede administrarse el vector de terapia génica
al parénquima o a los ventrículos.
Dentro del ojo, puede administrarse el vector de
terapia génica al humor vítreo, al espacio subretiniano y a la
cápsula sub-tenar.
Para el tratamiento de la neuropatía periférica
incluyendo dolor neuropático, puede administrarse el vector de
terapia génica a una zona del cuerpo implicada en la transmisión de
la sensación de dolor. Tal zona puede incluir administración a la
médula espinal e intratecal.
En una realización, el vector se administra por
vía intramuscular, por vía subcutánea o por vía intraperitoneal. En
otra realización, el vector o la composición se administra a una
zona del cuerpo implicada en la transmisión de la sensación de
dolor. En una tercera realización, el vector o la composición se
administra por vía intratecal o a la médula espinal. En una cuarta
realización, el vector se administra al cerebro, incluyendo el
parénquima, y los ventrículos. En una quinta realización, el vector
se administra en el ojo, incluyendo el humor vítreo, el espacio
subretiniano y la cápsula sub-tenar.
Un parámetro importante adicional es la
dosificación de la neublastina que va a liberarse en el tejido
diana. A este respecto, "dosificación unitaria" se refiere
generalmente a la concentración de neublastina/ml de composición de
neublastina. Para los vectores virales, la concentración de
neublastina se define mediante el número de partículas virales/ml
de composición neurotrófica. De manera óptima, para la liberación de
neublastina utilizando un vector de expresión viral, cada
dosificación unitaria de neublastina comprenderá de 2,5 a 25 \mul
de una composición de neublastina, incluyendo la composición un
vector de expresión viral en un fluido farmacéuticamente aceptable
y proporciona desde 10^{10} hasta 10^{15} partículas virales que
contienen neublastina por ml de composición de neublastina. Tales
títulos altos se utilizan particularmente para virus
adeno-asociados. Para lentivirus, el título
normalmente es menor, tal como desde 10^{8} hasta 10^{10}
unidades de transducción por ml (UT/ml), determinado tal como se
describe en el ejemplo 2.
La composición de neublastina se libera en cada
sitio celular de liberación en el tejido diana mediante
microinyección, infusión, carga por raspaduras, electroporación u
otros medios adecuados para liberar directamente la composición al
sitio de liberación del tejido a través de una incisión quirúrgica.
La liberación se realiza lentamente, tal como a lo largo de un
periodo de aproximadamente 5-10 minutos (dependiendo
del volumen total de la composición de neublastina que va a
liberarse).
Los expertos en la técnica apreciarán que el
método deliberación directa empleado por la invención obvia un
factor de riesgo limitativo asociado a la terapia génica in
vivo; es decir, el potencial para la transducción de células no
diana con el vector que porta el transgén que codifica para la
neublastina. En la invención, la liberación es directa y los sitios
de liberación se eligen de manera que la difusión de la neublastina
secretada tiene lugar en una región controlada y predeterminada del
cerebro para optimizar el contacto con las neuronas diana, a la
vez que se minimiza el contacto con las células no diana.
De manera amplia, la terapia génica busca
transferir nuevo material genético a las células de un paciente con
un beneficio terapéutico resultante para el paciente. Tales
beneficios incluyen tratamiento o profilaxis de una amplia gama de
enfermedades, trastornos y otros estados.
Los enfoques de terapia génica ex vivo
implican la modificación de células aisladas, que entonces se
infunden, injertan o trasplantan de otro modo en el paciente.
Véanse, por ejemplo, las patentes estadounidenses números
4.868.116, 5.399.346 y 5.460.959. La terapia génica in vivo
busca seleccionar como diana directamente el tejido del paciente
huésped in vivo.
Los virus útiles como vectores de transferencia
de genes incluyen papovavirus, adenovirus, virus vaccinia, virus
adeno-asociados, herpesvirus y retrovirus. Los
retrovirus adecuados incluyen el grupo que consiste en VIH, VIS,
VIF, VAIE, VLMMo.
Los virus preferidos para el tratamiento de
trastornos del sistema nervioso son lentivirus y virus
adeno-asociados. Ambos tipos de virus pueden
integrarse en el genoma sin divisiones celulares, y ambos tipos se
han sometido a prueba en estudios con animales
pre-clínicos para indicaciones del sistema nervioso,
en particular del sistema nervioso central.
Los métodos para la preparación de VAA se
describen en la técnica, por ejemplo el documento US 5.677.158. Los
documentos US 6.309.634 y US 6.683.058 describen ejemplos de
liberación de VAA al sistema nervioso central.
Los tipos especiales y preferidos de retrovirus
incluyen los lentivirus que pueden transducir una célula e
integrarse en su genoma sin división celular. Por tanto,
preferiblemente el vector es una partícula de lentivirus de
replicación defectuosa. Puede producirse una partícula de lentivirus
de este tipo a partir de un vector lentiviral que comprende una LTR
lentiviral en 5', un sitio de unión a ARNt, una señal de
empaquetamiento, un promotor operativamente unido a una señal
polinucleotídica que codifica para dicha proteína de fusión, un
origen de síntesis de la segunda hebra de ADN y una LTR lentiviral
en 3'. Los métodos para preparación y administración in vivo
de lentivirus a células neuronales se describen en el documento US
20020037281 (métodos para la transducción de células neuronales
utilizando vectores lentivirales).
Los vectores retrovirales son los vectores más
comúnmente utilizados en ensayos clínicos en seres humanos, puesto
que portan 7-8 kb lo que es más que muchos otros
vectores virales y puesto que tienen la capacidad de infectar
células y tienen su material genético integrado de manera estable en
la célula huésped con alta eficacia. Véase, por ejemplo, el
documento WO 95/30761; documento WO 95/24929. La familia
Oncovirinae requiere al menos una ronda de proliferación de
células diana para la transferencia e integración de las secuencias
de ácido nucleico exógeno en el paciente. Los vectores retrovirales
se integran al azar en el genoma del paciente.
Se han descrito dos clases de partículas
retrovirales; ecotrópicas, que pueden infectar células de ratón de
manera eficaz, y amfotrópicas, que pueden infectar células de muchas
especies. Una tercera clase incluye retrovirus xenotróficos que
pueden infectar células de especies distintas de las especies que
produjeron el virus. Su capacidad para integrarse solamente en el
genoma de células en división ha hecho a los retrovirus atractivos
para la elaboración de linajes celulares en estudios de desarrollo y
para la liberación de los genes terapéuticos o suicidas a cánceres
o tumores. Estos vectores pueden ser particularmente útiles en el
sistema nervioso central, en el que existe una carencia relativa de
división celular en pacientes adultos.
Para su uso en pacientes humanos, los vectores
retrovirales deben ser de replicación defectuosa. Esto previene la
generación adicional de partículas retrovirales infecciosas en el
tejido diana en lugar del vector de replicación defectuosa que se
vuelve un transgén "cautivo" estable incorporado en el genoma
de la célula diana. Normalmente, en los vectores de replicación
defectuosa, los genes gag, env y pol se han delecionado (junto con
la mayoría del resto del genoma viral). El ADN heterólogo se
inserta en el lugar de los genes virales delecionados. Los genes
heterólogos pueden estar bajo el control del promotor heterólogo
endógeno, otro promotor heterólogo activo en las célula diana, o la
LTR retroviral en 5' (la LTR viral es activa en diversos tejidos).
Normalmente, los vectores retrovirales tienen una capacidad de
transgén de aproximadamente 7-8 kb.
Los vectores retrovirales de replicación
defectuosa requieren la provisión de las proteínas virales
necesarias para la replicación y el ensamblaje en trans, a partir
de, por ejemplo, líneas celulares de empaquetamiento modificadas
mediante ingeniería genética. Es importante que las células de
empaquetamiento no liberen el virus competente en replicación y/o
el virus auxiliar. Esto se ha logrado mediante la expresión de
proteínas virales a partir de ARNs que carecen de la señal \psi,
y la expresión de los genes gag/pol y el gen env a partir de
unidades transcripcionales separadas. Además, en algunas líneas
celulares de empaquetamiento, las LTR en 5' se han reemplazado con
promotores no virales que controlan la expresión de estos genes y se
han añadido señales de poliadenilación. Estos diseños minimizan la
posibilidad de recombinación que lleva a la producción de vectores
competentes en replicación, o virus auxiliares. Véase, por ejemplo,
la patente estadounidense número 4.861.719.
La invención se refiere adicionalmente a un
constructo de ácido nucleico que comprende una secuencia de ácido
nucleico que codifica para el polipéptido de neublastina y una
secuencia señal. El péptido señal y el polipéptido de neublastina
son tal como se describieron anteriormente. Por consiguiente, en
algunas realizaciones, el constructo de ácido nucleico codifica
para una secuencia que consiste en los 113 codones C terminales del
polipéptido de pre-pro-neublastina.
En ciertas realizaciones, el ácido nucleico codifica para una
secuencia que consiste en los 104 codones C terminales del
polipéptido de
pre-pro-neublastina.
La secuencia de ácido nucleico puede comprender
un péptido señal heterólogo, tal como una secuencia señal de
albúmina, por ejemplo, una secuencia señal de albúmina de rata, y
comprende la secuencia de ácido nucleico de SEQ ID NO: 65. En
algunas realizaciones, el constructo de ácido nucleico codifica para
una secuencia señal modificada de albúmina, por ejemplo, una
secuencia señal de albúmina de rata. Una realización a modo de
ejemplo es un constructo de ácido nucleico que comprende la SEQ ID
NO: 69. En otras realizaciones, el constructo de ácido nucleico
codifica para una secuencia señal de la hormona de crecimiento
humana. Una realización a modo de ejemplo es un constructo de ácido
nucleico que comprende la SEQ ID NO: 67. La secuencia señal de
hormona de crecimiento humana puede comprender un intrón.
En una realización específica de la invención,
el constructo de ácido nucleico contiene una secuencia de ácido
nucleico optimizada para la expresión en una célula huésped
transfectada. La optimización del uso de codón puede ser ventajosa
proporcionando un rendimiento aumentado de polipéptido, o una
eficacia mejorada de transcripción o traducción. Una realización a
modo de ejemplo de un constructo de ácido nucleico optimizado de la
invención se expone en la SEQ ID NO: 59.
Debido a la degeneración conocida del código
genético, en el que más de un codón puede codificar el mismo
aminoácido, una secuencia de ADN puede variar a partir de lo que se
muestra en las SEQ ID NOS: 65, 67 ó 69 y aún así codificar para un
polipéptido que tiene la secuencia de aminoácidos correspondiente de
SEQ ID NOS: 66, 68 ó 70 respectivamente. Tales secuencias variantes
de ADN pueden resultar de mutaciones silenciosas (por ejemplo que
se producen durante la amplificación por PCR), o pueden ser el
producto de mutagénesis voluntaria de una secuencia nativa, por
ejemplo, optimización de codón.
El constructo de ácido nucleico puede ser un
vector. Los ejemplos de vectores plasmídicos adecuados incluyen
pero no se limitan a pFRT/lac Zeo, pFRT/dhfr-1,
(Invitrogen, Carlsbad, CA) pUC, pGEM y pGEX (Pharmacia, Peapack,
NJ). Otros vectores adecuados incluyen vectores virales (por ejemplo
retrovirus de replicación defectuosa, adenovirus y virus
adeno-asociados), los cuales sirven para funciones
equivalentes.
Los vectores de expresión pueden incluir una o
más secuencias reguladoras operativamente unidas a la secuencia de
ácido nucleico que va a expresarse. Los ejemplos de secuencias
reguladoras incluyen promotores, potenciadores y señales de
poliadenilación. Tales secuencias reguladoras se describen, por
ejemplo, en Goeddel, 1990 Methods Enzymol., 185:3. Las secuencias
reguladoras incluyen aquéllas que dirigen la expresión constitutiva
de una secuencia de nucleótidos en muchos tipos de células huésped
y aquéllas que dirigen la expresión de la secuencia de nucleótidos
solamente en ciertas células huésped (por ejemplo secuencias
reguladoras específicas de tejido). Se apreciará por los expertos
en la técnica que el diseño del vector de expresión dependerá de
factores tales como la elección de la célula huésped que va a
transformarse, el nivel de expresión de proteína deseada, y
similares. Los vectores de expresión de la invención pueden
introducirse en células huésped para producir así proteínas o
péptidos.
La construcción de vectores para expresión
recombinante de neublastina para su uso en la invención puede
lograrse utilizando técnicas convencionales que no requieren una
explicación detallada para un experto en la técnica. Sin embargo,
para revisión, los expertos en la técnica pueden desear consultar
Maniatis et al., en Molecular Cloning: A Laboratory Manual,
Cold Spring Harbor Laboratory (NY 1982).
En resumen, la construcción de vectores de
expresión recombinantes emplea técnicas de ligación convencionales.
Para el análisis para confirmar las secuencias correctas en los
vectores construidos, las mezclas de ligación pueden utilizarse
para transfectar/transducir una célula huésped y pueden
seleccionarse células genéticamente alteradas de manera
satisfactoria mediante la resistencia a antibióticos cuando sea
apropiado.
Los vectores de las células
transfectadas/transducidas se preparan, analizan mediante
restricción y/o se secuencian mediante, por ejemplo, el método de
Messing, et al. (Nucleic Acids Res., 9: 309-, 1981), el
método de Maxam, et al. (Methods in Enzymology, 65: 499,
1980), el método didesoxi de Sanger, u otros métodos adecuados que
se conocerán por los expertos en la técnica.
La separación por tamaño de los fragmentos
escindidos se realiza utilizando electroforesis en gel convencional
tal como se describe, por ejemplo, por Maniatis, et al.
(Molecular Cloning, páginas 133-134, 1982).
Los elementos de expresión empleados en la
invención pueden variar en su fuerza y especificidades. Dependiendo
del sistema huésped/vector utilizado, puede utilizarse cualquiera de
varios elementos de transcripción y traducción adecuados,
incluyendo promotores constitutivos e inducibles, en el vector de
expresión. Cuando la clonación se va a llevar a cabo en sistemas de
células de mamífero, pueden utilizarse promotores derivados del
genoma de células de mamífero (por ejemplo promotor de
metalotioneína) o a partir de virus de mamífero (por ejemplo el
promotor de CMV, el promotor tardío de adenovirus, el promotor del
virus vaccinia de 7,5 K); cuando se generan líneas celulares que
contienen múltiples copias del producto de expresión, pueden
utilizarse vectores a base de SV40-, BPV- y EBV-70
con un marcador seleccionable apropiado.
La expresión de un gen se controla a los niveles
de transcripción, traducción o pos-traducción. El
inicio de la transcripción es un acontecimiento temprano y crítico
en la expresión génica. Esto depende de las secuencias promotora y
potenciadora y se ve influido por factores celulares específicos que
interaccionan con estas secuencias. La unidad transcripcional de
muchos genes procariotas consiste en el promotor y en algunos casos
en elementos potenciadores o reguladores (Banerji et al.,
Cell 27: 299 (1981); Corden et al., Science 209: 1406
(1980); y Breathnach y Chambon, Ann. Rev. Biochem. 50: 349 (1981)).
