WO2006070028A1 - Composiciones y procedimientos para detectar infección patógena - Google Patents

Composiciones y procedimientos para detectar infección patógena Download PDF

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WO2006070028A1
WO2006070028A1 PCT/ES2005/000355 ES2005000355W WO2006070028A1 WO 2006070028 A1 WO2006070028 A1 WO 2006070028A1 ES 2005000355 W ES2005000355 W ES 2005000355W WO 2006070028 A1 WO2006070028 A1 WO 2006070028A1
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xaa xaa
lysozyme
polypeptide
cys
xaa
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PCT/ES2005/000355
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François Xavier BERTHET
Francesc Vayreda Casadevall
Maria Cruz Sanz
Teresa Llop Garcia
Angels Mor Olle
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Berthet Francois Xavier
Francesc Vayreda Casadevall
Maria Cruz Sanz
Teresa Llop Garcia
Angels Mor Olle
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    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/571—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses for venereal disease, e.g. syphilis, gonorrhoea
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12—Antivirals
    • A61P31/14—Antivirals for RNA viruses
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides

Definitions

  • the present invention in general is characterized by diagnostic and therapeutic compositions and methods derived from the characterization of the binding of lysozyme polypeptide to a Treponema pallidum Pl 7 polypeptide (TpI 7) or to TpI 7-like polypeptides.
  • the invention provides methods and compositions for increasing or decreasing the binding between a lysozyme and a TP-17 or TP-17 polypeptide.
  • Syphilis is a disease caused by Treponema pallidum infection (hereinafter also called "Tp").
  • Tp Treponema pallidum infection
  • the diagnosis of syphilis is usually made by an immunoassay of antiTp antibodies in the blood using, for example, the hemagglutination test of Treponema pallidum (TPHA), the fluorescent absorption test of anti Treponema antibodies (FTA-
  • TPI Treponema pallidum immobilization test
  • ELISA enzyme-linked inrnunoabsorption assay
  • Western Blot systems detect antibodies that react with Tp or antigenic preparations of Tp, such as the antigens of Tp TpI 5, TpI 7, and Tp47, for example.
  • the TPI test involves a microscopic assessment of the extent to which complement activating antibodies in a patient's serum inhibit the motility of Tp. This test is not usually used as a diagnostic test due to its high cost.
  • the TPHA test involves the agglutination of the patient's serum with the erythrocytes to which the ultrasound-subjected Tp antigen is bound.
  • the FTA-ABS test involves indirect immunofluorescence microscopy to detect the binding of specific antibodies in the serum of patients to Tp fixed on a solid support through a fluorescently labeled secondary antibody. Although these tests are used routinely, they lack the sensitivity required to detect infections at an early or low level, when the levels of antibodies against Tp in body fluids are very low.
  • Tp antigen binding partners i.e., the Tp antigen binding partners
  • existing immunoassays cannot detecting such antibodies in the absence of the Tp antigen binding partner, which in some cases results in low sensitivity or false negative test results. Consequently there is a need for diagnostic assays of pathogens with improved sensitivity, which detect antibodies that bind to binding partner / pathogen antigen complexes.
  • the invention provides compositions and methods for the detection and treatment of a pathogenic infection.
  • the invention generally relates to the discovery that the Treponema pallidum polypeptide, TpI 7, binds to lysozyme, an antimicrobial peptide produced by the host, and inhibits the antimicrobial activity of lysozyme.
  • the binding site in Tp 17 for lysozyme and the binding site in lysozyme for Tp 17 were identified.
  • Comparisons of the Tp sequences required for binding and inhibition of lysozyme with related proteins identified the binding consensus sequences to lysozyme that are conserved among many different pathogens, including, for example, Herpes Simplex virus, hepatitis C virus and parasites such as amoebas. This screening suggests that pathogens share a general mechanism to inhibit a host immune response by producing a polypeptide that contains a lysozyme binding notation that binds to lysozyme and inhibits its antimicrobial activity. Accordingly, the invention also provides the identification of imitating lysozyme polypeptides that contain mutations that interfere with or destabilize such binding.
  • Such imitating lysozyme polypeptides, or fragments thereof, are useful in the prevention or treatment of a pathogenic infection.
  • the invention provides improved diagnostic assays that are based on the detection of antibodies that bind to a polypeptide-lysozyme complex, such as a TpI 7-lysozyme complex.
  • the identification of a lysozyme binding motif in Tp 17, as well as the identification of the consensus sequences of the lysozyme binding motif shared by other pathogen derived proteins, also provides useful compositions and methods for the detection or inhibition of lysozyme, as well as the detection of specific pathogens and the inhibition of corresponding infections in addition to syphilis.
  • pathogen-derived polypeptides are useful in the diagnosis, prophylaxis and treatment of a number of diseases, including diseases related to the aberrant activity of lysozyme. These polypeptides also provide an affinity marker useful for use in protein purification using economical chromatography of affinity with lysozyme.
  • the invention in general is characterized by a substantially pure polypeptide that contains a lysozyme binding motif or a fragment thereof.
  • the invention provides a substantially pure Tp 17-like polypeptide, or a fragment thereof, that contains at least one lysozyme binding motif that contains an amino acid sequence of Xaa n Pro His Xaa n (SEQ ID NO: 1), where Xaa is any amino acid and n is at least one and the fragment is capable of binding to a lysozyme polypeptide and where the motif is not CKPHDC (SEQ ID NO: 24).
  • the fragment is between about 4 amino acids to about 200 amino acids (e.g., 5, 10, 25, 50, 75, 100, 125, 150, 175) of a T ⁇ l7-like polypeptide. In another embodiment, the fragment is less than about 30 or 100 amino acids of a Tp 17-like polypeptide. In another embodiment, the polypeptide or fragment is capable of substantially inhibiting an enzyme activity or an antimicrobial activity of lysozyme. . In another embodiment, the lysozyme binding motif contains a consensus amino acid sequence CSl: Cys Xaa !
  • the lysozyme binding motif contains a consensus amino acid sequence: Cys Xaal Xaa2 Arg Xaa3 Xaa4 Xaa5 Cys (SEC IS NO 314), where Xaal, Xaa2, Xaa3, Xaa4, or Xaa5 is any amino acid, is absent or is a peptide bond.
  • a lysozyme binding motif of the present invention typically contains at least 4 amino acids, 2 of which are selected from the group consisting of Cys, Pro, His and Arg.
  • the invention is characterized by a substantially pure nucleic acid molecule encoding the polypeptide or fragment of the above aspect, a vector containing the nucleic acid molecule and a host cell containing such a vector.
  • the invention is characterized by a substantially pure lysozyme mimicking polypeptide that contains at least one amino acid mutation that reduces the binding affinity between the lysozyme mutant polypeptide and a T ⁇ l7-like polypeptide (e.g., reduces binding 5%, 10%, 25%, 50%, 75%, 85%, or 95% compared to wild-type binding), where the lysozyme mutant polypeptide retains at least 50%, 60%, 75 %, 85%, or 95% of the antimicrobial activity of a wild-type lysozyme polypeptide.
  • the mutation reduces the binding affinity between the lysozyme mutant polypeptide and a Tp 17-like polypeptide by at least 5% compared to the binding affinity of the wild-type lysozyme polypeptide.
  • the mutation affects the surface charge in the corresponding wild-type polypeptide.
  • the mutation is in a positively charged amino acid residue, in a negatively charged amino acid residue or in a hydrophobic amino acid residue of a wild-type lysozyme polypeptide that comes into contact with a Tp 17-like polypeptide.
  • the mutation is at least one, two, three, four or more amino acid positions selected from the group consisting of Lysl9, Arg23, Lys51, GIy 55,
  • Argl31, Asnl32 and Argl33 of human lysozyme or is present in a corresponding position in a lysozyme derived from another species (eg, prokaryotic, eukaryotic, mammal).
  • the invention is characterized by a substantially pure nucleic acid molecule encoding the lysozyme polypeptide of the previous aspect, a vector containing the nucleic acid molecule and a host cell containing this vector.
  • the invention is characterized by a composition containing a polypeptide with at least one lysozyme binding motif and a lysozyme polypeptide.
  • a preferred composition contains a substantially pure Tp 17-like polypeptide and a substantially pure lysozyme polypeptide, where the Tp 17-like polypeptide is not the Ivy polypeptide.
  • lysozyme is exogenous.
  • the composition also contains carrier particles (eg, erythrocytes, particles of polypeptide aggregates, polymeric particles, inorganic particles, paramagnetic particles and yeasts).
  • the invention is characterized by a method for detecting an immune response against a pathogen in a subject.
  • the method involves (a) contacting a biological sample of the subject with an exogenous lysozyme and a polypeptide containing a motive of lysozyme binding (ie, a polypeptide similar to TpI 7); and (b) detecting the binding of the antibody to the polypeptide with a motive for binding to lysozyme or a polypeptide-lysozyme complex.
  • the invention is characterized by a method for increasing the sensitivity of a diagnostic assay to detect the immune response against a pathogen.
  • the procedure involves adding a lysozyme polypeptide to the diagnostic test (e.g., an agglutination test), where the addition Lysozyme polypeptide increases the sensitivity of the assay by at least 5%.
  • the lysozyme polypeptide is contacted with the Tp 17-like polypeptide before, during or after contact of the biological sample.
  • the assay is an immunoassay (e.g., enzyme-linked immunosorbent assay
  • ELISA Western blot
  • immunoaglutination assay radioimmunoassay
  • turbidimetric assays nephelometric assay
  • immunochromatographic assay chemiluminescent assay and fluorescence assay.
  • the biological sample is selected from the group consisting of blood, serum, plasma, tears, saliva, sputum, nasal fluid, diluted otic, genital fluid, breast fluid, milk, colostrum, placental fluid, perspiration, synovial fluid, ascitic fluid, gastrointestinal fluid, exudate, transudate, pleural fluid, pericardial fluid, amniotic fluid, cerebrospinal fluid, bile, gastric fluid, semen, fecal matter, upper respiratory tract fluid, peritoneal fluid, fluid collected from a point of inflammation, fluid collected from an accumulation point, bronchial lavage, urine, biopsy material, aqueous humor, matter of the previous stomach in ruminants, nucleated cell samples, any fluid associated with a mucous surface, hair and skin.
  • the procedure is used to diagnose syphilis.
  • the invention is characterized by a composition for detecting a pathogen in a sample, in which the composition contains a lysozyme polypeptide or a fragment thereof containing the amino acid sequence Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Trp Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa GIu Ser Xaa Xaa Xaa Thr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaaa
  • the invention is characterized by a method for detecting or identifying a pathogen or a pathogen polypeptide.
  • the procedure involves (a) contacting a sample with a lysozyme polypeptide fragment that contains the amino acid sequence:
  • the invention further involves determining the sequence of the polypeptide bound to the lysozyme polypeptide.
  • the lysozyme polypeptide contains a sequence derived from a human lysozyme polypeptide.
  • the invention is characterized by a method for detecting lysozyme in a sample, the procedure involves (a) contacting the sample with Tp 17-like polypeptide bound to a solid support; and (b) detecting the binding of the polypeptide to a polypeptide in the sample, where the binding indicates the presence of lysozyme in the sample (e.g., a biological fluid, a cell culture, a body sample, a water sample, a sample of fluid, a food, a medicine or a culture of pathogens).
  • the process also involves obtaining lysozyme from the sample by binding.
  • the invention is characterized by a device for detecting an immune response to a pathogen containing a polypeptide that has a lysozyme binding motif and a lysozyme polypeptide.
  • the invention is characterized by a device for detecting a pathogen in a sample containing a labeled lysozyme polypeptide containing SEQ ID No. 28.
  • the invention is characterized by a fusion polypeptide containing at least one lysozyme binding motif (e.g., a fragment of a lysozyme-like polypeptide binding motif at Tp 17) fused to a second amino acid sequence with which it is not naturally linked.
  • the fusion polypeptide is fixed to a solid support.
  • the motif is at the end of the fusion polypeptide.
  • the fusion polypeptide is capable of reducing the antimicrobial activity of a lysozyme.
  • the invention is characterized by a method for isolating a fusion polypeptide, wherein the method contains the steps of: (a) providing the fusion polypeptide of the above aspect; (b) contacting the fusion polypeptide with a lysozyme polypeptide, in which the lysozyme is fixed to a solid support, under conditions that allow the fusion polypeptide to bind to lysozyme polypeptide; and (c) flow the lysozyme polypeptide fusion polypeptide.
  • the invention is characterized by a method for identifying a candidate compound that increases the antimicrobial activity of lysozyme.
  • the procedure involves detecting a reduction in the binding between a lysozyme polypeptide and a polypeptide containing a motive for lysozyme binding in the presence of the candidate compound.
  • the candidate compound reduces the binding affinity of a lysozyme binding motif to a catalytic glutamic acid corresponding to Glu53 of human lysozyme.
  • the invention is characterized by a method for identifying a lysozyme mutant polypeptide having an increased antimicrobial activity.
  • the method involves (a) providing a lysozyme polypeptide containing at least one mutation in the amino acid sequence of the polypeptide relative to the wild-type lysozyme sequence; and (b) detecting a reduction in binding affinity between the lysozyme mimicking polypeptide and a Tp 17-like polypeptide.
  • the invention is characterized by a method for treating or preventing a pathogenic infection in a subject in need.
  • the method involves administering to an individual an effective amount of a mutant lysozyme polypeptide containing an amino acid mutation, where the mutation reduces the binding affinity between the lysozyme polypeptide and a Tp 17-like polypeptide.
  • the invention is characterized by a method for angering or preventing a pathogenic infection in a subject in need.
  • the method involves administering to an individual an effective amount of a polypeptide similar to Tpl7 muania that contains an amino acid mutation, where administering the polypeptide similar to Tp 17 mutant reduces the binding between a pathogen that expresses the polypeptide similar to TpI 7 and a polypeptide. of endogenous lysozyme.
  • the invention is characterized by a vaccine that increases an immune response in a subject in need thereof, in which the composition contains at least one of the gJ and GD glycoproieins of the Herpes Simplex-2 virus.
  • the invention is characterized by a vaccine that increases an immune response in a subject in need thereof, in which the composition contains a lysozyme binding polypeptide.
  • the invention is characterized by a vaccine that increases an immune response in a subject in need thereof, in which the composition contains a lysozyme polypeptide and a polypeptide containing a lysozyme binding motif.
  • the invention is characterized by a method for diagnosing an infection with the Herpes Simplex virus type 2 in a subject.
  • the procedure involves detecting the presence of a motive for binding to lysozyme gJ protein in a sample of the subject.
  • the lysozyme binding motif is detected in a lysozyme binding assay.
  • the reason for lysozyme binding is detected in an immunoassay.
  • the invention is characterized by a method for reducing the enzymatic activity of lysozyme in a sample.
  • the procedure involves contacting a sample with a Tp 17-like polypeptide under the conditions that allow the binding of the polypeptide to lysozyme, where the polypeptide similar to
  • Tp 17 does not contain the Ivy protein.
  • the invention is characterized by a method for reducing the enzymatic activity of lysozyme in a subject.
  • the procedure involves administering to the subject an effective amount of the Tp 17-like polypeptide or a fragment thereof.
  • the polypeptide is the glycoprotein J of Herpes Simplex virus type 2.
  • the method is used to treat or prevent a disease selected from the group consisting of cancer. , Alzheimer's disease, renal amyloidosis, leukemia, Crohn's disease and allergies.
  • the invention is characterized by a fragment of a substantially pure Tp 17-like polypeptide containing at least one lysozyme binding motif that contains a Cys Xaa t Xaa 2 Xaa 3 His Xazn Xaa 5 Xaa 6 Xaa amino acid sequence 7 Xaa 8 Xaa 9 Xaa 10 Xaa or Xaa 12 Xaa 13 Cys (SEQ ID NO:
  • the fragment is derived from Porphyromonas gingivalis or Helicobacter pylori.
  • the invention is characterized by a fragment of a substantially pure APP-like polypeptide containing at least one lysozyme binding motif containing a Cys Xaai Xaa 2 Xaa 3 amino acid sequence.
  • the invention is characterized by nucleic acids encoding fragments of the above aspect, vectors containing nucleic acids and host cells containing such vectors.
  • the invention is characterized by a composition containing an APP-like polypeptide and a substantially pure lysozyme polypeptide.
  • the invention is characterized by a method of diagnosing Alzheimer's disease in a subject. The procedure involves detecting the presence in a biological sample (for example, a sample falling asleep sample of cerebrospinal fluid or a tissue sample) of the subject of a complex between an APP-like polypeptide and a lysozyme polypeptide. In one embodiment, the procedure involves an immunoassay.
  • the invention is characterized by a method of diagnosing a disease, for example Alzheimer's disease by detecting the presence of an antibody that binds to a complex between an APP-like polypeptide and a lysozyme polypeptide. .
  • the invention is characterized by a method for identifying a candidate compound that modulates the binding between the APP-like polypeptide and a lysozyme polypeptide. The procedure involves the detection of a reduction in the binding between the Tp 17-like polypeptide and the lysozyme polypeptide in the presence of the candidate compound.
  • the invention is characterized by a polypeptide similar to
  • Tp 17 containing at least one lysozyme binding motif having an amino acid sequence of Xaa n Pro His Xaa n (SEQ ID NO: 1), where Xaa is any amino acid and n is at least one and the fragment is capable of binding to SLLPl.
  • the fragment is between about 4 amino acids to about 200 amino acids of a Tp 17-like polypeptide.
  • the motif contains the consensus amino acid sequence CSl: Cys XaR 1 Xaa 2 Xaa 3 Pro His XaB 4 Xaa 5 Xaa 6 Xaa 7 Xaa 8 Xaa 9 Xaa 10 Xaa ⁇ Xaa 12 Xaa 13 Cys (SEQ ID NO: 2), where Xaa l5 Xaa 2 , Xaa 3 , XsLa 4 , Xaa 5 , Xaa 6 , Xaa 7 , Xaa 8 , Xaa 9 , Xaa 10 , Xaa ⁇ , Xaa 12 , or Xaa 13 is any amino acid, is absent or is a peptide bond.
  • the invention is characterized by a nucleic acid molecule encoding the fragment of the above aspect, a vector containing the nucleic acid molecule and a host cell containing such a vector.
  • the invention is characterized by a substantially pure SLLPl mutant polypeptide containing at least one amino acid mutation that reduces the binding between the SLLPl mutant polypeptide and a Tp-like polypeptide.
  • the invention is characterized by a purely sublime SLLPl poliepid polypeptide containing at least one amino acid mutation that increases the enzymatic activity of the SLLPl poliepid polypeptide relative to a wild-type SLLPl polypeptide.
  • the enzymatic activity includes an animicrobial activity.
  • the invention is characterized by a method for modulating fertility in a subject in need.
  • the procedure involves administering to the subject an effective amount of a SLLPl muierie polypeptide containing at least one amino acid mutation, where administration of the SLLPl muierie polypeptide aligns the junction between a TpI 7-like polypeptide and an endogenous SLLPl polypeptide, so that the fertility of the subject is modulated.
  • the invention is characterized by a method for modulating fertility in a subject in need.
  • the procedure involves administering to the subject an effective amount of a TP 17-like polypeptide, where administration of the Tp 17-like polypeptide reduces the binding between the endogenous SLLP1 polypeptide and a known receptor on the surface of an oocyte, so that it is modulated.
  • the fertility of the subject is characterized by a method for modulating fertility in a subject in need.
  • the procedure involves administering to the subject an effective amount of a TP 17-like polypeptide, where administration of the Tp 17-like polypeptide reduces the binding between the endogenous SLLP1 polypeptide and a known receptor on the surface of an oocyte, so that it is modulated.
  • the fertility of the subject is characterized by a method for modulating fertility in a subject in need.
  • the invention is characterized by a method for identifying a candidate compound that modulates human fertility.
  • the process involves the determination of a reduction in the binding between an SLLP1 polypeptide and a polypeptide containing a lysozyme binding motif in the presence of the candidate compound.
  • the invention is characterized by a method for bringing or preventing a sexually transmitted pathogenic infection in a subject.
  • the procedure involves administering an effective amount of a polypeptide to a subject.
  • SLLPl mutant containing at least one amino acid mutation, where the mutation reduces the binding between an endogenous SLLPl polypeptide and a Tp 17-like polypeptide expressed in a pathogen.
  • the invention is characterized by a method for treating or preventing a pathogenic infection in a subject, for example a sexually transmitted pathogenic infection.
  • the method involves administering to the subject an effective amount of a Tp 17-like polypeptide, where administration of the Tp 17-like polypeptide reduces the binding between a Tp 17-like polypeptide expressed in a pathogen and an endogenous SLLPl polypeptide.
  • the invention is characterized by a method for identifying a candidate compound useful for the treatment or prevention of a pathogenic infection, for example a sexually transmitted pathogenic infection.
  • the procedure involves (a) contacting an SLLP1 polypeptide and a Tp 17-like polypeptide with a candidate compound; and (b) detecting a reduction in binding affinity between the lysozyme polypeptide and the Tp 17-like polypeptide expressed in the pathogen in the presence of the candidate compound
  • the invention is characterized by a method for reducing the binding of SLLP1 to a Tp 17-like polypeptide expressed in the pathogen of and sexual transmission in a subject.
  • the method involves administering to the subject an effective amount of a polypeptide similar to TpI 7 or a lysozyme polypeptide, or a fragment thereof.
  • the invention is characterized by a contraceptive composition containing a Tp 17-like polypeptide that interferes with the binding of SLLPl during a fertilization process.
  • the invention is characterized by a pharmaceutical composition for preventing or treating a sexually transmitted pathogenic infection, in which the composition contains a Tp 17-like polypeptide that interferes with the binding of SLLPl during an infection process.
  • the invention is characterized by a pharmaceutical composition for use as an antimicrobial containing at least an effective amount of lysozyme from bacteriophage T4 or a lysozyme that is resistant to inhibition by a Tp-17-like polypeptide.
  • the pharmaceutical composition further contains papain or bacitracin.
  • the amount of lysozyme T4 or similar to T4 present in a unit dose is between 2 mg and 100 mg (e.g., 5, 10, 20, 30, 40, 50, 60, 70, 80, or 90).
  • the amount of lysozyme T4 or similar to T4 present in a unit dose is 5 mg.
  • the amount of papain present in a unit dose is 2 mg.
  • the amount of bacitracin present is 3 mg per unit dose.
  • the composition is an oral formulation (eg, an oral tablet).
  • the invention is characterized by a method for treating a pathogenic infection in a subject, which involves administering to a subject diagnosed with a pathogenic infection a pharmaceutical composition containing the bacteriophage T4 lysozyme or a lysozyme that is resistant to inhibition. by a Tp-17-like polypeptide.
  • the pharmaceutical composition further comprises papain or bacitracin.
  • the pharmaceutical composition contains the lysozyme of bacteriophage T4 and papain and bacitracin.
  • the pharmaceutical composition is in the form of an oral formulation.
  • the Tpl7-like polypeptide is derived from a pathogen, for example, a bacterium, a virus, a parasite, a plasmid, a prion, a mycoplasma and a fungal agent.
  • a pathogen for example, a bacterium, a virus, a parasite, a plasmid, a prion, a mycoplasma and a fungal agent.
  • the pathogen is, for example, Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas putida, Yersinia pestis, Shigella flexnerii, Treponema denticola, Vibrio cholerae, Vibrio vulnificus, Vibrio parahemolyticus, Chlamydia pneumoniae, Chlamydia pneumoniae, trachomatis, Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis, Streptococcus pneumoniae, Streptococcus agalactiae, Streptococcus mutans, Streptococcus pyogenes, Enterococcus faecalis, Bordetella bronchiseptica, Bordetella pertussis,
  • Bordetella parapertussis Helicobacter hepaticus, Helicobacter pylori, Salmonella typhimurium, Ralstonia solanacearum, Xanthomonas campestris, Pseudomonas syringae, Pasteurella multocida, Brucella melitensis, Brucella suis, Porphyromonas gingivalis, coronavirus causing severe respiratory syndrome virus (SARS virus) of Hepatitis A, Hepatitis B virus, Hepatitis C virus, rubella virus, Toxoplasma gondii, Trypanozoma spp., Gardnerella vaginalis, Mycobacterium avium, Mycobacterium leprae, Mycobacterium paratuberculosis, Mycobacterium jej, Campylobacterium tuberculosis, Campylobacterium tuberculosis, Campylobacterium tuberculosis Helicobacter spp., A
  • LdMNPV Plasmodium falciparum, Plasmodium ovale, Emeiria tenella, Eimeria acervulina, Giardia lamblia, Plasmodium yoelii and pathogens carried by Anopheles gambiae.
  • the pathogen is, for example, Treponema denticola, Bacteroides thetaiotaomicron,
  • Coxiella burnetti Haemophilus influenzae, Neisseria gonorrhoeae, Legionella pneumophüa, Staphylococcus, aureus, and Salmonella typhi
  • Neisseria meningitidis serogroup A and serogroup B Vibrio cholerae, Vibrio vulnificus, Haemophilus ducreyla, pertussis hepatitis, C viras de la pertussis, vira.
  • the pathogen is Treponema pallidum.
  • the motif contains the amino acid consensus sequence CS2: Xaal Xaa2 Pro His Xaa3 Xaa4, (SEQ ID NO: 3), where Xaal is Cys, Lys, Val, Ala, or is absent ; Xaa 2 is Ala, Cys, or Lys; Xaa 3 is Ala, Asp, or GIu, and Xaa ⁇ is Cys, GIy, or Lys.
  • the Tp 17-like polypeptide contains the sequence Cys Xaaj .
  • the motif contains a CS3 amino acid consensus sequence: Xaa Cys
  • the reason is selected from the group consisting of CCPHAG (SEQ ID NO: 4), VCPHAG (SEQ ID NO: 5), VAPHDC (SEQ ID NO: 6), KAPHDK ( SEQ ID NO: 7), VKPHDG (SEQ ID NO: 8); KKPHAK (SEQ ID NO: 9), KAPHEK (SEQ ID NO: 10), KKPHAC (SEQ ID NO: 11),
  • VAPHAG (SEQ ID NO: 12), VKPHAK (SEQ ID NO: 13), VKPHAC (SEQ ID NO: 14), VAPHEG (SEQ ID NO: 15), VKPHEK (SEQ ID NO: 16), VCPHEK (SEQ ID NO : 17), CKPHAG (SEQ ID NO: 18), ACPHAG (SEQ ID NO: 19) or KCPHDC (SEQ ID NO: 20), VKPHDK (SEQ ID NO: 21), KKPHAG (SEQ ID NO: 22), and CAPHEK (SEQ ID NO: 23).
  • the lysozyme binding motif contains an amino acid sequence of Cys Xaal Xaa2 Arg Xaa3 Xaa4 Xaa5 Cys (SEQ ID NO: 314), where Xaal is Pro, Ala, Val, or Ser; Xaa2 is Asp, GIu, or His; Xaa3 is Leu or Met; Xaa4 is Ser, Ala, or GIy; and Xaa5 is Ser, Val, Ala, Lys, or Cys.
  • the lysozyme binding motif contains a Cys Pro Xaal Arg Xaa2 Xaa3 amino acid sequence
  • Xaa4 Cys (SEQ ID NO: 315), where Xaal is Asp, GIu, or His; Xaa2 is Leu or Met; Xaa3 is Ser or Ala; Xaa4 is Ser, Ala, or Val.
  • the lysozyme binding motif contains an amino acid sequence selected from the group consisting of CPHRLSVC (SEQ ID NO: 316), CPHRLSSC (SEQ ID NO: 317), CPERLASC (SEQ ID NO: 318) , CPERMASC (SEQ ID N0: 3 19),
  • CPERLSSC SEQ ID NO: 320
  • CPQRLSSC SEQ ID NO: 321
  • An example of lysozyme binding motif contains an amino acid sequence of CPHRLSVC (SEQ ID NO: 316).
  • the lysozyme polypeptide contains the following amino acid sequence:
  • the polypeptide containing a lysozyme binding motif i.e., a Tp 17-like polypeptide
  • the lysozyme polypeptide, or a fragment thereof is isolated from a biological sample, is a recombinant polypeptide or a chemically synthesized polypeptide, is fused with an affinity marker, fixed to a solid support (e.g., a resin, a gel, a pearl, a well, a column, a plate , a membrane, a matrix, a plate, a filter device), derived from a human polypeptide, is labeled for detection (e.g., labeled with a fluorophore, a fluorescent protein, a chromophore, a radioactive moiety, a light residue and an enzymatically active marker).
  • a solid support e.g., a resin, a gel, a pearl, a well, a column, a plate , a membrane,
  • the lysozyme polypeptide and the Tp 17-like polypeptide are present in a molecular ratio of between about 0.001 to about 1,000.00.
  • the compositions and methods of the invention are useful for identifying and / or quantifying antibodies against pathogens such as, for example, Treponema pallidum, Escherichia coli (for example, E. coli O157: H7 and E. coli Kl), Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas putida, Yersinia pestis, Shigella flexnerii,
  • pathogens such as, for example, Treponema pallidum, Escherichia coli (for example, E. coli O157: H7 and E. coli Kl), Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas putida, Yersinia pestis, Shigella flexnerii,
  • Ralstonia solanacearum Xanthomonas campestris, Pseudomonas syringae, Pasteurella multocida, Brucella melitensis, Brucella suis, Mycobacterium tuberculosis, Campylobacter jejuni, Helicobacter spp., Agrobacterium tumefaciens, Moraxella catarrhalis, Neisseria meningitidis, Neisseria gonorrhoeae, Mycoplasma pneumoniae, Legionella spp., Haemophilus influenzae, Haemophilus ducreyii,
  • Propionobacterium acnes Listeria monocytogenes, He ⁇ es Simplex virus type 2, Influenza virus, TACARIBE virus, hepatitis A virus, hepatitis B virus, hepatitis C virus, bluetongue virus, Chimpanzee cytomegalovirus, human cytomegalovirus , human papillomavirus, Dengue virus, foot and mouth disease, human immunodeficiency virus, rinderpest virus, rabies virus, LdMNPV, Entamoeba histolytica, Plasmodium falciparum, Plasmodium ovale, Emeiria tenella, Eimeria acervulina, Giardia lamblia, Plasmodium yoelii, and pathogens carried by Anopheles gambiae.
  • pathogens such as Mycobacterium paratuberculosis, Ebola virus, Rift Valley fever virus, severe acute respiratory distress syndrome are detected
  • ARDS smallpox virus
  • Bacillus anthracis Bacillus anthracis
  • Leishmania Spp. Leishmania Spp.
  • Mycoplasma Mycoplasma
  • rickettsia fungi and yeasts.
  • compositions for detecting antipathogen antibodies in a sample comprising (a) a polypeptide comprising the amino acid sequence of TAPHRGLATL YNGDC
  • lysozyme (A) and polypeptides similar to Tp 17 (B) are present in a molar ratio (A / B) of between about 0.001 and about 1,000,000. In a preferred embodiment, lysozyme (A) and polypeptides similar to Tp 17 (B) are present in a molar ratio (A / B) of between about 0.001 and about 1,000,000. In a preferred embodiment, lysozyme
  • TpI 7-like polypeptides (B) are present in a molar ratio (A / B) between about 0.01 and about 1,000,000.
  • lysozyme (A) and polypeptides similar to Tp 17 (B) are present in a molar ratio (A / B) of between about 0.1 and about 1,000,000. More preferably, lysozyme (A) and polypeptides similar to Tp 17 (B) are present in a molar ratio (A / B) of between about 1 and about
  • the methods of the invention are used to diagnose diseases such as, for example, syphilis, HIV infection, genital herpes, bubonic plague, rabies, amoebic dysentery, shigellosis, dental caries, E. coli infection, cystic fibrosis, tuberculosis, listeriosis , cholera, group A or group B strep infections, staphylococcal infections, gastric ulcer, whooping cough, enterococcal infections, chlamydiosis, brucellosis, whooping cough, otitis media, otitis externa, meningitis, mycoplasmosis, mycosis, influenza, malaria , virus infections
  • the methods of the invention are used to diagnose salmonellosis, gonorrhea, vibriosis, colibacillosis, pneumonia, typhus, typhoid fever, amebiasis, bronchitis, severe acute respiratory distress syndrome (ARDS), Legionnaire's disease and cytoplasmic deposition diseases, such as lysosome deposition diseases.
  • the invention also provides methods for detecting lysozyme in a sample by contacting the sample with a Tp 17-like polypeptide and detecting the binding of the Tp 17-like polypeptide to lysozyme.
  • the antimicrobial activity of lysozyme is reduced by contacting a sample with a Tp 17-like polypeptide under conditions that allow the binding of the TpI 7-like polypeptide to lysozyme.
  • the sample may be a preparation of pathogens, such as, for example, a bacterium, a virus, a parasite, a plasmid, a mycoplasma, a fungal agent (for example, fungi and yeasts) and a prion preparation.
  • the sample may also be a material that needs to be free from lysozyme amination, such as a biological sample (eg, throat aspirate, blood culture, cerebrospinal fluid), a culture vessel, a cell culture, a cuvette, apparatus for clinical diagnosis or test material, medical instrumentation, liquids, water, food, medicines, implants or grafts.
  • a biological sample eg, throat aspirate, blood culture, cerebrospinal fluid
  • a culture vessel e.g, a cell culture, a cuvette, apparatus for clinical diagnosis or test material, medical instrumentation, liquids, water, food, medicines, implants or grafts.
  • the methods of the invention can also be used to reduce microbial activity in a subject (e.g., an animal, such as a human being) by administering to the subject an effective amount of a similar polypeptide.
  • a Tpl 7 The procedures are used to treat or prevent diseases such as cancer, infectious disease, inflammatory disease, Alzheimer's disease, renal amyloidosis, leukemia, Crohn's disease and allergy, which are associated with an increase in lysozyme activity. above normal levels.
  • the invention provides compositions for detecting a pathogen in a sample, comprising a ligand or a binding partner capable of binding to a polypeptide with a lysozyme binding motif (i.e., a Tp 1-like polypeptide). 7.
  • the ligand comprises a lysozyme polypeptide, a monoclonal antibody, a polyclonal antibody or a Fab fragment, or DNA or RNA aptamers, for example. In one embodiment, the ligand comprises a detection molecule.
  • the invention provides methods for detecting a pathogen in a sample (1) by contacting a sample with a ligand (for example a lysozyme polypeptide) capable of binding to a polypeptide with a lysozyme binding motif (i.e. , a Tp-like polypeptide 17) under conditions that allow ligand binding to a pathogen or a pathogenic polypeptide; and (2) detecting the binding of the ligand to the pathogen or pathogenic polypeptide, if any, in which such binding is indicative of the presence of the pathogen or the pathogenic polypeptide in the sample.
  • the ligand is labeled with a detection molecule, such as a fluorophore, a fluorescent protein, a chromophore, a radioactive fraction, a light fraction or an enzymatically active indicator.
  • the invention provides equipment comprising a polypeptide with a lysozyme binding motif (i.e., a polypeptide similar to
  • the ligand is fixed to a solid support such as resin, beads, wells, capsule, column, gel, membrane or a filter device.
  • the ligand is a lysozyme polypeptide.
  • the invention provides recombinant fusion proteins comprising a polypeptide with a lysozyme binding motif (ie, a Tp 17-like polypeptide) bound to a polypeptide of interest.
  • a lysozyme binding motif ie, a Tp 17-like polypeptide
  • the Tp 17-like polypeptide is at the N or C end of the polypeptide of interest.
  • the TpI 7-like polypeptide is between the N or C end of the polypeptide of interest.
  • the recombinant protein is capable of reducing lysozyme activity.
  • the invention provides methods for preparing recombinant fusion proteins by binding the Tp 17-like polypeptide to the polypeptide of interest.
  • the invention provides methods for using recombinant fusion proteins to affinely purify a polypeptide of interest (1) by contacting a sample comprising a recombinant lysozyme fusion polypeptide under conditions that allow binding of the polypeptide to lysozyme; (2) washing the sample; and (4) eluting the recombinant lysozyme fusion polypeptide.
  • the method comprises isolating the polypeptide of interest from the Tp 17-like polypeptide.
  • the lysozyme is bound to a solid support.
  • the provided herein are methods for treating or prevem 'r a disease associated with a pathogen infection by administering to a subject in need thereof an effective amount of lysozyme that is resistant to inhibition by a similar polypeptide Tpl7 disease.
  • Lysozyme that is resistant to inhibition by a Tp 17-like polypeptide can be selected from natural lysozymes and modified lysozymes.
  • the method of treating or preventing a pathogenic infection in a subject comprises administering an effective amount of a lysozyme comprising an amino acid sequence selected from the group consisting of Tyr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa GIy Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Ser Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa GIy (SEQ ID NO: 322); and Asp Ala Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
  • the method of treating or preventing a pathogenic infection in a subject comprises administering an effective amount of a lysozyme comprising an amino acid sequence selected from the group consisting of Tyr Tyr Leu Thr Xaa Phe Cys Xaa Xaa Xaa Ala Cys GIy Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Ser Xaa Xaa Xaa Tyr Phe Thr Ala Asp Ser GIn Arg Phe GIy Cys GIy (SEQ ID NO: 324); and Asp Ala GIy Pro Xaa Xaa Xaa Val GIu Xaa Xaa Ala GIy Xaa Xa He lie Asp Ala Ser Xaa Xaa He Cys Xaa Xaa Leu Xaa GIy Xaa Ser Ser Cys
  • the present invention also relates to a pharmaceutical composition or an equipment for use as an antimicrobial, which contains at least an effective amount of a lysozyme with an amino acid sequence described above.
  • the invention provides methods for treating or preventing a disease associated with a pathogenic infection by administering to a subject in need of an effective amount of a reagent that inhibits the binding of a polypeptide with a lysozyme binding motif. (ie, a polypeptide similar to Tp-17) to a lysozyme polypeptide.
  • a reagent that inhibits the binding of a Tp-17-like polypeptide to glutamic acid 53 of human or chicken lysozyme or to the corresponding amino acid residues in other species (the numbers represent the total length of the sequence of Human lysozyme deposited under the reference number
  • the reagent is a peptide, a chemical drug, an antibody, a nucleic acid, PNA, small interference or bacteriophage RNA, a DNA aptamer or an RNA aptamer.
  • the reagent is a lysozyme ligand.
  • the invention also provides treatments or vaccines comprising at least one of the gJ and gD glycoproteins of the Herpes Simplex virus -2.
  • the invention also provides vaccines comprising (a) a lysozyme ligand and / or (b) a lysozyme.
  • Tp-17-like polypeptide is meant an amino acid sequence, or fragment thereof, that comprises a lysozyme binding motif that has the ability to bind to a lysozyme polypeptide and can inhibit a biological activity of lysozyme
  • the lysozyme binding motif comprises a consensus sequence Xaa n Pro His Xaa n (SEQ ID NO: 1) and is at least 50%, 75%, 85%, 95%, or 99% identical to T ⁇ l7 (Genbank reference number. P29722; (SEQ ID NO: 31)) or a fragment thereof.
  • the lysozyme binding motif comprises the following consensus sequence: CX (1, 5) [KRH] [AG] [KRH] X (0.2) [KR] X (0, 1) [ EDQN] C (SEQ ID NO: 178).
  • the lysozyme binding motif comprises the following consensus sequence: Cys Xaal Xaa2 Arg Xaa3 Xaa4 Xaa5 Cys (SEQ ID NO: 314).
  • Tp-17-like polypeptides include, but are not limited to, all variants, homologs and mutants of TP-17 or other natural proteins that contain a lysozyme binding motif, total length or fragments of the same, and fusion proteins that contain any of the above as a material part. Examples of polypeptides similar to Tp 17 are provided in Figures 1, 2, 39 and 42.
  • mutant polypeptide similar to Tp 17 is meant a polypeptide similar to TP-17 that has at least one change in an amino acid in relation to the sequence of a natural sequence. Such changes include, for example, amino acid substitutions, deletions or insertions.
  • the homologues of the mutant polypeptide similar to Tp-17, mutants, fragments, substitutions and modifications retain the ability to bind lysozyme.
  • such polypeptides bind to lysozyme, but do not inhibit their antimicrobial activity.
  • Figure 7 describes examples of procedures for the targeted and random identification of polypeptide mutants.
  • TpI 7-like nucleic acid molecule or "Tp 17-like nucleic acid mutant molecule” is meant the nucleic acid sequence encoding a Tp 17-like polypeptide or a mute-like Tp 17-like polypeptide, respectively.
  • APP-like polypeptide is meant a polypeptide that binds to lysozyme and that contains the following consensus sequence:
  • lysozyme "lysozyme polypeptide” is meant a polypeptide that has lysozyme activity, including antimicrobial activity or enzymatic activities. In one embodiment, the lysozyme or lysozyme polypeptide comprises the following consensus sequence.
  • lysozyme polypeptides are listed in Figures 3A and 3B.
  • a lysozyme polypeptide is at least 50%, 75%,
  • the lysozyme or lysozyme polypeptide comprises at least one of the following consensus sequences:
  • mutant lysozyme polypeptide is meant a lysozyme amino acid sequence that contains at least one amino acid change with respect to the natural amino acid sequence.
  • lysozyme nucleic acid molecule or “lysozyme nucleic acid mutant molecule” is meant a nucleic acid molecule encoding a lysozyme or a mutated lysozyme polypeptide, respectively.
  • Figures IA and IB illustrate lysozyme binding sites in Tp 17-like polypeptides of a series of bacteria, viruses, parasites and mammalian organisms and the consensus sequence of 17 amino acids they define.
  • plori are grouped into the following consensus sequences: Cys Xaal Xaa2 Xaa3 His Xaa4 Xaa5 Xaa6 Xaa7 Xaa8 Xaa9 XaalO Xaal 1 Xaal2 Xaal3 Cys (SEQ ID NO: 175) sequence, where x is any amino acid or is absent.
  • Figure IB is an iabla that defines a lysozyme binding motif conserved among a variety of clinically relevant bacterial pathogens.
  • Figure 2 illustrates lysozyme binding sites in Tp 17-like polypeptides of a series of bacteria, viruses, parasites, insects and mammalian organisms and the consensus sequence of 6 amino acids they define.
  • Figure 3A is an alignment of mature lysozyme sequences of a number of species.
  • E 35 and D 53 in mature chicken lysozyme (or D 52 in human mature lysozyme) (T) belong to the catalytic diode and are conserved in all known lysozyme sequences.
  • a consensus sequence is shown at the bottom of the alignment.
  • the conservation of amino acids is represented according to the comparison symbols of Risler (Risler et al. (1988) J. Mol. Biol. 204: 1019).
  • Risler Risler et al. (1988) J. Mol. Biol. 204: 1019.
  • X represents any amino acid or non-amino acid
  • the letters in the table at 100% amino acid preservation the letters in the lower table correspond to an amino acid conservation value between 50% and
  • Figure 3B is a continuation of the alignment of the mature lysozyme sequences presented in Figure 3A. At the bottom of the alignment a consensus sequence is shown using the nomenclature described with respect to Figure 3A.
  • Figure 4 illustrates an advantage of the present invention since conventional Tp 17 antibody detection equipment does not detect antibodies against the Tpl7-lysozyme complex.
  • the invention is characterized by a kit containing a TpI 7-like polypeptide and a lysozyme polypeptide. Such devices are capable of detecting antibodies against Tp 17 alone, lysozyme alone or a Tpl7-lysozyme complex, if it exists.
  • Figure 5 illustrates a western blot assay of lysozyme-protein interaction comprising the following five steps: (1) immobilization of purified lysozyme on a solid support; (2) solid support probing with a lysozyme ligand (eg, GST-Tpl7); (3) binding of GST-T ⁇ l7 with goat antiGST antibody; (4) binding of the goat antibody with an alkaline anti-goat phosphate conjugate; and (5) marking with the chromogenic nitroazul tetrazolium / bromochloro indolyl phosphate phosphatase (NAT / BCIF) substrate.
  • a lysozyme ligand eg, GST-Tpl7
  • Figure 6 illustrates the amino acid (SEQ ID NO: 29) and nucleotide (SEQ ID NO: 30) sequence of the GST-Tpl7 fusion protein.
  • the sequences corresponding to the GST fraction and TpI 7 are represented in italics and bold, respectively.
  • the numbered lines, SEQ ID NO: 30, represent the strand sense of DNA; the antisense or RNA strand is below the sense strand.
  • FIG. 7 illustrates the expression construct of Tpl7-HIS pET24a_Tppl7His. This vector is derived from the expression vector pET24 (Novagen Inc., Madison, WI).
  • Figure 8 A is a Coomasie Brilliant Blue gel labeled with chromatographic fractions of purified GST-TpI 7.
  • Lane 1 purification process with additional chicken lysozyme
  • lane 2 purification process without additional chicken lysozyme
  • lane 3 MPM: molecular weight markers.
  • Figure 8B is a Western Blot and a Coomasie blue gel
  • Lane 1 Western blot using human serum positive for protein syphilis recovered from the purification process in the presence of additional chicken lysozyme; lane 2: Coomasie Brilliant Blue staining of proteins recovered from the purification process in the presence of additional chicken lysozyme.
  • the peptide sequences obtained by sequencing the amino acids of the N-terminal end of the proteins recovered from the electrophoretic bands in lanes one and two are indicated.
  • Figure 9A illustrates the results of probing chicken lysozyme with GST-Tp47 in a Far Western blot assay.
  • PM Street molecular weight markers
  • lane 1 1 ⁇ g of purified chicken lysozyme
  • lane 2 5 ⁇ g of purified chicken lysozyme
  • lane 3 10 ⁇ g of purified chicken lysozyme.
  • Figure 9B illustrates the results of probing chicken lysozyme with GST-
  • Figure 9C illustrates results of probing human lysozyme with GST-Tp47 in a Far Western blot assay.
  • PM Street molecular weight markers
  • lane 7 1 ⁇ g of purified human lysozyme
  • lane 8 5 ⁇ g of purified human lysozyme
  • lane 9 10 ⁇ g of purified human lysozyme.
  • Figure 9D illustrates results of probing human lysozyme with GST-Tp 17 in a Far Western blot assay.
  • PM Street molecular weight markers
  • lane 10 1 ⁇ g of purified human lysozyme
  • lane 11 5 ⁇ g of purified human lysozyme
  • lane 12 10 ⁇ g of purified human lysozyme.
  • Figure 10 shows a graphic representation of the effect of the polypeptide on the antibacterial activity of lysozyme.
  • the concentration of GST-TpI 7 in the presence of human lysozyme (O) and chicken (A) was plotted against the relative intensity of fluorescence.
  • the concentration of GST-Tp47 in the presence of human lysozyme (4) was also plotted against the relative intensity of fluorescence.
  • Figure HA shows an alignment of the amino acid sequence of E. coli IVY protein with the amino acid sequence of Tp 17 of T. pallidum.
  • Figure 1 IB illustrates the crystal structure of the three possible regions of chicken lysozyme contact with E.coli IVY protein: protein: peptides I, II, and III indicated are shaded.
  • Figure 13A illustrates the molecular, water-accessible (clear) surface of chicken lysozyme alone.
  • the water-accessible region, exposed to the surface, of amino acid residue E53 is shaded.
  • Figure 13B illustrates the water-accessible molecular surface of chicken lysozyme in complex form with the IVY of E. coli.
  • the amino acid residue E 53 is completely hidden and is poorly accessible to the solvent.
  • Figure 13C illustrates the molecule surface (clear), accessible to water, of chicken lysozyme.
  • the water-accessible region, exposed to the surface, of amino acid residue R 132 is shaded.
  • Figure 13D illustrates the water-accessible molecules surface of chicken lysozyme in complex form with the IVY of E. coli.
  • the amino acid residue R 132 remains partially exposed to the solvent.
  • Figure 14A illustrates the bridges between the two adjacent tanks of the IVY binding site of chicken E. coli-lysozyme that approximates histidine and glutamic acid residues, in a configuration capable of making contact with residues E 53 and R 132 of chicken lysozyme.
  • Figure 14B illustrates the bridges between the two adjacent tanks of the Tp 17 junction site of T. pallidum-lysozyme that probably approximates histidine and aspartic acid residues, possibly in a configuration capable of making contact with E 53 residues. and R 132 of lysozyme.
  • Figure 15 illustrates an alignment of the gJ protein of Herpes simplex virus type 1 (HSV) and Herpes simplex virus type 2 (HSV2).
  • HSV Herpes simplex virus type 1
  • HSV2 Herpes simplex virus type 2
  • FIG. 16A is a table illustrating the relative intensity of hemagmination corresponding to 4 doubtful sera of human syphilis (HPMlO, HG38, HG48 and HG82). Serum samples were combined with Tp 17 (R) in the presence or absence of chicken lysozyme (ChickenLyz) or human lysozyme (HumanLyz). The results are expressed in reciprocal dilution titres (for example, 80 means positive at 1/80 dilution).
  • Figure 16B is a graphical representation of the hemagglutination results of Figure 16A.
  • Tpl7 reagent without lysozyme black bars
  • Reagent Tp 17 supplemented with chicken lysozyme hatchched bars
  • Tpl7 reagent supplemented with human lysozyme empty bars.
  • the results are expressed as reciprocal dilution titers (for example, 80 means positive at 1/80 dilution).
  • Figure 17A is a table illustrating the relative hemagglutination intensity corresponding to 10 human syphilis sera (Sif71, 09-4, 09-3, HSP91, HSP17, HSP3, 4932, 5895, HG62, and HG82). Serum samples were combined with Tp 17 (R) in the presence or absence of natural human lysozyme.
  • Figure 17B is a graphical representation of the hemagglutination results of Figure 17A.
  • Tpl7 reagent without lysozyme black bars
  • Tp 17 reagent supplemented with natural human lysozyme checkered bars
  • Tp 17 reagent supplemented with recombinant human lysozyme (hollow bars).
  • the results are expressed as reciprocal dilution titers (for example, 80 means positive at 1/80 dilution).
  • Figure 18A illustrates the improvement in the relative intensity of hemagglutination with the addition of recombinant human lysozyme.
  • a total of 34 sera was analyzed using a TpI 7 (R) reagent or a supplemented Tp 17 reagent with recombinant human lysozyme (R + LyzR).
  • the results of the technique are given as the inverse of the last dilution that gave a positive agglutination. Each result was converted to a number (dilution 1/80 is 1, dilution 1/160 is 2, etc.). The cut is in the 1/80 dilution and a value less than 1 is considered a negative result.
  • FN and P respectively represent negative and positive False results, respectively.
  • Figure 18B illustrates the relative hemagglutination intensity with the addition of recombinant human lysozyme in false negative serum samples using Tp 17 (R) reagent or Tp 17 reagent supplemented with recombinant human lysozyme (R + LyzR).
  • the intensity of agglutination in false negative samples is represented by a number between 0 and 1 (1 represents the cut of the hemagglutination technique).
  • Figure 19 illustrates a hemagglutination test performed with 34 human sera.
  • the assay was carried out using a Tp 17 reagent (black bars) or a Tp 17 reagent supplemented with recombinant human lysozyme (hollow bars).
  • Figure 20 illustrates the effect of lysozyme on the specificity of the hemagglutination assay in 200 blood serum samples negative for syphilis using Tp 17 (R) reagent or Tp 17 reagent supplemented with recombinant human lysozyme (R + LyzR).
  • the intensity of the agglutination in the negative samples is represented with a number between 0 and 0.5. DE, standard deviation.
  • Figure 21 A illustrates the improved sensitivity of a second generation ELISA assay for syphilis in the presence of recombinant human lysozyme.
  • Figure 21B illustrates the improved sensitivity of a third generation ELISA assay for syphilis in the presence of recombinant human lysozyme.
  • FIG 22 shows a separation by molecular size exclusion chromatography of the Tpl7-His isoforms.
  • the affinity purified Tpl7-HIS is composed of three oblations of molecules: monomeric Tpl7-His (peak 3), dimeric Tpl7-His (peak 2) and multimeric Tpl7-His (peak 1).
  • Figure 23 shows a separation by size exclusion chromatography of purified recombinant human lysozyme (Ventria Biosciences, Sacramento, CA, USA). Recombinant human lysozyme is composed of a single population of highly homogeneous molecules (peak 1).
  • Figure 24 shows_a separation by size exclusion chromatography of complexes__Tpl7-His / huLYS. The chromatographic profiles corresponding to the huLYS complex with monomeric Tpl7-His (circles) or Tpl7-
  • peaks correspond to the Tpl7 / huLYS protein complexes (peaks and 2) or monomeric excesses (huLys and Tpl7) (peaks 3 and 4).
  • Figure 25 shows an electrophoretic separation of SDS-PAGE from concentrated supernatants of bacterial cultures (5X) and the detection of secreted bacterial proteins by silver staining.
  • the following pathogens were analyzed: Enterococcus faecalis (lane 2), Enterococcus faecium (lane 3),
  • Staphylococcus aureus (lane 4), Streptococcus pneumoniae (lane 5), Streptococcus pyogenes (lane 6), Propionibacterium acnes (lane 7), Staphylococcus epidermidis (lane 8), Streptococcus agalactiae (lane 9).
  • Figure 26 is a bar graph showing the enzymatic activity of human lysozyme measured in the absence or presence of concentrated supernatants from bacterial cultures (5X) collected from the following bacterial species: Propionibacterium acnes, Streptococcus agalactiae, Streptococcus pyogenes, Staphylococcus aureus , Enterococcus faecalis, Streptococcus pneumoniae, Staphylococcus epidermidis and Enterococcus faecium. The height of each bar indicates the enzymatic activity detected. A lysozyme control is found on the left side of the figure.
  • Figure 27 is a scheme showing the principle or design of a high performance selective detection assay for the identification of candidate compounds capable of interfering in the formation of complexes similar to Tp 17 with isozyme.
  • Stage 1 Contact of a test sample with huLYS labeled with horseradish peroxidase (POD) and a Tp 17-like polypeptide.
  • Stage 2 incubation of the test sample at 37 0 C.
  • Stage 3 Extensive washing, substrate addition POD and signal detection.
  • Figures 28A and 28B are bar graphs showing the inhibition of commercially available therapeutic preparations, therapeutic lysozyme preparations of chicken by Tp 17.
  • Figure 28 A shows the inhibition of the bacteriolytic activity of Lizipaina® (Boehringer Ingelheim) by GST- Tp 17 and T ⁇ l7-His at various molar proportions.
