ES2311875T3 - Composicion vaccinea mezclada con una alquilfosfatidilcolina. - Google Patents
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Abstract
Composición farmacéutica que comprende al menos un antígeno vacunal distinto de un codificador de ADN, caracterizada porque comprende además al menos un derivado de éster fosfórico de fosfatidilcolina, con la estructura: (Ver fórmula) en la que: - R1 es un alquilo inferior, que tiene a lo sumo 5 átomos de carbono, - R2 y R3 son iguales o diferentes y cada uno puede representar cadenas hidrocarbonadas lineales que tienen de 13 a 21 átomos de carbono.
Description
Composición vaccínea mezclada con una
alquilfosfatidilcolina.
La presente invención se refiere al campo de las
vacunas y más en particular a vacunas con adyuvantes. En particular,
la invención se refiere a composiciones farmacéuticas que comprenden
al menos un antígeno vacunal y al menos un derivado del éster
fosfórico de fosfatidilcolina.
Según la técnica anterior, es conocido el deseo
de aumentar u orientar la respuesta inmunitaria inducida por los
antígenos presentes en una vacuna, mediante adyuvantes. Esto puede
ser deseable debido a que el antígeno, administrado solo, no es
suficientemente inmunógeno, debido especialmente a su muy alto grado
de pureza o debido a que se desea reducir la cantidad de antígenos
presentes en la vacuna o el número de recuerdos que hay que efectuar
o incluso debido a que se desea prolongar la duración de la
protección conferida por la vacuna. A veces, se trata de modificar
cualitativamente más que cuantitativamente la respuesta
inducida.
Aunque la técnica anterior abunda en
proposiciones de productos que pueden ser utilizados como
adyuvantes, se observa que la mayoría de las vacunas con adyuvantes
que son objeto de una autorización de lanzamiento al mercado en la
medicina humana, son adyuvantes mediante una sal de aluminio o una
emulsión.
O existe una demanda real de disponer de nuevos
adyuvantes, pues las cualidades permitirán modificar la respuesta
inmunitaria mientras se conservan las cualidades de una
administración con toda seguridad.
Por otro lado, en otro campo que es el de la
transinfección, se ha propuesto en el estado de la técnica utilizar
lípidos catiónicos. Así, por ejemplo, en la publicación titulada
"Modulation of Cellular Immune Response Against Hepatitis C
Virus Nonstructural Protein 3 by Cationic Liposome Encapsulated DNA
Immunization" (Jiao X et al., Hepatology (2.003)
37(2): 452-460), se ensaya en diversos
lípidos catiónicos que constituyen liposomas, su capacidad para
transportar el ADN plasmídico de interés hacia las células. Esta
publicación tiene interés en el campo de las vacunas debido a que el
ADN transinfectado codifica los antígenos contra los que se desea
una respuesta del sistema inmunitario. Para que la reacción del
sistema inmunitario sea buena, en primer lugar el antígeno se tiene
que expresar y así el ADN es "liberado" en las mejores
condiciones en las células capaces de expresarlo. El papel que
juegan los agentes de transinfección que sirven de "vehículo"
al ADN, es diferente del papel jugado por un adyuvante que acompaña
a un antígeno vacunal presente en una composición farmacéutica. Los
resultados obtenidos por los autores de esta publicación demuestran
que la respuesta obtenida es más importante cuando el ADN es
transportado mediante liposomas que cuando el ADN se inyecta
"desnudo"; sin embargo, dependiendo de la naturaleza de los
lípidos utilizados para formar los liposomas, las respuestas
obtenidas varían de naturaleza e intensidad.
A pesar de la abundante bibliografía sobre los
diversos productos que se pueden utilizar como adyuvantes, siempre
existe la necesidad de disponer de un producto que se pueda utilizar
sin riesgo para el organismo al que se administra y que permita
incrementar y/o modificar la respuesta del sistema inmunitario en
comparación con la del antígeno vacunal con el que se
administra.
Es uno de los objetivos de la invención proponer
dicho producto.
Otro objetivo de la invención es proponer un
adyuvante vacunal fácilmente disponible, cuyo coste sea tal que se
pueda añadir a las composiciones vacunales sin aumentar el precio de
coste de manera prohibitiva.
Para lograr estos objetivos, la presente
invención tiene por objeto una composición farmacéutica que
comprende al menos un antígeno vacunal distinto de un ADN
codificador, caracterizado por que comprende además al menos un
derivado de éster fosfórico de fosfatidilcolina con la
estructura:
en la
que:
- -
- R_{1} es un alquilo inferior, que tiene a lo sumo 5 átomos de carbono,
- -
- R_{2} y R_{3} son iguales o diferentes y cada uno puede representar cadenas hidrocarbonadas lineales que tienen de 13 a 21 átomos de carbono.
