ES2237115T5 - Particulas de proteinas de la envoltura del hcv: uso para la vacunacion. - Google Patents
Particulas de proteinas de la envoltura del hcv: uso para la vacunacion. Download PDFInfo
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Abstract
Una partícula oligomérica que consiste de proteínas purificadas de la envoltura del HCV y que tiene un diámetro de 5 a 100 nanómetros, donde al menos un residuo cisteína de dicha proteína de la envoltura es alquilatado.
Description
Partículas de proteínas de la envoltura del HCV:
Uso para la vacunación.
La presente invención está basada en el hallazgo
de que las proteínas de la envoltura del HCV inducen una respuesta
inmune beneficiosa en chimpancés que están crónicamente infectados
con cepas del HCV heterólogas del subtipo 1a o del subtipo 1b. Más
específicamente, la presente invención se relaciona con el hallazgo
de que las proteínas de la envoltura son altamente inmunogénicas y
como resultado estimulan tanto la respuesta inmune humoral como la
respuesta celular. Además la presente invención se relaciona con el
hallazgo de que el bloqueo de las cisteínas por alquilación da como
resultado proteínas aún más inmunogénicas. En adición, las
proteínas de la envoltura de la presente invención pueden ser
incorporadas en partículas las cuales despliegan una alta
inmunogenicidad e inmuno-reactividad. Fue
adicionalmente demostrado que tales partículas pueden incorporar
otras proteínas.
La infección por el virus de la hepatitis C
(HCV) es un problema importante de salud tanto en los países
desarrollados como en vías de desarrollo. Se estima que alrededor
del 1 al 5% de la población del mundo está afectada por el virus.
La infección por el HCV aparece como la causa más importante de la
hepatitis asociada a transfusiones y frecuentemente evoluciona a
daño crónico del hígado. Además, existe evidencia que implica el HCV
en la inducción del carcinoma hepatocelular. Consecuentemente, la
demanda de métodos de diagnósticos confiables y de agentes
terapéuticos efectivos es alta. También se necesitan métodos
específicos y efectivos de tamizado de los productos sanguíneos
contaminados con el HCV y métodos de cultivo del HCV mejorados.
El HCV es un virus de ARN de filamento positivo
de aproximadamente 9,600 bases que codifica al menos tres
proteínas estructurales y seis no estructurales. Basado en la
homología de secuencia, las proteínas estructurales han sido
funcionalmente asignadas como una proteína de núcleo individual y
dos proteínas de la envoltura: E1 y E2. La proteína E1 consiste de
192 amino ácidos y contiene de 5 a 6 sitios de
N-glicosilación, dependiendo del genotipo del HCV.
La proteína E2 consiste de 363 a 370 amino ácidos y contiene de 9 a
11 sitios de N-glicosilación, dependiendo del
genotipo del HCV (para revisión ver: Major y Feinstone, 1997;
Maertens y Stuyver, 1997). La proteína E1 contiene varios dominios
variables (Maertens and Stuyver, 1997), mientras la proteína E2
contiene tres dominios hipervariables, de los cuales el dominio
principal está localizado en el terminal N de la proteína (Maertens
and Stuyver, 1997). Estas últimas proteínas de la envoltura han
sido producidas por técnicas recombinantes en Eschericha
Coli, células de insectos, células de levadura y células de
mamíferos. El uso de un sistema de expresión en cultivo de células
eucariotas superiores y especialmente células de mamíferos conduce
a las proteínas de la envoltura que son efectivamente reconocidas
por anticuerpos en muestras de pacientes (Maertens y otros,
1994).
Se ha sugerido que la proteína de la envoltura
E1 necesita que la proteína de la envoltura E2 alcance un estado
de plegado apropiado (Deleersnyder y otros, 1997). En adición, se ha
sugerido que E1 y E2 formen heterodímeros los cuales pueden formar
la unidad básica de la envoltura viral (Yi y otros, 1997). En WO
98/21338 de Liang y otros, estas presunciones han sido usadas para
construir partículas del HCV, las cuales consisten de E1 y E2, así
como Core y P7. En otras palabras, el uso de E1 y E2 separadamente
para inmunización y otros propósitos no está sugerido en el estado
del arte. Pero, Houghton (1997) reportó que inmunizaciones
repetidas con gpE1E2 (4 x 25 \mug) recombinante de 3 chimpancés
crónicamente infectados con el HCV no indujeron una respuesta
inmune significativa. Los inventores de la presente solicitud
razonaron que la inducción de una respuesta inmune
anti-envoltura en pacientes con hepatitis C crónica
sería verdaderamente deseable y beneficioso para el paciente, ya
que niveles más altos de tales anticuerpos parecen correlacionarse
con una buena respuesta a la terapia con interferón, y puede por lo
tanto ayudar al paciente a aclarar el virus (PCT/EP 95/03031 de
Maertens y otros). Los inventores de la presente invención además
razonaron que, como los niveles de anticuerpos contra E1 en
portadores crónicos del HCV están dentro de los más bajos de todos
los anticuerpos del HCV, pudiera ser beneficioso incrementar estos
niveles de anticuerpos, y posiblemente la respuesta celular, para
inducir control o incluso aclaramiento de la infección por el
hospedero. También altos niveles de inmunidad celular contra E1
parecen correlacionarse con una buena respuesta hacia la terapia
con interferón (Leroux-Roels y otros, 1996).
Además de la importancia de la inmunidad
anti-E1 en relación con la terapia con interferón,
otras indicaciones apuntan que algunas otras partes del genoma del
HCV pueden ser importantes para inducir una respuesta inmune
específica la cual puede permitir el control de la infección.
También la reactividad de células T contra la región terminal C de
la proteína de núcleo ha sido observada más frecuentemente en
pacientes que responden a la terapia con interferón
(Leroux-Roels y otros, 1996). Anticuerpos
potencialmente neutralizantes contra la proteína NS4B fueron
demostrados en pacientes que aclaran el HCV después de un
trasplante de hígado (Villa y otros, 1998). También dentro del NS3
varios epítopos de células T han sido mapeados los que parecen
correlacionar con el aclaramiento del HCV durante la fase aguda
(ver: PCT/EP 94/03555 de Leroux-Roels y otros;
Leroux-Roels y otros, 1996; Rehermann y otros, 1996
y 1997; Diepolder y otros, 1995 y 1997). Además, anticuerpos NSSA,
como los anticuerpos E1, muestran niveles más altos en vaselina
antes de la terapia con interferón alfa en los respondedores a
largo plazo (LTR) en comparación con los no respondedores.
\newpage
En el presente, la vacunación terapéutica contra
el HCV no ha sido exitosa. También la vacunación profiláctica ha
mostrado solamente ser efectiva contra una cepa homóloga del HCV
(Chuoo y otros, 1994). La presente invención se relaciona con el
hallazgo sorprendente de que la administración de un antígeno de
la envoltura del HCV puede dramáticamente mejorar el estado de la
hepatitis activa crónica en individuos infectados con un aislado o
cepa heteróloga, tanto en una infección del subtipo 1a heteróloga o
del subtipo 1b heteróloga. Verdaderamente, los chimpancés
crónicamente infectados que fueron administrados con seis dosis de
50 \mug de E1s (o sea aa 192-326 de E1)
sorprendentemente mostraron respuestas inmune humoral y celular
vigorosas, las cuales no habían sido montadas durante todo el
período de la infección crónica antes de la última vacunación.
Además, el antígeno viral se hace indetectable en el hígado durante
un período de 2 a 5 meses y se mantiene indetectable por al menos
cinco meses posterior a la vacunación. Aunque los títulos
ARN-HCV en los sueros no decrecieron, los niveles
de enzima del hígado en el suero mostraron una clara tendencia a
normalizarse. De manera más importante, la histología del hígado
mejoró dramáticamente en ambas vacunas. La presente invención
además se relaciona con el hallazgo sorprendente de que la proteína
E1 usada para vacunación, que fue expresada como una proteína
individual del HCV sin su anclaje hidrofóbico, forma partículas
estables. Debe también notarse que para evitar la inducción de una
respuesta inmune contra epítopos no relevantes, la proteína E1
usada para vacunación fue construida como una secuencia de consenso
de clones individuales derivados de una muestra de sueros simples
de un portador crónico. En adición, la presente solicitud se
relaciona con el hallazgo de que la inducción de tales respuestas
anti-E1 pueden ser incrementadas usando antígenos
de un genotipo diferente que aquellos de la infección presentes en
el hospedero. Además, la presente solicitud se relaciona con el
hallazgo de que cuando las cisteínas de las proteínas de la
envoltura del HCV son alquilatadas, por ejemplo por medio de
N-(iodoetil)-trifluoroacetamida, etilenimina o
halógenos activos, tal como iodoacetamida, las partículas
oligoméricas como se describió anteriormente despliegan una
inmunogenicidad aún más alta. Finalmente la presente invención se
relaciona también con el hallazgo de que la mutación de las
cisteínas de las proteínas de la envoltura del HCV a cualquier otro
amino ácido que existe de manera natural, preferentemente a
metionina, ácido glutámico, glutamina o lisina, en las partículas
oligoméricas como se describió anteriormente da como resultado una
inmunogenicidad más alta, en comparación con las proteínas de la
envoltura originales.
Está claro a partir de la literatura que existe
una necesidad urgente de desarrollar vacunas confiables y agentes
terapéuticos efectivos para el HCV. Por lo tanto la presente
invención está dirigida a proporcionar una preparación antígena, la
cual es capaz de inducir inmunidad celular y humoral específica a
las proteínas de la envoltura del HCV, incluso (pero no solamente)
en portadores crónicos del HCV. Los mismos antígenos pueden ser
usados para el diagnóstico de la respuesta inmune.
Más específicamente, la presente invención está
dirigida a proporcionar una preparación antígena como la definida
anteriormente que consiste de partículas estables de proteínas de
la envoltura individual del HCV. Debe estar claro que, en el
presente, tales partículas, o el método de preparación de tales
partículas, no son conocidos en el arte. Además, no existe ninguna
indicación en el arte de que alguna preparación antígena, que
incluya tales partículas estables pueda ser usada exitosamente como
una vacuna terapéutica o profiláctica (heteróloga) contra el HCV.
De está forma la presente invención también está dirigida a
proporcionar un método para producir partículas estables, las
cuales pueden ser usadas exitosamente como un agente terapéutico o
profiláctico contra el HCV, en adición a proporcionar vacunas de
ADN que codifican antígenos del HCV. Más específicamente, la
presente invención está dirigida a proporcionar un método para
producir estas últimas partículas basado en la formación de
partículas asistidas con detergentes (ver posteriormente). Además,
la presente invención está dirigida a proporcionar métodos para
preparar partículas que consisten en antígenos obtenidos de
diferentes genotipos del HCV.
Un objetivo adicional de la presente invención
es proporcionar un método para tratar o para vacunar
terapéuticamente pacientes infectados crónicamente usando las
vacunas de antígenos indicadas anteriormente, posiblemente en
combinación con otros compuestos. La presente invención está
dirigida a proporcionar un método para vacunar profilácticamente a
humanos contra el HCV.
Otro objetivo de la presente invención es
proporcionar partículas oligoméricas las cuales tienen una
inmunogenicidad superior, debido a la alquilación de al menos un
residuo cisteína de la proteína de la envoltura del HCV. En
particular ésta última proteína puede ser alquilatada por medio de
etilenimina, N-(iodoetil)trifluoroacetamida o halógenos
activos. En este aspecto, la presente invención está dirigida a
proporcionar el uso adicional de partículas oligoméricas como
vehículos para presentar eficientemente epítopos no HCV.
Otro objetivo de la invención es proporcionar un
antígeno que estimule las células T.
Todos los objetivos de la presente invención son
considerados que han sido satisfechos por las realizaciones como
las establecidas a continuación.
La tabla 1 proporciona secuencias de clones de
E1 obtenidos a partir de un portador crónico simple, la
construcción de E1 usada para la producción de una vacuna es el
consenso de todos estos clones individuales. V1-V5,
regiones variable 1-5; C4, dominio constante 4; RH,
región hidrofóbica; HCV-B con, secuencia de
consenso en posiciones que son variables entre los clones y
HCV-J.
La tabla 2 proporciona secuencias de la proteína
vacuna E1 y de la proteína E1 como fue encontrada en los
chimpancés infectados Phil y Ton. E1 subtipo 1b aislado de Phil
difirió en 5.92% de la cepa de la vacuna. La diferencia entre la
vacuna y el subtipo la aislado de Ton fue de 20.74%.
La tabla 3 proporciona un panorámica esquemática
de los cambios inducidos por la vacunación terapéutica en dos
chimpancés crónicamente infectados (Ton y Phil). El análisis fue
ejecutado como es explicado por las figuras 8 y 11. En adición, la
histología y la inflamación fueron registradas a partir de las
biopsias del hígado.
La tabla 4 proporciona secuencias de péptidos
usados para mapear los epítopos de células B. Note que RH es
solapada con V4V5.
La tabla 5 muestra la
re-disposición de NS3 para hacer una proteína más
corta que porte todos los epítopos principales que correlacionan
con el aclaramiento viral.
La tabla 6 muestra la reactividad en LIA de la
E1s-acetamida contra la
E1s-maleimida con suero de portadores crónicos del
HCV. Las proteínas fueron inmovilizadas sobre las membranas LIA, la
E1s-acetamida fue rociada como tal sobre las bandas
LIA mientras la E1s-maleimida (que contiene también
biotina-maleimida) fue acomplejada con
estreptavidina antes del rociado. Los antígenos fueron enlazados a
las membranas LIA, y las bandas fueron procesadas esencialmente
como se describe en Zrein y otros (1998). Los anticuerpos humanos
dirigidos contra estos antígenos fueron visualizados usando un
anti-IgG humano conjugado con fosfatasa alcalina.
El NBT y BCIP fueron usados para el desarrollo del color de las
bandas. El teñido fue registrado desde 0.5 a 4, como se explica en
Zrein y otros (1998). Usando un valor extremo para este ensayo de
0.5 el número de muestras positivas (# pos) y el porcentaje (% pos)
es mencionado en la parte inferior de la tabla.
Figura 1. Perfiles de cromatografía de exclusión
de tamaño sobrepuestos en PBS/Empigen-BB al 3% de
las proteínas E1s y E2s expresadas y purificadas de acuerdo a
Maertens y otros (PCT/EP95/03031).
Figura 2. Perfiles de cromatografía de exclusión
de tamaño (SEC) sobrepuestos de las proteínas E1s y E2s expresadas
y purificadas de acuerdo a Maertens y otros (PCT/EP95/03031), y
sometidas a otra corrida en la misma columna SEC en PBS/CHAPS al
0.2%, para obtener estructuras oligoméricas específicas de un peso
molecular aparente estimado de 250-300 kDa.
Similares grados de asociación pueden ser obtenidos usando 3% de
betaína.
Figura 3. Perfiles de cromatografía de exclusión
de tamaño sobrepuestos de las proteínas E1s y E2s expresadas y
purificadas de acuerdo a Maertens y otros (PCT/EP95/03031),
sometidas a un segunda corrida en CHAPS al 0.2% o betaína al 3%,
para obtener estructuras oligoméricas específicas como se muestra
en la Figura 2, y sometidas a una tercera corrida en la misma
columna de SEC en CHAPS al 0.05%, para obtener estructuras
homo-oligoméricas específicas con un peso molecular
aparente estimado de 250-300 kDa (E2s) y > 600
kDa (E1s). Similares grados de asociación pueden ser obtenidos
usando betaína al 0.1 o 0.5%.