  • Figure 28B shows the inhibition of the bacteriolytic activity of Lysozyme CHIESI (CHIESI Laboratory) by GST-Tp 17 at various molar proportions. The height of each bar indicates the enzymatic activity detected. A lysozyme control is found on the left side of the figure.
  • Figure 29 is a bar graph showing the sample that la-Lysozyme TM bacteriolytic activity (Novagen, VWR International, Mollet del Valles, Spain) was not susceptible to inhibition by GST-Tp 17 or Tpl7-HIS, while that there was a strong inhibition of the antibacterial activity of human lysozyme.
  • the height of each bar indicates the detected fluorescence.
  • Lysozyme TM and human lysozyme control (HuLys) is present to the left of each series of experiments.
  • Figure 30 shows the sequence alignments of the lysozyme binding / inhibition sequences of Escherichia coli Ivy, Pseudomonas aeruginosa Ivy, Yersinia pestis Ivy, Treponema pallidum sp. pallidum Tp 17 and the three isoforms
  • FIG. 31 shows 3D views of the binding / inhibition domains of the lysozyme of Escherichia coli Ivy, Pseudomonas aeruginosa Ivy and human ⁇ -APP.
  • Figure 32 is a scheme showing the organization of sAPP domains and the Homo sapiens meta amyloid precursor protein ( ⁇ -APP).
  • Figure 33 shows the detection of the binding of huLYS labeled with horseradish peroxidase (POD) to APP to immobilized but not to sAPP ⁇ (304-612) immobilized. 10 g points of sAPP ⁇ and sAPP ⁇ (304-612) were placed on a nitrocellulose membrane paper and contacted with 1/1000 diluted POD-HuLYS probes.
  • POD horseradish peroxidase
  • Figures 34A and 34B are tables showing an alignment of the lysozyme binding / inhibitor proteins, their Genbank reference numbers and the host species in which the peptide is present. These amino acid sequences were identified on silica using the CX peptide pattern. (1, 5) [KRH] [AG] [KRH] X (0.2) [KR] X (0, l) [EDQN] C (SEQ ID NO: 178) (shown in Figure 31) for the search in the Swiss-Prot and TrEMBL databases using the ScanProsite algorithm.
  • Figure 35A is a scheme showing a wild-type Tp 17 polypeptide and Tpl7 CPA and KPA imitating polypeptides.
  • TP17 CPA histidine in amino acid position 31 was replaced with alanine
  • Tp 17 KPA histidine in amino acid position 107 was substituted with alanine
  • Figure 35B is a table showing the inhibitory capacity of Tp 17 CPA and KPA mimic polypeptides in relation to Tp 17 polypeptide type wild.
  • Figure 36 is a Western blot showing proteins having molecular weights of 45 kDA in each of lanes 1, 2, and 3, where lane 1 is the wild type Tp 17 and lane 2 the mutant CPA and the lane 3 the mutant KPA.
  • Figure 37 shows an alignment of the peptide sequences corresponding to human lysozyme (huLYS) and chicken lysozyme (chkLYS), as well as huLYS and human sperm lysozyme-like protein (SLLPl). This alignment shows that the SLLPl is closely related to the huLYS and the chkLYS and support that the Tp 17 can be attached to the SLLPl.
  • Figure 38 is a diagram showing that Tp 17 can be attached to the
  • Figure 39 shows an alignment of the sequence of lysozyme binding motifs present in the E2 protein of some types of hepatitis C virus.
  • Figure 40 shows an alignment of the sequence of lysozyme binding motifs in the glycoprotein E2 of the cover in the hepatitis C virus genomes representative of the following genomic groups: la, Ib, Ic, 2a, 2b, 2c, 2k, 3a, 3b, 3k, 4a, 5a, 6a, 6b, 6d, 6g, 6h and 6k.
  • Figure 41 shows the location of the lysozyme binding motif in the E2 glycoprotein of the cover of some hepatitis C virus isolates with respect to the hypervariable regions (HVR) I and region II.
  • Figure 42 is a scheme showing a reason for lysozyme binding in the E2 glycoprotein Ectodomain of the shell.
  • Figure 43A shows an alignment of the sequence of four amoebic lysozymes AIyA, AIyB, AIyC and AIyD.
  • Figure 43B shows an alignment of the lysozyme sequence of bacteriophage T4 and four amoebic lysozymes AIyA, AIyB, AIyC and AIyD.
  • the invention is characterized by compositions and methods related to the detection and treatment of subjects with a pathogenic infection, such as Treponema pallidum.
  • a pathogenic infection such as Treponema pallidum.
  • this invention is based, in part, on the discovery that a polypeptide expressed in a pathogen, Tp 17, binds and inhibits lysozyme, an antimicrobial polypeptide expressed in a host. Since many pathogens express proteins related to Tp 17, this response inhibition procedure A host's immune system is likely to be conserved among a large number of pathogens. Accordingly, the invention provides methods for treating or preventing a pathogenic infection according to this observation. In addition, the invention provides improved diagnostic assays based on the detection of antibodies that bind to the Iisozyme-Tpl7 complex.
  • compositions and methods of the invention comprise the P17 polypeptide of Treponema pallidum (Tp 17) (N 0 reference Geribank P29722; SEQ ID NO: 31) and like polypeptides tpi 7. These polypeptides share certain structural similarities in their sequence , as illustrated in Figures IA, IB and 2, collectively referred to herein as "TpI 7-like polypeptides and / or functional similarities, such as the ability to bind lysozyme or inhibit lysozyme antimicrobial or enzymatic activity. less one and possibly two regions of the TpI 7 polypeptide (SEQ ID No.
  • FIG. 31 binds to lysozyme: the VCPHAG polypeptide sequence (SEQ ID NO: 5) at amino acid positions 28-33 and the KAPHEK polypeptide sequence (SEQ ID No. 10) at amino acid positions 114-119 (SEQ ID NO.
  • Figures IA and 2 provide an alignment of examples of Tp 17-like polypeptides of a series of bacterial, viral, parasitic species and mammals, along with their access numbers. In particular, the alignment shown in Figure 2 identifies a consensus sequence conserved in the Xaa n Pro His Xaa n evolution (SEQ ID NO: 1), which is common to all Tp 17-like polypeptides listed in Figure 2.
  • a Tp 17-like polypeptide comprises the consensus amino acid sequence of Xaan Pro His Xaan (SEQ ID NO: 1), in which
  • Xaa is any amino acid, is absent or is a peptide bond, and n is at least one.
  • the Tp 17-like polypeptide comprises the consensus amino acid sequence CSl: Cys Xaa t Xaa 2 Xaa 3 Pro His Xaa 4 Xaa 5 Xaa ⁇ Xaa 7 Xaa 8 Xaa 9 Xaai 0 Xaan Xaa 12 Xaa 13 Cys (SEQ ID NO:
  • Xaa 1 ⁇ Xaa 2 , Xaa 3 , Xaa4, Xaa 5 , Xaae, Xaa 7 , Xaas, Xaag, Xaa 10 , Xaa lls Xaa 12 , or Xaa 13 is any amino acid, no amino acid or a peptide bond.
  • XSLSLI is Lys, GIy, He, Arg, Leu, Ala, Ser, Thr, GIn, Asn, Phe, Pro, no amino acid or a peptide bond
  • Xaa 2 is Thr, His, Cys, GIn, Asn, He, Ser, Leu, GIy, no amino acid or a peptide bond
  • Xaa 3 is His
  • Xaa 4 is Asn, GIy, Tyr, Leu, Ala, Cys, GIu, Thr, Arg, Met, Pro, lie, Val, Phe, His, GIn, Lys, no amino acid or a peptide bond
  • Xaa 5 is His, Arg, Asn, Leu, Ser, Lys, GIu, GIy, Pro, He, Thr, Cys, Trp, Val, GIn, Phe, Ala, Asp, no amino acid or a peptide bond
  • Xaa 6 is Val, Cys, Ala, Asp, Ser, Pro, GIy, GIu, Lys, Leu, GIn, lie, Tyr, Arg, Asn, Met, no amino acid or a peptide bond
  • Xaa 7 is Asp, GIu, Ala, His, Val, Met, Pro, Lys,
  • Xaag is GIy, Asn, Ala, lie, Arg, GIu, Lys, Thr, Tyr, Pro, Asp, Leu, Ser, no amino acid or a peptide bond
  • Xaap is Leu, Arg, Phe, lie, Ala, Pro, Asn, GIn, Lys, Cys, GIu, Ser, no amino acid or a peptide bond
  • Xaa 10 is Val, Thr, Asp, GIu, Tyr, Arg, Ala, Trp, no amino acid or a peptide bond
  • Xaa ⁇ is Pro, Asp,
  • Xaa ⁇ is He, Val, GIy, Asp, Asn, Leu, no amino acid or a peptide bond
  • Xaa 13 is Asp, GIu, Cys, Thr, no amino acid or a peptide bond.
  • a preferred Tp 17-like polypeptide that does not strictly conform to the CSI consensus is the Int protein of the human immunodeficiency virus (HIV-I) with the related motive
  • CSPEVGQMDC SEQ ID NO: 27
  • FMDV foot-mouth disease virus
  • the Tp 17-like polypeptide comprises the consensus amino acid sequence CS2: Xaa t Xaa 2 Pro
  • the Tp 17-like polypeptide comprises the amino acid sequence CCPHAG (SEQ ID NO: 4), VCPHAG (SEQ ID NO: 5), VAPHDC (SEQ ID NO: 6), KAPHDK (SEQ ID NO : 7),
  • VKPHDG (SEQ ID NO: 8), KKPHAK (SEQ ID NO: 9), KAPHEK (SEQ ID NO: 10), KKPHAC (SEQ ID NO: 11), VAPHAG (SEQ ID NO: 12), VKPHAK (SEQ ID NO : 13), VKPHAC (SEQ ID NO: 14), VAPHEG (SEQ ID NO: 15), VKPHEK (SEQ ID NO: 16), VCPHEK (SEQ ID NO: 17), CKPHAG (SEQ ID NO: 18), ACPHAG (SEQ ID NO: 19), KCPHDC (SEQ ID NO: 20), VKPHDK (SEQ ID NO: 21),
  • the Tp 17-like polypeptide comprises Treponema pallidum P17 protein or Herpes Simplex Type 2 virus glycoprotein J.
  • Figure 7 describes example procedures for the targeted and random identification of polypeptide mimics. Reason for lysozyme binding derived from hepatitis C virus
  • a Tp-17-like polypeptide comprising the consensus amino acid sequence of Xaan Pro His Xaan is present on the E2 protein of some types of hepatitis C virus.
  • the alignment of examples of hepatitis C virus-like Tpl7-like polypeptides is shown in Figure 39.
  • the alignment identifies a consensus sequence CPHRLSXaaC (SEQ ID NO: 326), where Xaa is Ser or Val.
  • the subsequent alignment of the E2 glycoproteins of the cover of other types of hepatitis C virus identifies lysozyme binding motifs that do not strictly conform to the consensus sequence of Xaa ⁇ Pro His
  • Xaa n (SEQ ID NO: 1).
  • the sequences and alignment of such lysozyme binding motifs are shown in Figure 40.
  • the alignment identifies a consensus sequence of Cys Xaai Xaa 2 Arg Xaa 3 Xaa4 Xaa 5 Cys (SEQ ID NO: 314).
  • Xaal is Pro, Ala, Val, or Ser;
  • Xaa2 is GIn or GIu;
  • Xaa3 is Leu or Met;
  • Xaa4 is Ser, Ala, or GIy; and
  • Xaa5 is Ser, Ala, Lys, or Cys.
  • Figures 42 and 43 illustrate the location of the lysozyme binding motif in the E2 glycoprotein of the shell and the relative position of the lysozyme binding motif with respect to the hypervariable regions (HVR) I and II.
  • HVR hypervariable regions
  • Lysozyme causes hydrolysis of bacterial cell walls. It is usually found in liquids in contact with mucous surfaces as well as in other body fluids and constitutes a defense mechanism against bacterial infections.
  • the enzyme fragments the glycosidic bond between carbon number 1 of N-acetylmuramic acid and carbon number 4 of N-acetyl-D-glucosamine. In vivo, these two carbohydrates polymerize to form a cell wall polysaccharide. Lysozyme has multiple domains, a mixed alpha and beta folding structure, it contains four conserved disulfide bridges.
  • Lysozyme also has a strong antiviral effect against herpes simplex virus (HSV) and HIV type 1 (HIV-I). Syncytium formation in HSV-infected cell monolayers is inhibited by the white lysozyme of Chicken egg (Cisani et al. (1989) Microbes. 59: 73-83). In addition, lysozyme increases the antiherpetic activity of glycyrrhizic acid in in vitro assays (Lampi et al. (2001) Antivir. Chem. Chemother. 12: 125-131). In addition, the anti-HIV activity found in human chorionic gonadotropin (hCG) preparations has been partly attributed to lysozyme C (Lee-Huang et al. (1999) Proc. Nati.
  • Lysozyme levels are lower in patients suffering from HSV infection compared to healthy controls, suggesting that the pathogenic infection is associated with a decrease in lysozyme production or an inhibition of lysozyme activity.
  • the present invention provides, at least in part, an explanation of how proteins produced by invading pathogenic viruses inhibit lysozyme activity, suggesting a mechanism by which pathogenic viruses evade lysis produced by lysozyme producing an inhibitor. Of the same. Therefore, the present invention provides compositions and methods for reducing lysozyme inhibition in vitro and for the prevention or treatment of pathogenic infections in vivo.
  • compositions and methods of the invention comprise human lysozyme and polypeptides with similarities.
  • Figures 3A and 3 B provide an alignment of lysozyme polypeptides of a number of species, including ducks, chicken, quail, guinea pig, pheasant, painted hen, turkey, chachalaca, goat, sheep, cow, deer, pig, rat, mouse , dog, rabbit, monkey, Abyssinian monkey, rhesus monkey, baboon, marmoset, tamarin, squirrel monkey, gorilla, human, orangutan, gibbon, colobus, leaf monkey, camel, possum, trout, flounder, fish, dog, horse, donkey, equidae, pigeon, hoatzin, anopheles, silkworm, cecropoia, silk butterfly, cabbage worm, horned worm and croci.
  • the alignment of lysozyme proteins defines a consensus
  • WvaWkXhCXgXdlsXyXXgCXXX "(SEQ ID NO: 32), where amino acid conservation is represented according to the comparison symbols of Risler (Risler et al. (1988) J. Mol. Biol. 204: 1019).
  • X represents any amino acid or is absent
  • the letters in the upper box correspond to a 100% amino acid preservation
  • the letters in the lower box correspond to an amino acid conservation value between 50% and 90%.
  • the shared conservative changes for more than 50% of the sequences are represented using the following symbols: $ corresponds to leucine or methionine, corresponds to isoleucine or valine, and # corresponds to asparagine or aspartic acid.
  • compositions and methods of the invention also comprise the lysozyme of bacteriophage T4 and polypeptides with sequence sirnilaritudes with them.
  • Figure 43A provides an alignment of amoeba lysozyme polypeptides, Dictyostelium discoideum, including AIyA (Genbank reference number EAL69842.1 (SEQ ID NO: 327)), AIyB (Genbank reference number EAL69840.1
  • FIG. 43A provides an alignment of the bacteriophage T4 lysozyme (product of gene E, Genbank reference number P00720 (SEQ ID NO: 331)), lysozymes of
  • the alignment defines a consensus sequence as illustrated in Figure 43B, the consensus sequence includes an N-terminal region defined by the following amino acid sequence:
  • the N-terminal region comprises the following amino acid sequence:
  • the C-terminal region comprises the following amino acid sequence: Asp Ala GI and Pro Xaa Xaa Xaa Val GIu Xaa Xaa Ala GIy Xaa Xaa He He Asp
  • the lysozyme polypeptide AIyD contains a long region rich in GIy and Ser that separates the N-terminal region from the C-terminal region. Without a concrete theoretical basis, it is likely that the existence of such a region rich in Gly-Ser suggests that the N-terminal region and the C-terminal region are structurally independent of each other. [01001 Without a concrete theoretical basis, the new consensus sequence and the possible new structural feature suggest that the lysozyme of bacteriophage T4, lysozymes AIyA, AIyB, AIyC and AIyD may belong to a new family and may interact differently with similar polypeptides to Tpl7-like.
  • the lysozyme of the bacteriophage T4 and similar lysozymes including the lysozyme polypeptides AIyA, AIyB, AIyC and AIyD, are not inhibited with the polypeptides similar to TpI 7.
  • the lysozyme family polypeptides of the T4 bacteriophage can be used to prevent or treat a pathogenic infection.
  • lysozyme or “lysozyme polypeptide” encompasses all homologues, mimics, the entire length or fragments, substitutions and modifications thereof, including deletions and additions thereof.
  • a lysozyme polypeptide includes a mutation that decreases its ability to bind to or associate or interact with the Tp 17-like polypeptide.
  • the mutant lysozyme polypeptide is resistant to inhibition by a Tp-like polypeptide. -17 expressed by a pathogen.
  • Example 7 describes example procedures for the targeted or random identification of lysozyme mutants resistant to inhibition.
  • Exogenous lysozyme is a lysozyme that originates outside, for example, does not occur naturally or occurs in significantly low concentrations, in the sample of the Tp 17-like polypeptide preparation used in the methods of the invention.
  • the exogenous lysozyme is a lysozyme that is added to the sample or to the TpI 7-like polypeptide to prepare the compositions and methods of the invention.
  • the invention also provides purified or recombinant variants of Tp 17-like polypeptides or lysozyme polypeptides, including homologs, mutants and derivatives.
  • recombinant mutant polypeptides contain specific mutations (eg, missense mutations, insertions, deletions or nonsense mutations) that inhibit the biological activity of the recombinant polypeptide compared to a native TpI 7-like polypeptide or with a polypeptide of lysozyme
  • Tp-17-like mutant polypeptides bind lysozyme with an affinity equal to or greater than the affinity of a natural polypeptide, but do not inhibit the antimicrobial activity of lysozyme, such as its ability to cleave a polysaccharide expressed in a pathogen.
  • mutant polypeptides similar to Tp-17 are useful in the treatment or prevention of a pathogenic infection.
  • Particularly advantageous mutant lysozyme polypeptides of the invention are unable to bind, or exhibit a binding affinity to a polypeptide. similar to reduced TpI 7 compared to a native lysozyme ( Figure 3).
  • the binding for example the binding affinity or the amount, is reduced by at least 5%, 10%, 25%, 50%, 75%, 85%, 95%, or 100.
  • Other advantageous lysozyme polypeptides they retain the ability to bind to a Tp 17-like polypeptide, although such binding does not inhibit the antimicrobial activity of the lysozyme polypeptide, such as its enzymatic activity.
  • TpI 7-like polypeptides or lysozyme polypeptides can be generated by mutagenesis, such as, for example, by introducing a small mutation or point mutations, or an insertion, a deletion or other modifications and alterations.
  • Tp-17-like polypeptides or lysozyme polypeptides that retain substantially the same, or only slightly, of the biological activity of the Tp-17-like polypeptide or the polypeptide of lysozyme from which the mutant polypeptide derives.
  • antagonistic forms of a TpI 7-like polypeptide or of a lysozyme polypeptide can be generated. Such an ⁇ agonis ⁇ as inhibit the function of a spontaneous form of the Tp 17-like polypeptide or lysozyme polypeptide, by competitive binding to a natural ligand.
  • the purified or recombinant homologues of Tp 17-like polypeptides or the lysozyme polypeptides of the present invention also include natural homologs of wild-type Tpl7-like polypeptides or of lysozyme polypeptides that are naturally resistant to proteolytic fragmentation.
  • Tp 17-like polypeptides or lysozyme polypeptides can also undergo chemical modifications to create derivatives of the TpI 7-like polypeptide or of lysozyme polypeptides, respectively, forming covaleni conjugates or aggregates with other chemical fractions, such as glycosyl groups, lipids, phosphate, acetyl groups and the like.
  • Covalent derivatives of Tp 17-like polypeptides or lysozyme polypeptides can be prepared by linking the chemical fractions to functional groups in the amino acid chains of the protein or at the N-terminal end or at the C-terminal end of the protein. .
  • Modifications of the structure of TpI 7-like polypeptides or of lysozyme polypeptides can be performed for purposes such as increasing therapeutic or prophylactic efficacy, stability, (for example, ex vivo duration and resistance to proteolytic degradation), or post-translational modifications (for example, altering the phosphorylation pattern of the protein) .
  • Tp 17-like polypeptides or modified or mimicking lysozyme polypeptides when designed to retain at least one activity in the natural form of TpI 7-like polypeptides or lysozyme polypeptides, or to produce specific antagonists thereof, they are considered functional equivalents of the Tp 17-like polypeptides or lysozyme polypeptides described in more detail herein.
  • Tpl7-like polypeptides or modified lysozyme polypeptides can be produced, for example, by substitution, deletion or addition of amino acids.
  • the substitutive variant can be a conserved substituted amino acid or a non-conserved substituted amino acid.
  • Whether or not a change in the amino acid sequence of a peptide results in a functional homologue of a polypeptide similar to TpI 7 or a lysozyme polypeptide can be readily determined by assessing the ability of the variant peptide to produce a response in an assay or in cells in a manner similar to the wild type protein, or to competitively inhibit such a response.
  • the polypeptides in which more than A substitution can be analyzed easily in the same way. Examples of tests and reagents useful for analyzing such counterparts are collected in this description.
  • polypeptide includes natural peptides or proteins, as well as synthetically or recombinantly produced peptides or proteins.
  • the polypeptide can span amino acid chains of any length, in which the amino acid residues are linked by covalent peptide bonds.
  • the invention also encompasses peptidomimetic of such polypeptides in which the amino acids and / or the peptide bonds have been replaced by functional analogs.
  • an amino acid encompasses an unnatural amino acid analog.
  • This invention further contemplates a method for generating sets of combinatorial mimics of Tp 17-like polypeptides or lysozyme polypeptides, thus with fragmentation mimics and is especially useful for identifying possible variant sequences (eg, homologs).
  • the purpose of selectively detecting such combinatorial libraries is to generate, for example, new mimics of polypeptides similar to Tp 17 or mimics of lysozyme polypeptides that can act as agonists or antagonists, or, alternatively, that possess new activities together .
  • combinatorially derived imitating polypeptides having a greater potency relative to a natural (wild-type) form of the polypeptide can be generated.
  • the invention concerns Tp 17-like polypeptides or isolated lysozyme polypeptides, preferably substantially pure preparations, for example, of polypeptides derived from body fluids or recombinantly produced.
  • Tp 17-like polypeptides or lysozyme polypeptides may comprise full-length polypeptides or may comprise smaller fragments corresponding to one or more specific domains / motifs, or fragments comprising at least about 5, 6, 7, 8, 9 , 10, 11, 12, 13, 14, 15, about 20, about 25, about 50, about 75, about 100, about 125, about 148, amino acids in length, for example.
  • Peptides can be produced by direct peptide synthesis using solid phase techniques (eg, Stewart et al. (1969) Solid Phase Peptide Synthesis, WH Freeman Co. San Francisco; Merrifield (1963) J. Am. Chem. Soc. 85: 2149-2154).
  • In vitro protein synthesis can be performed by transcription and translation coupled in vitro, for example using a TnT® device (Promega, Madison, WI) or an RTS team (Roche Applied Science, Barcelona, Spain) or using an automated approach, for example, using an Applied Biosystems 43 IA Peptide Synthesizer (Perkin Elmer, Foster City, CA) peptide synthesizer following the instructions manufacturer.
  • Peptides can be prepared by one or more procedures and can be chemically linked to produce a full length molecule.
  • TpI 7 The characterization of the lysozyme binding site in TpI 7 and the consensus sequence of that binding site that is shared by a series of pathogen-derived Tp 17-like polypeptides can be exploited to provide inhibitors of Tp-like lysozyme / polypeptide binding. 17 and procedures for doing so and using them as a diagnosis (for example, probes), prophylactic or treatments of a series of pathogenic diseases or diseases characterized by alterations in lysozyme activity.
  • the invention provides natural and genetically modified variants of lysozymes, including homologues, mimics and derivatives, and methods for manufacturing them, which are unable to bind to Tp 17-like polypeptides that retain other lysozyme functions, such as binding and hydrolysis. of peptideglucan for example, thus escaping inhibition by TpI-like polypeptides 7.
  • lysozymes that are not wild-type, including homologues, mimics and derivatives are used to treat or prevent many pathogenic diseases, including syphilis, AIDS and herpes genital.
  • the invention also provides Tp 17-like mutant polypeptides that have altered lysozyme binding sequences and lysozyme-mutant polypeptides that have altered binding sequences to a Tp 17-like polypeptide.
  • these mutant polypeptides exhibit altered binding affinities.
  • Tp-17-like mutant polypeptides that have an increase (e.g., 5%, 10%, 25%, 50%, 75%, or 100%) in their lysozyme binding affinity in comparison with a native na Tp-17 similar polypeptide. Such mutant polypeptides compete with a Tp 17-like polypeptide for lysozyme binding. Most preferred are Tp-17-like mutant polypeptides that bind to lysozyme with at least native affinity, but that do not inhibit the antimicrobial activity of a lysozyme, as an enzymatic activity.
  • lysozyme mutant polypeptides that have altered binding points that reduce (e.g., by 5%, 10%, 25%, 50%, 75%, or 100%) or eliminate binding to a polypeptide related to Tp-17.
  • Other preferred lysozyme mutant polypeptides bind to a Tp-17 related polypeptide, but such binding It does not reduce or eliminate the antimicrobial activity of lysozyme.
  • Tp-17-related polypeptide or in a lysozyme polypeptide alter the function in vitro or in vivo, for example, as has been done by site-directed mutagenesis or combinatorial biochemistry.
  • lysozyme variants are provided that have lost the ability to bind peptideglucan but retain the ability to bind to a Tp 17-like polypeptide.
  • the invention further provides Tp 17-like polypeptides that can be used to prepare fusion polypeptides with a polypeptide of interest, which can be purified affinity economically using lysozyme (eg, which is attached to a solid support such as a resin, beads , a well, capsule, a column, a gel, a membrane or a filter device).
  • lysozyme eg, which is attached to a solid support such as a resin, beads , a well, capsule, a column, a gel, a membrane or a filter device.
  • Sequence information provided by the present invention also provides specific probes for the identification of Tp 17-like polypeptides, using a lysozyme as a probe, or lysozyme identification, using a Tp 17-like polypeptide as a probe.
  • antibodies against sequences defining these binding sites can be prepared using standard procedures.
  • Methods for improving pathogen infection detection methods The present invention also provides methods and compositions for the improved detection of antipathogenic antibodies in a sample, for example, as a diagnosis of pathogenic infection. While examples of such diagnostic procedures may refer specifically to syphilis, one skilled in the art will understand that such procedures are generally useful for detecting an immune response against virtually any pathogen that produces a Tp-17-like polypeptide.
  • the diagnostic procedures of the invention involve the detection of an antipathogen antibody in a sample using reagents that includes, among other things, lysozyme.
  • Example 8 provides a description of an example test for syphilis to detect Tpl7-like polypeptide antibodies. The above and other procedures are discussed in more detail below.
  • a subject with syphilis is likely to generate an immune response, not only against an isolated Tp 17 protein, but also against the Tpl7 / lysozyme polypeptide complex.
  • Contact of a biological sample of such a subject with lysozyme allows the detection of antibodies that recognize the Tpl7 / lysozyme complex and increases the sensitivity of the assay.
  • diagnosis of syphilis Similarly, any pathogen diagnostic procedure that involves the detection of an antibody that recognizes a protein complex similar to Tp.l7 / lysozyme is enhanced by the inclusion of lysozyme in the test reagents.
  • the addition of lysozyme to an assay reagent increases the sensitivity of the diagnostic procedure by at least 5%, 10%,
  • the invention provides compositions and methods for detecting antipathogen antibodies in a sample, which are indicative of the presence of, or infection by, or an immune response (e.g., humoral immune response) to a bacterial pathogen such as, for example, Treponema. pallidum, Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas putida, Yersinia pestis, Shigella flexnerii, Treponema denticola, Vibrio cholerae, Vibrio vulnificus, Vibrio parahemolyticus, Chlamydia pneumoniae, Staphylococcus aureus,
  • a bacterial pathogen such as, for example, Treponema. pallidum, Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas putida, Yersinia pestis, Shigella flexnerii,
  • Staphylococcus epidermidis Streptococcus pneumoniae, Streptococcus agalactiae, Streptococcus mutans, Streptococcus pyogenes, Enterococcus faecalis, Bordetella bronchiseptica, Bordetella pertussis, Bordetella parapertussis, Helicobacterisumisplasia, Psycholaemalisisis, Ploematoemalisisisis, Paismalisumisis, Sympatheticismalisisis Pervasumisplatisis, Psalumonasis, Syndrome, Syndrome, Syndrome
  • Brucella suis Mycobacterium tuberculosis, Campylobacter jejuni, Helicobacter spp.
  • Agrobacterium tumefaciens Moraxella catarrhalis, Neisseria meningitidis, Neisseria gonorrhoeae, Mycoplasma pneumoniae, Legionella spp.
  • the composition is used to detect the presence of, infection by or immune response (eg, humoral immune response) to a viral pathogen, such as, for example, Herpes Simplex virus type 2, Influenza A virus, virus TACARIBE, bluetongue virus, chimpanzee cytomegalovirus, hepatitis B virus, hepatitis C virus, human cytomegalovirus (HCMV), human papillomavirus, Dengue virus, eastern equine encephalitis virus, encephalitis virus Western equine, Venezuelan equine encephalitis virus, foot-hand-mouth disease (PMB), human immunodeficiency virus, rubella virus, rinderpest virus, rabies virus and LdMNPV.
  • a viral pathogen such as, for example, Herpes Simplex virus type 2, Influenza A virus, virus TACARIBE, bluetongue virus, chimpanzee cytomegalovirus, hepatitis B virus, hepatitis C virus,
  • the composition is used to detect the presence of, infection (eg, humoral immune response) by a parasite, such as, for example, Entamoeba histolytica, Plasmodium falciparum, Plasmodium ovale, Emeiria tenella, Eimeria acervulina, Giardia lamblia, Plasmodium yoelii and pathogens transported by Anopheles gambiae, or immune responses thereto.
  • infection eg, humoral immune response
  • a parasite such as, for example, Entamoeba histolytica, Plasmodium falciparum, Plasmodium ovale, Emeiria tenella, Eimeria acervulina, Giardia lamblia, Plasmodium yoelii and pathogens transported by Anopheles gambiae, or immune responses thereto.
  • the composition is used to detect the presence of, infection by, or immune response (eg, humoral inrnunologic response) to a Mycobacterium paratuberculosis, Ebola virus, Rift Valley fever virus, severe respiratory distress syndrome (ARDS) , smallpox virus, Bacillus anthracis, Leishmania Spp., mycoplasma, rickettsia, fungi or yeasts.
  • immune response eg, humoral inrnunologic response
  • ARDS severe respiratory distress syndrome
  • smallpox virus e.g., Bacillus anthracis, Leishmania Spp., mycoplasma, rickettsia, fungi or yeasts.
  • Such antibodies are identified, for example, by an assay that detects the binding of antibodies to a Tpl7-like polypeptide, a lysozyme polypeptide, a Tp 17-like polypeptide complex / lysozyme polypeptide or a fragment thereof.
  • the TpI 7-like polypeptide or lysozyme polypeptide may comprise an affinity marker, such as, for example, glutathione S-transferase (GST), 6-histidine tail (HIS), maltose binding protein, peptide elastin type or a Strep-Tag (IBA, Goettingen, Germany).
  • GST glutathione S-transferase
  • HIS 6-histidine tail
  • maltose binding protein peptide elastin type or a Strep-Tag
  • the Tp 17-like polypeptide, lysozyme and / or Tpl7-lysozyme-like polypeptide complex can be fixed to a solid support such as resin, beads, well, capsule, column, gel, membrane, matrix, plate or filter device.
  • the use of a multi-well plate or a microcapsule is useful for large-scale analyzes of numerous samples or for analyzing a single sample in duplicate or for detecting the presence of
  • the process of the invention comprises detecting the binding, if any, of antipathogenic antibodies present in the sample of (i) the Tp 17-like polypeptide alone; (i ⁇ ) lysozyme alone; (iii) the Tpl7-lysozyme-like polypeptide complex.
  • the method comprises the steps of (a) contacting a sample are a Tp 17-like polypeptide under the conditions that allow the binding of an antibody in the sample to the TpI 7-like polypeptide; and (b) contacting the sample with a substantially pure, exogenous lysozyme under the conditions that allow the binding of an antibody to lysozyme.
  • the TpI 7-like polypeptide and lysozyme can be linked to each other or associated so that an antibody can bind to both, the TpI 7-like polypeptide and lysozyme, for example a Tp-17-like polypeptide complex and lysozyme can be linked .
  • Binding of the antibody to like polypeptide to Tp 17, lysozyme or its complex can be produced at 15-25 0 C, or any temperature that allows the binding of the antibody to like polypeptide to Tp 17 and / or lysozyme.
  • the assay is an agglutination assay such as, for example, a hemagglutination assay performed as described in Examples 8 and 9.
  • the carrier particles used in the agglutination assay can be, for example, erythrocytes. , protein aggregate particles, polymer particles, inorganic particles, paramagnetic particles or yeast cells.
  • the addition of lysozyme increases hemagglutination by at least about 0.1 to about 20 times, about 0.3 to about 10 times or about 1 to about 10 times, for example , preferably at least 3 times. Lysozyme can come from the same species as the subject from which the sample is extracted (eg, a human being).
  • Lysozyme is added to the polypeptide reagent similar to Tp 17, the dilution buffer or any of the vessel reagents used in the assay and can be added at any time, once or in parts, for example before, during or after The sample has come into contact with the rest of the reagents or test vessels.
  • the exogenous lysozyme is present in a concentration range of about 1 femtogram / ml to about 999 milligrams / ml. Lysozyme is present in a concentration range of about 1 nanogram / ml to about 999 micrograms / ml.
  • the antipathogen antibodies are detected using an ELISA assay.
  • ELISA assays The procedures for carrying out ELISA assays are well known in the art. Briefly, to detect the presence of antibodies to Tp 17-like polypeptides in a sample, for example, a solid phase, such as an ELISA plate, is coated with a TpI 7-like polypeptide alone, a combination of polypeptide similar to TpI 7 and lysozyme, or lysozyme alone, in different wells in a palca.
  • a sample containing a Tp 17-like polypeptide antibody, a Tpl7-lysozyme-like polypeptide antibody complex, and / or anti-isozyme antibody is added to the wells.
  • the sample can be applied to several wells of the ELISA plate and can be detected through direct tide (if appropriate), using a secondary binding partner for the Tp 17-like polypeptide antibody such as a human rabbit antilgG having a detectable label or using a tertiary antibody or detection reagent (eg, streptavidin-biotin or labeled protein A or protein G).
  • detection can also be carried out using a labeled Tp 17-like polypeptide.
  • sample for example in the same well of the ELISA plate. This can be done by using markers that produce different signals that can be quantified independently, for example using pigments with different maximum UV absorptions. Values for the wells treated in a variable manner can be compared to determine the presence of antibodies against the TpI 7-like polypeptide alone, against the Tp 17-lysozyme-like polypeptide complex and / or against lysozyme alone.
  • any of the immunoassays described herein can be used in practice to detect antibodies against the TpI-7-like polypeptide and the Tpl7-lysozyme-like polypeptide complex by using lysozyme for which they are created, in the liquid phase or in the liquid phase.
  • the assay is likely to be stimulated by the addition of lysozyme because lysozyme complexes with Tp 17-like polypeptides, thus forming a substrate for binding with antibodies that only bind to the Tpl7- complex. lysozyme and not the Tp 17-like polypeptide alone. Consequently, by adding lysozyme to the assay, antibodies directed to the Tp 17-like polypeptide alone, lysozyme alone or the complex are detected in the sample ( Figure 4).
  • the assay can be carried out using a purified or recombinant natural lysozyme that has no peptideglucan binding activity (for example, a lysozyme mutant) so that lysozyme binding is enriched to the Tp 17-like polypeptide.
  • This selective binding can be achieved, for example, by site-directed mutagenesis or other methods known in the art, for example, as described in the Example.
  • the lysozyme molecule can be altered to eliminate its ability to bind to the Tp 17-like polypeptide, so that the resulting mutant is resistant to inhibition by a TpI 7-like polypeptide.
  • Such muoids may exhibit an activity augmented antimicrobial against pathogens provided with virulence factors of polypeptides similar to TpI 7. Mutations located in the coding sequence of the, selected so that acetyl muramidase / or antimicrobial activities are not affected, destabilize lysozyme / inhibitor inraction and confer resistance to inhibition by iaral pathogenic proieins such as T. pallidum anigen or members of the Ivy family.
  • compositions and methods for Inhibiting In Vitro Lysozyme Activity in another aspect, provides compositions and methods for reducing lysozyme activity in a sample by contacting a sample with a Tp 17-like polypeptide, or a fragment of the same, in which the TpI 7-like polypeptide binds and inhibits lysozyme activity in the sample.
  • the treatment is useful for any sample that requires the inactivation or neutralization of lysozyme, such as, for example, a preparation of a pharmaceutical liquid for administration to humans, a cell culture liquid, a food, a medicine, water or other liquids or agents of ingestion, an implant, a graft or any other preparation in which the presence of lysozyme is not desired or is harmful.
  • lysozyme such as, for example, a preparation of a pharmaceutical liquid for administration to humans, a cell culture liquid, a food, a medicine, water or other liquids or agents of ingestion, an implant, a graft or any other preparation in which the presence of lysozyme is not desired or is harmful.
  • the compositions and methods of the invention are suitable for small or large scale treatments of water supplies, for example.
  • the compositions and methods can be used to inhibit lysozymes in a material that is supposed to be free from lysozyme contamination, or for which inhibition of the activity of the, such as
  • the TpI 7-like polypeptide or lysozyme binding fragments is fixed to a solid support and the lysozyme present in the sample is bound to the Tp-17-like polypeptide.
  • the material The anterior stomach of a ruminant animal can be analyzed or treated using the methods and compositions of the invention. This material includes bacteria, yeasts, fungi and protozoa, for example. This flora controls the degradation and assimilation of nutrients in ruminants.
  • the inhibition of lysozyme by a Tp 17-like polypeptide or the inhibition of a Tp 17-like polypeptide by lysozyme may alter the rate of nutrient assimilation and may have advantages in certain circumstances.
  • the sample may also be a bacterial sample, such that the recovery of a pathogenic extract is stimulated by inhibitory cell lysis.
  • the invention is useful for identifying a bacterium by determining the point to which lysozyme in the presence of a Tp 17-like polypeptide of Default sequence can inhibit bacterial cell lysis.
  • the methods of the invention can be used to distinguish between HSV-I infection and HSV-2 infection (see Example 6).
  • Tp 17-like polypeptides comprising the lysozyme binding motif can be used to block the binding of the Tp 17-like polypeptide with lysozyme.
  • the invention provides a method for reducing lysozyme activity in an animal by administering an effective amount of a Tp 17-like polypeptide.
  • a method can be used to treat or prevent diseases such as cancer, infectious diseases, inflammatory diseases. , Alzheimer's disease, renal amyloidosis, leukemia, Crohn's disease and allergies. Procedures for detecting pathogens and ligands of Tp-like polypeptide 17
  • compositions and methods of the invention can also be used to detect a pathogen in a sample.
  • Compositions comprising a ligand capable of binding to the Tp 17-like polypeptide, such as lysozyme polypeptides or a molecule that can compete with lysozyme binding can be used.
  • the ligand can be a monoclonal antibody, a polyclonal antibody or a Fab fragment that binds to the TpI 7-like polypeptide.
  • the ligands can be directly detected, for example bound to a detection molecule, such as a fluorophore, a fluorescent protein, a chromophore, a radioactive fraction, a light fraction or an enzymatically active indicator or label.
  • detection molecules are well known in the art, for example, fluorescein conjugates, radish peroxidase conjugates, alkaline phosphatase conjugates and isoluminol conjugates.
  • a sample is contacted with lysozyme or another ligand similar to Tp 17 under the conditions that allow the binding of the ligand to a pathogen or a pathogenic polypeptide and the binding of lysozyme to the pathogen is detected.
  • compositions and methods of the invention are also useful for detecting the presence of lysozyme in a sample.
  • a sample is contacted with a Tp 17-like polypeptide and binding of the polypeptide similar to
  • compositions and methods of the invention can be carried out in diagnostic or therapeutic equipment containing at least one of the following a Tp 17-like polypeptide, lysozyme and ligands thereof.
  • Reagents necessary or useful for administration, assay or purification of the Tp 17-like polypeptide or lysozyme polypeptide may also be included in the kit, such as reaction vessels (for example, comprising a solid support, a resin, beads, wells , capsule, column, gel, membrane and filtration devices), standard control values or instruction manuals.
  • reaction vessels for example, comprising a solid support, a resin, beads, wells , capsule, column, gel, membrane and filtration devices
  • standard control values or instruction manuals for example, comprising a solid support, a resin, beads, wells , capsule, column, gel, membrane and filtration devices
  • These diagnostic or therapeutic equipment are useful for the diagnosis or treatment of a pathogenic infection, such as syphilis or herpes, or for Alzheimer's disease.
  • Fusion peptides and affinity chromatography TpI 7-like polypeptides, or fragments thereof, of the invention are useful as affinity markers for use in affinity chromatography using lysozyme polypeptides, for example, that are bound to a solid support. , as well as a column.
  • the invention provides recombinant fusion proteins (e.g., TpI 7 fusion proteins) comprising a first polypeptide sequence linked by a peptide bond to a second polypeptide sequence, wherein the first polypeptide sequence comprises a TpI-like polypeptide. 7 and the second polypeptide sequence comprises an amino acid sequence of interest.
  • the first polypeptide sequence is naturally linked to the second polypeptide sequence.
  • the Tp 17-like polypeptide acts as a purification cassette that is used to bind the polypeptide of interest to the affinity column of lysozyme.
  • the purification cassette can be placed anywhere in the molecule, for example at the N-terminal end or at the C-terminal end of the polypeptide of interest. On the other hand, the purification cassette can be placed between the N-terminal end and the C-terminal end.
  • the recombinant fusion polypeptide is prepared by joining a first polypeptide sequence via a peptide bond to a second polypeptide sequence, in which the first polypeptide sequence comprises a polypeptide cassette similar to Tp 17 and the second polypeptide sequence comprises an amino acid sequence of interest.
  • the Tp 17 fusion protein is used in procedures to purify the polypeptide of interest by contacting a sample comprising the protein. of fusion Tp 17 with lysozyme under conditions that allow the union of the polypeptide similar to Tp 17 with lysozyme. Then, the complex formed is washed and the Tp 17 fusion protein is eluted from lysozyme and the protein of interest can be isolated from the purification cassette according to procedures well known in the art.
  • the TP 17-like polypeptide fragment is a fragment of
  • Lysozyme polypeptides are provided that do not bind to at least some Tp 17-like polypeptides (eg, inhibition of lysozyme functions) due to the presence of mutations. These mutations are directed to residues that do not affect the catalytic activity of lysozyme. Such altered lysozyme polypeptides are prepared by standard procedures (for example, by site-directed or random mutagenesis, as described herein). Such lysozymes are useful to prevent inhibition by TpI 7-like polypeptides and can be used to prevent or treat pathogenic infections. The invention also provides methods for inhibiting pathogenic infections by administering an effective amount of a lysozyme polypeptide that cannot bind to Tp 17-like polypeptides.
  • the invention also provides methods for identifying a reagent that inhibits the binding of an inhibitor of lysozyme such as a Tp-like polypeptide 17 to E 53 of a lysozyme (numbering refers to the full-length human lysozyme sequence deposited under reference number P00695NP_000230) (SEQ ID NO: 302)).
  • the reagent is a polypeptide, a chemical, a drug, an antibody, a nucleic acid, an aptamer or PNA.
  • the inhibitor is, for example, any molecule of these that prevents the binding of polypeptides similar to Tp 17 to E 53 of lysozyme.
  • compositions of the invention are useful for the selection of low cost and high yield candidate compounds to identify those that increase or decrease the binding affinity between a TPl 7-like polypeptide and a lysozyme polypeptide.
  • a series of procedures are contemplated in this invention to carry out the selection tests for Identify new candidate compounds that modulate the binding affinity of a TPl7-like polypeptide and a lysozyme polypeptide.
  • the candidate compounds are selected according to which they specifically bind to a Tp 17-like polypeptide or lysozyme polypeptides.
  • the effectiveness of such a candidate compound depends on its ability to interact with such a polypeptide or a functional equivalent thereof. Such interaction can be easily analyzed using a number of standard binding techniques and functional assays (eg, those described by Ausubel et al., Supra).
  • a candidate compound can be tested in vitro to determine its ability to specifically bind a polypeptide of the invention.
  • a candidate compound is tested in vitro to determine its ability to increase the biological activity of a lysozyme polypeptide described herein, such as a Tp-17-like polypeptide or a lysozyme polypeptide.
  • a lysozyme polypeptide described herein such as a Tp-17-like polypeptide or a lysozyme polypeptide.
  • the effect of the biological activity of the candidate compound on the Tp-17-like polypeptide and / or the lysozyme polypeptide is analyzed using any standard procedure, known to the skilled professional, such as the assay described in Example 3.
  • a candidate compound that binds to a Tp-17-like polypeptide or to a lysozyme polypeptide is identified using a chromatography-based technique.
  • a recombinant polypeptide of the invention can be purified by standard techniques from cells engineered to express the polypeptide (eg, those described herein) and can be immobilized on a column.
  • a solution of candidate compounds is passed through the column and a compound that specifically interacts with a Tp-17-like polypeptide or a lysozyme is identified based on its ability to bind to the polypeptide and immobilize on the column.
  • the column is washed to remove molecules that have not specifically bound and the compound of interest is then released from the column and collected.
  • Similar procedures can be used to isolate a compound bound to a polypeptide microarray, for example, a matrix containing a plurality of lysozyme binding motifs similar to TpI 7.
  • Compounds isolated by this procedure can, if desired, be further purified (eg, by high performance liquid chromatography).
  • these candidate compounds can be tested to determine their ability to modulate binding affinity between a TpI 7-like polypeptide and a lysozyme polypeptide.
  • the union can be altered, for example, by increase or decrease of the number of molecules in complexes, the alteration of the affinity of union, the alteration of the probability that a complex is formed or the competition with one or both molecules for the union.
  • the compound is analyzed to determine its ability to increase the antimicrobial activity of lysozyme.
  • the compound is analyzed to determine its ability to modulate the interaction between a polypeptide containing a consensus motif CX (1, 5) [KRH] [AG] [KRH] X (0.2) [KR] X (0, 1) [EDQN] C (SEQ ID NO: 178) (such as a ⁇ -amyloid precursor protein) and a lysozyme polypeptide.
  • Compounds isolated by this approach can be used, for example, as therapeutic to treat a pathogenic infection, a lysozyme disorder or Alzheimer's disease in a human patient.
  • Compounds that are identified as binding to a polypeptide of the invention with an affinity constant of less than or equal to 10 mM are considered particularly useful in the invention.
  • any in vivo protein interaction detection system can be used, for example, any test with two hybrids.
  • Possible agonists and antagonists include organic molecules, peptides, peptide mimetics, polypeptides, nucleic acids and antibodies that bind a nucleic acid sequence or a polypeptide of the invention, such as a Tp-17 related polypeptide or a polypeptide. of lysozyme.
  • Tp-17-like polypeptide e.g, a pathogenic infection
  • compounds that inhibit the binding of the Tp-17-like polypeptide to lysozyme or which increase the antimicrobial activity of lysozyme or its enzymatic activity are particularly useful.
  • a compound that binds to lysozyme and inhibits its activity, or that increases the binding between a Tp-17-like polypeptide and lysozyme are particularly useful.
  • DNA sequences encoding Tp-17-like polypeptides and lysozyme polypeptides listed herein can also be used in the discovery and development of a therapeutic compound for the treatment of patients with a pathogenic infection, a disorder. for lysozyme or Alzheimer's disease.
  • the encoded proteins, after expression, can be used as targets for drug selection.
  • the compounds identified in any of the assays described above can be confirmed as useful in an in vivo assay for compounds that modulate the binding between a Tp-17-like polypeptide and a lysozyme polypeptide or that modulate the activity of a lysozyme polypeptide.
  • the small molecules of the invention preferably have a molecular weight below 2,000 daltons, more preferably between 300 and 1,000 daltons and more preferably between 400 and 700 daltons. It is preferred that these small molecules be organic molecules.
  • compounds capable of modulating the binding of a Tp-17-like polypeptide to a lysozyme polypeptide are identified in a series of large libraries of natural products or synthetic (or semi-synthetic) extracts or chemical libraries or libraries of polypeptides or nucleic acids, according to methods known in the art.
  • Those skilled in the art of discovering and developing new drugs will understand that the exact source of the extracts or test compounds is not fundamental to the selection procedure (s).
  • Compounds used in the detections may include known compounds (eg, known therapeutics used for other diseases or disorders). Alternatively, almost any number of unknown chemical extracts or compounds can be selected using the procedures described herein.
  • extracts or compounds include, but are not limited to, plant, fungal, prokaryotic or animal extracts, fermentation broths and synthetic compounds, as well as modification of existing compounds. Numerous methods are also available for generating directed or random synthesis (e.g., semisynthesis or total synthesis) of any number of chemical compounds, including, but not limited to, saccharide, lipid, peptide and nucleic base compounds. Synthetic composite libraries are marketed by Brandos Associates (Merrimack, N. H.) and Aldrich Chemical (Milwaukee, Wis).
  • libraries of natural compounds in the form of bacterial, fungal, plant and animal extracts are commercially available from numerous sources, including Biotics (Sussex, UK), Xenova (Solugh, rU), Harbor Branch Oceangraphics Institute (Ft. Pierce, Fia) and Pharma Mar, USA (Cambridge, Mass).
  • natural and synthetic libraries are produced, if desired, according to methods known in the art, e.g. eg, by standard extraction and fractionation procedures.
  • any library or compound is easily modified using standard biochemical, chemical or physical procedures.
  • the objective of extraction, fractionation and purification is the careful characterization of a chemical entity in the crude extract that alters the binding between a TpI 7-like polypeptide and a lysozyme polypeptide.
  • the fractionation and purification procedures of such heterogeneous extracts are known in the art. If desired, the compounds that have been shown to be useful as therapeutic for the treatment of a pathogenic infection or a lysozyme disorder are chemically modified according to methods known in the art.
  • Suitable monoclonal antibodies for use in the immunoassays of the invention by standard hybridoma methods, using difference binding assays to ensure that the antibodies are specific for a Tp 17-like polypeptide, lysozyme, a Tpl7-like polypeptide complex. -lyszyme or other antigen of interest and do not show cross reactivity or show limited cross reactivity between related proteins.
  • suitable monoclonal antibodies can be prepared using antibody engineering methods as phage expression. Methods for obtaining highly specific antibodies from phage libraries that express antibodies are known in the art and there are several antibody expression phage libraries available in the market for, for example, MorphoSys
  • Suitable phage display procedures are described in, for example, US Pat. no. 6,300,064 and 5,969,108, which are fully incorporated herein by reference. See also, for example "Antibody Engineering,” McCafferty et al. (Eds.) (IRL Press 1996) and the bibliography it contains.
  • the phage antibody expression procedures can use antibody libraries in the Fab or scFv format. Once the light and heavy chain genes of the phage antibodies are recovered, they can be prepared in any suitable format (eg, whole antibodies, Fab, scFv, etc.).
  • Camelid antibodies which contain only the heavy chains of the immunoglobulins See, for example, Muyldermans et al. (2001) J. Biotechnol. 74: 277-302 and the bibliography it contains.
  • polyclonal antibody preparations can be used to detect antigens such as polypeptides similar to Tp 17, lysozyme, or other antigens of interest.
  • Phage expression procedures can also be used to prepare reproducible populations of polyclonal antibodies. For example, in a library of antibodies, clones that undergo cross-reaction by absorption in antigens bound to a solid surface and then passed over a solid surface can be completely removed to identify antibodies that bind to the antigen of interest in the population From clones resulting, clones showing cross-reactivity by absorption on surfaces with irrelevant proteins, such as bovine serum albumin, etc., can also be removed using methods well known in the art. This results in the identification of a population of antibodies that specifically bind to an antigen of interest.
  • Polyclonal antibodies specific for an antigen of interest can also be prepared using traditional animal procedures. These antigens, such as, for example, peptides, can be conjugated at their N or C ends to their transporter proteins such as bovine serum albumin (SAB) or Californian limpet hemocyanin (KLH) and used to immunize animals, such as rabbits, using regimens well known immunization.
  • SAB bovine serum albumin
  • KLH Californian limpet hemocyanin
  • Specific polyclonal antibodies can be obtained from the animal's serum by, for example, affinity chromatography on a matrix containing the peptide used for immunization bound to a solid support.
  • the antiserum formed against TpI 7-like polypeptides can be adsorbed against other polypeptides bound to a solid support to eliminate cross-reactivity antibodies, and vice versa.
  • immunoassays can be used in the practice of the methods of the invention.
  • enzyme-linked immunosorbent assay ELISA
  • agglutination assays agglutination assays
  • radioimmunoassays agglutination assays
  • turbidimetric assays agglutination assays
  • nephelometric assay immunochromatography
  • chemiluminescence assays chemiluminescence assays
  • fluorescence assays fluorescence assays.
  • a solid phase such as an ELISA plate
  • lysozyme a sample that may contain a TpI 7-like polypeptide
  • the sample can be applied to several wells of the ELISA plate and detected through direct treatement (if appropriate), using an antibody against a polypeptide. similar to Tp 17 that is labeled or using secondary antibodies and tertiary antibodies or detection reagents (streptavidin-biotin) or labeled protein A or protein G.
  • ABTS 2, 2'-azinobis (3-ethylene-thiazolin-b-sulfonic acid) chromogenic substrate for radish peroxidase (absorbs light at 410nm)
  • TMB TMB
  • Tp 17-like polypeptide could be obtained using a generic antibody that binds to the Tp 17-like polypeptide, followed by enzymatic digestion of the proteins and detection of antibodies specific for Tpl7-like polypeptides.
