ES2220721T3 - Proceso para la preparacion de fosforoticato-triesteres. - Google Patents

Proceso para la preparacion de fosforoticato-triesteres.

Info

Publication number
ES2220721T3
ES2220721T3 ES01907898T ES01907898T ES2220721T3 ES 2220721 T3 ES2220721 T3 ES 2220721T3 ES 01907898 T ES01907898 T ES 01907898T ES 01907898 T ES01907898 T ES 01907898T ES 2220721 T3 ES2220721 T3 ES 2220721T3
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
oligonucleotide
phosphonate
group
process according
protected
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
ES01907898T
Other languages
English (en)
Inventor
Colin Bernard Reese
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Avecia Ltd
Original Assignee
Avecia Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Avecia Ltd filed Critical Avecia Ltd
Application granted granted Critical
Publication of ES2220721T3 publication Critical patent/ES2220721T3/es
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07HSUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H19/00Compounds containing a hetero ring sharing one ring hetero atom with a saccharide radical; Nucleosides; Mononucleotides; Anhydro-derivatives thereof
    • C07H19/02Compounds containing a hetero ring sharing one ring hetero atom with a saccharide radical; Nucleosides; Mononucleotides; Anhydro-derivatives thereof sharing nitrogen
    • C07H19/04Heterocyclic radicals containing only nitrogen atoms as ring hetero atom
    • C07H19/06Pyrimidine radicals
    • C07H19/10Pyrimidine radicals with the saccharide radical esterified by phosphoric or polyphosphoric acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07FACYCLIC, CARBOCYCLIC OR HETEROCYCLIC COMPOUNDS CONTAINING ELEMENTS OTHER THAN CARBON, HYDROGEN, HALOGEN, OXYGEN, NITROGEN, SULFUR, SELENIUM OR TELLURIUM
    • C07F9/00Compounds containing elements of Groups 5 or 15 of the Periodic Table
    • C07F9/02Phosphorus compounds
    • C07F9/06Phosphorus compounds without P—C bonds
    • C07F9/16Esters of thiophosphoric acids or thiophosphorous acids
    • C07F9/165Esters of thiophosphoric acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07HSUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H19/00Compounds containing a hetero ring sharing one ring hetero atom with a saccharide radical; Nucleosides; Mononucleotides; Anhydro-derivatives thereof
    • C07H19/02Compounds containing a hetero ring sharing one ring hetero atom with a saccharide radical; Nucleosides; Mononucleotides; Anhydro-derivatives thereof sharing nitrogen
    • C07H19/04Heterocyclic radicals containing only nitrogen atoms as ring hetero atom
    • C07H19/16Purine radicals
    • C07H19/20Purine radicals with the saccharide radical esterified by phosphoric or polyphosphoric acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07HSUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H21/00Compounds containing two or more mononucleotide units having separate phosphate or polyphosphate groups linked by saccharide radicals of nucleoside groups, e.g. nucleic acids

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Plural Heterocyclic Compounds (AREA)
  • Luminescent Compositions (AREA)
  • Low-Molecular Organic Synthesis Reactions Using Catalysts (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Un proceso para la preparación de un fosforotioato¿triéster que comprende acoplar un H¿fosfonato con un alcohol en presencia de un agente de acoplamiento para formar de este modo un H¿fosfonato¿diéster, y subsiguientemente, el H¿fosfonato¿diéster se hace reaccionar con un agente de transferencia de azufre para formar con ello un fosforotioato¿triéster caracterizado porque la reacción de acoplamiento entre el H¿fosfonato y el alcohol tiene lugar en presencia del agente de transferencia de azufre.

Description

Proceso para la preparación de fosforotioato-triésteres.
La presente invención proporciona un método de síntesis de fosforotioato-triésteres, particularmente oligonucleótidos y con inclusión de oligonucleótido-fosforotioatos.