Según un modo de realización particular, R_{1}
representa el radical etilo; así, la degradación de este derivado en
el organismo al que se habrá administrado producirá productos
biocompatibles: fosfatidilcolinas y etanol.
Según un modo particular de la invención,
R_{2} y R_{3} se eligen entre los radicales que proceden de los
ácidos grasos siguientes: ácido mirístico, ácido palmítico, ácido
esteárico, ácido oleico.
Según un modo particularmente ventajoso, los dos
R_{2} y R_{3} son iguales y representan el radical del ácido
oleico. Tal producto que puede ser totalmente preparado por síntesis
química presenta todas las garantías de seguridad y de
reproducibilidad deseadas para un uso farmacéutico.
La invención tiene igualmente por objeto la
utilización de un derivado de éster fosfórico de fosfatidilcolina
con la estructura:
en la
que:
- -
- R_{1} es un alquilo inferior, que tiene a lo sumo 5 átomos de carbono,
- -
- R_{2} y R_{3} son iguales o diferentes y cada uno puede representar cadenas hidrocarbonadas lineales que tengan de 13 a 21 átomos de carbono,
para la preparación de un adyuvante
vacunal.
Otras numerosas ventajas de la presente
invención aparecerán con la lectura de la descripción detallada que
aparece a continuación.
La presente invención se refiere a una
composición farmacéutica que comprende al menos un antígeno vacunal.
Por antígeno vacunal, se entiende un antígeno susceptible de inducir
una respuesta del sistema inmunitario cuando se administra al hombre
o a un animal. Esta respuesta del sistema inmunitario se puede
traducir en una producción de anticuerpos o una activación de
ciertas células, especialmente las células que presentan antígenos
(ej: las células dendríticas), linfocitos T, linfocitos B.
La composición farmacéutica puede ser una
composición considerada profiláctica o considerada terapéutica o
incluso las dos.
Se puede administrar por todas las vías
utilizadas habitualmente o preconizadas para las vacunas: vía
parenteral, vía mucosal y se presenta de diversas formas: líquido
inyectable o pulverizable, formulación liofilizada o secada por
atomización o por el aire,... etc. Se puede administrar mediante una
jeringa o mediante un inyector sin aguja para inyección
intramuscular, subcutánea o intradérmica. También se puede
administrar gracias a un nebulizador capaz de liberar un polvo seco
o un aerosol líquido al nivel de las mucosas, sean nasales,
pulmonares, vaginales o
rectales.
rectales.
Los antígenos vacunales utilizados en las
composiciones farmacéuticas según la presente invención son
antígenos "directos", es decir que no se trata de ADN
codificador para estos antígenos, sino los propios antígenos; se
puede tratar de un germen entero o solamente de una parte de este
germen; así se pueden citar especialmente entre los antígenos
utilizados habitualmente en las vacunas:
- -
- polisacáridos que estén solos o conjugados con elementos portadores, tales como las proteínas portadoras,
- -
- gérmenes enteros que vivan atenuados,
- -
- gérmenes inactivados,
- -
- péptidos y proteínas recombinantes,
- -
- glicoproteínas, glucolípidos, lipopéptidos,
- -
- péptidos sintéticos,
- -
- gérmenes fraccionados en el caso de las vacunas denominadas vacunas "divididas".
\vskip1.000000\baselineskip
Estos antígenos son los antígenos utilizados o
susceptibles de ser utilizados para el tratamiento o la prevención
de diversas enfermedades tales como por ejemplo: difteria, tétanos,
polio, rabia, tosferina, hepatitis A, B, C, fiebre amarilla, fiebre
tifoidea, varicela, sarampión, paperas, rubeola, encefalitis
japonesa, meningitis, infecciones por pneumococos, infecciones por
rotavirus, SIDA, tumores malignos, tuberculosis, enfermedad de Lyme,
infecciones por RSV, herpes, afecciones bacterianas provocadas por
Chlamydia, Neisseria gonorrheae, Streptococcus pneumoniae,
Moraxella catarrhalis, Staphilococcus aureus o Haemophilus
influenza tipo B, malaria, leshmaniosis, listerio-
sis,... etc.
sis,... etc.
La composición farmacéutica según la invención
puede ser una composición destinada a la inmunización contra un solo
patógeno o cáncer, es decir que comprende uno o varios antígenos de
un solo patógeno o cáncer o puede ser una composición destinada a la
inmunización contra diversos patógenos o tumores malignos (se habla
entonces de combinación vacunal).