  • CNBr a generic antibody that binds to the Tp 17-like polypeptide
  • a Far Western transfer involves immobilization of a protein on a solid support, placing a probe in the support with a ligand more likely to bind directly to the protein, and immunodetection of the bound protein ligand.
  • An example of Western blot far is shown in Figure 5 and described in detail in Example 2.
  • tissue sections can be treated in duplicate with antibodies specific to a polypeptide of interest and a control polypeptide. These primary antibodies can be stained directly or can be detected with suitable secondary antibodies. The intensity of the staining can be measured with a camera with a charge-coupled device (DGA) and proteins are quantified. The staining intensity rate indicates the proportion of protein amounts. On the other hand, a single section can be stained with both antibodies if the antibodies have been labeled with different fluorescent labels.
  • DGA charge-coupled device
  • Spot / slot transfer techniques are also well known in the art.
  • identical amounts of a biological sample containing antibody against TpI-7-like polypeptide, antibody against Tpl7-lysozyme-like polypeptide complex or lysozyme antibody can be directly labeled on a membrane and detected with Tp-17-like polypeptide, lysozyme and / or the Tpl7-lysozyme-like polypeptide complex, as described above.
  • the probes can be labeled or a secondary ligand can be used.
  • biosensor-based methods are known in the art and can be used to detect and quantify TpI 7-like polypeptide antibodies, Tpl7-lysozyme-like polypeptide antibodies or anti-isozyme antibodies.
  • samples with Tp 17-like and / or lysozyme-like polypeptide specific antibodies can be attached to the biosensor surface so that when the Tp 17-like polypeptide and / or lysozyme binds to the coated surface, a detectable change occurs on some surface property.
  • Biosensors measure, for example, changes in surface mass, changes in electrical properties or changes in optical properties. Each of these procedures is well known in the art and are suitable for use in the present procedures.
  • Biosensor-based procedures are commercially available in, for example, Biacore (Piscataway, NJ) and are suitable for use in the present invention to detect and quantify changes in antibody levels against polypeptide similar to Tp 17 and / or lysozyme. See also, for example, the protein detection methods described in US Pat. No. 6,225,047, the contents of which are fully incorporated herein by reference, and Davies et al. (1999) Biotechniques 27: 1258-61. Commercial capsule protein detection procedures are available at Ciphergen
  • the invention can be scaled up to detect or differentiate between two or more pathogens, for example, to determine if a strain of bacteria is a drug resistant strain or is unable to bind or inhibit lysozyme.
  • any of the methods described herein may be competitive immunoassays, which are well known in the art.
  • a competitive sandwich immunoassay can be performed to measure the level of antibody against a polypeptide similar to Tp 17 and / or against lysozyme, in which known antibodies against polypeptide similar to TpI 7 are used to compete with Tp 17-like polypeptide antibody in the sample for binding to Tp 17-like polypeptide.
  • serial dilutions of known antibodies to Tp 17-like polypeptide can be incubated with the sample or with the Tp 17-like polypeptide. before the addition to the test.
  • Mass spectrometry procedures can also be used for protein detection and to detect and quantify changes in antibody levels or fragments thereof, against Tp 17-like polypeptide and / or lysozyme in a sample, for example. See, for example, the procedures described in US Pat. No. 5,719,060; 5,894,063; and Shimizu et al. (2002) J. Chromatogr. B. Analyt. Technol Biomed Life Sci. 25: 776: 15-30; Kiernan et al. (2002) Anal. Biochem 301: 49-56; and Pramanik et al. (2002) Protein Sci. 11: 2676-87.
  • Protein detection procedures based on mass spectrometry can also be achieved at Ciphergen (Fremont, CA).
  • Ciphergen Frazier, CA.
  • the sample analyzed or treated using any of the compositions and methods of the invention may comprise a body sample such as blood, serum, plasma, tears, saliva, nasal fluid, sputum, otic fluid, genital flow, breast fluid, colostrum, milk , placental fluid, sweat, synovial fluid, ascites fluid, cerebrospinal fluid, bile, gastric fluid, gastrointestinal fluid, exudate, transudate, pleural fluid, pericardial fluid, semen, fecal material, upper airway fluid, peritoneal fluid, collected fluid from a site with inflammation, fluid collected from a site of accumulation, bronchial lavage, urine, aqueous humor, biopsy material, material from the previous stomach of a ruminant animal, sample of nucleated cells, fluid associated with a mucous surface, for example.
  • the compositions and methods according to the invention can be carried out on samples of dry cells (for example, hair or skin) or biopsy samples of any tissue in which the genes of interest or antibodies are expressed
  • sample also means any diagnostic, experimental or clinical sample that may be suspected of containing lysozyme or a Tp 17-like polypeptide, which, on the contrary, requires analysis or treatment to detect the presence.
  • lysozyme or of a Tp 17-like polypeptide or of an antibody against them such as culture vessels, cuvettes, cotton swabs, medical instrumentation (eg, surgical instrumentation).
  • a sample can also be a cell or fluid culture (eg, throat aspirate, cerebrospinal fluid sample, blood culture).
  • a sample can be a pathogenic preparation, such as, for example, a bacterium, a virus, a parasite, a plasmid, a mycoplasma, a fungal agent (for example, a fungus or a yeast) or a previous preparation.
  • the sample may be a liquid or solid agent, such as a food, a medicine, an implant, a graft, a cell or tissue culture medium, a water sample or other solution, reagent or apparatus for which sterility is something desirable or required.
  • compositions and procedures can be used to diagnose or treat contamination or infection by pathogens, for example, pathogen-related diseases such as, for example, syphilis, HIV infection, genital herpes, bubonic plague, dysentery, shigellosis, tooth decay, E.
  • pathogen-related diseases such as, for example, syphilis, HIV infection, genital herpes, bubonic plague, dysentery, shigellosis, tooth decay, E.
  • compositions and methods of the invention are useful in the diagnosis or treatment of cytoplasmic deposition diseases such as lysosome deposition diseases.
  • compositions and methods of the invention can be used to diagnose or treat diseases such as cancer, infectious diseases, inflammatory diseases, Alzheimer's disease, renal amyloidosis, leukemia, Crohn's disease and allergies.
  • diseases such as cancer, infectious diseases, inflammatory diseases, Alzheimer's disease, renal amyloidosis, leukemia, Crohn's disease and allergies.
  • Tp 17-like polypeptide inhibitors that compete with Tp 17-like polypeptides to bind with lysozyme can be administered to a subject (eg, a mammal such as a human being) to inhibit the binding of polypeptides similar to TpI 7 to lysozyme, so that lysozyme can fight the pathogenic agent.
  • a subject eg, a mammal such as a human being
  • muozyme lysozyme insensitive to inhibition by Tp 17-like polypeptides can be administered.
  • Any technical means for example, chemical drugs, competing peptides, antibodies, vectors, siRNA
  • lysozyme and its known inhibitors for example, such as a Tp 17-like polypeptide
  • lysozyme and its known inhibitors for example, such as a Tp 17-like polypeptide
  • an inhibitor eg, syphilis, HIV infection, genital herpes, bubonic plague, dysentery, shigellosis, dental caries, E.
  • compositions and procedures Entities of the invention are useful in the prophylaxis or treatment of cytoplasmic deposition diseases, such as lysosome deposition diseases.
  • ligands that compete with lysozyme for binding with Tp 17-like polypeptides can be administered to patients to inactivate lysozyme activity in patients suffering from diseases related to lysozyme overproduction or any disease or disorder in which a decrease in lysozyme activity is desired.
  • Preparations for oral administration of inhibitors of T ⁇ l7 / lysozyme-like polypeptide binding can be suitably formulated to provide controlled release of the active compound.
  • the inhibitors may be in the form of conventionally formulated tablets or pills.
  • the inhibitors for use according to the methods of the invention are conveniently released in the form of a aerosol in pressurized containers or nebulizers, with the use of a suitable propellant, for example, dichlorodifluoromethane, trichlorofluoromethane, dichlorotetrafluoroethane, carbon dioxide or other suitable gases.
  • a suitable propellant for example, dichlorodifluoromethane, trichlorofluoromethane, dichlorotetrafluoroethane, carbon dioxide or other suitable gases.
  • a suitable propellant for example, dichlorodifluoromethane, trichlorofluoromethane, dichlorotetrafluoroethane, carbon dioxide or other suitable gases.
  • a suitable propellant for example, dichlorodifluoromethane, trichlorofluoromethane, dichlorotetrafluoroethane, carbon dioxide or other suitable gases.
  • the dosage unit can be
  • Inhibitors can be formulated for parenteral administration by injection, for example, by bolus injection or continuous infusion.
  • Formulations for injection may be presented in unit dose form, for example, in ampoules or multi-dose containers, with an added preservative.
  • the inhibitors may take forms such as suspensions, solutions or emulsions in oily or aqueous vehicles and may contain formulating agents such as suspending, stabilizing and / or dispersing agents.
  • the inhibitors may be in powder form for constitution with a suitable vehicle, for example, sterile pyrogen-free water, before use.
  • Inhibitors can also be formulated for rectal administration, inhibitors such as suppositories or retention enemas, for example, containing conventional suppository bases such as cocoa butter or other glycerides.
  • Inhibitors can also be formulated as a depot preparation.
  • parenteral depot systems SDP
  • SDP parenteral depot systems
  • Such long-acting formulations can be administered by implantation (for example, subcutaneously or intramuscularly) or by intramuscular injection.
  • the inhibitors can be formulated with suitable polymeric or hydrophobic materials (for example, as an emulsion in an acceptable oil) or ion exchange reams, or as very poorly soluble derivatives, such as a very poorly soluble salt.
  • microspheres that offer the possibility of non-invasively releasing inhibitors locally over an extended period of time.
  • This technology uses precapillary microspheres that can be injected through a coronary catheter into a selected part of the body, for example, the eye or other organs, without causing inflammation or ischemia.
  • the inhibitor administered is It slowly releases these microspheres and is captured by the cells of adjacent tissues.
  • Systemic administration of the inhibitors can also be transmucosally or transdermally.
  • suitable penetration agents are used in the formulation to cross the barrier.
  • penetrants are known in the art and include, for example, for transmucosal administration bile salts and fusidic acid derivatives.
  • detergents can be used to facilitate permeabilization.
  • Transmucosal administration can be done through nasal sprays or using suppositories.
  • the oligomers of the invention are formulated as ointments, thick ointments, gels or creams, as are generally known in the art.
  • a wash solution can be used locally to treat an injury or inflammation to accelerate healing.
  • Cells The invention may require cells for the preparation or analysis of pathogenic peptides, for example.
  • Cultured primary or permanent animal or bacterial cell lines may be: primary cells (including, but not limited to, monocytes, synoviocytes, fibroblasts and endothelial cells) derived from the same subject as the liquid sample or derived from another individual; permanent cell lines of a range of tissues and organs as origin
  • bacterial cells can grow in 2XYT broth on a shaker at 37 ° C. Procedures for the growth of bacteria transformed with a plasmid or a virus may also include growth in selective agents such as ampicillin or another antibiotic. Preparations of cells and cell lysates, as well as purification of proteins and nucleic acids are also well known in the art.
  • the practice of the present invention may employ, unless otherwise indicated, conventional techniques of cell biology, cell culture, molecular biology, transgenic biology, microbiology, recombinant DNA and immunology, within the knowledge of those skilled in the art. Such techniques are fully explained in the literature. Molecular Cloning - A Laboratory Manual (1989), 2 Ed., Sambrook et al. (Eds.) CoId Spring Harbor Laboratory Press, Chapters 16 and 17; Hogan et al. (1986) Manipulating the Mouse Embryo: A Laboratory Manual, CoId Spring Harbor Laboratory Press, CoId Spring Harbor, NY; US Patent No. 4,683,195; DNA Cloning, Volumes I and II (1985) Glover (Ed.); Oligonucleotide Synthesis (1984) Gait (Ed.); Nucleic Acid Hybridization (1984) Hames & Higgins
  • the methods of the invention are useful as a diagnostic and prognostic tool, as a means to treat or immunize against diseases, to control the progression and resolution of the disease, to follow the response or absence thereof, as therapy.
  • the methods of the invention can also be used, in the context of drug research and development, to assess the potential efficacy and side effects. of drugs under investigation and approved in biological samples obtained in the course of animal tests and / or in clinical trials of phases I, II, III and IV and / or post-marketing studies.
  • the practice of the invention will be more fully understood from the following examples, which are presented herein for illustrative purposes only and should not be construed as examples limiting the invention in any way.
  • EXAMPLE 1 Chicken lysozyme copurifies with recombinant forms of the Treponema Pallidum 17 kDa antigen
  • T. pallidum Tp 17 antigen derived from E. coli (GST-Tp 17 or Tpl7-HIS)
  • This "contaminant" protein which had a molecular weight of 14KDa and did not react with an antiTpl7 polyclonal serum, was identified as chicken lysozyme as described below. .
  • contaminant by PAGE-SDS, was excised from the gel and subjected to N-terminal amino acid sequencing. The experiment gave small N-terminal peptide sequences (6-7 amino acids) that perfectly matched the expected sequence of the Tp 17 antigen from T. pallidum or chicken lysozyme, which had been included in the resuspension buffer of the cell paste to facilitate bacterial lysis. These observations suggested that Tp 17 physically interacts with chicken lysozyme. Below are the experimental protocols corresponding to the purification of GST-Tp 17 and Tpl7-HIS, as well as microsequencing experiments. GST-Tp 17 chromatography Growth of the recombinant E.
  • Cells were collected and resuspended in 50 mM Tris (pH 8.0), 85mM NaCl, 2mM EDTA, 1% tridecyl ether polyoxyethylene ether, containing protease an inhibitor mixture (1 ml / g cell paste, Sigma-Aldrich , Madrid, Spain) and 0.5mg / ml chicken lysozyme (Sigma-Aldrich, Madrid, Spain). After incubating for 50 minutes, the cells were subjected to ultrasound and centrifuged at 28,000 g.
  • Recombinant GST-Tpl7 was purified from the supernatant by ion exchange chromatography (Q Sepharose XL, Amersham Biosciences, Cerdanyola, Spain). The flow was subsequently purified by glutathione affinity chromatography (glutathione sepharose FF, Amersham, Cerdanyola, Spain). To elute the GST-Tp 17, a 10OmM reduced glutathione buffer was used. The collected fractions were analyzed by gel electrophoresis. Following the same protocol, another purification procedure was performed without using lysozyme.
  • T ⁇ l7-HIS chromatography The mature Tp 17 protein coding gene sequence (including residues 23 to 156 of the Tp 17 sequence deposited with NCBI reference number P29722 (SEQ ID NO: 31)) was amplified by PCR using the pProExHT-Tpl7 vector (Dr. Norgard, University of Dallas, Texas, USA) as a template. PCR amplification was performed using an Expand High Fidelity PCR system (Roche Diagnostics, Mannheim, Germany) and P 17- oligonucleotides.
  • Ndel (5'- AGA TAT ACA TAT GGT CTC GTG CAC AAC CGT GTG TCC GCA CGC CGG GAA GGC CAA -3 ') (SEQ ID NO: 33) and P17-revl (Xhol) (5'- ATG TAG CGA ACG GAG TTA -3') (SEQ ID NO: 34) under the conditions recommended by the provider (Roche Diagnostics, Mannheim, Germany).
  • the thermal cycling conditions were as follows: a denaturation cycle (1 min at 94 ° C) followed by 30 amplification cycles (1 min at 94 ° C, 1 min at 55 ° C, 1 min at 72 ° C).
  • the resulting PCR amplicon (“300 bp) was purified using the Nucleotrap purification system (Macherey-Nagel, Duren, Germany). 1 ⁇ g of purified PCR fragment and 1 g of the plasmid pET24a purified with 10 units of Ndel and 10 units of Xhol were digested using the conditions recommended by the supplier (Roche Diagnostics, Mannheim, Germany). The restriction fragments were separated with a 0.8% agarose gel (Sambrook et al.
  • Plasmid DNA was prepared for 10 individual clones and analyzed by restriction endonuclease digestion using Ndel and Xhol. Eight of 10 clones contained the correct recombinant plasmid pET24a-Tpl7. The sequence of a plasmid clone was verified by DNA sequencing (DNA Sequencing Center, UAB, Barcelona, Spain) and subsequently used to transform E. coli expression strain BL21 (DE3) Rosetta (Novagen, Madison,
  • E. coli EcBK633 was induced in a 5-liter bioreactor in 2xYT broth with ampicillin (Roche Diagnostics, Mannheim, Germany). The culture was induced with IPTG ImM (Roche Diagnostics, Mannheim, Germany) for four hours. The cells were collected and resuspended in
  • the membrane was then incubated for 1 hour at room temperature (18-22 ° C) in 5 ml of Blotto TM (BioRad, Hercules, California) with PBS, 0.05% w / v Tween and 10% w / v skimmed milk powder (PBST).
  • Blotto TM BioRad, Hercules, California
  • the membrane was then processed as follows: (1) three 10-minute washes with PBST, (2) 1 hour of incubation at room temperature (18-22 ° C) in the presence of 10 ml of a human serum of one patient with syphilis diluted 1/200 in Blotto TM, (3) three 10-minute washes with PBST, (4) 1 hour incubation at room temperature with 10 ml of alkaline phosphatase conjugate, rabbit polyclonal human antiserum (BioRad, Hercules , California, USA) diluted 1/2000 in PBST, (5) three 10-minute washes with PBST, and (6) a final incubation with 5 ml of NAT / BCIF chromogenic alkaline phosphatase substrate (Sigma-Aldrich, Madrid, Spain) until the appearance of color. As shown in Figure 8B, this assay detects the binding of human IgG to the 17kDa protein (Tpl7-HIS) but not to the 14kDa protein.
  • the chromatographic fraction containing the Tpl7-HIS purified with the contaminating protein (14kDa) and a protein molecular weight marker (See Blue Plus II TM, Invitrogen SA, Barcelona, Spain) was separated by electrophoresis through an SDS-PAGE gel 15%, as described in Sambrook et al. (1989). Subsequently, the proteins in the gel were electrotransferred to an Immobilon TM P PVDF membrane (Millipore Corp., Bedford, MA) using vendor guidelines. The membrane was stained with Coomassie R250 bright blue and the two bands were cut and dried for sequencing analysis. N-terminal analysis by automatic Edman degradation was performed in a sequencer Beckman LF3000 with a PTH amino acid analyzer (System GoId, Beckman Coulter, Fullerton, California). The sequences obtained were:
  • White chicken egg lysozyme and purified human breast milk lysozyme were obtained from Sigma-Aldrich (Madrid, Spain). Two series of aliquots with 1 ⁇ g, 5 ⁇ g and 10 ⁇ g of purified lysozyme and a protein molecular weight marker (See Blue Plus II TM, Invitrogen SA, Barcelona, Spain) were electrophoretically separated through an SDS-PAGE gel 4-12% using the conditions recommended by the supplier (Invitrogen). The gel was then processed to perform the Western blot, as described in Sambrook et al. (1989) according to procedures known in the art, and the proteins were electrotransferred to an Immobilon TM P PVDF membrane (Millipore Corp., Bedford, Massachusetts).
  • the presence of immobilized lysozyme in the PVDF membrane was assessed by staining for 1 minute with Ponceau S dye (Sigma-Aldrich, Madrid, Spain) and then the dye was removed by vigorous washing for 5 minutes with deionized water.
  • the membrane was divided in two, each serving containing a protein mark and three amounts of lysozyme. chicken or human (1 ⁇ g, 5 ⁇ g and 10 ⁇ g per lane).
  • TBST 10 mM Tris-HCl, pH 8.0, 150 mM NaCl, 0.05% w / v Tween 20 TM,) supplemented with 5 % (weight / vol) of skimmed skim milk powder SVELTESSE TM (NESTLÉ, SPAIN, Barcelona, Spain) (to prepare TBST milk).
  • SVELTESSE TM skimmed skim milk powder
  • the membranes were processed separately as follows: (1) three 1 minute washes with 10 ml of TBST, (2) 1 hour incubation at room temperature (18-22 ° C) in the presence of 10 ml of 10 mg / ml of the GST-Tp 17 rasion protein (Akin et al.
  • pallidum binds strongly and specifically to human and chicken lysozyme, and (ii) this property is contained between residues 22 to 156 of Tp 17 (the numbers represent the peptide sequence of Tpl7 deposited under reference number P29722 (SEQ ID NO: 31)). It is used to characterize new lysozyme binding proteins as well as to identify lysozyme mimics unable to bind to the known lysozyme inhibitor. On the contrary, this assay is used to detect Tp 17 mimics unable to bind or associate with lysozyme.
  • this assay is used to detect substances (for example, peptides, proteins, drugs, antibodies, nucleic acids, PNA 5 etc.) that interfere with the binding of lysozyme to its known inhibitor.
  • substances for example, peptides, proteins, drugs, antibodies, nucleic acids, PNA 5 etc.
  • T. Pallidum Tp 17 protein antigen inhibits the antibacterial activity of human and chicken lysozyme
  • Lysozymes are well-characterized antibacterial agents found on mucous surfaces and in biological fluids. Given its potent acetyl-muramidase enzyme activity, lysozymes are able to hydrolyze the cell wall peptideglucan, thereby killing many pathogenic bacteria.
  • the harsh union between Tp 17 and human lysozyme suggested that this union may alter the antibacterial activity of lysozyme. This hypothesis is compatible with the observation that (i) T. pallidum is a mucous pathogen and (ii) is in contact with human lysozyme in its ecological niche, throughout its infectious life cycle.
  • the assay comprises the use of fluorescein-labeled Micrococcus lysodeikticus bacterial cells as a lysozyme fluorescent substrate.
  • the peptideglucan layer is directly accessible to lysozyme, and has been labeled with fluorescein in such a way that the fluorescence is naturally tempered. After lysozyme hydrolysis, inactivation is softened and fluorescein is released in an amount proportional to lysozyme activity. The following experimental protocol was used. Lysozyme Inhibition Assay
  • this assay is used to characterize new lysozyme inhibitors as well as to identify lysozyme mutants unable to bind to their known inhibitor and / or insensitive to inhibition by Tpl7, Ivy, or other proteins similar to Tp 17.
  • This assay also provides a useful detection of substances (for example, peptides, proteins, drugs, antibodies, nucleic acids or PNAs, etc.) that interfere with the inhibition of the antibacterial activity of lysozyme.
  • EXAMPLE 4 Structural determinant required for the union of Escherichia CoIi
  • the Ivy protein shares less than 21% of the amino acid sequence with Tp 17 (as determined by the Multalin algorithm (http://prodes.toulouse.inra.fr/multalin /multalin.html> of multiple sequence alignment) and no obvious peptide motif from polypeptide sequence alignments could be deduced.
  • the three-dimensional crystalline structure of chicken Ivy / lysozyme was examined for localized residues at the interface between both molecules.
  • NCBI three-dimensional molecular structure Cn3D viewer
  • ht1p //www.ncbi.nlm.nih.gov/Structure/CN3D/cn3d.slitml
  • NCBI reference numbers P00698 for chicken lysozyme
  • Figures 13A-13D illustrate that the salt bridge involving D 89. ⁇ 2S Ri 32 - chkcLys was partially exposed to the solvent water molecules ( Figures 13C and 13D), while the salt bridge involving H 88- JVy 2S E 53-C h k cLys was completely concealed and, consequently, protected from the solvent by the protein interface. protein ( Figures 13 A and 13B). Since the hydration of a salt bridge reduces its binding twist, the salt bridge ⁇ H 88- IV and E 53-C hkcLys is less likely to break because of the solvent the salt bridge D 89.
  • Figures 13A and 13B also show that the salt bridge of H 88- i v and 2S E 53-C h kcL and s blocked the accessibility to glutamic acid 53 (E 53 ) of chicken lysozyme .
  • the glutamic acid number (E 53 ) and aspartic acid 71 (D 7 i) in the total length lysozyme sequence correspond to residues E 35 and D 53 of the mature lysozyme peptide chain.
  • E 53 together with D 53 in mature chicken lysozyme are conserved in all known lysozyme sequences and are thought to be the two catalytic residues required for the hydrolysis of peptideglucan (Malcom ⁇ et al. (1989) Proc. Nati. Acad. Sci. USA 86: 133-7).
  • EXAMPLE 5 Identification of a consensus peptide sequence shared by mammalian lysozyme protein inhibitors
  • Example 4 demonstrated that the sequence of peptide II NH 2 -CKPHDCG- C OR OH (SEQ ID NO: 38) is necessary for binding to and inhibiting the enzymatic activity of lysozyme. A detailed examination of the polypeptide sequence of
  • TpI 7 identified two candidate sequences that possibly mediate the binding and inhibition of human and chicken lysozymes. Both sequences, named Tpl7_jpepl and Tpl7jpep2, are listed below: Tpl7_pepl: N H 2-2 9 CPHAGKAKAE KV EC 42 - COO H (SEQ IDS NO: 41) Tpl7_pep2: NH2 - 114 KAPHEKE 120 - COOH (SEQ ID NO: 42 )
  • Tpl7jpepl is closely related to the NH2-8 5 CKPHDCG 91 -CO O H motif (SEQ ID NO: 38) of the E. coli Ivy Ivy protein but differs by the presence of a nine-amino acid piece separating the histidine residue of the aspartic acid residue.
  • Figure 14B 5 and as found for the Ivy motif ( Figure 14A) the bridges of the two adjacent cisterns are likely to bring critical histidine and aspartic acid residues into space, possibly in a configuration capable of contacting residues E 53 and R 132 of lysozyme.
  • Tpl7jpep2 is also closely related to the NH2-CKPHDCG-COOH motif SEQ ID NO: 38 of the E. coli Ivy protein, since it shares the critical PH residues followed by an acidic residue (D / AND).
  • the collection of structural data, bibliographic information and database searches revealed a consensus sequence for lysozyme binding [CKVA] [ACK] PH [AED] [CGK] (SEQ ID NO: 3), written using the PROSITE universal peptide pattern syntax format.
  • Tp 17-like polypeptides are illustrated in Figures 1 and 2.
  • EXAMPLE 6 In Silico Identification of putative lysozyme binding proteins and inhibitors
  • the proteins of T. denticola, B. thetaiotaomicron, C. burnetti, H. influenzae, serogroups A and B of N. meningitidis, V. cholerae, V. vulnificus, H. ducreyi, S. typhi, L. pneumophila, S Aureus, N. gonorrhoeae and B. pertus can be grouped according to the following consensus sequence: CX (0.3) PHX (0.14) C, which corresponds to
  • Proteins (from P. gingivalis and H. pylori) are slightly atypical variants that could be grouped in the following consensus sequence: CX (0.3) HX (0.10) C corresponding to Cys Xaai Xaa 2 Xaa 3 His Xaa 4 Xaa 5 Xaa 6 Xaa 7 Xaa 8 Xaa 9 Xaa 10 Xaa ⁇ Xaa 12 Xaa 13 Cys (SEQ ID NO: 175), where x is any amino acid or is absent. This result is interesting, since all these microorganisms are mucosal pathogens for part or most of their infectious life cycle.
  • HSV gJ protein 2 is also a lysozyme binding / inhibitor protein. Surprisingly, the reason for lysozyme consensus binding does not exist in the closely related HSV gJ protein I ( Figure 15). This observation provides a possible explanation for clinical observations that document a preferential, but not exclusive, tropism of HSV-I by the orofacial region, while HSV-2 is found more frequently in the genital mucosa, rich in lysozyme (Lowhagen et al. (2002) Acta Derm. Venereol. 82: 118-21; Bruisten et al.
  • EXAMPLE 7 Identification of point mutations that destabilize the protein-protein interaction of lysozyme / inhibitor It is widely recognized that protein-protein interactions depend on structural and physicochemical complementarity. Irregularity and local heterogeneity of protein surfaces enable specific binding and association with ligands and provide a basis for the formation of the quaternary structure. The assembly between one protein surface and another depends on something more than its shape. It extends to the weak physicochemical bonds that hold the complexes together: covalent bonds, hydrogen bonds, salt bridges, wide-range electrostatic interactions and Van der Waals interactions.
  • the imitating lysozyme substantially retains the desired microbial activity (eg, at least about 30%, 50% or even 80%) of the corresponding wild-type lysozyme.
  • mutant lysozymes represent new and interesting tools for the treatment of infectious diseases. They are also substitutes for the natural lysozyme derived from chicken eggs used in medicinal preparations available on the market and have a better potency and spectrum of activity. Below is a list of potential drugs that are more likely to improve with the use of such inhibition-resistant lysozyme mutants:
  • Such lysozyme mutants are obtained using both randomized and targeted approaches.
  • the hypothesis was presented that positively charged lysozyme residues present in the lysozyme / inhibitor contact area are attractive targets for mutagenesis.
  • the production of a lysozyme mutant with a negatively charged contact surface could result in an electrosylic repulsion preventing inhibitor binding. Since these mutations do not affect the catalytic residues of lysozyme, they are likely to produce active lysozyme mutani, not inhibited by pathogens.
  • QuikChange® Site-Directed Mutagenesis directed mutagenesis kit following the instructions recommended by the provider (Stratagene, La Jolla, CA). Briefly, the QuikChange® Site-Directed Mutagenesis kit is used to make point mutations, substitute amino acids and delete or insert one or more amino acids.
  • the QuikChange® site-directed mutagenesis procedure is carried out using PfuTurbo ® DNA polymerase and a temperature cycler. PfuTurbo® DNA polymerase replicates both plasmid strands with high fidelity and without displacing the mimicking oligonucleotide primers.
  • the basic procedure uses a supercoiled double stranded DNA vector (ADNds) with an insert of interest and two synthetic oligonucleotide primers containing the desired mutation.
  • the oligonucleotide primers are extended during the temperature cycles by the PfuTurbo DNA polymerase.
  • the incorporation of oligonucleotide primers generates a mutated plasmid containing alternating nicks. After the temperature cycles, the product is treated with Dpn I.
  • the Dpn I endonuclease (target sequence: 5'-GM 6 ATC-3 ') is specific for methylated and hemimethylated DNA and is used to digest the parental DNA template and to select the synthesized DNA that contains the mutation.
  • the DNA isolated from almost all strains of E. coli is methylated and therefore is susceptible to digestion with Dpn I.
  • the nicked vector of DNA containing the desired mutations is transformed into supercompetent XLl-Blue cells.
  • the two-hybrid system is based on the fact that many eukaryotic transcription activators are composed of two physically different modular domains: the DNA binding domain (DNA-BD) and the activation domain (AD).
  • the BD-DNA binds to a specific promoter sequence and the AD directs the RNA polymerase II complex to transcribe the gene in the 3 '(downstream) direction conferring a selectable / detectable phenotype.
  • Domains act as independent modules: none can only activate transcription, but each domain continues to function when fused to other proteins. Suitable commercial systems include the BacterioMatch ® II Two- ready system
  • Hybrid System (Stratagene, La Jolla, CA,) or the BD Matchmaker TM system (BD Biosciences Clontech, Palo Alto, CA).
  • Lysozyme and Tp 17 are expressed, one fused to AD and the other fused to DNA-BD. If the two proteins interact, the DNA-BD and AD domains approach closely and activate transcription of an indicator gene. Depending on the host system used (for example, bacteria, yeast or mammal), the interaction is detected by selective detection of observable physiological or structural change (for example, colony color, fluorescence emission, enzymatic activity, etc.) .
  • the AD and DNA-BD domains are fused with lysozyme and Tp 17 respectively, transformed into a suitable microbial host (eg, bacteria or yeast), and the resulting transformants are examined for the appearance of indicative blue colonies. of activation of the reporter gene (for example, beta-galactosidase).
  • the reporter gene for example, beta-galactosidase
  • Example 3 demonstrates that, in vitro, the 17 kDa Tpl7 protein from T. pallidum binds strongly to human and chicken lysozymes and strongly inhibits the antibacterial activity of both lysozymes.
  • the following experiment demonstrates that these binding and inhibition interactions also occur in vivo during infection of human mucous surfaces by T. pallidum.
  • new epitopes are likely to form and be exposed to the immune system.
  • Syphilitic patients may have an immune response against Tp 17 epitopes as well as against epitopes shared by the Tpl7-lysozyme complex or even against lysozyme alone, as shown in Figure 4.
  • GST-Tp 17 (5 ml) was supplemented with 6 1 of white lysozyme from chicken egg (100 g / 1).
  • Both batches of sensitized erythrocytes were homogenized by magnetic stirring, for 30 minutes at room temperature. The sensitivity of each batch was evaluated by carrying out a hemagglutination reaction using a set of human syphilis sera, characterized by giving a dubious response with other commercial hemagglutination reagents.
  • the hemagglutination reaction was performed as follows. In a round bottom microtiter plate (U-shaped), 25 ⁇ l of diluent was added
  • Human breast milk is the natural source of human lysozyme.
  • the lysozyme purification of this body fluid is tedious due to: (i) its low abundance, (ii) the difficulty in ensuring a regular and reproducible supply, (iii) the possible contamination with undetected pathogens, as well as (iv) social and ethical interests. Therefore a recombinant source of human lysozyme is preferable for use on an industrial scale.
  • the potency of human natural lysozyme derived from breast milk and recombinant human lysozyme derived from transgenic rice were compared. Purified natural human lysozyme from breast milk (L-6394; Sigma-
  • Figure 18A illustrates that the addition of recombinant human lysozyme to a hemagglutination reagent for syphilis substantially improved the sensitivity of the assay.
  • 14 of the 19 samples that tested negative using the reagent that did not contain lysozyme were in fact positive when lysozyme was added to the reaction.
  • Figure 18B visual discrimination between a positive and negative reaction is simplified when recombinant human lysozyme is added to the reagent.
  • Figure 19 illustrates the yield (relative hemagglutination intensity) of two hemagglutination reagents, with (recombinant Lys R reagent) or without recombinant human lysozyme (reagent R).
  • Figure 20 illustrates that the addition of recombinant human lysozyme (LysR) to a hemagglutination reagent for syphilis does not give false positive results.
  • EXAMPLE 10 Human lysozyme improves the sensitivity of the Mt of the enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) used for the diagnosis of syphilis
  • ELISA enzyme-linked immunosorbent assays
  • an enzyme substrate solution containing a chromogen is added. This solution turns blue if the sample is positive. The blue color changes to yellow after blocking the reaction with sulfuric acid. The color intensity is proportional to the concentration of anti-T antibody. pallidum in the sample. The wells that contained the negative samples remained colorless.
  • test samples are supplied by Bioelisa Syphilis 3.0 detection kit (Biokit SA, Llica d'Amunt, Spain). The protocol used is the one recommended in the package included in the kit. Briefly, the test is carried out by incubating test samples in the wells of a microtiter plate coated with T. pallidum proteins (for example, antigens Tpl5, T ⁇ l7 or Tp47 recombinants). The specific IgG and IgM antibodies present in the sample bind to solid phase antigens. Subsequently, the wells are washed to remove the remains of the test sample and T. pallidum antigens conjugated with the enzyme peroxidase are added.
  • T. pallidum proteins for example, antigens Tpl5, T ⁇ l7 or Tp47 recombinants
  • the conjugate binds to the specific antibodies captured. After another wash to remove unbound material, an enzyme and chromogen substrate solution is added. This solution turns blue if the sample contains anti-T antibodies. pallidum The blue color changes to yellow after blocking the reaction with sulfuric acid. The color intensity is proportional to the concentration of anti-T antibody. pallidum in the sample.
  • recombinant human lysozyme Ventria Bioscience, Ventura, CA
  • recombinant human lysozyme was added to the Bioelisa Syphilis 3.0 ELISA plates
  • recombinant human lysozyme was added in the sample dilution buffer at a concentration of
  • the human lysozyme / Tp 17 protein complex is very antigenic and, as described above, is useful in diagnostic assays.
  • the isolation of the purified human lysozyme / Tpl7 complex facilitates structural studies, such as protein crystallization and determination of atomic structure through X-ray diffraction. Using the experimental procedures described below, the amounts in mg of purified human lysozyme complex / Tpl7-His were obtained.
  • the Tpl7-His protein obtained as described in Example 1, was further purified by gel filtration chromatography in order to separate monomers and dimers from other aggregate forms (Figure 22).
  • a 16/50 HR column (diameter 1.6 cm x 60 cm high; Amersham Biosciences, Cerdanyola, Spain). Then, 2 ml of the sample was injected with 8 mg of the Tpl7-HIS fusion protein and chromatography was carried out at a flow rate of 1-1.25 ml / min at a constant pressure of 0.70 MPa.
  • Tpl7-HIS / human lysozyme complex Purification of the Tpl7-HIS / human lysozyme complex by gel filtration. As shown in Figure 24, the human Tpl7-HIS / Iisozyme complexes were separated from unassembled monomers by gel filtration on a Superosa 12 HR 16/50 gel as described above. Fractions corresponding to the peak of Tpl7-HIS / human lysozyme were collected and concentrated using Centricon Plus 20 devices (UFC2LGC08, The Millipore Corporation, Bedford, MA, USA) with a cut-off point at 10 kDa.
  • ULC2LGC08 Centricon Plus 20 devices
  • Tpl7-HIS monomers / human Hsozyme and Tpl7-HIS dimers / h ' human sozyme were recovered at 1.62 mg / ml and 1.57 mg / ml, respectively.
  • the final protein recovery yield was 60% for the Tpl7-HIS m ⁇ nomer / human lysozyme complexes and 44% for the Tpl7-HIS dimer / h ' sozyme complexes.
  • EXAMPLE 12 Procedure to discover new proteins similar to Tpl7
  • Tpl7 and Tpl7-like proteins share the ability to bind to human lysozyme. According to this observation, generic procedures were elucidated to provide for the detection of Tp 17-like proteins in total protein extracts of pathogenic organisms.
  • the human lysozyme conjugated to a detectable label is hybridized to a protein sample. Lysozyme binding identifies a Tp 17-like polypeptide in the sample.
  • Human lysozyme-horseradish peroxidase conjugates were produced by mixing 9.72 mg of recombinant human lysozyme (159-53LZ-90P, Ventria Bioscience, Sacramento, CA , USA) and 13.6 mg of activated peroxidase (POD) (1,428,861; Roche, Mannheim, Germany) in a total volume of 3.5 ml of carbonate buffer (50 mM sodium carbonate / hydrogen carbonate, pH 9.55). The conjugation reaction was carried out for 2 hours at 25 0 C in a water bath with manual stirring every 30 minutes.
  • reaction was terminated by the successive addition of 364 1 of 2M triethanolamine (108379; Merck, Darmstadt, Germany) and 455 1 of sodium borohydride (45,288-2; Sigma Aldrich Chemie, Steinheim, Germany) at a concentration of 4 mg / ml in deionized water.
  • the resulting solution was manually stirred for 15 seconds and then incubated for 30 minutes at 2-8 0 C.
  • 227 1 of 2M triethanolamine was added and the mixture was incubated for 2 hours at 2-8 0 C.
  • glycine IM (104201; Merck, Darmstadt, Germany) and the solution was dialyzed for 15 hours against TSG buffer (20 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl, 10 mM Glycine, pH 7.5. the solution was clarified by centrifugation for 30 minutes at TSG buffer (20 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl, 10 mM Glycine, pH 7.5. the solution was clarified by centrifugation for 30 minutes at
  • the membrane was prepared by rinsing once with methanol and twice with deionized water. To carry out the electrophoretic transfer, the applied voltage was kept constant at 65 volts for one hour.
  • the membrane is incubated 1 hour at 22 ° C in TBST (10 mM Tris-HCl pH 8.0, 15OmM NaCl, Tween 20) supplemented with 5% (weight / volume) of SVELTESSE® skim milk (Nestlé Spain , Barcelona, Spain).
  • TBST 10 mM Tris-HCl pH 8.0, 15OmM NaCl, Tween 20
  • SVELTESSE® skim milk Nestlé Spain , Barcelona, Spain
  • the membrane was washed with TBST and then incubated for 1 hour at 22 0 C in milk TBST containing HRP-conjugated HuLYS, which is diluted 1/5000. After incubation, the membrane is washed three times in TBST.
  • Immunostaining is then carried out by immersion of the membrane in 10 ml of 3,3 ', 5,5'-Tetramethylbenzidine (TMB) (T0565; SIGMA-ALDRICH Inc., Saint-louis, MO, USA). ) to visualize proteins.
  • TMB 3,3 ', 5,5'-Tetramethylbenzidine
  • SIGMA-ALDRICH Inc. Saint-louis, MO, USA.
  • a positive control in cell extract (DE3) of E. coli BL21 a single band is detected that migrates at 17 kDa and corresponds to IVY.
  • Gram-positive bacteria lack an outer membrane and show a thick peptidoglycan layer on the side of the culture medium. As a consequence, these bacteria are likely to be more sensitive to the action of lysozyme than gram-negative bacteria. Therefore, the hypothesis of the inventors is that gram-positive bacteria that are human pathogens possess lysozyme inhibitors. Due to the absence of an outer membrane, these inhibitors may be present in the bacterial culture medium.
  • the inventors have performed analyzes to determine the presence of inhibitors of Lysozyme in the culture medium of eight clinically relevant gram-positive bacterial species (strain CECTl 84 of Enterococcus faecalis, strain ATCCl 0541 of Enterococcus faecium, strain ATCCl 1632 of Staphylococcus aureus, strain ATCC12228 of Staphylococcus epidermidis, strain ATCCrecumc19 strain Stptooniac ATCC strain19 Stumoniae of ATCC12 strain, pneumonia strain ATC1 strain of pneumonia CECT598 of Streptococcus pyogenes, strain CIP 105451 of
  • Streptococcus agalactiae and strain NMR-GF of Propionibacterium acnes Streptococcus agalactiae and strain NMR-GF of Propionibacterium acnes.
  • Microcon® YM-10 (The Millipore Corporation, Bedford, MA, USA). Fifteen ⁇ l of each supernatant concentrate was analyzed by SDS PAGE electrophoresis using a 4-12% NuP AGE® gradient gel and then stained with silver (SilverXpress® kit) to visualize the proteins according to the manufacturer's instructions (The Invitrogen company, Prat de Llobregat, Barcelona, Spain).
  • TpI 7 proteins Numerous animal and human pathogens express TpI 7 proteins and similar to Tp 17 (eg, viruses, bacteria, fungi and protozoa). Drugs that interfere with the formation and / or stability of HuLYS / Tp 17-like protein complexes are promising antimicrobial candidate compounds that can be used to prevent or treat a pathogenic infection in a subject.
  • an in vitro selection test was designed as described below. It will be apparent to one skilled in the art that this test is useful for the high-performance selection of biological extracts and chemical libraries. As shown in Figure 27, an example procedure involves the following steps:
  • reagents PB S 1 OX was prepared by dissolving 29 g of Na 2 HPO 4 / l 2 H 2 0.2, 2 g of KH 2 PO 4 and 80 g of NaCl in 1 liter of pyrogenic distilled water and adjusting the pH at a pH of 6.8 with sodium hydroxide (10M).
  • a solution of BS A-Glycine was prepared by dissolving 10 g of BSA (81-003; Pentex Miles Inc., Kankakee, USA), 7.5 g of Glycine (500190; Merck, Darmstadt, Germany) and 1 g of sodium azide (6688; Merck, Darmstadt, Germany) in 1 liter of distilled water (MiIIiQ grade, The Millipore Corporation, Bedford, MA, USA). The pH of the resulting solution was 7.4 with NaOH (10M).
  • the 1OX wash buffer for ELISA, the TMB chromogenic substrate and the TMB dilution buffer are commercially available (96 well BioELISA ANTI-HBS Kit, 3000-1101; biokit SA 5 Llica d'Amunt, Spain).
  • the ELISA sample dilution buffer was obtained from
  • Tp 17 inhibits commercially available therapeutic lysozyme preparations
  • Chicken lysozyme is a potent antimicrobial enzyme active against bacteria and viruses.
  • Commercial preparations containing lysozyme as an active agent include, but are not limited to, LIZIP A ⁇ NA® (Boehringer Ingelheim, San Cugat del Valles, Spain) and LISOZIMA CHIESI (CHIESI ESPA ⁇ A SA, Barcelona, Spain). Since it has been shown that Tp 17 protein inhibits the in vitro enzymatic antibacterial activity of purified lysozyme, the inventors have postulated that Tp 17 can also inhibit the antibacterial activity of
  • LIZIP A ⁇ NA® and LISOZIMA CHIESI were resuspended in deionized water (The Millipore Corporation, Bedford, MA, USA) to adjust the lysozyme concentration to 4 g / ml. Then, these samples were incubated in the absence or in the presence of an amount Increasing GST-Tp 17 or Tpl7-HIS.
  • the molar ratio between chicken lysozyme and its known inhibitor was varied from 1: 5 to 1:50 for GST-Tpl7 and from 1:16 to 1: 160 for Tpl7-HIS.
  • the samples were analyzed to determine the enzymatic activity of lysozyme using the EnzCheck® Lysozyme test kit (E-22013; Molecular
  • Tp 17 and similar to Tp 17 are capable of inhibiting the enzymatic antibacterial activity of two commercially available antimicrobial drugs. It is likely that some of the therapeutic efficacy provided by LIZIP A ⁇ NA® and LISOZIMA CHIESI, and related drugs, will be lost in vivo due to the inhibition of TpI 7 proteins and similar to Tp 17. As discussed above, TpI 7 proteins and similar to Tp 17 they are widely expressed in bacterial, viral, fungal and human parasite pathogens. Consequently, lysozyme variants that are not subject to enzymatic inhibition by Tp 17 and Tp 17-like proteins are a promising class of new antimicrobial drugs. EXAMPLE 16 The Tpl7 protein does not inhibit the antibacterial activity of r-
  • rLysozyme TM is a highly recombinant lysozyme that is recommended for lysis of E. coli cells.
  • the enzyme catalyzes the hydrolysis of N-Acetylmuramide bonds in the bacterial cell wall.
  • the specific activity of the rLysozyme solution (1,700,000 U / mg) is 250 times higher than the white lysozyme of chicken egg and, therefore, less enzyme is required to achieve lysis of E. coli.
  • rLysozyme TM is optimally active at a physiological pH (6.0-8.0) that is compatible with the Novagen line of protein extraction reagents and nucleic acids.
  • the inventors compared the antibacterial activity of human lysozyme (Ventria Bioscience, Sacramento, CA, USA) and rLysozyme TM using the EnzCheck Lysozyme assay (E-22013; Molecular Probes, Eugene,
  • rLysozyme TM is not susceptible to inhibition by TpI 7 and possibly to proteins similar to Tp 17.
  • rLysozyme TM represents a promising new antimicrobial drug that could ultimately replace chicken lysozyme in various therapeutic preparations intended for human and animal use In addition, it can be used as an antiseptic and / or as a food preservative.
  • EXAMPLE 17 The Alzheimer's precursor protein ( ⁇ APP) shares structural similarities with proteins similar to Tp 17
  • ⁇ APP beta amyloid precursor protein
  • IGPQ E. coli Ivy
  • IUUZ P. aeruginosa Ivy
  • IMWP Homo sapiens ⁇ -APP
  • the lysozyme binding site identified in the ( ⁇ APP) resides at the N-terminus of the protein and extends through residues 92 to 116.
  • the APP751 isoform (751 amino acids in length) is a example of APP-like polypeptide.
  • the conclusions drawn from this figure are. also true for the APP695 and APP770 isoforms.
  • the amino acid numbers refer to the positions of the amino acids in the ⁇ APP sequence deposited in the GenBank with the reference number NP_958816 (SEQ ID NO: 313).
  • the lysozyme binding site is located between residues 92 to 116.
  • sAPP ⁇ a longer fragment of ⁇ APP derivative
  • sAPP ⁇ a shorter fragment of ⁇ APP derivative
  • sAPP ⁇ a longer fragment of ⁇ APP derivative
  • sAPP ⁇ a shorter fragment of ⁇ APP derivative
  • lysozyme binding assays were performed using recombinant, purified forms of -APP. Both the sAPP (product number: S9564) and the sAPP (302-612) (number of Product: S8065) were obtained from Sigma-Aldrich (Tres Cantos, Madrid, Spain). 10 g of each protein was sprayed on a Nytran membrane (Scleicher & Schüell, Dassel, Germany). The nonspecific adsorption sites were blocked by incubation for 1 hour with human lysozyme labeled with horseradish peroxidase (POD) diluted to 1/1000 in TBST milk.
  • POD horseradish peroxidase
  • compositions and procedures related to Alzheimer's disease are characterized by fragments of a substantially pure APP-like polypeptide, comprising an amino acid sequence of Cys X ⁇ SH Xaa 2 Xaa 3 X ⁇ SLA Xaa 5 Xaa ⁇ Xaa 7 Xaa 8 Xaa 9 Xaa 10 Xaa ⁇ Xaa 12 Xaa 13 Cys (SEQ ID NO: 177), where Xaa ⁇ Xaa 2 , Xaa 3 , Xaa 4 and Xaa 5 are amino acids or are absent, Xaa ⁇ is amino acid K, R or H, Xaa 7 is A or G , Xaa 8 is K, R, or H, Xaa 9 and Xaa 10 are amino acids or are absent, Xaa ⁇ is amino acid K or R, Xaa 12 is amino acid or is absent, and Xaa 13 is amino acid E, D, Q or N.
  • compositions and procedures are also characterized by nucleic acid molecules encoding these polypeptide fragments, vectors for the expression of such fragments and host cells containing these vectors.
  • Such fragments can be expressed as recombinant polypeptides and used for the generation of antibodies that recognize the fragment or recognize the fragment when complexed with a lysozyme polypeptide.
  • Antibodies that specifically bind a polypeptide complex similar to APP / lysozyme are useful in methods for diagnosing Alzheimer's disease in a subject, where the antibody is used as a probe of a biological sample of the subject, such as a serum sample, a cerebrospinal fluid sample or a tissue sample.
  • a biological sample of the subject such as a serum sample, a cerebrospinal fluid sample or a tissue sample.
  • a definitive diagnosis of Alzheimer's disease generally requires a postmortem study of the brain tissue of a subject. Therefore, the present compositions and procedures, which facilitate the diagnosis of Alzheimer's disease in body fluids obtained from a living subject, provide a significant improvement over existing diagnostic procedures.
  • the present invention provides a method for diagnosing Alzheimer's disease by detecting the presence in a sample of the subject of a complex between an APP-like polypeptide and a lysozyme polypeptide, or the presence of an antibody that binds to such complex.
  • a method is provided to identify a candidate compound that modulates the binding between the APP-like polypeptide and a lysozyme polypeptide by detecting a reduction in the binding between the TpI-like polypeptide and the lysozyme polypeptide in the presence of the compound. candidate.
  • H 31 and His 104 of Tpl7 contributed to the inhibition of huLYS, the inventors performed site-directed mutagenesis of the gene encoding GST-TpI 7 ( Figure 35A).
  • H 31 A and HiS 104 A GST-Tpl7 mutant polypeptides were generated by introducing two nucleotide changes into the plasmid vector pGEX2T-Tpl7 using the QuickChange® Site-directed directed mutagenesis kit (Stratagene, La Jolla, CA, USA). .).
  • Fw mutagenic oligonucleotides CPAAG (5'-CCG TGT GTC CGG CCG CCG GGA AGG C-3 ') (SEQ ID NO: 298) and Bw CPAAG (5'-GCC TTC CCG GCG GCC GGA CAC ACG G -3 ') (SEQ ID NO: 299), and oligonucleotides FwJCPAE (5'-AAT CGA AGG
  • CAC CGG CCG AGA AAG AGC TGT ACG-3) (SEQ ID NO: 300) and BwJCPAE (5'-CGT ACA GCT CTT TCT CGG CCG GTG CCT TCG ATT-3 ') (SEQ ID NO: 301) were hybridized separately to denatured pGEX2T-Tpl7 and extended using Pfu Turbo DNA polymerase under the conditions recommended by the supplier.
  • the unmethylated DNA template was removed by digestion with Dpnl and the resulting digestion mixture was used to transform XL-I Blue® cells supercompetent
  • the mutant plasmids were selected by restriction mapping of the amplicons resulting from the PCR.
  • the presence of an H 31 A mutation was confirmed by sequencing the full length mutated TpI 7 gene. It was then produced in GST-To 17 mutant with the H 31 A or HiS 104 A mutation and purified as described in Example 1. Lysozyme inhibition assays were carried out as described below.
  • Each 100 1 of the reaction mixture contained 25 1 of lysozyme solution (2 units for human lysozyme, dissolved in reaction buffer), 25
  • a negative control well contained 50 ⁇ l of deionized water and 50 ⁇ l of a fluorescein-labeled Micrococcus lysodeikticus suspension.
  • mutant polypeptides H 31 A and HiS 104 A showed a decrease in lysozyme inhibition, but retained their ability to bind lysozyme (Figure 36).
  • Figure 36 amino acid positions 31 and 104 contribute to inhibition and / or lysozyme binding.
  • embodiments of a mutant Tp 17 according to the present invention include one or more mutations in and / or around H 31 and His 104 of Tp-17 and the corresponding sites in other pathogens similar to Tp-17. Such a mutant may interfere with the normal inhibition of a Tp-17-like protein in vivo and, therefore, may have the therapeutic effects described above.
  • EXAMPLE 21 L TpI 7 can bind to the lysozyme-like protein SLLPl
  • type C lysozymes are bacteriolytic and can bind to N-acetylglucosamines linked by beta-1,4-glycosidic bonds.
  • the SLLP1 could be a possible receptor for the oligosaccharide residue of the N-acetylglucosamine egg, which is present in the extracellular matrix on the surface of the egg's plasma membrane, within the perivithelial space, in the pores of the zona pellucida and in the accumulated layers.
  • aSLLPl and human lysozyme share a sequence identity of 58%. Since Tpl7 is capable of binding to HuLYS and chkLYS, and based on the high level of sequence identity between these proteins, it is likely that TpI 7-like polypeptides, including Tp 17, are capable of binding to SLLPl . This interaction can facilitate the transmission of pathogens during sexual contact. As shown in Figure 38, a SLLP1 / Tp 17-like polypeptide complex represents a promising therapeutic target for the control of human and animal fertility. For example, as illustrated in Figure 38, the administration of an effective amount of a Tp-like polypeptide 17 can serve as a method of contraception since it interferes with the normal arrival of a sperm to a known receptor on the surface of a egg.
  • candidate compounds that decrease the binding affinity of a TP 17-like polypeptide to SLLPl are useful inhibitors of sexually transmitted diseases.