Para los retrovirus, los elementos control implicados en la
replicación del genoma retroviral residen en la repetición terminal
larga (LTR) (Weiss et al., eds., The molecular biology of
tumor viruses: RNA tumor viruses, Cold Spring Harbor Laboratory, (NY
1982)). Las LTR del virus de la leucemia de Moloney de murino (VLM)
y el virus de sarcoma de Rous (VSR) contienen secuencias promotoras
y potenciadoras (Jolly et al., Nucleic Acids Res. 11: 1855
(1983); Capecchi et al., En: Enhancer and eukaryotic gene
expression, Gulzman y Shenk, eds., páginas 101-102,
Cold Spring Harbor Laboratories (NY 1991). Otros promotores
potentes incluyen aquéllos derivados de citomegalovirus (CMV) y
otros promotores virales de tipo salvaje.
También se han descrito regiones promotoras y
potenciadoras de varios promotores no virales (Schmidt et
al., Nature 314: 285 (1985); Rossi y deCrombrugghe, Proc. Natl.
Acad. Sci. USA 84: 5590-5594 (1987)). Los métodos
para el mantenimiento y el aumento de la expresión transgénica en
células quiescentes incluyen el uso de promotores incluyendo los
promotores de colágeno tipo I (1 y 2) (Prockop y Kivirikko, N. Eng.
J. Med. 311:376 (1984); Smith y Niles, Biochem. 19: 1820 (1980); de
Wet et al., J. Biol. Chem., 258: 14385 (1983)), los
promotores de SV40 y de LTR.
En células huésped de mamífero, pueden
utilizarse varios sistemas de expresión basados en virus. En los
casos en los que se utiliza un adenovirus como vector de expresión,
puede ligarse una secuencia codificante a un complejo de control de
la transcripción/traducción de adenovirus, por ejemplo, el promotor
tardío y la secuencia líder triparental. Este gen quimérico puede
insertarse entonces en el genoma de adenovirus mediante
recombinación in vitro o in vivo. La inserción en una
región no esencial del genoma viral (por ejemplo región E1 o E3)
dará como resultado un virus recombinante que es viable y que puede
expresar un péptido en huéspedes infectados (véase por ejemplo
Logan & Shenk, 1984, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 81: 3655).
Alternativamente, puede utilizarse el promotor de vaccinia 7.5 K
(véase, por ejemplo, Mackett et al., 1982, Proc. Natl. Acad.
Sci. USA, 79: 7415; Mackett et al., 1984, J. Virol., 49: 857;
Panicali et al., 1982, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 79:
4927).
Según una realización de la invención, el
promotor es un promotor constitutivo seleccionado del grupo que
consiste en: promotor de ubiquitina, promotor de CMV, promotor de
JeT, promotor de SV40, y promotor del factor de elongación 1 alfa
(EF1-alfa).
Los ejemplos de promotores
inducibles/represibles incluyen: Tet-On,
Tet-Off, promotor inducible por rapamicina,
Mx1.
Además de utilizar promotores virales y no
virales para dirigir la expresión transgénica, puede utilizarse una
secuencia potenciadora para aumentar el nivel de expresión
transgénica. Los potenciadores pueden aumentar la actividad
transcripcional no solamente de su gen nativo sino también de
algunos genes foráneos (Armelor, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 70:
2702 (1973)). Por ejemplo, en la presente invención las secuencias
potenciadas de colágeno se utilizan con el promotor de colágeno 2
(I) para aumentar la expresión transgénica. Además, el elemento
potenciador encontrado en los virus SV40 puede utilizarse para
aumentar la expresión transgénica. Esta secuencia potenciadora
consiste en una repetición de 72 pares de bases tal como se describe
por Gruss et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 78: 943 (1981);
Benoist y Chambon, Nature 290: 304 (1981), y Fromm y Berg, J. Mol.
Appl. Genetics, 1: 457 (1982). Esta secuencia de repetición puede
aumentar la transcripción de muchos genes virales y celulares
diferentes cuando está presente en serie con diversos promotores
(Moreau et al., Nucleic Acids Res. 9: 6047 (1981).
La expresión del transgén puede aumentarse
también para una expresión estable a largo plazo utilizando
citocinas para modular la actividad del promotor. Se ha informado
de que varias citocinas modulan la expresión del transgén a partir
de los promotores de colágeno 2 (I) y de LTR (Chua et al.,
Connective Tissue Res., 25: 161-170 (1990); Elias
et al., Annals N. Y. Acad. Sci., 580: 233-244
(1990)); Seliger et al., J. Immunol. 141:
2138-2144 (1988) y Seliger et al., J.
Virology 62: 619-621 (1988)). Por ejemplo, el factor
de crecimiento transformante (TGF), interleucina
(IL)-I, e interferón (INF) regulan por disminución
la expresión de transgenes dirigidos por diversos promotores tales
como LTR. El factor de necrosis tumoral (TNF) y TGF 1 regulan por
incremento, y pueden utilizarse para controlar, la expresión de
transgenes dirigidos por un promotor. Otras citocinas que pueden
demostrar ser útiles incluyen factor de crecimiento de fibroblastos
básico (bFGF) y factor de crecimiento epidérmico (EGF).
El promotor de colágeno con la secuencia
potenciadora del colágeno (Coll (E)) también puede utilizarse para
aumentar la expresión transgénica mediante la supresión adicional de
cualquier respuesta inmunitaria al vector que puede generarse en un
cerebro tratado a pesar de su estado inmunoprotegido. Además, los
agentes anti-inflamatorios incluyendo esteroides,
por ejemplo dexametasona, se pueden administrar al huésped tratado
inmediatamente después de la liberación de la composición de vector
y se continúa, preferiblemente, hasta que disminuye cualquier
respuesta inflamatoria mediada por citocinas. Un agente de
inmunosupresión tal como ciclosporina también puede administrarse
para reducir la producción de interferones, que regula por
disminución al promotor LTR y al
promotor-potenciador de Coll (E), y reduce la
expresión del transgén.
El vector puede comprender secuencias
adicionales tales como una secuencia que codifica para la proteína
recombinasa-Cre, y las secuencias LoxP. Una manera
adicional para garantizar la expresión temporal de la neublastina es
a través del uso del sistema Cre-LoxP que da como
resultado la escisión de parte de la secuencia de ADN insertado
después de la administración de la recombinasa-Cre
a las células (Daewoong et al, Nature Biotechnology 19:
929-933) o mediante la incorporación de un gen
codificante para la recombinasa dentro del constructo viral (Pluck,
Int J Exp Path, 77: 269-278). La incorporación de un
gen para la recombinasa en el constructo viral junto con los sitios
LoxP y un gen estructural (una neublastina en el presente caso)
frecuentemente da como resultado la expresión del gen estructural
durante un periodo de aproximadamente cinco días.
Los vectores utilizados en los métodos de la
invención también pueden incluir una secuencia de ácido nucleico
que codifica para el marcador seleccionable que puede utilizarse
para identificar células huésped transformadas de manera
satisfactoria. Los marcadores seleccionables adecuados para su uso
en células de mamífero cultivadas incluyen genes que confieren
resistencia a fármacos, tales como neomicina, higromicina y
metotrexato. El marcador seleccionable puede ser marcador
seleccionable amplificable. Un marcador seleccionable amplificable
es el gen de DHFR. Otro marcador amplificable adecuado es el ADNc
de DHFRr (Simonsen y Levinson, 1983, Proc. Natl. Acad. Sci. (USA)
80: 2495). Marcadores seleccionables adicionales se revisan por
Thilly (Mammalian Cell Technology, Butterworth Publishers,
Stoneham, MA). Los marcadores seleccionables adecuados pueden
elegirse por cualquier experto en la técnica. Los marcadores
seleccionables pueden introducirse en la célula huésped en el mismo
vector que la pre-secuencia de neublastina, o como
parte de un vector separado. El marcador seleccionable y la
secuencia de neublastina pueden estar bajo el control de diferentes
promotores o el mismo promotor, produciendo la última disposición
un mensaje dicistrónico. Los constructos de este tipo se conocen en
la técnica (véase por ejemplo la patente estadounidense número
4.713.339).
Los vectores de expresión utilizados en los
métodos de la invención también pueden codificar para etiquetas que
facilitan la purificación del polipéptido de neublastina producido
de manera recombinante. Los ejemplos incluyen, pero no se limitan
a, vector pUR278 (Ruther et al., 1983, EMBO J., 2: 1791) en
el que las secuencias codificantes del polipéptido de neublastina
descritas en el presente documento pueden ligarse en el vector en
marco con la región codificante de lac z de manera que se produce
una proteína híbrida; los vectores pGEX también pueden utilizarse
para expresar el polipéptido de neublastina con una etiqueta de
glutatión S-transferasa (GST). Estas proteínas son
habitualmente solubles y pueden purificarse fácilmente a partir de
células mediante la adsorción a perlas de
glutatión-agarosa seguido por elución en presencia
de glutatión libre. Los vectores incluyen sitios de escisión
(trombina o factor Xa proteasa o PreScission Protease^{TM}
(Pharmacia, Peapack, N.J.)) para la fácil eliminación de la
etiqueta después de la purificación. Se conocen en la técnica otras
etiquetas de fusión, por ejemplo, etiquetas de histidina, etiquetas
de proteína de unión a maltosa.
Para formar una composición de neublastina para
su uso en la invención; los vectores virales de expresión que
codifican para neublastina pueden colocarse en una suspensión,
disolución o emulsión farmacéuticamente aceptable. Los medios
adecuados incluyen solución salina y preparaciones de liposomas.
Más específicamente, los vehículos
farmacéuticamente aceptables pueden incluir emulsiones, suspensiones
y disoluciones no acuosas o acuosas estériles. Los ejemplos de
disolventes no acuosos son propilenglicol, polietilenglicol,
aceites vegetales tales como aceite de oliva, y ésteres orgánicos
inyectables tales como oleato de etilo. Los vehículos acuosos
incluyen agua, suspensiones, emulsiones o disoluciones
alcohólicas/acuosas, incluyendo solución salina y medios
tamponados. Los vehículos parenterales incluyen disolución de
cloruro de sodio, dextrosa de Ringer, dextrosa y cloruro de sodio,
Ringer con lactato o aceites fijos.
Los vehículos intravenosos incluyen
regeneradores de fluidos y nutrientes, regeneradores de electrolitos
(tales como aquellos a base de dextrosa de Ringer), y
similares.
También pueden estar presentes conservantes y
otros aditivos tales como, por ejemplo, agentes antimicrobianos,
antioxidantes, quelantes, y gases inertes y similares. Además, una
composición de transgenes de neublastina puede liofilizarse
utilizando medios bien conocidos en la técnica, para su posterior
reconstitución y uso según la invención.
También puede utilizarse un sistema de
dispersión coloidal para la liberación génica dirigida.
Los sistemas de dispersión coloidal incluyen
complejos de macromoléculas, nanocápsulas, microesferas, perlas, y
sistemas basados en lípidos incluyendo emulsiones de aceite en agua,
micelas, micelas mixtas y liposomas. Los liposomas son vesículas de
membrana artificial que son útiles como vehículos de liberación
in vitro e in vivo. Se ha mostrado que vesículas
unilamelares grandes (LUV), que tienen intervalo de tamaño de desde
0,2-4,0 \mum pueden encapsular un porcentaje
sustancial de un tampón acuoso que contiene macromoléculas grandes.
El ARN, el ADN y los viriones intactos pueden encapsularse dentro
del interior acuoso y pueden liberarse a las células en una forma
biológicamente activa (Fraley, et al., Trends Biochem. Sci.,
6: 77,1981). Además de las células de mamífero, los liposomas se
han utilizado para la liberación de transgenes operativamente
codificantes en células vegetales, de levadura y bacterianas. Con el
fin de que un liposoma sea un vehículo de transferencia génica
eficaz, deben estar presentes las siguientes características: (1)
encapsulación de los genes que codifican para la neublastina a una
alta eficacia a la vez que no se compromete su actividad biológica;
(2) unión preferencial y sustancial a una célula diana en
comparación con células no diana; (3) liberación del contenido
acuoso de la vesícula al citoplasma de la célula diana con una alta
eficacia; y (4) expresión precisa y eficaz de la información
genética (Mannino, et al., Biotechniques, 6: 682, 1988).
La composición del liposoma es habitualmente una
combinación de fosfolípidos, particularmente fosfolípidos con una
alta temperatura de transición de fase, habitualmente en combinación
con esteroides, especialmente colesterol. También pueden utilizarse
otros fosfolípidos u otros lípidos. Las características físicas de
los liposomas dependen del pH, la fuerza iónica y la presencia de
cationes divalentes.
Los ejemplos de lípidos útiles en la producción
de liposomas incluyen compuestos de fosfatidilo, tales como
fosfatidilglicerol, fosfatidilcolina, fosfatidilserina,
fosfatidiletanolamina, esfingolípidos, cerebrósidos y gangliósidos.
Particularmente útiles son los diacilfosfatidilgliceroles, en los
que el resto lipídico contiene desde 14-18 átomos
de carbono, particularmente desde 16-18 átomos de
carbono, y está saturado. Los fosfolípidos ilustrativos incluyen
fosfatidilcolina de huevo, dipalmitoilfosfatidilcolina y
diestearoilfosfatidilcolina.
El direccionamiento de los liposomas puede
clasificarse basándose en factores anatómicos y mecanísticos. La
clasificación anatómica se basa en el nivel de selectividad, por
ejemplo, específica de órgano, específica de célula y específica de
orgánulo. El direccionamiento mecanístico puede distinguirse
basándose en si es pasivo o activo. El direccionamiento pasivo
utiliza la tendencia natural de los liposomas para distribuirse en
células del sistema retículo-endotelial (RES) en
órganos que contienen capilares sinusoidales.
Por otra parte, el direccionamiento activo,
implica la alteración del liposoma mediante acoplamiento del
liposoma a un ligando específico tal como un anticuerpo monoclonal,
azúcar, glicolípido o proteína, o mediante el cambio de la
composición o el tamaño del liposoma con el fin de lograr el
direccionamiento a órganos y tipos celulares distintos de los
sitios de localización que se producen de manera natural.
La superficie del sistema de liberación génica
dirigida puede modificarse en una variedad de formas. En el caso de
un sistema de liberación dirigida de liposomas, los grupos lipídicos
pueden incorporarse en la bicapa lipídica del liposoma con el fin
de mantener el ligando de direccionamiento en asociación estable con
la bicapa liposomal. Pueden utilizarse diversos grupos de enlace
para unir las cadenas lipídicas al ligando de direccionamiento.
Un ejemplo adicional de un sistema de liberación
incluye el trasplante en la zona terapéutica de una composición de
células de empaquetamiento que pueden producir partículas de vector
tal como se describe en la presente invención. En la técnica se
conocen métodos para la encapsulación y el trasplante de tales
células, en particular a partir del documento WO 97/44065
(citoterapia). Mediante la selección de una línea celular de
empaquetamiento que puede producir partículas lentivirales, se
obtiene la transducción de células que no se encuentran en división
en la zona terapéutica. Mediante el uso de partículas retrovirales
que pueden transducir solamente las células en división, la
transducción se restringe a las células diferenciadas de novo
en la zona terapéutica.