Figura 4 Análisis por dispersión de luz
dinámica, expresado como porcentaje del número de partículas en
relación al diámetro observado en nm, de E1s en PBS/CHAPS al
0.05%.
Figura 5 Análisis por dispersión de luz
dinámica, expresado como porcentaje del número de partículas en
relación al diámetro observado en nm, de E1s en PBS/betaína al 0.1%
(arriba) o betaína al 0.5% (abajo).
Figura 6 Teñido EM de (A) E1s en PBS/CHAPS al
0.05% y (B) E1s en PBS/betaína al 3%.
Figura 7 Distribución de los tamaños de las
partículas de E1s en PBS/CHAPS al 0.05%.
Figura 8 Evolución de anticuerpos
anti-E1 inducidos por seis inmunizaciones
consecutivas y 3 dosis suplementarias (indicadas por las flechas
pequeñas) en un chimpancé infectado con el subtipo 1b (Phil), y la
evolución de ALT, ARN HCV, y anticuerpos anti-E1.
Los anticuerpos anti-E1 que se unen a la fase
sólida de E1 fueron detectados usando un antisuero secundario
específico de anti-IgG humana conjugado con
peroxidasa. El TMB fue usado como sustrato para el desarrollo del
color. Los resultados son expresados como títulos del punto final.
Los niveles de ALT fueron determinados con un analizador clínico y
son expresados como U/I. El ARN HCV en suero fue determinado
usando un Monitor del HCV (Roche, Basel, Suiza). La carga viral en
el hígado fue determinada por determinación
semi-cuantitativa de la cantidad de antígeno de E2
teñido en la biopsia del hígado usando un monoclonal específico
(ECACC numero de acceso 98031215 como se describe en la solicitud
EP No 98870060.5).
Figura 9 Mapeo epitópico de las respuestas del
anticuerpo inducidas por la inmunización con E1 en el chimpancé
Phil. La reactividad de los anticuerpos hacia varios péptidos fue
medida por un ELISA indirecto en el cual los péptidos biotinilados
(ver también la Tabla 4) son adsorbidos en las placas de
microtítulos por medio de la estreptavidina. Anticuerpos
específicos son detectados usando un antisuero secundario
específico anti-IgG humana conjugado con
peroxidasa. El TMB fue usado como substrato para el desarrollo del
color.
Figura 10 Resultados del ensayo de proliferación
de linfocitos antes y después de la vacunación en el chimpancé
Phil. Los PBMC congelados fueron derretidos y estimulados en
triplicado con diferentes antígenos. El control negativo fue el
medio solo, mientras la concanavalina A fue usada como control
positivo a una concentración de 5 \mug/ml. Los PBMC a una
concentración de 2-4 x 10^{5} células/cavidad en
un volumen total de 150 \mul fueron cultivados en medio RPMI 1640
suplementado con 10% de FCS inactivado con calor en placas de
microtítulos en forma de U de 96 cavidades junto con los controles
o 1 \mug/ml de E1 durante 90 h a 37ºC en una atmósfera
humidificada que contiene 5% de CO_{2}. Durante las últimas 18 h
las células fueron pulsadas con 0.5 \muCi (^{3}H) de timidina
por cavidad. Subsiguientemente, los cultivos, fueron cosechados en
filtros de fibra de vidrio y la retención de etiqueta fue
determinada. Los resultados son expresados como Indices de
Estimulación (SI): cpm promedio con antígeno/cpm promedio del medio
solo de determinaciones triplicadas.
Figura 11 Evolución de anticuerpos
anti-E1 inducidos por seis inmunizaciones
consecutivas y 3 dosis suplementarias (indicadas por las flechas
pequeñas) en el chimpancé Ton infectado con el subtipo 1a del HCV.
La evolución de ALT, ARN HCV en suero y la determinación del
antígeno del HCV en el hígado son mostradas. Los anticuerpos
anti-E1 fueron determinados por medio de un ELISA
indirecto: anticuerpos específicos que se unen a la fase sólida
recubierta de E1 son detectados usando antisuero secundario
específico de anti-IgG humana conjugado con
peroxidasa. El TMB fue usado como sustrato para el desarrollo del
color. Los resultados son expresados como títulos del punto final.
Los niveles de ALT fueron determinados con un analizador clínico,
y son expresados como U/I. El ARN HCV fue determinado usando un
Monitor del HCV (Roche, Basel, Suiza). EL antígeno de E2 fue teñido
en la biopsia del hígado usando un monoclonal específico (ECACC
numero de acceso 98031215 como se describe en la solicitud EP No
98870060.5). El registro semi-cuantitativo es
indicado por cuadrados negros para el teñido claramente positivo en
la mayoría de las células, por cuadrados grises para el teñido
claro en la minoría de las células y por cuadrados blancos para las
biopsias que no muestran teñido detectable. El ARN HCV es indicado
por recuadros negros pequeños. El teñido de E2 pudiera ser
confirmado por teñido de E1 y Core (datos no mostrados).
Figura 12 Mapeo epitópico de la respuesta del
anticuerpo inducida por inmunización con E1 en Ton. La reactividad
de los anticuerpos hacia varios péptidos fue medida por un ELISA
indirecto en el cual los péptidos biotinilados (ver también la
Tabla 4) son adsorbidos en las placas de microtítulos por medio de
la estreptavidina. Anticuerpos específicos son detectados usando
antisuero secundario específico de anti-IgG humana
conjugado con peroxidasa. El TMB fue usado como substrato para el
desarrollo del color.
Figura 13 Análisis de las respuestas del
anticuerpo E1 a las proteínas E1 del subtipo 1a y subtipo 1b en el
chimpancé Ton. Para este propósito fue generado un virus vaccinia
recombinante de genotipo la de E1, derivado de la secuencia
HCV-H, que expresa la misma parte de E1 que para el
genotipo 1b (vea infra). La E1 fue derivada a partir de lisados
crudos de células RK13 infectadas con el virus vaccinia (preparado
como se describe en Maertens y otros (PCT/EP95/03031)). La
reactividad del anticuerpo fue medida por un ELISA indirecto en el
cual E1 fue adsorbida en las placas de microtítulos por medio de
alta manosa que se une a la aglutinina de Galanthus nivalis
(GNA). Anticuerpos específicos fueron detectados usando antisuero
secundario específico de anti-IgG humana conjugado
con peroxidasa. El TMB fue usado como substrato para el desarrollo
del color. Los resultados son expresados como diferencial OD (OD
de la cavidad con E1 adsorbida menos OD de la cavidad sin E1
adsorbida).
Figura 14 Resultados del ensayo de proliferación
de linfocitos antes y después de la vacunación en el chimpancé
Ton. Los PBMC congelados fueron derretidos y estimulados en
triplicado con diferentes antígenos. El control negativo fue el
medio solo, mientras la concanavalina A fue usada como control
positivo a una concentración de 5 \mug/ml. Los PBMC a una
concentración de 2-4 x 10^{5} células/cavidad en
un volumen total de 150 \mul fueron cultivadas en medio RPMI 1640
suplementado con 10% de FCS inactivado con calor en placas de
microtítulos en forma de U de 96 cavidades junto con los controles
o 1 \mug/ml de E1 durante 90 h a 37ºC en una atmósfera
humidificada que contiene 5% de CO_{2}. Durante las últimas 18 h
las células fueron pulsadas con 0.5 \muCi (^{3}H) de timidina
por cavidad. Subsiguientemente, los cultivos, fueron cosechados en
filtros de fibra de vidrio y la retención de etiqueta fue
determinada. Los resultados son expresados como Indices de
Estimulación (SI): cpm promedio con antígeno/cpm promedio del medio
solo de determinaciones triplicadas.
Figura 15 Mapas de construcciones usados para
obtener la expresión de una proteína E2 con su región
hipervariable de terminal N eliminada. Las construcciones
pvHCV-92 y pvHCV-99 son
construcciones intermedias usadas para la construcción de los
mutantes de eliminación pvHCV-100 y
pvHCV-101.
Figura 16 Secuencia (nucléotidos: A; traducción:
B) que corresponde con las construcciones representadas en la
Figura 15 (ver anteriormente).
Figura 17 Títulos de anticuerpos obtenidos en
ratones por inmunización con diferentes preparaciones de E1 como
se describe en el ejemplo 9. Los títulos fueron determinados por
medio de ELISA: 3 sueros murinos fueron diluidos 1/20 y después en
(0.5 log_{10}) e incubados en E1s (tanto acetamida como maleimida
modificadas) cubiertas en placas de microtítulos. Después del
lavado los anticuerpos de unión son detectados usando un antisuero
secundario específico de anti-IgG de ratón
conjugado con peroxidasa. El TMB fue usado como substrato para el
desarrollo del color. Los resultados son expresados como título
del punto final y las derivaciones estándares son mostradas
(n=6).
(n=6).
Figura 18 Mapeo epitópico de la respuesta del
anticuerpo inducida por inmunización con diferentes preparaciones
de E1s en ratones. La reactividad del anticuerpo hacia varios
péptidos fue medida por un ELISA indirecto, en el cual los péptidos
biotinilados (listados en la Tabla 4) son adsorbidos en las placas
de microtítulos por medio de la estreptavidina. Sueros murinos
fueron diluidos 1/20 y anticuerpos específicos son detectados
usando un antisuero secundario específico de
anti-IgG de ratón conjugado con peroxidasa. El TMB
fue usado como substrato para el desarrollo del color.
Figura 19 Perfil del isotipo de la
inmonuglobulina de ratones inmunizados con diferentes
preparaciones de E1s. Anticuerpos de clase y subclase de Ig
específica fueron adsorbidos en las placas de microtítulos. Después
de capturar la Ig murino fuera del suero inmune diluido 1/500, la
E1s fue incubada a 1 \mug/ml. Los complejos inmunes formados
fueron adicionalmente incubados con un antisuero de conejo
policlonal dirigido contra la E1. Finalmente, los anticuerpos de
conejo fueron detectados usando un antisuero secundario de
anti-Ig de conejo producido en cabra conjugado con
peroxidasa. El TMB fue usado como substrato para el desarrollo del
color. Los resultados fueron normalizados para IgG_{1} (o sea la
señal IgG_{1} fue considerada como 1 separadamente para cada
animal y todos los resultados para los otros isotipos fueron
expresados en relación con este resultado IgG_{1}).
Figura 20 Títulos de anticuerpos inducidos por
dos inmunizaciones alrededor del día 1000 con
E1s-acetamida en el chimpancé Phil. Los anticuerpos
anti-E1 fueron determinados por medio de un ELISA
indirecto: anticuerpos específicos que se unen a la fase sólida de
E1 son detectados usando antisuero secundario específico de IgG
anti-humano conjugado con peroxidasa. El título es
expresado en unidades/ml, estas unidades se refieren a un estándar
propio que está basado en suero humano.
Figura 21 Títulos de anticuerpos inducidos por
dos inmunizaciones alrededor del día 900 con
E1s-acetamida en el chimpancé Ton. Los anticuerpos
anti-E1 fueron determinados por medio de un ELISA
indirecto: anticuerpos específicos que se unen a la fase sólida de
E1 son detectados usando antisuero secundario específico de IgG
anti-humano conjugado con peroxidasa. El título es
expresado en unidades/ml, estas unidades se refieren a un estándar
propio que está basado en suero humano.
Figura 22 Perfil SEC de la etapa final de
reducción del detergente (CHAPS 0.2 a 0.05%): La partícula de E1
sola (A), la partícula de E2 sola (B) o una mezcla equimolar de E1
y E2; partícula mezclada (C). La figura también muestra una
superposición de los valores OD de un ELISA que detecta de manera
específica solamente E1 (arriba), solamente E2 (medio) y un ELISA
que detecta solamente partículas mezcladas (abajo).
Figura 23 Perfil SEC de la etapa final de
reducción del detergente (CHAPS 0.2 a 0.05%): La partícula de E1
del genotipo 1b sola (arriba), la partícula de E1 del genotipo 4
sola (medio) o una mezcla equimolar de E1 del genotipo 1b y 4,
partícula mezclada (abajo). La figura también muestra una
superposición de los valores OD de un ELISA que detecta de manera
específica solamente partículas mezcladas (ver también la Figura
22).
La invención aquí descrita gira sobre trabajos
publicados anteriormente y solicitudes de patentes pendientes. A
modo de ejemplo, tales trabajos consisten en documentos
científicos, patentes o solicitudes de patentes pendientes.
La presente invención se relaciona con la
vacunación contra el HCV. Por primera vez una inmunoterapia exitosa
de chimpancés con hepatitis C activa crónica severa pudo ser
lograda por vacunación con un antígeno del HCV. La vacuna no solo
induce respuestas inmunes altas, sino también induce el
aclaramiento del antígeno viral del hígado, y un mejoramiento
considerable de la actividad histológica de la enfermedad del
hígado. La presente invención además se relaciona con partículas
oligoméricas. Las partículas oligoméricas consisten esencialmente
de proteínas de la envoltura del HCV y tienen un diámetro de 5 a 100
nm medido por dispersión de luz dinámica o por microscopía
electrónica posiblemente. En este aspecto debe hacerse hincapié que
las partículas pueden estar formadas por las proteínas E1 y/o E2
solas, o partes de las mismas (ver arriba). Por lo tanto, las
partículas oligoméricas de la presente invención difieren
fundamentalmente de las partículas semejantes al HCV descritas en
WO 98/21338 las cuales consisten necesariamente de E1 y E2 y Core y
P7. Los términos "partículas oligoméricas que consisten
esencialmente de proteínas de la envoltura del HCV" son aquí
definidos como estructuras de una forma y naturaleza
específica que contienen varias unidades básicas de proteínas
de la envoltura E1 y/o E2 del HCV, las cuales por su parte se
piensa que consisten de uno o dos monómeros E1 y/o E2,
respectivamente. Debe estar claro que las partículas de la presente
invención son definidas como desprovistas de genomas ARN HCV
infeccioso. Las partículas de la presente invención pueden ser
partículas de orden superior de naturaleza esférica las
cuales pueden estar vacías, que consisten de una capa de
proteínas de la envoltura en las cuales lípidos, detergentes, la
proteína de núcleo del HCV, o moléculas adyuvantes pueden ser
incorporados. Estas últimas partículas pueden ser también
encapsuladas por liposomas o apolipoproteínas, tales como, por
ejemplo, la apolipoproteína B o lipoproteínas de baja densidad, o
por cualquier otro medio de selección de dichas partículas para un
órgano específico o tejido. En este caso, tales partículas esféricas
vacías son frecuentemente referidas como "partículas semejantes a
un virus" o VLPs. Alternativamente, las partículas de orden
superior pueden ser estructuras esféricas sólidas, en las
cuales la esfera completa consiste de oligómeros de las proteínas
de la envoltura E1 o E2 del HCV, en los cuales lípidos,
detergentes, la proteína de núcleo del HCV, o moléculas adyuvantes
pueden ser adicionalmente incorporados, o los cuales a su vez
pueden ser ellos mismos encapsulados por liposomas o
apolipoproteínas, tales como, por ejemplo, la apolipoproteína B o
lipoproteínas de baja densidad, o por cualquier otro medio de
selección de dichas partículas para un órgano específico o tejido,
por ejemplo asialoglicoproteínas. Las partículas pueden también
consistir de estructuras más pequeñas (en comparación con
las estructuras esféricas vacías o sólidas indicadas anteriormente)
las cuales son usualmente de forma redonda (ver posteriormente) y
las cuales usualmente no contienen más que una capa única de
proteínas de la envoltura del HCV. Un ejemplo típico de tales
partículas más pequeñas son las estructuras semejantes a una
roseta las cuales consisten de un número más pequeño de
proteínas de la envoltura del HCV, usualmente entre 4 y 16. Un
ejemplo específico de esto último incluye las partículas más
pequeñas obtenidas con E1s en CHAPS al 0,2% como se ejemplificó
aquí las que aparentemente contienen 8-10 monómeros
de E1s. Tales estructuras semejantes a una roseta están usualmente
organizadas en un plano y son de forma redonda, por ejemplo en la
forma de una rueda. Nuevamente lípidos, detergentes, la proteína de
núcleo del HCV, o moléculas adyuvantes pueden ser adicionalmente
incorporados o las partículas más pequeñas pueden ser encapsuladas
por liposomas o apolipoproteínas, tales como, por ejemplo, la
apolipoproteína B o lipoproteínas de baja densidad, o por cualquier
otro medio de selección de dichas partículas para un órgano
específico o tejido. Las partículas más pequeñas pueden también
formar estructuras globales o esféricas pequeñas que
consisten de un número más pequeño similar de proteínas de la
envoltura E1 o E2 del HCV en las cuales lípidos, detergentes, la
proteína de núcleo del HCV, o moléculas adyuvantes pudieran ser
adicionalmente incorporados, o las cuales a su vez pueden ser
encapsuladas por liposomas o apolipoproteínas, tales como, por
ejemplo, la apolipoproteína B o lipoproteínas de baja densidad, o
por cualquier otro medio de selección de dichas partículas para un
órgano específico o tejido. El tamaño (o sea el diámetro) de las
partículas antes definidas, como es medido por las técnicas de
dispersión de luz dinámica bien conocidas en el arte (ver
posteriormente la sección de los ejemplos), está usualmente entre 5
a 100 nm, más preferiblemente entre 5 a 70 nm,
incluso más preferiblemente entre 5 y 40 nm, entre 5 a 20 nm, entre 5 a 16 nm, entre 7 a 14 nm o entre 8 a 12 nm.