  • the procedures for the selection of such compounds have been described above.
  • the mutant SLLPl which contains alterations in the amino acids of ti 22 to E and Nl 39 to D, or especially double mimics that contain mutations in the conserved sequence of lysozyme type C that acquire bacteriolytic activity. It is likely that the mutant SLLPl containing these mutations could not bind to the TpI 7 type polypeptides and would probably have an increase in enzyme activity with respect to chicken lysozyme, for example.
  • the mutant SLLPl can be used to intensify antimicrobial activity, for example, bacteriolytic, the ability as a pharmaceutical composition or disinfectant.
  • compositions may include between about 2 to 100 mg / of the lysozyme variant (preferably about 5 mg), about 2 mg of papain and / or about 3 mg of bacitracin.
  • a preferred embodiment can be dissolved for oral intake.

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Abstract

La presente invención trata en general por composiciones y procedimientos terapéuticos y diagnósticos para incrementar o disminuir la unión de un polipéptido de lisozima a un polipéptido P17 de Treponema pallidum (Tp17) o a un polipéptido similar a Tp17. Más particularmente, la invención trata de composiciones y procedimientos para detectar, tratar o prevenir una infección patógena o alteraciones crónicas; y de ensayos de unión que usan polipéptidos similares a Tp17 y polipéptidos de lisozima.

Description

COMPOSICIONES Y PROCEDIMIENTOS PARA DETECTAR INFECCIÓN
PATÓGENA
Campo de la invención
La presente invención en general se caracteriza por composiciones diagnósticas y terapéuticas y procedimientos derivados de la caracterización de la unión de polipéptido de lisozima a un polipéptido Pl 7 de Treponema pallidum (TpI 7) o a polipéptidos similares al TpI 7. Además, la invención proporciona procedimientos y composiciones para incrementar o disminuir la unión entre una lisozima y un polipéptido TP- 17 o de tipo TP- 17. Antecedentes de la invención
La sífilis es una enfermedad causada por la infección por Treponema pallidum (en lo sucesivo también denominado "Tp"). El diagnóstico de sífilis generalmente se hace mediante un inmunoensayo de anticuerpos antiTp en la sangre usando, por ejemplo, la prueba de hemaglutinación de Treponema pallidum (TPHA), la prueba de absorción fluorescente de anticuerpos anti Treponema (FTA-
ABS) y/o la prueba de inmovilización de Treponema pallidum (TPI), así como el ensayo de inrnunoabsorción ligada a enzimas (ELISA) y sistemas Western Blot. Estas pruebas detectan anticuerpos que reaccionan con Tp o preparaciones antigénicas de Tp, tales como los antígenos de Tp TpI 5, TpI 7, y Tp47, por ejemplo. La prueba TPI implica una valoración microscópica de la el punto hasta el cual los anticuerpos activadores del complemento en el suero de un paciente inhiben la motilidad de Tp. Esta prueba no se suele usar como prueba diagnóstica debido a su elevado coste. La prueba TPHA implica la aglutinación de anticuerpos del suero del paciente con los eritrocitos a los que el antígeno Tp sometido a ultrasonidos está unido. La prueba FTA-ABS implica la microscopia de inmunofluorescencia indirecta para detectar la unión de anticuerpos específicos en el suero de pacientes a Tp fijado en un soporte sólido a través de un anticuerpo secundario marcado con fluorescencia. Aunque estos ensayos se usan de forma habitual, carecen de la sensibilidad requerida para detectar infecciones en un estadio temprano o de bajo nivel, cuando los niveles de anticuerpos frente a Tp en los fluidos del organismo son muy bajos.
Además, el uso habitual de antígenos de Tp individuales recombinantes o purificados en los inmunoensayos existentes para la sífilis no incluye la unión de algunos anticuerpos a complejos formados entre antígenos Tp y otros antígenos (es decir, las parejas de unión al antígeno de Tp) que normalmente están presentes en el fluido del organismo del sujeto. Por tanto, los inmunoensayos existentes no pueden detectar tales anticuerpos en ausencia de la pareja de unión al antígeno de Tp, que resulta en algunos casos en unos resultados del ensayo de baja sensibilidad o falsos negativos. En consecuencia existe una necesidad de ensayos de diagnóstico de patógenos con una sensibilidad mejorada, que detecten anticuerpos que se unen a complejos de parejas de unión/antígeno patógeno.
Sumario de la invención
La invención proporciona composiciones y procedimientos para la detección y el tratamiento de una infección patógena. La invención en general se refiere al descubrimiento de que el polipéptido de Treponema pallidum, TpI 7, se une a la lisozima, un péptido antimicrobiano producido por el huésped, e inhibe la actividad antimicrobiana de la lisozima. Se identificaron el sitio de unión en Tp 17 para la lisozima y el sitio de unión en la lisozima para Tp 17. Las comparaciones de las secuencias Tp requeridas para la unión y la inhibición de la lisozima con las proteínas relacionadas identificaron las secuencias consenso de unión a la lisozima que se conservan entre muchos patógenos diferentes, incluidos, por ejemplo, los virus del Herpes Simples, el virus de la hepatitis C y parásitos tal como amebas. Este descibrimiento sugiere que los patógenos comparten un mecanismo general para inhibir una respuesta inmune del huésped al producir un polipéptido que contiene un notivo de unión a la lisozima que se une a la lisozima e inhibe su activida antimicrobiana. En consecuencia, la invención también proporciona la identificación de polipéptidos lisozima imitantes que contienen mutaciones que interfieren en o desestabilizan tal unión. Tales polipéptidos lisozima imitantes, o fragmentos de los mismos, son útiles en la prevención o tratamiento de una infección patógena. Además, la invención proporciona ensayos diagnósticos mejorados que se basan en la detección de anticuerpos que se unen a un complejo polipéptido-lisozima, tal como un complejo TpI 7 - lisozima.
La identificación de un motivo de unión a la lisozima en Tp 17, así como la identificación de las secuencias consenso del motivo de unión a la lisozima compartidas por otras proteínas derivadas de patógenos, también proporciona composiciones útiles y procedimientos para la detección o inhibición de la lisozima, así como la detección de patógenos específicos y la inhibición de las infecciones correspondientes además de la sífilis. Además, los polipéptidos derivados de patógenos son útiles en el diagnóstico, profilaxis y tratamiento de una serie de enfermedades, incluidas las enfermedades relacionadas con la actividad aberrante de la lisozima. Estos polipéptidos también proporcionan un marcador de afinidad útil para usar en la purificación de proteínas usando la económica cromatografía de afinidad con la lisozima.
En un aspecto, la invención en general se caracteriza por un polipéptido sustancialmente puro que contiene un motivo de unión a la lisozima o un fragmento del mismo. En una forma de realización, la invención proporciona un polipéptido similar a Tp 17 sustancialmente puro, o un fragmento del mismo, que contiene al menos un motivo de unión a lisozima que contiene una secuencia de aminoácidos de Xaan Pro His Xaan (SEC ID NO: 1), donde Xaa es cualquier aminoácido y n es al menos uno y el fragmento es capaz de unirse a un polipéptido de lisozima y donde el motivo no es CKPHDC (SEC ID NO:24). En una forma de realización, el fragmento es de entre aproximadamente 4 aminoácidos a aproximadamente 200 aminoácidos (p. ej., 5, 10, 25, 50, 75, 100, 125, 150, 175) de un polipéptido similar a Tρl7. En otra forma de realización, el fragmento es menor a aproximadamente 30 ó 100 aminoácidos de un polipéptido similar a Tp 17. En otra forma de realización, el polipéptido o el fragmento es capaz de inhibir sustancialmente una actividad enzimática o una actividad antimicrobiana de la lisozima. En otra forma de realización, el motivo de unión a la lisozima contiene una secuencia aminoacídica consenso CSl: Cys Xaa! Xaa2 Xaa3 Pro His Xaa4 Xaa5 Xaas Xaa7 Xaa8 Xaa9 Xaa10 Xaaπ Xaa12 Xaa13 Cys (SEC ID NO:2), donde Xaals Xaa2, Xaa3, Xaa4, Xaas, Xaaβ, Xaa7, Xaa8, Xaa9, Xaa10, Xaalls Xaa^, o Xaa13 es cualquier aminoácido, está ausente o es un enlace peptídico. Como alternativa, el motivo de unión a la lisozima contiene una secuencia aminoacídica consenso: Cys Xaal Xaa2 Arg Xaa3 Xaa4 Xaa5 Cys (SEC IS NO 314), donde Xaal, Xaa2, Xaa3, Xaa4, o Xaa5 es cualquier aminoácido, está ausente o es un enlace peptídico. De acuerdo con esto, un motivo de unión a la lisozima de la presente invención normalmente contiene al menos 4 aminoácidos, 2 de los cuales se seleccionan del grupo constituido por Cys, Pro, His y Arg.
En aspectos relacionados, la invención se caracteriza por una molécula de ácido nucleico sustancialmente pura que codifica el polipéptido o el fragmento del aspecto anterior, un vector que contiene la molécula de ácido nucleico y una célula huésped que contiene tal vector. En otro aspecto , la invención se caracteriza por un polipéptido imitante de lisozima sustancialmente puro que contiene al menos una mutación aminoacídica que reduce la afinidad de unión entre el polipéptido muíante de lisozima y un polipéptido similar a Tρl7 (p. ej., reduce la unión en un 5%, 10%, 25%, 50%, 75%, 85%, o 95% en comparación con la unión de tipo salvaje), donde el polipéptido muíante de lisozima retiene al menos un 50%, 60%, 75%, 85%, o 95% de la actividad antimicrobiana de un polipéptido de lisozima de íipo salvaje. En una forma de realización, la mutación reduce la afinidad de unión entre el polipéptido muíante de lisozima y un polipéptido similar a Tp 17 en al menos un 5% en comparación con la afinidad de unión del polipéptido de lisozima de tipo salvaje. En otra forma de realización, la mutación afecta a la carga de superficie en el correspondiente polipéptido de tipo salvaje. En otras formas de realización, la mutación está en un residuo aminoacídico de carga positiva, en un residuo aminoacídico de carga negativa o en un residuo aminoacídico hidrófobo de un polipéptido de lisozima de tipo salvaje que entra en contacto con un polipéptido similar a Tp 17. En otras formas de realización, la mutación es de al menos, uno, dos, tres, cuatro o más posiciones de aminoácidos seleccionados del grupo constituido por Lysl9, Arg23, Lys51, GIy 55,
Asn57, Argl31, Asnl32 y Argl33 de lisozima humana o está presente en una posición correspondiente en una lisozima derivada de otra especie (p. ej., procariota, eucariota, mamífero).
En un aspecto relacionado, la invención se caracteriza por una molécula de ácido nucleico sustancialmente pura que codifica el polipéptido de la lisozima del aspecto previo, un vector que contiene la molécula de ácido nucleico y una célula huésped que contiene este vector.
En otro aspecto más, la invención se caracteriza por una composición que contiene un polipéptido con al menos un motivo de unión a la lisozima y un polipéptido de lisozima. Por ejemplo, una composición preferida contiene un polipéptido similar a Tp 17 sustancialmente puro y un polipéptido de lisozima sustancialmente puro, donde el polipéptido similar a Tp 17 no es el polipéptido Ivy. En una forma de realización, la lisozima es exógena. En una forma de realización, la composición además contiene partículas vehículo (p. ej., eritrocitos, partículas de agregados polipeptídicos, partículas poliméricas, partículas inorgánicas, partículas paramagnéticas y levaduras).
En otro aspecto más, la invención se caracteriza por un procedimiento para detectar una respuesta inmunitaria contra un patógeno en un sujeto, El procedimiento implica (a) poner en contacto una muestra biológica del sujeto con una lisozima exógena y un polipéptido que contiene un motivo de unión a la lisozima (es decir, un polipéptido similar a TpI 7); y (b) detectar la unión del anticuerpo al polipéptido con un motivo de unión a la lisozima o a un complejo polipéptido-lisozima.
En otro aspecto más, la invención se caracteriza por un procedimiento para aumentar la sensibilidad de un ensayo diagnóstico para detectar la respuesta inmunitaria contra un patógeno. El procedimiento implica añadir un polipéptido de lisozima al ensayo diagnóstico (p. ej., un ensayo de aglutinación), donde la adición del polipéptido de lisozima incrementa la sensibilidad del ensayo en al menos un 5%.
En varias formas de realización de los aspectos anteriores, el polipéptido de lisozima se pone en contacto con el polipéptido similar a Tp 17 antes, durante o después del contacto de la muestra biológica. En otras formas de realización, el ensayo es un inmunoensayo (p. ej., ensayo de inmunoabsorción ligado a enzimas
(ELISA), Western blot, ensayo de inmunoaglutinación, radioinmunoensayo, ensayos turbidimétricos, ensayo nefelométrico, ensayo inmunocromatográfico, ensayo quimioluminiscente y ensayo de fluorescencia. En otras formas de realización, la muestra biológica se selecciona del grupo constituido por sangre, suero, plasma, lagrimas, saliva, esputo, fluido nasal, diluido ótico, fluido genital, fluido mamario, leche, calostro, fluido de la placenta, perspiración, fluido sinovial, fluido ascítico, fluido gastrointestinal, exudado, transudado, fluido pleural, fluido pericárdico, fluido amniótico, fluido cefalorraquídeo, bilis, fluido gástrico, semen, materia fecal, fluido de las vías respiratorias superiores, fluido peritoneal, fluido recogido desde un punto de inflamación, fluido recogido desde un punto de acumulación, lavado bronquial, orina, materia de biopsia, humor acuoso, materia del estómago anterior en los rumiantes, muestras de células nucleadas, cualquier fluido asociado con una superficie mucosa, pelo y piel. En una forma de realización preferida, el procedimiento se usa para diagnosticar sífilis. En otro aspecto, la invención se caracteriza por una composición para detectar un patógeno en una muestra, en la que la composición contiene un polipéptido de lisozima o un fragmento del mismo que contiene la secuencia de aminoácidos Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Trp Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa GIu Ser Xaa Xaa Xaa Thr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
Ser Xaa Asp Tyr GIy Xaa Xaa GIn lie Asn Xaa Xaa Xaa Trp Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Ala Lys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Trp Xaa Xaa Trp Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa (SEC ID NO:28), donde Xaa es un aminoácido o está ausente, donde el fragmento es capaz de unirse a un polipéptido similar a TpI 7.
En otro aspecto más, la invención se caracteriza por un procedimiento para detectar o identificar un patógeno o un polipéptido de un patógeno. , El procedimiento implica (a) poner en contacto una muestra con un fragmento polipeptídico de lisozima que contiene la secuencia de aminoácidos:
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Trp Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa GIu Ser Xaa Xaa Xaa Thr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Ser Xaa Asp Tyr GIy Xaa Xaa GIn lie Asn Xaa Xaa Xaa Trp Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Ala Lys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
Trp Xaa Xaa Trp Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa (SEC ID NO:28), donde Xaa es cualquier aminoácido o está ausente, en condiciones que permitan la unión; y (2) detectar la unión del polipéptido de lisozima a un polipéptido en la muestra, donde la unión indica la presencia de un patógeno o un polipéptido de patógeno en la muestra. En otra forma de realización, la invención además implica la determinación de la secuencia del polipéptido unido al polipéptido de la lisozima. En algunas formas de realización, el polipéptido de lisozima contiene una secuencia derivada de un polipéptido de lisozima humana. En otro aspecto^ la invención se caracteriza por un procedimiento para detectar lisozima en una muestra, el procedimiento implica (a) poner en contacto la muestra con polipéptido similar a Tp 17 unido a un soporte sólido; y (b) detectar la unión del polipéptido a un polipéptido en la muestra, donde la unión indica la presencia de lisozima en la muestra (p. ej., un fluido biológico, un cultivo celular, una muestra corporal, una muestra de agua, una muestra de fluido, un alimento, una medicina o un cultivo de patógenos). En una forma de realización, el procedimiento además implica la obtención de la lisozima de la muestra mediante la unión.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por un equipo para detectar una respuesta inmunitaria a un patógeno que contiene un polipéptido que posee un motivo de unión a la lisozima y un polipéptido de lisozima.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por un equipo para detectar un patógeno en una muestra que contiene un polipéptido de lisozima marcado que contiene la SEC ID N° 28.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por un polipéptido de fusión que contiene al menos un motivo de unión a la lisozima (p. ej., un fragmento de un motivo de unión al polipéptido de lisozima similar a Tp 17) condensado con una segunda secuencia de aminoácidos con la que no está unida de forma natural. En una forma de realización, el polipéptido de fusión se fija a un soporte sólido. En otra forma de realización el motivo está en el extremo del polipéptido de fusión. En otra forma de realización, el polipéptido de fusión es capaz de reducir la actividad antimicrobiana de una lisozima. En otro aspecto, la invención se caracteriza por un procedimiento para aislar un polipéptido de fusión, en el que el procedimiento contiene las etapas de : (a) proporcionar el polipéptido de fusión del aspecto anterior; (b) poner en contacto el polipéptido de fusión con un polipéptido de lisozima, en el que la lisozima se fija a un soporte sólido, en condiciones que permitan la unión del polipéptido de fusión al polipéptido de lisozima; y (c) fluir el polipéptido de fusión del polipéptido de lisozima.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por un procedimiento para identificar un compuesto candidato que incrementa la actividad antimicrobiana de la lisozima. El procedimiento implica detectar una reducción en la unión entre un polipéptido de lisozima y un polipéptido que contenga un motivo de unión a lisozima en presencia del compuesto candidato. En una forma de realización, el compuesto candidato reduce la afinidad de unión de un motivo de unión a lisozima a un ácido glutámico catalítico que corresponde a Glu53 de la lisozima humana. En otro aspecto, la invención se caracteriza por un procedimiento para identificar un polipéptido muíante de lisozima que tenga una actividad antimicrobiana aumentada. El procedimiento implica (a) proporcionar un polipéptido de lisozima que contiene al menos una mutación en la secuencia de aminoácidos del polipéptido respecto a la secuencia de la lisozima de tipo salvaje; y (b) detectar una reducción en la afinidad de unión entre el polipéptido imitante de lisozima y un polipéptido similar a Tp 17.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por un procedimiento para tratar o prevenir una infección patógena en un sujeto que lo necesite. El procedimiento implica administrar a un sujeto una cantidad eficaz de un polipéptido muíante de lisozima que contiene una muíación aminoacídica, donde la muíación reduce la afinidad de unión entre el polipéptido de lisozima y un polipéptido similar a Tp 17.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por un procedimiento para íraíar o prevenir una infección patógena en un sujeto que lo necesiíe. El procedimiento implica adminisírar a un sujeto una cantidad eficaz de un polipéptido similar a Tpl7 muíaníe que contiene una muíación aminoacídica, donde la adminisíración del polipéptido similar a Tp 17 muíante reduce la unión entre un patógeno que expresa el polipéptido similar a TpI 7 y un polipéptido de lisozima endógena.
En otro aspecto, la invención se caracíeriza por una vacuna que incremenía una respuesta inmuniíaria en un sujeto que lo necesiíe, en la que la composición contiene al menos una de las glicoproíeínas gJ y GD del virus del Herpes Simplex-2.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por una vacuna que incrementa una respuesta inmunitaria en un sujeto que lo necesite, en la que la composición contiene un polipéptido de unión a lisozima.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por una vacuna que incrementa una respuesta inmunitaria en un sujeto que lo necesite, en la que la composición contiene un polipéptido de lisozima y un polipéptido que contiene un motivo de unión a lisozima.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por un procedimiento para diagnosticar una infección por el virus del Herpes Simplex de tipo 2 en un sujeto. El procedimiento implica detectar la presencia de un motivo de unión a la lisozima proteína gJ en una muestra del sujeto. En una forma de realización, el motivo de unión a la lisozima se detecta en un ensayo de unión a lisozima. En otra forma de realización, el motivo de unión a la lisozima se detecta en un inmunoensayo.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por un procedimiento para reducir la actividad enzimática de la lisozima en una muestra. El procedimiento implica poner en contacto una muestra con un polipéptido similar a Tp 17 en las condiciones que permitan la unión del polipéptido a la lisozima, donde el polipéptido similar a
Tp 17 no contiene la proteína Ivy.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por un procedimiento para reducir la actividad enzimática de la lisozima en un sujeto. El procedimiento implica administrar al sujeto una cantidad eficaz del polipéptido similar a Tp 17 o un fragmento del mismo.
En varias formas de realización de los aspectos anteriores, el polipéptido es la glicoproteína J del virus del Herpes Simplex tipo 2. En otras formas de realización de los aspectos anteriores, el procedimiento se usa para tratar o prevenir una enfermedad seleccionada del grupo constituido por cáncer, enfermedad de Alzheimer, amiloidosis renal, leucemia, enfermedad de Crohn y alergias.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por un fragmento de un polipéptido similar a Tp 17 sustancialmente puro que contiene al menos un motivo de unión a lisozima que contiene una secuencia de aminoácidos Cys Xaat Xaa2 Xaa3 His Xazn Xaa5 Xaa6 Xaa7 Xaa8 Xaa9 Xaa10 Xaau Xaa12 Xaa13 Cys (SEC ID NO:
175), donde Xaa es cualquier aminoácido o está ausente y el fragmento es capaz de unirse a un polipéptido de lisozima. En una forma de realización, el fragmento deriva de Porphyromonas gingivalis o Helicobacter pylori.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por un fragmento de un polipéptido similar a APP sustancialmente puro que contiene al menos un motivo de unión a lisozima que contiene una secuencia de aminoácidos Cys Xaai Xaa2 Xaa3 Xaa4 Xaa5 Xaae Xaa7 Xaa8 Xaa9 Xaa10 Xaaπ Xaa12 Xaa13 Cys (SEC ID NO: 177), donde Xaa1; Xaa2 , Xaa3 ; Xaa* y Xaa5 son cualquier aminoácido o está ausente, Xaaβ es aminoácido K, R o H, Xaa7 es A o G, Xaa8 es K, R, o H, Xaa9 y Xaa10 son aminoácidos o están ausentes, Xaaπ es aminoácido K o R, Xaa12 es cualquier aminoácido o está ausente, y Xaai3 es aminoácido E, D, Q o N. En otra forma de realización, el polipéptido similar a APP es la proteína precursora β-amiloide. En otra forma de realización, el fragmento es sustancialmente un fragmento de una la proteína precursora β-amiloide humana.
En aspectos relacionados la invención se caracteriza por ácidos nucleicos que codifican los fragmentos del aspecto anterior, vectores que contienen los ácidos nucleicos y células huésped que contienen tales vectores.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por una composición que contiene un polipéptido similar a APP y un polipéptido de lisozima sustancialmente puro. En otro aspecto, la invención se caracteriza por un procedimiento de diagnóstico de la enfermedad de Alzheimer en un sujeto. El procedimiento implica detectar la presencia en una muestra biológica (por ejemplo, una muestra se duermo muestra de fluido cefalorraquídeo o una muestra de tejido) del sujeto de un complejo entre un polipéptido similar a la APP y un polipéptido de lisozima. En una forma de realización, el procedimiento implica un inmunoensayo.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por un procedimiento de diagnóstico de una enfermedad, por ejemplo la enfermedad de Alzheimer mediante la detección de la presencia de un anticuerpo que se une a un complejo entre un polipéptido similar a la APP y un polipéptido de lisozima. En otro aspecto, la invención se caracteriza por un procedimiento para identificar un compuesto candidato que modula la unión entre el polipéptido similar a la APP y un polipéptido de lisozima. El procedimiento implica la detección de una reducción de la unión entre el polipéptido similar al Tp 17 y el polipéptido de lisozima en presencia del compuesto candidato. En otro aspecto, la invención se caracteriza por un polipéptido similar a
Tp 17 que contiene al menos un motivo de unión a lisozima que tiene una secuencia de aminoácidos de Xaan Pro His Xaan (SEC ID NO: 1), donde Xaa es cualquier aminoácido y n es al menos uno y el fragmento es capaz de unirse a SLLPl. En una forma de realización, el fragmento es de entre aproximadamente 4 aminoácidos a aproximadamente 200 aminoácidos de un polipéptido similar a Tp 17. En una forma de realización, el motivo contiene la secuencia aminoacídica consenso CSl : Cys XaR1 Xaa2 Xaa3 Pro His XaB4 Xaa5 Xaa6 Xaa7 Xaa8 Xaa9 Xaa10 Xaaπ Xaa12 Xaa13 Cys (SEC ID NO:2), donde Xaal5 Xaa2, Xaa3, XsLa4, Xaa5, Xaa6, Xaa7, Xaa8, Xaa9, Xaa10, Xaaπ, Xaa12, o Xaa13 es cualquier aminoácido, está ausente o es un enlace peptídico. En aspectos relacionados la invención se caracteriza por una molécula de ácido nucleico que codifica el fragmento del aspecto anterior, un vector que contiene la molécula de ácido nucleico y una célula huésped que contiene tal vector.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por un polipéptido muíante SLLPl sustancialmente puro que contiene al menos una mutación de aminoácido que reduce la unión entre el polipéptido muíante de SLLPl y un polipéptido similar a Tp-
17 respecto a un polipéptido SLLPl de tipo salvaje.
En otro aspecto, la invención se caracíeriza por un polipépíido muíaníe SLLPl suslancialmeníe puro que contiene al menos una muíación de aminoácido que aumente la actividad enzimática del polipépíido muíaníe de SLLPl respecto a un polipépíido SLLPl de tipo salvaje. En una forma de realización, la actividad enzimática incluye una actividad aníimicrobiana.
En otro aspecto, la invención se caracíeriza por un procedimiento para modular la fertilidad en un sujeto que lo necesiía. El procedimiento implica administrar al sujeto una cantidad eficaz de un polipépíido muíaníe de SLLPl que contiene al menos una muíación aminoacídica, donde la administración del polipépíido muíaníe de SLLPl alíera la unión eníre un polipépíido similar a TpI 7 y un polipéptido SLLPl endógeno, de forma que se modula la fertilidad del sujeto.
En otro aspecto, la invención se caracíeriza por un procedimiento para modular la fertilidad en un sujeto que lo necesita. El procedimiento implica administrar al sujeto una cantidad eficaz de un polipépíido similar a TP 17, donde la administración del polipépíido similar a Tp 17 reduce la unión entre el polipéptido SLLPl endógeno y un receptor conocido en la superficie de un ovocito, de forma que se modula la fertilidad del sujeto.
En otro aspecto más, la invención se caracíeriza por un procedimiento para identificar un compuesto candidato que modula la fertilidad humana. El procedimiento implica la deíección de una reducción en la unión entre un polipéptido SLLPl y un polipépíido que contiene un motivo de unión a lisozima en presencia del compuesto candidato.
En oíro aspecto, la invención se caracíeriza por un procedimiento para traíar o prevenir una infección patógena de transmisión sexual en un sujeto. El procedimiento implica administrar a un sujeto una cantidad eficaz de un polipépíido muíante de SLLPl que contiene al menos una mutación aminoacídica, donde la mutación reduce la unión entre un polipéptido de SLLPl endógeno y un polipéptido similar a Tp 17 expresado en un patógeno.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por un procedimiento para tratar o prevenir una infección patógena en un sujeto, por ejemplo una infección patógena de transmisión sexual. El procedimiento implica administrar al sujeto una cantidad eficaz de un polipéptido similar a Tp 17, donde la administración del polipéptido similar a Tp 17 reduce la unión entre un polipéptido similar a Tp 17 expresado en un patógeno y un polipéptido SLLPl endógeno. En otro aspecto, la invención se caracteriza por un procedimiento para identificar un compuesto candidato útil para el tratamiento o la prevención de una infección patógena, por ejemplo una infección patógena de transmisión sexual. El procedimiento implica (a) poner en contacto un polipéptido SLLPl y un polipéptido similar a Tp 17 con un compuesto candidato; y (b) detectar una reducción en la afinidad de unión entre el polipéptido de lisozima y el polipéptido similar a Tp 17 expresado en el patógeno en presencia del compuesto candidato
En otro aspecto, la invención se caracteriza por un procedimiento para reducir la unión de SLLPl a un polipéptido similar a Tp 17 expresado en el patógeno de y transmisión sexual en un sujeto. El procedimiento implica administrar al sujeto una cantidad eficaz de un polipéptido similar a TpI 7 o de un polipéptido de lisozima, o un fragmento de los mismos.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por una composición anticonceptiva que contiene un polipéptido similar a Tp 17 que interfiere en la unión de SLLPl durante un proceso de fertilización. En otro aspecto, la invención se caracteriza por una composición farmacéutica para prevenir o tratar una infección patógena de transmisión sexual, en la que la composición contiene un polipéptido similar a Tp 17 que interfiere en la unión de SLLPl durante un proceso de infección.
En otro aspecto, la invención se caracteriza por una composición farmacéutica para usar como antimicrobiano que contiene al menos una cantidad eficaz de lisozima del bacteriófago T4 o una lisozima que es resistente a la inhibición por un polipéptido similar a Tp- 17. En una forma de realización preferida, la composición farmacéutica además contiene papaína o bacitracina. En una forma de realización, la composición farmacéutica del aspecto anterior, donde la composición contiene una lisozima del bacteriófago T4, papaína y bacitracina. En una forma de realización, la cantidad de lisozima T4 o similar a T4 presente en una dosis unitaria está entre 2 mg y 100 mg (p. ej., 5, 10, 20, 30, 40, 50, 60, 70, 80, o 90). Preferentemente, la cantidad de lisozima T4 o similar a T4 presente en una dosis unitaria es de 5 mg. En otra forma de realización, la cantidad de papaína presente en una dosis unitaria es de 2 mg. En una forma de realización, la cantidad de bacitracina presente es de 3 mg por dosis unitaria. En otra forma de realización, la composición es una formulación oral (p. ej., un comprimido oral).
En otro aspecto, la invención se caracteriza por un procedimiento para tratar una infección patógena en un sujeto, que implica administrar a un sujeto diagnosticado de una infección patógena una composición farmacéutica que contiene la lisozima del bacteriófago T4 o una lisozima que es resistente a la inhibición por un polipéptido similar a Tp- 17. En una forma de realización preferida, la composición farmacéutrica comprende además papaína o bacitracina. En una forma de realización, la composición farmacéutica contiene la lisozima del bacteriófago T4 y papaína y bacitracina. En otra forma de realización, la composición farmacéutica está en forma de formulación oral.
En varias formas de realización de cualquiera de los aspectos anteriores, el polipéptido similar a Tpl7 deriva de un patógeno, por ejemplo, una bacteria, un virus, un parásito, un plásmido, un prión, un micoplasma y un agente micótico.
En otras formas de realización de cualquiera de los aspectos anteriores, el patógeno es, por ejemplo, Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas putida, Yersinia pestis, Shigella flexnerii, Treponema denticola, Vibrio cholerae, Vibrio vulnificus, Vibrio parahemolyticus, Chlamydia pneumoniae, Chlamydia trachomatis, Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis, Streptococcus pneumoniae, Streptococcus agalactiae, Streptococcus mutans, Streptococcus pyogenes, Enterococcus faecalis, Bordetella bronchiseptica, Bordetella pertussis,
Bordetella parapertussis, Helicobacter hepaticus, Helicobacter pylori, Salmonella typhimurium, Ralstonia solanacearum, Xanthomonas campestris, Pseudomonas syringae, Pasteurella multocida, Brucella melitensis, Brucella suis, Porphyromonas gingivalis, coronavirus causante del síndrome repsoratorio agudo grave (SARS) , virus sincitial respiratorio, el virus de la Hepatitis A, el virus de la Hepatitis B, el virus de la Hepatitis C, el virus de la rubéola, Toxoplasma gondii, Trypanozoma spp., Gardnerella vaginalis, Mycobacterium avium, Mycobacterium leprae, Mycobacterium paratuberculosis, Mycobacterium tuberculosis, Campylobacter jejuni, Helicobacter spp., Agrobacterium tumefaciens, Moraxella catarrhalis, Neisseria meningitidis, Neisseria gonorrhoeae, Haemophilus influenzae,
Haemophilus ducreyii, Propionibacterium acnés, Listeria monocytogenes,el virus del Herpes Simples tipo 2, Influenza viras, virus TACARIBE, virus de la lengua azul, Bacteroides thetaiotaomicron, Coxiella burnetti, Legionella pneumophüa, Salmonella typhi, citomegalo viras de Chimpancé, citomegalo viras humano, papilloma viras humano, el viras del Dengue, virus de la enfermedad pie boca, viras del oeste del NiIo, viras de la gripe aviar, viras de la inmunodeficiencia humana,
LdMNPV, Plasmodium falciparum, Plasmodium ovale, Emeiria tenella, Eimeria acervulina, Giardia lamblia, Plasmodium yoelii y patógenos transportados por Anopheles gambiae.
En otras formas de realización de cualquiera de los aspectos anteriores, el patógeno es, por ejemplo, Treponema denticola, Bacteroides thetaiotaomicron,
Coxiella burnetti, Haemophilus influenzae, Neisseria gonorrhoeae, Legionella pneumophüa, Staphylococcus, aureus, y Salmonella typhi, Neisseria meningitidis serogrupo A y serogrupo B, Vibrio cholerae, Vibrio vulnifícus, Haemophilus ducreyi, el viras de la Hepatitis C y Bordetella pertussis. Preferiblemente el patógeno es Treponema pallidum.
En otras formas de realización de cualquiera de los aspectos anteriores, el motivo contiene la secuencia consenso aminoacídica CS2: Xaal Xaa2 Pro His Xaa3 Xaa4, (SEC ID NO: 3), donde Xaal es Cys, Lys, Val, Ala, o está ausente; Xaa2 es Ala, Cys, o Lys; Xaa3 es Ala, Asp, o GIu, y Xaa^ es Cys, GIy, o Lys. En otras formas de realización de cualquiera de los aspectos anteriores, el polipéptido similar a Tp 17 contiene la secuencia Cys Xaaj. Xaa2 Xaa3 Pro His Xaa4 Xaa5 Xaa^ Xaa7 Xaa8 Xaag Xaa10 Xaaπ Xaa12 Xaa13 Cys (SEC ID NO:2), donde Xaal5 Xaa2, Xaa3, Xaa4, Xaa5, Xaaβ, Xaa7, Xaa8, Xaag, Xaa10, Xaall5 Xaa12, o Xaa13 es cualquier aminoácido o está ausente. En otras formas de realización más de cualquiera de los aspectos anteriores, el motivo contiene una secuencia consenso aminoacídica CS3: Xaa Cys
Pro His Ala GIy (SEC ID NO:25), donde Xaa es Cys or Val. En otras formas de realización más de cualquiera de los aspectos anteriores, el motivo se selecciona del grupo constituido por CCPHAG (SEC ID NO:4), VCPHAG (SEC ID NO:5), VAPHDC (SEC ID NO:6), KAPHDK (SEC ID NO:7), VKPHDG (SEC ID NO:8); KKPHAK (SEC ID NO:9), KAPHEK (SEC ID NO: 10), KKPHAC (SEC ID NO: 11),
VAPHAG (SEC ID NO: 12), VKPHAK (SEC ID NO: 13), VKPHAC (SEC ID NO:14), VAPHEG (SEC ID NO:15), VKPHEK (SEC ID NO:16), VCPHEK (SEC ID NO: 17), CKPHAG (SEC ID NO: 18), ACPHAG (SEC ID NO: 19) o KCPHDC (SEC ID NO:20), VKPHDK (SEC ID NO:21), KKPHAG (SEC ID NO:22), y CAPHEK (SEC ID NO:23).
En formas de realización alternativas de cualquiera de los aspectos anteriores, el motivo de unión a la lisozima contiene una secuencia de aminoácidos de Cys Xaal Xaa2 Arg Xaa3 Xaa4 Xaa5 Cys (SEC ID NO: 314), donde Xaal es Pro, Ala, Val, o Ser; Xaa2 es Asp, GIu, o His; Xaa3 es Leu o Met; Xaa4 es Ser, Ala, o GIy; y Xaa5 es Ser, Val, Ala, Lys, o Cys. En otras formas de realización, el motivo de unión a la lisozima contienen una secuencia de aminoácidos de Cys Pro Xaal Arg Xaa2 Xaa3
Xaa4 Cys (SEC ID NO: 315), donde Xaal es Asp, GIu, o His; Xaa2 es Leu o Met; Xaa3 es Ser o Ala; Xaa4 es Ser, Ala, o Val. En otras formas de realización más, el motivo de unión a la lisozima contiene una secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo constituido por CPHRLSVC (SEC ID NO: 316), CPHRLSSC (SEC ID NO: 317), CPERLASC (SEC ID NO: 318), CPERMASC (SEC ID N0:3 19),
CPERLSSC (SEC ID NO:320), y CPQRLSSC (SEC ID NO:321). Un ejemplo de motivo de unión a la lisozima contiene una secuencia de aminoácidos de CPHRLSVC (SEC ID NO: 316).
En varias formas de realización de cualquiera de los aspectos anteriores, el polipéptido de lisozima contiene la siguiente secuencia de aminoácidos:
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Trp Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa GIu Ser Xaa Xaa Xaa Thr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Ser Xaa Asp Tyr GIy Xaa Xaa GIn He Asn Xaa Xaa Xaa Trp Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Cys Xaa
Xaa Leu Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Ala Lys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Trp Xaa Xaa Trp Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa (SEC ID NO:28), donde Xaa es cualquier aminoácido o está ausente. En otras formas de realización de cualquiera de los aspectos anteriores, el polipéptido que contiene un motivo de unión a la lisozima (es decir, un polipéptido similar a Tp 17) o el polipéptido de lisozima, o un fragmento del mismo, se aisla de una muestra biológica, es un polipéptido recombinante o un polipéptido sintetizado químicamente, se fusiona con un marcador de afinidad, se fija a un soporte sólido (p. ej., una resina, un gel, una perla, un pocilio, una columna, una placa, una membrana, una matriz, una placa, un dispositivo para filtros), deriva de un polipéptido humano, está marcado para su detección (p. ej., marcado con un fluoróforo, una proteína fluorescente, un cromóforo, un resto radiactivo, un resto luminífero y un marcador enzimáticamente activo). En otras formas de realización más, el polipéptido de lisozima y el polipéptido similar a Tp 17 están presentes en una proporción molecular de entre aproximadamente 0,001 a aproximadamente 1.000.00. Las composiciones y procedimientos de la invención son útiles para identificar y/o cuantificar anticuerpos frente a patógenos tales como, por ejemplo, Treponema pallidum, Escherichia coli (por ejemplo, E. coli O157:H7 y E. coli Kl), Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas putida, Yersinia pestis, Shigella flexnerii,
Treponema denticola, Vibrio cholerae, Vibrio vulnificus, Vibrio parahemolyticus, Chlamydia pneumoniae, Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis, Streptococcus pneumoniae, Streptococcus agalactiae, Streptococcus mutans, Streptococcus pyogenes, Enterococcus faecalis, Bordetella bronchiseptica, Bordetella pertussis, Bordetella parapertussis, Helicobacter hepaticus, Salmonella typhimurium,
Ralstonia solanacearum, Xanthomonas campestris, Pseudomonas syringae, Pasteurella multocida, Brucella melitensis, Brucella suis, Mycobacterium tuberculosis, Campylobacter jejuni, Helicobacter spp., Agrobacterium tumefaciens, Moraxella catarrhalis, Neisseria meningitidis, Neisseria gonorrhoeae, Mycoplasma pneumoniae, Legionella spp., Haemophilus influenzae, Haemophilus ducreyii,
Propionobacterium acnés, Listeria monocytogenes, virus de Heφes Simplex tipo 2, virus de Influenza, virus TACARIBE , virus de la hepatitis A, virus de la hepatitis B, virus de la hepatitis C, virus de la lengua azul, citomegalovirus de Chimpancé, citomegalovirus humano, virus del papiloma humano, virus del Dengue, enfermedad de pie y boca, virus de inmunodeficiencia humana, virus de la peste bovina, virus de la rabia, LdMNPV, Entamoeba histolytica, Plasmodium falciparum, Plasmodium ovale, Emeiria tenella, Eimeria acervulina, Giardia lamblia, Plasmodium yoelii, y patógenos portados por Anopheles gambiae. En otra forma de realización, se detectan patógenos tales como Mycobacterium paratuberculosis, virus de Ébola, virus de la fiebre de Rift Valley, síndrome de dificultad respiratoria aguda grave
(SDRA), virus de la viruela, Bacillus anthracis, Leishmania Spp., micoplasma, rickettsia, hongos y levaduras.
En otra forma de realización, la invención proporciona composiciones para detectar anticuerpos antipatógeno en una muestra, que comprenden (a) un polipéptido que comprende la secuencia de aminoácidos de TAPHRGLATL YNGDC
(SEC ID N°:26) o CSPEVGQMDC (SEC ID N°:27) y (b) un polipéptido de lisozima de longitud completa o un fragmento del mismo.
En una forma de realización, la lisozima (A) y los polipéptidos similares a Tp 17 (B) están presentes en una proporción molar (A/B) de entre alrededor de 0,001 y alrededor de 1.000.000. En una forma de realización preferida, la lisozima
(A) y los polipéptidos similares a TpI 7 (B) están presentes en una proporción molar (A/B) de entre alrededor de 0,01 y alrededor de 1.000.000. En otra forma de realización, la lisozima (A) y los polipéptidos similares a Tp 17 (B) están presentes en una proporción molar (A/B) de entre alrededor de 0,1 y alrededor de 1.000.000. Más preferiblemente, la lisozima (A) y los polipéptidos similares a Tp 17 (B) están presentes en una proporción molar (A/B) de entre alrededor de 1 y alrededor de
1000, entre alrededor de 10 y alrededor de 1000, o entre alrededor de 100 y alrededor de 1000.
Los procedimientos de la invención se usan para diagnosticar enfermedades tales como, por ejemplo, sífilis, infección por VIH, herpes genital, peste bubónica, rabia, disentería amebiana, shigellosis, caries dental , infección por E. coli, fibrosis quística, tuberculosis, listeriosis, cólera, infecciones por estreptococos del grupo A o del grupo B, infecciones por estafilococos, úlcera gástrica, tos ferina, infecciones por enterococos, clamidiosis, brucellosis, tos ferina, otitis media, otitis interna, meningitis, micoplasmosis, micosis, gripe, paludismo, infecciones por los virus de la
Hepatitis B y Hepatitis C. En otra forma de realización, los procedimientos de la invención se usan para diagnosticar salmonelosis, gonorrea, vibriosis, colibacilosis, neumonía, tifus, fiebre tifoidea, amebiasis, bronquitis, síndrome de dificultad respiratoria aguda grave (SDRA), enfermedad de los legionarios y enfermedades de depósito citoplasmático, tales como enfermedades de depósito de lisosomas.
La invención también proporciona procedimientos para detectar lisozima en una muestra poniendo en contacto la muestra con un polipéptido similar a Tp 17 y detectando la unión del polipéptido similar a Tp 17 a la lisozima. La actividad antimicrobiana de la lisozima se reduce poniendo en contacto una muestra con un polipéptido similar a Tp 17 en condiciones que permitan la unión del polipéptido similar a TpI 7 a la lisozima. La muestra puede ser una preparación de patógenos, tal como, por ejemplo, una bacteria, un virus, un parásito, un plásmido, un micoplasma, un agente micótico (por ejemplo, hongos y levaduras) y una preparación de priones. La muestra también puede ser un material que necesita estar libre de con aminación de lisozima, tal como una muestra biológica (por ejemplo, aspirado de garganta, hemocultivo, líquido cefalorraquídeo), un vaso de cultivo, un cultivo celular, una cubeta, aparatos de diagnóstico clínico o material del ensayo, instrumentación médica, líquidos, agua, alimentos, medicinas, implantes o injertos.
Los procedimientos de la invención también pueden usarse para reducir la actividad microbiana en un sujeto (p. ej., un animal, tal como un ser humano) mediante la administración al sujeto de una cantidad eficaz de un polipéptido similar a Tpl 7. Los procedimientos se usan para tratar o prevenir enfermedades tal como cáncer, enfermedad infecciosa, enfermedad inflamatoria, enfermedad de Alzheimer, amiloidosis renal, leucemia, enfermedad de Crohn y alergia, que se asocian con un aumento de la actividad de la lisozima por encima de los niveles normales. En otro aspecto, la invención proporciona composiciones para detectar un patógeno en una muestra, que comprenden un ligando o una pareja de unión capaz de unirse a un polipéptido con un motivo de unión a la lisozima (es decir, un polipéptido similar a Tp 1)7. En una forma de realización, el ligando comprende un polipéptido lisozima, un anticuerpo monoclonal, un anticuerpo policlonal o un fragmento Fab, o aptámeros de ADN o ARN, por ejemplo. En una forma de realización, el ligando comprende una molécula de detección.
En otro aspecto, la invención proporciona procedimientos para detectar un patógeno en una muestra (1) poniendo en contacto una muestra con un ligando (por ejemplo un polipéptido lisozima) capaz de unirse a un polipéptido con un motivo de unión a la lisozima (es decir, un polipéptido similar a Tp 17) en las condiciones que permitan la unión del ligando a un patógeno o a un polipéptido patógeno; y (2) detectando la unión del ligando al patógeno o al polipéptido patógeno, si existe, en la que tal unión es indicativa de la presencia del patógeno o del polipéptido patógeno en la muestra. En una forma de realización, el ligando se marca con una molécula de detección, tal como un fluoróforo, una proteína fluorescente, un cromóforo, una fracción radioactiva, una fracción luminífera o un indicador enzimáticamente activo.
En otro aspecto, la invención proporciona un equipo que comprende un polipéptido con un motivo de unión a la lisozima (es decir, un polipéptido similar a
Tp 17) y un ligando capaz de unirse al polipéptido con un motivo de unión a la lisozima. En una forma de realización, el ligando se fija a un soporte sólido tal como resina, perlas, pocilios, cápsula, columna, gel, membrana o un dispositivo de filtros. En una forma de realización preferida, el ligando es un polipéptido de lisozima.
En otro aspecto, la invención proporciona proteínas recombinantes de fusión que comprenden un polipéptido con un motivo de unión a la lisozima (es decir, un polipéptido similar a Tp 17) unido a un polipéptido de interés. En una forma de realización, el polipéptido similar a Tp 17 está en el extremo N o C del polipéptido de interés. En otra forma de realización, el polipéptido similar a TpI 7 está entre el extremo N o C del polipéptido de interés. En una forma de realización, la proteína recombinante es capaz de reducir la actividad de la lisozima. Además, la invención proporciona procedimientos para preparar las proteínas recombinantes de fusión mediante la unión del polipéptido similar a Tp 17 al polipéptido de interés. Todavía más, la invención proporciona procedimientos para usar las proteínas de fusión recombinantes para purificar con afinidad un polipéptido de interés (1) poniendo en contacto una muestra que comprende un polipéptido recombinante de fusión con lisozima en condiciones que permitan la unión del polipéptido a la lisozima; (2) lavando la muestra; y (4) eluyendo el polipéptido recombinante de fusión de la lisozima. En una forma de realización, el procedimiento comprende aislar el polipéptido de interés del polipéptido similar a Tp 17. En una forma de realización, la lisozima está unida a un soporte sólido.
En otro aspecto, la invención proporciona procedimientos para tratar o prevem'r una enfermedad asociada con una infección patógena mediante la administración a un sujeto que lo necesite de una cantidad eficaz de una lisozima que es resistente a la inhibición por un polipéptido similar a Tpl7. La lisozima que es resistente a la inhibición por un polipéptido similar a Tp 17 se puede seleccionar de entre lisozimas naturales y lisozimas modificadas. En algunas formas de realización, el procedimiento para tratar o prevenir una infección patógena en un sujeto comprendeadministrar una cantidad eficaz de una lisozima que comprende una secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo constituido por Tyr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa GIy Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Ser Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa GIy (SEC ID NO:322); y Asp Ala Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Asp Xaa Xaa
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa GIy Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Thr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Asn (SEC ID NO:323), donde Xaa es cualquier aminoácido o está ausente. En otras formas de realización, el procedimiento para tratar o prevenir una infección patógena en un sujeto comprende administrar una cantidad eficaz de una lisozima que comprende una secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo constituido por Tyr Tyr Leu Thr Xaa Phe Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Ala Cys GIy Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Ser Xaa Xaa Xaa Tyr Phe Thr Ala Asp Ser GIn Arg Phe GIy Cys GIy (SEC ID NO:324); y Asp Ala GIy Pro Xaa Xaa Xaa Val GIu Xaa Xaa Ala GIy Xaa Xaa He lie Asp Ala Ser Xaa Xaa He Cys Xaa Xaa Leu Xaa GIy Xaa Ser Ser Cys
GIy Trp Ser Asp Xaa Xaa Xaa He Thr Ala Xaa Xaa Xaa Ser Xaa Xaa Asp Xaa Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Pro Phe Asn Val Thr (SEC ID NO:325), donde Xaa es cualquier aminoácido o está ausente. La presente invención también se refiere a una composición farmacéutica o a un equipo para usar como antimicrobiano, que contiene al menos una cantidad eficaz de una lisozima con una secuencia de aminoácidos descrita anteriormente. En otro aspecto, la invención proporciona procedimientos para tratar o prevenir una enfermedad asociada con una infección patógena mediante la administración a un sujeto que lo necesite de una cantidad eficaz de un reactivo que inhibe la unión de un polipéptido con un motivo de unión a la lisozima (es decir, un polipéptido similar a Tp- 17) a un polipéptido de lisozima. En una forma de realización, el reactivo inhibe la unión de un polipéptido similar a Tp-17 al ácido glutámico 53 de la lisozima humana o de pollo o a los correspondientes residuos de aminoácidos en otras especies (los números representan la longitud total de la secuencia de la lisozima humana depositada bajo el número de referencia
NP_000230) (SEC ID NO 302)). En otra forma de realización, el reactivo es un péptido, un fármaco químico, un anticuerpo, un ácido nucleico, PNA, ARN de pequeña interferencia o bacteriófago, un aptámero de ADN o un aptámero de ARN. En otra forma de realización, el reactivo es un ligando de lisozima. La invención también proporciona tratamientos o vacunas que comprenden al menos una de las glucoproteínas gJ y gD del virus del Herpes Simple -2. LA invención también proporciona vacunas que comprenden (a) un ligando de lisozima y/o (b) una lisozima.
Por "polipéptido similar a Tp- 17" se quiere decir una secuencia de aminoácido, o fragmento de la misma, que comprende un motivo de unión a la lisozima que tiene la capacidad de unirse a un polipéptido de lisozima y puede inhibir una actividad biológica de la lisozima. En una forma de realización, el motivo de unión a la lisozima comprende una secuencia consenso Xaan Pro His Xaan (SEC ID NO:1) y es al menos un 50%, 75%, 85%, 95%, o 99% idéntica al Tρl7 (Genbank número de referencia. P29722; (SEC ID NO:31)) o un fragmento del mismo. En otras formas de realización, el motivo de unión a la lisozima comprende las siguiente secuencia consenso: CX(l,5)[KRH][AG][KRH]X(0,2)[KR]X(0,l)[EDQN]C(SEC ID NoO: 178). En otras formas de realización más, el motivo de unión a la lisozima comprende la siguiente secuencia consenso: Cys Xaal Xaa2 Arg Xaa3 Xaa4 Xaa5 Cys (SEQ ID NO:314). Entre los polipéptidos similares a Tp-17 se incluyen, pero no se limita a ellos, todas las variantes, homólogos y mutantes de TP- 17 o de otras proteínas naturales que contienen un motivo de unión a la lisozima, la longitud total o fragmentos de los mismos, y proteínas de fusión que contienen cualquiera de los anteriores como parte material. Ejemplos de polipéptidos similares a Tp 17 se proporcionan en las figuras 1, 2, 39 y 42.
Por "polipéptido muíante similar a Tp 17" se quiere decir un polipéptido similar a TP- 17 que tiene al menos un cambio en un aminoácido en relación con la secuencia de una secuencia natural. Tales cambios incluyen por ejemplo, sustituciones, deleciones o inserciones de aminoácidos. En algunas formas de realización, los homólogos del polipéptido muíante similar a Tp- 17, mutantes, fragmentos, sustituciones y modificaciones retienen la capacidad para unirse a la lisozima. En una forma de realización preferida, tales polipéptidos se unen a la lisozima, pero no inhiben su actividad antimicrobiana. La Figura 7 describe ejemplos de procedimientos para la identificación dirigida y aleatoria de mutantes polipeptídicos. Por "molécula de ácido nucleico similar a TpI 7" o "molécula muíante de ácido nucleico similar a Tp 17" se quiere decir la secuencia de ácidos nucleicos que codifica un polipéptido similar a Tp 17 o un polipéptido similar a Tp 17 muíaníe, respectivameníe.
Por "polipépíido similar a APP" se quiere decir un polipéptido que se une a la lisozima y que contiene la siguiente secuencia consenso:
CX(l,5)[KRH][AG][KRH]X(0,2)[KR]X(0,l)[EDQN]C (SEC ID No: 178). Por "lisozima" "polipéptido de lisozima" se quiere decir un polipéptido que tiene actividad de lisozima, incluida actividad antimicrobiana o actividades enzimáticas. En una forma de realización, la lisozima o el polipéptido de lisozima comprende la siguiente secuencia consenso
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Trp Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa GIu Ser Xaa Xaa Xaa Thr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Ser Xaa Asp Tyr GIy Xaa Xaa GIn He Asn Xaa Xaa Xaa Trp Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa Xaa
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Ala Lys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Trp Xaa Xaa Trp Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa (SEQ ID NO:28), Ejemplos de polipéptidos de lisozima se enumeran en las figuras 3A y 3B. En una forma de realización preferida, un polipépíido de lisozima es al menos un 50%, 75%,
85%, 95%, o 99% idéntico a la lisozima humana (Genbank número de referencia NP_000230 (SEC ID NO: 302), NP_783862 (SEC ID NO: 303), NP_115906 (SEC ID NO: 304), NP_898881 (SEC ID NO: 305), NP_653235, (SEC ID NO: 306), NP_065159 (SEC ID NO: 307), NP_776246 (SEC ID NO: 308), NP_995328 (SEC ID NO: 309), NP_002280 (SEC ID NO: 310)). En otras formas de realización, la lisozima o el polipéptido de lisozima comprende al menos una de las siguieníes secuencias consenso:
Tyr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa GIy Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Ser Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa GIy (SEC ID NO:322); o
Asp Ala Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Asp Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa GIy Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Thr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Asn (SEC ID NO:323), donde Xaa es cualquier aminoácido o está ausente.