La acción del derivado de éster fosfórico de la
fosfatidilcolina utilizada es ser adyuvante en la composición
vacunal, es decir incrementar o modificar la respuesta del sistema
inmunitario del organismo al que se administra la composición
vacunal, con respecto a la respuesta que se obtendría en ausencia de
dicho compuesto. En particular, se puede tratar de un aumento de la
respuesta humoral o de la respuesta celular o de ambas. La acción
puede ser igualmente no un aumento de la respuesta sino una
orientación diferente de la respuesta inducida: por ejemplo, la
orientación hacia una respuesta celular más bien que una respuesta
humoral, producción de ciertas citocinas más que de otras,
producción de ciertos tipos o subtipos de anticuerpos más que de
otros, estimulación de ciertas células más que de otras, etc., ...
La acción de un adyuvante puede consistir igualmente en aumentar la
duración de la respuesta inmunitaria con el tiempo. También se puede
tratar de permitir disminuir el número de administraciones
necesarias para obtener una protección del individuo inmunizado o
incluso disminuir la cantidad de antígeno contenida en la dosis
administrada.
La acción adyuvante del derivado según la
invención se puede obtener bien cuando se asocia al antígeno o a los
antígenos de la composición farmacéutica durante su administración,
es decir, cuando está presente directamente en la composición
farmacéutica o incluso cuando se administra por separado el antígeno
o los antígenos en que se quiere modificar el poder inmunógeno. Se
prefiere utilizar sin embargo en la misma composición farmacéutica
que el antígeno o los antígenos que se tienen que administrar.
Para los fines de la presente invención, se
entiende por fosfatidilcolina los fosfolípidos constituidos por una
molécula de glicerol, 2 ácidos grasos, un grupo fosfato y la colina.
Estos compuestos también denominados lecitinas, varían en función de
sus ácidos grasos. Para las necesidades de la invención, los 2
ácidos grasos R_{2} y R_{3} pueden ser iguales o diferentes,
saturados o insaturados; se utilizan preferentemente
fosfatidilcolinas que proceden de la esterificación de ácidos grasos
que tienen al menos 13 átomos de carbono y especialmente los ácidos
siguientes: mirístico, palmítico, esteárico u oleico.
Por radical alquilo inferior R_{1}, se
entiende un radical alquilo que tiene a lo sumo 5 átomos de carbono.
En efecto, según la invención, el derivado de fosfatidilcolina es un
éster fosfórico de una fosfatidilcolina; se puede tratar de un éster
que proceda de la reacción de la fosfatidilcolina y metanol, etanol,
propanol, butanol o pentanol; se han obtenido buenos resultados en
particular con un éster que procede de etanol.
Los compuestos que convienen para los fines de
la invención se pueden obtener por síntesis química completa o
incluso por esterificación de fosfatidilcolinas naturales, tales
como la fosfatidilcolina extraída de la soja o los huevos. Son los
compuestos que se pueden utilizar en forma de sal farmacéuticamente
aceptable y especialmente cloruro. Entre los compuestos que
convienen particularmente se pueden citar:
1,2-dimiristoil-sn-glicero-3-etilfosfocolina,
1,2-dipalmitoil-sn-glicero-3-etilfosfocolina,
1,2-diestearoil-sn-glicero-3-etilfosfocolina,
1,2-dioleoil-sn-glicero-3-etilfosfocolina
o incluso
1,2-palmitoil-oleoil-sn-glicero-3-etilfosfocolina,
disponibles especialmente en la Compañía Avanti® Polar Lipids Inc.
Estos compuestos están disponibles en forma de polvo o en disolución
en
cloroformo.
cloroformo.
Según la invención, los compuestos se dispersan
en agua o en un tampón acuoso para formar una suspensión que se
mezcla después con una disolución que comprende antígenos vacunales
o la suspensión que contiene derivado de éster fosfórico de
fosfatidilcolina se utiliza para recoger un liofilizado que
comprenda los antígenos vacunales. De manera alternativa, es posible
dispersar o hidratar el derivado de éster de fosfatidilcolina con
agua o un tampón que comprenda ya al menos un antígeno vacunal.
Los derivados de ésteres fosfóricos de
fosfatidilcolina utilizados pueden formar entonces vesículas
lipídicas o liposomas, cuyo tamaño esté comprendido ventajosamente
entre 50 y 220 nm.
Igualmente es posible utilizar adyuvantes según
la invención en una composición que comprenda una emulsión.
Los ejemplos que siguen ilustran de manera no
limitante, ejemplos de realización de la presente invención.