Siguiendo el protocolo definido por la
invención, puede lograrse la liberación directa de una composición
de neublastina por medios familiares para los expertos en la
técnica, incluyendo microinyección a través de una incisión
quirúrgica (véase, por ejemplo, Capecchi, Cell, 22:
479-488 (1980)); electroporación (véase, por
ejemplo, Andreason y Evans, Biotechniques, 6:
650-660 (1988)); infusión, complejación química con
una molécula de direccionamiento o co-precipitante
(por ejemplo, liposoma, calcio), y bombardeo de micropartículas al
tejido diana (Tang, et al., Nature, 356:
152-154 (1992)).
La terapia con células encapsuladas se basa en
el concepto de aislamiento de células del sistema inmunitario del
huésped receptor rodeando la células con un material biocompatible
semipermeable antes del implante en el huésped. La invención
incluye un dispositivo en el que las células se encapsulan en una
cápsula inmunoaislante. Una "cápsula inmunoaislante" significa
que la cápsula, tras el implante en un huésped receptor, minimiza
los efectos nocivos del sistema inmunitario del huésped sobre las
células en el núcleo del dispositivo. Las células se inmunoaíslan
del huésped encerrándolas en cápsulas poliméricas implantables
formadas por una membrana microporosa. Este enfoque evita el
contacto célula-célula entre los tejidos del huésped
y los implantados, eliminando el reconocimiento antigénico a través
de presentación directa. Las membranas usadas también pueden
adaptarse para controlar la difusión de moléculas, tales como
anticuerpo y complemento, basándose en su peso molecular (Lysaght
et al., 56 J. Cell Biochem. 196 (1996), Colton, 14 Trends
Biotechnol. 158 (1996)). Usando técnicas de encapsulación, pueden
trasplantarse células en un huésped sin rechazo inmunitario, o bien
con o bien sin uso de fármacos inmunosupresores. Las cápsulas
poliméricas biocompatibles útiles contienen habitualmente un núcleo
que contiene células, o bien suspendidas en un medio líquido o bien
inmovilizadas dentro de una matriz de inmovilización, y una región
circundante o periférica de membrana o matriz de permeabilidad
selectiva ("envoltura") que no contiene células aisladas, que
es biocompatible y que es suficiente para proteger las células en el
núcleo frente a un ataque inmunológico perjudicial. La
encapsulación impide que los elementos del sistema inmunitario
entren en la cápsula, protegiendo de ese modo las células
encapsuladas frente a la destrucción inmunitaria. La naturaleza
semipermeable de la membrana de la cápsula permite también que la
molécula biológicamente activa de interés difunda fácilmente desde
la cápsula hacia el interior del tejido del huésped circundante.
La cápsula puede fabricarse de un material
biocompatible. Un "material biocompatible" es un material que,
tras el implante en un huésped, no produce una respuesta perjudicial
en el huésped suficiente como para dar como resultado el rechazo de
la cápsula o convertirla en inoperable, por ejemplo por degradación.
El material biocompatible es relativamente impermeable para
moléculas grandes, tales como componentes del sistema inmunitario
del huésped, pero es permeable para moléculas pequeñas, tales como
insulina, factores de crecimiento y nutrientes, mientras que
permite eliminar el residuo metabólico. Una variedad de materiales
biocompatibles son adecuados la liberación de factores de
crecimiento mediante la composición de la invención. Se conocen
numerosos materiales biocompatibles, que tienen diversas
morfologías de superficie externa y otras características mecánicas
y estructurales. Preferiblemente la cápsula de esta invención será
similar a las descritas por las solicitudes de patente
internacional PCT WO 92/19195 o WO 95/05452; o patentes
estadounidenses números 5.639.275; 5.653.975; 4.892.538; 5.156.844;
5.283.187; o patente estadounidense número 5.550.050. Tales cápsulas
permiten el paso de metabolitos, nutrientes y sustancias
terapéuticas a la vez que minimizan los efectos perjudiciales del
sistema inmunitario del huésped. Los componentes del material
biocompatible pueden incluir una membrana semipermeable circundante
y el armazón de soporte de células interno. Preferiblemente, las
células genéticamente alteradas se siembran sobre el armazón, que
se encapsula mediante la membrana de permeabilidad selectiva. El
armazón de soporte de células filamentosas puede estar fabricado de
cualquier material biocompatible seleccionado del grupo que
consiste en material acrílico, poliéster, polietileno, polipropileno
poliacetonitrilo, tereftalato de polietileno, nailon, poliamidas,
poliuretanos, polibutéster, seda, algodón, quitina, carbono o
metales biocompatibles. Además, pueden utilizarse estructuras de
fibra unida para el implante de células (patente estadounidense
número 5.512.600). Los polímeros biodegradables incluyen los
compuestos comprendidos por poli(ácido láctico) PLA, poli(ácido
láctico-co-glicólico) PLGA, y
poli(ácido glicólico) PGA y sus equivalentes. Se han utilizado
armazones de espuma para proporcionar superficies sobre las que
pueden adherirse las células trasplantadas (solicitud de patente
internacional PCT número de serie 98/05304). Se han usado tubos de
malla tejida como injertos vasculares (solicitud de patente
internacional PCT WO 99/52573). Adicionalmente, el núcleo puede
estar compuesto por una matriz inmovilizante formada por un
hidrogel, que estabiliza la posición de las células. Un hidrogel es
una red tridimensional de polímeros hidrófilos reticulados en forma
de un gel compuesto sustancialmente por agua.
Pueden usarse diversos polímeros y combinaciones
de polímeros para fabricar la membrana semipermeable circundante,
incluyendo poliacrilatos (que incluyen copolímeros acrílicos),
polivinilidenos, copolímeros de poli(cloruro de vinilo),
poliuretanos, poliestirenos, poliamidas, acetatos de celulosa,
nitratos de celulosa, polisulfonas (que incluyen polietersulfonas),
polifosfazenos, poliacrilonitrilos,
poli(acrilonitrilo/cloruro de covinilo), así como derivados,
copolímeros y mezclas de los mismos. Preferiblemente, la membrana
semipermeable circundante es una membrana de fibra hueca
semipermeable biocompatible. Tales membranas, y los métodos para
prepararlas se dan a conocer en las patentes estadounidenses
números 5.284.761 y 5.158.881. La membrana semipermeable
circundante se forma a partir de una fibra hueca de polietersulfona,
tal como las descritas en la patente estadounidense número
4.976.859 o la patente estadounidense número 4.968.733. Un material
de membrana semipermeable circundante alternativo es
poli(acrilonitrilo/cloruro de covinilo).
La cápsula puede ser de cualquier configuración
apropiada para mantener la actividad biológica y proporcionar
acceso para liberar el producto o la función, incluyendo por
ejemplo, cilíndrica, rectangular, en forma de disco, en forma de
parche, ovoide, estrellada o esférica. Además, la cápsula puede
estar arrollada o enrollada en un estructura anidada o de tipo
malla. Si la cápsula ha de recuperarse tras implantarse, no se
prefieren las configuraciones que tienden a conducir a la migración
de las cápsulas desde el sitio de implante, tales como las cápsulas
esféricas lo suficientemente pequeñas como para desplazarse por los
vasos sanguíneos del huésped receptor. Ciertas formas, tales como
rectángulos, parches, discos, cilindros y láminas planas ofrecen
una mayor integridad estructural y son preferibles cuando se desea
su recuperación.
Cuando se usan macrocápsulas, se encapsulan
preferiblemente entre 10^{3} y 10^{8} células, lo más
preferiblemente se encapsulan de 10^{5} a 10^{7} células en
cada dispositivo. La dosificación puede controlarse implantando un
menor o mayor número de cápsulas, preferiblemente entre 1 y 10
cápsulas por paciente.
El armazón puede recubrirse con moléculas de
matriz extracelular (MEC). Ejemplos adecuados de moléculas de
matriz extracelular incluyen, por ejemplo, colágeno, laminina y
fibronectina. La superficie del armazón puede modificarse también
tratándola con irradiación por plasma para conferir carga para
potenciar la adhesión de las células.
Puede usarse cualquier método adecuado de
sellado de las cápsulas, incluyendo el uso de adhesivos poliméricos
o engarce, anudamiento y termosellado. Además, también puede
utilizarse cualquier método de sellado "en seco" adecuado, tal
como se describe, por ejemplo, en la patente estadounidense número
5.653.687.
Los dispositivos de células encapsuladas se
implantan según técnicas conocidas. Se contemplan muchos sitios de
implante para los dispositivos y métodos de esta invención. Estos
sitios de implante incluyen, pero no se limitan a, el sistema
nervioso central, incluyendo el cerebro, la médula espinal (véanse
las patentes estadounidenses números 5.106.627, 5.156.844 y
5.554.148), implante intratecal, y los humores acuoso y vítreo del
ojo (véase, solicitud de patente internacional PCT WO 97/34586), el
espacio subretiniano, y la cápsula subtenar. En el cerebro, los
dispositivos pueden implantarse en el parénquima y los ventrículos.
Para liberación sistémica, el implante puede ser intramuscular,
subcutáneo o intraperitoneal.
La línea celular ARPE-19 es una
línea celular con una plataforma superior para tecnología de
liberación basada en células encapsuladas y también es útil para
tecnología de liberación basada en células no encapsuladas. La
línea celular ARPE-19 es resistente (es decir, la
línea celular es viable en condiciones rigurosas, tales como
implante en el sistema nervioso central o el entorno
intra-ocular). Las células ARPE-19
pueden modificarse genéticamente para secretar una sustancia de
interés terapéutico. Las células ARPE-19 tienen una
vida relativamente larga. Las células ARPE-19 son
de origen humano. Además, las células ARPE-19
encapsuladas tienen una buena viabilidad de dispositivo in
vivo. Las células ARPE-19 pueden liberar una
cantidad eficaz de factor de crecimiento. Las células
ARPE-19 producen una reacción inmunitaria del
huésped insignificante. Además, las células ARPE-19
son no tumorigénicas.
Los métodos y aparatos para implante de cápsulas
en el SNC se describen en el documento US 5.487.739.
En un aspecto la invención se refiere a una
cápsula biocompatible que comprende: un núcleo que comprende células
de empaquetamiento vivas que secretan un vector viral para la
infección de una célula diana, siendo el vector viral un vector
según la invención; y una envoltura externa que rodea dicho núcleo,
comprendiendo dicha envoltura un material biocompatible permeable,
teniendo dicho material una porosidad seleccionada para permitir el
paso de vectores retrovirales de 100 nm de diámetro a través del
mismo, permitiendo la liberación de dicho vector viral a partir de
dicha cápsula.
Preferiblemente, el núcleo comprende
adicionalmente una matriz, estando inmovilizadas las células de
empaquetamiento por la matriz. Según una realización, la envoltura
comprende un hidrogel o material termoplástico.
Los ejemplos de células adecuadas para líneas
celulares de empaquetamiento incluyen células HEK293, NIH3T3, PG13,
y ARPE-19. Las células preferidas incluyen las
células PG13 y 3T3.
Los métodos y dispositivos para la encapsulación
de células de empaquetamiento se dan a conocer en el documento US
6.027.721.
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Los constructos de ácido nucleico de la
invención pueden utilizarse para producir el polipéptido de
neublastina. Las células eucariotas pueden transfectarse con un
constructo de ácido nucleico que codifica para un polipéptido de
neublastina recombinante operativamente unido a una secuencia señal
heteróloga. En la técnica se conocen métodos para elaborar
constructos de ácido nucleico y transfectar células con los
constructos. (Véase por ejemplo, Ausubel et al., eds., 1988,
Current Protocols in Molecular Biology, Greene Publishing Associates
& Wiley-Interscience: New York; Sambrook et
al. 1989, Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2 ed., Cold
Spring Harbor Laboratory Press: Cold Spring Harbor, NY). Por
ejemplo, las células pueden transfectarse utilizando
electroporación, precipitación con fosfato de calcio, o infección
con un vector viral. En algunas realizaciones, la célula huésped
transformada es una célula de mamífero, por ejemplo, una célula CHO,
una célula COS, una célula HeLa, o una célula NIH 3T3.
Las células huésped transformadas se cultivan en
un medio de crecimiento apropiado y en condiciones tales que el
polipéptido de neublastina secretado se expresa y secreta a partir
de la célula. Un medio de crecimiento apropiado es un medio que
contiene los nutrientes requeridos para el crecimiento de las
células. Los nutrientes requeridos para el crecimiento celular
pueden incluir una fuente de carbono, una fuente de nitrógeno,
aminoácidos esenciales, vitaminas, minerales y factores de
crecimiento. Opcionalmente, los medios pueden contener suero de
ternera bovino o suero de ternera fetal. El medio de crecimiento
puede diseñarse para seleccionar células que contienen el
constructo de ácido nucleico. Esto puede realizarse, por ejemplo,
mediante selección de fármacos o deficiencia en un nutriente
esencial que está complementado por el marcador seleccionable en el
constructo de ácido nucleico o co-transfectado con
el constructo de ácido nucleico. Las células de mamífero cultivadas
algunas veces se hacen crecer en medios que contienen suero o libres
de suero comercialmente disponibles (por ejemplo MEM, DMEM)
(Invitrogen, Carlsbad, CA). Los factores que han de considerarse en
la selección de un medio apropiado para la línea celular particular
utilizada se conocen en la técnica.
Por tanto, en un aspecto la invención se refiere
a células huésped aisladas transducidas o transfectadas con el
vector según la invención. Preferiblemente estas células son células
huésped de mamífero debido a que pueden secretar y procesar la
neublastina codificada correctamente.
Las especies preferidas incluyen el grupo que
consiste en roedor (ratón, rata), conejo, perro, gato, cerdo, mono,
ser humano.
Los ejemplos de cultivos primarios y líneas
celulares que son buenos candidatos para la transducción con los
vectores de la presente invención incluyen el grupo que consiste en
CHO, HEK293, COS, PC12, HiB5, RN33b, células neuronales, células
fetales, líneas celulares de RPE, ARPE-19,
fibroblastos inmortalizados humanos, C2C12, HeLa, HepG2, células
estriatal, neuronas, astrocitos, interneuronas.
Un tipo preferido de línea celular para la
encapsulación y para el tratamiento con células desnudas son las
células del epitelio pigmentario de la retina (células de RPE). La
fuente de células de RPE es mediante el aislamiento de células
primarias a partir de la retina de mamífero. Los protocolos para
recoger células de RPE están bien definidos (Li y Turner, 1988,
Exp. Eye Res. 47: 911-917; Lopez et al.,
1989, Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 30: 586-588) y
se consideran una metodología de rutina. En la mayoría de los
informes publicados del cotrasplante de células de RPE, las células
se derivan de la rata (Li y Turner, 1988; Lopez et al.,
1989). Preferiblemente, las células de RPE se derivan de seres
humanos. Además de células de RPE primarias aisladas, pueden
utilizarse líneas celulares de RPE humanas cultivadas en la práctica
de la invención.