En los últimos quince años aproximadamente, se ha hecho un progreso enorme en el desarrollo de la síntesis de oligodesoxirribonucleótidos (secuencias de DNA), oligorribonucleótidos (secuencias de RNA) y sus análogos. El interés incrementado en las aplicaciones terapéuticas de secuencias de DNA y RNA ha conducido a una demanda creciente de cantidades mayores de material, y se ha realizado una gran cantidad de trabajo en el aumento a escala de la síntesis de oligonucleótidos. Virtualmente, la totalidad de este trabajo ha implicado la construcción de sintetizadores cada vez mayores y la utilización de la misma química de fosforamiditos sobre un soporte sólido. Un procedimiento alternativo para la síntesis de oligonucleótidos se describe en la Solicitud de Patente Internacional WO99/09041. El procedimiento descrito emplea acoplamiento secuencial y pasos de transferencia de azufre en solución. Los documentos EP-A-0723973 y Nucleosides & Nucleotides, Vol 17 (1-3) 1998, pp 451-470 describen el uso de reactivos de transferencia de azufre en la síntesis de oligonucleótidos mediante fosfo-triésteres.
De acuerdo con un primer aspecto de la presente invención, se proporciona un proceso para la preparación de un fosforotioato-triéster que comprende acoplar un H-fosfonato con un alcohol en presencia de un agente de acoplamiento para formar con ello un H-fosfonato-diéster, y subsiguientemente, el H-fosfonato-diéster se hace reaccionar con un agente de transferencia de azufre para formar con ello un -triéster fosforotioato, caracterizado porque la reacción de acoplamiento entre el H-fosfonato y el alcohol tiene lugar en presencia del agente de transferencia de azufre.
En muchas realizaciones preferidas, se considera que la reacción transcurre por una secuencia por la cual el H-fosfonato reacciona con el alcohol en presencia del agente de acoplamiento y el H-fosfonato-diéster formado in situ reacciona rápidamente con el agente de transferencia de azufre que está presente también, como se muestra a modo de ejemplo en el esquema de reacción:
1
en el cual Z, Z' y Z'' representan independientemente grupos protectores, B y B' son independientemente nucleobases, y cada Y representa independientemente H, O-alquilo, O-alquenilo, grupo protector de O, C-alquilo o C-alquenilo.
El H-fosfonato empleado en el proceso de la presente invención es ventajosamente un nucleósido u oligonucleótido H-fosfonato protegido, o un análogo del mismo, que comprende preferiblemente una función 5' ó 3' H-fosfonato, de modo particularmente favorable una función 3' H-fosfonato. Nucleósidos preferidos son 2'-desoxirribonucleósidos y ribonucleósidos; oligonucleótidos preferidos son oligodesoxirribonucleótidos y oligorribonucleótidos.
Cuando el H-fosfonato es un derivado de desoxirribonucleósido, ribonucleósido, oligodesoxirribonucleótido u oligorribonucleótido protegido que comprende una función 3' H-fosfonato, la función 5' hidroxi está protegida ventajosamente por un grupo protector adecuado. Ejemplos de tales grupos protectores adecuados incluyen grupos protectores lábiles en medio ácido, particularmente grupos tritilo y tritilo sustituido tales como grupos dimetoxitritilo y 9-fenilxanten-9-ilo; y grupos protectores lábiles en medio básico tales como FMOC.
Cuando el bloque de construcción del H-fosfonato es un derivado de desoxirribonucleósido, ribonucleósido, oligodesoxirribonucleótido u oligorribonucleótido protegido que comprende una función 5' H-fosfonato, la función 3' hidroxi está protegida ventajosamente por un grupo protector adecuado. Grupos protectores adecuados incluyen los descritos anteriormente para la protección de las funciones 5' hidroxi de los bloques de construcción 3' H-fosfonato y grupos acilo, tales como levulinoílo y levulinoílo sustituidos.
Cuando el H-fosfonato es un ribonucleósido protegido o un oligorribonucleótido protegido, la función 2'-hidroxi está protegida ventajosamente por un grupo protector adecuado, por ejemplo un grupo protector acetal lábil en medio ácido, particularmente un grupo 1-(aril)-4-alcoxipiperidin-4-ilo tal como 1-(2-fluorofenil)-4-metoxipiperidin-4-ilo (Fpmp) o 1-(2-clorofenil)-4-etoxi-piperidin-4-ilo (Cpep); y grupos trialquilsililo, en muchos casos grupos tri(C_{1}-C_{4}-alquil)sililo tales como un grupo terc-butil-dimetilsililo. Alternativamente, el ribonucleósido u oligorribonucleótido puede ser un derivado 2'-O-alquilo, 2'-O-alcoxialquilo o 2'-O-alquenilo, comúnmente un derivado alquilo C_{1-4}, alcoxi C_{1-4}-alquilo C_{1-4} o alquenilo, en cuyo caso, la posición 2' no precisa protección adicional. H-fosfonatos de nucleósidos y oligonucleótidos análogos que se pueden emplear en el proceso de la presente invención incluyen derivados de nucleósidos y oligonucleótidos sustituidos con 2'-fluoro, 2'-amino, 2'-C-alquilo y 2'-C-alquenilo.