incluso más preferiblemente entre 5 y 40 nm, entre 5 a 20 nm, entre 5 a 16 nm, entre 7 a 14 nm o entre 8 a 12 nm.
La invención además se relaciona con una
partícula oligómerica como la definida anteriormente, donde dichas
proteínas de la envoltura son seleccionadas del grupo que consiste
de las proteínas E1 del HCV, E1s del HCV, E2 del HCV, la SEQ ID No
13 o la SEQ ID No 14 o partes de las mismas. Las proteínas E1 del
HCV y E2 del HCV, y una detallada descripción de cómo purificar
estas últimas proteínas, son bien descritas y caracterizadas en
PCT/EP 95/03031 de Maertens y otros. La E1s del HCV, la SEQ ID No
13 o la SEQ ID No 14, o partes de las mismas, pueden ser
purificadas similarmente a como se describe para las E1 del HCV o
E1s del HCV en PCT/EP 95/03031 de Maertens y otros. La proteína E1s
del HCV se refiere a los amino ácidos 192 a 326 de E1, y representa
la proteína E1 sin su anclaje hidrofóbico del terminal C. El
término "o parte de las mismas" se refiere a cualquier parte
de las proteínas aquí indicadas las cuales son inmunogénicas, una
vez que ellas sean parte de la presente invención.
La invención además pertenece a las partículas
oligoméricas como las descritas aquí, donde al menos un residuo de
cisteína de la proteína de la envoltura del HCV como la descrita
anteriormente es alquilatado, preferiblemente alquilatado por medio
de agentes de alquilación, tales como, por ejemplo, halógenos
activos, etilenimina o N-(iodoetil)trifluoroacetamida. En
este aspecto, debe entenderse que la alquilación de las cisteínas
se refiere a cisteínas en las cuales el hidrógeno en el átomo de
azufre es remplazado por (CH_{2})_{n}R, en la que n es
1,2,3 o 4 y R=H, COOH, NH_{2}, CONH_{2}, fenil, o cualquier
derivado de los mismos. La alquilación puede ser ejecutada por
cualquier método conocido en el arte, tales como, por ejemplo,
halógenos activos X(CH_{2})_{n}R en los que X es
un halógeno tal como I, Br, Cl o F. Ejemplos de halógenos activos
son el metilioduro, el ácido iodoácetico, la iodoacetamida, y el 2-
bromoetilamina. Otros métodos de alquilación incluyen el uso de la
etilenimina o N-(iodoetil)trifluoroacetamida ambos
resultantes de la sustitución de H por
-CH_{2}-CH_{2}-NH_{2}
(Hermanson, 1996). El término "agentes de alquilación" como es
usado aquí se refiere a compuestos que son capaces de ejecutar la
alquilación como la aquí descrita. Tales alquilaciones finalmente
dan como resultado una cisteína modificada, la cual puede semejar
otros amino ácidos. La alquilación por una etilenimina da como
resultado una estructura que se asemeja a la lisina, de tal manera
que nuevos sitios de escisión para la tripsina son introducidos
(Hermanson 1996). Similarmente, el uso del metilioduro da como
resultado un amino ácido que se asemeja a la metionina, mientras
que el uso del iodoacetato y la iodoacetamida da como resultado
amino ácidos que se asemejan al ácido glutámico y la glutamina,
respectivamente. En analogía, estos amino ácidos son
preferiblemente usados en la mutación directa de la cisteína.
El término "purificado" como es aplicado
aquí se refiere a una composición donde los componentes deseados,
tales como, por ejemplo, las proteínas de la envoltura del HCV o
las partículas oligoméricas, comprenden al menos el 35% del total
de componentes de la composición. Los componentes deseados
preferiblemente comprenden al menos alrededor del 40%, más
preferiblemente al menos alrededor del 50%, aún más preferiblemente
al menos alrededor del 60%, aún más preferiblemente al menos
alrededor del 70%, incluso más preferiblemente al menos alrededor
del 80%, incluso más preferiblemente al menos alrededor del 90%,
incluso más preferiblemente al menos alrededor del 95%, y lo más
preferido al menos alrededor del 98% del total de la fracción
componente de la composición. La composición puede contener otros
compuestos, tales como, por ejemplo, carbohidratos, sales, lípidos,
solventes, y semejantes, sin afectar la determinación del
porcentaje de la pureza que es aquí usado. Una partícula
oligomérica del HCV "aislada" se entiende como una composición
de una partícula oligomérica del HCV que es al menos 35% pura. El
término "partículas oligoméricas esencialmente purificadas"
como es aquí usado se refiere a partículas oligoméricas del HCV
tales que ellas puedan ser usadas para tratamientos terapéuticos y
métodos de diagnóstico in vitro. Estas partículas
oligoméricas del HCV están sustancialmente libres de proteínas
celulares, proteínas derivadas de vectores u otros componentes
virales del HCV. Usualmente, estas partículas o proteínas son
purificadas hasta la homogeneidad (al menos 80% pura,
preferiblemente 85%, más preferiblemente 90%, más preferiblemente
95%, más preferiblemente 97%, más preferiblemente 98%, más
preferiblemente 99%, incluso más preferiblemente 99,5%, y lo más
preferido es que las proteínas contaminantes deben ser
indetectables por los métodos convencionales tales como el
SDS-PAGE y el teñido en plata).
La presente solicitud también se relaciona con
una partícula oligomérica como la definida anteriormente donde
dichas proteínas de la envoltura son cualquier mezcla posible de E1
del HCV, E1s del HCV, E2 del HCV, SEQ ID No 13 y/o SEQ ID No 14, o
partes de las mismas, tal como, por ejemplo, una partícula de la
presente invención puede sustancialmente consistir de proteínas E1
del HCV y E2 del HCV, proteínas E1 del HCV y E1s del HCV, proteínas
E1s del HCV y E2 del HCV, y proteínas E1 del HCV, E1s del HCV y E2
del HCV. Además, la presente invención también se relaciona con una
partícula oligomérica como la definida anteriormente donde dichas
proteínas son derivadas de diferentes cepas del HCV, genotipos o
subtipos, tales como, por ejemplo, dichas proteínas son derivadas
del genotipo 1b y del genotipo 4, o son una mezcla que consiste en
proteínas de la envoltura del HCV de una cepa o genotipo del HCV y
al menos otra cepa o genotipo del HCV. Los diferentes genotipos o
cepas del HCV son bien definidos y caracterizados en PCT/EP
95/04155 de Maertens y otros. De esta forma, la presente invención
se relaciona con partículas oligoméricas que comprenden proteínas
de la envoltura derivadas de cualquier genotipo o cepa del HCV
conocida en el arte o con partículas que comprenden una mezcla de
proteínas derivadas de cualquier genotipo o cepa del HCV conocida
en el arte. En este sentido la presente invención también se
relaciona con una secuencia de consenso derivada de clones
individuales como se ejemplifica más abajo y en la sección de los
ejemplos (ver posteriormente).
La presente invención además se relaciona con
una partícula oligomérica como la aquí descrita obtenible por un
método, así como dicho método para producir dicha partícula
oligomérica. Dicho método está caracterizado por las siguientes
etapas:
- (I)
- Purificar las proteínas de la envoltura del HCV, incluyendo posiblemente el uso de un primer detergente opcionalmente. En esencia, el procedimiento de purificación de la etapa (I) ha sido extensamente descrito en PCT/EP 95/03031 de Maertens y otros. De manera importante, de acuerdo a la presente invención, la etapa de bloqueo en el procedimiento de purificación descrito en PCT/EP 95/03031, por ejemplo con NEM-biotina, es llevado a cabo con una etapa de alquilación como la descrita en la presente solicitud, preferentemente usando iodoacetamida. Además, el proceso de purificación de la etapa (I) puede incluir posiblemente el uso de un agente de escisión del enlace disulfuro, y posiblemente incluye el uso de un agente de alquilación. Finalmente, el procedimiento de la etapa (I) da como resultado proteínas purificadas de la envoltura del HCV en una solución.
- (II)
- Remplazar la solución de dichas proteínas purificadas de la envoltura del HCV con un detergente o una sal, lo que da por resultado la formación de partículas oligoméricas.
- (III)
- Recobrar o purificar dichas partículas oligoméricas, posiblemente incluyendo además reducir la concentración del detergente o la sal de la etapa (II), la cual asiste adicionalmente a la formación y estabilización de dichas partículas oligoméricas, formadas después de dicho reemplazo.
Más preferiblemente, la presente invención se
relaciona con una partícula oligomérica como la aquí definida, así
como el método para producir dicha partícula, donde dicho primer
detergente opcionalmente es Empigen-BB. Más
preferiblemente, la presente invención se relaciona con una
partícula oligomérica como la aquí definida, así como el método de
producir dicha partícula, donde el detergente de la etapa (II) es
CHAPS, octilglucósido o Tween, más preferiblemente
Tween-20 o Tween-80, u otro
detergente cualquiera. Más preferiblemente, la presente invención
se relaciona con una partícula oligomérica como la aquí definida,
así como el método de producir dicha partícula, donde dicha sal es
betaína. Más preferiblemente, la presente invención se relaciona
con una partícula oligomérica como la definida anteriormente, así
como el método de producir dicha partícula, donde dicho
Empigen-BB es usado a una concentración de 1% a 10%
y donde dicho CHAPS o Tween es usado a una concentración de 0.01% a
10% o dicha betaína es usada a una concentración de 0.01% a 10%.
Incluso más preferiblemente, la presente invención se relaciona con
una partícula oligomérica como la definida anteriormente, así como
el método de producir dicha partícula, donde dicho
Empigen-BB es usado a una concentración de 3% y
donde dicho CHAPS o betaína son usados a concentraciones de 0.2% o
0.3%, respectivamente, después de lo cual el buffer es cambiado y
dicho CHAPS o betaína son usados a concentraciones de 0.05% 0
0.1-0.5%, respectivamente. Debe entenderse que
todos los porcentajes usados en el método antes descrito están
dados como peso/volumen. Debe estar claro que el método antes
descrito (ver también PCT/EP 95/03031 y la sección de los ejemplos
de la presente solicitud) es un ejemplo de cómo producir las
partículas de la presente invención. En este aspecto, la presente
invención también concierne a cualquier otro método conocido en el
arte que pueda ser usado para producir las partículas oligoméricas
de la presente invención, tal como, por ejemplo, omitiendo el
agente reductor como se describe en PCT/EP 95/03031 y la sección
de los ejemplos (infra), y usando en su lugar células hospederas,
las cuales tienen un estado de redox optimizado en el Retículo
Endoplasmático para reducir los puentes de cisteína. En adición,
debe estar claro que un rango completo de alquilobetaínas puede ser
usado, tal como, por ejemplo, con una cola C_{n}, en la cual n =
un número entero positivo que tiene un rango de 1 a 20, así como
betaínas derivativas, tales como, por ejemplo, sulfobetaínas.
Además, la presente invención también se
refiere a una partícula oligomérica, como la definida aquí, y el
uso de la misma, en la cual la proteína de la envoltura del HCV es
codificada por una secuencia de consenso basada en la variabilidad
de las quasiespecies dentro de un aislado (secuencia de consenso
aislada) o basada en la secuencia de consenso de diferentes
aislados dentro de un subtipo (secuencia de consenso del subtipo),
tipo o especies (secuencia de consenso de tipo o especies), o el
género completo del HCV (secuencia de consenso del género).
Consecuentemente, la secuencia de amino ácidos de esta proteína de
la envoltura del HCV de consenso es una secuencia de consenso
derivada de una secuencia de consenso aislada, de subtipo-, cepa-,
o género. Para la connotación del término "consenso" es
particularmente referido a Maertens y Stuyver (1997), y a las
referencias aquí usadas.
La partícula oligomérica de la presente
invención exhibe epítopos extremadamente eficientes (ver infra).
Por lo tanto, la partícula oligomérica es un medio para presentar
epítopos de tal manera que ellas puedan producir una respuesta
inmune eficiente. En este contexto, se comprende que las proteínas
de la envoltura del HCV como las definidas aquí no necesitan
contener epítopos del HCV exclusivamente. Las proteínas de la
envoltura del HCV, que forman las partículas oligoméricas, pueden
contener epítopos que son derivados del HCV solamente, y
posiblemente contenga epítopos que son derivados de otros agentes
exógenos, tales como, por ejemplo, HBV o HIV. En otras palabras, la
partícula oligomérica con una esqueleto proteico de la envoltura
del HCV, puede ser usada como un vehículo para presentar epítopos
no HCV, posiblemente en adición a los epítopos del HCV. Por lo
tanto, la presente invención también comprende una partícula
oligomérica, como la definida aquí pero posiblemente sin epítopos
del HCV, y sus aplicaciones y su manufactura, posiblemente
conteniendo epítopos no HCV. El término "agente exógeno" como
es usado aquí, se refiere a cualquier agente, tanto vivo o no,
capaz de producir una respuesta inmune, y el cual no es endógeno al
hospedero, y el cual no es el HCV. Específicamente, este último
término se refiere al grupo que consiste de agentes patogénicos,
alérgenos y haptenos. Los agentes patogénicos comprenden priones,
virus, procariotas y eucariotas. Más específicamente los virus
comprenden en particular el HBV, el HTV, o el virus del Herpes,
pero no el HCV. Los alérgenos comprenden sustancias o moléculas
capaces de provocar una respuesta inmune en un hospedero por sí
mismas cuando el hospedero es expuesto a dichos alérgenos. Los
haptenos tienen un comportamiento similar a los alérgenos con
respecto a su habilidad para provocar una respuesta inmune, pero en
contraste a los alérgenos, los haptenos necesitan una molécula
portadora.