Para la transducción in vivo, el grupo
preferido de células huésped incluye células estriatales, neuronas,
astrocitos e interneuronas. Para terapia génica ex vivo, el
grupo preferido de células incluye células neuronales, células
precursoras neuronales, células progenitoras neuronales, células
madre y células fetales. Las células madre y células precursoras
neuronales tienen la ventaja de que pueden integrarse en el tejido
y migrar. Para la encapsulación y para el implante de células
desnudas, las células preferidas incluyen células del epitelio
pigmentario de la retina, incluyendo células
ARPE-19; fibroblastos inmortalizados humanos; y
astrocitos inmortalizados humanos. Se prefieren particularmente
ARPE-19.
En otra realización la línea celular terapéutica
se selecciona del grupo que consiste en: líneas celulares de
fibroblastos humanos, líneas celulares de astrocitos humanos, líneas
celulares mesencefálicas humanas y líneas celulares endoteliales
humanas, preferiblemente inmortalizadas con TERT, SV40T o vmyc.
El método para generar líneas celulares
inmortalizadas de astrocitos humanos se ha descrito previamente
(Price TN, Burke JF, Mayne LV. A novel human astrocyte cell line
(A735) with astrocyte-specific neurotransmitter
function. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 1999 Mayo; 35 (5)
279-88.). Este protocolo puede utilizarse para
generar líneas celulares de astrocitos.
Las tres siguientes modificaciones de ese
protocolo se realizan preferiblemente para generar líneas celulares
de astrocitos humanos adicionales.
Puede utilizarse tejido cerebral fetal humano
que se disecciona a partir de fetos de 5-12 semanas
de edad, en lugar de tejido de 12-16 semanas de
edad. Puede utilizarse el gen de inmortalización
v-myc, o TERT (telomerasa) en lugar del antígeno T
del SV40.
Puede utilizarse transferencia génica retroviral
en lugar de transfección con plásmidos.
El polipéptido de neublastina puede expresarse
también en un animal transgénico, tal como un roedor, una vaca, un
cerdo, una oveja o una cabra. Un animal transgénico es un animal no
humano que ha incorporado un gen foráneo en su genoma de manera que
el gen foráneo pasa del padre a su descendencia. Pueden introducirse
genes exógenos en embriones de una sola célula (Brinster et
al,. 1985, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 82: 4438). En la técnica
se conocen métodos para la producción de animales transgénicos,
(Wagner et al., 1981, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 78: 6376;
McKnight et al., 1983, Cell 34: 335; Brinster et al.,
1983, Nature 306: 332; Ritchie et al., 1984, Nature 312:
517; Baldassarre et al., 2003, Theriogenology 59: 831; Robl
et al., 2003, Theriogenology 59: 107; Malassagne et
al., 2003, Xenotransplantation 10 (3):267).
\vskip1.000000\baselineskip
En un aspecto separado, la invención se refiere
a células de mamífero, tales como las células definidas
anteriormente, que pueden secretar un polipéptido de neublastina en
cantidades en exceso de 500 ng/10^{6} células/24 horas, más
preferiblemente en exceso de 600 ng/10^{6} células/24 horas, más
preferiblemente en exceso de 700 ng/10^{6} células/24 horas, más
preferiblemente en exceso de 800 ng/10^{6} células/24 horas, más
preferiblemente en exceso de 900 ng/10^{6} células/24 horas,
tales como en exceso de 1000 ng/10^{6} células/24 horas.
Preferiblemente la neublastina secretada es
biológicamente activa tal como se determina mediante el ensayo
ELISA de RetL3 descrito en el ejemplo 1. Esto obvia la necesidad de
glicosilación, escisión y replegamiento.
Las células huésped preferidas se seleccionan
del grupo que consiste en células CHO, HEK293, COS, PC12, HiB5,
RN33b, C2C12, HeLa, HepG2 y ARPE-19. Más
preferiblemente el grupo consiste en CHO, HEK293, COS y
ARPE-19.
ARPE-19.
La neublastina o un equivalente funcional de la
misma puede producirse mediante el cultivo de estas células y la
recuperación de la neublastina del medio de cultivo sin la necesidad
de replegar o glicosilar la proteína.
Puede aumentarse la expresión incluso
adicionalmente mediante la inclusión de elementos potenciadores
tales como WPRE (documento US 6.136.597).
La presente invención comprende adicionalmente
el cultivo de células productoras de neublastina in vitro
sobre una matriz de soporte antes del implante en el sistema
nervioso de mamífero. La adhesión previa de las células a los
microvehículos antes del implante está diseñada para mejorar la
viabilidad a largo plazo de las células trasplantadas y proporciona
un beneficio funcional a largo plazo.
Para aumentar la viabilidad a largo plazo de las
células trasplantadas, es decir, células secretoras de neublastina
trasplantadas, pueden unirse las células que van a trasplantarse
in vitro a una matriz de soporte antes del trasplante. Los
materiales de los que puede estar compuesta la matriz de soporte
incluyen aquellos materiales a los que las células se adhieren
después de la incubación in vitro, y sobre los que las
células pueden crecer, y que pueden implantarse en el cuerpo de un
mamífero sin producir una reacción tóxica, o una reacción
inflamatoria que destruiría las células implantadas o interferiría
de otro modo con su actividad biológica o terapéutica. Tales
materiales pueden ser sustancias químicas sintéticas o naturales, o
sustancias que tienen un origen biológico.
Los materiales de la matriz incluyen, pero no se
limitan a, vidrio y otros óxidos de silicio, poliestireno,
polipropileno, polietileno, poli(fluoruro de vinilideno),
poliuretano, polialginato, polisulfona, poli(alcohol
vinílico), polímeros de acrilonitrilo, poliacrilamida,
policarbonato, polipenteno, nailon, amilasas, gelatina natural y
modificada y colágeno natural y modificado, polisacáridos naturales
y modificados, incluyendo dextranos y celulosas (por ejemplo,
nitrocelulosa), agar y magnetita. Pueden utilizarse o bien
materiales resorbibles o bien no resorbibles. También se desean
materiales de la matriz extracelular, que se conocen bien en la
técnica. Los materiales de la matriz extracelular pueden obtenerse
comercialmente o prepararse haciendo crecer células que secretan
tal matriz, eliminando las células secretoras y permitiendo que las
células que van a trasplantarse interaccionen con y se adhieran a
la matriz. El material de la matriz sobre el que crecen las células
que van a implantarse, o con el que están mezcladas las células,
puede ser un producto propio de las células de RPE. Así, por
ejemplo, el material de la matriz puede ser matriz extracelular o
material de la membrana basal, que se produce y se secreta por las
células de RPE que van a implantarse.
Para mejorar la adhesión, la supervivencia y la
función celulares, la matriz sólida puede recubrirse opcionalmente
sobre su superficie externa con factores que se sabe en la técnica
que promueven la adhesión, el crecimiento o la supervivencia
celulares. Tales factores incluyen moléculas de adhesión celular,
matriz extracelular, tales como, por ejemplo, fibronectina,
laminina, colágeno, elastina, glicosaminoglicanos, o proteoglicanos
o factores de crecimiento.
Alternativamente, si la matriz sólida en la que
se unen las células implantadas está construida de material poroso,
puede(n) incorporarse el factor o factores que promueven el
crecimiento o la supervivencia en el material de la matriz, del que
se liberarían lentamente tras su implante in vivo.
Cuando se unen al soporte según la presente
invención, las células usadas para el trasplante generalmente están
en la "superficie exterior" del soporte. El soporte puede ser
sólido o poroso. Sin embargo, incluso en un soporte poroso, las
células están en contacto directo con el medio externo sin una
membrana intermedia u otra barrera. Así, según la presente
invención, se considera que las células están sobre la "superficie
exterior" del soporte aun cuando la superficie a la que se
adhieren pueda estar en forma de pliegues o circunvoluciones
internos del material de soporte poroso que no están en el exterior
de la propia partícula o perla.
La configuración del soporte es preferiblemente
esférica, como en una perla, pero puede ser cilíndrica, elíptica,
una tira o lámina plana, una forma de aguja o alfiler, y similares.
Una forma preferida de matriz de soporte es una perla de vidrio.
Otra perla preferida es una perla de poliestireno.
Los tamaños de perla pueden oscilar desde
aproximadamente 10 \mum hasta 1 mm de diámetro, preferiblemente
desde aproximadamente 90 \mum hasta aproximadamente 150 \mum.
Para una descripción de diversas perlas de microportador, véanse,
por ejemplo, Fisher Biotech Source 87-88, Fisher
Scientific Co., 1987, páginas 72-75; Catálogo de
cultivo celular de Sigma (Sigma Cell Culture Catalog), Sigma
Chemical Co., St, Louis, 1991, páginas 162-163;
Catálogo de productos de Ventrex (Ventrex Product Catalog), Ventrex
Laboratories, 1989. El límite superior del tamaño de perla puede
venir dictado por la estimulación de la perla de reacciones no
deseadas en el huésped, que pueden interferir con la función de las
células trasplantadas o producir daño al tejido circundante. El
límite superior del tamaño de perla también puede venir dictado por
el método de administración. Un experto en la técnica puede
determinar fácilmente tales limitaciones.
La invención se refiere adicionalmente a un
polipéptido de neublastina que comprende un péptido señal y un
polipéptido de neublastina, careciendo el polipéptido de una
pro-región de neublastina, tal como un polipéptido
de neublastina fusionado a un péptido señal. En particular, el
péptido señal está unido a través de su extremo
C-terminal al extremo N-terminal del
polipéptido de neublastina a través de un enlace peptídico. El
péptido señal y el polipéptido de neublastina son tal como se
definieron anteriormente.
Se generó IgSP.NBN mediante PCR solapante. En la
primera etapa de amplificación, se amplificó el fragmento maduro de
NBN mediante PCR a partir del vector pUbi1z.NBN.BamHI utilizando los
cebadores NBNs-igSP.Flap
(5'-GGTGAATTCGGCTGGGGGCCCGGGCAGCC-3')
y NBNas+XhoI (5'-TATACTCGAGCGAGCCAAACTCAGCC
CAGGCA-3'). En una segunda reacción de PCR, se amplificó la secuencia IgSP a partir del vector pNUT-IgSP-CNTF (ref. documento US 6.361.741) utilizando los cebadores IgSPKozak1s+BamHI (5'-TATAGGATCCGCCAC
CATGAAATGCAGCTGGGTTATC-3') e IgSPas-NBN.Flap (5'-GGCCCCCAGCCGAATTCACCCCTGTAGAAAG-3'). En la tercera etapa, se combinaron los productos de las etapas 1 y 2 en una reacción de PCR final que genera IgSP-NBN mediante el uso de cantidades iguales de los dos productos como molde con los cebadores IgSPKo-zakls+BamHI y NBN-as+XhoI.
CAGGCA-3'). En una segunda reacción de PCR, se amplificó la secuencia IgSP a partir del vector pNUT-IgSP-CNTF (ref. documento US 6.361.741) utilizando los cebadores IgSPKozak1s+BamHI (5'-TATAGGATCCGCCAC
CATGAAATGCAGCTGGGTTATC-3') e IgSPas-NBN.Flap (5'-GGCCCCCAGCCGAATTCACCCCTGTAGAAAG-3'). En la tercera etapa, se combinaron los productos de las etapas 1 y 2 en una reacción de PCR final que genera IgSP-NBN mediante el uso de cantidades iguales de los dos productos como molde con los cebadores IgSPKo-zakls+BamHI y NBN-as+XhoI.
Para generar un vector de expresión basado en
plásmidos, se clonó el fragmento resultante en pNS1n digerido con
BamHI/XhoI. En este vector, se colocó la secuencia
IgSP-NBN bajo el control transcripcional del
promotor de CMV (véase la figura 3). Además, el vector contiene el
gen Neo que confiere resistencia a G418 cuando se expresa en
células de mamífero.
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ARPE-19 es una línea celular del
epitelio pigmentario de la retina de ser humano (Dunn et al.
1996) que se hace crecer en DMEM/Nutrient Mix F-12
con Glutamax (Invitrogen, Dinamarca) complementado con el 10% de
suero bovino fetal (Sigma-Aldrich, Dinamarca) a 37ºC
y el 5% de CO_{2}. Se pasaron las células aproximadamente dos
veces a la semana mediante tripsinización y resiembra (razón de
división 1:5). Se sembraron las células en placas de 6 pocillos
(Corning Costar, Biotech Line, Dinamarca) a una densidad de 10^{5}
células/pocillo para estudios de transfección. Al día siguiente, se
transfectaron las células con 3 \mug de plásmido/pocillo en
pocillos por duplicado utilizando Fugene6 (Roche, Alemania) según
las especificaciones del fabricante. Se sometió a ensayo la
actividad de NBN presente en los sobrenadantes celulares recogidos 3
días tras la transfección en un ELISA de RetL3.
\vskip1.000000\baselineskip
El ELISA de RetL3 detecta la unión de un
conjugado Ret-AP a un complejo de NBN unida al
receptor de GFR\alpha3 específico de NBN. Este ensayo solamente
detectará las moléculas de NBN que sean funcionalmente activas. En
resumen, se revistió una placa de 96 pocillos (B & W Isoplate
HB, Perkin Elmer, Dinamarca) con 100 \mul de anticuerpo de cabra
anti-Fc humano 1 \mug/ml (Jackson Immunoresearch
Laboratories, TriChem, Dinamarca) en NaHCO_{3} 50 mM (pH=9,6)
durante 16 horas a 4ºC. Tras lavar en PBS/Tween 20 al 0,05% (PBST),
se bloquearon los pocillos en I-Block al 0,2%
(Tropix, Applied Biosystems, Dinamarca) en PBST durante 1 hora a
temperatura ambiente, seguido por un lavado breve con PBST. Se
diluyeron los sobrenadantes celulares o la artemina de ratón
recombinante (R & D systems, RU) en DMEM/10% de FCS y
posteriormente se incubaron en los pocillos con proteína de fusión
GFR\alpha3/Fc 1 \mug/ml (R & D Systems, RU) en medio
condicionado RET-AP (Biogen, EE.UU.) durante 1,5
horas a temperatura ambiente. Luego se lavaron los pocillos primero
con PBST y luego con tampón AP (Tris 200 mM (pH=9,8), MgCl_{2} 10
mM) seguido por incubación durante 30 minutos con potenciador
Sapphire al 10% (Tropix, Applied Biosystems, Dinamarca) y 2% de
CSPD (Tropix, Applied Biosystems, Dinamarca) en tampón AP. Se
determinó la luminiscencia mediante el uso del contador Microbeta
Trilux (Perkin Elmer, Dinamarca).
\vskip1.000000\baselineskip
Se detectaron las actividades de NBN de
25,3-33,8 ng/ml mediante el uso del ELISA de RetL3
en sobrenadantes recogidos de células ARPE-19
transfectadas transitoriamente con el constructo
pNS1n-IgSP.NBN. En cambio, se detectó una actividad
de NBN aproximadamente 5 veces inferior (4,4-6,4
ng/ml) en células ARPE-19 transfectadas
transitoriamente con un constructo de expresión de
(pre-pro)NBN de tipo salvaje (pUbi1z.hNBN)
incluido en el mismo experimento. Se detectó una actividad de NBN
muy baja o indetectable en sobrenadantes celulares de
ARPE-19 transfectadas transitoriamente con un
constructo de expresión de EGFP (pNS1z-EGFP)
confirmando la especificidad del ensayo.