Otros H-fosfonatos que se pueden emplear en el proceso de acuerdo con la presente invención se derivan de otros alcoholes polifuncionales, especialmente alcoholes alquílicos, y preferiblemente dioles o trioles. Ejemplos de alquil-dioles incluyen etano-1,2-diol, y poli(etilen-glicoles) de peso molecular bajo, tales como aquéllos que tienen un peso molecular de hasta 400. Ejemplos de alquil-trioles incluyen glicerol y butano-trioles. Comúnmente, estará presente sólo una única función H-fosfonato, estando los restos hidroxi restantes protegidos por grupos protectores adecuados, tales como los descritos anteriormente en esta memoria para la protección en las posiciones 5' ó 2' de los ribonucleósidos.
El alcohol empleado en el proceso de la presente invención es comúnmente un nucleósido u oligonucleótido protegido que comprende un grupo hidroxi libre, preferiblemente un grupo 3' ó 5' hidroxi libre, y de modo particularmente preferible un grupo 5' hidroxi.
Cuando el alcohol es un nucleósido protegido o un oligonucleótido protegido, nucleósidos preferidos son desoxirribonucleósidos y ribonucleósidos, y oligonucleótidos preferidos son oligodesoxirribonucleótidos y oligorribonucleótidos.
Cuando el alcohol es un derivado de desoxirribonucleósido, ribonucleósido, oligodesoxirribonucleótido u oligorribonucleótido que comprende un grupo 5'-hidroxi libre, la función 3'-hidroxi está protegida ventajosamente por un grupo protector adecuado. Ejemplos de tales grupos protectores incluyen grupos acilo, que contienen comúnmente hasta 16 átomos de carbono, tales como los derivados de gamma-cetoácidos, tales como grupos levulinoílo y levulinoílo sustituido, y grupos análogos. Grupos levulinoílo sustituidos incluyen particularmente 5-halo-levulinoílo, tal como 5,5,5-trifluorolevulinoílo; grupos análogos incluyen por ejemplo grupos benzoilpropionilo. Otros grupos protectores de este tipo incluyen grupos alcanoílo grasos, con inclusión particularmente de grupos alcanoílo C_{6-16} lineales o ramificados, tales como grupos lauroílo; grupos benzoílo y benzoílo sustituido, tales como grupos benzoílo sustituidos con alquilo, comúnmente alquilo C_{1-4}, y halo, comúnmente cloro o fluoro; y silil-éteres, tales como alquil-, comúnmente alquil C_{1-4}-, y aril-, comúnmente fenil-silil-éteres, en particular grupos terc-butil-dimetil-sililo y terc-butil-difenil-sililo.
Cuando el alcohol es un desoxirribonucleósido, ribonucleósido, oligodesoxirribonucleótido u oligorribonucleótido protegido que comprende un grupo 3'-hidroxi libre, la función 5' hidroxi está protegida ventajosamente por un grupo protector adecuado. Grupos protectores adecuados son los descritos anteriormente para la protección del grupo 5'-hidroxi de desoxirribonucleótidos, ribonucleósidos, oligodesoxirribonucleótidos y oligo-rribonucleótido 3'-H-fosfonatos.