\vskip1.000000\baselineskip
Se preparan composiciones vacunales que
comprenden como antígeno vacunal, una proteína recombinante
susceptible de ser utilizada en una vacuna contra el SIDA; se trata
de la proteína TAT III B destoxificada que se obtiene por expresión
en E. coli y purificación por diferentes etapas de
cromatografía, después inactivación química así como se describe en
la solicitud de patente internacional WO99/33346, donde se
identifica con la terminología Tat carboximetilada.
Las composiciones se preparan de la manera
descrita más adelante.
Se dispone de polvo de cloruro de 1,2
dioleoil-sn-glicero-3
etilfosfocolina (etil FC) suministrado por la compañía AVANTI® POLAR
LIPIDS Inc. que se solubiliza en una mezcla de cloroformo/metanol
4/1 para obtener una concentración de 2 mg/ml.
Se introducen en un matraz de vidrio 3,18 ml de
la disolución obtenida, que son 6,36 mg de etil FC; se elimina el
disolvente con ayuda de un evaporador rotatorio hasta la obtención
de una película lipídica regular en las paredes del matraz. Esta
película se seca a continuación a alto vacío para eliminar cualquier
traza de disolvente residual
Se vuelve a hidratar a continuación la película
con 4 ml de agua destilada, a 40ºC, utilizando un baño de
ultrasonidos. La dispersión de las vesículas así obtenidas son
extruidas a continuación a través de diversas membranas de
policarbonato (0,8 \mum; 0,4 \mum y 0,2 \mum) montadas sobre
una Extrusora (Lipex Biomembranes, Inc.) termostatizadas a 50ºC, con
presión de nitrógeno.
La suspensión liposomal obtenida entonces,
"con una concentración" de 1,59 mg/ml se mezcla volumen a
volumen con una disolución de Tat concentrada a 200 \mug/ml en
tampón TRIS 100 mmol/l, NaCl 200 mmol/l, a pH 7,4.
Se prepara igualmente una composición que
comprende solamente el antígeno TAT, sin adyuvantes.
Se obtienen así dosis de 200 \mul, cuyas
composiciones son las siguientes:
- 1)
- 20 \mug de TAT
- 2)
- 20 \mug de TAT y 159 \mug de etil FC.
Se dispone de 2 grupos de 6 ratones BALB/c,
hembras, de 8 semanas de edad, a los que se inyecta una de las
composiciones preparadas en el párrafo 1.1, por vía subcutánea, a
razón de una dosis de 200 \mul por ratón; se realizan las
inyecciones a J0 y a J21.
Se extraen muestras sanguíneas del seno
retro-orbital a J14 para la apreciación de la
respuesta primaria y a J35 para la respuesta secundaria. La
determinación de los índices IgG1 e IgG2, específicos, se efectúa
gracias a los análisis ELISA estandarizados.
Se sacrifican los ratones de J37; se les extrae
el bazo y se aíslan los esplenocitos.
Los resultados obtenidos en lo que se refiere a
las respuestas humorales, se recogen en la tabla a continuación,
donde se expresan los índices IgG en unidades arbitrarias ELISA (log
10). Para cada grupo de ratones, el valor indicado es el valor medio
geométrico de los valores obtenidos para cada uno de los
ratones.
Los resultados obtenidos muestran que las
composiciones según la invención permiten obtener una respuesta
humoral netamente superior a la obtenida en el caso en que se
administra el antígeno solo.
Se observa que el efecto adyuvante está
netamente marcado con respecto a la respuesta en IgG2a, lo que
indica una respuesta inmunitaria más bien orientada hacia una
respuesta de tipo Th1.
Para apreciar el efecto de las composiciones
farmacéuticas según la invención sobre la respuesta celular, se
efectúan recuentos de células esplénicas capaces de producir
interferón \gamma por un análisis ELISPOT. Este análisis se
realiza a la vez sobre células frescas y sobre células
reestimuladas.
Para la realización del análisis, se cultivan
células esplénicas en las placas de cultivo celular, a razón de
200.000 células por pozo, en presencia bien de medio solo bien de
antígeno TAT recombinante. Después de 16 horas de cultivo, se revela
el ELISPOT, es decir, que se cuenta el número de manchas que
corresponden a las células que segregan el interferón \gamma. Los
resultados obtenidos se recogen en las tablas más adelante; los
valores indicados son los valores medios (por grupo de ratones), las
diferencias calculadas para cada ratón entre el número de manchas
contadas por millón de células en los pozos que tienen TAT
recombinante y el número de manchas contadas por millón de células
en los pozos que no tienen más que el medio. La tabla a continuación
resume los resultados obtenidos en células frescas.