Por "polipéptido de lisozima muíante" se quiere decir una secuencia aminoacídica de lisozima que contiene al menos un cambio de aminoácido con respecto a la secuencia de aminoácidos natural. Por "molécula de ácido nucleico de la lisozima" o "molécula muíante de ácido nucleico de la lisozima" se quiere decir una molécula de ácido nucleico que codifica una lisozima o un polipéptido mutaníe de la lisozima, respectivamente.
Breve descripción de las figuras Los anteriores objetos, características y veníajas de la preseníe invención, así como la propia invención, se eníenderán mejor a partir de la siguieníe descripción de las formas de realización preferidas junto con la lectura de las figuras adjunías, en las que: Las Figuras IA y IB ilusíran los sitios de unión a la lisozima en los polipéptidos similares a Tp 17 de una serie de bacíerias, virus, parásitos y organismos mamífero y la secuencia consenso de 17 aminoácidos que definen. En la Figura IB, los polipéptidos relacionados con Tp 17 de T. denticola, B. thetaioíaomicron, C. burnetti, H. influenzae, N. meningitidis serogrupo A y serogrupo B, V. cholerae, V. vulnificus, H. ducreyi, S. typhi, L. pneumophila, S. aureus, N. gonorrhoeae, y B. pertussis se ajustan a las siguientes secuencias consenso: Cys Xaal Xaa2 Xaa3 Pro
His Xaa4 Xaa5 Xaa6 Xaa7 Xaa8 Xaa9 XaalO Xaal l Xaal2 Xaal3 Xaal4 Xaal5 Xaal 6 Xaal 7 Cys (SEQ ID NO: 176) donde Xaa es cualquier aminoácido o esíá auseníe. Las dos proíeínas resíantes de P. gingivalis, y H. plori se agrupan en las siguientes secuencias consenso: secuencia Cys Xaal Xaa2 Xaa3 His Xaa4 Xaa5 Xaa6 Xaa7 Xaa8 Xaa9 XaalO Xaal 1 Xaal2 Xaal3 Cys (SEQ ID NO: 175), donde x es cualquier aminoácido o está auseníe. La Figura IB es una íabla que define un motivo de unión a lisozima conservado entre una variedad de patógenos bacterianos clínicamente relevantes.
La Figura 2 ilustra los sitios de unión a la lisozima en los polipéptidos similares a Tp 17 de una serie de bacterias, virus, parásitos, insectos y organismos mamífero y la secuencia consenso de 6 aminoácidos que definen.
La Figura 3A es una alineación de secuencias de lisozima madura de una serie de especies. E35 y D53 en lisozima madura de pollo (o D52 en lisozima madura humana) (T) pertenecen al diodo catalítico y se conservan en todas las secuencias de lisozima conocidas. En la parte inferior de la alineación se muestra una secuencia consenso. La conservación de los aminoácidos se representa según los símbolos de comparación de Risler (Risler y col. (1988) J. Mol. Biol. 204:1019). En ese sistema de representación, X representa cualquier aminoácido o no aminoácido, las letras el cuadro a una conservación de aminoácidos del 100%, las letras del cuadro inferior corresponden a un valor de conservación de aminoácidos comprendido entre 50% y
90%. Es más, los cambios conservadores compartidos por más del 50% de las secuencias se representan usando los siguientes símbolos $ corresponde a leucina o metionina, ! corresponde a isoleucina o valina, y # corresponde a asparagina o ácido aspártico. La Figura 3B es una continuación de la alineación de las secuencias de lisozima madura presentadas en la Figura 3A. En la parte inferior de la alineación se muestra una secuencia consenso usando la nomenclatura descrita con respecto a la Figura 3A.
La Figura 4 ilustra una ventaja de la presente invención ya que los equipos de detección de anticuerpos Tp 17 convencionales no detectan anticuerpos frente al complejo Tpl7-lisozima. En una forma de realización, la invención se caracteriza por un equipo que contiene un polipéptido similar a TpI 7 y un polipéptido de lisozima. Tales equipos son capaces de detectar anticuerpos frente a Tp 17 solo, lisozima sola o un complejo Tpl7-lisozima, si existe. La Figura 5 ilustra un ensayo western blot de interacción lisozima-proteína que comprende las siguientes cinco etapas: (1) inmovilización de lisozima purificada en un soporte sólido; (2) sondaje del soporte sólido con un ligando para lisozima (por ejemplo, GST-Tpl7); (3) unión de GST-Tρl7 con anticuerpo antiGST de cabra; (4) unión del anticuerpo de cabra con un conjugado de fosfatas alcalina anticabra; y (5) mareaje con el sustrato cromogénico nitroazul tetrazolio/bromocloro indolil fosfato fosfatasa alcalina (NAT/BCIF). La Figura 6 ilustra la secuencia de aminoácidos (SEC ID NO:29) y de nucleótidos (SEC ID NO:30) de la proteína de fusión GST-Tpl7. Las secuencias correspondientes a la fracción GST y al TpI 7 se representan in cursiva y en negrita, respectivamente. Las líneas numeradas, SEC ID NO: 30, representan la hebra sentido de ADN; la hebra antisentido o la de ARN está por debajo de la hebra sentido.
La Figura 7 ilustra el constructo de expresión de Tpl7-HIS pET24a_Tppl7His. Este vector deriva del vector de expresión pET24 (Novagen Inc., Madison, WI).
La Figura 8 A es un gel marcado con azul de Coomasie Brillante de fracciones cromatográficas de GST-TpI 7 purificado. Calle 1: proceso de purificación con lisozima de pollo adicional; calle 2: proceso de purificación sin la lisozima de pollo adicional; calle 3: MPM: marcadores de peso molecular.
La Figura 8B es un Western Blot y un gel marcado con azul de Coomasie
Brillante de fracciones cromatográficas de Tpl7-HIS purificado. Calle 1: Western blot usando suero humano positivo para sífilis de proteínas recuperadas del proceso de purificación en presencia de lisozima de pollo adicional; calle 2: tinción con azul de Coomasie Brillante de proteínas recuperadas del proceso de purificación en presencia de lisozima de pollo adicional. Se indican las secuencias peptídicas obtenidas por secuenciación de los aminoácidos del extremo N-terminal de las proteínas recuperadas de las bandas electroforéticas en los carriles uno y dos.
La Figura 9A ilustra los resultados de sondar la lisozima de pollo con GST- Tp47 en un ensayo Far Western blot. Calle PM: marcadores de peso molecular; calle 1 : 1 μg de lisozima de pollo purificada; calle 2: 5 μg de lisozima de pollo purificada; calle 3: 10 μg de lisozima de pollo purificada. La Figura 9B ilustra los resultados de sondar la lisozima de pollo con GST-
Tp 17 en un ensayo Far Western blot. Calle PM: marcadores de peso molecular; calle 4: 1 μg de lisozima de pollo purificada; calle 5:5 μg de lisozima de pollo purificada; calle 6: 10 μg de lisozima de pollo purificada.
La Figura 9C ilustra resultados de sondar la lisozima humana con GST-Tp47 en un ensayo Far Western blot. Calle PM: marcadores de peso molecular ; calle 7: 1 μg de lisozima humana purificada; calle 8: 5 μg de lisozima humana purificada; calle 9: 10 μg de lisozima humana purificada.
La Figura 9D ilustra resultados de sondar la lisozima humana con GST-Tp 17 en un ensayo Far Western blot . Calle PM: marcadores de peso molecular; calle 10: 1 μg de lisozima humana purificada; calle 11: 5 μg de lisozima humana purificada; calle 12: 10 μg de lisozima humana purificada. La Figura 10 muestra una representación gráfica del efecto del polipéptido sobre la actividad antibacteriana de la lisozima. La concentración of GST-TpI 7 en presencia de lisozima humana (O) y de pollo (A) se representó frente a la intensidad relativa de fluorescencia. Como control, la concentración de GST-Tp47 en presencia de lisozima humana (4) también se representó frente a la intensidad relativa de fluorescencia.
La Figura HA muestra una alineación de la secuencia de aminoácidos de la proteína IVY de E. coli con la secuencia de aminoácidos de Tp 17 de T. pallidum.
Debajo de la alineación se muestra una secuencia consenso. # identifica cambios conservativos (Asp/Glu) y semiconservadores (Asp/Asn ).mientras que " !" indica cambios Val/lie.
La Figura 1 IB ilustra la estructura cristalina de las tres posibles regiones de contacto de la lisozima de pollo con la proteína IVY de E.coli: proteína: péptidos I, II, and III se indican son sombreado. La Figura 12 ilustra las interacciones atómicas entre E. coli Ivy y la lisozima de pollo, incluida la interacción entre el átomo de nitrógeno de H88-IVy y el átomo de oxígeno de E53-ChkcLys y entre el átomo de oxígeno de D89-ivy y el átomo de nitrógeno de Ri32-chkcLy La distancia entre los centros atómicos fue 2,56 Á (1 angstrom = 10'10 metros) en la interacción Hss-ivy / E53-ChkcLys y 2,46 Á en la interacción D88-ivy / R132- chkcLys-
La Figura 13A ilustra la superficie molecular, accesible al agua (claro) de la lisozima de pollo sola. La región accesible al agua, expuesta a la superficie, del residuo aminoacídico E53 está sombreada.
La Figura 13B ilustra la superficie molecular accesible al agua de la lisozima de pollo en forma de complejo con la IVY de E. coli. El residuo de aminoácido E53 está completamente oculto y es poco accesible al disolvente.
La Figura 13C ilustra la superficie molécula (clara), accesible al agua, de la lisozima de pollo. La región accesible al agua, expuesta a la superficie, del residuo de aminoácido R132 está sombreada. La Figura 13D ilustra la superficie moléculas accesible al agua de la lisozima de pollo en forma de complejo con la IVY de E. coli. El residuo de aminoácido R132 permanece parcialmente expuesto al disolvente.
La Figura 14A ilustra los puentes de unión entre las dos cisternas adyacentes del sitio de unión de IVY de E. coli-lisozima de pollo que aproxima los residuos de histidina y ácido glutámico, en una configuración capaz de hacer contacto con los residuos E53 y R132 de la lisozima de pollo. La Figura 14B ilustra los puentes de unión entre las dos cisternas adyacentes del sitio de unión de Tp 17 de T. pallidum -lisozima que probablemente aproxima los residuos de histidina y ácido aspártico, posiblemente en una configuración capaz de hacer contacto con los residuos E53 y R132 de la lisozima. La Figura 15 ilustra una alineación de la proteína gJ del virus del Herpes simple tipo 1 (VHSl) y del virus del Herpes simple tipo 2 (VHS2). Debajo de la alineación se amplía una secuencia consenso. El inserto demuestra que la gj del VHSl no comparte la secuencia consenso de tipo Tp 17 encontrada en la gJ del VHS2 gJ. "#" identifica los cambios semiconservadores tales como Asp/Asn. La Figura 16A es una tabla que ilustra la intensidad relativa de hemagmtinación correspondiente a 4 sueros dudosos de sífilis humana (HPMlO, HG38, HG48 y HG82). Las muestras de suero se combinaron con Tp 17 (R) en presencia o ausencia de lisozima de pollo (ChickenLyz) o de lisozima humana (HumanLyz). Los resultados se expresan en títulos de dilución recíproca (por ejemplo, 80 significa positivo a la dilución 1/80).
La Figura 16B es una representación gráfica de los resultados de hemaglutinación de la Figura 16A. Reactivo Tpl7 sin lisozima (barras negras); Reactivo Tp 17 complementado con lisozima de pollo (barras tramadas); Reactivo Tpl7 complementado con lisozima humana (barras vacías). Los resultados se expresan como títulos de dilución recíproca (por ejemplo, 80 significa positivo a la dilución 1/80).
La Figura 17A es una tabla que ilustra la intensidad relativa de hemaglutinación correspondiente a 10 sueros humanos de sífilis (Sif71, 09-4, 09-3, HSP91, HSP17, HSP3, 4932, 5895, HG62, and HG82). Las muestras de suero se combinaron con Tp 17 (R) en presencia o ausencia de lisozima humana natural
(LyzN) o lisozima humana recombinante (LyzR). Los resultados se expresan como títulos de dilución recíproca (por ejemplo, 80 significa positivo a la dilución 1/80).
La Figura 17B es una representación gráfica de los resultados de hemaglutinación de la Figura 17A. Reactivo Tpl7 sin lisozima (barras negras); Reactivo Tp 17 complementado con lisozima humana natural (barras a cuadros);
Reactivo Tp 17 complementado con lisozima humana recombinante (barras huecas). Los resultados se expresan como títulos de dilución recíproca (por ejemplo, 80 significa positivo a la dilución 1/80).
La Figura 18A ilustra la mejora de la intensidad relativa de la hemaglutinación con la adición de lisozima humana recombinante. Se analizó un total of 34 sueros usando un reactivo TpI 7 (R) o un reactivo Tp 17 complementado con lisozima humana recombinante (R+LyzR). Los resultados de la técnica de dan como la inversa de la última dilución que dieron una aglutinación positiva. Cada resultado se convirtió en un número (dilución 1/80 es 1, la dilución 1/160 es 2, etc.). El corte está en la dilución 1/80 y un valor inferior a 1 se considera un resultado negativo. FN y P respectivamente representan resultados Falsos negativos y positivos, respectivamente.
La Figura 18B ilustra la intensidad relativa de hemaglutinación con la adición de lisozima humana recombinante en muestras de suero falsos negativos usando reactivo Tp 17 (R) o reactivo Tp 17 complementado con lisozima humana recombinante (R+LyzR). La intensidad de la aglutinación en las muestras falsas negativas se representa por un número entre 0 y 1 (1 representa el corte de la técnica de hemaglutinación).
La Figura 19 ilustra un ensayo de hemaglutinación realizado con 34 sueros humanos. El ensayo se llevó a cabo usando un reactivo Tp 17 (barras negras ) o un reactivo Tp 17 complementado con lisozima humana recombinante (barras huecas).
El resultado de la técnica se da con la inversa de la última dilución que dio una aglutinación positiva. El corte está en la dilución 1/80. Los resultados se expresan como títulos de dilución recíproca (por ejemplo, 80 significa positivo a la dilución 1/80). La Figura 20 ilustra el efecto de la lisozima sobre la especificidad del ensayo de hemaglutinación en 200 muestras de suero del banco de sangre negativos para sífilis usando reactivo Tp 17 (R) o reactivo Tp 17 complementado con lisozima humana recombinante (R+LyzR). La intensidad de la aglutinación en las muestras negativas se representa con un número entre 0 y 0,5. DE, desviación estándar. La Figura 21 A ilustra la sensibilidad mejorada de un ensayo ELISA de segunda generación para sífilis en presencia de lisozima humana recombinante.
La Figura 21B ilustra la sensibilidad mejorada de un ensayo ELISA de tercera generación para sífilis en presencia de lisozima humana recombinante.
La Figura 22 muestra una separación por cromatografía de exclusión por tamaño molecular de las isoformas de Tpl7-His. Los Tpl7-HIS purificado por afinidad está compuesto por tres oblaciones de moléculas: Tpl7-His monomérica (pico 3), Tpl7-His dimérica (pico 2) y Tpl7-His multimérica (pico 1).
La Figura 23 muestra una separación por cromatografía de exclusión por tamaño de lisozima humana recombinante purificada (Ventria Biosciences, Sacramento, CA, EE.UU.). La lisozima humana recombinante está compuesta por una única población de moléculas altamente homogénea (pico 1). La Figura 24 muestra_una separación por cromatografía de exclusión por tamaño de complejos__Tpl7-His/huLYS. Los perfiles cromatográficos correspondientes al complejo huLYS con Tpl7-His monomérico (círculos) o Tpl7-
His dimérico (rombos) se representan. Los picos corresponden a los complejos proteicos Tpl7/huLYS (picosl y 2) o excesos monoméricos (huLys yTpl7) (picos 3 y 4).
La Figura 25 muestra una separación electroforética de SDS-PAGE de sobrenadantes concentrados de cultivos bacterianos (5X) y la detección de proteínas bacterianas secretadas mediante tinción con plata. Se analizaron los siguientes patógenos: Enterococcus faecalis (carril 2), Enterococcus faecium (carril 3),
Staphylococcus aureus (carril 4), Streptococcus pneumoniae (carril 5), Streptococcus pyogenes (carril 6), Propionibacterium acnés (carril 7), Staphylococcus epidermidis (carril 8), Streptococcus agalactiae (carril 9).
La Figura 26 es un gráfico de barras que muestra la actividad enzimática de la lisozima humana medida en ausencia o en presencia de sobrenadantes concentrados de cultivos bacterianos (5X) recogidos de las siguientes especies bacterianas: Propionibacterium acnés, Streptococcus agalactiae, Streptococcus pyogenes, Staphylococcus aureus, Enterococcus faecalis, Streptococcus pneumoniae, Staphylococcus epidermidis y Enterococcus faecium. La altura de cada barra indica la actividad enzimática detectada. Un control de la lisozima se encuentra en la parte izquierda de la figura.
La Figura 27 es un esquema que muestra el principio u el diseño de un ensayo de detección selectiva de alto rendimiento para la identificación de compuestos candidatos capaces de interferir en la formación de complejos similares a Tp 17 con isozima. La etapa 1 : Contacto de una muestra de prueba con huLYS marcado con peroxidasa de rábano (POD) y un polipéptido similar a Tp 17. Etapa2: incubación de la muestra de prueba a 370C. Etapa 3: Lavado extenso, adición de sustrato POD y detección de señal.
Las Figuras 28A y 28B son gráficas de barras que muestran la inhibición de preparaciones terapéuticas comercialmente disponibles, preparaciones terapéuticas de lisozima de pollo por Tp 17. La Figura 28 A muestra la inhibición de la actividad bacteriolítica de Lizipaina® (Boehringer Ingelheim) por GST-Tp 17 y Tρl7-His a varias proporciones molares. La Figura 28B muestra la inhibición de la actividad bacteriolítica de Lisozima CHIESI (Laboratorio CHIESI) por GST-Tp 17 a varias proporciones molares. La altura de cada barra indica la actividad enzimática detectada. Un control de lisozima se encuentra en la parte izquierda de la figura. La Figura 29 es un gráfico de barras que muestra la muestra que la actividad bacteriolítica de la-Lysozyme™ (Novagen, VWR International, Mollet del Valles, España) no fue susceptible a la inhibición por GST-Tp 17 o Tpl7-HIS, mientras que se produjo una fuerte inhibición de la actividad antibacteriana de la lisozima humana. La altura de cada barra indica la fluorescencia detectada. Un control de r-
Lysozyme™ y control de la lisozima humana (HuLys) se encuentra presente a la izquierda de cada serie de experimentos.
La Figura 30 muestra las alineaciones de la secuencia de las secuencias de unión/inhibición de lisozimas de Escherichia coli Ivy, Pseudomonas aeruginosa Ivy, Yersinia pestis Ivy, Treponema pallidum sp. pallidum Tp 17 y de las tres isoformas
(APP770, APP751 & APP695) de la proteína precursora humana Beta amiloide (β- APP). Se indica el número de referencia de The Genbank correspondiente a cada secuencia peptídica. La secuencia consenso deducida se representa usando el patrón usado en la base de datos PROSITE . La Figura 31 muestra vistas 3D de los dominios de unión/inhibición de la lisozima de Escherichia coli Ivy, Pseudomonas aeruginosa Ivy y la β-APP humana.
La Figura 32 es un esquema que muestra la organización de los dominios de sAPP y la proteína precursora de meta amiloidde de Homo sapiens (β-APP).
La Figura 33 muestra la detección de la unión de huLYS marcada con peroxidasa de rábano (POD) a APP a inmovilizada pero no a sAPPα(304-612) inmovilizada. Se colocaron puntos de_ 10 g de sAPPα y de sAPPα (304-612) en un papel de membrana de nitrocelulosa y se pusieron en contacto con sondas de POD-HuLYS diluidas al 1/1000.
Las Figuras 34A y 34B son tablas que muestran una alineación de las proteínas de unión/inhibidoras de lisozima, sus números de referencia en Genbank y las especies huésped en las que el péptido está presente Estas secuencias aminoacídicas se identificaron en sílice usando el patrón peptídico CX(l,5)[KRH][AG][KRH]X(0,2)[KR]X(0,l)[EDQN]C (SEC ID NO:178) (que se muestra en la Figura 31) para la búsqueda en las bases de datos Swiss-Prot y TrEMBL usando el algoritmo de ScanProsite .
La Figura 35A es un esquema que muestra un polipéptido Tp 17 de tipo salvaje y polipéptidos imitantes Tpl7 CPA y KPA. En TP17 CPA, la histidina en la posición aminoacídica 31 se sustituyó con alanina, y en Tp 17 KPA, la histidina en la posición aminoacídica 107 se sustituyó con alanina. La Figura 35B es una tabla que muestra la capacidad inhibidora de los polipéptidos imitantes Tp 17 CPA y KPA en relación con el polipéptido Tp 17 de tipo salvaje.
La Figura 36 es un Western blot que muestra proteínas que tiene pesos moleculares de 45 kDA en cada uno de los carriles 1, 2, y 3, donde el carril 1 es el Tp 17 de tipo salvaje y el carril 2 el CPA muíante y el carril 3 el KPA muíante. La Figura 37 muestra una alineación de las secuencias peptídicas correspondientes a lisozima humana (huLYS) y lisozima de pollo (chkLYS), asía como huLYS y proteína similar a la lisozima de esperma humano (SLLPl). Esta alineación muestra que la SLLPl está estrechamente relacionada con la huLYS y la chkLYS y apoyan que el Tp 17 se puede unir a la SLLPl. La Figura 38 es un esquema que muestra que el Tp 17 se puede unir a la
SLLPl en la superficie del esperma e interferir posteriormente en el proceso de fertilización.
La Figura 39 muestra una alineación de la secuencia de motivos de unión a la lisozima presentes en la proteína E2 de algunos tipos de virus de la hepatitis C. La Figura 40 muestra una alineación de la secuencia de motivos de unión a la lisozima en la glicoproteína E2 de la cubierta en los genomas del virus de la hepatitis C representativos de los siguientes grupos genómicos: la, Ib, Ic, 2a, 2b, 2c, 2k, 3a, 3b, 3k, 4a, 5a, 6a, 6b, 6d, 6g, 6h y 6k.
La Figura 41 muestra la localización del motivo de unión a la lisozima en la glicoproteína E2 de la cubierta de algunos aislamientos del virus de la hepatitis C con respecto a la regiones hipervariables (HVR) I y región II.
La Figura 42 es un esquema que muestra un motivo de unión a la lisozima en el ectodominio de la glicoproteína E2 de la cubierta.
La Figura 43A muestra una alineación de la secuencia de cuatro lisozimas amebianas AIyA, AIyB, AIyC y AIyD.
La Figura 43B muestra una alineación de la secuencia de la lisozima del bacteriófago T4 y cuatro lisozimas amebianas AIyA, AIyB, AIyC y AIyD.
Descripción detallada de la invención En general, la invención se caracteriza por composiciones y procedimientos relacionados con la detección y el tratamiento de sujetos con una infección patógena, tal como por Treponema pallidum. Como se describe con más detalle a continuación, esta invención se basa, en parte, en el descubrimiento de que un polipéptido expresado en un patógeno, el Tp 17, se une e inhibe la lisozima, un polipéptido antimicrobiano expresado en un huésped. Dado que muchos patógenos expresan proteínas relacionadas con Tp 17, este procedimiento de inhibición de la respuesta inmunitaria de un huésped es probable que se conserve entre un gran número de patógenos. En consecuencia, la invención proporciona procedimientos para tratar o prevenir una infección patógena según esta observación. Además, la invención proporciona ensayos diagnósticos mejorados basados en la detección de anticuerpos que se unen al complejo Iisozima-Tpl7.
Polipéptidos similares a P 17 de Treponema pallidum
Las composiciones y procedimientos de la invención comprenden el polipéptido P17 de Treponema pallidum (Tp 17) (N0 de referencia de Geribank P29722; SEC ID N°:31) y polipéptidos similares a TpI 7. Estos polipéptidos comparten ciertas similaridades estructurales en su secuencia, como se ilustra en las Figuras IA, IB y 2, denominados en conjunto en la presente "polipéptidos similares a TpI 7 y/o similaritudes funcionales, tales como la capacidad para unir lisozima o inhibir la actividad antimicrobiana o enzimática de la lisozima. Al menos una y posiblemente dos regiones del polipéptido TpI 7 (SEC ID N° 31) se unen a la lisozima: la secuencia polipeptídica VCPHAG (SEC ID N°:5) en las posiciones aminoacídicas 28-33 y la secuencia polipeptídica KAPHEK (SEC ID N°:10) en las posiciones aminoacídicas 114-119 (SEC ID N°. Las figuras IA y 2 proporcionan una alineación de los ejemplos de polipéptidos similares a Tp 17 de una serie de especies bacterianas, víricas, parasíticas y mamíferos, junto con sus números de acceso. En particular, la alineación mostrada en la figura 2 identifica una secuencia consenso conservada en la evolución XaanPro His Xaan (SEC ID NO: 1), que es común a todos los polipéptidos similares a Tp 17 enumerados en la Figura 2.
En una forma de realización, un polipéptido similar a Tp 17 comprende la secuencia aminoacídica consenso de Xaan Pro His Xaan (SEC ID N°:l), en la que
Xaa es cualquier aminoácido, está ausente o es un enlace peptídico, y n es al menos uno.
En cuanto a las Figuras IA y IB5 en otra forma de realización, el polipéptido similar a Tp 17 comprende la secuencia aminoacídica consenso CSl: Cys Xaat Xaa2 Xaa3 Pro His Xaa4 Xaa5 Xaa^ Xaa7 Xaa8 Xaa9 Xaai0 Xaan Xaa12 Xaa13 Cys (SEC ID
N°:2), en la que Xaa1} Xaa2, Xaa3, Xaa4, Xaa5, Xaae, Xaa7, Xaas, Xaag, Xaa10, Xaalls Xaa12, o Xaa13 es cualquier aminoácido, ningún aminoácido o un enlace peptídico. En una forma de realización preferida, XSLSLI es Lys, GIy, He, Arg, Leu, Ala, Ser, Thr, GIn, Asn, Phe, Pro, ningún aminoácido o un enlace peptídico; Xaa2 es Thr, His, Cys, GIn, Asn, He, Ser, Leu, GIy, ningún aminoácido o un enlace peptídico; Xaa3 es His,
Lys, ningún aminoácido o un enlace peptídico; Xaa4 es Asn, GIy, Tyr, Leu, Ala, Cys, GIu, Thr, Arg, Met, Pro, lie, Val, Phe, His, GIn, Lys, ningún aminoácido o un enlace peptídico; Xaa5 es His, Arg, Asn, Leu, Ser, Lys, GIu, GIy, Pro, He, Thr, Cys, Trp, Val, GIn, Phe, Ala, Asp, ningún aminoácido o un enlace peptídico; Xaa6 es Val, Cys, Ala, Asp, Ser, Pro, GIy, GIu, Lys, Leu, GIn, lie, Tyr, Arg, Asn, Met, ningún aminoácido o un enlace peptídico; Xaa7 es Asp, GIu, Ala, His, Val, Met, Pro, Lys,
Arg, Cys, Asn, GIn, Phe, Leu, Ser, Trp, ningún aminoácido o un enlace peptídico; Xaag es GIy, Asn, Ala, lie, Arg, GIu, Lys, Thr, Tyr, Pro, Asp, Leu, Ser, ningún aminoácido o un enlace peptídico; Xaap es Leu, Arg, Phe, lie, Ala, Pro, Asn, GIn, Lys, Cys, GIu, Ser, ningún aminoácido o un enlace peptídico; Xaa10 es Val, Thr, Asp, GIu, Tyr, Arg, Ala, Trp, ningún aminoácido o un enlace peptídico; Xaaπ es Pro, Asp,
Lys, Asn, GIy, Thr, He, ningún aminoácido o un enlace peptídico; Xaaπ es He, Val, GIy, Asp, Asn, Leu, ningún aminoácido o un enlace peptídico; y Xaa13 es Asp, GIu, Cys, Thr, ningún aminoácido o un enlace peptídico. También, un polipéptido similar a Tp 17 preferido que no se ajusta estrictamente a la CSl consenso es la proteína Int del virus de la inmunodeficiencia humana (VIH-I) con el motivo relacionado
CSPEVGQMDC (SEC ID N°:27) y la proteína VPl del virus de la enfermedad pie boca (FMDV)I con el motivo relacionado TAPHRGLATLYNGDC (SEC ID N°:26) (Figura IA).
Refiriéndonos ahora a la Figura 2, en otra forma de realización, el polipéptido similar a Tp 17 comprende la secuencia aminoacídica consenso CS2: Xaat Xaa2 Pro
His Xaa3 Xaεn (SEC ID N°:3), en la que Xaai es Cys, Lys, Val, Ala, ningún aminoácido o un enlace peptídico; Xaa2 es Ala, Cys, o Lys; Xaa3 es Ala, Asp, o GIu, y Xaa4 es Cys, GIy, o Lys. En una forma de realización preferida, el polipéptido similar a Tp 17 comprende la secuencia de aminoácidos CCPHAG (SEC ID NO:4), VCPHAG (SEC ID NO:5), VAPHDC (SEC ID NO:6), KAPHDK (SEC ID NO:7),
VKPHDG (SEC ID NO:8), KKPHAK (SEC ID NO:9), KAPHEK (SEC ID NO: 10), KKPHAC (SEC ID NO: 11), VAPHAG (SEC ID NO: 12), VKPHAK (SEC ID NO:13), VKPHAC (SEC ID NO:14), VAPHEG (SEC ID NO:15), VKPHEK (SEC ID NO: 16), VCPHEK (SEC ID NO: 17), CKPHAG (SEC ID NO: 18), ACPHAG (SEC ID NO:19), KCPHDC (SEC ID NO:20), VKPHDK (SEC ID NO:21),
KKPHAG (SEC ID NO:22), o CAPHEK (SEC ID NO:23) . En una forma de realización preferida, el polipéptido similar a Tp 17 comprende la proteína P17 de Treponema pallidum o la glucoproteína J del virus del Herpes Simplex Tipo 2.
En una forma de realización, el polipéptido similar a Tp 17, como se define en la presente, no comprende la proteína Ivy. En otra forma de realización, la invención no comprende una proteína que comprende CKPHDC (SEC ID NO:24). En otra forma de realización, los polipéptidos similares a Tp 17 comprenden la secuencia consenso CS3, compartida por Tpl7 y la proteína gJ del virus del Herpes simple tipo 2 , por ejemplo, correspondiente a Xaa Cys Pro His Ala GIy (SEC ID NO:25), en la que Xaa= Cys o Val. La Figura 7 describe procedimientos de ejemplo para la identificación dirigida y aleatoria de imitantes polipeptídicos. Motivo de unión a la lisozima derivado del virus de la hepatitis C
Un polipéptido similar a Tp- 17 que comprende la secuencia aminoacídica consenso de Xaan Pro His Xaan está presente el la proteína E2 de algunos tipos de virus de la hepatitis C. La alineación de ejemplos de polipéptidos similares a Tpl7 del virus de la hepatitis C se muestra en la Figura 39. La alineación identifica una secuencia consenso CPHRLSXaaC (SEC ID NO:326), donde Xaa es Ser or Val. Es interesante el hecho de que la posterior alineación de las glicoproteínas E2 de la cubierta de otros tipos de virus de hepatitis C identifica motivos de unión a la lisozima que no se ajustan estrictamente a la secuencia consenso de Xaaπ Pro His
Xaan (SEC ID NO: 1). Las secuencias y la alineación de tales motivos de unión a la lisozima se muestran en la Figura 40. La alineación identifica una secuencia consenso de Cys Xaai Xaa2 Arg Xaa3 Xaa4 Xaa5 Cys (SEC ID NO:314). En formas de realización preferidas, Xaal es Pro, Ala, Val, o Ser; Xaa2 es GIn o GIu; Xaa3 es Leu o Met; Xaa4 es Ser, Ala, o GIy; y Xaa5 es Ser, Ala, Lys, o Cys. Las Figuras 42 y 43 ilustran la localizacón del motivo de unión a la lisozima en la glicoproteína E2 de la cubierta y la posición relativa del motivo de unión a la lisozima con respecto a las regiones hipervariables (HVR) I y II.
Moléculas de lisozima
La lisozima causa la hidrólisis de las paredes de las células bacterianas. Generalmente se encuentra en líquidos en contacto con superficies mucosas así como en otros líquidos corporales y constituye un mecanismo de defensa frente a las infecciones bacterianas. La enzima fragmenta el enlace glicosídico entre el carbono número 1 del ácido N-acetilmurámico y el carbono número 4 de la N-acetil-D- glucosamina. In vivo, estos dos carbohidratos se polimerizan para formar un polisacárido de la pared celular. La lisozima tiene múltiples dominios, una estructura de plegamiento mixto alfa y beta, contiene cuatro puentes disulfuro conservados.
La lisozima también tiene un fuerte efecto antivírico frente a los virus del herpes simple (VHS) y del VIH tipo 1 (VIH-I). La formación de sincitios en las monocapas celulares infectadas con VHS está inhibida por la lisozima blanca de huevo de gallina (Cisani y col. (1989) Microbios. 59:73-83). Además, la lisozima aumenta la actividad antiherpética del ácido glicirrizico en los ensayos in vitro (Lampi y col. (2001) Antivir. Chem. Chemother. 12:125-131). Además, la actividad antiVIH-1 encontrada en las preparaciones de gonadotropina coriónica humana (hCG) se ha atribuido en parte a la lisozima C (Lee-Huang y col. (1999) Proc. Nati.
Acid. Sci. USA 96:2678-2681). Además, se ha informado que una proteína de E. coli llamada IVY se une e inhibe la lisozima humana y de pollo (Monchois y col. (2001) J. Biol. Chem. 276:18437-18441). Las interacciones entre la lisozima y tales proteínas patógenas y el mecanismo de su acción no están cairos en la técnica anterior. Como se describe en la presente, la caracterización de la interacción entre el antígeno TpI 7 y la lisozima proporciona, al menos en parte, una explicación de cómo la lisozima interacciona con las proteínas patogénicas e inhibe su actividad.
Los niveles de lisozima son menores en pacientes que sufren infección por VHS comparados con los controles sanos, lo que sugiere que la infección patógena está asociada con una disminución de la producción de lisozima o una inhibición de la actividad de la lisozima. La presente invención proporciona, al menos en parte, una explicación de cómo las proteínas producidas por los virus patógenos invasores inhiben la actividad de la lisozima, lo que sugiere un mecanismo por el cual los virus patogénicos evaden la lisis producida por la lisozima produciendo un inhibidor de la misma. Por tanto, la presente invención proporciona composiciones y procedimientos para reducir la inhibición de la lisozima in vitro y para la prevención o el tratamiento de infecciones patógenas in vivo.
Las composiciones y procedimientos de la invención comprenden lisozima humana y polipéptidos con similitudes. Las Figuras 3A y 3 B proporcionan una alineación de polipéptidos de lisozima de una serie de especies, incluyendo patos, pollo, codorniz, cobaya, faisán, gallina pintada, pavo, chachalaca, cabra, oveja, vaca, ciervo, cerdo, rata, ratón, perro, conejo, mono, mono abisinio, mono rhesus, babuino, tití, tamarino, ardilla mono, gorila, ser humano, orangután, gibón, colobus, mono de las hojas, camello, zarigüeya, trucha, platija, peces, perro, caballo, burro, équidos, paloma, hoatzin, anofeles, gusano de seda, cecropoia, mariposa de seda, gusano de la col, gusano cornudo y croci. La alineación de las proteínas de lisozima define una secuencia consenso de la lisozima de:
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Trp Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa GIu Ser Xaa Xaa Xaa Thr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
Xaa Ser Xaa Asp Tyr GIy Xaa Xaa GIn He Asn Xaa Xaa Xaa Trp Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Ala Lys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Trp Xaa Xaa Trp Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa (SEC ID NO:28), en la que Xaa es cualquier aminoácido o está ausente. En una forma de realización la secuencia consenso de la lisozima comprende la secuencia de
XkXXXrCelaXX$kXXgXdgyXgXs$X#WvClaXXESXXnTXatnXnXXXgSt DYGifQINsXyWCndgktpXXXnXCX!XCsXLlXd#itXaCAKk! vXdXXgXXa
WvaWkXhCXgXdlsXyXXgCXXX" (SEC ID NO:32), donde la conservación de aminoácidos se representa según los símbolos de comparación de Risler (Risler y col. (1988) J. Mol. Biol. 204:1019). En ese sistema de representación, X representa cualquier aminoácido o está ausente, las letras del cuadro superior corresponden a una conservación de aminoácidos del 100%, las letras del cuadro inferior corresponden a un valor de conservación de aminoácidos comprendido entre 50% y 90%. Es más, los cambios conservativos compartidos por más del 50% de las secuencias se representan usando los siguientes símbolos: $ corresponde a leucina o metionina, ! corresponde a isoleucina o valina, y # corresponde a asparagina o ácido aspártico.
Las composiciones y procedimientos de la invención también comprenden la lisozima del bacteriófago T4 y polipéptidos con sirnilaritudes de secuencia con ellos. La Figura 43A proporciona una alineación de polipéptidos de lisozima de ameba, Dictyostelium discoideum, incluidas AIyA (Genbank número de referencia EAL69842.1 (SEC ID NO:327)), AIyB (Genbank número de referencia EAL69840.1
(SEC ID NO:328)), AIyC (Genbank número de referencia EAL69841.1 (SEC ID NO:329)), y AIyD (Genbank número de referencia EAL70816.1 (SEC ID NO:330)). La alineación define una secuencia consenso como se ilustra en la Figura 43 A. La Figura 43B proporciona una alineación de la lisozima del bacteriófago T4 (producto del gen E, Genbank número de referencia P00720 (SEC ID NO:331)), lisozimas de
AIyA, AIyB, AIyC, y AIyD. La alineación define una secuencia consenso como se ilustra en la Figura 43B, la secuencia consenso incluye una región N-terminal definida por la siguiente secuencia de aminoácidos:
Tyr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa GIy Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Ser Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa GIy
(SEC ID NO:322), y una región C-terminal definida por la siguiente secuencia de aminoácidos:
Asp Ala Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Asp Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa GIy Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Thr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Asn (SEC ID NO:323) donde Xaa es caulquier aminoácido o está ausente.
En una forma de realización, la región N-terminal comprende la siguiente secuencia de aminoácidos:
Tyr Tyr Leu Thr Xaa Phe Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Ala Cys GIy Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Ser Xaa Xaa Xaa Tyr Phe Thr Ala Asp Ser GIn Arg Phe GIy Cys
Gly (SEC ID NO:324) donde Xaa es cualquier aminoácido o está ausente.
En una forma de realización, la región C-terminal comprende la siguiente secuencia de aminoácidos: Asp Ala GIy Pro Xaa Xaa Xaa Val GIu Xaa Xaa Ala GIy Xaa Xaa He He Asp
Ala Ser Xaa Xaa He Cys Xaa Xaa Leu Xaa GIy Xaa Ser Ser Cys GIy Trp Ser Asp Xaa Xaa Xaa He Thr Ala Xaa Xaa Xaa Ser Xaa Xaa Asp Xaa Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Pro Phe Asn Val Thr (SEC ID NO:325) donde Xaa es cualquier aminoácido o está ausente. Además, como se muestra en las Figuras 43A y 43B, el polipéptido de lisozima AIyD contiene una región larga rica en GIy y Ser que separa la región N- terminal de la región C-terminal. Sin una base teórica concreta, es probable que la existencia de tal región rica en Gly-Ser sugiera que la región N-terminal y la región C-terminal sean estructiralmente independientes una de otra. [01001 Sin una base teórica concreta, la nueva secuencia consenso y la posible nueva característica estructural sugieren que la lisozima del bacteriófago T4, las lisozimas AIyA, AIyB, AIyC y AIyD pueden pertenecer a una familia nueva y pueden interaccionar de forma diferente con polipéptidos similar a Tpl7-like. Como resultado, es posible que la lisozima del bacteriófago T4 y lisozimas similares, incluyendo los polipéptidos de lisozima AIyA, AIyB, AIyC y AIyD, no se inhiban con los polipéptidos similares a TpI 7. Por tanto, los polipéptidos de la familia de lisozimas del bacteriófago T4 se pueden usar para prevenir o tratar una infección patógena. En Müller y col. (2005) "A Dictyostelium Mutant witíi Reduced Lysozyme
Levéis Compensates by Increased Phagocytic Activity," J. Biol. Chem., 280:10435-
10443, cuyas descripciones se incorporan en su totalidad en la presente memoria descriptiva como referencia, se describen secuencias adicionales de lisozima y alineaciones de las mismas.
El término "lisozima" o "polipéptido de lisozima" abarca todos los homólogos, imitantes, toda la longitud o fragmentos, sustituciones y modificaciones del mismo, incluyendo deleciones y adiciones del mismo. En una forma de realización, un polipéptido de lisozima incluye una mutación que disminuye su capacidad de unirse a o asociarse o interaccionar con el polipéptido similar a Tp 17. Como resultado, el polipéptido de lisozima mutante es resistente a la inhibición por un polipéptido similar a Tp-17 expresado por un patógeno. El ejemplo 7 describe procedimientos de ejemplo para la identificación dirigida o aleatoria de mutantes de lisozima resistentes a la inhibición. La lisozima exógena es una lisozima que se origina fuera de, por ejemplo no se produce de forma natural o se produce en concentraciones significativamente bajas, en la muestra de la preparación de polipéptido similar a Tp 17 usada en los procedimientos de la invención. En una forma de realización, la lisozima exógena es una lisozima que se añade a la muestra o al polipéptido similar a TpI 7 para preparar las composiciones y procedimientos de la invención. Polipéptido similar a Tp 17 y homólogos, mutantes y derivados de Lisozima
La invención también proporciona variantes purificadas o recombinantes de polipéptidos similares a Tp 17 o de polipéptidos de lisozima, incluidos los homólogos, los mutantes y los derivados. En algunos ejemplos, los polipéptidos mutantes recombinantes contienen mutaciones específicas (por ejemplo mutaciones en sentido erróneo, inserciones, deleciones o mutaciones sin sentido) que inhiben la actividad biológica del polipéptido recombinante en comparación con un polipéptido similar a TpI 7 nativo o con un polipéptido de lisozima. Particularmente, los polipéptidos mutantes similares a Tp-17 se unen a lisozima con una afinidad igual o mayor a la afinidad de un polipéptido natural, pero no inhiben la actividad antimicrobiana de la lisozima, tal como su capacidad para escindir un polisacárido expresado en un patógeno, Tales polipéptidos mutantes similares a Tp-17 son útiles en el tratamiento o la prevención de una infección patógena. Los polipéptidos de lisozima mutantes particularmente ventajosos de la invención son incapaces de unirse, o exhiben una afinidad de unión a un polipéptido similar a TpI 7 reducida en comparación de una lisozima nativa (Figura 3). Preferentemente, la unión , por ejemplo la afinidad de unión o la cantidad, se reduce en la menos un 5%, 10%, 25%, 50%, 75%, 85%, 95%, o 100. Otros polipéptidos de lisozima ventajosos retienen la capacidad para unirse a un polipéptido similar a Tp 17, aunque tal unión no inhibe la actividad antimicrobiana del polipéptido de lisozima, como su actividad enzimática.
Por el uso de un homólogo, un muíante o un derivado de función limitada pueden deducirse los efectos biológicos específicos , por ejemplo, con menos efectos secundarios o mayor potencia terapéutica, respecto del uso de una forma de referencia o natural (es decir, el tipo salvaje) de un polipéptido similar a Tpl7 o de un polipéptido de lisozima. Los imitantes de polipéptidos similares a TpI 7 o de los polipéptidos de lisozima pueden generarse por mutagénesis, como, por ejemplo, introduciendo una pequeña mutación o mutaciones puntuales, o una inserción, una deleción u otras modificaciones y alteraciones. Por ejemplo, las mutaciones naturales o inducidas en laboratorio pueden generar imitantes de los polipéptidos similares a Tp- 17 o polipéptidos de lisozima que retengan sustancialmente la misma, o solo un poco, de la actividad biológica del polipéptido similar a Tp 17 o del polipéptido de lisozima del que el polipéptido muíante deriva. Por otra parte, pueden generarse formas antagonistas de un polipéptido similar a TpI 7 o de un polipéptido de lisozima. Tales aníagonisías inhiben la función de una forma esponíánea del polipéptido similar a Tp 17 o del polipéptido de lisozima, mediante unión competitiva a un ligando natural.
Los homólogos purificados o recombinantes de polipéptidos similares a Tp 17 o los polipéptidos de lisozima de la presente invención también incluyen homólogos naturales de los polipéptidos similares a Tpl7 de tipo salvaje o de los polipéptidos de lisozima que son resisteníes de forma natural a la fragmentación proteolííica.
Los polipéptidos similares a Tp 17 o los polipéptidos de lisozima pueden también sufrir modificaciones químicas para crear derivados del polipéptido similar a TpI 7 o de polipéptidos de lisozima, respectivameníe, formando conjugados covaleníes o agregados con otras fracciones químicas, tales como grupos glicosilo, lípidos, fosfato, grupos acetilo y similares. Los derivados covalentes de los polipéptidos similares a Tp 17 o de los polipéptidos de lisozima pueden prepararse uniendo las fracciones químicas a grupos funcionales en las cadenas de aminoácidos de la proíeína o en el extremo N-terminal o en el extremo C-terminal de la proteína. Se pueden realizar modificaciones de la estructura de los polipéptidos similares a TpI 7 o de los polipéptidos de lisozima (por ejemplo, mutaciones de aminoácidos) se puede realizar para propósitos tales como aumentar la eficacia terapéutica o profiláctica, la estabilidad, (por ejemplo, ex vivo duración y resistencia a la degradación proteolítica), o modificaciones postraduccionales (por ejemplo, alterar el patrón de fosforilación de la proteína). Tales polipéptidos similares a Tp 17 o polipéptidos de lisozima modificados o imitantes, cuando están diseñados para retener al menos una actividad de la forma natural de los polipéptidos similares a TpI 7 o de los polipéptidos de lisozima, o para producir antagonistas específicos de los mismos, se consideran equivalentes funcionales de los polipéptidos similares a Tp 17 o de los polipéptidos de lisozima descritos con más detalle en la presente. Tales polipéptidos similares a Tpl7 o polipéptidos de lisozima modificados pueden producirse, por ejemplo, mediante sustitución, deleción o adición de aminoácidos La variante sustitutiva puede ser un aminoácido sustituido conservado o un aminoácido sustituido no conservado.
Por ejemplo, es razonable esperar que una sustitución aislada de una leucina con una isoleucina o valina, un aspartato con un glutamato, una treonina con una serina, o una sustitución similar de un aminoácido con un aminoácido estructuralmente relacionado (es decir, mutaciones isostéricas y/o isoeléctricas) no tienen un efecto principal sobre la actividad biológica de la molécula resultante. Las sustituciones conservadoras son aquéllas que tienen lugar en una familia de aminoácidos que están relacionados en sus cadenas laterales. Los aminoácidos genéticamente codificados pueden dividirse en cuatro familias: (1) ácidos = aspartato, glutamato; (2) básicos = Usina, arginina, histidina; (3) no polares = alanina, valina, leucina, isoleucina, prolina, fenilalanina, metionina, triptófano; y (4) polares sin carga = glicina, asparagina, glutamina, cisterna, serina, treonina, tirosina. De forma parecida, el repertorio de aminoácidos puede agruparse como (1) ácidos = aspartato, glutamato; (2) básicos = Usina, arginina histidina, (3) alifáticos = glicina, alanina, valina, leucina, isoleucina, serina, treonina, con serina y treonina opcionalmente agrupados por separado como alifáticos-hidroxilo; (4) aromáticos = fenilalanina, tirosina, triptófano; (5) amidas = asparagina, glutamina; y (6) con azufre = cisterna y metionina. Si un cambio en la secuencia de aminoácidos de un péptido resulta o no en un homólogo funcional de un polipéptido similar a TpI 7 o de un polipéptido de lisozima (por ejemplo, funcional en el sentido de que el polipéptido resultante imita o antagoniza la forma de tipo salvaje) puede determinarse con facilidad valorando la capacidad del péptido variante para producir una respuesta en un ensayo o en células de un modo similar a la proteína de tipo salvaje, o para inhibir competitivamente tal respuesta. Los polipéptidos en los que ha tenido lugar más de una sustitución pueden analizarse con facilidad de la misma manera. En esta descripción se recogen ejemplos de ensayos y reactivos útiles para analizar tales homólogos.
Por tanto, el término "polipéptido" incluye péptidos o proteínas naturales, así como péptidos o proteínas producidos de forma sintética o recombinante. El polipéptido puede abarcar cadenas de aminoácidos de cualquier longitud, en los que los residuos de aminoácidos están unidos mediante enlaces peptídicos covalentes. Sin embargo, la invención también abarca peptidomimético de tales polipéptidos en los que los aminoácidos y/o los enlaces peptídicos se han sustituido por análogos funcionales. De acuerdo con la invención, un aminoácido abarca un análogo no natural de aminoácido.
Esta invención además contempla un procedimiento para generar conjuntos de imitantes combinatorios de polipéptidos similares a Tp 17 o polipéptidos de lisozima, así con imitantes de fragmentación y es especialmente útil para identificar posibles secuencias variantes (por ejemplo, homólogos). El propósito de detectar de forma selectiva tales bibliotecas combinatorias es generar, por ejemplo, nuevos imitantes de polipéptidos similares a Tp 17 o imitantes de polipéptidos de lisozima que puedan actuar como agonistas o antagonistas, o, de forma alternativa, que posean nuevas actividades en conjunto. Por tanto, pueden generarse polipéptidos imitantes derivados de forma combinatorial que tengan una mayor potencia relativa a una forma natural (de tipo salvaje) del polipéptido.
En otra forma de realización, la invención trata de polipéptidos similares a Tp 17 o de polipéptidos de lisozima aislados, preferiblemente preparaciones sustancialmente puras, por ejemplo, de polipéptidos derivados de líquidos corporales o producidos de forma recombinante. Los polipéptidos similares a Tp 17 o lo polipéptidos de lisozima pueden comprender polipéptidos de longitud total o pueden comprender fragmentos más pequeños correspondientes a uno o más dominios/motivos concretos, o fragmentos que comprenden al menos alrededor de 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, alrededor de 20, alrededor de 25, alrededor de 50, alrededor de 75, alrededor de 100, alrededor de 125, alrededor de 148, aminoácidos de longitud, por ejemplo.
Los péptidos pueden producirse mediante síntesis peptídica directa usando técnicas de fase sólida (por ejemplo, Stewart y col. (1969) Solid Phase Peptide Synthesis, WH Freeman Co. San Francisco; Merrifield (1963) J. Am. Chem. Soc. 85:2149-2154). La síntesis proteica In vitro puede realizarse mediante transcripción y traducción acopladas in vitro, por ejemplo usando un equipo de TnT® (Promega, Madison, WI) o un equipo de RTS (Roche Applied Science, Barcelona, España) o usando un enfoque automatizado, por ejemplo, usando un sintetizador de péptidos Applied Biosystems 43 IA Peptide Synthesizer (Perkin Elmer, Foster City, CA) siguiendo las instrucciones del fabricante. Los péptidos se pueden preparar mediante uno o más procedimientos y se pueden unir químicamente para producir una molécula de longitud total.
La caracterización del sitio de unión de la lisozima en TpI 7 y la secuencia consenso de ese sitio de unión que es compartida por una serie de polipéptidos similares a Tp 17 derivados de patógenos puede explotarse para proporcionar inhibidores de la unión lisozima/polipéptido similar a Tp 17 y procedimientos para hacerlo y usarlos como diagnóstico (por ejemplo, sondas), profilácticos o tratamientos de una serie de enfermedades patogénicas o enfermedades caracterizadas por la alteración de la actividad de la lisozima. Asimismo, la invención proporciona variantes naturales y genéticamente modificadas de lisozimas, incluidos homólogos, imitantes y derivados, y procedimientos para fabricarlas, que son incapaces de unirse a polipéptidos similares a Tp 17 que retienen otras funciones de la lisozima, tales como la unión e hidrólisis de péptidoglucano por ejemplo, escapando por tanto de la inhibición por los polipéptidos similares a TpI 7. Estas lisozimas que no son de tipo salvaje, incluidos homólogos, imitantes y derivados se usan para tratar o prevenir muchas enfermedades patogénicas, incluidas sífilis, SIDA y herpes genital.
La invención también proporciona polipéptidos mutantes similares a Tp 17 que tienen secuencias de unión a lisozima alteradas y polipéptidos mutantes de lisozima que tienen secuencias de unión alteradas a un polipéptido similar a Tp 17. Preferentemente estos polipéptidos mutantes exhiben afinidades de unión alteradas.
Particularmente preferidos son los polipéptidos mutantes similares a Tp- 17 que tiene un incremento (p. ej., 5%, 10%, 25%, 50%, 75%, o 100%) en su afinidad de unión a la lisozima en comparación con un polipéptido similar na Tp- 17 nativo. Tales polipéptidos mutantes compiten con un polipéptido similar a Tp 17 por la unión a lisozima. Los más preferidos son los polipéptidos mutantes similares a Tp-17 que se unen a lisozima con una afinidad al menos nativa, pero que no inhiben la actividad antimicrobiana de una lisozima, como una actividad enzimática. Particularmente preferidas son los polipéptidos mutantes de lisozima que tiene puntos de unión alterados que reducen (p. ej., en un 5%, 10%, 25%, 50%, 75%, o 100%) o eliminan la unión a un polipéptido relacionado con Tp-17. Otros polipéptidos mutantes de lisozima preferidos se unen a un polipéptido relacionado con Tp- 17, pero tal unión no reduce ni elimina la actividad antimicrobiana de la lisozima.
Otras alteraciones en un polipéptido relacionado con Tp- 17 o en un polipéptido de lisozima alteran la función in vitro o in vivo, por ejemplo, como se ha efectuado por la mutágenesis dirigida a sitio o la bioquímica combinatoria. Por ejemplo, se proporcionan variantes de lisozima que han perdido la capacidad para unirse a péptidoglucano pero retienen la capacidad para unirse a un polipéptido similar a Tp 17.