Cuando el alcohol es un ribonucleósido o un oligorribonucleótido, la función 2'-hidroxi está protegida ventajosamente por un grupo protector adecuado, tal como un grupo protector acetal, particularmente un grupo 1-(aril)-4-alcoxipiperidin-4-ilo tal como 1-(2-fluoro-fenil)-4-metoxipiperidin-4-ilo (Fpmp) o 1-(2-clorofenil)-4-etoxipiperidin-4-ilo (Cpep); y grupos trialquilsililo, en muchos casos grupos tri(alquil C_{1-4})sililo tales como un grupo terc-butil-dimetil-sililo. Alternativamente, el ribonucleósido u oligorribonucleótido puede ser un derivado 2'-O-alquilo, 2'-O-alcoxialquilo o 2'-O-alquenilo, comúnmente un derivado alquilo C_{1-4}, alcoxi C_{1-4}-alquilo C_{1-4} o alquenilo, en cuyo caso, la posición 2' no precisa protección ulterior. Análogos de nucleósidos y oligonucleótidos que pueden emplearse como alcoholes en el proceso de la presente invención incluyen derivados de nucleósidos y oligonucleótidos sustituidos con 2'-fluoro, 2'-amino, 2'-C-alquilo y 2'-C-alquenilo
Otros alcoholes que se pueden emplear en el proceso de acuerdo con la presente invención son polioles de tipo no sacárido, especialmente alquil-polioles, y preferiblemente dioles o trioles. Ejemplos de alquil-dioles incluyen etano-1,2-diol, y poli(etilen-glicoles) de peso molecular bajo, tales como aquéllos que tienen un peso molecular de hasta 400. Ejemplos de alquil-trioles incluyen glicerol y butano-trioles. Comúnmente, estará presente sólo un único grupo hidroxi libre, estando los grupos hidroxi restantes protegidos por grupos protectores adecuados, tales como los descritos anteriormente en esta memoria para la protección de las posiciones 5' ó 2' de ribonucleósidos. Sin embargo, puede estar presente más de un grupo hidroxi libre si se desea realizar acoplamientos idénticos en más de un grupo hidroxi.
Cuando se emplea uno cualquiera o ambos de un oligonucleótido H-fosfonato u oligonucleótido que contiene un grupo hidroxi libre, los enlaces internucleotídicos, que pueden comprender enlaces fosfato, fosforotioato o a la vez fosfato y fosforotioato, se protegen preferiblemente. Ejemplos de tales grupos protectores son bien conocidos en la técnica e incluyen grupos arilo, grupos metilo o grupos alquilo sustituidos, preferiblemente grupos 2-cianoetilo, y grupos alquenilo.
El proceso de acuerdo con la presente invención puede llevarse a cabo en solución. Cuando se emplea dicha síntesis en fase de solución, disolventes orgánicos que pueden emplearse en el proceso de la presente invención incluyen haloalcanos, particularmente diclorometano, ésteres, particularmente alquil-ésteres tales como acetato de etilo, y propionato de metilo o etilo, amidas tales como dimetilformamida, N-metilpirrolidinona y N,N'-dimetilimidazolidinona, y disolventes nucleófilos básicos tales como piridina. Disolventes preferidos para los pasos de acoplamiento y transferencia de azufre son piridina, diclorometano y mezclas de los mismos, y de modo particularmente preferible piridina. Los disolventes orgánicos empleados son con preferencia sustancialmente anhidros.
En ciertas realizaciones de la presente invención, el H-fosfonato o el alcohol, preferiblemente el alcohol, está unido a un soporte sólido. Muy preferiblemente, el alcohol unido a un soporte sólido es un nucleósido o nucleótido que tiene un grupo 5' hidroxi libre, y está unido al soporte sólido por la vía de la posición 3'. Soportes sólidos que se pueden emplear son sustancialmente insolubles en el disolvente empleado, e incluyen aquellos soportes bien conocidos en la técnica para la síntesis en fase sólida de oligonucleótidos. Ejemplos incluyen sílice, vidrio de poros controlados, poliestireno, copolímeros que comprenden poliestireno tales como copolímeros poliestireno-poli(etilen-glicol) y polímeros tales como poli(acetato de vinilo). Adicionalmente, pueden emplearse en caso deseado soportes de poli(acrilamidas), tales como los empleados más comúnmente para la síntesis de péptidos en fase sólida.
Cuando se emplea un soporte sólido, el alcohol o H-fosfonato, muy comúnmente el alcohol, se une comúnmente al soporte sólido por la vía de un enlazador escindible, preferiblemente por la vía de la posición 3'. Ejemplos de enlazadores que se pueden emplear incluyen aquéllos que son bien conocidos en la técnica para la síntesis en fase sólida de oligonucleótidos, tales como enlazadores derivados de uretano, oxalilo, succinilo y amino.