La tabla a continuación resume los resultados
obtenidos en células reestimuladas por TAT recombinante en presencia
de IL2.
Estos resultados demuestran el efecto positivo
obtenido utilizando una composición farmacéutica según la presente
invención, con la estimulación de las células CD4+.
Se preparan composiciones vacunales que
comprenden como antígeno vacunal una proteína recombinante
procedente de una glicoproteína de sobre de la cepa Towne del
Citomegalovirus (CMV) denominada gB, cuyas secuencias de nucleótidos
y proteínas se describen en la patente de EE.UU. 5.834.307. Esta
proteína recombinante se produce por una línea CHO recombinante
transinfectada por un plásmido denominado pPRgB27clv4 que contiene
un gen modificado de la gB. En efecto, para facilitar la producción
de esta proteína recombinante por la línea CHO se ha modificado
previamente el gen de la gB suprimiendo la parte del gen que
codifica la región transmembranaria de la proteína gB, que
corresponde a la secuencia de aminoácidos comprendidos entre la
Valina 677 y la Arginina 752 e introduciendo 3 mutaciones puntuales
para que haya sido suprimido el sitio de escisión que existe en la
gB nativa. En definitiva, la proteína recombinante producida por la
línea CHO recombinante corresponde a una proteína gB troncada
desprovista del sitio de escisión y de la región transmembranaria
denominada gBdTM.
La construcción del plásmido pPRgB27clv4 y la
producción de la proteína gB truncada (gBdTM) por la línea CHO
recombinante, se describen en la patente de EE.UU. 6.100.064. La
purificación de la proteína gB truncada se realiza en columna
cromatográfica de inmunoafinidad utilizando anticuerpos monoclonales
15D8 descritos por Rasmussen L et al. (J. Virol. (1.985) 55:
274-280).
Se dispone de polvo de cloruro de
1,2-diestearoil-sn-glicero-3-etilfosfocolina
(Etil DEFC) y cloruro de
1,2-dioleoil-sn-glicero-3-etilfosfocolina
(Etil DOFC), suministrados por la Compañía AVANTI® POLAR LIPIDS Inc.
Para cada uno de los productos se efectúan las operaciones
siguientes:
Se solubilizan 5 mg de polvo en 5 ml de
cloroformo/metanol 4:1 (vol/vol). Se seca la disolución en un matraz
de vidrio con ayuda de un evaporador rotatorio de manera que se deje
una película lipídica en las paredes del matraz. Se seca otra vez
esta película a alto vacío para eliminar cualquier traza de
disolvente residual, después se recoge en 2,5 ml de agua, a 60ºC,
para una concentración final de 2 mg/ml. La suspensión liposomal
resultante se homogeneiza por agitación vorticial 10 minutos, se
somete a ultrasonidos en un baño de ultrasonidos 5 minutos, después
se extruye con ayuda de un extrusor Lipex (Northern Lipids
Inc.,Vancouver, CA) termostatizado a 50ºC, en cinco pases a través
de una membrana de policarbonato de 0,2 \mum de porosidad.
Se prepara igualmente una formulación que
comprende el etil FC en emulsión.
Para ello, se solubilizan en un matraz de vidrio
25 mg de cloruro de
1,2-dioleoil-sn-glicero-3-etilfosfocolina
(Etil DOFC-Avanti Polar Lipids) con ayuda de 10 ml
de cloroformo/metanol 4:1 (vol/vol). Se seca la disolución obtenida
con ayuda de un evaporador rotatorio de manera que se deje una
película lipídica en las paredes del matraz. Esta película se seca a
continuación a alto vacío para eliminar cualquier traza de
disolvente residual.
En un vaso de precipitados, se pesan 375 mg de
Tween® 80 vegetal suministrado por la Compañía Merck y se le añaden
29,29 g de agua, se agita hasta la completa disolución del
tensioactivo.
Después, se recoge la película lipídica obtenida
en la etapa precedente por esta disolución de Tween® 80.
A esta suspensión se añaden 1.475 mg de
escualeno (Fluka) y se homogeneiza la emulsión obtenida en
Ultraturrax [(838-995 rad/s)
8.000-9.500 rpm], después en el Microfluidizador
M110 (Microfluidics, Newton MA.), 20 pases a 414 kPa (60 psi).
La concentración final en escualeno de esta
emulsión es de 5%.
Se preparan las dosis de inmunización mezclando
las formulaciones adyuvantes descritas anteriormente o de agua, a
una disolución acuosa patrón de antígeno a 160 \mug/ml de proteína
gB y tampón PBS, para obtener las dosis de 50 \mul con las
siguientes composiciones:
- 1)
- 2 \mug de gB
- 2)
- 2 \mug de gB y 50 \mug de etil DOFC,
- 3)
- 2 \mug de gB y 50 \mug de etil DEFC,
- 4)
- 2 \mug de gB, 50 \mug de etil DOFC, 1,25 mg de escualeno y 0,3 mg de Tween® 80.