Estos resultados indican que el uso de un
constructo IgSP-NBN quimérico conduce a una
liberación superior de NBN madura a partir de células de mamífero
que pueden unirse y activar el complejo de receptor de NBN
específico en comparación con la liberación de NBN utilizando un
constructo de (pre-pro)NBN de tipo
salvaje.
Para generar un constructo lentiviral, se
digirió pNS1n-IgSP-NBN con
BamHI-XhoI y se ligó el fragmento de PCR
IgSP-hNBN (tal como se describe en el ejemplo 1) en
pHsCXW digerido con BamHI/XhoI dando como resultado
pHsCXW.IgSP.NBNw (figura 3). pHsCXW es un derivado de un constructo
de transferencia lentiviral auto-inactivante,
pHR'-SIN_{18} que incluye un elemento WPRE (Dull
et al., J. Virol., 72 (11): 8463-71 (1998);
Zufferey et al., J.Virol., 72 (12): 9873-80
(1998): Zufferey et al. J.virol., 73 (4):
2886-92 (1999)) generado mediante sustitución de
una gran parte no viral del constructo de transferencia por la
estructura principal de pUC19. A la secuencia de pHsCXW se puede
tener acceso a través de GenBank ID: AY468486.
Se generan partículas virales
LV-sC.IgSP.NBN.W de replicación defectuosa mediante
la cotransfección de
pHsC.IgSP.NBN.W con pMD.G (vector de pseudotipificación VSV-G) y pBR8.91 (vector de empaquetamiento) (Zufferey et al., Nat. Biotech., 15: 871-75 (1997)) en células 293T que proporcionan las proteínas virales requeridas en trans. En resumen, se siembran las células 293T cultivadas en DMEM con glucosa y glutamax 4,5 g/l (Life Technologies, 32430-027) conplementadas con el 10% de FCS (Life Technologies, 10099-141) en frascos T75 (2x10^{6} células/frasco) el día antes de la transfección. Para cada frasco T75 se transfectan las células con 5 \mug de pMD.G, 15 \mug de pBR8.91 y 20 \mug de vector de transferencia utilizando Lipofectamine+ siguiendo las instrucciones del fabricante. Se recoge el sobrenadante celular que contiene virus a los 2-3 días tras la transfección, se esteriliza por filtración a través de un filtro de acetato de celulosa o polisulfónico de 0,45 m y se concentra mediante ultracentrifugación a 50.000xg durante 90 minutos a 4ºC. Tras una segunda ronda de ultracentrifugación, se resuspende el sedimento de virus concentrado en DMEM, se divide en alícuotas y se almacena a -80ºC. Para determinar el título viral, se somete a ensayo la actividad transcriptasa inversa (RT) (Cepko y Pear, Current Protocols in Molecular Biology, 9.13. 5-6, suplemento 36) y las unidades de transducción (UT)/ml calculadas a partir de la actividad RT determinada utilizando un lentivirus EGFP con actividad de transducción conocida como referencia.
pHsC.IgSP.NBN.W con pMD.G (vector de pseudotipificación VSV-G) y pBR8.91 (vector de empaquetamiento) (Zufferey et al., Nat. Biotech., 15: 871-75 (1997)) en células 293T que proporcionan las proteínas virales requeridas en trans. En resumen, se siembran las células 293T cultivadas en DMEM con glucosa y glutamax 4,5 g/l (Life Technologies, 32430-027) conplementadas con el 10% de FCS (Life Technologies, 10099-141) en frascos T75 (2x10^{6} células/frasco) el día antes de la transfección. Para cada frasco T75 se transfectan las células con 5 \mug de pMD.G, 15 \mug de pBR8.91 y 20 \mug de vector de transferencia utilizando Lipofectamine+ siguiendo las instrucciones del fabricante. Se recoge el sobrenadante celular que contiene virus a los 2-3 días tras la transfección, se esteriliza por filtración a través de un filtro de acetato de celulosa o polisulfónico de 0,45 m y se concentra mediante ultracentrifugación a 50.000xg durante 90 minutos a 4ºC. Tras una segunda ronda de ultracentrifugación, se resuspende el sedimento de virus concentrado en DMEM, se divide en alícuotas y se almacena a -80ºC. Para determinar el título viral, se somete a ensayo la actividad transcriptasa inversa (RT) (Cepko y Pear, Current Protocols in Molecular Biology, 9.13. 5-6, suplemento 36) y las unidades de transducción (UT)/ml calculadas a partir de la actividad RT determinada utilizando un lentivirus EGFP con actividad de transducción conocida como referencia.
\vskip1.000000\baselineskip
Se transdujeron células ARPE-19
con vectores de expresión de NBN. En resumen, se sembraron las
células en placas de 6 pocillos (Corning Costar, Biotech Line,
Dinamarca) a una densidad de 10^{5} células/pocillo. Al siguiente
día, se añadieron 2x10^{5} UT de virus por pocillo (duplicado)
junto con polibreno 5 \mug/ml durante 4 horas. Se cambió el medio
y se incubaron los cultivos durante 3 días. Entonces se recogieron
los sobrenadantes celulares para realizar el ELISA de RetL3 tal
como se describe en el ejemplo 2.
\vskip1.000000\baselineskip
Se detectaron las actividades de NBN de 39 ng/ml
mediante el uso del ELISA de RetL3 en sobrenadantes recogidos de
células ARPE-19 transducidas con el virus
LV-sC.IgSP.NBN.W. En cambio, se detectó una
actividad de NBN muy baja o indetectable en células
ARPE-19 transducidas con un lentivirus que contenía
ADNc de (pre-pro)NBN de tipo salvaje
(LV-sC-NBN. W) o un lentivirus EGFP
control (LV-sCEW).
Estos resultados indican que, en contraposición
a un constructo viral que contiene el ADNc de
(pre-pro)NBN de tipo salvaje, el uso de un
constructo viral IgSP-NBN quimérico permite una alta
liberación de NBN madura a partir de células de mamífero que pueden
unirse y activar el complejo receptor de NBN específico.
\vskip1.000000\baselineskip
Se concentró NBN presente en los sobrenadantes
celulares de cultivos celulares transfectados o transducidos
mediante unión de afinidad a GFR\alpha3-Ig antes
del análisis por Western-blot. En resumen, se
revistieron 4 pocillos de una placa Nunc MaxiSorp con 300 \mul de
anticuerpo de cabra anti-Fc humano 1 \mug/ml
(Jackson Immunoresearch Laboratories, TriChem, Dinamarca) en
NaHCO_{3} 50 mM (pH=9,6) durante 16 horas a 4ºC. Se bloquearon
los pocillos con 400 \mul de BSA al 1% en PBS durante 1 hora a
temperatura ambiente, seguido por 3 lavados con PBST. Entnces se
añadieron 300 \mul/pocillo de proteína de fusión GFR\alpha3/Fc 1
\mug/ml (R & D Systems, RU) y se incubó la placa durante 1
hora a temperatura ambiente para maximizar la unión. Entonces se
vaciaron los pocillos y se lavaron de nuevo 3 veces con PBST.
Entonces se añadieron 300 \mul de sobrenadante recogido de
cultivos celulares transfectados o transducidos a cada uno de los 4
pocillos y se incubaron durante al menos 3 horas con agitación
suave a temperatura ambiente. Entonces se lavaron los pocillos dos
veces con PBST. Se añadieron 20 \mul de tampón de muestra no
reductor (SDS al 2%, Tris 0,4 M (pH=8,0) al primer pocillo y se
agitó rápidamente la placa durante 5 minutos para eluir las
proteínas unidas. Se transfirió el contenido al siguiente pocillo y
se repitió el procedimiento para eluir las proteínas unidas en los
pocillos restantes. Tras la adición de DTT a 10 mM, se calentaron
las muestras hasta 96ºC durante 5 minutos y se analizaron mediante
SDS PAGE en un gel de poliacrilamida al 15% utilizando el sistema
MultiPhorII según las recomendaciones del fabricante (Amersham
Pharmacia, Dinamarca). Se transfirieron las proteínas a membranas de
PVDF (BioRad, Dinamarca) que se inmunotiñeron utilizando un
anticuerpo de conejo policlonal anti-NBN (nº 378)
como anticuerpo de detección. Se revelaron las membranas utilizando
el sistema ECL+ (Amersham Pharmacia, Dinamarca) y se sometieron a
exposición a película.
\vskip1.000000\baselineskip
El #378 es un anticuerpo policlonal de conejo
generado frente a un péptido derivado de NBN (ALRPPPGSRPVS
QPC). Tal como se observa en la figura 5 panel (a), se reconoce una única banda de un peso molecular de entre 7,2 y 18,5 kDa en muestras reducidas (+DTT) que contienen NBN recombinante de rata purificada producida en E. coli que corresponde a NBN113 monomérica no glicosilada. Además de diversas bandas adicionales, se reconoce una banda del mismo PM en muestras reducidas a partir de clones de CHO-NBN estables establecidos mediante transfección con (pre-pro)NBN de tipo salvaje. Se han determinado las identidades de varias de estas bandas en estudios previos utilizando desglicosilación y secuenciación del extremo N-terminal. Una banda con un peso molecular ligeramente inferior representa una versión más pequeña y no glicosilada de la NBN madura (NBN104). Además, una banda muy ancha con un PM aparente de aproximadamente 21 kDa representa versiones glicosiladas de NBN113 y NBN104. Las bandas de PM superior representan pro-NBN (glicosilada) observada ocasionalmente en muestras purificadas por afinidad a GFR\alpha3.
QPC). Tal como se observa en la figura 5 panel (a), se reconoce una única banda de un peso molecular de entre 7,2 y 18,5 kDa en muestras reducidas (+DTT) que contienen NBN recombinante de rata purificada producida en E. coli que corresponde a NBN113 monomérica no glicosilada. Además de diversas bandas adicionales, se reconoce una banda del mismo PM en muestras reducidas a partir de clones de CHO-NBN estables establecidos mediante transfección con (pre-pro)NBN de tipo salvaje. Se han determinado las identidades de varias de estas bandas en estudios previos utilizando desglicosilación y secuenciación del extremo N-terminal. Una banda con un peso molecular ligeramente inferior representa una versión más pequeña y no glicosilada de la NBN madura (NBN104). Además, una banda muy ancha con un PM aparente de aproximadamente 21 kDa representa versiones glicosiladas de NBN113 y NBN104. Las bandas de PM superior representan pro-NBN (glicosilada) observada ocasionalmente en muestras purificadas por afinidad a GFR\alpha3.
Tal como se observa en la figura 5 panel (b), se
detecta la banda doble de PM entre 6,4 y 21,3 kDa que corresponde a
NBN113 y NBN104 no glicosiladas en dos clones estables de células
CHO-NBN. También se detecta la misma banda doble en
ARPE-19 transducidas o transfectadas con constructos
de expresión IgSP-NBN. Además, se observa una banda
doble de PM próximo a 21 kDa que corresponde a NBN113 y NBN104
glicosiladas en todas las muestras analizadas. Estos resultados
indican que el procesamiento y la modificación postraduccional son
similares cuando se expresa a partir de constructos
(pre-pro)NBN de tipo salvaje e
IgSP-NBN.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
IgSP-NBN es un constructo de
fusión con el péptido señal de un gen de inmunoglobulina fusionado
directamente a NBN madura (113).
El IgSP-NBN contiene un
intrón.
\newpage
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Se predice que la proteína de fusión traducida
contiene un péptido señal de 19 aminoácidos, que se escinde de la
secuencia de NBN madura (113) utilizando Signal P (disponible en el
servidor CBS DTU en www.cbs.dtu.dk). ((Identification of
prokaryotic and eukaryotic peptides and prediction of their cleavage
sites. H. Nielsen, J. Engelbrecht, S. Brunak, G. von Hejne, Protein
Engineering 10, 1-6, 1997).
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Predicción: péptido señal
Probabilidad de péptido señal: 0,999
Probabilidad de anclaje de señal: 0,000
Probabilidad máxima de sitio de escisión: 0,660
entre las posiciones 19 y 20
Utilizando redes neurales (NN) y modelos ocultos
de Markov (HMM) entrenados en eucariotas
\vskip1.000000\baselineskip
La predicción de sitio de escisión cuando Igsp
se fusiona a un polipéptido de neublastina de diversas longitudes
se muestra a continuación utilizando el programa signal P 2.0
anteriormente identificado.
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
IgSP:
- \quad
- (19)MKCSWVIFFLMAVVTGVNS
\vskip1.000000\baselineskip
Formas maduras de NBN:
- \quad
- (113)AGGPGSR(106)AR(104)AA(102)GAR(99)GCRLRSQLVPVRALGLGHRSDELVRFRFCSGSCRRAR SPHDLSLASLLGAGALRPPPGSRPVSQPCCRPTRYEAVSFM-DVNSTWRTVDRLSATACGCLG
\vskip1.000000\baselineskip
Se generó deltapro-NBN (SEQ. ID.
NO: 82) mediante PCR solapante en tres etapas de amplificación: 1)
la secuencia líder relativamente larga de 117 pb (es decir, péptido
señal de 39 aminoácidos) de preproNBN con proyección de
5'BamHI/Kozak y superposición en 3' de 10 bases con respecto a NBN
madura (143 pb); 2) NBN madura con superposición de secuencia líder
de NBN de 10 bases en 5' y XhoI 3' (362 pb); 3) se combinaron los
productos de las etapas 1 y 2 en una reacción de PCR final que
generó \Deltapro-NBN (492 pb).
La primera reacción de PCR (líder de NBN):
Cebadores utilizados:
- \quad
- BamHI+Kozak+hNBNsp, 5'-TATAGGATCCGCCACCATGGAACTTGGACTTGGAGG-3'
- \quad
- hNBNsp3'-matNBN FLAP como, 5'-GGCCCCCAGCGGCCTCTGCGACGCTGCTCA-3'
Se utilizó el plásmido pHsC.hNBN.W (véase el
mapa de plásmido en la figura 7a) como molde para la reacción de
PCR, que se realizó utilizando polimerasa
Pfu-turbo.
\vskip1.000000\baselineskip
Condiciones de PCR:
- \quad
- 94ºC 3 min
- \quad
- 94ºC 30 s
- \quad
- 55ºC 30 s 35 ciclos
- \quad
- 72ºC 1 min
- \quad
- 72ºC 5 min
\vskip1.000000\baselineskip
La segunda reacción de PCR (NBN madura):
Cebadores utilizados:
- \quad
- hNBNsp3'FLAP-matNBN s, 5'-CGCAGAGGCCGCTGGGGGCCCGGGCAGC-3'
- \quad
- NBNas+XhoI, 5'-TATACTCGAGCGAGCCCTCAGCCCAGGCA-3'
Se utilizó el plásmido pHsC.hNBN.W (véase el
mapa de plásmido en la figura 7a) como molde para la reacción de
PCR, que se realizó utilizando polimerasa
Pfu-turbo.