El proceso de acuerdo con la presente invención puede llevarse a cabo por agitación de una suspensión del alcohol o H-fosfonato unido al sólido en una solución del H-fosfonato o alcohol, respectivamente, agente de acoplamiento y agente de transferencia de azufre. Alternativamente, el soporte sólido puede estar compactado en una columna, y puede hacerse pasar a través de la columna una solución de H-fosfonato, agente de acoplamiento y agente de transferencia de azufre.
Cuando el H-fosfonato y el alcohol son ambos nucleósidos u oligonucleótidos protegidos, la invención proporciona un método mejorado para la síntesis gradual y por bloques de olidesoxirribonucleótidos, oligorribonucleótidos y análogos de los mismos, basada en reacciones de acoplamiento de H-fosfonatos. De acuerdo con un aspecto preferido de la presente invención, nucleósidos u oligonucleótidos protegidos con una función H-fosfonato 3'-terminal y nucleósidos u oligonucleótidos protegidos con una función hidroxi 5'-terminal se hacen reaccionar en presencia a la vez de un agente de acoplamiento adecuado y un agente de transferencia de azufre adecuado, con formación de un compuesto intermedio de dinucleósido u oligonucleótido H-fosfonato protegido y dichos compuestos intermedios se someten a transferencia de azufre por una reacción in situ con el agente de transferencia de azufre adecuado.
Además de la presencia de grupos protectores de hidroxi, las bases presentes en los nucleósidos/nucleótidos empleados en la presente invención se protegen también preferiblemente en caso necesario por grupos protectores adecuados. Bases orgánicas que pueden estar presentes incluyen nucleobases, tales como nucleobases naturales y no naturales, y especialmente purinas, tales como hipoxantina, y particularmente A y G, y pirimidinas, particularmente T, C y U. Los grupos protectores empleados son los conocidos en la técnica para la protección de dichas bases. Por ejemplo, A y/o C pueden protegerse por benzoílo, con inclusión de benzoílo sustituido, por ejemplo alquil- o alcoxi-, en muchos casos alquil C_{1-4}- o alcoxi C_{1-4}-, benzoílo; pivaloílo; y amidina, particularmente dialquilaminometileno, preferiblemente di(alquil C_{1-4})-aminometileno tal como dimetil- o dibutil-aminometileno. G puede protegerse en O6 por ejemplo por un grupo fenilo, con inclusión de fenilo sustituido, por ejemplo 2,5-diclorofenilo y también en N2, por ejemplo por un grupo acilo tal como un grupo isobutirilo. T y U no requieren generalmente protección, pero en ciertas realizaciones pueden protegerse ventajosamente, por ejemplo en O4 con un grupo fenilo, con inclusión de fenilo sustituido, por ejemplo 2,4-dimetilfenilo o en N3 por pivaloiloximetilo, benzoílo, benzoílo sustituido con alquilo o alcoxi, tal como un alquil C_{1-4}- o alcoxi C_{1-4}-benzoílo.
Cuando el alcohol y/o el H-fosfonato es un nucleósido u oligonucleótido protegido que tiene grupos hidroxi protegidos, uno de los grupos protectores de hidroxi puede eliminarse después de la realización del proceso de la invención con objeto de permitir un acoplamiento ulterior en dicho punto. El grupo protector eliminado y las reacciones subsiguientes que tengan lugar en dicho punto dependerán del tipo de molécula que se prepare. Cuando el acoplamiento está teniendo lugar en solución, el grupo protector eliminado puede ser el que se encuentra en la posición 3'-hidroxi. El oligonucleótido así formado puede convertirse en un H-fosfonato y puede proseguirse luego a través de acoplamientos ulteriores de acuerdo con el proceso de la presente invención, por ejemplo con un nucleósido u oligonucleótido que comprenda un grupo 5'-hidroxi, en la síntesis de una secuencia oligonucleotídica deseada. Preferiblemente, cuando el acoplamiento está realizándose en solución, se elimina el grupo protector 5'. Éste puede convertirse en un resto H-fosfonato y acoplarse ulteriormente con un grupo hidroxi libre, tal como un grupo 3'-hidroxi. No obstante, se prefiere que el grupo 5'-hidroxi desprotegido se haga reaccionar con un nucleósido u oligonucleótido que comprenda un resto 3' H-fosfonato. Cuando el acoplamiento está teniendo lugar utilizando síntesis en fase sólida, preferiblemente con un oligonucleótido unido al soporte sólido por la vía de la posición 3', el grupo protector eliminado se encuentra preferiblemente en la posición 5'. El grupo 5'-hidroxi libre puede convertirse en un resto H-fosfonato y emplearse en acoplamientos ulteriores. No obstante, es muy preferido que el 5'-hidroxi libre se acople con un nucleósido u oligonucleótido H-fosfonato, muy preferiblemente un 3' H-fosfonato. Se reconocerá que pueden emplearse reacciones correspondientes en los casos en que un oligonucleótido está unido a un soporte sólido por la vía de la posición 5'. En caso requerido, los grupos hidroxi libres pueden convertirse en restos H-fosfonato utilizando métodos conocidos en la técnica para este propósito. Cuando se han completado los acoplamientos deseados, el método puede proseguir luego con pasos para eliminar los grupos protectores de los enlaces internucleotídicos, los grupos 3' y 5'-hidroxi y de las bases y, en caso apropiado, para separar el producto del soporte sólido.