Se dispone de 4 grupos de 8 ratones no
consanguíneos OF1, hembras, de 8 semanas de edad, a los que se
inyecta una de las composiciones preparadas en el párrafo 2.1, por
vía subcutánea, a razón de una dosis de 50 \mul por ratón; se
realizan las inyecciones de J0 y de J21.
Se extraen las muestras sanguíneas del seno
retro-orbital de J20 para la apreciación de la
respuesta primaria y de J34 para la respuesta secundaria. La
determinación del índice IgG1 e IgG2a, específicos, se efectúa
gracias a los análisis ELISA estandarizados.
Se sacrifican los ratones de J37; se extrae su
bazo y se aíslan los esplenocitos, que se estimulan o no con la
proteína gB recombinante.
Se efectúa entonces una determinación por
análisis ELISA de la concentración en citocinas (IL5,
IFN-\gamma y TNF-\alpha) en los
sobrenadantes de células esplénicas estimuladas durante 5 días con
la proteína gB, así como en el sobrenadante de células no
estimuladas para deducir por comparación la producción específica de
citocinas.
Los resultados obtenidos en lo que se refiere a
las respuestas humorales se recogen en la tabla a continuación,
donde se expresan los índices IgG en unidades arbitrarias ELISA (log
10).
Para cada grupo de ratones, el valor indicado es
el valor de la media geométrica de los valores obtenidos para cada
uno de los ratones.
\vskip1.000000\baselineskip
Los resultados para las citocinas se reproducen
en la tabla a continuación; los valores indicados son para cada
citocina, la diferencia en pg/ml entre la media de las cantidades de
citocinas medidas para las células reestimuladas por la proteína gB
y la media de las cantidades de citocinas medidas para las células
cultivadas en el medio solo (considerado como el ruido de fondo del
análisis); se puede considerar pues que las cantidades indicadas son
las cantidades producidas específicamente en respuesta a la
estimulación por la proteína gB.
El conjunto de los resultados producidos en este
análisis demuestra el buen efecto adyuvante de los ésteres
fosfóricos de fosfatidilcolina que tienen una gran capacidad para
aumentar la respuesta inmunitaria de tipo Th1 (aumento de los IgG2a
y del Interferón \gamma), sin inhibir sin embargo la respuesta de
tipo Th2 ya inducida por el antígeno.
Se dispone de polvo de cloruro de
1,2-dioleoil-sn-glicero-3-etilfosfocolina
(Etil DOFC) suministrado por la Compañía AVANTI® POLAR LIPIDS Inc
del que se solubilizan 5 mg en 10 ml de cloroformo/metanol 4:1
(vol/vol). Se seca la disolución obtenida en un matraz de vidrio con
ayuda de un evaporador rotatorio de manera que quede una película
lipídica sobre las paredes del matraz. Se seca otra vez esta
película a alto vacío para eliminar cualquier traza de disolvente
residual, después se recoge en 2,5 ml de agua, a 60ºC, para una
concentración final de 2 mg/ml. La suspensión liposomal resultante
se homogeneiza por agitación vorticial 10 minutos, se somete a
ultrasonidos en un baño de ultrasonidos 5 minutos, después se
extruye con ayuda de un extrusor Lipex (Northern Lipids inc,
Vancouver, CA), termostatizado a 50ºC, en un pase por membrana de
policarbonato de 0,8 \mum, después un pase por membrana de
policarbonato de 0,4 \mum y por último cinco pases a través de una
membrana de policarbonato de 0,2 \mum de
porosidad.
porosidad.
Se dispone igualmente de una disolución patrón
de antígeno constituida por la proteína gB obtenida de la manera
descrita en el ejemplo precedente, a una concentración de 160
\mug/ml.
Se mezcla la disolución de antígeno con la
suspensión de adjuvante a 2 mg/ml en las proporciones calculadas
para obtener las vacunas experimentales, que tienen por dosis de 50
\mul, las composiciones siguientes:
- 1)
- 2 \mug de gB,
- 2)
- 2 \mug de gB y 50 \mug de etil DOFC
- 3)
- 0,2 \mug de gB,
- 4)
- 0,2 \mug de gB y 50 \mug de etil DOFC.
Se dispone de 4 grupos de 8 ratones OF1, de 8
semanas.
Cada grupo de ratones recibe una de las 4
formulaciones indicadas anteriormente, por vía intradérmica.