\vskip1.000000\baselineskip
Condiciones de PCR:
- \quad
- 94ºC 3 min
- \quad
- 94ºC 30 s
- \quad
- 65ºC 30 s 35 ciclos
- \quad
- 72ºC 1 min
- \quad
- 72ºC 5 min
\vskip1.000000\baselineskip
La tercera reacción de PCR
(deltapro-NBN):
Cebadores utilizados:
- \quad
- BamHI+Kozak+hNBNsp, 5'-TATAGGATCCGCCACCATGGAACTTGGACTTGGAGG-3'
- \quad
- NBNas+XhoI, 5'-TATACTCGAGCGAGCCCTCAGCCCAGGCA-3'
Se utilizaron los fragmentos de PCR de las dos
primeras reacciones de PCR (líder de NBN y NBN madura) ambos a una
dilución de 1:10 como molde para la tercera reacción de PCR, que se
realizó utilizando polimerasa Pfu-turbo, y el mismo
perfil de PCR que en la primera reacción de PCR.
Se cortó el fragmento de PCR de la tercera
reacción de PCR con BamHI y XhoI y se clonó entre los sitios BamHI
y XhoI en pHsCXW (véase el mapa de plásmido en la figura 7b).
\vskip1.000000\baselineskip
Se comparó la secreción de NBN tras la
transfección transitoria con diferentes constructos de NBN,
incluyendo pre-pro-NBN de tipo
salvaje, delta-pro-NBN e
IgSP-NBN. Se realizaron las transfecciones
transitorias en células ARPE-19, HEK293, CHO e
HiB5.
\vskip1.000000\baselineskip
Se cultivaron células ARPE-19
tal como se describe en el ejemplo 1. Se hicieron crecer células
HiB5 (Renfranz et al.1991), HEK293 y CHO en DMEM
(Invitrogen, Dinamarca) con el 10% de suero bovino fetal
(Invitrogen, Dinamarca), y se complementó adicionalmente el medio
para las células CHO con L-prolina 20 mg/l. Se
hicieron crecer las células ARPE-19, HEK293 y CHO a
37ºC y las células HiB5 a 33ºC en el 5% de CO_{2}. Se pasaron las
células aproximadamente dos veces a la semana mediante
tripsinización y resiembra (razón de división 1:5).
\vskip1.000000\baselineskip
Se sembraron las células en placas de 6 pocillos
(Corning Costar, Biotech Line, Dinamarca) a una densidad de
aproximadamente 10^{5} células/pocillo. Al día siguiente, se
transfectaron las células con pHsC.hNBN.W, pHsC.IgSP.
hNBN.W y pHsC.deltapro-hNBN.W, respectivamente. Se transfectaron las células ARPE-19 en pocillos por triplicado utilizando Fugene6 tal como se describió en el ejemplo 1, mientras que las otras tres líneas celulares se transfectaron utilizando 2 \mug de plásmido/pocillo en pocillos por triplicado utilizando Lipofectamine Plus (Invitrogen, Dinamarca) según las instrucciones del fabricante. Al día siguiente, se añadió medio de crecimiento nuevo a los pocillos y se incubaron las células durante 24 horas adicionales antes de recoger el medio condicionado. Se garantizó una eficacia de transfección adecuada mediante la evaluación de la expresión de EGFP en pocillos transfectado en paralelo con pHsC.EGFP.W. Se midió la actividad de unión de NBN en medio condicionado utilizando el ELISA de RetL3, tal como se describió en el ejemplo 1. El ELISA de RetL3 detecta la unión de un conjugado Ret-AP a un complejo de NBN unido al receptor de GFR\alpha3 específico de NBN. Se calcularon los valores como ng de NBN/ml/24 h y ng de NBN/10^{5} células/24 h y se ajustaron con respecto a la liberación relativa de NBN con valores de las células transfectadas con el constructo de NBN de tipo salvaje fijada en 1. Los datos en la figura 8 representan estos tres cálculos y se expresan como media \pm EEM (n=3). En el panel A, * indica una diferencia significativa de las células transfectadas con el constructo de NBN de tipo salvaje (P < 0,05, ANOVA de una vía, método LSD de Fisher).
hNBN.W y pHsC.deltapro-hNBN.W, respectivamente. Se transfectaron las células ARPE-19 en pocillos por triplicado utilizando Fugene6 tal como se describió en el ejemplo 1, mientras que las otras tres líneas celulares se transfectaron utilizando 2 \mug de plásmido/pocillo en pocillos por triplicado utilizando Lipofectamine Plus (Invitrogen, Dinamarca) según las instrucciones del fabricante. Al día siguiente, se añadió medio de crecimiento nuevo a los pocillos y se incubaron las células durante 24 horas adicionales antes de recoger el medio condicionado. Se garantizó una eficacia de transfección adecuada mediante la evaluación de la expresión de EGFP en pocillos transfectado en paralelo con pHsC.EGFP.W. Se midió la actividad de unión de NBN en medio condicionado utilizando el ELISA de RetL3, tal como se describió en el ejemplo 1. El ELISA de RetL3 detecta la unión de un conjugado Ret-AP a un complejo de NBN unido al receptor de GFR\alpha3 específico de NBN. Se calcularon los valores como ng de NBN/ml/24 h y ng de NBN/10^{5} células/24 h y se ajustaron con respecto a la liberación relativa de NBN con valores de las células transfectadas con el constructo de NBN de tipo salvaje fijada en 1. Los datos en la figura 8 representan estos tres cálculos y se expresan como media \pm EEM (n=3). En el panel A, * indica una diferencia significativa de las células transfectadas con el constructo de NBN de tipo salvaje (P < 0,05, ANOVA de una vía, método LSD de Fisher).
\vskip1.000000\baselineskip
Tal como se muestra en la tabla a continuación y
en la figura 8A, las cuatro líneas celulares sometidas a prueba
mostraron un aumento en la liberación de NBN cuando se utiliza el
constructo deltapro-NBN, en comparación con el
constructo de NBN de tipo salvaje (liberación de NBN
9-17 veces superior, dependiendo de la línea
celular). Cuando se transfectaron las cuatro líneas celulares con
el constructo pHsC.IgSP.hNBN, la secreción de NBN se potenció
adicionalmente (liberación de NBN 28-91 veces
superior en comparación con NBN de tipo salvaje). Se detectó una
actividad muy baja o indetectable de NBN en los sobrenadantes
celulares de ARPE-19 transfectada transitoriamente
con el constructo de expresión de EGFP (pHs.C.EGFP.W) confirmando la
especificidad del ensayo.
El panel B de la figura 8B muestra
concentraciones de NBN en medio condicionado (24 horas) de líneas
celulares transfectadas transitoriamente. La mayor concentración
(1240 \pm 54 ng NBN/ml) se encontró en el medio condicionado de
células HEK293 transfectadas con el constructo
IgSP-NBN. El panel C de la figura 8 muestra la
liberación de NBN por 10^{5} células por 24 horas. Las células
ARPE-19 transfectadas con IgSP-NBN
muestran la mayor liberación de NBN (133 \pm 35 ng/10^{5}
células/24 horas).
Los presentes resultados indican que el uso de
un constructo IgSP-NBN quimérico y del constructo
deltapro-NBN con el fin de aumentar la secreción de
NBN madura a partir de células de mamífero es aplicable en
diferentes tipos de células.
\vskip1.000000\baselineskip
Predicción de las posiciones para los péptidos
señal utilizando la versión 3.0.
Se realizaron las predicciones en deltapro NBNs
e IgSP-NBNs de las siguientes secuencias.
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{ \cr}
\newpage
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{ \cr}
\newpage
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{ \cr}
\newpage
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{ \cr}
\newpage
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{ \cr}
\newpage
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{ \cr}
\newpage
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{ \cr}
\newpage
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{ \cr}
\newpage
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{ \cr}
Se examinó la secuencia del gen de neublastina
nativa humana para determinar el uso de codones para optimizar la
expresión de la neublastina humana en células CHO. Se analizaron los
codones más frecuentemente utilizados en células CHO basándose en
los datos actuales hasta 2002 utilizando un método conocido en la
técnica (Nakamura et al., 1999, Nucleic Acids Res.,
27(1): 292). El uso de codones para Cricetulus griseus
se basa en lo presentado en la tabla a continuación.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
La secuencia de nucleótidos nativa human que
codifica para el fragmento de 104 aminoácidos
C-terminales (Roseblad et al., 2000, Mol.
Cell Neurosci. 15 (2): 199; Baloh et al., Neuron 21: 1291) y
la secuencia de nucleótidos del gen sintético están alineadas en la
figura 9 con los nucleótidos cambiados indicados. Las dos secuencias
son idénticas al 83,33%.
\vskip1.000000\baselineskip
Se sintetizó una forma en 3' de 100 codones (300
nucleótidos) del gen de neublastina y se clonó en un plásmido de
expresión para facilitar la inserción de diversas secuencias de
péptido señal unidas a los codones en 5' de neublastina. Se
ensambló la forma de 100 codones del gen de neublastina mediante la
combinación de 40 pmol de oligonucleótidos KD3-464
a KD3-469 (tabla 2) en 200 \mul de tampón (KCl 10
mM, (NH_{4})_{2}SO_{4} 10 mM, Tris-Cl
20 mM, MgSO_{4} 2 mM, Triton X-100 al 0,1%, pH
8,8) que contenía la polimerasa Deep Vent (New England BioLabs,
Beverly, MA). Se calentó el contenido hasta 95ºC durante 4 minutos y
se sometió a ciclado veinte veces tal como sigue: 95ºC durante 1
minuto, 60ºC durante 30 segundos y 72ºC durante 1 minuto, seguido
por una extensión a 72ºC durante cuatro minutos. Se prepararon los
extremos mediante digestión secuencial con Sall y Nhel. El
fragmento de 330 pares de bases, que incluía una región no
codificante de 30 pares de bases que flanqueaba al gen de
neublastina, se purificó en gel y se ligó en el plásmido
pFRT/dhfr-1 (un derivado de pcDNA/FRT (Invitrogen,
Carlsbad, CA) con el gen de higromicina sustituido por un gen de
dihidrofolato reductasa) que se había purificado en gel y digerido
con Nhel y XhoI. El plásmido resultante se denominó
pNBN026-35. La secuencia de neublastina dentro de
pNBN026-35 se presenta en la Figura 10.
La tabla a continuación identifica los
oligonucleótidos utilizados en PCR y el ensamblaje de la secuencia
sintética para generar genes de fusión péptido
señal-neublastina. Todas las secuencias se indican
en la orientación de 5' a 3'.
Se sometieron a prueba las secuencias que
codificaban para cuatro péptidos señal diferentes. Estos incluían
las secuencias señal para neublastina, albúmina de rata y hormona de
crecimiento humana. Adicionalmente, una secuencia señal sintética
que resultó de dos mutaciones de marco de lectura durante la
amplificación por PCR para generar el péptido señal de neublastina.
Se sintetizaron las fusiones utilizando o bien ensamblaje de
oligonucleótidos o bien PCR. Se ligaron los fragmentos de ADN en
pNBN026. Se confirmó la secuencia de ADN relevante de cada una de
las cuatro moléculas descritas mediante análisis de la secuencia de
ADN.
Se sintetizó la secuencia señal sintética
mediante amplificación por PCR utilizando los oligonucleótidos
KD3-487, KD3-479,
KD3-480, KD3-481, y
KD3-482 (tabla) y polimerasa puReTaq (Pharmacia,
Peapack, NJ,). Las condiciones de PCR incluyeron calentamiento de
la reacción hasta 95ºC durante 4 minutos y luego ciclado veinte
veces a 95ºC durante 1 minuto, 60ºC durante 30 segundos, 72ºC
durante 1 minuto, seguido por una extensión a 72ºC durante cuatro
minutos. Se prepararon los extremos mediante digestión con PstI y
XhoI. Se purificó en gel el fragmento de 330 pares de bases y se
ligó en el plásmido pNBN026 que también se purificó en gel y se
digirió con PstI y XhoI. El plásmido resultante se denominó
pNBN030. Hubo dos mutaciones de marco de lectura espontáneas no
predichas ni codificadas por los oligonucleótidos que se compensaron
entre sí y mantuvieron la proteína traducida en marco. Se muestran
las secuencias de ADN y proteína en la Figura 11.
Se sintetizó la secuencia señal de neublastina
mediante amplificación por PCR con los oligonucleótidos
KD3-513 y KD3-514 (tabla). La
polimerasa utilizada fue puReTaq (Pharmacia, Peapack, NJ,). Las
condiciones de PCR incluyeron calentamiento hasta 95ºC durante 4
minutos y ciclado tres veces a 95ºC durante 1 minuto, 60ºC durante
30 segundos, 72ºC durante 1 minuto, seguido por una extensión a
72ºC durante cuatro minutos. Se prepararon los extremos mediante
digestión con Nhel y XhoI. Se purificó en gel el fragmento de 330
pares de bases y se ligó en el plásmido pNBN030 que se purificó en
gel y se digirió con Nhel y XhoI. El plásmido resultante se denominó
pNBN038. Se muestran las secuencias de ADN y proteína en la Figura
12.
Se sintetizó la secuencia señal de albúmina
mediante amplificación por PCR con los oligonucleótidos
KD3-487, KD3-471 y
KD3-472 (tabla). La polimerasa utilizada fue puReTaq
(Pharmacia, Peapack, NJ). Las condiciones de PCR incluyeron
calentamiento hasta 95ºC durante 4 minutos y ciclado veinte veces a
95ºC durante 1 minuto, 60ºC durante 30 segundos, 72ºC durante 1
minuto, seguido por una extensión a 72ºC durante cuatro minutos. Se
prepararon los extremos mediante digestión con PstI y XhoI. Se
purificó en gel el fragmento de 330 pares de bases y se ligó en el
plásmido pNBN026 que se purificó en gel y se digirió con PstI y
XhoI. El plásmido resultante se denominó pNBN029. Se muestran las
secuencias de ADN y proteína en la Figura 13.
Se sintetizó la secuencia señal de la hormona de
crecimiento humana mediante amplificación por PCR del plásmido pV30
(un plásmido basado en pUC que contiene la copia genómica del
extremo 5' del gen de la hormona de crecimiento humana) con los
oligonucleótidos KD3-487, KD3-477 y
KD3-485 (tabla 2). La polimerasa utilizada fue
puReTaq (Pharmacia, Peapack, NJ,). Las condiciones de PCR
incluyeron calentamiento hasta 95ºC durante 4 minutos y ciclado
veinte veces a 95ºC durante 1 minuto, 60ºC durante 30 segundos, 72ºC
durante 1 minuto, seguido por una extensión a 72ºC durante cuatro
minutos. Se prepararon los extremos mediante digestión con PstI y
XhoI. Se purificó en gel el fragmento de 330 pares de bases y se
ligó dentro del plásmido pNBN026 que se purificó en gel y se
digirió con PstI y XhoI. El plásmido resultante se denominó pNBN031.
Se muestran las secuencias de ADN y de proteína en la Figura
14.