En una realización particularmente preferida, la invención proporciona un método que comprende el acoplamiento de un 5'-O-(4,4'-dimetoxitritil)-2'-desoxirribo-nucleósido o ribonucleósido 3'-H-fosfonato o un oligodes-oxirribonucleótido u oligorribonucleótido 3'-H-fosfonato protegido y un componente con una función 5'-hidroxi libre en presencia a la vez de un agente de acoplamiento adecuado y de un agente de transferencia de azufre adecuado.
En el proceso de la presente invención, pueden utilizarse cualesquiera agentes de acoplamiento adecuados y agentes de transferencia de azufre disponibles en la técnica anterior.
Ejemplos de agentes de acoplamiento adecuados incluyen alquil- y aril-cloruros de ácido, cloruros de alcano-y areno-sulfonilo, alquil- y aril-cloroformiatos, alquil- y aril-clorosulfitos y alquil- y aril-fosforocloruratos.
Ejemplos de alquil-cloruros de ácido adecuados que pueden emplearse incluyen cloruros de alcanoílo C_{2} a C_{16}, con inclusión de cloruros de alcanoílo lineales y cíclicos, y particularmente cloruro de pivaloílo y cloruro de adamantano-carbonilo. Ejemplos de aril-cloruros de ácido que se pueden emplear incluyen cloruros de benzoílo sustituidos e insustituidos, tales como cloruros de benzoílo sustituidos con alcoxi C_{1-4}, halo, particularmente fluoro, cloro y bromo, y alquilo C_{1-4}. En caso de estar sustituidos, en muchos casos están presentes 1 a 3 sustituyentes, particularmente en el caso de los sustituyentes alquilo y halo.
Ejemplos de cloruros de alcanosulfonilo adecuados que se pueden emplear incluyen cloruros de alcanosulfonilo C_{1} a C_{16}. Ejemplos de cloruros de arenosulfonilo que se pueden emplear incluyen cloruros de bencenosulfonilo sustituidos e insustituidos, tales como cloruros de benceno-sulfonilo sustituidos con alcoxi C_{1-4}, halo, particularmente fluoro, cloro y bromo, y alquilo C_{1-4}. En caso de estar sustituidos, a menudo están presentes de 1 a 3 sustituyentes, particularmente en el caso de los sustituyentes alquilo y halo.
Ejemplos de cloroformiatos de alquilo adecuados que se pueden emplear incluyen cloroformiatos de alquilo C_{2} a C_{16}. Ejemplos de cloroformiatos de arilo que se pueden emplear incluyen cloroformiatos de fenilo sustituidos e insustituidos, tales como cloroformiatos de fenilo sustituidos con alcoxi C_{1-4}, halo, particularmente fluoro, cloro y bromo, y alquilo C_{1-4}. En caso de estar sustituidos, a menudo están presentes de 1 a 3 sustituyentes, particularmente en el caso de los sustituyentes alquilo y halo.