Las inmunizaciones se realizan a J0 y a J20.
Se extraen muestras sanguíneas del seno
retro-orbital a J20 antes de la 2ª inmunización para
la apreciación de la respuesta primaria y a J35 para la respuesta
secundaria.
La determinación del índice IgG1 e IgG2a,
específicos, se efectúa gracias a los análisis ELISA
estandarizados.
Se sacrifican los ratones de J37; se extraen sus
bazos y se aíslan los esplenocitos, que se estimulan o no con la
proteína gB recombinante.
Se efectúa entonces una determinación por
análisis ELISA de la concentración en citocinas (IL5,
IFN-\gamma y TNF-\alpha) en el
sobrenadante de células esplénicas estimuladas durante 5 días con la
proteína gB, así como en el sobrenadante de células no estimuladas
para deducir por comparación la producción específica de
citocina.
Los resultados obtenidos en lo que se refiere a
las respuestas humorales se recogen en la tabla a continuación,
donde se expresan los índices IgG en unidades arbitrarias ELISA (log
10).
Para cada grupo de ratones, el valor indicado es
el valor de la media geométrica de los valores obtenidos para cada
ratón.
Los resultados para las citocinas se reproducen
en la tabla a continuación; los valores indicados son para cada
citocina, la diferencia en pg/ml entre la media de las cantidades de
citocinas medidas para las células reestimuladas por la proteína gB
y la media de las cantidades de citocinas medidas para las células
cultivadas en medio solo (considerado como el ruido de fondo del
análisis); se puede considerar pues que las cantidades indicadas son
las cantidades producidas específicamente en respuesta a la
estimulación por la proteína gB.
En este análisis, se ve que el adyuvante según
la invención es eficaz por vía intradérmica y que permite o aumentar
la respuesta inmunitaria para una misma cantidad de antígenos o
reducir la cantidad de antígenos presentes en la dosis inyectada.
Aquí, el efecto adjuvante es visible a la vez en comparación con la
respuesta del tipo Th2 (IgG1) pero también y de la misma manera muy
espectacular, en comparación con la respuesta del tipo Th1 (IgG2a,
Interferón y).
Se prepara una suspensión viral de un
coronavirus humano inactivado, en el caso del virus de SARS
(Síndrome Respiratorio Agudo Severo) obtenido por cultivo sobre
línea celular, después inactivación ; la suspensión utilizada está a
una concentración de 7,56 log CCID50 antes de inactivación; se
diluye a 1/10 para obtener una suspensión con una concentración de
6,56 log CCID50.
Se dispone de polvo de cloruro de
1,2-dioleoil-sn-glicero-3-etilfosfocolina
(Etil DOFC) suministrado por la Compañía AVANTI® POLAR LIPIDS Inc
del que se solubilizan 30 mg en 10 ml de cloroformo/metanol 4:1
(vol/vol). Se seca la disolución obtenida en un matraz de vidrio con
ayuda de un evaporador rotatorio de manera que quede una película
lipídica sobre las paredes del matraz. Se seca otra vez esta
película a alto vacío para eliminar cualquier traza de disolvente
residual, después se recoge en 5 ml de agua a 60ºC para una
concentración final de 6 mg/ml. La suspensión liposomal resultante
se homogeneiza por agitación vorticial 10 minutos, se somete a
ultrasonidos en un baño de ultrasonidos, 5 minutos, después se
extruye con ayuda de un extrusor Lipex (Northern Lipids
Inc.,Vancouver, CA) termostatizado a 50ºC, en cinco pases a través
de una membrana de policarbonato de 0,2 \mum de porosidad.
Se preparan dosis de inmunización de 200 \mul,
efectuándose las mezclas indicadas en la tabla a continuación:
Se dispone de 4 grupos de 8 ratones BALB/c, que
se inmunizan a 3 semanas de intervalo con una de las formulaciones
indicadas a continuación; las inyecciones se realizan por vía
subcutánea; las dosis inyectadas son cada vez de 200 \mul.
Las muestras sanguíneas se extraen 2 semanas
antes de cada inyección para la evaluación de respuestas anticuerpo
anti-virus SARS entero (inactivado) por dosis ELISA,
a J14 para la respuesta primaria y a J33 para la respuesta
secundaria.
Se extraen las células esplénicas a J33.
Se evalúa la respuesta celular específica del
SARS, gracias a una dosis ELISPOT de células secretoras de
Interferón-\gamma bien ex vivo, bien
después de la estimulación in vitro con el virus entero
inactivado durante 7 días. En cada caso, las células esplénicas
(ex vivo o reestimuladas in vitro) se incuban 16
horas, bien con virus entero inactivado, bien con los péptidos
18-meros combinados, cuyas secuencias están
superpuestas (sobre 10 aminoácidos) y corresponden a diferentes
antígenos del virus de SARS .