La presente invención se relaciona con una
composición que comprende una partícula oligomérica como la
definida anteriormente. Más particularmente la presente invención
se relaciona con una composición vacunal. El término "composición
vacunal" se relaciona con una composición inmunogénica capaz de
producir protección contra el HCV, tanto parcial como completa.
Por lo tanto incluye polinucleótidos, proteínas o péptidos del HCV.
La protección contra el HCV se refiere en particular a humanos,
pero también se refiere a primates no humanos, ratón trimera
(Zaubernan y otros, 1999), u otros mamíferos.
Las partículas de la presente invención pueden
ser usada como tales, en una forma biotinilada (como se explica en
WO 93/18054) y/o acomplejada a la Neutralite Avidin
(Molecular Probes Inc, Eugene, OR, USA). Debe también notarse que
"una composición vacunal" comprende, en adición a una
sustancia activa, un excipiente, diluente, portador y/o adyuvante
apropiado los cuales por sí mismos, no inducen la producción de
anticuerpos perjudiciales para el individuo que recibe la
composición ni producen protección. Portadores apropiados son
típicamente macromoléculas grandes metabolizadas lentamente tales
como proteínas, polisacáridos, ácidos polilácticos, ácidos
poliglicólicos, amino ácidos poliméricos, copolímeros de amino
ácidos y partículas de virus inactivas. Tales portadores son bien
conocidos por aquellos versados en el arte. Adyuvantes preferidos
para mejorar la efectividad de la composición incluyen, pero no
están limitados a ellos: hidróxido de aluminio, aluminio en
combinación con el lípido A monofosforil
3-0-deacilatado como se describe en
WO 93/19780, fosfato de aluminio como se describe en WO 93/24148,
N-acetilmuramil-L-treonil-D-isoglutamina
como es descrito en la patente U.S. No 4,606,918,
N-acetilnonmuramil-L-alanil-D-isoglutamina,
N-acetilmuramil-L-alanil-D-isoglutamil-L-alanina2-(1'2'dipalmitoil-sn-glicero-3-hidroxifosforiloxi)
etilamina y RIBI (InmunoChem Research Inc, Hamilton, MT, USA) el
cual contiene lípido A monofosforil, endotoxina destoxificada,
trehalosa-6,6-dimicolato, y el
esqueleto de la pared celular (MPL + TDM +CWS) en una emulsión
squalene/Tween 80 al 2%. Cualquiera de los tres componentes MPL,
TDM o CWS pueden también ser usados solos o combinados de 2 en 2.
Adicionalmente, adyuvantes tal como el Stimulon (Cambridge
Bioscience, Worcester, MA, USA) o SAF-1 (Syntex)
pueden ser usados, así como adyuvantes tales como las combinaciones
entre QS21 y lípido A monofosforil
3-de-O-acetilatado
(WO 94/00153), o MF-59 (Chiron), o adyuvantes
basados en poli[di(carboxilatofenoxi)fosfaceno]
(Virus Research Institute), o adyuvantes basados en bloques de
copolímeros tal como Optivax (Vaxcel, Cythx) o adyuvantes basados
en inulina, tales como Algammulin y Gammalnulin (Anutech),
Adyuvante de Freunds Incompleto (IFA) o preparaciones de Gerbu
(Gerbu Biotechnik). Será entendido que el Adyuvante de Freund
Completo (CFA) puede ser usado también para aplicaciones no humanas
y propósitos de investigación. "Una composición vacunal"
además contendrá excipientes y diluentes, los cuales son
inherentemente no tóxicos y no terapéuticos, tales como agua,
salina, glicerol, etanol, agentes humectantes o emulsificantes,
sustancias buffer pH, preservativos, y semejantes. Típicamente, una
composición vacunal es preparada de manera inyectable, tanto como
una solución líquida como una suspensión. Las formas sólidas,
apropiadas para su solución en, o suspensión en vehículos líquidos
antes de la inyección también pueden ser preparados. La preparación
también puede ser emulsificada o encapsuladas en liposomas para
mejorar el efecto adyuvante. Los polipéptidos también pueden estar
incorporados en Complejos Estimulantes Inmunes junto con saponinas,
por ejemplo Quil A (ISCOMS). Las composiciones vacunales
comprenden una cantidad inmunológicamente efectiva de polipéptidos
de la presente invención, así como cualquier otro de los
componentes antes mencionados. "Cantidades inmunológicamente
efectiva" significa que la administración de esa cantidad a un
individuo, tanto en una dosis única o como parte de una serie, es
efectiva para la prevención o el tratamiento. Esta cantidad varía
en dependencia de la condición física y la salud del individuo a
ser tratado, el grupo taxonómico del individuo a ser tratado (es
decir humano, primate no humano, primate, etc.), la capacidad del
sistema inmune del individuo para montar una respuesta inmune
efectiva, el grado de protección deseado, la formulación de la
vacuna, la valoración del médico sobre el tratamiento, la cepa del
HCV que infecta y otros factores relevantes. Se espera que la
cantidad caerá en un rango relativamente amplio que pueda ser
determinado a través de los análisis de rutina. Usualmente, la
cantidad variará de 0.01 a 1000 \mug/dosis, más particularmente
de 0.1 a 100 \mug/dosis. Las composiciones vacunales son
convencionalmente administradas de manera parenteral, típicamente
mediante inyección, por ejemplo, subcutáneamente o
intramuscularmente. Formulaciones adicionales apropiadas para otros
métodos de administración incluyen formulaciones orales y
supositorios. La dosificación del tratamiento puede ser un programa
de dosis simple o un programa de dosis múltiple. La vacuna puede
ser administrada conjuntamente con otros agentes
inmuno-reguladores. Por lo tanto, la presente
invención atañe al uso de una partícula oligomérica como la
definida aquí para inducir profilácticamente inmunicidad contra el
HCV. Debe ser notado que una vacuna puede ser útil también para el
tratamiento de un individuo como se señaló anteriormente, en cuyo
caso ésta es llamada una "vacuna terapéutica".
La presente invención se relaciona también con
una composición como la definida anteriormente la cual comprende
además la proteína core del HCV, E1, E2, P7, NS2, NS3, NS4A, NS4B,
NS5A y/o NSSB, o partes de las mismas. Las partículas E1, E2, y/o
E1E2, por ejemplo, pueden ser combinadas con antígenos que
estimulan las células T, tales como, por ejemplo, core, P7, NS3,
NS4A, NS4B, NS5A y/o NS5B. En particular, la presente invención se
relaciona con una composición como la definida anteriormente donde
dicha proteína NS3, o partes de la misma, tienen una secuencia
amino ácida dada por SEQ ID 1 o SEQ ID 2 (ver posteriormente en la
sección de los ejemplos).
La purificación de estas proteínas NS3 incluirá
preferentemente una modificación reversible de los residuos de
cisteína, e incluso más preferentemente sulfonación de cisteínas.
Los métodos para obtener una modificación reversible tal,
incluyendo la sulfonación han sido descritos para las proteínas NS3
en Maertens y otros (PCT/EP99/02547).
Está claro de lo anterior que la presente
invención también se relaciona con el uso de una partícula
oligomérica como la definida anteriormente o una composición como
la definida anteriormente para la fabricación de una composición
vacunal del HCV. En particular, la presente invención se relaciona
con el uso de una partícula oligomérica como la definida aquí para
inducir inmunidad contra el HCV en portadores crónicos del HCV. Más
en particular, la presente invención se relaciona con el uso de una
partícula oligomérica como la definida aquí para inducir inmunidad
contra el HCV en portadores crónicos del HCV antes de,
simultáneamente a o después de cualquier otra terapia, tal como,
por ejemplo, la bien conocida terapia con interferón tanto en
combinación o no con la administración de fármacos menores que
tratan el HCV, tales como, por ejemplo, ribavirina. Tal composición
puede también ser empleada antes o después del trasplante de
hígado, o después de la infección sospechada, tal como, por
ejemplo, daño por pinchazo con aguja. En adición, la presente
invención se relaciona con un kit que contiene las partículas
oligoméricas de la presente invención para detectar anticuerpos del
HCV presentes en una muestra biológica. El término "muestra
biológica" como es usado aquí, se refiere a una muestra o tejido
o fluido aislado de un individuo, incluyendo pero no limitado a,
por ejemplo, suero, plasma, fluido linfático, secciones externas de
la piel, tracto respiratorio, intestinal y genitourinario, óvulos,
lágrimas, saliva, leche, células de la sangre, tumores, órganos,
secreciones gástricas, mucosa, fluido del cordón espinal,
secreciones externas tales como, por ejemplo, excremento, orina,
esperma, y semejantes. Ya que las partículas oligoméricas y las
proteínas de la envoltura individuales del HCV de la presente
invención son altamente inmunogénicas, y estimulan tanto la
respuesta inmune celular como humoral, la presente invención se
relaciona también con un kit para detectar la respuesta de las
células T relacionadas con el HCV, que comprende la partícula
oligomérica de la presente invención. La respuesta de la célula T
al HCV puede ser por ejemplo medida como se describió en la sección
de los ejemplos, o como se describió en PCT/EP 94/03555 de
Leroux-Roels y otros.
Es demostrado aquí por vez primera que niveles
suficientes de anticuerpos del HCV, especialmente los anticuerpos
de la envoltura del HCV, inducen mejoría en la enfermedad de la
Hepatitis C. También se demostró por primera vez que niveles
suficientes de anticuerpos pueden unir virus circulantes, y que la
presencia de virus Ab-acomplejados coincide con la
desaparición del antígeno del HCV del hígado, y con la mejora de la
enfermedad del hígado. Los anticuerpos de la envoltura del HCV
pueden ser inducidos por vacunación. Las partículas oligoméricas
de la presente invención presentan epítopos extremadamente
eficientes. Consecuentemente, los epítopos en las partículas
oligoméricas son altamente inmunogénicos. Por lo tanto, la presente
invención también se refiere a los epítopos en las partículas
oligoméricas, dichos epítopos son al menos 10 veces,
preferentemente al menos 20 veces, preferentemente al menos 50,
preferentemente al menos 100 veces, preferentemente al menos 500
veces y más preferentemente al menos 1000 veces más inmunogénicos
que los epítopos en los péptidos del HCV, los cuales no son
producidos de acuerdo a la presente invención, es decir producidos
por la formación de partículas asistidas con detergente. Será
apreciado por los expertos que dicha inmunogenicidad puede por
ejemplo, ser detectada y por lo tanto comparada inmunizando
mamíferos por medio de la administración de cantidades comparables
de péptidos, producidos por cualquier método. Como es usado aquí,
el término "anticuerpo" se refiere a anticuerpos monoclonales
o policlonales. El término "anticuerpo monoclonal" se refiere
a una composición de anticuerpo que tiene una población de
anticuerpos homogénea. El término "anticuerpo" no es limitante
con relación a la especie o fuente del anticuerpo.
Además, la presente invención también
caracteriza el uso de una partícula oligomérica como la descrita
anteriormente, o una composición como la descrita anteriormente
para detectar anticuerpos contra las proteínas de la envoltura del
HCV. Como es usado aquí, el término "para detectar" se refiere
a cualquier ensayo conocido en el arte apropiado para la detección.
En particular, el término se refiere a cualquier inmunoensayo como
es descrito en WO 96/13590.
Los términos "péptido", "polipéptido"
y "proteína" son usados intercambiablemente en la presente
invención. "Polipéptido" se refiere a un polímero de amino
ácidos (secuencia de amino ácido) y no se refiere a una longitud
específica de la molécula. Así, los oligopéptidos están incluidos
dentro de la definición de polipéptido. Debe ser entendido que los
péptido-simulados son inherentes a los términos
"polipéptido", "péptido" y "proteína".
También, la presente invención se relaciona con
el uso de una partícula oligomérica como es descrita aquí para
inducir inmunidad contra el HCV, caracterizada porque dicha
partícula oligomérica es usada como parte de una serie cronológica
y de compuestos. En este sentido, debe ser entendido que el término
"una serie cronológica y de compuestos" se refiere a
administrar con intervalos de tiempo a un individuo los compuestos
usados para producir una respuesta inmune. Estos últimos compuestos
pueden comprender cualquiera de los siguientes componentes:
partículas oligoméricas, composición vacunal del ADN HCV,
polipéptidos del HCV.
\newpage
Con respecto a esto, una serie comprende
administrar, tanto:
- (I)
- un antígeno del HCV, tal como, por ejemplo, una partícula oligomérica, con intervalos de tiempo, o
- (II)
- un antígeno del HCV, tal como, por ejemplo, una partícula oligomérica en combinación con una composición vacunal del ADN HCV, en la cual dichas partículas y dicha composición vacunal de ADN HCV, puede ser administrada simultáneamente, o en diferentes intervalos de tiempo, incluyendo alternar los intervalos de tiempo, o
- (III)
- tanto (I) o (II), posiblemente en combinación con otros péptidos del HCV, con intervalos de tiempo.
En este sentido, debe quedar claro que una
composición vacunal del ADN HCV comprende ácidos nucleicos que
codifican para el péptido de la envoltura del HCV, incluyendo los
péptidos E1, E2, E1/E2, el péptido E1s, la SEQ ID No 13, la SEQ ID
No 14, el péptido NS3, otros péptidos del HCV, o partes de dichos
péptidos. Además, debe ser entendido que dichos péptidos del HCV
comprenden péptidos de la envoltura del HCV, incluyendo los
péptidos E1, E2, E1/E2, el péptido E1s, la SEQ ID No 13, la SEQ ID
No 14, el péptido NS3, otros péptidos del HCV, o partes de los
mismos. El término "otros péptidos del HCV" se refiere a
cualquier péptido del HCV o fragmento de los mismos con la
condición de que dicho péptido del HCV no es E1, E2, E1s, SEQ ID No
13, SEQ ID No 14, o NS3. En el punto II del esquema anterior, la
composición vacunal de ADN HCV comprende preferiblemente ácidos
nucleicos que codifican los péptidos de la envoltura del HCV. En el
punto II del esquema anterior, la composición vacunal de ADN HCV
consiste incluso más preferentemente de ácidos nucleicos que
codifican los péptidos de la envoltura del HCV, posiblemente en
combinación con una composición vacunal de ADN
HCV-NS3. En este sentido, debe quedar claro que una
composición vacunal de ADN HCV comprende un vector plásmido que
comprende una secuencia polinucleotídica que codifica un péptido
del HCV como es descrito anteriormente, unida operablemente a los
elementos regulatorios de la transcripción. Como es usado aquí, un
"vector plásmido" se refiere a una molécula de ácido nucleico
capaz de transportar otro ácido nucleico al cual ha sido unida.