The invención además proporciona polipéptidos similares a Tp 17 que puedan usarse para preparar polipéptidos de fusión con un polipéptido de interés, que puedan purificarse con afinidad de forma económica usando lisozima (por ejemplo, que está unido a un soporte sólido tal como una resina, perlas, un pocilio, cápsula, una columna, un gel, una membrana o un dispositivo de filtros).
La información de las secuencias proporcionada por la presente invención también proporciona sondas específicas para la identificación de polipéptidos similares a Tp 17, usando una lisozima como sonda, o identificación de lisozima, usando un polipéptido similar a Tp 17 como sonda. Además, pueden prepararse anticuerpos frente a secuencias que definan estos sitios de unión usando procedimientos estándar. Procedimientos para mejorar los procedimientos de detección de infección patógena La presente invención también proporciona procedimientos y composiciones para la detección mejorada de anticuerpos antipatógenos en una muestra, por ejemplo, como diagnóstico de infección patógena. Mientras que los ejemplos de tales procedimientos diagnósticos pueden referirse específicamente a la sífilis, un experto en la técnica entenderá que tales procedimientos son en general útiles para detectar una respuesta inmunitaria contra prácticamente cualquier patógeno que produzca un polipéptido similar a Tp-17. Los procedimientos diagnósticos de la invención implican la detección de un anticuerpo antipatógeno en una muestra usando reactivos que incluye, entre otras cosas, lisozima. El Ejemplo 8 proporciona una descripción de un ensayo de ejemplo para la sífilis para detectar anticuerpos antipolipéptido similar a Tpl7.Los anteriores y otros procedimientos se analizan con más detalle a continuación.
Sin una determinada base teórica, es muy probable que un sujeto con sífilis genere una respuesta inmunitaria, no sólo contra una proteína Tp 17 aislada, sino también contra el complejo polipéptido Tpl7/lisozima. El contacto de una muestra biológica de tal sujeto con la lisozima permite la detección de anticuerpos que reconozcan el complejo Tpl7/lisozima y aumenta la sensibilidad del ensayo diagnóstico de sífilis. De igual modo, cualquier procedimiento diagnóstico de patógenos que implique la detección de un anticuerpo que reconozca un complejo proteína similar a Tp.l7/lisozima se ve aumentado por la inclusión de lisozima en los reactivos de ensayo. Preferentemente, la adición de lisozima a un reactivo de ensayo incrementa la sensibilidad del procedimiento diagnóstico en al menos un 5%, 10%,
25%, 50%, 75%, o incluso un 85% o un 95% en comparación con los procedimientos diagnósticos estándar. Composiciones y Procedimientos para detectar anticuerpos antipatógénos
La invención proporciona composiciones y procedimientos para detectar anticuerpos antipatógeno en una muestra, que son indicativos de la presencia de, o infección por, o de una respuesta inmunológica (por ejemplo, respuesta inmunológica humoral ) a un patógeno bacteriano tal como, por ejemplo, Treponema pallidum, Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas putida, Yersinia pestis, Shigella flexnerii, Treponema denticola, Vibrio cholerae, Vibrio vulnificus, Vibrio parahemolyticus, Chlamydia pneumoniae, Staphylococcus aureus,
Staphylococcus epidermidis, Streptococcus pneumoniae, Streptococcus agalactiae, Streptococcus mutans, Streptococcus pyogenes, Enterococcus faecalis, Bordetella bronchiseptica, Bordetella pertussis, Bordetella parapertussis, Helicobacter hepaticus, Salmonella typhimurium, Raϊstonia solanacearum, Xanthomonas campestris, Pseudomonas syringae, Pasteurella multocida, Brucella melitensis,
Brucella suis, Mycobacterium tuberculosis, Campylobacter jejuni, Helicobacter spp., and Agrobacterium tumefaciens, Moraxella catarrhalis, Neisseria meningitidis, Neisseria gonorrhoeae, Mycoplasma pneumoniae, Legionella spp., Haemophilus influenzae, Haemophilus ducreyii, Propionobacterium acnés, Listeria monocytogenes. Además, la composición se usa para detectar la presencia de, infección por o respuesta inmunológica (por ejemplo, respuesta inmunológica humoral) a un patógeno vírico, tal como, por ejemplo, virus del Herpes Simple tipo 2, virus de la Influenza A, virus TACARIBE , virus de la lengua azul , citomegalovirus del chimpancé, virus de la hepatitis B, virus de la hepatitis C, citomegalovirus humano (HCMV), virus del papiloma humano, virus del Dengue, virus de la encefalitis equina oriental, virus de la encefalitis equina occidental, virus de la encefalitis equina venezolana, enfermedad de pie-mano-boca (PMB) , virus de la inmunodeficiencia humana, virus de la rubéola, virus de la peste bovina, virus de la rabia y LdMNPV. Además, la composición se usa para detectar la presencia de, infección (por ejemplo, respuesta inmunológica humoral) por a un parásito, tal como, por ejemplo, Entamoeba histolytica, Plasmodium falciparum, Plasmodium ovale, Emeiria tenella, Eimeria acervulina, Giardia lamblia, Plasmodium yoelii y patógenos transportados por Anopheles gambiae, o las respuestas inmunitarias a los mismos. Además, la composición se usa para detectar la presencia de, infección por o respuesta inmunológica (por ejemplo, respuesta inrnunológica humoral) a un Mycobacterium paratuberculosis, virus de Ébola, virus de la fiebre de Rift Valley , síndrome de dificultad respiratoria grave (SDRA), virus de la viruela, Bacillus anthracis, Leishmania Spp., micoplasma, rickettsia, hongos o levaduras. Tales anticuerpos se identifican, por ejemplo, mediante un ensayo que detecta la unión de anticuerpos a un polipéptido similar a Tpl7, un polipéptido de lisozima, un complejo de polipéptido similar a Tp 17/ polipéptido de lisozima o un fragmento de los mismos.
El polipéptido similar a TpI 7 o el polipéptido de lisozima puede comprender un marcador de afinidad, tal como, por ejemplo, glutatión S-transferasa (GST), cola de 6-histidina (HIS), proteína de unión a la maltosa, péptido de tipo elastina o una Strep-Tag (IBA, Goettingen, Alemania). El polipéptido similar a Tp 17, la lisozima y/o el complejo polipéptido similar a Tpl7-lisozima puede fijarse a un soporte sólido tal como resina, perlas, pocilio, cápsula, columna, gel, membrana, matriz, placa o dispositivo de filtros. El uso de una placa de varios pocilios o de una microcápsula es útil para los análisis a gran escala de numerosas muestras o para analizar una única muestra por duplicado o para detectar la presencia de una serie de agentes patogénicos.
En una forma de realización, el procedimiento de la invención comprende detectar la unión, si existe, de anticuerpos antipatógenos presentes en la muestra de (i) el polipéptido similar a Tp 17 solo; (iϊ) la lisozima sola; (iii) el complejo polipéptido similar a Tpl7-lisozima. En una forma de realización, el procedimiento comprende las etapas de (a) poner en contacto una muestra son un polipéptido similar a Tp 17 en las condiciones que permitan la unión de un anticuerpo en la muestra al polipéptido similar a TpI 7; y (b) poner en contacto la muestra con una lisozima sustancialmente pura, exógena en las condiciones que permitan la unión de un anticuerpo a la lisozima. El polipéptido similar a TpI 7 y la lisozima pueden estar unidas entre sí o asociadas de manera un anticuerpo pueda unirse a ambas, el polipéptido similar a TpI 7 y la lisozima, por ejemplo se puede unir un complejo de polipéptido similar a Tp 17 y lisozima. La unión del anticuerpo al polipéptido similar a Tp 17, la lisozima o su complejo puede producirse a 15-25 0C, o a cualquier temperatura que permita la unión del anticuerpo al polipéptido similar a Tp 17 y/o a la lisozima. En una forma de realización preferida, el ensayo es un ensayo de aglutinación tal como, por ejemplo un ensayo de hemaglutinación realizado como se describe en los ejemplos 8 y 9. Las partículas transportadoras usadas en el ensayo de aglutinación pueden ser, por ejemplo, eritrocitos, partículas agregados proteicos, partículas poliméricas, partículas inorgánicas, partículas paramagnéticas o células de levadura. En una forma de realización preferida, la adición de lisozima aumenta la hemaglutinación en al menos alrededor de 0,1 a alrededor de 20 veces, alrededor de 0,3 a alrededor de 10 veces o alrededor de 1 a alrededor de 10 veces, por ejemplo, preferiblemente al menos de 3 veces. La lisozima puede proceder de la misma especie que el sujeto del que se extrae la muestra (p. ej., un ser humano). La lisozima se añade al reactivo polipéptido similar a Tp 17, el tampón de dilución o cualquiera de los reactivos de vasos usados en el ensayo y puede añadirse en cualquier momento, de una vez o por partes, por ejemplo antes, durante o después de que la muestra ha entrado en contacto con el resto de los reactivos o vasos del ensayo. En una forma de realización concreta, la lisozima exógena está presente en un intervalo de concentraciones de alrededor de 1 femtogramo/ml a alrededor de 999 miligramos/ml. La lisozima está presente en un intervalo de concentraciones de alrededor de 1 nanogramo/ml a alrededor de 999 microgramos/ml. (p. ej., 1, 10, 25, 50, 100, 250, 500 o 1000 nanogramos o microgramos/ml). En otra forma de realización, los anticuerpos antipatógeno se detectan usando un ensayo de ELISA. Los procedimientos para llevar a cabo los ensayos de ELISA son bien conocidos en la técnica. Brevemente, para detectar la presencia de anticuerpos trente a polipéptidos similares a Tp 17 en una muestra, por ejemplo, una fase sólida, tal como una placa de ELISA, se reviste con un polipéptido similar a TpI 7 solo, una combinación de polipéptido similar a TpI 7 y lisozima, o lisozima sola, en distintos pocilios en una palca. Después de lavar, a los pocilios se añade una muestra que puede contener un anticuerpo antipolipéptido similar a Tp 17, un complejo anticuerpo antipolipéptido similar a Tpl7-lisozima, y/o anticuerpo antilisozima. La muestra puede aplicarse a varios pocilios de la placa de ELISA y puede detectarse a través de mareaje directo (si es adecuado), usando una pareja de unión secundaria para el anticuerpo antipolipéptido similar a Tp 17 tal como una antilgG humana de conejo que tiene un marcador detectáble o ussando un anticuerpo terciario o reactivo de detección (p. ej., estreptavidina-biotina o proteína A o proteína G marcadas). Por otra parte, la detección también se puede llevar a cabo usando un polipéptido similar a Tp 17 marcado. Si los anticuerpos específicos están marcados de forma distinta, se puede detectar más de un anticuerpo en la misma muestra, por ejemplo en el mismo pocilio de la placa de ELISA. Esto puede realizarse mediante el uso de marcadores que produzcan señales diferentes que puedan cuantificarse de forma independiente, por ejemplo usando pigmentos con absorciones UV máximas diferentes. Los valores para los pocilios tratados de forma variable pueden compararse para determinar la presencia de anticuerpos frente al polipéptido similar a TpI 7 solo, frente al complejo polipéptido similar a Tp 17- lisozima y/o frente a la lisozima sola. Cualquiera de los inmunoensayos descritos en la presente puede usarse en la práctica para detectar anticuerpos frente al polipéptido similar a TpI 7 y al complejo polipéptido similar a Tpl7-lisozima mediante el uso de lisozima para la que se crean, en la fase líquida o en la sólida, complejos polipéptido similar a Tpl7-lisozima que puedan unirse a sus anticuerpos conocidos, según procedimientos estándar.
Para no limitarnos a una teoría concreta, es probable que el ensayo esté estimulado por la adición de lisozima porque la lisozima forma complejos con los polipéptidos similares a Tp 17, formando por tanto sustrato para la unión con anticuerpos que solo se unen al complejo Tpl7-lisozima y no al polipéptido similar a Tp 17 solo. En consecuencia, al añadir lisozima al ensayo se detectan en la muestra los anticuerpos dirigidos al polipéptido similar a Tp 17 solo, la lisozima sola o el complejo (Figura 4). En una forma de realización de la invención, el ensayo se puede llevar a cabo usando una lisozima natural purificada o recombinante que no tiene actividad de unión al péptidoglucano (por ejemplo, un muíante de lisozima) de forma que se enriquece la unión de la lisozima al polipéptido similar a Tp 17. Esta unión selectiva se puede lograr, por ejemplo, mediante mutagénesis dirigida al sitio u otros procedimientos conocidos en la técnica, por ejemplo, como se describe en el Ejemplo
7.
En otra forma de realización, la molécula de lisozima puede alterarse para eliminar su capacidad para unirse al polipéptido similar a Tp 17, de forma que el muíante resultaníe es resisíente a la inhibición por un polipéptido similar a TpI 7. Tales muíaníes pueden exhibir una actividad antimicrobiana aumeníada frente a patógenos provistos con factores de virulencia de polipéptidos similares a TpI 7. Las muíaciones localizadas en la secuencia codificadora de la, seleccionados de forma que las actividades aceíil muramidasa/o antimicrobiana no se vean afecíadas, desesíabilizan la iníeracción lisozimas/inhibidor y confieren resisíencia a la inhibición por proíeínas paíógenas íales como el aníígeno de T.pallidum o miembros de la familia Ivy. Tales lisozimas imitantes representan composiciones nuevas e interesantes para el tratamiento de enfermedades infecciosas. Además, dada su potencia y espectro de actividad mejorados, son superiores a la lisozima de pollo usada en la actualidad en las preparaciones medicinales disponibles en el mercado. Composiciones y procedimientos para inhibir la actividad de la lisozima In Vitro En otro aspecto, la invención proporciona composiciones y procedimientos para reducir la actividad de la lisozima en una muestra mediante el contacto de una muestra con un polipéptido similar a Tp 17, o un fragmento del mismo, en el que el polipéptido similar a TpI 7 se une e inhibe la actividad de la lisozima en la muestra. El tratamiento es útil para cualquier muestra que requiera la inactivación o la neutralización de la lisozima, tale como, por ejemplo, una preparación de un líquido farmacéutico para la administración a seres humanos, un líquido de cultivo celular, un alimento, una medicina, agua u otros líquidos o agentes de ingestión, un implante, un injerto o cualquier otra preparación en la que no se desea la presencia de lisozima o ésta es perjudicial. Las composiciones y procedimientos de la invención son adecuadas para tratamientos a pequeña o gran escala de suministros de agua, por ejemplo. Las composiciones y procedimientos pueden usarse para inhibir lisozimas en un material que se supone que está libre de contaminación por lisozima , o para los cuales es deseable la inhibición de la actividad de la, tal como una muestra biológica, un vaso de cultivo, una cubeta, una torunda de algodón, aparatos de diagnóstico clínico o material de ensayos, instrumentación médica, cultivos celulares, aspirados de garganta, muestra de líquido cefalorraquídeo o hemocultivos. En algunas formas de realización, el polipéptido similar a TpI 7 o los fragmentos de unión a la lisozima está fijado a un soporte sólido y la lisozima presente en la muestra está unida al polipéptido similar a Tp 17. En una forma de realización, el material del estómago anterior de un animal rumiante puede analizarse o tratarse usando los procedimientos y composiciones de la invención. Este material incluye bacterias, levaduras, hongos y protozoos, por ejemplo. Esta flora controla la degradación y la asimilación de nutrientes en rumiantes. En una forma de realización, la inhibición de lisozima mediante un polipéptido similar a Tp 17 o la inhibición de un polipéptido similar a Tp 17 por la lisozima, puede alterara la tasa de asimilación de nutrientes y puede presentar ventajas en ciertas circunstancias.
La muestra puede también ser una muestra bacteriana, de forma tal que la recuperación de un extracto patógeno está estimulada por la lisis celular inhibidora. Además, la invención es útil para identificar una bacteria determinando el punto hasta el cual la lisozima en presencia de un polipéptido similar a Tp 17 de secuencia predeterminada puede inhibir la lisis celular bacteriana. Por ejemplo, los procedimientos de la invención pueden usarse para distinguir entre infección por VHS-I y la infección por VHSV-2 (véase el Ejemplo 6). Procedimiento para reducir la actividad de la lisozima In Vivo La identificación del motivo de unión a la lisozima en los polipéptidos similares a Tp 17 también proporciona composiciones y procedimientos (por ejemplo, terapéuticos o profilácticos, incluyendo vacunas) para inhibir, inactivar o neutralizar la actividad de la lisozima en un animal, tal como un mamífero, un ave o un pez. Los polipéptidos similares a Tp 17 que comprenden el motivo de unión a la lisozima pueden usarse para bloquear la unión del polipéptido similar a Tp 17 con la lisozima.
Por tanto, la invención proporciona un procedimiento para reducir la actividad de la lisozima en un animal mediante la administración de una cantidad eficaz de un polipéptido similar a Tp 17. Tal procedimiento puede usarse para tratar o prevenir enfermedades como cáncer, enfermedades infecciosas, enfermedades inflamatorias, la enfermedad de Alzheimer, amiloidosis renal, leucemia, la enfermedad de Crohn y alergias. Procedimientos para detectar patógenos y ligandos de polipéptido similar a Tp 17
Las composiciones y procedimientos de la invención pueden también usarse para detectar un patógeno en una muestra. Pueden usarse composiciones que comprendan un ligando capaz de unirse al polipéptido similar a Tp 17, tal como polipéptidos de lisozima o una molécula que pueda competir con la unión de la lisozima. Por otra parte, el ligando puede ser un anticuerpo monoclonal, un anticuerpo policlonal o un fragmento Fab que se une al polipéptido similar a TpI 7.
Los ligandos pueden detectarse directamente, por ejemplo unidos a una molécula de detección, tal como un fluoróforo, una proteína fluorescente, un cromóforo, una fracción radioactiva, una fracción luminífera o un indicador o marcador enzimáticamente activo. Los ejemplos de moléculas de detección son bien conocidos en la técnica, por ejemplo, conjugados de fluoresceína, conjugados de peroxidasa de rábano, conjugados de fosfatasa alcalina y conjugados de isoluminol. En esta forma de realización de la invención, se pone en contacto una muestra con lisozima u otro ligando similar a Tp 17 en las condiciones que permitan la unión del ligando a un patógeno o a un polipéptido patógeno y se detecta la unión de la lisozima al patógeno o al polipéptido patógeno, si está presente. Tal unión es indicativa de la presencia del patógeno o del polipéptido patógeno en la muestra. Las composiciones y procedimientos de la invención también son útiles para detectar la presencia de lisozima en una muestra. Una muestra se pone en contacto con un polipéptido similar a Tp 17 y se detecta la unión del polipéptido similar a
TpI 7 a la lisozima en la muestra.
Equipos
Las composiciones y procedimientos de la invención pueden realizarse en equipos diagnósticos o terapéuticos que contengan al menos uno de los siguientes un polipéptido similar a Tp 17, lisozima y ligandos de los mismos. Los reactivos necesarios o útiles para administración, ensayo o purificación del polipéptido similar a Tp 17 o del polipéptido lisozima también pueden estar incluidos en el equipo, tal como vasos de reacción (por ejemplo, que comprendan un soporte sólido, una resina, perlas, pocilios, cápsula, columna, gel, membrana y dispositivos de filtración), valores estándar de control o manuales de instrucciones. Estos equipos diagnósticos o terapéuticos son útiles para el diagnóstico o tratamiento de una infección patógena, tal como sífilis o herpes, o para la enfermedad de Alzheimer. Péptidos de fusión y cromatografía de afinidad Los polipéptidos similares a TpI 7, o fragmentos de los mismos, de la invención son útiles como marcadores de afinidad para usar en cromatografía de afinidad usando polipéptidos de lisozima, por ejemplo, que estén unidos a un soporte sólido, así como una columna. Por tanto, la invención proporciona proteínas de fusión recombinantes (por ejemplo, proteínas de fusión TpI 7) que comprenden una primera secuencia polipeptídica unida por un enlace peptídico a una segunda secuencia polipeptídica, en la que la primera secuencia polipeptídica comprende un polipéptido similar a TpI 7 y la segunda secuencia polipeptídica comprende una secuencia de aminoácidos de interés. En una forma de realización, la primera secuencia polipeptídica está unida de forma natural a la segunda secuencia polipeptídica. El polipéptido similar a Tp 17 actúa como un cásete de purificación que se usa para unir el polipéptido de interés a la columna de afinidad de la lisozima. El cásete de purificación puede colocarse en cualquier lugar de la molécula, por ejemplo en el extremo N terminal o en el extremo C terminal del polipéptido de interés. Por otra parte, el cásete de purificación puede colocarse entre el extremo N terminal y el extremo C terminal. El polipéptido recombinante de fusión se prepara uniendo una primera secuencia polipeptídica mediante un enlace peptídico a una segunda secuencia polipeptídica, en la que la primera secuencia polipeptídica comprende un cásete de purificación de polipéptido similar a Tp 17 y la segunda secuencia polipeptídica comprende una secuencia de aminoácidos de interés. A continuación la proteína de fusión Tp 17 se usa en procedimientos para purificar el polipéptido de interés poniendo en contacto una muestra que comprende la proteína de fusión Tp 17 con lisozima en condiciones que permitan la unión del polipéptido similar a Tp 17 con la lisozima. Después, el complejo formado se lava y la proteína de fusión Tp 17 se eluye de la lisozima y puede aislarse la proteína de interés a partir del cásete de purificación según procedimientos bien conocidos en la técnica. En una forma de realización, el fragmento del polipéptido similar a TP 17 es un fragmento de
5, 10, 15, 20, 25, 50, 75 ó 100 aminoácidos que comprende al menos una secuencia consenso de unión a lisozima (p. ej., SEC ID NO: 1). Procedimientos para tratar o prevenir otras enfermedades
Se proporcionan polipéptidos de lisozima que no se unen a al menos algunos polipéptidos similares a Tp 17 (p. ej., inhibición de las funciones de la lisozima) debido a la presencia de mutaciones. Estas mutaciones están dirigidas a residuos que no afectan a la actividad catalítica de la lisozima. Tales polipéptidos de lisozima alterados se preparan mediante procedimientos estándar (por ejemplo, mediante mutagénesis dirigida a sitio o aleatoria, como se describe en la presente). Tales lisozimas son útiles para evitar la inhibición por los polipéptidos similares a TpI 7 y pueden usarse para prevenir o tratar infecciones patógenas. La invención también proporciona procedimientos para inhibir infecciones patógenas mediante la administración de una cantidad eficaz de un polipéptido de lisozima que no pueda unirse a los polipéptidos similares a Tp 17. La invención también proporciona procedimientos para identificar un reactivo que inhibe la unión de un inhibidor de lisozima tal como un polipéptido similar a Tp 17 al E53 de una lisozima (la numeración se refiere a la secuencia de lisozima humana de longitud total depositada bajo el número de referencia P00695NP_000230) (SEQ ID NO:302)). En una forma de realización preferida, el reactivo es un polipéptido, una sustancia química, un fármaco, un anticuerpo, un ácido nucleico, un aptámero o PNA. El inhibidor es, por ejemplo, cualquier molécula de estas que impida la unión de polipéptidos similares a Tp 17 al E53 de la lisozima. Ensayos de selección Como se ha comentado antes, la unión de un polipéptido similar a TpI 7 a un polipéptido de lisozima puede inhibir la actividad antimicrobiana de la lisozima. Según este descubrimiento, las composiciones de la invención son útiles para la selección de bajo coste y alto rendimiento de compuestos candidatos para identificar los que incrementan o disminuyen la afinidad de unión entre un polipéptido similar a TPl 7 y un polipéptido de lisozima. Se dispone de una serie de procedimientos que se contemplan en esta invención para llevar a cabo los ensayos de selección para identificar nuevos compuestos candidatos que modulan la afinidad de unión de un polipéptido similar a TPl 7 y un polipéptido de lisozima.
En una forma de realización, los compuestos candidatos se seleccionan según los que se unen de forma específica a un polipéptido similar a Tp 17 o a polipéptidos de lisozima. La eficacia de tal compuesto candidato depende de su capacidad para interaccionar con tal polipéptido o un equivalente funcional del mismo. Tal interacción se puede analizar con facilidad usando un número de técnicas de unión estándar y ensayos funcionales (p, ej., los descritos por Ausubel y col., supra). En una forma de realización, un compuesto candidato puede probarse in vitro para determinar su capacidad para unirse de forma específica a un polipéptido de la invención. En otra forma de realización, un compuesto candidato se prueba in vitro para determinar su capacidad para aumentar la actividad biológica de un polipéptido de lisozima descrito en la presente memoria descriptiva, tal como un polipéptido similar a Tp- 17 o un polipéptido de lisozima. El efecto de la actividad biológica del compuesto candidato sobre el polipéptido similar a Tp- 17 y/o el polipéptido de lisozima se analiza usando cualquier procedimiento estándar, conocido para e profesional experto, tal como el ensayo descrito en el Ejemplo 3.
En un ejemplo concreto, un compuesto candidato que se une a un polipéptido similar a Tp- 17 o a un polipéptido de lisozima se identifica usando una técnica basada en cromatografía. Por ejemplo, un polipéptido recombinante de la invención se puede purificar mediante técnicas estándar a partir de las células producidas por ingeniería genética para expresar el polipéptido (p. ej., las descritas en la presente) y pueden inmovilizarse en una columna. Una solución de compuestos candidatos se pasa a través de la columna y un compuesto que interaccione de forma específica con un polipéptido similar a Tp- 17 o una lisozima se identifica sobre la base de su capacidad para unirse al polipéptido e inmovilizarse en la columna. Para aislar el compuesto, la columna se lava para eliminar las moléculas que no se han unido de forma específica y el compuesto de interés se libera a continuación de la columna y se recoge. Se pueden usar procedimientos similares para aislar un compuesto unido a una micromatriz polipeptídica, por ejemplo, una matriz que contenga una pluralidad de motivos de unión a lisozima similar a TpI 7. Los compuestos aislados mediante este procedimiento (o cualquier otro procedimiento adecuado) pueden, si se desea, purificarse más (p. ej., mediante cromatografía líquida de alto rendimiento). Además, estos compuestos candidatos pueden probarse para determinar su capacidad para modular la afinidad de unión entre un polipéptido similar a TpI 7 y un polipéptido de lisozima. La unión puede alterarse, por ejemplo, mediante incremento o disminución del número de moléculas en complejos, la alteración de la afinidad de unión, la alteración de la probabilidad de que se forme un complejo o la competición con una o ambas moléculas por la unión. En otras formas de realización, el compuesto se analiza para determinar su capacidad para incrementa la actividad antimicrobiana de la lisozima. En otras formas de realización, el compuesto se analiza para determinar su capacidad para modular la interacción entre un polipéptido que contiene un motivo consenso CX(l,5)[KRH][AG][KRH]X(0,2)[KR]X(0,l)[EDQN]C (SEQ ID NO: 178) (tal como una proteína precursora de β-amiloide) y un polipéptido de lisozima. Los compuestos aislados mediante este abordaje se pueden usar, por ejemplo, como terapéuticos para tratar una infección patógena, un trastorno por lisozima o la enfermedad de Alzheimer en un paciente humano. Los compuestos que se identifican como que se unen a un polipéptido de la invención con una constante de afinidad inferior a o igual a 10 mM se consideran particularmente útiles en la invención. Como alternativa se puede usar cualquier sistema de detección de interacciones proteicas in vivo, por ejemplo, cualquier ensayo con dos híbridos. Entre los posibles agonistas y antagonistas se incluyen moléculas orgánicas, péptidos, miméticos peptídicos, polipéptidos, ácidos nucleicos y anticuerpos que se unen a una secuencia de ácido nucleico o a un polipéptido de la invención, tal como un polipéptido relacionado con Tp- 17 o un polipéptido de lisozima. Para los pacientes que presentan un trastorno caracterizado por la inhibición de la lisozima por el polipéptido similar a Tp-17 (p. ej., una infección patógena), los compuestos que inhiben la unión del polipéptido similar a Tp- 17 a la lisozima o que aumentan la actividad antimicrobiana de la lisozima o su actividad enzimática son particularmente útiles. Para los pacientes que tienen un trastorno caracterizado por un exceso de actividad de la lisozima, un compuesto que se une a la lisozima e inhibe su actividad, o que incrementa la unión entre un polipéptido similar a Tp- 17 y la lisozima son particularmente útiles.
Las secuencias de ADN que codifican los polipéptidos similares a Tp- 17 y los polipéptidos de lisozima que se enumeran en la presente memoria descriptiva también pueden usarse en el descubrimiento y desarrollo de un compuesto terapéutico para el tratamiento de pacientes con una infección patógena, un trastorno por lisozima o la enfermedad de Alzheimer. Las proteínas codificadas, tras su expresión, pueden usarse como objetivos para la selección de fármacos. Opcionalmente, los compuestos identificados en cualquiera de los ensayos descritos antes pueden confirmarse como útiles en un ensayo in vivo para compuestos que modulan la unión entre un polipéptido similar a Tp- 17 y un polipéptido de lisozima o que modulan la actividad de un polipéptido de lisozima. Las moléculas pequeñas de la invención, preferentemente tiene un peso molecular por debajo de 2.000 daltons, más preferentemente entre 300 y 1.000 daltons y más preferentemente entre 400 y 700 daltons. Se prefiere que estas moléculas pequeñas sean moléculas orgánicas. Compuestos y Extractos de prueba
En general, los compuestos capaces de modular la unión de un polipéptido similar a Tp- 17 a un polipéptido de lisozima se identifican en una serie de bibliotecas de gran tamaño de productos naturales o extractos sintéticos (o semisintéticos) o bibliotecas químicas o de bibliotecas de polipéptidos o de ácidos nucleicos, según los procedimientos conocidos en la técnica. Los expertos en la técnica de descubrimiento y desarrollo de nuevos fármacos entenderán que la fuente exacta de los extractos o compuestos de prueba no es fundamental para el o los procedimientos de selección. De la invención. Los compuestos usados en las detecciones pueden incluir compuestos conocidos (p. ej., terapéuticos conocidos usados para otras enfermedades o trastornos). Como alternativa, casi cualquier número de extractos o compuestos químicos desconocidos se pueden seleccionar usando los procedimientos descritos en la presente. Ejemplos de tales extractos o compuestos incluyen, aunque no se limita a ellos, extractos vegetales, fúngicos, procarióticos o animales, caldos de fermentación y compuestos sintéticos, así como modificación de compuestos existentes. También se dispone de numerosos procedimientos para generar síntesis dirigida o aleatoria (p. ej., semisíntesis o síntesis total) de cualquier número de compuestos químicos, incluidos, pero no limitados a ellos, compuestos de base sacárida, lipídica, peptídica y nucleica. Las bibliotecas se compuestos sintéticos se comercializan por Brandos Associates (Merrimack, N. H.) y Aldrich Chemical (Milwaukee, Wis). Como alternativa, las bibliotecas de compuestos naturales en forma de extractos bacterianos, fúngicos, vegetales y animales están disponibles en el mercado en numerosas fuentes, incluidos Biotics (Sussex, RU), Xenova (Solugh, rU), Harbor Branch Oceangraphics Institute (Ft. Pierce, Fia) y Pharma Mar, EE.UU. (Cambridge, Mass). Además, las bibliotecas naturales y sintética se producen, si se desea, según procedimientos conocidos en la técnica, p. ej., mediante procedimientos estándar de extracción y fracionamiento. Además, si se desea, cualquier biblioteca o compuesto se modifica con facilidad usando procedimientos bioquímicos, químicos o físicos estándar.
Además, los expertos en la técnica del descubrimiento y desarrollo de fármacos entenderán con facilidad que los procedimientos para la desreplicación (p. ej., desreplicación taxonómica, desreplicación biológica y desreplicación química, o combinaciones de los mismos) o la eliminación de replicados o repeticiones de materiales ya conocidos por su actividad debe emplearse siempre que sea posible.
Cuando se encuentra que un extracto bruto modula la unión entre un polipéptido similar a Tp 17 y un polipéptido de lisozima, es necesario más fraccionamiento del extracto positivo para aislar los constituyentes químicos responsables del efecto observado. Por tanto, el objetivo de la extracción, el fraccionamiento y la purificación es la caracterización cuidadosa de una entidad química en el extracto bruto que altera la unión entre un polipéptido similar a TpI 7 y un polipéptido de lisozima. Los procedimientos de fraccionamiento y purificación de tales extractos heterogéneos se conocen en la técnica. Si se desea, los compuestos que se ha mostrado que son útiles como terapéuticos para el tratamiento de una infección patógena o un trastorno por lisozima se modifican químicamente según procedimientos conocidos en la técnica. Preparación de anticuerpos Pueden prepararse anticuerpos monoclonales adecuados para usar en los inmunoensayos de la invención mediante procedimientos de hibridoma estándar, usando ensayos de unión diferencia para asegurar que los anticuerpos son específicos para un polipéptido similar a Tp 17, lisozima, un complejo polipéptido similar a Tpl7-lisozima u otro antígeno de interés y no muestran reactividad cruzada o muestran una reactividad cruzada limitada entre las proteínas relacionadas. Por otro lado, pueden prepararse anticuerpos monoclonales adecuados usando procedimientos de ingeniería de anticuerpos como expresión en fagos. En la técnica se conocen procedimientos para obtener anticuerpos altamente específicos procedentes de bibliotecas de fagos que expresan anticuerpos y hay varias bibliotecas de fagos de expresión de anticuerpos disponibles en el mercado de, por ejemplo, MorphoSys
(Martinsried, Alemania), Cambridge Antibody Technology (Cambridge, GB) y Dyax (Cambridge, MA). Procedimientos adecuados de expresión en fagos se describen en, por ejemplo, las patentes de EE.UU. n°. 6.300.064 y 5.969.108, que se incorporan en su totalidad en la presente como referencia. Véase también, por ejemplo "Antibody Engineering," McCafferty y col. (Eds.) (IRL Press 1996) y la bibliografía que contiene. Los procedimientos de expresión de anticuerpos en fagos pueden usar bibliotecas de anticuerpos en el formato Fab o scFv. Una vez que se recuperan los genes de las cadenas ligeras y pesadas de los anticuerpos del fago, pueden prepararse en cualquier formato adecuado (por ejemplo, anticuerpos enteros, Fab, scFv, etc.). También se pueden usar otras preparaciones de anticuerpos, por ejemplo, anticuerpos Camelid, que contienen solo las cadenas pesadas de las inmunoglobulinas. Véase, por ejemplo, Muyldermans y col. (2001) J. Biotechnol. 74:277-302 y la bibliografía que contiene.
Por otra parte, pueden usarse preparaciones de anticuerpos policlonales para detectar antígenos tales como polipéptidos similares a Tp 17, lisozima, u otros antígenos de interés. Los procedimientos de expresión en fagos también pueden usarse para preparar poblaciones reproducibles de anticuerpos policlonales. Por ejemplo, en una biblioteca de anticuerpos pueden eliminarse de forma exhaustiva los clones que sufran reacción cruzada por absorción en los antígenos unidos a una superficie sólida y después pasados sobre una superficie sólida para identificar los anticuerpos que se unen al antígeno de interés En la población de clones resultante se pueden eliminar también los clones que muestran reactividad cruzada por absorción sobre superficies con proteínas irrelevantes, tales como seroalbúmina bovina, etc., usando procedimientos bien conocidos en la técnica. Esto resulta en la identificación de una población de anticuerpos que se unen de forma específica a un antígeno de interés.
También pueden prepararse anticuerpos policlonales específicos para un antígeno de interés usando procedimientos tradicionales con animales. Estos antígenos, tales como, por ejemplo, péptidos, pueden conjugarse en sus extremos N o C a sus proteínas transportadoras tales como seroalbúmina bovina (SAB) o hemocianina de lapa californiana (KLH) y usarse para inmunizar animales, tales como conejos, usando regímenes de inmunización bien conocidos. Pueden obtenerse anticuerpos policlonales específicos a partir del suero del animal mediante, por ejemplo, cromatografía de afinidad sobre una matriz que contiene el péptido usado para la inmunización unido a un soporte sólido. De nuevo, por ejemplo, el antisuero formado frente a polipéptidos similares a TpI 7 puede adsorberse frente a otros polipéptidos unidos a un soporte sólido para eliminar los anticuerpos con reactividad cruzada, y viceversa. Inmunoensayos
En la práctica de los procedimientos de la invención puede usarse cualquier número de inmunoensayos. Por ejemplo, ensayo de inmunoabsorción ligado a enzima (ELISA), ensayos de aglutinación, radioinmunoensayos, ensayos turbidimétricos, ensayo nefelométrico, inmunocromatografía, ensayos de quimioluminiscencia y ensayos de fluorescencia. Tales ensayos son bien conocidos en la técnica y se describen con detalle en la presente (Andreotti y col. (2003) Biotechniques 35:850-859).
Los procedimientos para llevar a cabo ensayos ELISA son bien conocidos en la técnica. Brevemente, para detectar la presencia de polipéptidos similares a Tp 17 en una muestra, se reviste, por ejemplo, una fase sólida, como una placa de ELISA, con lisozima. Después de lavar, se añade una muestra que pueda contener un polipéptido similar a TpI 7. La muestra puede aplicarse a varios pocilios de la placa de ELISA y detectarse a través de mareaje directo (si es adecuado), usando un anticuerpo frente a un polipéptido similar a Tp 17 que está marcado o usando anticuerpos secundarios y anticuerpos terciarios o reactivos de detección (estreptavidina-biotina) o proteína A o proteína G marcadas. Si los anticuerpos específicos están marcados de forma distinta, se puede detectar más de un antígeno en la misma muestra, por ejemplo en el mismo pocilio de la placa de ELISA. Esto requiere el uso de marcadores que produzcan señales diferentes que puedan cuantificarse de forma independiente, por ejemplo usando pigmentos con absorciones UV máximas diferentes. Pigmentos y espectros útiles incluyen, pero no se limitan a ellos, ABTS (ácido 2, 2' - azinobis (3-etilen-tiazolin-b-sulfónico) sustrato cromogénico para la peroxidasa de rábano (absorbe la luz a 410nm) y TMB
(3, 3', 5, 5' - tetrametil bencidina) sustrato cromogénico para la peroxidasa de rábano (absorbe la luz a 450 nm tras la adición de H2SO4 IM.
Otros procedimientos de detección de proteínas conocidos pueden usarse en vez de o además de los inrnunoensayos anteriores. Por ejemplo, cuando se usan anticuerpos frente a epítopos proteicos que no son de superficie, antes de la detección puede usarse digestión enzimática o química de las proteínas (por ejemplo, CNBr). Por ejemplo, podría obtenerse un polipéptido similar a Tp 17 de longitud total usando un anticuerpo genérico que se une al polipéptido similar a Tp 17, seguido por digestión enzimática de las proteínas y detección de anticuerpos específicos de polipéptidos similares a Tpl7. En Kaiser y col. (1999) Anal. Biochem. 266:1-8 se describen procedimientos mejorados para la digestión de proteínas con CNBr.
Otros procedimientos que pueden usarse incluyen transferencia Western, transferencia Far Western, inmunohistoquímica, técnicas de transferencia spot/slot, chips proteicos y biosensores. Para el Western Blot, por ejemplo, las muestras proteicas por duplicado pueden someterse a electroforesis en gel de acrilamida y transferirse a una membrana como nitrocelulosa o PVDF. Una transferencia se detecta con un anticuerpo para un polipéptido similar a TpI 7 y una marca se detecta con un anticuerpo frente a una proteína control. A continuación, estos anticuerpos primarios se detectan, por ejemplo, con anticuerpos secundarios marcados. Por otro lado, cada anticuerpo específico de una proteína de interés y de una proteína control se marca con un pigmento fluorescente diferente y reaccionan con la misma marca de forma simultánea. Se mide la intensidad de la fluorescencia de cada pigmento y la tase de intensidad indica la proporción de las dos proteínas.
Una transferencia Far Western implica la inmovilización de una proteína en un soporte sólido, poniendo una sonda en el soporte con un ligando más probable que se una directamente a la proteína, y la inmunodetección del ligando de la proteína unida. Un ejemplo de Western blot far se muestra en la Figura 5 y se describe con detalle en el Ejemplo 2.
Para la inmunohistoquímica, pueden tratarse secciones tisulares por duplicado con anticuerpos específicos de un polipéptido de interés y un polipéptido control. Estos anticuerpos primarios pueden teñirse directamente o pueden detectarse con anticuerpos secundarios adecuados. La intensidad de la tinción puede medirse con una cámara con dispositivo de carga acoplado (DGA) y se cuantifican las proteínas. La tasa de intensidad de la tinción indica la proporción de las cantidades de proteínas. Por otro lado, se puede teñir una única sección con ambos anticuerpos si los anticuerpos se han marcado con marcadores fluorescentes diferentes.
Las técnicas de transferencia spot/slot también son bien conocidas en la técnica. Por ejemplo, cantidades idénticas de una muestra biológica que contiene anticuerpo frente a polipéptido similar a TpI 7, anticuerpo frente al complejo polipéptido similar a Tpl7-lisozima o anticuerpo frente a lisozima pueden marcarse directamente en una membrana y detectarse con polipéptido similar a Tp 17, lisozima y/o el complejo polipéptido similar a Tpl7-lisozima, como se ha descrito antes. Las sondas pueden marcarse o puede usarse un ligando secundario.
En la técnica se conocen muchos tipos de procedimientos basados en biosensores y pueden usarse para detectar y cuantificar anticuerpos antipolipéptido similar a TpI 7, anticuerpos anticomplejo polipéptido similar a Tpl7-lisozima o anticuerpos antilisozima. Por ejemplo, a la superficie del biosensor pueden unirse muestras con anticuerpos específicos de polipéptido similar a Tp 17 y/o lisozima de manera que cuando el polipéptido similar a Tp 17 y/o la lisozima se una a la superficie recubierta se produzca algún cambio detectáble en alguna propiedad de la superficie. Los biosensores miden, por ejemplo, cambios de masa en la superficie, cambios en las propiedades eléctricas o cambios en las propiedades ópticas. Cada uno de estos procedimientos se conoce bien en la técnica y son adecuados para usar en los presentes procedimientos.
Procedimientos basados en biosensores están disponibles comercialmente en, por ejemplo, Biacore (Piscataway, NJ) y son adecuados para usar en la presente invención para detectar y cuantificar cambios en los niveles de anticuerpos frente a polipéptido similar a Tp 17 y/o lisozima. Véase también, por ejemplo, los procedimientos de detección de proteínas descritos en la patente de EE.UU. No. 6.225.047, los contenidos de la cual se incorporan en su totalidad en la presente como referencia, y Davies y col. (1999) Biotechniques 27:1258-61. Procedimientos de detección de proteínas con cápsula comerciales están disponibles en Ciphergen
(Fremont, CA). La invención puede aumentarse de escala para detectar o diferenciar entre dos o más patógenos, por ejemplo, para determinar si una cepa de bacterias es una cepa resistente a fármacos o es incapaz de unirse o inhibir la lisozima.
En otra forma de realización, cualquiera de los procedimientos descritos en la presente pueden ser inmunoensayos competitivos, que son bien conocidos en la técnica. Por ejemplo, se puede realizar un inmunoensayo de tipo sandwich competitivo para medir el nivel de anticuerpo frente a un polipéptido similar a Tp 17 y/o frente a lisozima, en el que se usan anticuerpos conocidos frente a polipéptido similar a TpI 7 para competir con el anticuerpo frente a polipéptido similar a Tp 17 en la muestra para la unión al polipéptido similar a Tp 17. Por ejemplo, pueden incubarse diluciones seriadas de anticuerpos conocidos frente a polipéptido similar a Tp 17 con la muestra o con el polipéptido similar a Tp 17 antes de la adición al ensayo.
También se pueden usar procedimientos de espectrometría de masas para la detección de proteínas y para detectar y cuantificar cambios en los niveles de anticuerpos o fragmentos de los mismos, frente a polipéptido similar a Tp 17 y/o lisozima en una muestra, por ejemplo. Véase, por ejemplo, los procedimientos descritos en las patentes de EE.UU. n° 5.719.060; 5.894.063; y Shimizu y col. (2002) J. Chromatogr. B. Analyt. Technol. Biomed. Life Sci. 25:776:15-30; Kiernan y col. (2002) Anal. Biochem. 301 :49-56; y Pramanik y col. (2002) Protein Sci. 11 :2676-87.
Procedimientos de detección de proteínas basados en espectrometría de masas también se pueden conseguir en Ciphergen (Fremont, CA). Muestra biológica
La muestra analizada o tratada usando cualquiera de las composiciones y procedimientos de la invención puede comprender una muestra corporal como sangre, suero, plasma, lágrimas, saliva, fluido nasal, esputos, fluido ótico, flujo genital, fluido de las mamas, calostro, leche, líquido placentario, sudor, líquido sinovial, líquido ascítico, líquido cefalorraquídeo, bilis, fluido gástrico, fluido gastrointestinal, exudado, transudado, líquido pleural, líquido pericárdico, semen, material fecal, fluido de las vías aéreas superiores, líquido peritoneal, líquido recogido de un sitio con inflamación, líquido recogido de un sitio de acumulación, lavado bronquial, orina, humor acuoso, material de biopsia, material del estómago anterior de un animal rumiante, muestra de células nucleadas, líquido asociado con una superficie mucosa, por ejemplo. Por otra parte, las composiciones y procedimientos según la invención pueden realizarse sobre muestras de células secas (por ejemplo, pelo o piel) o muestras de biopsia de cualquier tejido en el que se expresen o depositen los genes de interés o los anticuerpos. Otras muestras
Como se usa en la presente, "muestra" también significa cualquier muestra diagnóstica, experimental o clínica de la que se pueda sospechar que contienen lisozima o un polipéptido similar a Tp 17, que, por el contrario, requiere análisis o tratamiento para detectar la presencia de lisozima o de un polipéptido similar a Tp 17 o de un anticuerpo frente a ellos, tal como vasos de cultivo, cubetas, torundas de algodón, instrumentación médica (por ejemplo, instrumentación quirúrgica). Una muestra también puede ser un cultivo celular o de líquido (por ejemplo, aspirado de garganta, muestra de líquido cefalorraquídeo, hemocultivo). Una muestra puede ser una preparación patógena, tal como, por ejemplo, una bacteria, un virus, un parásito, un plásmido, un micoplasma, un agente micótico (por ejemplo, un hongo o una levadura) o una preparación previa. La muestra puede ser un agente líquido o sólido, tal como un alimento, un medicamento, un implante, un injerto, un medio de cultivo celular o tisular, una muestra de agua u otra solución, reactivo o aparato para los cuales la esterilidad es algo deseable o requerido.
Las composiciones y procedimientos pueden usarse para diagnosticar o tratar la contaminación o la infección por patógenos, por ejemplo, enfermedades relacionadas con patógenos tales como, por ejemplo, sífilis, infección por VIH, herpes genital, peste bubónica, disentería, shigellosis, caries dental , infección por E. coli, fibrosis quística, tuberculosis, cólera, infecciones por estreptococos del grupo A o del grupo B, infecciones por estafilococos, úlcera gástrica, tos ferina, clamidiosis, brucellosis, otitis media, meningitis, gripe, paludismo, salmonelosis, gonorrea, vibriosis, colibacilosis, neumonía, bronquitis, síndrome de dificultad respiratoria aguda grave (SDRA). En una forma de realización, las composiciones y procedimientos de la invención son útiles en el diagnóstico o tratamiento de enfermedades de depósito citoplasmáticos tales como enfermedades de depósito de lisosomas.
Además, las composiciones y procedimientos de la invención pueden usarse para diagnosticar o tratar enfermedades como cáncer, enfermedades infecciosas, enfermedades inflamatorias, enfermedad de Alzheimer, amiloidosis renal, leucemia, enfermedad de Crohn y alergias. Administración
Los inhibidores de polipéptidos similares a Tp 17 que compiten con los polipéptidos similares a Tp 17 para unirse con la lisozima pueden administrarse a un sujeto (p. ej., un mamífero tal como un ser humano) para inhibir la unión de los polipéptidos similares a TpI 7 a la lisozima, de forma que la lisozima puede combatir el agente patogénico. Por otro lado, puede administrarse lisozima muíante insensible a la inhibición por los polipéptidos similares a Tp 17.
Cualquier medio técnico (por ejemplo, fármacos químicos, péptidos competidores, anticuerpos, vectores, ARNsi) que interfiera en la unión de la lisozima y sus inhibidores conocidos (por ejemplo, tales como un polipéptido similar a Tp 17) puede usarse profilácticamente o terapéuticamente para combatir la enfermedad patogénica causada por cualquier patógeno que comprenda tal inhibidor (por ejemplo, sífilis, infección por VIH, herpes genital, peste bubónica, disentería, shigelosis, caries dental , infección por E. coli, fibrosis quística, tuberculosis, cólera, infecciones por estreptococos del grupo A o del grupo B, infecciones por estafilococos, úlcera gástrica, tos ferina, infecciones por enterococos, clamidiosis, brucellosis, otitis media, meningitis, gripe, paludismo, salmonelosis, gonorrea, vibriosis, colibacilosis, neumonía, bronquitis, síndrome de dificultad respiratoria aguda grave (SDRA), por ejemplo. En una forma de realización, las composiciones y procedimientos de la invención son útiles en la profilaxis o tratamiento de enfermedades de depósito citoplásmico, tales como enfermedades de depósito de lisosomas.
Por otro lado, los ligandos que compiten con la lisozima por la unión con polipéptidos similares a Tp 17 pueden administrarse a pacientes para inactivar la actividad de la lisozima en pacientes que sufren enfermedades relacionadas con una superproducción de lisozima o cualquier enfermedad o trastorno en el que se desea una disminución de la actividad de la lisozima.
Las preparaciones para la administración oral de inhibidores de la unión de polipéptido similar a Tρl7/lisozima pueden formularse de forma adecuada para proporcionar la liberación controlada del compuesto activo. Para la administración oral, los inhibidores pueden tener al forma de comprimidos o pildoras formuladas de forma convencional. Por otro lado en una zona se puede frotar, pulverizar o aplicar los inhibidores antes de obtener una muestra postratamiento (por ejemplo, mediante raspado). Para la administración por inhalación, los inhibidores para usar según los procedimientos de la invención se liberan convenientemente en la forma de un aerosol en envases presurizados o nebulizadores, con el uso de un propelente adecuado, por ejemplo, diclorodifluorometano, triclorofluorometano, diclorotetrafluoroetano, dióxido de carbono u otros gases adecuados. En el caso de un aerosol presurízado la unidad de dosificación puede determinarse proporcionando una válvula para liberar una cantidad medida. Las cápsulas o cartuchos de, por ejemplo, gelatina, para usar en un inhalador o insuflador pueden formularse conteniendo una mezcla de polvos de los inhibidores y un polvo base adecuado tal como lactosa o almidón.
Los inhibidores pueden formularse para la administración parenteral mediante inyección, por ejemplo, mediante inyección en bolo o infusión continua.
Las formulaciones para inyección pueden presentarse en forma de dosis unitarias, por ejemplo, en ampollas o envases multidosis, con un conservante añadido. Los inhibidores pueden tomar formas tales como suspensiones, soluciones o emulsiones en vehículos oleosos o acuosos y pueden contener agentes de formulación tales como agentes de suspensión, estabilizantes y/o de dispersión. Por otra parte, los inhibidores pueden estar en forma de polvo para su constitución con un vehículo adecuado, por ejemplo, agua estéril sin pirógenos, antes de usar.
Los inhibidores también pueden formularse para su administración por vía rectal, inhibidores tales como supositorios o enemas de retención, por ejemplo, que conteniendo bases de supositorio convencional tales como manteca de cacao u otros glicéridos.
Los inhibidores también pueden formularse como una preparación depot. Por ejemplo, sistemas depot parenterales (SDP) se inyectan o implantas en el músculo o en el tejido subcutáneo y el fármaco incorporado se libera de forma controlada, permitiendo el ajuste de las tasas de liberación en periodos extensos, que oscilan desde varios días a un año. Tales formulaciones de acción prolongada pueden administrarse mediante implantación (por ejemplo, por vía subcutánea o intramuscular) o mediante inyección intramuscular. Los inhibidores pueden formularse con materiales poliméricos o hidrófobos adecuados (por ejemplo, como una emulsión en un aceite aceptable) o resmas de intercambio iónico, o como derivados muy poco solubles, como una sal muy poco soluble. Otros sistemas de liberación adecuados incluyen microesferas que ofrecen la posibilidad de liberar localmente de forma no invasiva los inhibidores a lo largo de un periodo extenso de tiempo. Esta tecnología usa microesferas de tamaño precapilar que pueden inyectarse a través de un catéter coronario en una parte seleccionada del cuerpo, por ejemplo, el ojo u otros órganos, sin causar inflamación o isquemia. El inhibidor administrado se libera despacio de estas microesferas y es captado por las células de los tejidos adyacentes.
La administración sistémica de los inhibidores también puede ser por vía transmucosa o transdérmica. Para la administración transmucosa o transdérmica, en la formulación se usan agentes de penetración adecuados para atravesar la barrera.
Generalmente, tales penetrantes se conocen en la técnica e incluyen, por ejemplo, para administración transmucosa sales biliares y derivados de ácido fusídico. Además, para facilitar la permeabilización pueden usarse detergentes. La administración transmucosa puede realizarse a través de pulverizadores nasales o usando supositorios. Para la administración tópica, los oligómeros de la invención se formulan como ungüentos, pomadas espesas, geles o cremas, como generalmente se conocen en la técnica. Se puede usar una solución de lavado localmente para tratar una lesión o inflamación para acelerar la cicatrización. Células La invención puede requerir células para la preparación o análisis de péptidos patógenos, por ejemplo. Líneas celulares animales o bacterianas primarias o permanentes cultivadas pueden ser: células primarias (incluyendo, pero no se restringe a estas, monocitos, sinoviocitos, fibroblastos y células endoteliales) derivadas del mismo sujeto que la muestra de líquido o derivadas de otro individuo; líneas celulares permanentes de una gama de tejidos y órganos como origen
(incluidas, pero no restringidas a ellas, líneas celulares disponibles en depósitos acceso público como la American Tissue Type Collection); o líneas celulares primarias o permanentes que se han sometido a transfección estable con constructos "promotor-lector". Las técnicas de cultivo de células bacterianas se conocen bien en la técnica.