Por otra parte, se aprecia la polarización de la
respuesta celular T helper inducida, gracias a una dosis ELISA de
citocinas segregadas por las células esplénicas estimuladas por el
virus inactivado entero o por una combinación de péptidos.
Los resultados obtenidos en lo que se refiere a
la respuesta humoral se reagrupan en la tabla a continuación; se
expresan en log 10 de unidades arbitrarias del análisis ELISA y
representan las medias de los valores geométricos de cada grupo de
ratones.
Estos resultados demuestran que el adyuvante
según la invención permite incrementar la respuesta humoral contra
un antígeno viral.
En lo que se refiere a la respuesta celular, los
resultados obtenidos durante el recuento de ELISPOT realizado sobre
células frescas (ex vivo), estimuladas por el virus entero se
representan en la tabla a continuación, que indica la media
geométrica para cada grupo de ratones.
En lo que se refiere a los resultados obtenidos
en respuesta a combinaciones de péptidos, las respuestas varían
según las combinaciones de péptidos utilizadas.
Los resultados en ELISPOT obtenidos después de
la reestimulación con el virus SARS inactivado han demostrado
igualmente que la producción de interferón \gamma había aumentado
en presencia de etil DOFC, como respuesta a ciertos péptidos
utilizados.
Estos resultados demuestran que el adyuvante
según la invención permite incrementar la respuesta celular T CD4+
contra un antígeno viral.
En lo que se refiere a las dosis de citocinas
IFN-\gamma (citocina Th1) e IL-5
(citocina Th2) por ELISA, se ha observado que después de la
estimulación por el virus inactivado, la producción de
IFN-\gamma había aumentado mucho para los ratones
que habían recibido además antígeno de etil DOFC; por el contrario,
la producción de IL-5 no se había modificado
netamente.
Los resultados obtenidos se recogen en la tabla
a continuación: se expresan en pg/ml y representan las medias
geométricas de los grupos de ratones.
Estos resultados demuestran que el adyuvante
según la invención permite incrementar la respuesta celular de tipo
Th1.
Así, el conjunto de estos resultados demuestra
que el adyuvante según la invención permite incrementar
significativamente la respuesta inmunitaria inducida durante la
administración de un antígeno constituido por un virus inactivado, a
la vez celular (Th1) y humoral.
Claims (9)
1. Composición farmacéutica que comprende al
menos un antígeno vacunal distinto de un codificador de ADN,
caracterizada porque comprende además al menos un derivado de
éster fosfórico de fosfatidilcolina, con la estructura:
en la
que:
- -
- R_{1} es un alquilo inferior, que tiene a lo sumo 5 átomos de carbono,
- -
- R_{2} y R_{3} son iguales o diferentes y cada uno puede representar cadenas hidrocarbonadas lineales que tienen de 13 a 21 átomos de carbono.
2. Composición según la reivindicación
precedente, caracterizada porque R_{1} representa el
radical etilo.
3. Composición según una de las reivindicaciones
precedentes, caracterizada porque R_{2} y R_{3} se eligen
entre los radicales que proceden de los ácidos grasos siguientes:
ácido mirístico, ácido palmítico, ácido esteárico, ácido oleico.
4. Composición según una de las reivindicaciones
precedentes, caracterizada porque R_{2} y R_{3} son los
dos idénticos y representan el radical de ácido oleico.
5. Composición según una de las reivindicaciones
precedentes, caracterizada porque comprende además una
emulsión.
6. Utilización de un derivado de
fosfatidilcolina con la estructura:
en la
que:
- -
- R_{1} es un alquilo inferior, que tiene a lo sumo 5 átomos de carbono,
- -
- R_{2} y R_{3} son iguales o diferentes y cada uno puede representar cadenas hidrocarbonadas lineales que tienen de 13 a 21 átomos de carbono, para la preparación de un adjuvante vacunal.
7. Utilización según la reivindicación 6,
caracterizada porque R_{1} representa el radical etilo.
8. Utilización según una de las reivindicaciones
6 ó 7, caracterizada porque R_{2} y R_{3} se eligen entre
los radicales que proceden de los ácidos grasos siguientes: ácido
mirístico, ácido palmítico, ácido esteárico, ácido oleico.
9. Utilización según una de las reivindicaciones
6 a 8, caracterizada porque R_{2} y R_{3} son los 2
idénticos y cada uno representa el radical del ácido oleico.
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