Vectores preferidos son aquellos capaces de expresión y/o
replicación autónoma de ácidos nucleicos a los cuales ellos han
sido unidos. En general, pero no limitado a estos, los vectores
plásmidos son lazos de ADN de filamento doble circular los cuales,
en su forma de vector, no están enlazados al cromosoma. Como se usa
aquí, una "secuencia polinucleotídica" se refiere a
polinucleótidos tales como el ácido desoxirribonucleico (ADN), y,
cuando sea apropiado, ácido ribonucleico (ARN). El término debe ser
entendido también para incluir, como equivalentes, los análogos
tanto del ARN como del ADN hechos a partir de nucleótidos análogos,
y polinucleótidos de filamento doble y simples (sentido o
contra-sentido). Como es usado aquí, el término
"elementos regulatorios de la transcripción" se refiere a la
secuencia de nucleótido que contiene elementos regulatorios
esenciales, de manera que al ser introducidos en una célula de un
vertebrado vivo ésta es capaz de dirigir la maquinaria celular para
producir productos de traducción codificados por el polinucleótico.
El término "unido operablemente" se refiere a una
yuxtaposición donde los componentes son configurados de manera que
ejecuten su función usual. Así, los elementos regulatorios de la
transcripción unidos operablemente a una secuencia de nucleótido
son capaces de efectuar la expresión de dicha secuencia
nucleotídica. Aquellos versados en el arte pueden apreciar que
diferentes promotores transcripcionales, terminadores, vectores
portadores o secuencias de genes específicas pueden ser usadas
exitosamente.
Finalmente, la presente invención se relaciona
con un inmunoensayo para detectar el anticuerpo del HCV, dicho
inmunoensayo comprende: (1) proporcionar la partícula oligomérica
como la definida aquí, o un equivalente funcional de la misma, (2)
incubar una muestra biológica con dicha partícula oligomérica bajo
condiciones que permitan la formación del complejo
antígeno-anticuerpo, (3) determinar si dicho
complejo antígeno-anticuerpo comprende dicha
partícula oligomérica.
La presente invención será ahora ilustrada con
referencia a los siguientes ejemplos los cuales divulgan
realizaciones particularmente ventajosas. Sin embargo, debe ser
notado que estas realizaciones son meramente ilustrativas y no
pueden ser construidas como restrictivas en ningún modo.
\vskip1.000000\baselineskip
La proteína E1s del HCV (amino ácidos
192-326) fue expresada y purificada a partir de
células RK13 usando el virus vaccinia recombinante
pvHCV-11A de acuerdo al protocolo descrito en
Maertens y otros (PCT/EP 95/03031). En adición, la proteína E1
purificada en Empigen B-B al 3% la cual exhibe un
peso molecular aparente correspondiente al homodímero E1
(aproximadamente alrededor de 60 kDa; Figura 1), fue colectada y
las fracciones colectadas fueron nuevamente aplicadas a una
columna de cromatografía de exclusión de tamaño (de acuerdo al
PCT/EP 95/03031) y corridas en presencia de CHAPS al 0.2% o betaína
al 3%. Sorprendentemente, aunque la proteína E1s está desprovista
de su región de anclaje de la membrana, una población homogénea de
homo-oligómeros de E1 asociados específicamente con
un peso molecular aparente de 260-280 kDa pudiera
ser obtenida con ambos detergentes (Figura 2). Tal estructura
homo-oligomérica pudiera contener un número
aproximado de 9 monómeros de E1s. Debe quedar claro que éste último
es un estimado aproximado ya que la forma del oligómero puede
influenciar drásticamente su peso molecular aparente medido por
cromatografía de exclusión de tamaño. Al cambiar de CHAPS al 0.2% a
CHAPS al 0.05% y repitiendo el mismo procedimiento, el peso
molecular aparente además se desplazó más allá de la resolución de
la columna (vacío de la columna, > 600 kDa, Figura 3),
sugiriendo la formación de partículas. Cambiar de betaína al 3% a
betaína al 0.1% produjo una población de oligómeros de E1s con un
comportamiento similar (dato no mostrado). Otros detergentes
pudieron ser seleccionados por medio de los cuales pudiera ser
lograda la oligomerización asistida con detergente. La
oligomerización que conduce a la formación de partículas no es
única para los CHAPS o la betaína, ya que resultados similares
fueron obtenidos usando Tween-20 o
Tween-80, u octilglucósido. Además remociones
adicionales del detergente pueden ser posibles las que pueden
permitir la generación de partículas incluso más grandes. La
presencia del detergente puede, por lo tanto, no ser más necesaria
para obtener partículas. Las partículas pueden ser obtenidas por
ejemplo por SCC, si ningún detergente. Notablemente, un monómero E1
es aproximadamente de 31 kDa, mientras que un monómero E2 es de
aproximadamente 70 kDa. Estos valores, sin embargo, pueden diferir
dependiendo del estado de glicosilación de la proteína.
\vskip1.000000\baselineskip
Con vistas a confirmar el inesperado resultado
de que las partículas han sido creadas, las preparaciones de E1 en
CHAPS al 0.05% y betaína al 0.1%, preparadas de acuerdo al ejemplo
1, o en betaína al 0.1%, preparada por dilución de preparaciones en
betaína al 0.5%, fueron sometidos al análisis por medio de la
dispersión de luz dinámica (DLS).
La técnica de la dispersión de luz dinámica mide
el movimiento Bowniano y relaciona esto al tamaño de las
partículas. Mientras más grande la partícula, más lento será el
movimiento Bowniano. La velocidad del movimiento Bowniano es
definida por una propiedad conocida como el coeficiente de difusión
(generalmente dado por el símbolo D). El tamaño de la partícula es
calculado a partir del coeficiente de difusión usando la ecuación
de Stokes-Einstein: d(H)=kT/3\pi\etaD,
en la cual d(H) es el diámetro hidrodinámico, k es la
constante de Boltzmann, T es la temperatura absoluta, \eta es la
viscosidad. Notablemente, el diámetro medido es un valor que se
refiere a cómo una partícula se difunde dentro de un fluido. Por lo
tanto, se refiere al diámetro hidrodinámico. El coeficiente de
difusión es derivado de una función de
auto-correlación (variación de la fluctuación de la
intensidad de la luz con el tiempo). El instrumento usa un
co-relacionador controlado por computadora para
calcular la intensidad de la función de
auto-correlación automáticamente.
Para medir las distribuciones del tamaño, la
función de auto-correlación anterior es corregida
para obtener curvas lineales y el instrumento es equipado con un
programa de computadora para análisis de la distribución del
tamaño. Sin embargo, la técnica tiene hipótesis restrictivas
similares a aquellas de la técnica llamada dispersión de luz láser
de ángulo múltiple (MALLS) y ningún método puede ser considerado
que produzca datos absolutos. Los resultados de las distribuciones
del tamaño a partir de DLS tienen que ser interpretados como
indicadores semi-cuantitativos de la
poli-dispersidad, y no como una representación
verdadera de la distribución.
Muestras que contienen partículas de E1s
(80-400 \mug de E1s/ml en
PBS-CHAPS al 0.05%, betaína al 0.1% o 0.5%) fueron
pipeteadas en la celda de medición de un instrumento DLS LSP 3.53
equipado con un Láser HeNe 10 mW (PolymerLabs). Una lectura del
análisis es proporcionada en la Figura 4 (E1s en CHAPS al 0.05%) y
la Figura 5 (E1s en betaína al 0.1% o 0.5%).
Estos análisis efectivamente confirmaron el
resultado inesperado de que las estructuras de E1s obtenidas fueron
partículas monodispersas, esféricas. Las partículas de E1s en
PBS/betaína al 0.1% mostraron una distribución del tamaño promedio
de 21.3 \pm 4 nm, en PBS/betaína al 0.5%: 27.9 \pm 5 nm,
mientras que un diámetro de 12.5 fue obtenido para E1s en PBS/CHAPS
al 0.05%.
\vskip1.000000\baselineskip
Diez \mul de E1s (226 \mug/ml en PBS/CHAPS
al 0.05%; y 143 \mug/ml en PBS betaína al 3%) fue visualizado con
un teñido negativo estándar con 1% de acetato de uranilo sobre
rejillas de formvar estabilizadas con carbono. La muestra fue
aplicada por 30 segundos y luego enjuagada con dH_{2}O antes del
teñido durante 5 segundos y la fotografía
(Figura 6).
(Figura 6).
Los análisis estadísticos produjeron los
siguientes resultados: la partícula de E1s en CHAPS tuvo un
diámetro medio de 8.7 \pm 0.27 nm (rango 4.3-29.0;
95% CI 5.4) y que la partícula de E1s en betaína fue menos
homogénea con un diámetro medio de 9.7 \pm 0.55 nm (rango
4.3-40.5; 95% CI 11.0). Sorprendentemente, la
preparación de betaína al 3%, la cual inicialmente mostró un MW de
250-300 kDa analizada por SEC incluso muestra
partículas más grandes que la preparación de CHAPS al 0.05%, la
cual inicialmente mostró un MW >600 kDa. Por lo tanto tenemos
la hipótesis que las formas homo-oligoméricas
intermedias de E1s obtenidas por betaína al 3% pueden haber formado
partículas de orden superior con el paso del tiempo. Este efecto
sorprendente apunta a otras posibilidades para obtener partículas
de orden superior. Una distribución del tamaño de las partículas
(Figura 7) muestra que la preparación CHAPS es monodispersa, aunque
una prolongación a las partículas de tamaño más grande es
observada (hasta 29 nm para CHAPS al 0.05%). Ya que las estructuras
más grandes son sobre estimadas en los análisis DLS, la presencia
de estas partículas grandes, aunque menores en número, pueden
explicar el diámetro más grande obtenido por análisis DLS (ejemplo
2). La diferencia en el diámetro puede ser también explicada por
el hecho de que DLS mide una partícula en movimiento, mientras que
la microscopía electrónica mide las partículas estáticas. Debe
quedar claro que la inmunogenicidad de estas preparaciones como se
muestran en los ejemplos a continuación es debida a la integridad
de la preparación, y puede ser debida a las partículas mayores,
menores o promedios, o a la mezcla de las mismas.
\vskip1.000000\baselineskip
Un chimpancé (Phil) ya infectado por más de 13
años (5015 días antes de la inmunización) con una cepa del subtipo
1b del HCV fue vacunado con E1 (aa 192-326) que fue
derivada de una cepa diferente del genotipo 1b, con 95.1% de
identidad en el nivel de amino ácidos (ver también la Tabla 2), y
la cual fue preparada como se describió en los ejemplos
1-3. El chimpancé recibió un total de 6
inmunizaciones intramusculares cada una de 50 \mug de E1 en
PBS/CHAPS al 0.05% mezclada con RIBI R-730
(MPLA+TDM+CWS) de acuerdo al protocolo del fabricante (Ribi Inc.
Hamilton, MT). Las 6 inmunizaciones fueron administradas en dos
series de tres dosis con un intervalo de tres semanas y con un
período de retardo de 6 semanas entre las dos series. Comenzando
150 días antes de la inmunización, durante el período de
inmunización y hasta 1 año post inmunización (pero ver abajo) el
chimpancé fue continuamente monitoreado por varios parámetros
indicativos de la actividad de la enfermedad inducida por el HCV.
Estos parámetros incluyeron la química de la sangre, ALT, AST,
gammaGT, carga viral en el suero, carga viral en el hígado, e
histología del hígado. En adición, la respuesta inmune a la
inmunización fue monitoreada tanto a nivel celular como humoral.
Durante este período el animal fue también monitoreado para
cualquier efecto adverso a la inmunización, tal como el cambio en
el comportamiento, síntomas clínicos, peso corporal, temperatura y
reacciones locales (enrojecimiento, hinchazón, dureza) tales
efectos no fueron detectados.
Claramente, los niveles de la ALT (y
especialmente los de la gammaGT, dato no mostrado) disminuyeron tan
pronto como el nivel del anticuerpo contra la E1 alcanzó su máximo
(Figura 8). La ALT rebotó bastante rápidamente tan pronto como los
niveles del anticuerpo comenzaron a declinar, pero la gammaGT
permaneció en un nivel más bajo mientras que el
anti-E1 permaneció detectable.
El antígeno E2 en el hígado disminuyó hasta
niveles casi indetectables durante el período en el cual el
anti-E1 fue detectable y el antígeno E2 rebotó
ligeramente después de la desaparición de estos anticuerpos. Junto
con Core y el antígeno E2 haciéndose indetectable en el hígado, la
inflamación del hígado disminuyó marcadamente (ver también Tabla
3). Esto es una prueba importante de que la vacuna induce a una
reducción del daño en el hígado, probablemente aclarando, al menos
parcialmente, los antígenos virales de su órgano diana principal,
el hígado.
Los niveles de viremia, medidos por el Monitor
del HCV Amplicor (Roche, Basel, Suiza), permanecieron
aproximadamente sin cambios en el suero durante el período de
estudio completo.
Análisis más detallados de la respuesta humoral
revelaron que el título del punto final máximo alcanzó 14.5 x
10^{3} (después de la sexta inmunización) y que éste título cayó
hasta lo indetectable 1 año post inmunización (Figura 8). La Figura
9 muestra que los epítopos principales, los cuales pueden ser
simulados por polipéptidos, reconocidos por las células B están
localizados en la región del terminal N de E2 (péptidos V1V2 y
V2V3, para detalles sobre los péptidos usados ver la Tabla 4). Ya
que la reactividad contra la E1 recombinante es superior y más
perdurable, puede también ser deducido de esta figura, que los
anticuerpos que reconocen estos péptidos representan solamente
parte de la población total de anticuerpos contra la E1. La parte
remanente es dirigida contra los epítopos los cuales no pueden ser
simulados por los péptidos, es decir los epítopos discontinuos.
Tales epítopos están presentes solamente en la molécula E1 completa
o incluso solamente en la estructura que semeja a la partícula. Una
respuesta inmune tal contra E1 es única, al menos comparada a lo
que es normalmente observado en los portadores crónicos humanos del
HCV (WO 96/13590 de Maertens y otros) y en chimpancés (van Doom y
otros, 1996), quien eleva los anticuerpos anti-E1
en su curso natural de infección. En aquellos pacientes, el
anti-E1 está también en parte dirigido a los
epítopos discontinuos pero una mayor proporción está dirigida
contra el epítopo C4 (\pm50% del suero del paciente), una menor
proporción contra V1V2 (fluctuando de 2-70%
dependiendo del genotipo), y la reactividad contra V2V3 fue sólo
excepcionalmente registrada (Maertens y otros, 1997).
Los análisis de la reactividad de las células T
indicaron que también este sector del sistema inmune es estimulado
por la vacuna en un modo específico, como un índice de estimulación
de la elevación de las células T de 1 a 2.5, y permanece en cierto
modo elevado durante el período de seguimiento (Figura 10). Es esta
reactividad de la célula T la que es solamente vista en
respondedores a largo plazo a la terapia con interferón (ver:
PCT/EP 94/03555 de Leroux-Roels y otros;
Leroux-Roels y otros, 1996).