\vskip1.000000\baselineskip
Se transformaron previamente células
CHO-DG44 con secuencias de ADN que contenían la
diana de recombinación Flp (frt) (células A1). Esta línea celular
huésped A1 no contiene el gen de dihidrofolato reductasa (DHFR) y
por tanto es DHFR-negativo. Cada uno de los
plásmidos descritos codifica para el gen de DHFR, el gen de fusión
de neublastina, más el sitio frt. El plásmido pOG44 codifica para el
gen de Flp recombinasa. La cotransfección de estos plásmidos en
células A1 dio como resultado la inserción de una copia única de los
genes de fusión péptido señal-neublastina y DHFR en
el cromosoma. Se sometieron a electroporación las células A1 con el
plásmido de interés más el plásmido pOG44 en condiciones
compatibles con las descritas por el fabricante (es decir, cubeta
de 0,4 mm, 280 voltios, 950 microFaradios) (BioRad, Hercules,
California). Se seleccionaron las células transformadas que
expresaban DHFR por su capacidad para crecer en medio
alfa-negativo Minimal Essential
Medium-Alpha sin nucleósidos (Invitrogen, Carlsbad,
CA) complementado con el 10% de suero bovino fetal dializado
(Hyclone, Logan, UT). Aproximadamente dos semanas después, se
aislaron las colonias y se expandieron en recipientes más grandes
en el mismo medio de selección. Los cultivos celulares se cambiaron
a medio libre de suero y se analizaron.
\vskip1.000000\baselineskip
Se examinaron las líneas celulares candidatas
para determinar su capacidad para expresar neublastina. Se
centrifugaron alícuotas de cultivos celulares en suspensión para
separar las células del medio condicionado. Se eliminó el medio
condicionado del sedimento celular y se procesaron tanto los medios
como el sedimento celular para electroforesis reductora y
desnaturalizante en geles de poliacrilamida al 16% tal como se
describe generalmente (Ausubel et al., mencionado
anteriormente). Tras la finalización de la electroforesis, se
sometieron a electroinmunotransferencia las proteínas sobre una
membrana de PVDF y se examinaron con sonda con antisuero policlonal
de conejo generado frente a neublastina. Se detectó el complejo
anticuerpo-neublastina mediante el uso de un
antisuero de cabra policlonal anti-conejo conjugado
con peroxidasas de rábano (BioRad, Hercules, California).
La proteína expresada a partir de plásmidos que
codifican para los péptidos señal de neublastina, sintéticos, de
albúmina y de hormona de crecimiento humana expresó cada uno
neublastina inmunorreactiva en la fracción de sedimento celular.
Sin embargo, solamente los péptidos señal de albúmina y de hormona
de crecimiento humana expresaron niveles detectables de neublastina
en medio condicionado. La movilidad electroforética de todos los
polipéptidos de neublastina expresados fue compatible con una forma
de neublastina de 11 kD, de 104 aminoácidos.
Se purificó la neublastina a partir de medio
condicionado utilizando una columna de inmunoafinidad, generalmente
tal como se describió (Ausubel et al., mencionado
anteriormente). Se determinó la secuencia
amino-terminal de la proteína purificada de líneas
celulares que contenían los péptidos señal de albúmina y de hormona
de crecimiento. Se aplicó la neublastina sobre un microfiltro TFA
(Applied Biosystems, Foster City, CA) y se sometió a química de
degradación de Edman automatizada. Se realizó la secuenciación del
extremo amino-terminal en un secuenciador ABI
Procise 494. Se separaron los aminoácidos de PTH resultantes
utilizando un sistema de microgradiente ABI 140C equipado con una
columna PTH C18 de fase inversa y se analizaron utilizando un
detector de absorbancia ABI 7785A. Para ambos constructos, la
secuencia de proteína primaria empezaba con el primer residuo del
fragmento C-terminal de 104 aminoácidos de
neublastina de longitud completa (es decir, alanina). La
preparación de neublastina expresada con el péptido señal de hormona
de crecimiento también incluyó un fragmento
C-terminal de neublastina de 103 aminoácidos que
carecía del residuo de alanina amino-terminal. La
forma de 103 aminoácidos de la neublastina empezaba con una alanina.
En ambos casos, el péptido señal funcionó tal como se anticipó, es
decir, se secretó el polipéptido de neublastina de la célula y se
escindió el péptido señal por la célula.
\vskip1.000000\baselineskip
Se analizó la neublastina purificada a partir
del medio condicionado de las líneas celulares que contenían
constructos que codificaban para los péptidos señal de albúmina y de
hormona de crecimiento mediante espectrometría de masas intacta en
un espectrómetro de masas ZMD (Waters, Milord, MA) tal como se
describe generalmente por el fabricante. Para ambos constructos, el
pico principal de las muestras deglicosiladas correspondía a un
polipéptido de neublastina de 104 aminoácidos (figura 15). Estos dos
péptidos señal funcionaron tal como se anticipó, es decir, se
secretó el polipéptido de neublastina de la célula y se escindió el
péptido señal por la célula. Adicionalmente, la neublastina
glicosilada secretada de células transfectadas con los constructos
que codificaban para los péptidos señal de neublastina y de hormona
de crecimiento contenía diversas glicoformas.
\vskip1.000000\baselineskip
Se evaluó la actividad biológica utilizando un
ELISA de activación del receptor cinasa (KIRA). El método se ha
descrito previamente (Sadick et al., 1996, Anal. Biochem.,
1996. 235(2):207. En resumen, se sembraron en placa células
NB41A3-mRL3, una línea celular de neuroblastoma
murino adherente que expresa Ret y GFR\alpha3, a 2 x10^{5}
células por pocillo en placas de 24 pocillos en medio eagle
modificado por Dulbecco (DMEM), complementado con el 10% de suero
bovino fetal, y se cultivaron durante 18 horas a 37ºC y el 5% de
CO_{2}.
Se lavaron las células con PBS y se trataron con
diluciones en serie de neublastina en 0,25 ml de DMEM durante 10
minutos a 37ºC y el 5% de CO_{2}. Se analizó cada muestra por
duplicado. Se lavaron las células con 1 ml de PBS y se lisaron
durante 1 hora a 4ºC con 0,30 ml de Tris HCl 10 mM, pH 8,0, Nonidet
P40 al 0,5%, desoxicolato de sodio al 0,2%, NaF 50 mM,
Na_{3}VO_{4} 0,1 mM, fluoruro de fenilmetilsulfonilo 1 mM
mientras que se agitaban suavemente las placas. Se agitaron
adicionalmente los lisados mediante pipeteo repetido y se
transfirieron 0,25 ml de la muestra a una placa ELISA de 96
pocillos que se había revestido con 5 \mug/ml de Ac\alpha
anti-Ret (AA.GE7.3) (Upstate Biotechnology, Waltham,
MA) en tampón carbonato 50 mM, pH 9,6 a 4ºC durante 18 horas y
luego se bloqueó a temperatura ambiente durante una hora con tampón
de bloqueo (Tris HCl 20 mM pH 7,5, NaCl 150 mM,
Tween-20 al 0,1% (TBST) que contenía el 1% de suero
normal de ratón y el 3% de albúmina sérica bovina).
Tras 2 horas de incubación a temperatura
ambiente, se lavaron los pocillos 6 veces con TBST. Se lavó la placa
de nuevo antes de la adición de diclorhidrato de
3,3',5,5'-tetrametilbencidina. Tras la producción de
color por la reacción, se leyeron los valores de absorbancia a 450
nm a partir de los pocillos tratados con lisado o solamente con
tampón de lisis, y se representó gráficamente la señal corregida con
el nivel de fondo como una función de la concentración de ligando
utilizado para la estimulación.
Se sometió a prueba una serie de diluciones de
medio condicionado, y se detectó neublastina funcional con un
perfil similar a un lote previamente demostrado de neublastina
expresada, purificada y replegada a partir de E. coli
(figura 16).
Pueden producirse los oligonucleótidos
apropiados según el método descrito en el ejemplo 9, para clonar una
secuencia de ADN que codifica para una neublastina madura (es
decir, un fragmento 113 C-terminal de neublastina
de longitud completa). Puede fusionarse una secuencia de ADN que
codifica para un péptido señal de albúmina de rata o de hormona de
crecimiento humana a la secuencia de ADN que codifica para un
polipéptido de neublastina madura, tal como se describió en el
ejemplo 10. Puede transfectarse la secuencia de ADN en una célula
eucariota, por ejemplo, una célula CHO, para producir una
neublastina madura secretada.
En la medida en que las publicaciones y patentes
o solicitudes de patente mencionadas en el presente documento
contradicen la descripción contenida en la memoria descriptiva, se
pretende que la memoria descriptiva reemplace y/o tome precedencia
sobre cualquier material contradictorio de este tipo.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(Secuencias pasan a página
siguiente)
<110> NsGene A/S
\hskip1cm Biogen Idec MA Inc.
\hskip1cm Grønborg, Mette
\hskip1cm Wahlberg, Lars
\hskip1cm Tornøe, Jens
\hskip1cm Kusk, Philip
\hskip1cm Pederson, Nels E.
\hskip1cm Sisk, William P.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Secreción mejorada de
neublastina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<130> P 951 PC00
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 82
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn versión 3.1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\hskip1cm31
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Macaca mulatta
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\hskip1cm32
\hskip1cm33
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Callithrix jacchus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\hskip1cm34
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus musculus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\hskip1cm35
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sus scrofa
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\hskip1cm36
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Rattus norvegicus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\hskip1cm37
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 478
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> IgSP murino - NBN113 humana
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> Intrón
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (47)..(125)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> exón
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(46)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> exón
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (126)..(478)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\hskip1cm38
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 399
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> IgSP murino - NBN113 humana
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(399)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido señal
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(57)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> IgSP murino
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica diversa
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (58)..(396)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Neublastina 113 humana
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm39
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 132
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> IgSP murino - NBN113 humana
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica diversa
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (58)..(396)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Neublastina 113 humana
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\hskip1cm40
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 220
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica diversa
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Neublastina humana de longitud
completa
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> señal
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(39)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> PROPEP
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (40)..(80)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (81)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
\hskip1cm41
\hskip1cm42
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 224
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus musculus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(39)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> PROPEP
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (40)..(80)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (81)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
\hskip1cm43
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 224
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Rattus norvegicus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(39)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> PROPEP
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (40)..(80)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (81)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm44
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 13
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 116
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm45
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 113
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 14
\hskip1cm46
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 119
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus musculus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 15
\hskip1cm47
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 116
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus musculus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 16
\hskip1cm48
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 116
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Rattus norvegicus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 17
\hskip1cm49
\hskip1cm50
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 113
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Rattus norvegicus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 18
\hskip1cm51
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 104
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 19
\hskip1cm52
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<210> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 99
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<212> PRT
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<213> Homo sapiens
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 20
\hskip1cm53
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<210> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 140
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<212> PRT
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<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 21
\hskip1cm54
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 106
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<212> PRT
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<213> Homo sapiens
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<400> 22
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\hskip1cm55
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 102
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<212> PRT
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<213> Homo sapiens
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 23
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm56
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<210> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 39
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<212> PRT
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<213> Homo sapiens
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 24
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm57
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 179
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<212> PRT
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<213> secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Deltapro-NBN140
humana
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> señal
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<222> (1)..(39)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
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<222> (40)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
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<210> 26
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<211> 152
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<212> PRT
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<213> secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Deltapro-NBN113
humana
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(39)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
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<222> (40)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 26
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm59
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 27
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 145
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<212> PRT
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<213> secuencia artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Deltapro-NBN106
humana
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> señal
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(39)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
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<222> (40)..()
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<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 27
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<210> 28
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<211> 143
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<212> PRT
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<213> secuencia artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Deltapro-NBN104
humana
\newpage
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<400> 28
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\hskip1cm61
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<210> 29
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 141
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Deltapro-NBN102
humana
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(39)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
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<222> (40)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 29
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\hskip1cm62
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<210> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 138
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> secuencia artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Deltapro-NBN99
humana
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(39)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (40)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 30
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm63
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 31
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 159
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> IgSP murino - NBN140 humana
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
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<222> (20)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 31
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm64
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 32
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 132
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> IgSP murino - NBN113 humana
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 32
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm65
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 33
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 125
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> IgSP murino - NBN106 humana
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 33
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm66
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 34
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 123
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<212> PRT
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<213> secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> IgSP murino - NBN1104 humana
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 34
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm67
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 35
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 121
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> IgSP murino - NBN102 humana
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 35
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm68
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 118
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> IgSP murino - NBN99 humana
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 36
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm69
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Rattus rattus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 37
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm70
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 38
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 158
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Péptido señal de albúmina de rata -
NBN140
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(18)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (19)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 38
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm71
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 131
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Péptido señal de albúmina de rata -
NBN113
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(18)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (19)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 39
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm72
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 124
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Péptido señal de albúmina de rata -
NBN106
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(18)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (19)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 40
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm73
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 122
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Péptido señal de albúmina de rata -
NBN104
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(18)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (19)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 41
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm74
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 120
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Péptido señal de albúmina de rata -
NBN102
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(18)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (19)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 42
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm75
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 43
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 117
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Péptido señal de albúmina de rata -
NBN99
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(18)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (19)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 43
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm76
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 44
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Péptido señal de albúmina de rata
modificado
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 44
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm77
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 45
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 159
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Péptido señal de albúmina de rata
modificado - NBN140
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 45
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm78
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 46
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 132
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Péptido señal de albúmina de rata
modificado - NBN113
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 46
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm79
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 47
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 125
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Péptido señal de albúmina de rata
modificado - NBN106
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 47
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm80
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 48
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 123
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Péptido señal de albúmina de rata
modificado - NBN104
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 48
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm81
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 49
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 121
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Péptido señal de albúmina de rata
modificado - NBN102
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 49
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm82
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 50
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 118
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Péptido señal de albúmina de rata
modificado - NBN99
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(19)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 50
\hskip1cm83
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 51
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 26
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 51
\hskip1cm84
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 52
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 166
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> SP de hormona de crecimiento humana
- NBN140
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(26)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (27)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 52
\hskip1cm85
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 53
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 139
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> SP de hormona del crecimiento
humana - NBN113
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(26)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (27)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 53
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm86
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 54
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 132
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> SP de hormona del crecimiento
humana - NBN106
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(26)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (27)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 54
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm87
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 55
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 130
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> SP de hormona del crecimiento
humana - NBN104
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(26)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (27)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 55
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm88
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 56
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 128
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> SP de hormona del crecimiento
humana - NBN102
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(26)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido_mat
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (27)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 56
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm89
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 57
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 125
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> SP de hormona del crecimiento
humana - NBN99
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SEÑAL
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(26)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> mat_péptid
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (27)..()
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 57
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm90
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 58
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 312
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica diversa
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia de nucleótidos de
NBN104
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 58
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm91
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 59
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 312
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia de nucleótidos de NBN104
sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 59
\hskip1cm92
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 60
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 303
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia dentro de
pNBN026-35 que codifica para NBN99
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 60
\hskip1cm93
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 61
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 426
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> SP sintético - NBN104 sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 61
\hskip1cm94
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 62
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 142
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia de aminoácidos de SP
sintético - NBN104 sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 62
\hskip1cm95
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 63
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 432
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Péptido señal de NBN - NBN104
sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 63
\hskip1cm96
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 64
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 143
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia de péptido señal de NBN -
NBN104 sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 64
\hskip1cm97
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 65
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 369
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Péptido señal de albúmina - NBN104
sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 65
\hskip1cm98
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 66
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 122
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia de péptido señal de
albúmina - NBN104 sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 66
\hskip1cm99
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 67
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 662
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia de GHSP con intrón -
NBN104 sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 67
\hskip1cm100
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 68
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 130
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia de
GHSP-NBN104 sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 68
\hskip1cm101
\hskip1cm102
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 69
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 372
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia del péptido señal de
albúmina modificado - secuencia sintética de NBN104
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 69
\hskip1cm103
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 70
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 123
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia de péptido señal de
albúmina de rata modificado - NBN104 sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 70
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm104
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 71
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 81
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligonucleótido sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 71
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm105
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 72
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 81
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligonucleótido sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 72
\hskip1cm106
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 73
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 81
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligonucleótido sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 73
\hskip1cm107
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 74
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 81
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligonucleótido sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 74
\hskip1cm108
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 75
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 81
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligonucleótido sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 75
\hskip1cm109
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 76
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 78
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligonucleótido sintético
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 76
\hskip1cm110
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 77
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 55
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligonucleótido sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 77
\hskip1cm1100
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 78
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 61
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligonucleótido sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 78
\hskip1cm111
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 79
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 35
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligonucleótido sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 79
\hskip1cm1101
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 80
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 54
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligonucleótido sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 80
\hskip1cm1102
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 81
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 55
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligonucleótido sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 81
\hskip1cm1103
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 82
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 492
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia del ácido nucleico
deltapro-113 humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 82
\hskip1cm112
Claims (59)
1. Método para producir un polipéptido de
neublastina biológicamente activo, que comprende cultivar una célula
que comprende un vector de expresión que comprende un ácido
nucleico que comprende una secuencia promotora operativamente unida
a una secuencia de nucleótidos que codifica para un péptido señal y
un polipéptido de neublastina, en el que dicha secuencia de
nucleótidos no codifica para una pro-región de
neublastina, y en el que dicho péptido señal es un péptido señal de
inmunoglobulina, un péptido señal de TGF-beta, un
péptido señal de GDF, un péptido señal de IGF, un péptido señal de
BMP, un péptido señal de neurotrofina, un péptido señal de PDGF, un
péptido señal de EGF, un péptido señal de insulina, un péptido señal
de ADH, un péptido señal de LH, un péptido señal de FSH, un péptido
señal de ACTH, un péptido señal de MSH, un péptido señal de TSH, un
péptido señal de DHEA, un péptido señal de interleucina, un péptido
señal de neurturina, un péptido señal de GDNF, un péptido señal de
persefina, un péptido señal de NGF, un péptido señal que es el
péptido señal contenido en SEQ ID NO:70, o un péptido señal de
neublastina nativa.