Por ejemplo, las células bacterianas pueden creces en caldo 2XYT en un agitador a 37°C. Procedimientos para el crecimiento de bacterias transformadas con un plásmido o un virus también pueden incluir el crecimiento en agentes selectivos tales como ampicilina u otro antibiótico. Las preparaciones de células y lisados celulares, así como purificación de proteínas y ácidos nucleicos también son bien conocidos en la técnica.
La práctica de la presente invención puede emplear, a menos que se indique lo contrario, técnicas convencionales de biología celular, cultivo celular, biología molecular, biología transgénica, microbiología, ADN recombinante e inmmunología, dentro del conocimiento de los expertos en la técnica. Tales técnicas se explican por completo en la bibliografía. Molecular Cloning - A Laboratory Manual (1989), 2a Ed., Sambrook y col. (Eds.) CoId Spring Harbor Laboratory Press, Capítulos 16 y 17; Hogan y col. (1986) Manipulating the Mouse Embryo: A Laboratory Manual, CoId Spring Harbor Laboratory Press, CoId Spring Harbor, NY; U.S. Patente n° 4.683.195; DNA Cloning, Volúmenes I y II (1985) Glover (Ed.); Oligonucleotide Synthesis (1984) Gait (Ed.); Nucleic Acid Hybridization (1984) Hames & Higgins
(Eds.); Transcription and Translation (1984) Hames & Higgins (Eds.); Culture Of Animal Cells (1987) Freshney, Alan R. Liss, Inc.; Immobilized Cells And Enzymes (1986) IRL Press; Perbal (1984) A Practical Guide To Molecular Cloning; Methods In Enzymology (Academic Press, Inc., N.Y.); Gene Transfer Vectors For Mammalian Cells (1987) Miller and Calos (Eds.) CoId Spring Harbor Laboratory;
Methods In Enzymology, VoIs. 154 and 155, Wu et al. (Eds.) Academic Press Inc., N. Y.; Irnmunochernical Methods In CeIl And Molecular Biology (1987) Mayer and Walker (Eds.) Academic Press, London; Handbook Of Experimental Immunology, Volúmenes HV (1986) Weir y Blackwell (Eds.). Por tanto, los procedimientos de la invención son útiles como herramienta diagnóstica y pronostica, como un medio para tratar o inmunizar frente a enfermedades, para controlar la progresión y resolución de la enfermedad, para seguir la respuesta o la ausencia de la misma, como terapia, para evaluar la eficacia de medicación alternativa o concomitante y para establecer la dosis terapéutica correcta de un medicamento, Los procedimientos de la invención también pueden usarse, en el contexto de la investigación y desarrollo de fármacos, para valorar la eficacia potencial y los efectos secundarios de fármacos en investigación y aprobados en muestras biológicas obtenidas en el curso de pruebas en animales y/o en ensayos clínicos de fases I, II, III y IV y/o estudios posteriores a la comercialización. La práctica de la invención se entenderá más completamente a partir de los siguientes ejemplos, que se presentan en la presente sólo con propósitos ilustrativos y no deben interpretarse como ejemplos que limitan la invención de ninguna manera. EJEMPLO 1 : Lisozima de pollo copurifica con formas recombinantes del antígeno de 17 kDa de Treponema Pallidum En el contexto de la purificación del antígeno Tp 17 recombinante de T. pallidum derivado de E. coli (GST-Tp 17 o Tpl7-HIS), se purificó de forma simultánea con Tpl7una proteína. Esta proteína "contaminante", que tenía un peso molecular de 14KDa y no reaccionó con un suero policlonal antiTpl7, se identificó como la lisozima de pollo como se describe a continuación. . Se separó una fracción proteica que contenía ambas entidades (TpI 7 y el
"contaminante") mediante PAGE-SDS, se escindió del gel y se sometió a secuenciación de los aminoácidos del extremo N. El experimento dio pequeñas secuencias peptídicas N-terminales (6 - 7 aminoácidos) que coincidían perfectamente con la secuencia esperada del antígeno Tp 17 de T. pallidum o de la lisozima de pollo, que se había incluido en el tampón de resuspensión de la pasta celular para facilitar la lisis bacteriana. Estas observaciones sugerían que el Tp 17 interacciona físicamente con la lisozima de pollo. A continuación se presentan los protocolos experimentales correspondientes a la purificación de GST-Tp 17 y Tpl7-HIS, así como experimentos de microsecuenciación. Cromatografía de GST-Tp 17 Se indujo el crecimiento de la E. coli DH5 recombinante que contiene pGEX2T-Tpl7 (Akins y col. (1993) Infecí. Immun. 61:1202-1210) (Figura 6) en un fermentador de 5 litros en caldo 2xYT (Sambrook y col. (1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual 2a, Chris Nolan (Ed.) CoId Spring Harbor Press.) con lOOμg/ml de ampicilina (Roche Diagnostics, Barcelona, España). El cultivo se indujo con 0,3mM de IPTG (Roche Diagnostics Mannheim, Alemania) durante cuatro horas. Se recogieron las células y se resuspendieron en Tris 50 mM (pH 8,0), NaCl 85mM, EDTA 2mM, polioxietileno 10 tridecil éter al 1%, que contienen proteasa una mezcla inhibidora (1 ml/g de pasta celular, Sigma-Aldrich, Madrid, España) y 0,5mg/ml de lisozima de pollo (Sigma-Aldrich, Madrid, España). Después de incubar durante 50 minutos, las células se sometieron a ultrasonidos y se centrifugaron a 28.000 g. El GST-Tpl7 recombinante se purificó del sobrenadante mediante cromatografía de intercambio iónico (Q Sepharose XL, Amersham Biosciences, Cerdanyola, España). El flujo se purificó posteriormente mediante cromatografía de afinidad con glutatión (glutathione sepharose FF, Amersham, Cerdanyola, España). Para eluir el GST-Tp 17 se usó un tampón de glutatión reducido 10OmM . Las fracciones recogidas se analizaron mediante electroforesis en gel. Siguiendo el mismo protocolo se realizó otro procedimiento de purificación sin usar lisozima. Cromatografía de Tρl7-HIS La secuencia génica codificadora de la proteína Tp 17 madura (incluidos los residuos 23 a 156 de la secuencia de Tp 17 depositada con el número de referencia NCBI P29722 (SEQ ID NO:31)) se amplificó mediante PCR usando el vector pProExHT-Tpl7 (Dr. Norgard, Universidad de Dallas, Texas, EE.UU.) como molde. La amplificación por PCR se realizó usando un equipo de sistema Expand High Fidelity PCR (Roche Diagnostics, Mannheim, Alemania) y oligonucleótidos P 17-
Ndel (5'- AGA TAT ACA TAT GGT CTC GTG CAC AAC CGT GTG TCC GCA CGC CGG GAA GGC CAA -3') (SEC ID NO:33) y P17-revl (Xhol) (5'- ATG TAG CGA ACG GAG TTA -3') (SEC ID NO:34) en las condiciones recomendadas por el proveedor (Roche Diagnostics, Mannheim, Alemania). Las condiciones de ciclado térmico fueron las siguientes: un ciclo de desnaturalización (1 min a 94°C) seguido por 30 ciclos de amplificación (1 min a 94°C, 1 min a 55°C, 1 min a 72°C).
El amplicón resultante de la PCR («300pb) se purificó usando el sistema de purificación Nucleotrap (Macherey-Nagel, Duren, Alemania). Se digirieron 1 μg de fragmento de PCR purificado y 1 g del plásmido pET24a purificado con 10 unidades de Ndel y 10 unidades de Xhol usando las condiciones recomendadas por el proveedor (Roche Diagnostics, Mannheim, Alemania). Los fragmentos de restricción se separaron con un gel de agarosa al 0,8% (Sambrook y col. (1989)) y los fragmentos correspondientes al Tpl7 (»300pb) y los vectores pET24a («5300pb) se escindieron y se sometieron a purificación en gel usando el sistema de purificación Nucleotrap (Macherey-Nagel, Duren, Alemania). Ambos fragmentos se ligaron usando la T4 DNA ligasa (Roche Diagnostics, Mannheim, Alemania) con las condiciones recomendadas por el proveedor. La reacción de unión se usó para transformar E. coli TOPlO químicamente competente (Invitrogen SA, Barcelona España) y los transformantes se seleccionaron en placas LB (Sambrook y col. (1989)) complementadas con 100 g/ml of ampicilina (Roche Diagnostics, Mannheim, Alemania). Se preparó ADN plasmídico para 10 clones individuales y se analizó mediante digestión con endonucleasas de restricción usando Ndel y Xhol. Ocho de 10 clones contenían el plásmido recombinante pET24a-Tpl7 correcto. La secuencia de un clon plasmídico se verificó mediante secuenciación de ADN (Centro de secuenciación de ADN, UAB, Barcelona, España) y posteriormente se usó para transformar la cepa de expresión E. coli BL21 (DE3) Rosetta (Novagen, Madison,
WI) . La cepa resultante se llamó EcBK633 (véase la Figura 7).
Se indujo el crecimiento de la E. coli EcBK633 recombinante en un biorreactor de 5 litros en caldo 2xYT con ampicilina (Roche Diagnostics, Mannheim, Alemania). El cultivo se indujo con IPTG ImM (Roche Diagnostics, Mannheim, Alemania) durante cuatro horas. Las células se recogieron y se resuspendieron en
Tris 5OmM (pH 8,5) con inhibidores de proteasa (Sigma-Aldrich Madrid, España) y 0,6mg/ml de lisozima de pollo (Sigma-Aldrich, Madrid, España). Tras incubar durante 45 minutos, las células se sometieron a ultrasonidos y se centrifugaron a 30.100 g. La Tpl7-HIS recombinante se purificó del sobrenadante mediante cromatografía de afinidad de ion metálico, usando una resina cargada con níquel
(Chelating HP; Amersham, Cerdanyola, España) y una elución en gradiente de imidazol 10 - 20OmM (Merck, Darhmstadt, Alemania) e imidazol 50OmM, como recomienda el proveedor. Las fracciones recogidas se analizaron mediante electroforesis en gel y Western Blot. Electroforesis y análisis de Western Blot Las fracciones cromatográficas y los marcadores proteicos de peso molecular
(Véase Blue Plus II™, Invitrogen, Barcelona, España) se separaron por electroforesis a través de dos geles idénticos de SDS-PAGE al 15%, como describen Sambrook y col. (1989). Posteriormente, se tiñó un gel con Azul brillante de Coomasie R250 (Merck, Darhmstadt, Alemania) para detectar la proteína total. Como se muestra en la figura 8 A, en la fracción correspondiente a la proteína Tp 17 purificada se observaron dos bandas principales (14kDa y 17kDa). Las proteínas del otro gel se electrotransfirieron a una membrana Immobilon™ P PVDF (Millipore Corp., Bedford, Massachusetts), como recomienda el proveedor. Después la membrana se incubó durante 1 hora a temperatura ambiente (18-22°C) en 5 mi de Blotto™ (BioRad, Hercules, California) con PBS, 0,05 % p/v de Tween y 10% p/v de leche desnatada desgrasada en polvo (PBST). Después, la membrana se procesó de la siguiente forma: (1) tres lavados de 10 minutos con PBST, (2) 1 hora de incubación a temperatura ambiente (18-22°C) en presencia de 10 mi de un suero humano de un paciente con sífilis diluido 1/200 en Blotto™, (3) tres lavados de 10 minutos con PBST, (4) 1 hora de incubación a temperatura ambiente con 10 mi de conjugado de fosfatasa alcalina, antisuero policlonal humano de conejo (BioRad, Hercules, California, EE.UU.) diluido 1/2000 en PBST, (5) tres lavados de 10 minutos con PBST, y (6) una incubación final con 5 mi de NAT/BCIF sustrato cromogénico de fosfatasa alcalina (Sigma-Aldrich, Madrid, España) hasta la aparición de color. Como se muestra en la Figure 8B, este ensayo detecta la unión de IgG humana a la proteína de 17kDa (Tpl7-HIS) pero no a la proteína de 14kDa. Secuenciación de N-Terminal
La fracción cromatográfica que contiene la Tpl7-HIS purificada con la proteína contaminante (14kDa) y un marcador proteico de peso molecular (Véase Blue Plus II™, Invitrogen SA, Barcelona, España) se separó mediante electroforesis a través de un gel SDS-PAGE al 15%, como se describe en Sambrook y col. (1989). Posteriormente, las proteínas en el gel se electrotransfirieron a una membrana Immobilon™ P PVDF (Millipore Corp., Bedford, MA) usando las directrices de los proveedores. La membrana se tiñó con azul brillante de Coomassie R250 y las dos bandas se cortaron y secaron para el análisis de secuenciación. El análisis del N- terminal mediante degradación automática de Edman se realizó en un secuenciador Beckman LF3000 con un analizador de aminoácidos PTH (System GoId, Beckman Coulter, Fullerton, California). Las secuencias obtenidas fueron:
NH2-VS(C)TTV-COOH para la proteína de 17KDa (SEC ID N°:35). Nm-KVFGR(C)ELAA-COOH para la proteína de 14KDa (SEC ID N°:36).
Como se muestra en la Figura 8B, la secuencia N-terminal de la proteína de 17kDa correspondía a la de Tp 17 de Treponema pallidum y la secuencia de la proteína de HkDa correspondía a la lisozima de pollo. EJEMPLO 2: Detección por Far Western de la unión de Tpl7 a la lisozima de pollo y humana
La observación de que el antígeno de la proteína de 17 kDa de T. pallidum (Tp 17) purifica al mismo tiempo que la lisozima de pollo era una fuerte sugerencia de la existencia de una interacción física directa entre ambas proteínas. Para comprobar esta hipótesis se realizó un ensayo de interacción por transferencia Far- Western lisozima-proteína. El ensayo se resuma en la Figura 5 y comprende, en general, las tres etapas siguientes: (1) inmovilización de la lisozima purificada en una membrana; (2) colocar como sonda en la membrana un ligando con probabilidad de unirse directamente a la lisozima; y (3) inmunodetección de la unión lisozima- ligando. A continuación se presenta un procedimiento experimental detallado.
Detección mediante transferencia Far Western Blotting de las interacciones Lisozima-proteína Tp 17
La lisozima blanca de huevo de gallina y la lisozima de leche de mama humana purificadas se obtuvieron de Sigma-Aldrich (Madrid, España). Dos series de fracciones alícuotas con 1 μg, 5 μg y 10 μg de lisozima purificada y un marcador proteico de peso molecular (Véase Blue Plus II™, Invitrogen SA, Barcelona, España) se separaron electroforéticamente a través de un gel de SDS-PAGE al 4- 12% usando las condiciones recomendadas por el proveedor (Invitrogen). Después el gel se procesó para realizar la transferencia Western, como se describen en Sambrook y col. (1989) según procedimientos conocidos en la técnica, y las proteínas se electrotransfirieron a una membrana Immobilon™ P PVDF (Millipore Corp., Bedford, Massachusetts). La presencia de lisozima inmovilizada en la membrana de PVDF se valoró mediante tinción durante 1 minuto con colorante Ponceau S (Sigma-Aldrich, Madrid, España) y después se quitó el tinte mediante lavado enérgico durante 5 minutos con agua desionizada. La membrana se dividió en dos, conteniendo cada porción una marca de proteínas y tres cantidades de lisozima de pollo o humana (1 μg, 5 μg y 10 μg por carril). A continuación se incubó cada membrana durante 16 horas a 4°C en 5 mi de TBST (Tris-HCl 10 mM, pH 8,0, NaCl 150 mM, 0,05 % peso/vol de Tween 20™,) complementado con 5% (peso/vol) de leche desnatada desgrasada en polvo SVELTESSE™ (NESTLÉ, ESPAÑA, Barcelona, España) (para preparar leche TBST). Después, las membranas se procesaron por separado de la siguiente forma: (1) tres lavados de 1 minuto con 10 mi de TBST, (2) 1 hora de incubación a temperatura ambiente (18-22°C) en presencia de 10 mi de lOOmg/ml de la proteína de rasión GST-Tp 17 (Akin y col. (1993)) o una proteína control GST-Tρ47, (Hsu y col. (1989) Infecí. Immun. 57:196- 203; Weigel y col. (1992) Infecí. Immun. 60:1568-1576) (3) tres lavados de 10 minutos con 5 mi de TBST, (4) incubación de 30 minutos a temperatura ambiente con 10 mi de un suero policlonal antiGST de cabra (Amersham Biosciences, Cerdanyola, España) diluido al 1/7500 con leche TBST, (5) tres lavados de 10 minutos con 5 mi de TBST a íemperatura ambiente, (6) 1 hora de incubación a temperatura ambiente con 10 mi de un conjugado-fosfatasa alcalina, suero policlonal anticabra de conejo (Dako AJS, Glostrup, Dinamarca) diluido al 1/5000 en leche TBST, (7) tres lavados de 10 minutos con 5 mi de TBST y (8) incubación de minutos con 5 mi de sustrato cromogénico de fosfatasa alcalina de Nitroazul tetrazolio/Bromo Cloro Indolil Fosfato (NAT/BCIF) (Sigma-Aldrich, Madrid, España) hasta la aparición de color..
El ensayo anterior detectó la unión de la proteína de fusión GST-Tp 17 a la lisozima de pollo y humana (banda del4 kDa en las Figuras 9B y 9D, respectivamente. Es más, la unión de GST-Tp 17 a la lisozima es raerte, ya que resistió numerosos lavados en presencia de detergeníe (Tween 20™ al 005%). Cuando la membrana se incubó con el aníígeno conírol GST-Tp47 no se deíectó ninguna señal (Figuras 9 A y 9C), demostrando que la interacción entre TpI 7 y la lisozima es específica y no implica a la fracción GST, compartida por ambas, GST- TpI 7 y GST-Tp47. Estos resultados demuesíran que (i) el aníígeno Tpl7 de T. pallidum se une con fuerza y de forma específica a la lisozima humana y de pollo, y (ii) esta propiedad está contenida entre residuos 22 a 156 de Tp 17 (los números representan la secuencia peptídica de Tpl7 depositada bajo el número de referencia P29722 (SEQ ID NO:31)). Este ensayo se usa para caracterizar nuevas proteínas de unión a lisozima así como para identificar los imitantes de lisozima incapaces de unirse al inhibidor conocido de la lisozima. Por el contrario, este ensayo se usa para detectar los imitantes de Tp 17 incapaces de unirse o asociarse con la lisozima.
Asimismo, este ensayo se usa para detectar sustancias (por ejemplo, péptidos, proteínas, fármacos, anticuerpos, ácidos nucleicos, PNA5 etc.) que interfieren en la unión de lisozima a su inhibidor conocido.
EJEMPLO 3: El antígeno de la proteína Tp 17 de T. Pallidum inhibe la actividad antibacteriana de la lisozima humana y de pollo Las lisozimas son agentes antibacterianos bien caracterizados que se encuentran en las superficies mucosas y en los líquidos biológicos. Dada su potente actividad enzimática acetil-muramidasa, las lisozimas son capaces de hidrolizar el péptidoglucano de la pared celular, matando por tanto muchas bacterias patogénicas. La tuerte unión entre Tp 17 y la lisozima humana sugirió que esta unión puede alterar la actividad antibacteriana de la lisozima. Esta hipótesis es compatible con la observación de que (i) T. pallidum es un patógeno mucoso e (ii) está en contacto con lisozima humana en su nicho ecológico, a lo largo de su ciclo de vida infeccioso.
Para comprobar esta hipótesis, se analizó la actividad antibacteriana de la lisozima humana y de pollo, en presencia o ausencia de GST-Tp 17, usando un equipo de ensayo de lisozima EnzCheck® (Molecular Probes, Eugene, Oregón). El ensayo comprende el uso de células bacterianas de Micrococcus lysodeikticus marcadas con fluoresceína como sustrato fluorescente de lisozima. En esta bacteria Grampositiva, la capa de péptidoglucano está directamente accesible a la lisozima, y se ha marcado con fluoresceína de una forma tal que la fluorescencia se templa de forma natural. Tras la hidrólisis de la lisozima, se suaviza la inactivación y la fluoresceína se libera en una cantidad proporcional a la actividad de la lisozima. Se usó el siguiente protocolo experimental. Ensayo de inhibición de lisozima
Una reacción típica de 100 1 consistió en 25 1 de solución de lisozima (10 unidades por lisozima de pollo o 50 unidades de lisozima humana, disueltos en agua desionizada), 25 1 de la solución de proteínas de prueba y 50 1 de una suspensión de Micrococcus lysodeikticus (50 μg/ml) marcada con fluoresceína. La reacción se incubó durante 45 minutos a 37°C y se midió la fluorescencia ( eχc.= 485 nm; em¡. = 520 nm) usando un lector de fluorescencia de placas multipocillo modelo FLx800 (Bio TEK instruments, Winoosky, Vermont) equipado con un software de adquisición de datos KC júnior (Bio TEK Instruments, Winoosky, Vermont). Cada punto experimental se expresó como la media y la desviación estándar correspondiente a la lectura de tres pocilios independientes. Los pocilios que contenían 50 1 de agua desionizada y 50 1 de Micrococcus lysodeikticus marcados con fluoresceína se usaron como blanco. Para variar la concentración de la proteína de prueba de 83,5 a 1,3 g/pocillo se usaron dos diluciones en serie a la mitad de la proteína de prueba.
Como se muestra en la Figura 10, la actividad acetil muramidasa de las lisozimas humana y de pollo se inhibieron fuertemente (> 85% de inhibición) por la adición de tan poco como 1,3 μg/pocillo de la proteína de fusión GST-TpI 7 . En cambio, la proteína de fusión control GST-Tp47 no ejerció ningún efecto inhibidor sobre la actividad enzimática acetil muramidasa de la lisozima tanto humana como de pollo. Estos datos demuestran que Tp 17 inhibe específicamente la actividad antibacteriana de las lisozimas humana y de pollo y no depende del resto GST. Además, este ensayo se usa para caracterizar nuevos inhibidores de lisozima así como para identificar mutantes de lisozima incapaces de unirse a su inhibidor conocido y/o insensibles a la inhibición por Tpl7, Ivy, u otras proteínas similares a Tp 17. Este ensayo también proporciona una detección útil de sustancias (por ejemplo, péptidos, proteínas, fármacos, anticuerpos, ácidos nucleicos o PNA, etc.) que interfieren en la inhibición de la actividad antibacteriana de lisozima. EJEMPLO 4: Determinante estructural requerido para la unión de Escherichia CoIi
Ivy a la lisozima de pollo
Para identificar las regiones polipeptídicas implicadas en la unión de Tp 17 de T. pallidum a la lisozima y la inhibición de la actividad acetil muramidasa de la lisozima, se investigó en bases de datos biológicas en busca de polipéptidos acerca de los que ya se había descrito que inhibían la actividad acetil muramidasa de la lisozima. Una búsqueda en la base de datos de PubMed del Instituto Nacional de Salud usando los términos "lisozima" e "inhibidor" como palabras clave, identificó una proteína de Escherichia coli llamada Ivy (por inhibidor de lisozima de vertebrados), de la que se había publicado que se unía e inhibía la actividad acetil muramidasa de las lisozimas humana y de pollo (Monchois y col. (2001) J. Biol.
Chem. 276:18437-18441)). Esta proteína era de interés ya que (i) es de tamaño similar (polipéptido maduro de 14 kDa) a la Tp 17 madura (polipéptido maduro de 15kDa) e (ii) una estructura cristalina de Ivy en forma de complejo con la lisozima de pollo estaba disponible en el banco de datos de proteínas PDB en el la Research Collaboration for Structural Bioinformatics (RCSB) con el número de referencia
IGPQ. Sin embargo, como se representa en la Figura 1 IA, la proteína Ivy comparte menos de un 21 % de la secuencia de aminoácidos con Tp 17 (como determina el algoritmo de Multalin (http://prodes.toulouse.inra.fr/multalin/multalin.html> de alineación de múltiples secuencias) y no se pudo deducir ningún motivo peptídico obvio de alineaciones de secuencias polipeptídicas. La estructura cristalina en tres dimensiones de la Ivy/lisozima de pollo se examinó para buscar residuos localizados en la interfase entre ambas moléculas. Se usó el visor Cn3D de la estructura molecular en tres dimensiones (NCBI, ht1p://www.ncbi.nlm.nih.gov/Structure/CN3D/cn3d.slitml) para analizar las interacciones moleculares entre Ivy y la lisozima de pollo. En los siguientes ejemplos, toda la numeración se refiere y corresponde a los datos archivados con los siguientes números de referencia NCBI : P00698 para la lisozima de pollo (SEC ID
NO:311) , NP_000230 para la lisozima humana (SEC ID NO:302), P45502 para Ivy de E. CoIi (SEC ID NO:312) y P29722 para Tpl7 (SEC ID NO:31) de T. pallidum.
Como se representa en la Figura 1 IB, se identificaron tres zonas de posible contacto de la lisozima de pollo con Ivy. Las correspondientes secuencias peptídicas son:
Péptido
Figure imgf000071_0001
(SEC ID NO:37) Péptido II: Nm85-CK]PHD]CG91-COOH (SEC ID NO:38) Péptido III: NH2145-GS|LEÑTHPDGFN155-COOH (SEC ID NO:39) El péptido II exhibió una estructura en forma de dedo compuesta por un puente disulfuro cys-cys cerrando en ambos extremos un bucle peptídico que comprende un motivo KPHD (SEC ID NO:40; Figure 14A). Un análisis refinado de los aminoácidos presentes en este bucle reveló dos fuertes interacciones electrostáticas no covalentes: entre H88-ivy y E53-ChkcLys, y entre D89-ivy y R132-chkcLys- El átomo de nitrógeno de H88-1Vy interaccionaba con el átomo de oxígeno de
E53-chkcLys y el átomo de oxígeno de D89_ivy interaccionaba con el átomo de nitrógeno de R132-ChkcLy (Figura 12). Usando el software informático de visión en 3-D Mol (Vector NTI suite 8.0, Informax, Frederick, Maryland), la distancia entre los centros atómicos se midió a 2,56 Á (1 angstrom = 10"10 metros) en la interacción de H88-ivy / E53-ChkcLys y a 2,46 Á en la interacción de D89-IVy / Ri32-chkcLys • La naturaleza
(atracción electrostática entre los residuos de las cadenas laterales) y la proximidad (en el intervalo de 2,4-3,4 Á) de los centros atómicos indicaron la presencia de un tipo determinado de enlace no covalente, denominado "puente salino." Esta observación fue interesante porque la mayoría de los puentes salinos se producen en depresiones relativamente libres de agua o en las interfases biomoleculares en las que no hay agua. (Petsko y col. (2003) Protein Structure and Function. Lawrence y Robertson (Eds.) New Science Press Ltd., GB).
Las Figuras 13A-13D ilustran que el puente salino que implica D89.^ 2S Ri32-chkcLys se expuso parcialmente a las moléculas de agua del disolvente (Figuras 13C y 13D), mientras que el puente salino que implica H88-JVy 2S E53-ChkcLys se ocultó por completo y, en consecuencia, protegido del disolvente por la interfase proteína- proteína (Figuras 13 A y 13B). Dado que la hidratación de un puente salino reduce su tuerza de unión, el puente salino de H88-IVy ^ E53-ChkcLys es menos probable que se rompa a causa del disolvente que el puente salino de D89.^ ^ R-m-chkcLys • Un hecho interesante es que las Figuras 13A y 13B también muestran que el puente salino de H88-ivy 2S E53-ChkcLys bloqueaba la accesibilidad al ácido glutámico 53 (E53) de la lisozima de pollo. El ácido glutámico número (E53) y el ácido aspártico 71 (D7i) en la secuencia de la lisozima de longitud total corresponden a los residuos E35 and D53 de la cadena peptídica de la lisozima madura. Como se representa en las Figuras 3A y 3 B, E53 junto con D53 en la lisozima de pollo madura (e en la lisozima humana) están conservados en todas las secuencias de lisozima conocidas y se piensa que son los dos residuos catalíticos requeridos para la hidrólisis del péptidoglucano (Malcomí y col. (1989) Proc. Nati. Acad. Sci. USA 86:133-7).
En conjunto, estos datos demuestran que Ivy establece dos puentes salinos con la lisozima: uno esencial para la especificidad y la estabilidad de la interacción (H88-ivy 2S E53_ChkCLys) así como para la inhibición de la actividad antibacteriana de la lisozima mediante impedimento estérico, y el otro (D89.^ 2S R132-ChkcLys) implicado hasta un punto menor, en la estabilización de la interacción lisozima/inhibidor. Debido a la estricta conservación de los residuos E35 y D53/D52 D52 (la numeración se refiere a la secuencia de la lisozima madura) entre las especies, estas observaciones demuestran que la Tpl7 inhibe un amplio abanico, si no todas, de lisozimas.
EJEMPLO 5: Identificación de una secuencia peptídica consenso compartida por inhibidores proteicos de lisozimas de mamíferos
El Ejemplo 4 demostró que la secuencia del péptido II NH2-CKPHDCG-COOH (SEC ID NO: 38) es necesaria para la unión a y la inhibición de la actividad enzimática de la lisozima. Un examen detallado de la secuencia polipeptídica de
TpI 7 identificó dos secuencias candidatas que posiblemente median en la unión y en la inhibición de las lisozimas humana y de pollo. Ambas secuencias, denominadas Tpl7_jpepl y Tpl7jpep2, se enumeran a continuación: Tpl7_pepl : NH2-29C P H A G K A K A E KV E C42-COOH (SEC IDS NO:41) Tpl7_pep2: NH2-114K A P H E K E120-COOH (SEC ID NO:42)
El Tpl7jpepl está muy relacionado con el motivo NH2-85CKPHDCG91-COOH (SEC ID NO:38) de la proteína Ivy de E. coli Ivy pero difiere por la presencia de un trozo de nueve aminoácidos separando el residuo de histidina del residuo de ácido aspártico. Como se muestra en la Figura 14B5 y como se ha encontrado para el motivo Ivy (Figura 14A), los puentes de las dos cisternas adyacentes probablemente acercan en el espacio los residuos críticos de histidina y ácido aspártico, posiblemente en una configuración capaz de poner en contacto los residuos E53 y R132 de la lisozima. Aunque en la actualidad se desconoce la función del posible bucle de 9 aminoácidos de Tp 17, su composición sugiere que es altamente hidrofílico y probablemente inmunogénico. Los residuos de lisina cargados positivamente contenidos en este bucle de 9 aminoácidos pueden contactar directamente con una superficie de lisozima cargada negativamente, proporcionando también un punto de anclaje adicional para reforzar la unión. Alineando el péptido Tpl7jpepl con el motivo de unión a la lisozima de la proteína Ivy, se obtuvo la secuencia consenso CX1PHXn X2C (SEC ID NO:43), en la que X1 es al menos un aminoácido, está ausente o un enlace peptídicos, Xn es de cero a nueve aminoácidos o un enlace peptídico y X2 es ácido glutámico o ácido aspártico.
Aunque sin las dos cisternas adyacentes, el Tpl7jpep2 también está muy relacionado con el motivo NH2-CKPHDCG-COOH SEC ID NO:38 de la proteína Ivy de E. coli, ya que comparte los residuos PH críticos seguidos por un residuo ácido (D/E). La recopilación de los datos estructurales, la información bibliográfica y las búsquedas en bases de datos reveló una secuencia consenso de unión a la lisozima [CKVA] [ACK] P H [AED] [CGK] (SEC ID NO:3), escrito usando el formato syntax de patrón peptídico universal PROSITE.
Se determinaron secuencias consenso adicionales y se escribieron usando el formato syntax de patrón peptídico universal PROSITE , que está disponible en el
Sistema De Análisis Proteico de Expertos (base de datos SWISSProt), de la siguiente manera:
(a) XnPHXn (SEC ID NO: 1), en la que Xn es al menos un aminoácido.
(b) CX1X2X3PHX4X5X6X7XSXgXIoXIiXIaXiSC (SEC ID NO:2), en la que X1 a X13 son cualquier aminoácido, ningún aminoácido o un enlace peptídico.
(c) X1CPHAG (SEC ID NO:25), en la que X1 es C o V.
Las formas de realización preferidas de polipéptidos similares a Tp 17 se ilustran en las Figuras 1 y 2. EJEMPLO 6: Identificación In Silico de proteínas putativas de unión a lisozima e inhibidores
Dada la baja conservación global de la secuencia peptídica compartida por las proteínas Ivy de E. Coli y TpI 7 de T. pallidum, es probable que motivos de unión a la lisozima previamente no detectados estuvieran presentes en el genoma de otros microorganismos patogénicos. Para comprobar esta hipótesis, las secuencias consenso definidas en el Ejemplo 5 se usaron para examinar las bases de datos de proteínas (Swiss-Prot, TrEMBL, TrEMBLnew y PDB) ussando el algoritmo ScanProsite (http://us.expasy.org/tools/scanprosite/). Las Figuras IA, IB y 2 ilustran que las proteínas que contienen una señal peptídica que se ajusta a las secuencias consenso estaban presentes en numeroso patógenos humanos y animales.
Las proteínas de T. denticola, B. thetaiotaomicron, C. burnetti, H. influenzae, los serogrupos A y B de N. meningitidis, V. cholerae, V. vulnificus, H. ducreyi, S. typhi, L. pneumophila, S. aureus, N. gonorrhoeae y B. pertus se pueden agrupar siguiendo la siguiente secuencia consenso: CX(0,3)PHX(0,14)C, que corresponde a
Cys Xaat Xaa2 Xaa3 Pro His Xaa_t Xaa5 Xaaβ Xaa7 Xaa8 Xaa9 Xaa10 Xaaπ Xaa12
Xaao Xaa14 Xaa15 Xaa16 Xaa17 Cys (SEC ID NO: 176), donde Xaa es cualquier aminoácido o está ausente.
Las proteínas (de P. gingivalis y H. pylori) son variantes ligeramente atípicas que podrían agruparse en la siguiente secuencia consenso: CX(0,3)HX(0,10)C que corresponde a Cys Xaai Xaa2 Xaa3 His Xaa4 Xaa5 Xaa6 Xaa7 Xaa8 Xaa9 Xaa10 Xaaπ Xaa12 Xaa13 Cys (SEC ID NO: 175), donde x es cualquier aminoácido o está ausente. Este resultado es interesante, ya que todos estos microorganismos son patógenos de mucosas durante parte o la mayoría de su ciclo de vida infeccioso. De un interés particular era la presencia de un motivo peptídico consenso en el extremo carboxi de la glucoproteína gJ del virus del Herpes Simple tipo 2. Aunque en la actualidad se desconoce la función de esta proteína, está codificada por el gen Us5 presente en la región corta única (Us) del virus. Se sabe que esta región contienen la mayoría de las proteínas implicadas en la virulencia y las interacciones mediadas proteína-proteína con las proteínas del huésped humano, respaldando un papel de gJ en la patogenia de la infección por VHS. Un hecho interesante es que en varias publicaciones se ha documentado que la lisozima tiene un fuerte efecto inhibidor tras la infección por V HS2 y sus manifestaciones clínicas (Cisani y col. (1989)
Microbios. 59:73-83; Oevermann y col. (2003) Antivir. Res. 59:23-33). La proteína gJ del VHS-2 también es una proteína de unión/inhibidora de la lisozima. Sorprendentemente, el motivo de unión consenso de la lisozima no existe en la proteína gJ del VHS-I estrechamente relacionado (Figura 15). Esta observación proporciona una posible explicación para las observaciones clínicas que documentan un tropismo preferencial, pero no exclusivo, del VHS-I por la región orofacial, mientras que el VHS-2 se encuentra con más frecuencia en la mucosa genital, rica en lisozima (Lowhagen y col. (2002) Acta Derm. Venereol. 82:118-21; Bruisten y col. (2003) Curr. Womens Health Report 3:288-98). Además, es interesante observar que dos patógenos genitales, un virus (VHS-2) y una bacteria (T. pallidum), comparten una secuencia peptídica inhibidora de lisozima común. Estas observaciones demuestran que la gJ, sola o combinada con lisozima humana, es útil para discriminar las infecciones por VHS-I y por VHS -2 usando ensayos de diagnóstico diferencial serológico o virológico. También proporciona composiciones y procedimientos para tratar las infecciones por Herpes simple con mutantes de lisozima que pueden evadir la inhibición por gJ y/o miembros de las familias Ivy y Tpl7. EJEMPLO 7: Identificación de mutaciones puntuales que desestabilizan la interacción proteína-proteína de la lisozima /inhibidor Está ampliamente reconocido que las interacciones proteína-proteína dependen de la complementariedad estructural y fisicoquímica. La irregularidad y la heterogeneidad local de las superficies proteicas capacitan la unión específica y la asociación con ligandos y proporciona una base para la formación de la estructura cuaternaria. El ensamblaje entre una superficie proteica y otra depende de algo más que de su forma. Se extiende a los débiles enlaces fisicoquímicos que mantienen los complejos juntos: enlaces covalentes, puentes de hidrógeno, puentes salinos, interacciones electrostáticas de intervalo amplio e interacciones de Van der Waals. Esta propiedad de complementariedad es universal, ya sea entre una proteína y una molécula pequeña o entre una proteína y otro tipo de macromolécula (Petsko y col. (2003)). Las mutaciones localizadas en la secuencia codificadora de la lisozima, seleccionada de manera que no afecten a las actividades acetil muramidasa y antimicrobiana, desestabilizan la interacción lisozimas/inhibidor y confieren resistencia a la inhibición por proteínas patógenas tales como el antígeno Tp 17 de T. pallidum o miembros de la familia Ivy . En una forma de realización, la lisozima imitante retiene sustancialmente la actividad microbiana deseada (p. ej., al menos aproximadamente un 30%, 50% o incluso un 80%) de la lisozima correspondiente de tipo salvaje. Tales lisozimas mutantes representan nuevas e interesantes herramientas para el tratamiento de enfermedades infecciosas. Asimismo son sustituías de la lisozima natural derivada de huevo de gallina usada en las preparaciones medicinales disponibles en el mercado y tienen una mejor potencia y espectro de actividad. A continuación figura una lista de fármacos potenciales con más probabilidad de mejorar con el uso de tales mutantes de lisozima resistentes a la inhibición:
Fármaco comercializado Laboratorio farmacéutico
LYSOPAINE ORL Boehringer Ingelheim LYSO-6 UCB Health Care GLOSSITHIASSE Laboratorio Jolly-Jatel
CANTALENE Laboratorio Cooper HEXALYSE Laboratorio Bouchara-Recordati
Tales mutantes de lisozima se obtienen usando ambos enfoques, dirigido y aleatorio.
Identificación dirigida de los mutantes de lisozima resistentes a la inhibición deducida a partir de los datos cristalográficos
Dado su elevado punto isoeléctrico (pl), la lisozima humana(pl teórico= 9,28) y la lisozima de pollo ( pl teórico = 9,32) exhiben una tuerte carga positiva a los valores fisiológicos de pH comprendidos entre pH 3 y pH 7. Todos los inhibidores de la lisozima conocidos tienen valores bajos de pl. Por ejemplo, las proteínas Ivy maduras (Monchois y col. (2001) J. Biol. Chem. 276:18437-18441) de E. coli (pl = 5,51) y P. aeruginosa (pl = 5,69), así como la proteína Sic madura (Fernie-King y col. (2002) Infecí. Immun. 70:4908-4916) de S. pneumoniae (pl = 4,39) están cargados negativamente al pH fisiológico. Se presentó la hipótesis de que los residuos de lisozima cargados positivamente presentes en el área de contacto lisozima/inhibidor son blancos atractivos para la mutagénesis. La producción de un muíante de lisozima con una superficie de contacto cargada negativamente podría dar lugar a una repulsión electrosíáíica impidiendo la unión del inhibidor. Dado que esías muíaciones no afectan a los residuos catalíticos de la lisozima, es probable que produzcan mutaníes de lisozima activos, no inhibidos por patógenos.
La estructura cristalina de Ivy de E. coli/lisozima de pollo con el número de referencia PDB IGPQ, así como la estructura cristalina de Ivy de P. aeruginosa depositada con el número de referencia PDB IHKE, se estudiaron con un lector molecular VNTI 3D. Se identificaron residuos críticos en cada lisozima se realizaron las siguieníes muíaciones puntuales que alteran la unión del inhibidor:
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Introducción de mutaciones puntuales mediante mutagénesis dirigida a sitio:
Las mutaciones se introducen usando el kit de mutagénesis dirigida de QuikChange® Site-Directed Mutagénesis , siguiendo las instrucciones recomendadas por el proveedor (Stratagene, La Jolla, CA). Brevemente, el kit QuikChange® Site- Directed Mutagénesis se usa para hacer mutaciones puntuales, sustituir aminoácidos y delecionar o insertar uno o varios aminoácidos. El procedimiento QuikChange® de mutagénesis dirigida de sitio se lleva a cabo usando la ADN polimerasa de PfuTurbo ® y un ciclador de temperatura. La ADN polimerasa PfuTurbo® replica ambas hebras plasmídicas con una elevada fidelidad y sin desplazar los oligonucleótidos cebadores imitantes. El procedimiento básico usa u vector de ADN bicatenario superenrrollado (ADNds) con un inserto de interés y dos cebadores oligonucleótidos sintéticos que contienen la mutación deseada. Los cebadores oligonucleótidos, cada uno complementario de las hebras opuestas del vector, se extienden durante los ciclos de temperatura por la ADN polimerasa PfuTurbo. La incorporación de los cebadores oligonucleótidos genera un plásmido mutado que contiene mellas alternadas. Tras los ciclos de temperatura, el producto se trata con Dpn I. La endonucleasa Dpn I (secuencia diana: 5 '-Gm 6 ATC-3 ') es específica de ADN metilado y hemimetilado y se usa para digerir el molde de ADN parental y para seleccionar el ADN sintetizado que contiene la mutación. El ADN aislado de casi todas las cepas de E. coli se metila y por tanto es susceptible a la digestión con Dpn I. Después, el vector mellado de ADN que contiene las mutaciones deseadas se transforma en células XLl-Blue supercompetentes. La pequeña cantidad de ADN molde inicial requerida para realizar este procedimiento, la elevada fidelidad de la ADN polimerasa PfuTurbo y el número bajo de ciclos térmicos, todo ello contribuye a la elevada eficiencia de mutación y al menor potencial para generar mutaciones aleatorias durante la reacción.
Aislamiento aleatorio de imitantes de lisozima resistentes a la inhibición usando mutagénesis aleatoria mediada por PCR seguida por una detección selectiva de dos híbridos microbianos
El sistema de dos híbridos se basa en el hecho de que muchos activadores de la transcripción eucariota están compuestos por dos dominios modulares físicamente diferentes: el dominio de unión al ADN (ADN-BD) y el dominio de activación (AD). El ADN-BD se une a una secuencia promotora específica y el AD dirige el complejo de la ARN polimerasa II para transcribir el gen en dirección 3'( downstream) confiriendo un fenotipo seleccionable/detectable. Los dominios actúan como módulos independientes: ninguno solo puede activar la transcripción, pero cada dominio continúa funcionando cuando se fusiona a otras proteínas. Los sistemas comerciales adecuados incluyen el sistema listo para usar BacterioMatch® II Two-
Hybrid System (Stratagene, La Jolla, CA,) o el sistema BD Matchmaker™ system (BD Biosciences Clontech, Palo Alto, CA).
Se expresan la lisozima y la Tp 17, una fusionada al AD y la otra fusionada al ADN-BD. Si las dos proteínas interaccionan, los dominios ADN-BD y AD se acercan estrechamente y activan la transcripción de un gen indicador. Dependiendo del sistema de huésped usado (por ejemplo, bacteria, levadura o mamífero), la interacción se detecta mediante detección selectiva del cambio fisiológico o estructural observable (por ejemplo, el color de la colonia, emisión de fluorescencia, actividad enzimática, etc.). Por ejemplo, los dominios AD y ADN-BD se fusionan con lisozima y Tp 17 respectivamente, se transforman en un huésped microbiano adecuado (por ejemplo, bacteria o levadura), y los transformantes resultantes se examinan en busca de la aparición de colonias azules indicativas de la activación del gen indicador (por ejemplo, beta-galactosidasa). Una vez que se han obtenido los clones, la secuencia de ADN plasmídico que lleva el marco de lectura abierto para la lisozima humana se somete a una extensa mutagénesis aleatoria mediada por PCR.
Los transformantes resultantes se examinan visualmente en busca de mutantes que hayan perdido el color azul y que probablemente tengan una o más mutaciones que perjudican la interacción lisozima/polipéptido similar a Tp 17. Después se extrae el ADN plasmídico de los clones correspondientes y se secuencia. EJEMPLO 8: La lisozima humana y no la de pollo mejora la sensibilidad de los kit de Hemaglutinación usados para el diagnóstico de sífilis
El Ejemplo 3 demuestra que, in vitro, la proteína de 17 kDa Tpl7 de T. pallidum se une fuertemente a las lisozimas humana y de pollo e inhibe fuertemente la actividad antibacteriana de ambas lisozimas. El siguiente experimento demuestra que estas interacciones de unión e inhibición también se producen in vivo durante la infección de superficies mucosas humanas por T. pallidum. Como consecuencia de la unión de Tp 17 a la lisozima, es probable que se formen epítopos nuevos y se expongan al sistema inmunológico. Los pacientes sifilíticos pueden tener una respuesta inmunitaria frente a los epítopos de Tp 17 así como frente a los epítopos compartidos por el complejo Tpl7-lisozima o incluso frente a la lisozima sola, como se muestra en la Figura 4. Para comprobar estos, se añadió lisozima humana o de pollo a los reactivos de hemaglutinación usados para un ensayo diagnóstico de sífilis para detectar los anticuerpos generados frente al complejo, mejorando de este modo la sensibilidad del ensayo. Se observó un aumento de la sensibilidad del ensayo para sífilis que era específico de la lisozima humana. La lisozima blanca de huevo de gallina (L-6876) y la lisozima de leche de mama humana (L-6394) purificadas se obtuvieron de Sigma-Aldrich (Madrid, España). Se añadió una cantidad de lisozima humana y de pollo suficiente para mantener la proporción: 3 μg lisozima / 1 μg Tp 17 al reactivo de hemaglutinación (Biokit SA, Llica d'Amunt, España), preparado de la siguiente manera. Se recogieron eritrocitos de pollo, se fijaron y se recubrieron con GST-Tpl7 (40 g/ml) como se ha descrito antes (Herbert y col. (1979) Passive Haemagglutination With Special Reference to the Tanned CeIl Technique. Handbook of Experimental Immunology (vol. 1), págs 20.1-22.20 (DMWeir (Ed.) Blackwell Scientific Publications (Oxford)); Stefen y col. (1951) J. Exp. Med. 93:107-120; Hirata (1968) J. Immunol. 100:641-46). Un lote de eritrocitos de pollo fijados y recubiertos con
GST-Tp 17 (5 mi) se complementó con 6 1 de lisozima blanca de huevo de gallina (100 g/ 1). Otro lote de eritrocitos de pollo fijados y recubiertos con GST-Tpl7 (1 mi) se complementó con 120 1 de lisozima de leche de mama humana (1 g/ 1). Ambos lotes de eritrocitos sensibilizados se homogeneizaron mediante agitación magnética, durante 30 minutos a temperatura ambiente. La sensibilidad de cada lote se evaluó llevando a cabo una reacción de hemaglutinación usando un conjunto de sueros de sífilis humanos, caracterizada por dar una respuesta dudosa con otros reactivos comerciales de hemaglutinación.
La reacción de hemaglutinación se realizó del siguiente modo. En una placa de microtitulación de fondo redondo (forma de U), se añadieron 25 μl de diluyente
(Syphagen TPHA, Biokit SA, Barcelona, España) al pocilio 1, 100 μl al pocilio 2 y 25 μl a cada uno de los pocilios 3 a 8. Al pocilio 1 se añadieron 25 μl de la muestra. Se mezcló el contenido del pocilio y 25 μl se transfirieron al pocilio 2 y se mezclaron. 25 μl del pocilio 2 al pocilio 3. Después se realizaron diluciones seriadas dobles hasta el pocilio 8. 25 μl del pocilio 8 se desecharon. A los pocilios
3-8 se añadieron 75 μl de reactivo de hemaglutinación (las diluciones finales de la muestra fueron de 1/80 a 1/2560). Los contenidos de los pocilios se mezclaron usando un agitador durante al menos 30 segundos. Se cubrió la placa y se incubó durante 1 hora a temperatura ambiente. Los resultados del ensayo se leyeron aplicando los siguientes criterios. Un resultado se puntuó como positivo cuando se observó una maraña lisa de células cubriendo todo el fondo del pocilio o una maraña lisa de células cubriendo parcialmente el fondo del pocilio y rodeadas de un anillo grueso de células. Un resultado se puntuó negativo cuando se observó un botón de células con una pequeña abertura central o un botón de células con o sin un orificio muy pequeño en el centro. El título de una muestra correspondía a la dilución más elevada que dio una reacción positiva. El punto de corte de esta técnica fue 1/80.
Como se muestra en las Figuras 16A y 16B, la adición de lisozima humana al ensayo mejora la intensidad de la hemaglutinación (es decir, la hemaglutinación se produjo a diluciones más elevadas en presencia de lisozima humana comparada con la ausencia de lisozima) de forma dependiente de concentración. Esta mejora pareció ser específica de lisozima humana porque la adición de lisozima de pollo no aumentó la respuesta. La adición de lisozima humana mejoró de forma drástica la sensibilidad del reactivo de hemaglutinación para sífilis para la detección de anticuerpos que no se detectan en kit que en la actualidad están en el mercado. EJEMPLO 9: La lisozima humana tanto natural como recombinante mejora la sensibilidad de la prueba de Hemaglutinación usada para el diagnóstico de sífilis
La leche de mama humana es la fuente natural de la lisozima humana. Sin embargo, la purificación de la lisozima de este líquido corporal es tedioso debido a: (i) su poca abundancia, (ii) la dificultad para asegurar un suministro regular y reproducible, (iii) la posible contaminación con patógenos sin detectar, así como (iv) intereses sociales y éticos. Por tanto es preferible una fuente recombinante de lisozima humana para usar a escala industrial. Se comparó la potencia de la lisozima natural humana derivada de leche de mama y la lisozima humana recombinante derivada de arroz transgénico. La lisozima natural humana purificada de leche de mama (L-6394; Sigma-
Aldrich, Madrid, España) tenía 101.000 unidades/mg de proteína y un 10% de contenido en lisozima. La lisozima recombinante humana purificada de arroz transgénico (159-53LZ-90P; Ventria Bioscience, Sacramento, California) tenía 187.000 unidades/mg de proteína y un 90% de contenido en lisozima. La definición de unidad para ambas lisozimas es como sigue. Una unidad produce un incremento de la absorbancia a 450 nm de 0,001 por minuto a pH 6,24 a 250C, usando una suspensión de Micrococcus lysodeikticus como sustrato, en una mezcla de reacción de 2,6 mi (recorrido de 1 cm) (Shugar y col. (1952) Biochem. Biophys. 8:302-309). Para que los resultados del experimento sean comparables, se usó una proporción de 594 unidades de lisozima humana / μg GST-Tpl7 de cada una. Se realizó una reacción de hemoaglutinación, como se detalla en el Ejemplo, añadiendo una cantidad equivalente de la lisozima natural o recombinante al reactivo de hemaglutinación para sífilis. La potencia de ambas lisozimas se probó frente a muestras de sífilis positivas y negativas.
Como se ilustra en las Figuras 17A y 17B, 6 de las 10 muestras probadas mostraron una mejora en la sensibilidad del ensayo con la adición de lisozima humana natural (LysN) o recombinante (LysR).
La Figura 18A ilustra que la adición de lisozima humana recombinante a un reactivo de hemaglutinación para sífilis mejoró sustancialmente la sensibilidad del ensayo. En una evaluación de 34 muestras verdaderamente positivas, 14 de las 19 muestras que dieron negativo usando el reactivo que no contenía lisozima, eran de hecho positivas cuando se añadió lisozima a la reacción. Como se ilustra en la Figura 18B, la discriminación visual entre una reacción positiva y negativa se simplifica cuando se añade lisozima humana recombinante al reactivo.
La Figura 19 ilustra el rendimiento (intensidad relativa de hemoaglutinación) de dos reactivos de hemaglutinación, con (reactivo Lys R) o sin (reactivo R) lisozima humana recombinante. En ese experimento el rendimiento del reactivo de hemaglutinación LysR fue mayor que el del reactivo R, exhibiendo para todos los sueros probados (μ=34) un título de aglutinación relativa de entre alrededor de 1 y alrededor de dos veces mayor. La Figura 20 ilustra que la adición de lisozima humana recombinante (LysR) a un reactivo de hemaglutinación para sífilis no da resultados falsos positivos. En una evaluación de 200 muestras del banco de sangre, el resultado medio y la desviación estándar entre ambos reactivos eran muy parecidos. La potencia de la lisozima humana recombinante es por tanto equivalente a la de la lisozima natural de leche de mama. Por tanto, la lisozima recombinante puede sustituir a la lisozima natural para aplicaciones diagnósticas.
EJEMPLO 10: La lisozima humana mejora la sensibilidad de los Mt del ensayo de inmunoabsorción ligado a enzimas (ELISA) usados para el diagnóstico de sífilis
La detección selectiva de sífilis se realiza de forma rutinaria usando ensayos de inmunoabsorción ligado a enzima (ELISA). Estos equipos detectan la unión de anticuerpos antisífílis frente a antígenos de T. pallidum inmovilizados en los pocilios de una placa de microtitulación. La detección de la unión de los anticuerpos antisífilis a la placa se suele llevar a cabo mediante un antisuero marcado enzimátícamente dirigido frente a cadenas Fc de anticuerpo humano (kit de segunda generación) o un antígeno de T. pallidum marcado enzimáticamente (kit de tercera generación). Ejemplos de tales reactivos diagnósticos disponibles en el mercado se enumeran a continuación:
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Detección de anticuerpos frente a sífilis usando un formato de kit de segunda generación
Todos los reactivos usados en este estudio son suministrados por Bioelisa Syphilis 3.0 kit de detección (Biokit S.A., Llica d'Amunt, España). El protocolo usado es el recomendado en el paquete incluido en el kit. Brevemente, muestras de suero o plasma se añaden a los pocilios de una placa de microtitulación. Si en la muestra hay anticuerpos específicos para T. pallidum, forman complejos estables con los antígenos del pocilio. Después de lavar para eliminar el material sin unir, se añade un conjugado de conejo de IgG antihumana y de IgM antihumana marcado con peroxidasa de rábano y, si el complejo antígeno/anticuerpo está presente, el conjugado se une al complejo. Tras un segundo lavado, se añade una solución se sustrato enzimático que contiene un cromógeno. Esta solución se vuelve de color azul si la muestra es positiva. El color azul cambia a amarillo después de bloquear la reacción con ácido sulfúrico. La intensidad del color es proporcional a la concentración de anticuerpo anti-T. pallidum en la muestra. Los pocilios que contenían las muestras negativas permanecieron incoloros..