\vskip1.000000\baselineskip
Un chimpancé (Ton) ya infectado por más de 10
años (3809 días antes de la inmunización) con HCV del genotipo la
fue vacunado con E1 del genotipo 1b, con solamente un 79.3% de
identidad en el nivel de amino ácidos (ver también la Tabla 2), y
preparado como se describió en los ejemplos previos. El chimpancé
recibió un total de 6 inmunizaciones intramusculares de 50 \mug
de E1 en PBS/CHAPS al 0.05% cada una mezclada con RIBI
R-730 de acuerdo al protocolo de los fabricantes
(Ribi Inc. Hamilton, MT). Las 6 inmunizaciones fueron administradas
en dos series de tres dosis con un intervalo de tres semanas y con
un período de retardo de 4 semanas entre las dos series. Comenzando
250 días antes de la inmunización, durante el período de
inmunización y hasta 9 meses (pero ver abajo) post inmunización el
chimpancé fue continuamente monitoreado por varios parámetros
indicativos de la actividad de la enfermedad inducida por el HCV.
Estos parámetros incluyeron la química de la sangre, ALT, AST,
gammaGT, carga viral en el suero, carga viral en el hígado, e
histología del hígado. En adición, la respuesta inmune a la
inmunización fue monitoreada tanto a nivel celular como humoral.
Durante este período el animal fue también monitoreado para
cualquier efecto adverso a la inmunización, tal como el cambio en
el comportamiento, síntomas clínicos, peso corporal, temperatura y
reacciones locales (enrojecimiento, hinchazón, dureza). Tales
efectos no fueron detectados. Claramente, los niveles de la ALT (y
niveles de la gammaGT, datos no mostrados) disminuyeron tan pronto
como el nivel del anticuerpo contra la E1 alcanzó su máximo (Figura
11). La ALT y la gammaGT rebotaron tan pronto como los niveles del
anticuerpo comenzaron a declinar, pero la ALT y la gammaGT
permanecieron en un nivel más bajo durante el siguiente período
completo. Los niveles de la ALT fueron incluso significativamente
reducidos después de la vacunación (62 \pm 6 U/l) comparado con
el período anterior a la vacunación (85 \pm 11 U/l). Ya que
menos marcadores de daño al tejido fueron recuperados en el suero,
estos hallazgos fueron una primera indicación de que la vacunación
indujo una mejora de la enfermedad del hígado.
Los niveles del antígeno E2 se hicieron
indetectables en el período en el cual el anti-E1
permaneció por debajo de un título de 1.0 x 10^{3}, pero se hizo
detectable otra vez al momento de menores niveles del anticuerpo
E1. Junto con la desaparición de los antígenos del HCV, la
inflamación del hígado decreció marcadamente de hepatitis activa
crónica moderada a formas mínimas de hepatitis persistente crónica
(Tabla 3). Esta es otra prueba importante de que la vacuna induce
a la reducción del nivel de daño en el hígado, probablemente
aclarando, al menos parcialmente, el virus de su órgano diana
principal, el hígado.
Los niveles de viremia, medidos por el Monitor
del HCV Amplicor (Roche, Basel, Suiza), en el suero permanecieron
aproximadamente en niveles similares durante el período de estudio
completo. Análisis más detallados de la respuesta humoral revelaron
que el título del punto final máximo alcanzado fue 30 x 10^{3}
(después de la sexta inmunización) y que este título cayó hasta 0.5
x 10^{3} nueve meses después de la inmunización (Figura 11). La
Figura 12 muestra que los epítopos principales, los cuales pueden
ser simulados por péptidos, y son reconocidos por las células B,
están localizados en la región del terminal N (péptidos V1V2 y
V2V3, para detalles sobre los péptidos usados ver la Tabla 4). Ya
que la reactividad contra la E1 recombinante es superior y más
perdurable, puede también ser deducido de esta figura, que los
anticuerpos que reconocen estos péptidos representan solamente
parte de la población total de anticuerpos contra la E1. La parte
remanente es más probablemente dirigida contra los epítopos los
cuales no pueden ser simulados por los péptidos, es decir los
epítopos discontinuos. Tales epítopos probablemente están presentes
solamente en la molécula E1 completa o incluso solamente en la
estructura que semeja a la partícula. Una respuesta inmune tal
contra E1 es única, al menos comparada a lo que es normalmente
observado en los portadores crónicos humanos del HCV los cuales
tienen anti-E1 detectables. En aquellos pacientes,
el anti-E1 es en parte también discontinuo, pero
una mayor proporción está dirigida contra el epítopo C4 (50% del
suero del paciente), una menor proporción contra V1V2 (fluctuando
de 2-70% dependiendo del genotipo), y
excepcionalmente fue registrada reactividad contra V2V3 (Maertens y
otros, 1997). Como este chimpancé es infectado con un aislado la,
la respuesta del anticuerpo fue también evaluada por reactividad
cruzada hacia el antígeno E1-1a. Como puede ser
visto en la Figura 13, tales anticuerpos
reactivos-cruzados son efectivamente generados,
aunque, ellos forman solamente parte de la población total del
anticuerpo. Remarcable es la correlación entre la reaparición del
antígeno viral en el hígado y la desaparición de los anticuerpos
anti-la-E1 detectables en el
suero.
Los análisis de la reactividad de la célula T
indicaron que también este sector del sistema inmune es estimulado
por la vacuna en un modo específico, ya que el índice de
estimulación de estas células T se eleva de 0.5 a 5, y permanece
elevado durante el período de seguimiento (Figura 14).
\vskip1.000000\baselineskip
Ya que los títulos del anticuerpo E1 como se
observaron en los ejemplos 4 y 5 no fueron estables y declinaron
con el tiempo, incluso a niveles indetectables para el chimpancé
infectado con el subtipo 1b, fue investigado si esta respuesta al
anticuerpo podría ser aumentada nuevamente por dosificación
suplementaria adicional. Ambos chimpancés fueron inmunizados otra
vez con tres inmunizaciones intramusculares consecutivas con una
semana de intervalo (50 \mug de E1 mezclado con adyuvante RIBI).
Como puede ser juzgado a partir de las Figuras 8 y 11, la respuesta
anti-E1 pudo efectivamente ser reforzada, una vez
más el antígeno viral en el hígado disminuyó por debajo del límite
de detección. La carga viral en el suero permaneció constante a
pesar de que en Ton (Figura 11) un nivel de viremia de <
10^{5} equivalentes de genoma por ml fue medido por primera vez
durante el período de seguimiento.
Notable es el hallazgo de que, como fue el caso
para la primera serie de inmunizaciones, el chimpancé infectado con
la cepa del HCV del subtipo 1b (Phil) responde con títulos de
anti-E1 más bajos, que el chimpancé infectado con
la cepa del HCV del subtipo 1a (título máximo en la primera ronda
14.5 x 10^{3} contra 30 x 10^{3} para Ton y después de la
dosificación suplementaria adicional sólo 1.2 x 10^{3} para Phil
contra 40 x 10^{3} para Ton). Aunque para ambos animales el
efecto benéfico parece ser similar, podría ser concluido a partir
de este experimento que la inmunización de un portador crónico con
la proteína E1 derivada de otro subtipo o genotipo puede ser
especialmente beneficiosa para alcanzar títulos más altos, tal vez
evitando una supresión inmune específica y preexistente que existe
en el hospedero e inducida por el genotipo o subtipo infectante.
Alternativamente, los títulos más bajos observados en el medio
homólogo (vacuna 1b + infección 1b) pueden indicar la unión de la
mayor parte de los anticuerpos al virus. Por lo tanto, los
anticuerpos inducidos pueden poseer capacidad neutralizante.
También otros epítopos además de aquellos en E1
pueden estar vinculados con el aclaramiento del HCV durante la fase
aguda o por la terapia con interferón. Varios de estos epítopos
están localizados dentro de la NS3 (Leroux-Roels y
otros, 1996; Rehermann y otros, 1996 y 1997; Diepolder y otros,
1995 y 1997). Dos de los epítopos principales son el epítopo CTL
mapeado por Rehermann y colaboradores (aa
1073-1081), y el epítopo de la célula T (CD4)
mapeado por Diepolder y colaboradores (aa
1248-1261). Desafortunadamente, estos epítopos son
dispersados por toda la proteína NS3. Para tener al menos aquellos
epítopos disponibles, sería necesaria una proteína relativamente
grande (aa 1073-1454). Producir una proteína grande
tal usualmente trae como resultado un bajo rendimiento, y en la
vacunación puede dar como resultado una respuesta que es solo para
una pequeña parte dirigida a los epítopos importantes. Por lo
tanto, la producción de una proteína más pequeña sería una
solución más adecuada a este problema. Para hacer esto, algunos de
los epítopos necesitan ser reposicionados dentro de tal proteína
más pequeña. Tomando ventaja del conocimiento existente, es decir
otro epítopo CTL (aa 1169-1177) que no está
vinculado con el aclaramiento del HCV (Rehermann y otros, 1996,
1997), una molécula de NS3 fue designada para comenzar en el aa
1166 y terminar en el aa 1468 (Tabla 5). Esta construcción ya
incluye los epítopos descritos por Weiner y colaboradores, y
Diepolder y colaboradores. Mutando la región 1167 a 1180 de la
secuencia de la región 1071 a 1084, el epítopo CTL no relevante fue
cambiado al epítopo que Rehernamm y colaboradores encontraron estar
vinculado con el aclaramiento viral. La construcción fue
adicionalmente modificada para contener una metionina en la
posición 1166 para permitir el inicio de la traducción. Esta
metionina puede ser escindida en E. Coli ya que esta es
seguida por una alanina. De esta forma, la introducción de nuevos
epítopos, que no están presentes en la NS3 natural, está limitado a
un mínimo. Alternativamente, si la expresión de esta proteína fuera
engorrosa, el epítopo CTL pudiera estar vinculado al terminal C en
el aa 1468 como es descrito en detalle en la Tabla 5.
La secuencia de codificación de un fragmento
NS-3 del HCV fue aislado y expresado como descrito
en Maertens y otros (PCT/EP99/02547; clon 19b; aa
1188-1468 HCV fue usado como material de partida).
El epítopo CTL como es descrito por Rehermann, y no presente en el
fragmento NS-3 19b fue fusionado a este fragmento.
Ambas fusiones del terminal N y terminal C fueron construidas, ya
que los efectos de la fusión sobre los niveles de expresión,
susceptibilidad a la ruptura proteolítica y funcionalidad pueden
ser afectados por la posición del epítopo.
Usando el plásmido p1GR12NS-3,
el cual es un plásmido de expresión de la E. Coli que
expresa el fragmento 19b NS-3 bajo el control del
promotor hacia la izquierda de fago lambda, como un modelo para
PCR, secuencias que codifican para 19b NS3, fusionados
respectivamente en el terminal N- y C- con el epítopo CTL de
Rehermann (llamados NS-319bTn y NS-3
19bTC, respectivamente), fueron primero subclonados en el vector
de clonación pGEM-T (Promega) ocasionando los
vectores pGEM-TNS-319bTn y
pGEM-TNS-319bTc. Las secuencias
amplificadas por PCR fueron verificadas por análisis de secuencias
de ADN.
En el caso de fusionar la secuencia del epítopo
de la célula T a la región del terminal N de la
NS-3, el PCR fue llevado a cabo con un cebador
sentido largo que porta el epítopo CTL y un cebador antisentido
corto homólogo a las secuencias 3' del codón de terminación 19b
NS-3. Las secuencias del cebador son descritas
abajo.
\vskip1.000000\baselineskip
En el caso del NS-3 fusionado en
el terminal C, el PCR fue llevado a cabo con un cebador en el
sentido más corto homólogo a las secuencias 5' del codón de
iniciación NS-3 19b y un cebador antisentido más
largo que porta el epítopo CTL seguido por los codones de
terminación en la estructura. Las secuencias de cebadores son
descritas abajo.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Comenzando a partir de las secuencias que
codifican clonadas en los vectores pGEM-T, las
secuencias NS-3 19bT son insertadas en el vector de
expresión de la E. Coli p1GR12. Para el NS-3
19bT fusionado en el terminal N, la secuencia que codifica el
NS-3 19bT fue aislada como un fragmento 379 bp
NcoI/SnaBI y ligada con fragmentos SnaBI/AllwNI y A1wN1/NcoI del
vector p1GR12NS-3, dando como resultado el vector
p1GR12NS-3Tn. Para el NS-3 19bT
fusionado en el terminal C, la secuencia que codifica el
NS-3 19bT fue aislada como un fragmento 585 bp
SnaBI/SpeI e insertada en el vector p1GR12NS-3
abierto SnaBI/SpeI, dando como resultado el vector
p1GR12NS-3Tc.
Ambos vectores p1GR12NS-3Tn y
p1GR12NS-3Tc fueron subsecuentemente transformados
a la cepa de expresión de la E. Coli MC1061 (pAcl) y después
de la inducción de la temperatura del promotor P_{L} lambda, los
niveles de expresión fueron analizados en SDS-PAGE
y transferencia Western, usando un suero anti NS-3
de conejo policlonal.
\vskip1.000000\baselineskip
Secuencia de amino ácido de la proteína
NS-3 19bTn
\vskip1.000000\baselineskip
Secuencia de amino ácido de la proteína
NS-3 19bTc
\newpage
Secuencia nucleotídica de la región que
codifica para NS-3 19bTn
Secuencia nucleotídica de la
región que codifica para NS-3
19bTc
Las células de E. coli de los cultivos en
erlenmeyer fueron rotas mediante un destructor de células (CSL,
modelo B) a 1.4 kbar en 50 mM TRIS, pH 8. Este lisado fue aclarado
por centrifugación (15000 g, 30 min, 4ºC). El sobrenadante fue
descargado, ya que para ambas construcciones del terminal N y del
terminal C el NS3 fue recuperado en forma de pelota. Esta pelota
cambió para ser altamente estable para la construcción del terminal
N permitiendo el lavado completo (primer lavado con sarcosil 2%,
0.5 M de cloruro de guanidina y 10 mM DTT, segundo y tercer lavado
con Triton X-100 1%, 0.5 M de cloruro de guanidina
y 10 mM de EDTA) antes de la solubilización. Este no fue el caso
para la construcción del terminal C. La purificación fue luego
continuada en la construcción del terminal N. La pelota lavada fue
finalmente disuelta en 6 M de cloruro de guanidina/50 mM de
Na_{2}HPO_{4}, a pH 7.2 y fue sulfonada como es descrito en
Maertens y otros (PCT/EP99/02547). La pelota sulfonada fue primero
desalada en una columna Sephade G25 a 6 M Urea/50 mM
trietanolamina, pH 7.5, y finalmente purificada por dos
cromatografías de intercambio aniónico secuencial en la misma
composición buffer. El primer intercambio aniónico fue desarrollado
en una columna Hyper DQ (50 \mum) (BioSpra Inc. Marlborough, Ma.
USA) y la NS3 fue recuperada entre 0.11 y 0.19 M de NaCl. Después
de la disolución, estas fracciones fueron aplicadas a una segunda
columna Hyper DQ (20 pm) (BioSpra Inc. Marlborough, Ma. USA) y la
NS3 fue recuperada en las fracciones que contienen 0.125 M de NaCl.