2. Método según la reivindicación 1, en el que
el péptido señal es un péptido señal heterólogo.
3. Método según la reivindicación 1, en el que
el péptido señal es un péptido señal de mamífero.
4. Método según la reivindicación 3, en el que
el péptido señal es un péptido señal humano, un péptido señal de
rata, un péptido señal de ratón, un péptido señal porcino, un
péptido señal de simio, un péptido señal canino, un péptido señal
felino, un péptido señal bovino o un péptido señal equino.
5. Método según la reivindicación 1, en el que
el péptido señal es un péptido señal de inmunoglobulina.
6. Método según la reivindicación 5, en el que
el péptido señal de inmunoglobulina se selecciona del grupo que
consiste en IgSP de ratón de SEQ ID NO 4, IgSP de rata de SEQ ID NO
6, IgSP porcino de SEQ ID NO 5, IgSP de simio de SEQ ID NO 2 ó 3 e
IgSP humano de SEQ ID NO 1.
7. Método según la reivindicación 6, en el que
el IgSP es IgSP de ratón de SEQ ID NO 4.
8. Método según la reivindicación 6, en el que
el IgSP es IgSP humano de SEQ ID NO 1.
9. Método según la reivindicación 1, en el que
el péptido señal es un péptido señal de neublastina nativa
humana.
10. Método según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que el polipéptido de neublastina
se selecciona del grupo que consiste en NBN madura seleccionada de
neublastina que tiene una secuencia identificada por los
aminoácidos 1-140 de SEQ ID No 10, o los aminoácidos
1-144 de SEQ ID No 11 ó 12, SEQ ID No 13, 14, 15,
16, 17 ó 18, NBN truncada en el extremo N-terminal,
NBN mutada, o NBN mutada y N-truncada.
11. Método según la reivindicación 10, en el que
el polipéptido de neublastina es una NBN madura seleccionada del
grupo que consiste en neublastina que tiene una secuencia
identificada por SEQ ID No 13, 14, 15, 16, 17 ó 18.
12. Método según la reivindicación 11, en el que
el polipéptido de neublastina es 113NBN madura humana de SEQ ID No
14.
13. Método según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores 1-10, en el que el
polipéptido de neublastina se selecciona del grupo que consiste en
los 116 aminoácidos C-terminales de neublastina
humana, los 115 aminoácidos C-terminales de
neublastina humana, los 114 aminoácidos C-terminales
de neublastina humana, los 113 aminoácidos
C-terminales de neublastina humana, los 112
aminoácidos C-terminales de neublastina humana, los
111 aminoácidos C-terminales de neublastina humana,
los 110 aminoácidos C-terminales de neublastina
humana, los 109 aminoácidos C-terminales de
neublastina humana, los 108 aminoácidos C-terminales
de neublastina humana, los 107 aminoácidos
C-terminales de neublastina humana, los 106
aminoácidos C-terminales de neublastina humana, los
105 aminoácidos C-terminales de neublastina humana,
los 104 aminoácidos C-terminales de neublastina
humana, los 103 aminoácidos C-terminales de
neublastina humana, los 102 aminoácidos C-terminales
de neublastina humana, los 101 aminoácidos
C-terminales de neublastina humana, los 100
aminoácidos C-terminales de neublastina humana y los
99 aminoácidos C-terminales de neublastina
humana.
14. Método según la reivindicación 1, en el que
el polipéptido de neublastina se selecciona del grupo que consiste
en neublastina truncada en el extremo N-terminal con
los 106, 104, 102 ó 99 aminoácidos C-terminales de
SEQ ID NO 10.
15. Método según la reivindicación 1, en el que
el polipéptido de neublastina se selecciona del grupo que consiste
en los 116 aminoácidos C-terminales de neublastina
humana, los 113 aminoácidos C-terminales de
neublastina humana y los 104 aminoácidos
C-terminales de neublastina humana.
16. Método según la reivindicación 10, en el que
la neublastina truncada en el extremo N-terminal
tiene la secuencia de aminoácidos de SEQ ID No 19.
17. Método según la reivindicación 10, en el que
la neublastina truncada en el extremo N-terminal
contiene los 99 aminoácidos de SEQ ID NO 20.
18. Método según la reivindicación 1, en el que
el polipéptido de neublastina comprende una secuencia de aminoácidos
derivada de los aminoácidos 8-113 de SEQ ID No. 14,
en el que el polipéptido variante de neublastina incluye una o más
de las sustituciones de aminoácidos seleccionadas del grupo que
consiste en: un aminoácido distinto de arginina en la posición 14
en la secuencia de aminoácidos de dicho polipéptido variante, un
aminoácido distinto de arginina en la posición 39 en la secuencia
de aminoácidos de dicho polipéptido variante, un aminoácido
distinto de arginina en la posición 68 de dicho polipéptido variante
y un aminoácido distinto de asparagina en la posición 95 de dicho
polipéptido variante, en el que las posiciones de dichos aminoácidos
están numeradas según la secuencia polipeptídica de SEQ ID No.
14.
19. Método según la reivindicación 18, en el que
dicha sustitución en la posición 14, 39 ó 68 es lisina.
20. Método según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que el vector es un plásmido.
21. Método según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores 1-19, en el que el
vector es un vector viral.
22. Método según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que el vector es un vector de
expresión en mamíferos.
23. Método según la reivindicación 21, en el que
el vector es una partícula de lentivirus de replicación
defectuosa.
24. Método según la reivindicación 23, en el que
dicha partícula de vector se produce a partir de un vector
lentiviral que comprende una LTR lentiviral en 5', un sitio de
unión a ARNt, una señal de empaquetamiento, un promotor
operativamente unido a una señal polinucleotídica que codifica para
dicho péptido señal y dicho péptido de neublastina, un origen de
síntesis de la segunda hebra de ADN y una LTR lentiviral en 3'.
25. Método según la reivindicación 21, en el que
el vector se selecciona del grupo que consiste en retrovirus, tales
como VIH, VIS, VIF, VAIE, VAA, adenovirus, herpesvirus y VLMMo.
26. Método según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que el promotor se selecciona del
grupo que consiste en: promotor de ubiquitina, promotor de CMV,
promotor de JeT, promotor de SV40, promotor del factor de
elongación 1 alfa, beta actina de pollo, PGK y
MT-1.
27. Método según la reivindicación 25, en el que
el promotor es un promotor inducible/represible, tal como:
Tet-On, Tet-Off, promotor inducible
por rapamicina, Mx1 y RU486.
28. Método según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que la célula es una célula
huésped de mamífero.
29. Método según la reivindicación 28, en el que
dicho mamífero se selecciona del grupo que consiste en roedor,
conejo, perro, gato, cerdo, mono y ser humano.
30. Método según la reivindicación 28,
seleccionándose dicha célula del grupo que consiste en CHO, HEK293,
COS, PC12, HiB5, RN33b, células neuronales, células fetales,
ARPE-19, células de fibroblastos inmortalizados,
C2C12, HeLa, HepG2, células del epitelio pigmentario de la retina
(RPE), células estriatales, neuronas, astrocitos e
interneuronas.
31. Método según la reivindicación 30, en el que
la célula es una célula CHO.
32. Ácido nucleico que comprende una secuencia
polinucleotídica que codifica para un péptido señal y un polipéptido
de neublastina, en el que dicha secuencia polinucleotídica no
codifica para una pro-región de neublastina, siendo
dicho péptido señal y dicho polipéptido de neublastina tal como se
definieron en cualquiera de las reivindicaciones
1-19.
1-19.
33. Ácido nucleico según la reivindicación 32,
que comprende a) la secuencia de nucleótidos de SEQ ID NO: 64, 66 ó
68, o b) una secuencia de nucleótidos que codifica para el
polipéptido de SEQ ID NO: 65, 67 ó 69.
34. Ácido nucleico según la reivindicación 32 ó
33, en el que la secuencia de nucleótidos se ha optimizado para su
expresión en un huésped mamífero.
35. Vector de expresión que comprende el ácido
nucleico según cualquiera de las reivindicaciones 32 34.
36. Composición farmacéutica que comprende el
vector según la reivindicación 35 y uno o más adyuvantes,
excipientes, vehículos y/o diluyentes farmacéuticamente
aceptables.
37. Célula huésped aislada transducida o
transfectada con el vector según la reivindicación 35.
38. Célula según la reivindicación 37, siendo la
célula una célula de mamífero.
39. Célula de mamífero según la reivindicación
38, en la que la célula es capaz de secretar neublastina o un
equivalente funcional de la misma en cantidades en exceso de 500
ng/10^{6} células/24 horas.
40. Célula de mamífero según la reivindicación
38, seleccionándose del grupo que consiste en CHO, HEK293 COS,
PC12, HiB5, RN33b, células de fibroblastos inmortalizados, C2C12,
HeLa, HepG2, líneas celulares de RPE y células
ARPE-19.
41. Célula de mamífero según la reivindicación
39, seleccionándose del grupo que consiste en CHO, HEK293, COS y
ARPE-19.
42. Célula de mamífero según la reivindicación
38, seleccionándose del grupo que consiste en células de RPE,
células neuronales, células precursoras neuronales, células madre y
células fetales.
43. Célula de mamífero según la reivindicación
38, estando unida a una matriz de soporte.
44. Línea celular de empaquetamiento capaz de
producir una partícula de vector infecciosa, comprendiendo dicha
partícula de vector un genoma derivado de retrovirus que comprende
una LTR retroviral en 5', un sitio de unión a ARNt, una señal de
empaquetamiento, un promotor operativamente unido a una secuencia
polinucleotídica que codifica para un péptido señal y un
polipéptido de neublastina, en la que dicha secuencia de nucleótidos
no codifica para una pro-región de neublastina y
siendo dicho péptido señal y péptido de neublastina según cualquiera
de las reivindicaciones 1-19, y un origen de
síntesis de la segunda hebra de ADN y una LTR retroviral en 3'.
45. Línea celular de empaquetamiento según la
reivindicación 44, en la que la partícula de vector es de
replicación defectuosa.
46. Línea celular de empaquetamiento según la
reivindicación 44, en la que el genoma se deriva de lentivirus y
las LTRs son lentivirales.
47. Dispositivo implantable de cultivo celular,
comprendiendo el dispositivo:
- i.
- una membrana semipermeable que permite la difusión de un factor de crecimiento a su través; y
- ii.
- al menos una célula huésped aislada según la reivindicación 37.
48. Dispositivo según la reivindicación 47, en
el que la membrana semipermeable es inmunoaislante.
49. Dispositivo según la reivindicación 47, en
el que la membrana semipermeable es microporosa.
50. Dispositivo según la reivindicación 47,
comprendiendo el dispositivo adicionalmente una matriz dispuesta
dentro de la membrana semipermeable.
51. Dispositivo según la reivindicación 47,
comprendiendo el dispositivo adicionalmente un punto de anclaje.
52. Uso del vector según la reivindicación 35 o
el dispositivo según cualquiera de las reivindicaciones 47 a 51
como medicamento.
53. Uso del vector según la reivindicación 35,
para la preparación de un medicamento para el tratamiento de un
trastorno del sistema nervioso.
54. Uso según la reivindicación 53, en el que el
trastorno del sistema nervioso se selecciona del grupo que consiste
en neuropatía periférica incluyendo dolor neuropático, lesión de la
médula espinal, avulsión de la raíz espinal, tic doloroso y
causalgia.
55. Uso según la reivindicación 52, en el que el
medicamento es para el tratamiento de una enfermedad ocular, tal
como heridas y úlceras corneales, y retinopatías.
56. Uso del vector según la reivindicación 35,
para la preparación de un medicamento para el tratamiento de un
trastorno del SNC.
57. Uso según la reivindicación 56, en el que el
trastorno del SNC es una enfermedad neurodegenerativa.
58. Uso según la reivindicación 57, en el que la
enfermedad neurodegenerativa es neuropatía periférica incluyendo
dolor neuropático.
59. Polipéptido que comprende un péptido señal y
un polipéptido de neublastina, careciendo el polipéptido de una
pro-región de neublastina, siendo dicho péptido
señal y dicho polipéptido de neublastina según cualquiera de las
reivindicaciones 1-19.
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