Detección de anticuerpos frente a sífilis usando un formato de kit de tercera generación
Todos los reactivos usados en este estudio son suministrados por Bioelisa Syphilis 3.0 kit de detección (Biokit S.A., Llica d'Amunt, España). El protocolo usado es el recomendado en el paquete incluido en el kit. Brevemente, la prueba se lleva a cabo incubando muestras de prueba en los pocilios de una placa de microtitulación revestidos con proteínas de T. pallidum (por ejemplo, antígenos Tpl5, Tρl7 o Tp47 recombinantes). Los anticuerpos IgG e IgM específicos presentes en la muestra se unen a los antígenos de la fase sólida. Posteriormente, los pocilios se lavan para eliminar los restos de la muestra de prueba y se añaden antígenos de T. pallidum conjugados con la enzima peroxidasa. El conjugado se une a los anticuerpos específicos capturados. Después de otro lavado para eliminar el material sin unir, se añade una solución de sustrato enzimático y cromógeno. Esta solución se vuelve de color azul si la muestra contiene anticuerpos anti-T. pallidum. El color azul cambia a amarillo después de bloquear la reacción con ácido sulfúrico. La intensidad del color es proporcional a la concentración de anticuerpo anti-T. pallidum en la muestra.
Adición de lisozima humana recombinante
Para el formato de ELISA de segunda generación, se añadió lisozima humana recombinante (Ventria Bioscience, Ventura, CA) a 2,86 μg/ml a las placas de Bioelisa Syphilis 3.0 ELISA Para el kit de tercera generación, se añadió lisozima humana recombinante en el tampón de dilución de la muestra a una concentración de
10,8 μg/ml o en el tampón de dilución de conjugado a una concentración de 1,08 μg/ml.
Como se representa en las Figuras 21A y 21B, cuando se analizaron sueros humanos positivos para sífilis con reactivos de ELISA de Bioelisa Syphilis (segunda generación) y de Bioelisa Syphilis 3.0 (tercera generación), se detectó una ganancia significativa en la intensidad de la señal en presencia de lisozima humana. El aumento en la intensidad de la señal estaba en el intervalo de alrededor de 20% cuando la lisozima se añadió a la placa y los sueros analizados en el formato de segunda generación, y en el intervalo de alrededor de 200% (para 3 de 4 sueros) cuando la lisozima se añadió en el tampón de dilución de la muestra y en el tampón de dilución del conjugado y se procesaron de acuerdo con el formato de tercera generación. Un hecho interesante es que la adición de lisozima no modifica la respuesta de los sueros humanos negativos para sífilis. Estos datos demuestran que la lisozima humana aumenta la sensibilidad de la detección y selección de sífilis con ELISA.
EJEMPLO 11 : Purificación del complejo lisozima humana/Tpl7
El complejo lisozima humana/proteína Tp 17 es muy antigénico y, como se ha descrito antes, es útil en los ensayos diagnósticos . El aislamiento del complejo purificado lisozima humana/Tpl7 facilita la realización de estudios estructurales, tales como cristalización proteica y determinación de la estructura atómica a través de difracción de rayos X. Usando los procedimientos experimentales que se describen a continuación, se obtuvieron las cantidades en mg de complejo lisozima humana purificada/Tpl7-His.
Aislamiento de monómero Tpl7-HIS y dímeros Tpl7-HIS
La proteína Tpl7-His, obtenida como se ha descrito en el ejemplo 1, se purificó más mediante cromatografía de filtración en gel con el fin de separar los monómeros y los dímeros de otras formas agregadas (Figura 22). Una columna HR 16/50 (diámetro 1,6 cm x 60 cm de altura; Amersham Biosciences, Cerdanyola, España). A continuación se inyectaron 2 mi de la muestra con 8 mg de la proteína de fusión Tpl7-HIS y se llevó a cabo la cromatografía a un caudal de 1-1,25 ml/min a presión constante de 0,70 MPa. Las fracciones (1,5 mi) correspondiente a monómeros Tpl7-HIS y a dímeros Tpl7-HIS se recogieron de tres carreras cromatográficas consecutivas y después se agruparon en una fracción monomérica de 8 mi de Tol7-HIS y una fracción dimérica de 6 mi de Tρl7-HIS. Formación del complejo Tpl7-HIS/lisozima humana in vitro Lisozima humana recombinante (obtenida comercialmente de Ventria
Bioscience, Sacramento, CA, EE.UU.) estaba compuesta por proteínas monoméricas altamente homogéneas, como se muestra mediante los resultados del ensayo que se representan en la Figura 23.
Para formar un complejo in vitro, 3,8 mg de monómeros purificados de Tpl7- HIS y dímeros Tpl7-HIS se incubaron por separado durante 30 minutos a 220C sin agitación en presencia de un exceso molar del doble de lisozima recombinante humana purificada (Ventria Bioscience, Sacramento, CA, EE.UU.).
Purificación del complejo Tpl7-HIS/lisozima humana mediante filtración en gel. Como se muestra en la Figura 24, los complejos Tpl7-HIS/Iisozima humana se separaron de monómeros sin ensamblar mediante filtración en gel en un gel de Superosa 12 HR 16/50 como se ha descrito antes. Las fracciones correspondientes al pico de Tpl7-HIS/lisozima humana se recogieron y concentraron usando dispositivos Centricon Plus 20 (UFC2LGC08, The Millipore Corporation, Bedford, MA, EE.UU.) con un punto de corte en 10 kDa. Durante la filtración en centrífuga se intercambió tampón mediante lavado con tres volúmenes de columna (10 mi) de Tris HCl 10 mM, NaCl 50 mM, pH 8,0. Las muestras finales de Tpl7-HISmonómeros/Hsozima humana y Tpl7-HISdímeros/h'sozima humana se recuperaron a 1,62 mg/ml y 1,57 mg/ml, respectivamente. El rendimiento final de recuperación de proteína fue del 60% para los complejos Tpl7-HISmθnómeros/lisozima humana y del 44% para los complejos Tpl7-HISdímeros/h'sozima humana EJEMPLO 12: Procedimiento para descubrir nuevas proteínas similares a Tpl7
El Tpl7 y las proteínas similares a Tpl7 comparten la capacidad para unirse a la lisozima humana. Según esta observación, se dilucidaron procedimientos genéricos para proporcionar la detección de proteínas similares a Tp 17 en extractos proteicos totales de organismos patogénicos. En una forma de realización, la lisozima humana conjugada con un marcador detectable se híbrida a una muestra proteica. La unión de la lisozima identifica un polipéptido similar a Tp 17 en la muestra. Preparación de conjugado lisozima humana-peroxidasa de rábano (HuLYS-POD) Los conjugados de lisozima humana-peroxidasa de rábano se produjeron mediante la mezcla de 9,72 mg de lisozima humana recombinante (159-53LZ-90P, Ventria Bioscience, Sacramento, CA, EE.UU.) y 13,6 mg de peroxidasa activada (POD) (1.428.861; Roche, Mannheim, Alemania) en un volumen total de 3,5 mi de tampón carbonato (carbonato sódico/hidrogeno carbonato 50 mM, pH 9,55). La reacción de conjugación se llevó a cabo durante 2 horas a 250C en un baño de agua con agitación manual cada 30 minutos. La reacción se terminó mediante la adición sucesiva de 364 1 de trietanolamina 2M (108379; Merck, Darmstadt, Alemania) y 455 1 de borohidruro sódico (45,288-2; Sigma Aldrich Chemie, Steinheim, Alemania) a una concentración de 4 mg/ml en agua desionizada. La solución resultante se agitó manualmente durante 15 segundos y después se incubó durante 30 minutos a 2-80C. Después se añadieron 227 1 de trietanolamina 2M y la mezcla se incubó durante 2 horas a 2-80C. Después, se añadieron 91 1 de glicina IM (104201; Merck, Darmstadt, Alemania) y la solución se sometió a diálisis durante 15 horas contra tampón TSG (Tris-HCl 20 mM, NaCl 150 mM, Glicina 10 mM, pH 7,5. A continuación, la solución se aclaró mediante centrifugación durante 30 minutos a
15.000 g. Se recuperaron 4,5 mi de sobrenadante. Al conjugado se añadieron 500 1 de BSA (Pentex Miles Inc., Kankakee, IL, EE.UU. 10% en peso/volumen en tampón TSG (Tris-HCl y 25 1 de mertiolato - gentamicina sulfato. El mertiolato- gentamicina sulfato se preparó mediante disolución de 25 mg de gentamicina sulfato (22191 El; Jescuder, Terrassa, España) y 400 mg de Thimerosal (T-5125 Sigma,
Saint Louis, MO, EE.UU.) en 8,0 mi de suero bovino fetal. Después se ajustó el pH a 8,0 con hidróxido sódico (5M). Después el conjugado se filtró en esterilidad mediante un filtro Millex GV de 0,22 m (SLGV R04 NL; The Millipore Corporation, Bedford, MA, EE.UU.) y se guardó protegido de la luz a 2-80C hasta su uso.
Procesamiento de la muestra proteica del patógeno Una muestra de 15 1 que contiene de 2 a 20 g de proteína derivada de patógeno se mezcla con 5 1 de tampón de carga NuP AGE® LDS (4X) (Invitrogen, Carlsbad, CA, EE.UU.) y se separaron inmediatamente en un gel de Bis-Tris poliacrilamida 4-12% NuP AGE® Novex (NPO323BOX; Invitrogen, Carlsbad, CA, EE.UU.) usando un tampón de proceso NuP AGE® MES SDS (IX) (NP0002;
Invitrogen, Carlsbad, CA, EE.UU.). El voltaje aplicado es de 165 voltios durante 35 minutos. Después de dejar que las proteínas migraran, el gel se recupera y se incuba durante 15 minutos en tampón de electrotransferencia (tampón ET: Tris 25 mM, 192 mM Glicina, 10% Metanol, sin ajuste de pH). Las proteínas separadas en el gen se transfieren mediante electroforesis a una membrana IMMOBILON® P (IPVH00010;
The Millipore Corporation, Bedford, MA, EE.UU.). LA membrana se preparó enjuagando una vez con metanol y dos veces con agua desionizada. Para llevar a cabo la transferencia electroforética, el voltaje aplicado se mantuvo constante a 65 voltios durante una hora. Ensayo de superposición proteica HuLYS-POD
Tras la electrotransferencia, la membrana se incuba 1 hora a 22°C en TBST (Tris-HCl 10 mM pH 8,0, NaCl 15OmM, Tween 20) complementado con 5% (peso/volumen) de leche desnatada SVELTESSE® (Nestlé España, Barcelona, España). Después, la membrana se lava con TBST y después se incuba durante 1 hora a 220C en leche con TBST que contiene el conjugado HuLYS-HRP, que se diluye a 1/5000. Tras la incubación, la membrana se lava tres veces en TBST. Después se lleva a cabo la inmunotinción mediante la inmersión de la membrana en 10 mi de 3,3 ',5,5'-Tetrametilbenzidina (TMB) (T0565; SIGMA-ALDRICH Inc., Saint-louis, MO, EE.UU.) para visualizar las proteínas. Como control positivo en extracto celular (DE3) de E. coli BL21 se detecta una única banda que migra a 17 kDa y corresponde a IVY .
EJEMPLO 13 Los patógenos bacterianos gram-positivos secretan inhibidores de la lisozima humana
Las bacterias gram-positivas carecen de una membrana externa y muestran en el lado del medio de cultivo una gruesa capa de peptidoglucano. Como consecuencia, es probable que estas bacterias sean más sensibles a la acción de la lisozima que las bacterias gram-negativas. Por tanto, la hipótesis de los inventores es que las bacterias gram-positivas que son patógenos humanos poseen inhibidores de la lisozima. Debido a la ausencia de una membrana externa, estos inhibidores pueden estar presentes en el medio de cultivo bacteriano. Como se describe más adelante, los inventores han realizado análisis para determinar la presencia de inhibidores de lisozima en el medio de cultivo de ocho especies bacterianas gram-positivas clínicamente relevantes (cepa CECTl 84 de Enterococcus faecalis, cepa ATCCl 0541 de Enterococcus faecium, cepa ATCCl 1632 de Staphylococcus aureus, cepa ATCC12228 de Staphylococcus epidermidis, cepa ATCC49619 de Streptococcus pneumoniae, cepa CECT598 de Streptococcus pyogenes, cepa CIP 105451 de
Streptococcus agalactiae y cepa NMR-GF de Propionibacterium acnés).
Estas cepas se cultivaron durante 48 horas a 37°C en caldo Mueller-Hinton ajustado con cationes (CAMHB). Las células bacterianas sedimentaron mediante centrifugación (20 minutos, 14.000 g, 40C) y 1 mi de sobrenadante se concentró hasta un volumen final de « 200 μl usando dispositivos de filtros en centrifugación
Microcon® YM-10 (The Millipore Corporation, Bedford, MA, EE.UU.). Quince μl de cada concentrado de sobrenadantes se analizaron mediante electroforesis en SDS PAGE usando un gel en gradiente al 4-12% NuP AGE® y después se tiñeron con plata (SilverXpress® kit) para visualizar las proteínas según las instrucciones del fabricante (The Invitrogen company, Prat de Llobregat, Barcelona, España).
Como se deduce del resultado del ensayo representado en la figura 25, se detectaron distintos patrones proteicos para cada una de las ocho especies bacterianas probadas. La actividad bacteriolítica de la lisozima humana (1 unidad) se determinó en ausencia, o en presencia de 10 μl del sobrenadante concentrado correspondiente a cada una de las ocho especies bacterianas. El ensayo se llevó a cabo como se ha descrito antes, usando el EnzCheck® Lysozyme según las instrucciones del fabricante (Molecular Probes, Eugene, OR, EE.UU.). Como se muestra en la Figura 26, se observó inhibición completa de la actividad enzimática de la lisozima en presencia de sobrenadantes concentrados de Propionibacterium acnés, Streptococcus agalactiae, y Streptococcus pyogenes. En presencia de sobrenadantes concentrados de Staphylococcus aureus, Enterococcus faecalis, y Streptococcus pneumoniae se observó inhibición parcial. No se detectó inhibición alguna en los sobrenadantes concentrados de Enterococcus faecium y Staphylococcus epidermidis en las condiciones de este ensayo. Estos datos demuestran que hay inhibidores sin caracterizar de la lisozima humana presentes en las bacterias gram-positivas clínicamente relevantes, que pueden ser una posible fuente de descubrimiento de tales inhibidores. Estos inhibidores representan nuevos y atractivos objetivos para fármacos y vacunas, así como para nuevos ensayos diagnósticos. Estos experimentos también indican que las bacterias grampositivas se pueden usar para seleccionar polipéptidos de lisozima expresados en bacterias de tipo salvaje o imitantes que son resistentes a la inhibición del polipéptido similar a Tp 17.
EJEMPLO 14 Procedimientos para identificar compuestos candidatos que inhiben la formación o la estabilidad del complejo Tpl7/lisozima
Numerosos patógenos animales y humanos expresan las proteínas TpI 7 y similar a Tp 17 (p.ej., virus, bacterias, hongos y protozoos). Los fármacos que interfieren en la formación y/o la estabilidad de los complejos proteicos HuLYS/similar a Tp 17 son prometedores compuestos candidatos antimicrobianos que se pueden usar para prevenir o tratar una infección patógena en un sujeto. Con el fin de aislar tales moléculas antimicrobianas, se diseñó una prueba de selección in vitro como se describe más adelante. Para un experto en la técnica será evidente que esta prueba es útil para la selección de alto rendimiento de extractos biológicos y bibliotecas químicas. Como se muestra en la Figura 27, un ejemplo de procedimiento implica las siguientes etapas:
Preparación de reactivos Se preparó PB S 1 OX mediante la disolución de 29 g de Na2HPO4/l 2 H20, 2 g de KH2PO4 y 80 g de NaCl en 1 litro de agua destilada apirógena y el ajuste del pH a un pH de 6,8 con hidróxido sódico (10M). Se preparó una solución de BS A-Glicina mediante la disolución de 10 g de BSA (81-003; Pentex Miles Inc., Kankakee, EE.UU.), 7,5 g de Glicina (500190; Merck, Darmstadt, Alemania) y 1 g de azida sódica (6688; Merck, Darmstadt, Alemania) en 1 litro de agua destilada (MiIIiQ grade, The Millipore Corporation, Bedford, MA, EE.UU.). El pH de la solución resultante fue de 7,4 con NaOH (10M). El tampón de lavado 1OX para ELISA, el sustrato cromogénico TMB y el tampón de dilución TMB están disponibles comercialmente (Kit BioELISA ANTI-HBS de 96 pocilios, 3000-1101; biokit SA5 Llica d'Amunt, España). El tampón de dilución de muestra del ELISA se obtuvo de
BioELISA Syphilis 3.0 (3000-1148; biokit SA, Llica d'Amunt, España).
Inmovilización de Tp 17 y/o proteína similar a Tp 17 en un sustrato sólido La proteína GST-Tp 17 purificada, producida como se ha descrito en el ejemplo 1, se resuspendió en PBS IX a una concentración de 0,4 g/ml y 150 1 de esa solución se dispensaron en placas de microtitulación de 96 pocilios (MaxiSorp™
Lockwell™ ; NUNC, Rosküde, Dinamarca) y se incubaron durante 16 horas a temperatura ambiente (220C). A continuación, se añadieron 100 1 de solución de BSA-Glicina y se incubaron durante 1 hora a 220C. Después se vaciaron los pocilios mediante aspiración y se llenaron de inmediato con 200 1 de BSA-sacarosa. La incubación se llevó a cabo durante 1 hora y 30 minutos a 220C. Los contenidos líquidos de cada pocilio se aspiraron cuidadosamente y las placas se secaron al aire durante 3 horas en un cuarto seco (15% de humedad relativa) antes de envasarse en bolsa de plástico sin aire.
Contacto de TpI 7 y/o similar a TpI 7 con productos químicos y HuLYS-POD A un micropocillo se añadieron 100 1 de compuesto candidato (disuelto a una concentración variable de 10 ng/ml a 10 mg/ml en tampón de dilución de muestra de ELISA y se incuban durante 15 minutos a 37°C. Al pocilio se añaden 50 1 de HuLYS-POD diluida al 1/20.000 en tampón de dilución de muestra de ELISA y se incuban durante un periodo adicional de 15 minutos. Después, los pocilios se lavan cuatro veces con tampón de lavado. Adquisición de color y puntuación de los compuestos candidatos
Después a cada pocilio se añaden 100 1 de sustrato cromogénico de peroxidasa de rábano (POD) diluido en tampón de dilución de sustrato y se detiene el desarrollo del color después de 30 minutos de la adición de 100 de H2SO4 2M. En este experimento, la absorbancia media de tres pocilios incubados sin compuesto candidato se normaliza hasta un valor de 100%. Las moléculas o extractos biológicos capaces de reducir la unión de HuLYS-POD por debajo de al menos 40%, 50%, 60%, 75%, 85%, 95%, o más se consideran candidatos'Ηit", como se pone de manifiesto mediante las reducciones respectivas en el canal de la señal en comparación con el valor normalizado. Preferentemente, la unión se reduce por debajo del 85% en relación con los pocilios control que no han puesto en contacto con un compuesto candidato.
EJEMPLO 15 El Tp 17 inhibe las preparaciones de lisozima terapéuticas disponibles comercialmente
La lisozima de pollo es una potente enzima antimicrobiana activa contra bacterias y virus. Las preparaciones comerciales que contienen lisozima como agente activo incluyen, pero no se limita a ellas, LIZIP AÍNA® (Boehringer Ingelheim, San Cugat del Valles, España) y LISOZIMA CHIESI (CHIESI ESPAÑA SA, Barcelona, España). Dado que se ha mostrado que la proteína Tp 17 inhibe la actividad antibacteriana enzimática in vitro de la lisozima purificada, los inventores han postulado que la Tp 17 también puede inhibir la actividad antibacteriana de
LIZIP AÍNA® y de LISOZIMA CHIESI. Para probar esta hipótesis, un comprimido de cada fármaco, LIZIP AÍNA® (que contiene 5 mg de lisozima de pollo por comprimido) y de LISOZIMA CHIESI (que contiene 250 mg de lisozima de pollo por comprimido) se resuspendió en agua desionizada (The Millipore Corporation, Bedford, MA, EE.UU.) para ajustar la concentración de lisozima a 4 g/ml. A continuación, estas muestras se incubaron en ausencia o en presencia de una cantidad creciente de GST-Tp 17 o de Tpl7-HIS. En este experimento, la proporción molar entre la lisozima de pollo y su inhibidor conocido se varió de 1:5 a 1:50 para GST- Tpl7 y de 1:16 a 1:160 para Tpl7-HIS. Después de un periodo de incubación de 5 minutos a 2O0C, las muestras se analizaron para determinar la actividad enzimática de la lisozima usando el kit de ensayo EnzCheck® Lysozyme (E-22013; Molecular
Probes Inc., Eugene, OR, EE.UU.) según se recomienda en las instrucciones proporcionadas por el proveedor.
Como se muestra en las Figuras 28a y 28B, tanto GST-Tρl7 como Tρl7-HIS indujeron una fuerte inhibición de la actividad antibacteriana enzimática de LIZIP AÍNA® y de LISOZIMA CHIESI, respectivamente. Por tanto, las proteínas
Tp 17 y similar a Tp 17 son capaces de inhibir la actividad antibacteriana enzimática de dos fármacos antimicrobianos disponibles comercialmente. Es probable que algo de la eficacia terapéutica proporcionada por LIZIP AÍNA® y LISOZIMA CHIESI, y fármacos relacionados, se pierda in vivo a causa de la inhibición de proteínas TpI 7 y similar a Tp 17. Como se ha comentado antes, las proteínas TpI 7 y similar a Tp 17 se expresan ampliamente en patógenos bacterianos, víricos, fungicos y parásitos humanos. En consecuencia, las variantes de la lisozima que no están sujetas a inhibición enzimática por las proteínas Tp 17 y similar a Tp 17 son una clase prometedora de nuevos fármacos antimicrobianos. EJEMPLO 16 La proteína Tpl7 no inhibe la actividad antibacteriana de r-
Lysozyme™
En la búsqueda de una variante de la lisozima capaz de resistir la inhibición de las proteínas Tpl7 y similar a TpI 7, se probó la rLysozyme™ disponible en el mercado (71110-5; Novagen® MerckKGaA, Darmstadt, Alemania). La rLysozyme™ es una lisozima altamente recombinante que está recomendada para la lisis de las células de E. coli. La enzima cataliza la hidrólisis de enlaces N- Acetilmuramida en la pared celular bacteriana. La actividad específica de la solución de rLysozyme (1.700.000 U/mg) es 250 veces superior a la lisozima blanca de huevo de pollo y, por tanto, se requiere menos enzima para conseguir la lisis de E. coli. Además, la rLysozyme™ es óptimamente activa a un pH fisiológico (6,0-8,0) que es compatible con la línea de Novagen de reactivos de extracción proteica y de ácidos nucleicos.
En este contexto, los inventores compararon la actividad antibacteriana de la lisozima humana (Ventria Bioscience, Sacramento, CA, EE.UU.) y la rLysozyme™ usando el ensayo EnzCheck Lysozyme (E-22013; Molecular Probes, Eugene,
Oregon). En primer lugar determinaron que en las condiciones prescritas por el fabricante, 1 unidad de lisozima humana produjo la misma intensidad de fluorescencia que 230 unidades de rLysozyme™. Después los inventores midieron la intensidad de fluorescencia de 1 unidad de lisozima humana o de 230 unidades de rLysozyme™, en presencia o ausencia de 10 g de GST-Tp 17 o de Tpl7-HIS. Como se muestra en la Figura 29, la rLysozyme™ no fue susceptible a la inhibición de
GST-Tpl7 o de Tpl7-HIS, mientras que se produjo una fuerte inhibición de la actividad antibacteriana de la lisozima humana. Es interesante el hecho de que se observo de forma reiterada un ligero incremento (en el intervalo de 20%) de la actividad antibacteriana de la rLysozyme™' en presencia de TpI 7. En conjunto, estos resultados sugieren que la rLysozyme™ no es susceptible a la inhibición por TpI 7 y posiblemente a las proteínas similares a Tp 17. Como consecuencia de esto, la rLysozyme™ representa un fármaco antimicrobiano nuevo y prometedor que podría, en último término, sustituir a la lisozima de pollo en varias preparaciones terapéuticas pretendidas para uso humano y animal. Además, se puede usar como antiséptico y/o como conservante de alimentos.
EJEMPLO 17 La proteína precursora del Alzheimer (βAPP) comparte similitudes estructurales con las proteínas similares a Tp 17
Entre las proteínas que comparten una extensa similitud de secuencia con la Tpl7 (véase, por ejemplo, la Figura 1), los inventores identificaron la Proteína precursora beta amiloide (βAPP). Esta proteína es de un interés diagnóstico y médico fundamental ya que está implicada en la generación de depósitos amiloides durante la enfermedad de Alzheimer. Como se muestra en la figura 30, los inventores han descubierto un motivo peptídico bien conservado compartido por los miembros de la familia de proteínas Ivy, Tρl7, y las tres isoformas de -APP (APP770, APP751 y
APP695). La realización manual de varias alineaciones permitió a los inventores agrupar todas estas secuencias peptídicas en la siguiente secuencia consenso: CX(l,5)[KRH][AG][KRH]X(0,2)[KR]X(0,l)[EDQN]C (SEC ID No:178) En este consenso, C, K, R5 H, A, G, E, D, Q y N corresponden al código de una letra para los aminoácidos para Cisteína, Lisina, Arginina, Histidina, Alanina, Glicina, ácido glutámico, ácido aspártico, Glutamina y Asparagina, respectivamente. Las normas syntax son las usadas en la base de datos PROSITE. Este consenso también se puede representar del siguiente modo:
Cys Xaa.1 Xaa2 Xaa3 Xaa4. Xaa5 Xaa6 Xaa7 Xaa8 Xaa9 Xaa10 Xaaπ Xaa12 Xaa13 Cys (SEC ID NO: 177) donde Xaa1; Xaa2 , Xaa3 1 XaB4 y Xaa5 son cualquier aminoácido o están ausentes, Xaa¿ es aminoácido K, R o H, Xaa7 es A o G, Xaas es K, R, o H, Xaap y Xaa^ son cualquier aminoácido o están ausentes, Xaaπ es aminoácido K o R, Xaa12 es cualquier aminoácido o está ausente, y Xaa13 es aminoácido E, D, Q o N.
Para tres de esta proteínas (Ivy de E. coli, Tp 17, y P. aeruginosa) estaban disponibles las estructuras cristalinas. Usando el visualizador molecular Cn3D, los inventores encontraron que los segmentos peptídicos relacionados de cada una de las tres proteínas exhibían una organización tridimensional conservada. Como se muestra en la Figura 31, las tres formas se encuentran en lámina beta y despliegan un bucle peptídico con puentes disulfuro. Estas proteínas comparten una organización estructural tridimensional conservada. Las tres moléculas contienen una estructura en lámina beta desplegada y un bucle peptídico con puentes disulfuro expuesto. Este motivo estructural se conserva en las tres isoformas (APP770, APP751 y APP695) de la proteína β-APP humana. Las imágenes 3D se generaron usando en software Cn3D gratis disponible, que se puede obtener en la página web del National Center for Biotechnology y en los siguientes archivos de átomos coordinados del Banco de
Datos de Proteínas (PDB): IGPQ (E. coli Ivy), IUUZ (P. aeruginosa Ivy) y IMWP (Homo sapiens β-APP).. Estos datos sugieren que Ivy, Tp 17, y -APP están estructural y funcionalmente relacionadas. EJEMPLO 18 La lisozima humana se une a la proteína precursora de Alzheimer (βAPP)
Como se muestra en la Figura 32, el sitio de unión a la lisozima identificado en la (βAPP) reside en el extremo N de la proteína y se extiende por los residuos 92 a 116. La isoforma APP751 (751 aminoácidos de longitud) es un ejemplo de polipéptido similar a APP. Las conclusiones extraídas de esta figura son. también ciertas para las isoformas APP695 y APP770. Los números de los aminoácidos se refieren a las posiciones de los aminoácidos en la secuencia de la βAPP depositada en el GenBank con el número de referencia NP_958816 (SEQ ID NO:313). El sitio de unión a la lisozima se localiza entre los residuos 92 a 116. Específicamente, los inventores usaron un fragmento más largo de derivado de βAPP, denominado sAPPα y un fragmento más corto denominado sAPPα (304-612). Ambas formas sAPPα y sAPPα (304-612). Derivan de la isoforma APP695 y, en consecuencia, carecen del dominio inhibidor de la proteasa kunitz (residuos 289 a 342 en APP770 y APP751.
Para comprobar si la proteína -APP se une a huLYS, se realizaron ensayos de unión a lisozima usando formas recombinantes, purificadas de -APP. Tanto la sAPP (número de producto: S9564) como la sAPP (302-612) (número de producto: S8065) se obtuvieron de Sigma-Aldrich (Tres cantos, Madrid, España). Se rociaron 10 g de cada proteína en una membrana Nytran (Scleicher & Schüell, Dassel, Alemania). Los sitios de adsorción inespecífica se bloquearon mediante incubación durante 1 hora con lisozima humana marcada con peroxidasa de rábano (POD) diluida a 1/1000 en leche TBST. Después, la membrana se lavó tres veces durante 5 minutos cada lavado, con TBST. La tinción se llevó a cabo mediante la adición de 5 mi de sustrato cromogénico POD (TMB, número de producto: T0565, Sigma). Como se muestra el la figura 33, la huLYS se unió a sAPP pero no a APP (302-612). Esta observación sugirió que la proteína -APP se une a huLYS y que el sitio de unión se localiza en la región N terminal, entre los residuos 92 y 116 de la β-APP. Estos datos definen nuevos objetivos farmacológicos para el tratamiento de la enfermedad de Alzheimer. Además, es probable que el complejo proteico -APP/huLYS sirva como marcador diagnóstico de la enfermedad de Alzheimer. Las composiciones diagnósticas y los procedimientos relacionados con la enfermedad de Alzheimer se caracterizan por fragmentos de un polipéptido similar a APP sustancialmente puro, que comprende una secuencia de aminoácidos de Cys XΆSH Xaa2 Xaa3 XΆSLA Xaa5 Xaaβ Xaa7 Xaa8 Xaa9 Xaa10 Xaaπ Xaa12 Xaa13 Cys (SEC ID NO: 177), donde Xaa^ Xaa2 , Xaa3 , Xaa4 y Xaa5 son aminoácidos o están ausentes, Xaaδ es aminoácido K, R o H, Xaa7 es A o G, Xaa8 es K, R, o H, Xaa9 y Xaa10 son aminoácidos o están ausentes, Xaaπ es aminoácido K o R, Xaa12 es aminoácido o está ausente, y Xaa13 es aminoácido E, D, Q o N. Las composiciones y los procedimientos también se caracterizan por moléculas de ácido nucleico que codifican estos fragmentos polipeptídicos, vectores para la expresión de tales fragmentos y células huésped que contienen estos vectores. Tales fragmentos pueden expresarse como polipéptidos recombinantes y usarse para la generación de anticuerpos que reconozcan el fragmento o que reconozcan el fragmento cuando esté en forma de complejo con un polipéptido de lisozima.
Los anticuerpos que se unen de forma específica a un complejo polipéptido similar a la APP/lisozima son útiles en los procedimientos para el diagnóstico de la enfermedad de Alzheimer en un sujeto, donde el anticuerpo se usa como sonda de una muestra biológica del sujeto, tal como una muestra de suero, una muestra de fluido cefalorraquídeo o una muestra de tejido. En la actualidad, un diagnóstico definitivo de enfermedad de Alzheimer generalmente requiere un estudio posmortem del tejido cerebral de un sujeto. Por tanto, las presentes composiciones y procedimientos, que facilitan el diagnóstico de la enfermedad de Alzheimer en los fluidos corporales obtenidos de un sujeto vivo, proporcionan una mejora significativa sobre los procedimientos diagnósticos existentes.
Específicamente, la presente invención proporciona un procedimiento para diagnosticar la enfermedad de Alzheimer mediante la detección de la presencia en una muestra del sujeto de un complejo entre un polipéptido similar a APP y un polipéptido lisozima, o la presencia de un anticuerpo que se une a tal complejo. Además, se proporciona un procedimiento para identificar un compuesto candidato que modula la unión entre el polipéptido similar a APP y un polipéptido de lisozima mediante la detección de una reducción en la unión entre el polipéptido similar a TpI y el polipéptido de lisozima en presencia del compuesto candidato.
EJEMPLO 19 Identificación por ordenador de nuevas proteínas similares a Tp 17
Se realizaron búsquedas en las bases de datos de secuencias (Swissprot & TrEMBL) para detectar las proteínas que comparten la secuencia consenso CX(l,5)[KRH][AG][KRH]X(0,2)[KR]X(0,l)[EDQN]C (SEC ID NO: 178) definida en la figura 3O.Las proteínas bacterianas, víricas y eucarióticas identificadas con esta secuencia se muestran en las Figuras 34A y 34B. Estas proteínas representan nuevos objetivos terapéuticos y composiciones inmunogénicas que es muy probable que interfieran en la formación de complejos proteicos similar aTpl7huLYS. Además, estas proteínas, en complejo con huLYS, pueden representar marcadores atractivos para el diagnóstico de enfermedades humanas, animales y vegetales.
EJEMPLO 20 Inhibición y capacidad de unión de mutantes de Tp 17
Para determinar si H31 y His104de Tpl7 contribuían a la inhibición de huLYS, los inventores realizaron mutagénesis dirigida a sitio del gen que codifica GST-TpI 7 (Figura 35A). Se generaron polipéptidos mutantes H31A e HiS104A GST-Tpl7 mediante la introducción de dos cambios nucleotídicos en el vector plasmídico pGEX2T-Tpl7 usando el kit de mutagénesis dirigida QuickChange® Site-directed (Stratagene, La Jolla, CA, EE.UU.). Con tal propósito, los oligonucleótidos mutagénicos Fw: CPAAG (5'-CCG TGT GTC CGG CCG CCG GGA AGG C-3') (SEQ ID NO: 298) y Bw CPAAG (5'-GCC TTC CCG GCG GCC GGA CAC ACG G-3') (SEQ ID NO: 299), y los oligonucleótidos FwJCPAE (5'-AAT CGA AGG
CAC CGG CCG AGA AAG AGC TGT ACG-3) (SEQ ID NO: 300)y BwJCPAE (5'-CGT ACA GCT CTT TCT CGG CCG GTG CCT TCG ATT-3') (SEQ ID NO: 301) se hibridaron por separado al pGEX2T-Tpl7 desnaturalizado y se extendieron usando la ADN polimerasa Pfu Turbo en las condiciones recomendadas por el proveedor. El molde de ADN no metilado se eliminó mediante digestión con Dpnl y la mezcla resultante de la digestión se usó para transformar células XL-I Blue® supercompetentes. Los plásmidos mutantes se seleccionaron mediante mapeo de restricción de los amplicones resultantes de la PCR. La presencia de una mutación H31A se confirmó mediante secuenciación del gen TpI 7 mutado de longitud completa. A continuación se produjo en GST-To 17 muíante con la mutación H31A o HiS104A y se purificó como se describe en el Ejemplo 1. Los ensayos de inhibición de la lisozima se llevaron a cabo como se describe más adelante.
Cada 100 1 de la mezcla de reacción contenían 25 1 de solución de lisozima (2 unidades para la lisozima humana, disuelta en tampón de reacción), 25
1 de una solución proteica de prueba y 50 1 de una suspensión de Micrococcus lysodeikticus (50 μg/ml) marcado con fluoresceína. Después, la mezcla de reacción se incubó durante 45 minutos a 370C. La fluorescencia presente en la mezcla de reacción se midió (( eχc.= 485 nm; emi. = 520 nm) usando un modelo de lector de placas de múltiples pocilios FLx800 (Bio TEK instruments, Winooski, Vermont) equipado con un software de adquisición de los datos júnior KC ( BioTEK Instruments, Winooski, Vermont ( Los datos fluorescentes resultantes , que se muestran en la figura 35B), representan la media y la desviación estándar correspondiente a la lectura de tres pocilios independientes. Un pocilio control negativo contenía 50 μl de agua desionizada y 50 μl de una suspensión de Micrococcus lysodeikticus marcada con fluoresceína.
Como se muestra en las figuras 35A y 35B, los polipéptidos mutantes H31A y HiS104A mostraron una disminución de la inhibición de la lisozima, pero retuvieron su capacidad para unirse a la lisozima (Figura 36). Estos datos demostraron que las posiciones aminoacídicas 31 y 104 contribuyen a la inhibición y/o unión a la lisozima. Por tanto, las formas de realización de un Tp 17 mutante según la presente invención incluyen una o más mutaciones en y/o alrededor de H31 e His104 de Tp- 17 y los sitios correspondientes en otras patógenos similares a Tp- 17 . Tal mutante puede interferir en la inhibición normal de una pro teína similar a Tp- 17 in vivo y, por tanto, puede tener los efectos terapéuticos descritos antes. EJEMPLO 21 L TpI 7 se puede unir a la proteína similar a la lisozima SLLPl
En el acrosoma del esperma humano hay una proteína única, no bacteriolítica, de pollo o de tipo convencional (tipo C) similar a la lisozima, SLLPl (Mandal y col. Biol Reprod. 68:1525-37, 2003). Por lo general las lisozimas de tipo C son bacteriolíticas y pueden unirse a N-acetilglucosaminas unidas por enlaces beta- 1,4- glicosídicos. La mayoría de los residuos invariantes (17 de 20), incluidas todas las cisternas, estaban conservadas en la SLLPl, pero los dos residuos catalíticos E35 y D52 conservaron las lisozimas de tipo C donde se habían sustituido en la SLLP! Con T y N, respectivamente, para convertirse en Tl 22 y Nl 39. Mandal y col. Postularon la hipótesis de que, tras una reacción acrosómica, la SLLPl pudo ser un posible receptor para el residuo oligosacárido del huevo N-acetilglucosamina, que está presente en la matriz extracelular en la superficie de la membrana plasmática del huevo, dentro del espacio perivitelimo, en los poros de la zona pelúcida y en las capas acumuladas.
Los inventores han encontrado que huLYS, chkLYS y SLLPl comparten más del 55% de identidad en la secuencia. Como se muestra en la Figura 37, mientras que la lisozima humana y la lisozima de pollo comparten una identidad de secuencia del
63%, 1 aSLLPl y la lisozima humana comparten una identidad de la secuencia del 58%. Dado que la Tpl7 es capaz de unirse a HuLYS y chkLYS, y con base en el nivel elevado de identidad de la secuencia entre estas proteínas, es probable que los polipéptidos similares a TpI 7, incluido el Tp 17, sean capaces de unirse a SLLPl. Esta interacción puede facilitar la transmisión de patógenos durante el contacto sexual. Como se muestra en la Figura 38, un complejo SLLPl/polipéptido similar a Tp 17 representa un prometedor objetivo terapéutico para el control de la fertilidad humana y animal. Por ejemplo, como se ilustra en la figura 38, la administración de una cantidad eficaz de un polipéptido similar a Tp 17 puede servir como procedimiento para la anticoncepción ya que interfiere con la llegada normal de un espermatozoide a un receptor conocido en la superficie de un huevo.
Además, los compuestos candidatos que disminuyen la afinidad de unión de un polipéptido similar a TP 17 a SLLPl son inhibidores útiles de enfermedades de transmisión sexual. Los procedimientos para la selección de tales compuestos se han descrito anteriormente.
Además, aunque el SLLPl de tipo salvaje no es probable que sea un bacteriolítico, es probable que el SLLPl muíante, que contiene las alteraciones en los aminoácidos de ti 22 a E y de Nl 39 a D, o especialmente los imitantes dobles que contienen mutaciones en la secuencia conservada de la lisozima de tipo C que adquieran actividad bacteriolítica. Es probable que la SLLPl muíante que contiene estas mutaciones no se podría unir al polipéptidos de tipo TpI 7 y probablemente tendría un aumento de la acíividad enzimálica respecto a la lisozima de pollo, por ejemplo. Como al, la SLLPl muíante se puede usar para intensificar la actividad antimicrobiana, por ejemplo, bacteriolítica, la capacidad como composición farmacéutica o desinfectaníe. Otra variante de la lisozima, como la lisozima del baríeriófago T4, íambién se puede usar de un modo similar. Una forma de realización de la composición puede incluir de entre a aproximadamente 2 a 100 mg/de la variante de lisozima (preferentemente de aproximadamente 5 mg), aproximadamente 2 mg de papaína y/o acerca de 3 mg de bacitracina. Una forma de realización preferida se puede disolver para la ingesta oral. Otras formas de realización
La invención puede realizarse en otras formas específicas sin salirse fuera del espíritu o de las características esenciales de la misma. Se puede combinar cualquier aspecto y característica de la invención descrita anteriormente. Las formas de realización anteriores deben considerarse a todos los efectos ilustrativos y no limitantes de la invención descrita en la presente. Por tanto, el alcance de la invención está indicado en las reivindicaciones adjuntas más que en la descripción anterior, y en ella se abarcan todos los cambios que entren dentro del significado y de la serie de equivalencias de las reivindicaciones.
Incorporación como referencias Todos los números de referencia de las secuencias, las publicaciones y los documentos de patentes citados en esta solicitud se incorporan en su totalidad como referencias para todos los propósitos hasta el mismo punto, como si los contenidos de cada publicación o patente estuvieran incorporados en la presente.

Claims

REIVINDICACIONES
1. Un fragmento de un polipéptido similar a Tp 17, que comprende un motivo de unión a la lisozima que contiene al menos cuatro aminoácidos, estando dos de los cuatro aminoácidos seleccionados del grupo constituido por Cys, Pro, His, y Arg, en el que el motivo de unión a la lisozima no es CKPHDC (SEC ID NO. 24).
2. El fragmento de la reivindicación 1, en el que el motivo de unión a la lisozima comprende una secuencia de aminoácidos de Cys Xaal Xaa2 Arg Xaa3 Xaa4 Xaa5 Cys (SEC ID NO. 314), donde Xaal, Xaa2, Xaa3, Xaa4, o Xaa5 es cualquier aminoácido, está ausente o es un enlace peptídico.
3. El fragmento de la reivindicación 1, en el que el motivo de unión a la lisozima comprende una secuencia de aminoácidos de Cys Xaal Xaa2 Arg Xaa3 Xaa4 Xaa5 Cys (SEC ID NO. 314), donde Xaal es Pro, Ala, Val, o Ser; Xaa2 es GIn5
GIu, o His; Xaa3 es Leu o Met; Xaa4 es Ser, Ala, o GIy; y Xaa5 es Ser, Val, Ala, Lys, o Cys.
4. El fragmento de la reivindicación 1, en el que el motivo de unión a la lisozima comprende una secuencia de aminoácidos de Cys Pro Xaal Arg Xaa2 Xaa3
Xaa4 Cys (SEC ID NO. 315), donde Xaal es GIn, GIu, o His; Xaa2 es Leu o Met; Xaa3 es Ser o Ala; Xaa4 es Ser, Ala, o Val.
5. El fragmento de la reivindicación 4, en el que el motivo de unión a la lisozima comprende una secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo constituido por CPHRLSVC (SEC ID NO. 316), CPHRLSSC (SEC ID NO. 317), CPERLASC (SEC ID NO. 318), CPERMASC (SEC ID NO. 319), CPERLSSC (SEC ID NO. 320), y CPQRLSSC (SEC ID NO. 321)..
6. El fragmento de la reivindicación 5, en el que el motivo de unión a la lisozima comprende la secuencia de aminoácidos CPHRLSVC (SEC ID NO. 316).
7. El fragmento de la reivindicación 1, en el que el polipéptido deriva de la glicoproteína E2 de la cubierta de un virus de la hepatitis C.
8. El fragmento de la reivindicación 1, en el que el motivo de unión a la lisozima está fijo a un soporte sólido.
9. El fragmento de la reivindicación 1, en el que el motivo de unión a la lisozima está unido a un marcador detectable.
10. Una molécula de ácido nucleico sustancialmente pura que codifica el fragmento de la reivindicación 2.
11. Un vector que comprende la molécula de ácido nucleico de la reivindicación 10.
12. Una célula huésped que comprende el vector de la reivindicación 11.
13. Una proteína de fusión que comprende el fragmento de la reivindicación 11.
14. Una composición que comprende un primer polipéptido que comprende al menos un motivo de unión a la lisozima y un segundo polipéptido, en el que el motivo de unión a la lisozima comprende al menos cuatro aminoáicods, dos de los cuales se seleccionan del grupo constituido por Cys, Pro, His, y Arg, donde el primer polipéptido no es el polipéptido Ivy y el segundo polipéptido comprende una lisozima.
15. La composición de la reivindicación 14, en la que el motivo de unión a la lisozima comprende una secuencia de aminoácidos de Cys Xaal Xaa2 Arg Xaa3 Xaa4 Xaa5 Cys (SEC ID NO. 314), donde Xaal, Xaa2, Xaa3, Xaa4 o Xaa5 es cualquier aminoácido, está ausente o es un enlace peptídico.
16. La composición de la reivindicación 14, en la que el motivo de unión a la lisozima comprende una secuencia de aminoácidos de Cys Xaal Xaa2 Arg Xaa3 Xaa4 Xaa5 Cys (SEC ID NO. 314), donde Xaal es Pro, Ala, Val, o Ser; Xaa2 es GIn,
GIu, o His; Xaa3 es Leu o Met; Xaa4 es Ser, Ala, o GIy; y Xaa5 es Ser, Val, Ala, Lys, o Cys
17. La composición de la reivindicación 14, en la que el motivo de unión a la lisozima comprende una secuencia de aminoácidos de Cys Pro Xaal Arg Xaa2 Xaa3
Xaa4 Cys (SEC ID NO. 315), donde Xaal es GIn, GIu, o His; Xaa2 es Leu o Met; Xaa3 es Ser o Ala; Xaa4 es Ser, Ala, o Val.
18. La composición de la reivindicación 14, en la que el motivo de unión a la lisozima comprende una secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo constituido por CPHRLSVC (SEC ID NO. 316), CPHRLSSC (SEC ID NO. 317),
CPERLASC (SEC ID NO. 318), CPERMASC (SEC ID NO. 319), CPERLSSC (SEC ID NO. 320), y CPQRLSSC (SEC ID NO. 321).
19. La composición de la reivindicación 14, en la que el motivo de unión a la lisozima comprende una secuencia de aminoácidos de CPHRLSVC.
20. La composición de la reivindicación 14, en la que el primer polipéptido deriva de la glicoproteína E2 de la cubierta de un virus de hepatitis C.
21. La composición de la reivindicación 14, en la que el segundo polipéptido comprende la siguiente secuencia deaminoácidos:
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Trp Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa GIu Ser Xaa Xaa Xaa Thr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Ser Xaa Asp Tyr GIy Xaa Xaa GIn He Asn Xaa Xaa Xaa Trp Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Ala Lys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Trp Xaa Xaa Trp Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa (SEC ID NO:28), en la que Xaa es cualquier aminoácido o está ausente.
22. Un procedimiento para detectar una respuesta inmunitaria contra un patógeno en un sujeto, comprendiendo el procedimiento las etapas de:
(a) poner en contacto una muestra biológica del sujeto con una lisozima exógena y un polipéptido que comprende un motivo de unión a la lisozima; y (b) detectar la unión del anticuerpo al polipéptido o a un complejo polipéptido-lisozima.
23. El procedimiento de la reivindicación 22, en el que el ensayo diagnóstico es un ensayo de aglutinación..
24. El procedimiento de la reivindicación 22, en el que la lisozima entra en contacto con el polipéptido que comprende el motivo de unión a la lisozima antes, durante o después de entrar en contacto con la muestra biológica.
25. El procedimiento de la reivindicación 22, en el que la lisozima deriva de la humana.
26. El procedimiento de la reivindicación 22, en el que el patógeno es el virus de la hepatitis C.
27. Un kit para detectar una respuesta inmunitaria a un patógeno, que comprende un primer polipéptido y un segundo polipéptido, en el que el primer polipéptido comprende al menos un motivo de unión a la lisozima y el segundo polipéptido es una lisozima.
28. EL kit de la reivindicación 27, en el que el motivo de unión a la lisozima comprende una secuencia de aminoácidos de Cys Xaal Xaa2 Arg Xaa3 Xaa4 Xaa5 Cys (SEC ID NO. 314), donde Xaal, Xaa2, Xaa3, Xaa4, o Xaa5 es cualquier aminoácido, está ausente o es un enlace peptídico.
29. EL kit de la reivindicación 27, en el que el motivo de unión a la lisozima comprende una secuencia de aminoácidos de Cys Xaal Xaa2 Arg Xaa3 Xaa4 Xaa5 Cys (SEC ID NO. 314), donde Xaal es Pro, Ala, Val, o Ser; Xaa2 es GIn, GIu, o His; Xaa3 es Leu o Met; Xaa4 es Ser, Ala, o GIy; y Xaa5 es Ser, Val, Ala, Lys, o Cys.
30. EL kit de la reivindicación 27, en el que el motivo de unión a la lisozima comprende una secuencia de aminoácidos de Cys Pro Xaal Arg Xaa2 Xaa3 Xaa4 Cys (SEC ID NO. 315), donde Xaal es GIn3 GIu, o His; Xaa2 es Leu o Met; Xaa3 es Ser o Ala; Xaa4 es Ser, Ala, o Val.
31. EL kit de la reivindicación 27, en el que el motivo de unión a la lisozima comprende una secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo constituido por CPHRLSVC (SEC ID NO. 316), CPHRLSSC (SEC ID NO. 317), CPERLASC (SEC ID NO. 318), CPERMASC (SEC ID NO. 319), CPERLSSC (SEC ID NO. 320), y CPQRLSSC (SEC ID NO. 321).
32. La composición de la reivindicación 27, en la que el motivo de unión a la lisozima comprende una secuencia de aminoácidos de CPHRLSVC (SEC ID NO. 316).
33. El kit de la reivindicación 27, en el que el segundo polipéptido comprende la siguiente secuencia de aminoácidos:
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Trp Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa GIu Ser Xaa Xaa Xaa Thr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Ser Xaa Asp Tyr GIy Xaa Xaa GIn He Asn Xaa Xaa Xaa Trp Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
Xaa Cys Ala Lys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Trp Xaa Xaa Trp Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa (SEC ID NO:28), en la que Xaa es cualquier aminoácido o está ausente.
34. El kit de la reivindicación 27, en el que el primero o el segundo polipéptido está unido a un soporte sólido.
35. El kit de la reivindicación 34, en el que el soporte sólido se selecciona del grupo constituido por una resina, un gel, una perla, un pocilio, una columna, un cápsula, una membrana y un dispositivo de filtración.
36. El kit de la reivindicación 27, en el que el primer o el segundo polipéptido está unido a un marcador detectable.
37. El kit de la reivindicación 27, en el que el patógeno es el virus de la hepatitis C.
38. Un procedimiento para tratar o prevenir una infección patógena en un sujeto que lo necesite, comprendiendo el procedimiento administrar una cantidad eficaz de una lisozima que comprende una secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo constituido por
Tyr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa GIy Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Ser Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa GIy (SEC ID NO. 322), y Asp Ala Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Asp Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa GIy Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Thr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Asn (SEC ID NO. 323), donde Xaa es cualquier aminoácido o está ausente.
39. El procedimiento de la reivindicación 38, en el que la lisozima comprende una secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo constituido por
Tyr Tyr Leu Thr Xaa Phe Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Ala Cys GIy Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Ser Xaa Xaa Xaa Tyr Phe Thr Ala Asp Ser GIn Arg Phe GIy Cys GIy (SEC ID NO.
324), y
Asp Ala GIy Pro Xaa Xaa Xaa Val GIu Xaa Xaa Ala GIy Xaa Xaa He He Asp Ala Ser Xaa Xaa He Cys Xaa Xaa Leu Xaa GIy Xaa Ser Ser Cys GIy Trp Ser Asp Xaa Xaa Xaa He Thr Ala Xaa Xaa Xaa Ser Xaa Xaa Asp Xaa Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Pro Phe Asn Val Thr (SEC ID NO. 325), donde Xaa es cualquier aminoácido o está ausente.
40. Una composición farmacéutica para usar como antimicrobiano que comprende al menos una cantidad eficaz de una lisozima que comprende una secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo constituido por
Tyr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa GIy Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Ser Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa GIy (SEQ ID NO. 322); y
Asp Ala Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Asp Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa GIy
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Thr Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Asn (SEC ID NO. 323), donde Xaa es cualquier aminoácido o está ausente.
41. La composición farmacéutica de la reivindicación 40, en la que la lisozima comprende una secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo constituido por
Tyr Tyr Leu Thr Xaa Phe Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Ala Cys GIy Xaa Xaa Xaa Xaa Cys Ser Xaa Xaa Xaa Tyr Phe Thr Ala Asp Ser GIn Arg Phe GIy Cys GIy (SEC ID NO. 324); y Asp Ala GIy Pro Xaa Xaa Xaa Val GIu Xaa Xaa Ala GIy Xaa Xaa He He Asp Ala Ser Xaa Xaa He Cys Xaa Xaa Leu Xaa GIy Xaa Ser Ser Cys GIy Trp Ser Asp Xaa Xaa Xaa He Thr Ala Xaa Xaa Xaa Ser Xaa Xaa Asp Xaa Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Pro Phe Asn Val Thr (SEC ID NO. 325),
donde Xaa es cualquier aminoácido o está ausente.
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