Estas fracciones fueron desaladas a 6 M Urea en PBS, pH 7.5. La
pureza final fue estimada > 90% basada en
SDS-PAGE seguida del teñido con plata. El
secuenciamiento del terminal N por degradación EDMAN mostró que
esta NS3 tiene un terminal N intacto, en el cual el epítopo
deseado está presente en la secuencia correcta. Se confirmó también
que la metionina usada para el inicio de la traducción fue
escindida como se predijo.
\vskip1.000000\baselineskip
Una respuesta homóloga inmunodominante ha sido
notada para la región HVR I de E2. Esta respuesta será de poco uso
en una aproximación de vacuna, ya que una aproximación de vacuna es
un medio heterólogo (la cepa de la vacuna es siempre diferente de
las cepas de campo). Por lo tanto, la supresión de esta región
sería necesaria para tener una proteína E2 que induce los
anticuerpos contra las regiones de E2 más conservadas, pero menos
inmunogénicas. Analizando cuidadosamente la secuencia líder E2 y la
región hiper-variable E2 fue diseñada la
construcción más ideal para la expresión de una proteína E2 sin HVR
I. Esta construcción permite comenzar la expresión de un péptido E2
en la posición aa 409 en vez de aa 384. Como una secuencia líder
los 20 amino ácidos del terminal C de E1 fueron usados. Sin
embargo, ya que la delineación de esta HVR es ambigua, una segunda
versión fue hecha (iniciando en aa 412), la cual también tiene una
alta probabilidad de ser escindida en la posición correcta.
\vskip1.000000\baselineskip
En el cassette de expresión, la secuencia de
codificación de E2-715 debe estar precedida por un
péptido señal líder de E1, iniciando en Met364. Por lo tanto, en el
plásmido pvHCV-92 (Figura 15), que contiene la
secuencia que codifica para E2-715 del HCV del tipo
1b con la versión larga del péptido señal de E1 (iniciando en
Met347), fue realizada una supresión mediante una digestión doble
con EcoRI y NcoI, seguida por una reacción completa de los extremos
5'-protuberantes con polimerasa T4 del ADN. La
ligadura de los extremos romos obtenidos (recirculación del
fragmento-bp 6621), dio como resultado un plásmido
pvHCV-99, el cual codifica para la misma proteína
(E2-715) con un péptido señal líder de E1 más corto
(iniciando en Met364). El pvHCV-99 fue depositado
en la lista de la cepa como ICCG 3635. Deber quedar claro que
secuencias de señales heterólogas o del HCV de longitud variable
pueden ser usadas.
Los plásmidos pvHCV-100 y -101
deben contener una supresión en la secuencia E2, es decir, una
supresión de la región I hipervariable (HVR-I). En
el plásmido pvHCV-100, los amino ácidos
384(His)-408(Ala) fueron suprimidos,
mientras que en el plásmido pvHCV-101 los amino
ácidos 384(His)-411(Ile) fueron
suprimidos.
\vskip1.000000\baselineskip
Para la construcción del
pvHCV-100, dos oligonucleótidos fueron
diseñados:
La amplificación PCR (desnaturalización 5 min
95ºC, 30 ciclos de amplificación que consiste en el recocido a
55ºC, polimerización a 72ºC, y desnaturalización a 95ºC durante 1
min cada una, elongación durante 10 min a 72ºC) del modelo
pvHCV-99 con Gpt-pr[3757] y
HCV-pr 408 [8750] dio como resultado un fragmento
bp 221, mientras que la amplificación con HCV-pr
409[8749] y TKr-pr[3756] dio como
resultado un fragmento bp 1006. Ambos fragmentos PCR se
sobrepusieron uno al otro por 19 nucleótidos. Estos dos fragmentos
fueron reunidos y amplificados por PCR con los cebadores
Gpt-pr[3757] y
TKr-pr[3756]. El fragmento bp 1200 resultante
fue digerido con EcoRI y HinDIII y ligado en el vector pgsATAl8
[ICCG 1998] digerido con EcoRI/HinDIII (5558bp). Esta construcción,
pvHCV-100, fue analizada por análisis de secuencia
y restricción, y depositado en la lista de la cepa como ICCG
3636.
Para la construcción del
pvHCV-101, dos oligonucleótidos fueron
diseñados:
\vskip1.000000\baselineskip
La amplificación PCR del modelo
pvHCV-99 con Gpt-pr[3757] y
HCV-pr 410 [8748] dio como resultado un fragmento
bp 221, mientras que la amplificación con HCV-pr
411[8747] y TKr-pr[3756] dio como
resultado un fragmento bp 997. Ambos fragmentos PCR se
sobrepusieron uno al otro por 19 nucleótidos. Estos dos fragmentos
fueron reunidos y amplificados por PCR con el
Gpt-pr[3757] y
TKr-pr[3756]. El fragmento bp 1200 resultante
fue digerido con EcoRI y HinDIII y ligado en el vector pgsATA18
[ICCG 1998] digerido con EcoRI/HinDIII (5558 bp). Esta
construcción, pvHCV-101, fue analizada por análisis
de secuencia y restricción, y depositada en la lista de la cepa
como ICCG 3637.
Todos los plásmidos fueron chequeados por
análisis de secuencia y depositados en la lista de cepas de
Innogenetics. Para cada plásmido fueron hechas mini preparaciones
de ADN (PLASmix) bajo condiciones estériles y colectadas. La
concentración de ADN fue determinada y la QA fue realizada por
análisis de restricción. El ADN purificado fue usado para regenerar
virus vaccinia recombinante como es descrito en Maertens y otros
(PCT/EP95/03031). Los virus recombinantes vvHCV-100
y vvHCV-101 fueron, sin embargo, generados en
células Vero certificadas WHO. Después de dos rondas de
purificación de la placa el producto de expresión fue analizado por
medio del análisis de transferencia Western como es descrito en
Maertens y otros (PCT/EP95/03031). Las proteínas fueron
visualizadas por un anticuerpo monoclonal anti-E2
específico (IGH 212, el cual puede ser obtenido de los inventores
en Innogenetics N.V., Zwijnaarde, Bélgica) de un peso molecular
estimado de 69 y 37 kDa para vvHCV-100 y de 68 y 35
kDa para vvHCV-101. Estos pesos moleculares indican
la presencia tanto de la proteína E2 glicosilatada como de la
proteína E2 no glicosilatada, lo cual fue confirmado por
tratamiento de las muestras antes del análisis de transferencia
Western con PNGaseF. Este tratamiento da como resultado la
detección de una sola proteína individual de 37 kDa y 35 kDa para
vvHCV-100 y vvHCV-101,
respectivamente.
Secuencia de Amino ácido de la E2 madura,
derivada del pvHCV-100
Secuencia de Amino ácido de la
E2 madura, derivada del
pvHCV-101
Como se estableció en el ejemplo 1, la proteína
E1s fue purificada de acuerdo al protocolo descrito en PCT/EP
95/03031 de Maertens y otros. Este protocolo incluye la
modificación covalente de las cisteínas (cisteínas libres y
cisteínas involucradas en la formación del puente intermolecular,
estas últimas después de la reducción de estos puentes de cisteínas
usando DTT) usando derivados de maleimida (N-etil
maleimida y biotina-maleimida, ambos obtenidos de
Sigma). Como un método alternativo para bloquear la maleimida,
fueron también evaluados halógenos activos, estos compuestos, es
decir los halógenos activos, bloquean las cisteínas libres por
medio de la alquilación. A modo de ejemplo, un halógeno activo
(iodoacetamida, Merck) fue evaluado. El mismo protocolo fue usado
para purificar E1 como es descrito en Maertens y otros (PCT/EP
95/03031), pero en vez de compuestos maleimida, fue usada la
iodoacetamida. La proteína E1s obtenida por este procedimiento se
comportó a través del procedimiento completo de purificación de
manera similar a las proteínas bloqueadas con maleimida. Debido la
disminución final de la concentración del detergente CHAPS a 0.05%
o el cambio a betaína al 0.5% como es descrito en el ejemplo 1,
fueron obtenidas partículas similares como se determinó por DLS. El
efecto sorprendente fue encontrado, sin embargo, en la inmunización
de ratones con esta E1s modificada con acetamida.
En total tres series de 6 ratones cada una
fueron inmunizados con E1s usando tres inyecciones con un
intervalo de tres semanas, cada inyección consistiendo de 5 \mug
de E1s en 100 \mug/ml de PBS y mezclado con un volumen igual de
adyuvante RIBI (R-700). La primera serie recibió
E1-maleimida formulada en CHAPS al 0.05%, una
segunda serie recibió E1-acetamida también
formulada en CHAPS al 0.05%, mientras que una tercera serie recibió
E1-acetamida formulada con betaína al 0.12%.
Finalmente, todos los ratones fueron desangrados 10 días después de
la tercera inmunización. Los títulos del punto final (definido
como la dilución del suero todavía resultante en un OD 2 veces
mayor que los valores anteriores) para cada animal individualmente
fueron determinados contra E1-maleimida y
E1-acetamida. La Figura 17 muestra estos títulos
del punto final, presentados como la media con desviaciones
estándar. Los ratones que recibieron E1-maleimida
montaron solamente una respuesta del anticuerpo la cual es capaz de
reconocer los epítopos que contienen maleimida (ninguna reactividad
en E1-acetamida), los ratones que recibieron
E1-acetamida montaron claramente una respuesta del
anticuerpo contra los epítopos verdaderos de E1, ya que los
anticuerpos son reactives tanto contra E1-acetamida
como contra E1-maleimida. Esto fue claramente
demostrado en un experimento adicional, en el cual los anticuerpos
para las regiones específicas de E1 fueron determinados usando
péptidos los cuales no fueron ni modificados con acetamida ni con
maleimida. Los resultados, como se muestra en la figura 18,
demuestran que los ratones inmunizados con
E1-acetamida (CHAPS y betaína formuladas) si montan
una respuesta del anticuerpo que es capaz de reconocer los péptidos
V1V2, V2V3, V3V4, V5C4, C4V6. Como V6 no fue parte de E1s, se
puede concluir que los anticuerpos fueron montados contra C4, V3
(V3V4 es positivo mientras que V4V5 no lo es) y V1V2. Los ratones
inmunizados con E1s-maleimida montan solo una
respuesta muy baja contra los péptidos V1V2 y V2V3. Esto remarcó
una vez más el hecho que el título razonablemente alto medido para
estos anticuerpos de ratón contra la E1s-maleimida
es principalmente dirigido contra los epítopos dependientes de
maleimida. En adición, fuimos capaces de probar que la respuesta
inducida a la E1s-acetamida es parcialmente del tipo
Th1, ya que una cantidad sustancial de los anticuerpos inducidos
es del subtipo IgG2(a+b), la cantidad de IgG2 es aún mayor
para la formulación de betaína comparada con la formulación de
CHAPS (Figura 19). A partir de estos resultados se concluyó que las
proteínas de la envoltura del HCV, en las cuales al menos una
cisteína (pero potencialmente más de una cisteína) es alquilatada,
son proteínas extremadamente inmunogénicas.
Consecuentemente, la E1 modificada con acetamida
formulada en betaína fue también usada para la dosificación
suplementaria adicional de los chimpancés Phil y Ton. Ambos
chimpancés fueron inmunizados nuevamente con dos inmunizaciones
intramusculares consecutivas con un intervalo de tiempo de tres
semanas (50 \mug de E1 mezclada con adyuvante RIBI como para los
ejemplos 4 y 5). Como puede ser juzgado a partir de las Figuras 20
y 21, la respuesta anti-E1 pudo efectivamente ser
incrementada otra vez, y esto para niveles más altos que los
obtenidos en la inmunizaciones previas después de dos inyecciones.
Esta titulación fue realizada contra una estándar, la cual es una
mezcla de tres sueros anti-E1 de título alto humano
(obtenido de los portadores crónicos del HCV). El título
anti-E1 de estos sueros fue definido como una
unidad/ml. En el chimpancé Phil (Figura 20), los títulos dos veces
tan altos como en los portadores humanos fueron inducidos solamente
después de dos inmunizaciones. En el chimpancé Ton (Figura 21), los
títulos hasta 140 pliegues más altos fueron inducidos. Esto
enfatiza una vez más la alta inmunogenicidad de estas partículas de
E1.
La E1s-acetamida como la
descrita en el ejemplo 9 fue además evaluada como antígeno para la
detección de anticuerpos anti-E1 en muestras de
suero para portadores del HCV crónico humano. A modo de ejemplo
estos antígenos fueron enlazados a membranas LIA, y las bandas
fueron procesadas esencialmente como es descrito en Serrín y otros
(1998). Las muestras de suero de 72 donantes de sangre fueron
evaluadas primero, para determinar la concentración optima del
antígeno E1 que puede ser usada en el ensayo para excluir
"falsos" positivos. Para la E1s-maleimida,
esta concentración probó ser 8 \mug/ml, mientras que para la
E1s-acetamida una concentración hasta 50 \mug/ml
no dio resultados positivos falsos (ninguna muestra mostrando una
tinción de color relativa por encima de 0.5). Usando 8 y 50
\mug/ml, respectivamente, para la E1s-maleimida y
la E1s-acetamida 24 sueros de portadores crónicos
del HCV fueron seleccionados para anticuerpos contra E1s. Como se
muestra en la Tabla 6, la E1s-acetamida da como
resultado claramente más muestras que registran positivo (67%
contra 38% para la E1-maleimida). No fue encontrada
ninguna muestra que solo registre positivo en la
E1s-maleimida. Para las muestras que registran
positivo tanto en la E1s-maleimida como en la
E1s-acetamida, la reactividad en la última es mayor.
A partir de este ejemplo puede ser concluido que las proteínas de
la envoltura alquilatada del HCV son mejores antígenos para
detectar los anticuerpos humanos que las proteínas de la envoltura
modificada con maleimida.
\vskip1.000000\baselineskip
La E1s y la E2s (vvHCV-44)
fueron producidas y purificadas como se describió en Maertens y
otros PCT/EP95/
030301 excepto por el hecho que la modificación de la maleimida fue reemplazada por alquilación usando iodoacetamida. La E1s y la E2s en Empigen solo al 3% o como una mezcla equimolar fueron inyectados sobre una columna Superdex-200 PC 3.2/30 equilibrada en PBS/CHAPS al 0.2%. Esta columna es diseñada para usar con el equipo HPLC SMART^{TM} de Pharmacia LKB (Suecia). Las fracciones fueron seleccionadas por medio de tres sándwich ELISAs diferentes. Para estos ELISAs los monoclonales específicos, E1-(IGH 207) y E2-(IGH223) fueron recubiertos a 2 \mug/ml. Las fracciones de la filtración en gel fueron incubadas en una dilución 1/2500. Otros dos monoclonales E1 (IGH 200) y E2 (IGH 212), conjugados con biotina fueron usados para la detección del antígeno de enlace. El sistema estreptavidina-HRP/TMB fue usado para desarrollar el enlace biotina hacia un color amarillo el cual fue medido
a 450 nm.
030301 excepto por el hecho que la modificación de la maleimida fue reemplazada por alquilación usando iodoacetamida. La E1s y la E2s en Empigen solo al 3% o como una mezcla equimolar fueron inyectados sobre una columna Superdex-200 PC 3.2/30 equilibrada en PBS/CHAPS al 0.2%. Esta columna es diseñada para usar con el equipo HPLC SMART^{TM} de Pharmacia LKB (Suecia). Las fracciones fueron seleccionadas por medio de tres sándwich ELISAs diferentes. Para estos ELISAs los monoclonales específicos, E1-(IGH 207) y E2-(IGH223) fueron recubiertos a 2 \mug/ml. Las fracciones de la filtración en gel fueron incubadas en una dilución 1/2500. Otros dos monoclonales E1 (IGH 200) y E2 (IGH 212), conjugados con biotina fueron usados para la detección del antígeno de enlace. El sistema estreptavidina-HRP/TMB fue usado para desarrollar el enlace biotina hacia un color amarillo el cual fue medido
a 450 nm.
Este sistema ELISA fue usado en un medio
homólogo (anti-E1
recubrimiento/anti-E1 detección o
anti-E2 recubrimiento/anti-E2
detección) y uno heterólogo (anti-E1
recubrimiento/anti-E2 detección). Este último
teóricamente sólo detecta partículas en las cuales tanto E1 como E2
están incorporadas. Las fracciones reactivas fueron combinadas,
concentradas sobre un filtro 10 kDa, y otra vez cromatografiadas
sobre Superdex-200 en PBS/CHAPS al 0.05%. Todas
estas fracciones fueron probadas para reactividad usando diferentes
montajes ELISA. Como puede ser juzgado a partir de la Figura 22, la
adición de E2 a E1 no da como resultado un mayor cambio en el
tiempo de retención, comparado con E1 solo, indicando que
efectivamente las partículas están todavía presentes. Estas
partículas contienen tanto E1 como E2, ya que solamente en este
medio el ELISA heterólogo registra positivo.
\vskip1.000000\baselineskip
La E1s del genotipo 1b y del genotipo 4
(vvHCV-72) fueron producidas y purificadas como se
describe en Maertens y otros, PCT/EP95/030301 excepto por el hecho
que la modificación con maleimida fue reemplazada por la
alquilación usando iodoacetamida para el genotipo 1b.
E1s-1b y Es1-4 en Empingen solo al
3% o como una mezcla equimolar fueron inyectados sobre una columna
Superdex-200 PC 3.2/30 equilibrada en PBS/CHAPS al
0.2%. Esta columna es diseñada para usar con el equipo HPLC
SMART^{TM} de Pharmacia LKB (Suecia). Las fracciones que
están contenidas en la proteína principal fueron combinadas,
concentradas sobre un filtro 10 kDa, y otra vez cromatografiadas
sobre Superdex-200 en PBS/CHAPS al 0.05%. Todas
estas fracciones fueron probadas para reactividad usando un montaje
ELISA el cual debe detectar solamente partículas que contienen E1
de ambos genotipos. Para esto estreptavidina ELISA fue recubierto
en 2 \mug/ml. Las fracciones de la filtración en gel fueron
incubadas en una dilución 1/2500. Un anticuerpo monoclonal E1 (IGH
200) el cual solo reconoce la E1 del genotipo 1 y 10 fue usada para
la detección del antígeno de enlace. El sistema
cabra-anti-ratón-HRP/TMB
fue usado para el desarrollo del ensayo hacia un color amarillo el
cual fue medido a 450 nm. Como puede ser juzgado a partir de la
Figura 23, la adición de E1-4 a
E1-1b no dio como resultado un cambio importante en
el tiempo de retención de las proteínas, indicando que las
partículas efectivamente están todavía presentes. Estas partículas
contienen ambas proteínas E1, es decir la E1s del genotipo 1b y del
genotipo 4, ya que solamente en este medio el ELISA registra
positivo.
\vskip1.000000\baselineskip
Deleersnyder V., Pillez A.,
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mechanism involving T-lymphocyte response to
non-structural protein 3 in viral clearance in acute
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Claims (56)
1. Una partícula oligomérica que consiste de
proteínas purificadas de la envoltura del HCV y que tiene un
diámetro de 5 a 100 nanómetros, donde al menos un residuo cisteína
de dicha proteína de la envoltura es alquilatado.
2. Una partícula oligomérica que consiste de una
capa de proteínas purificadas de la envoltura del HCV donde al
menos un residuo cisteína de dicha proteína de la envoltura es
alquilatado o una partícula oligomérica en la cual la esfera
completa consiste de proteínas purificadas de la envoltura del HCV
donde al menos un residuo cisteína de dicha proteína de la
envoltura es alquilatado, dicha partícula teniendo un diámetro de 5
a 100 nanómetros.
3. Una partícula oligomérica de acuerdo a las
reivindicaciones 1 o 2 que tiene un diámetro de 5 a 40
nanómetros.
4. Una partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, en la cual la secuencia
de amino ácidos de la proteína de la envoltura del HCV es una
secuencia de consenso derivada de una secuencia de consenso -género
del HCV, -cepa del HCV, -subtipo del HCV o -aislado del HCV.
5. Una partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4, donde al menos un
residuo cisteína de dicha proteína de la envoltura es alquilatado
por medio de un agente de alquilación.
6. Una partícula oligomérica de acuerdo a la
reivindicación 5, donde dicho agente de alquilación es etilenimina,
N-(iodoetil)trifluoroacetamida o un halógeno activo
X-(CH_{2})_{n}-R donde X es un halógeno,
R es H, COOH, NH_{2}, CONH_{2}, fenilo o cualquier derivado de
los mismos, y n es 0, 1, 2, 3 o 4.
7. Una partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, donde dichas proteínas
de la envoltura son las proteínas E1 del HCV o partes de las
mismas.
8. Una partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, donde dichas proteínas
de la envoltura son las proteínas E1s del HCV o partes de las
mismas.
9. Una partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, donde dichas proteínas
de la envoltura son las proteínas E2 del HCV o partes de las
mismas.
10. Una partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, donde dichas proteínas
de la envoltura son SEQ ID NO:13 y/o SEQ ID NO:14, o partes de las
mismas.
11. Una partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10, donde dichas proteínas
de la envoltura son codificadas por una secuencia de consenso de
nucleótidos del aislado del HCV, secuencia de consenso de
nucleótidos del subtipo del HCV, secuencia de consenso de
nucleótidos de especies del HCV o secuencia de consenso de
nucleótidos del género del HCV, o partes de las mismas.
12. Una partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, donde dichas proteínas
de la envoltura son una mezcla de la proteína E1 del HCV y/o partes
de la misma, la proteína E1s del HCV y/o partes de la misma, la
proteína E2 del HCV y/o partes de la misma.
13. Una partícula oligomérica de acuerdo a la
reivindicación 12, donde dichas proteínas E2 del HCV o partes de
las mismas están definidas por la SEQ ID NO:13 y/o partes de la
misma, o por SEQ ID NO:14 y/o partes de la misma.
14. Una partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 13, donde dichas proteínas
de la envoltura, o partes de las mismas, son derivadas de
diferentes cepas del HCV, subtipos del HCV o genotipos del HCV.
15. Una partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 14, donde dichas proteínas
de la envoltura, o partes de las mismas, son una mezcla que
consiste de proteínas de la envoltura del HCV de una cepa del HCV o
genotipo del HCV y proteínas de la envoltura del HCV de al menos
otra cepa del HCV o genotipo del HCV.
16. Una partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 15, obtenible por un método
caracterizada por los siguientes pasos:
- (i)
- purificar las proteínas de la envoltura del HCV en una solución que comprende el uso de un agente de alquilación,
- (ii)
- remplazar dicha solución de dichas proteínas purificadas de la envoltura del HCV con un detergente o sal, dando como resultado partículas oligoméricas, y
- (iii)
- purificar las partículas oligoméricas formadas en (ii).
17. Una partícula oligomérica de acuerdo a la
reivindicación 16, donde dicho paso (i) de dicho método comprende
el uso de un primer detergente.
18. Una partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 16 o 17, donde dicho paso (i)
comprende el uso de un agente de escisión de los enlaces
disulfuro.
19. Una partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 16 a 18, donde dicho paso (iii)
de dicho método comprende además reducir la concentración del
detergente o la sal del paso (ii).
20. Una partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 17 a 19, donde dicho primer
detergente del paso (i) es Empigen B-B, donde el
detergente del paso (ii) o del paso (iii) es CHAPS, octilglucósido,
Tween, o cualquier otro detergente, y donde dicha sal es
betaína.
21. Una partícula oligomérica de acuerdo a la
reivindicación 20, donde dicho Empigen-BB es usado
en una concentración de 1% a 10% y donde dicho CHAPS o Tween es
usado en una concentración de 0.01% a 10% o dicha betaína es usada
en una concentración de 0.01% a 10%.
22. Método para producir una partícula
oligomérica de acuerdo a cualquiera de las reivindicaciones 1 a 15,
caracterizado por los siguientes pasos:
- (i)
- purificar las proteínas de la envoltura del HCV en una solución que comprende el uso de un agente de alquilación,
- (ii)
- remplazar dicha solución de dichas proteínas purificadas de la envoltura del HCV con detergente o sal, dando como resultado partículas oligoméricas, y
- (iii)
- purificar las partículas oligoméricas formadas en (ii).
23. Método de acuerdo a la reivindicación 22,
donde dicho paso (i) comprende el uso de un primer detergente.
24. Método de acuerdo a las reivindicaciones 22
o 23, donde dicho paso (i) comprende el uso de un agente de
escisión de los enlaces disulfuro.
25. Método de acuerdo a cualquiera de las
reivindicaciones 22 a 24, donde dicho paso (iii) de dicho método
comprende además reducir la concentración del detergente o la sal
del paso (ii).
26. Método para producir una partícula
oligomérica de acuerdo a cualquiera de las reivindicaciones 23 a
25, donde dicho primer detergente del paso (i) es
Empigen-BB, donde el detergente del paso (ii) o del
paso (iii) es CHAPS, octilglucósido, Tween, o cualquier otro
detergente, y donde dicha sal es betaína.
27. Método para producir una partícula
oligomérica de acuerdo a la reivindicación 26, donde dicho
Empigen-BB es usado en una concentración de 1% a
10% y donde dicho CHAPS o Tween es usado en una concentración de
0.01% a 10%, o dicha betaína es usada en una concentración de 0.01%
a 10%.
28. Composición que comprende una partícula
oligomérica de acuerdo a cualquiera de las reivindicaciones 1 a
21.
29. Composición de acuerdo a la reivindicación
28, la cual también comprende la proteína core del HCV, P7, E1,
E2, NS2, NS3, NS4A, NS4B, NS5A y/o NS5B, o partes de las
mismas.
30. Composición de acuerdo a la reivindicación
29, donde dicha proteína NS3, o partes de la misma, tienen una
secuencia de amino ácidos dada por SEQ ID NO:l o partes de la
misma, o dada por SEQ ID NO:2 o partes de la misma.
31. Composición de acuerdo a cualquiera de las
reivindicaciones 28 a 30 la cual es una composición vacunal.
32. Uso de una partícula oligomérica de acuerdo
a cualquiera de las reivindicaciones 1 a 21 para la fabricación de
un medicamento.
33. Uso de la partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 21 para la fabricación de
una composición vacunal contra el HCV.
34. Uso de la partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 21 para la fabricación de
un medicamento para inducir inmunidad contra el HCV en portadores
crónicos del HCV.
35. Uso de la partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 21 para la fabricación de
un medicamento para inducir inmunidad contra el HCV en portadores
crónicos del HCV antes de, simultáneamente a o después de cualquier
otra terapia.
36. Uso de la partícula oligomérica de acuerdo a
la reivindicación 35, donde dicha otra terapia es terapia con
interferón.
\newpage
37. Uso de la partícula oligomérica de acuerdo a
la reivindicación 35, donde dicha otra terapia es terapia con
interferón en combinación con fármacos menores.
38. Uso de la partícula oligomérica de acuerdo a
la reivindicación 37, donde dichos fármacos menores es
ribavirina.
39. Uso de la partícula oligomérica de acuerdo a
la reivindicación 35, para la fabricación de un medicamento para
inducir inmunidad contra el HCV en individuos infectados con el HCV
antes de o después del transplante de hígado, o después de la
infección sospechada.
40. Uso de la partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 21 para la fabricación de un
medicamento para inducir profilácticamente inmunidad contra el
HCV.
41. Uso de la partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 21 para la fabricación de
un medicamento para inducir inmunidad contra el HCV,
caracterizada porque dicha partícula oligomérica es usada
como parte de una serie cronológica y de compuestos.
42. Uso de la partícula oligomérica de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 21 para la fabricación de
un medicamento para tratar la infección por el HCV.
43. Uso de acuerdo a la reivindicación 42, donde
dicho tratamiento da como resultado:
- -
- aclaramiento de los antígenos virales del HCV del hígado, y/o
- -
- normalización de los niveles de la enzima del hígado en el suero, y/o
- -
- mejora de la histología del hígado, y/o
- -
- mejora de la enfermedad del hígado, y/o
- -
- mejora de la inflamación del hígado.
44. Uso de una composición de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 28 a 30 para la fabricación de
un medicamento.
45. Uso de una composición de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 28 a 30 para la fabricación de
una vacuna contra el HCV.
46. Uso de una composición de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 28 a 30 para la fabricación de
un medicamento para inducir inmunidad contra el HCV en portadores
crónicos del HCV.
47. Uso de una composición de acuerdo a la
reivindicación 46 para la fabricación de un medicamento para
inducir inmunidad contra el HCV en portadores crónicos del HCV
antes de, simultáneamente a o después de cualquier otra
terapia.
48. Uso de acuerdo a la reivindicación 47, donde
la otra terapia es terapia con interferón.
49. Uso de acuerdo a la reivindicación 47, donde
la otra terapia es terapia con interferón en combinación con
fármacos menores.
50. Uso de acuerdo a la reivindicación 49, donde
los fármacos menores es ribavirina.
51. Uso de la composición de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 28 a 30 para la fabricación de
un medicamento para inducir inmunidad contra el HCV en individuos
infectados con HCV antes de o después del transplante de hígado, o
después de la infección sospechada.
52. Uso de la composición de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 28 a 30 para la fabricación de
un medicamento para profilácticamente inducir inmunidad contra el
HCV.
53. Uso de la composición de acuerdo a
cualquiera de las reivindicaciones 28 a 30 para la fabricación de
un medicamento para inducir inmunidad contra el HCV,
caracterizado porque dicha composición es parte de una serie
cronológica y de compuestos.
54. Kit para detectar anticuerpos del HCV
presentes en una muestra biológica, que comprende la partícula
oligomérica de acuerdo a cualquiera de las reivindicaciones 1 a 21,
en un contenedor apropiado.
55. Kit para detectar la respuesta de las
células T relacionadas con el HCV que comprende la partícula
oligomérica de acuerdo a cualquiera de las reivindicaciones 1 a
21.
56. Inmunoensayo para detectar anticuerpos
contra el HCV en una muestra biológica, dicho inmunoensayo
comprendiendo:
- (i)
- proporcionar una partícula oligomérica de acuerdo a las reivindicaciones 1 a 21,
- (ii)
- incubar dicha muestra biológica con dicha partícula oligomérica de (i) bajo condiciones que permitan la formación de un complejo entre dicha partícula oligomérica y dichos anticuerpos contra el HCV;
- (iii)
- determinar, a partir de (ii), si dicho complejo se ha formado y, de ahí, la presencia de anticuerpos contra el HCV en dicha muestra biológica.
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