Ejemplos de clorosulfitos de alquilo adecuados que se pueden emplear incluyen clorosulfitos de alquilo C_{1} a C_{16}. Ejemplos de clorosulfitos de arilo que se pueden emplear incluyen clorosulfitos de fenilo sustituidos e insustituidos, tales como clorosulfitos de fenilo sustituidos con alcoxi C_{1-4}, halo, particularmente fluoro, cloro y bromo, y alquilo C_{1-4}. En caso de estar sustituidos, a menudo están presentes de 1 a 3 sustituyentes, particularmente en el caso de los sustituyentes alquilo y halo.
Ejemplos de fosforocloruratos de alquilo adecuados que se pueden emplear incluyen fosforocloruratos de di(alquilo C_{1} a C_{6}). Ejemplos de fosforocloruratos de arilo que se pueden emplear incluyen fosforocloruratos de difenilo sustituidos e insustituidos, tales como fosforocloruratos de difenilo sustituidos con alcoxi C_{1-4}, halo, particularmente fluoro, cloro y bromo, y alquilo C_{1-4}. En caso de estar sustituidos, a menudo están presentes de 1 a 3 sustituyentes, particularmente en el caso de los sustituyentes alquilo y halo.
Agentes de acoplamiento adicionales que se pueden emplear son los compuestos de cloro-, bromo- y (benzotriazo-1-iloxi)-fosfonio y carbonio, descritos por Wada et al., en J. A. C. S. 1997, 119, pp 12710-12721.
Agentes de acoplamiento preferidos son fosforocloruratos de diarilo, particularmente aquéllos que tienen la fórmula (ArO)_{2}POCl, en donde Ar es preferiblemente fenilo, 2-clorofenilo, 2,4,6-triclorofenilo o 2,4,6-tribromo-fenilo.
La naturaleza del agente de transferencia de azufre dependerá de si se requiere un oligonucleótido, un análogo de fosforotioato o un oligonucleótido/oligonucleótido-fosforotioato mixto. Agentes de transferencia de azufre empleados en el proceso de la presente invención tienen a menudo la fórmula química general:
L ------ S ------ D
en donde L representa un grupo lábil, y D representa un grupo arilo, un grupo metilo o alquilo sustituido, preferiblemente un grupo 2-cianoetilo, o un grupo alquenilo. Comúnmente, el grupo lábil se selecciona de tal manera que comprenda un enlace nitrógeno-azufre. Ejemplos de grupos lábiles adecuados incluyen imidas tales como morfolinas, por ejemplo morfolina-3,5-diona; ftalimidas, succinimidas y maleimidas; indazoles, particularmente indazoles con sustituyentes que sustraen electrones tales como 4-nitroindazoles; y triazoles.
Cuando se requiere un enlace fosfodiéster estándar en el producto final, el resto D representa un grupo arilo, tal como un grupo fenilo o naftilo. Ejemplos de grupos arilo adecuados incluyen grupos fenilo sustituidos e insustituidos, particularmente grupos halofenilo y alquilfenilo, especialmente 4-halofenilo y 4-alquilfenilo, comúnmente grupos 4-(alquil C_{1-4})fenilo, muy preferiblemente grupos 4-clorofenilo y p-tolilo. Un ejemplo de una clase adecuada de agente de transferencia de azufre estándar dirigido a fosfodiésteres es una N-(arilsulfanil)ftalimida, o una N-(arilsulfanil)succin-imida, por ejemplo N-(fenilsulfanil)succinimida (pueden utilizarse también otras imidas, tales como maleimidas).
Cuando se requiere un enlace -diéster fosforotioato en el producto final, el resto D representa un grupo metilo, alquilo sustituido o alquenilo. Ejemplos de grupos alquilo sustituidos adecuados incluyen grupos metilo sustituidos, particularmente bencilo y grupos bencilo sustituidos, tales como grupos bencilo sustituidos con alquilo, comúnmente alquilo C_{1-4}, alcoxi, comúnmente alcoxi C_{1-4}, nitro, y halo, comúnmente cloro, y grupos etilo sustituidos, especialmente grupos etilo sustituidos en la posición 2 con un sustituyente que sustrae electrones tal como los grupos 2-(4-nitrofenil)etilo y 2-cianoetilo. Ejemplos de grupos alquenilo adecuados son grupos alilo, crotilo y 4-cianobut-2-enilo. Ejemplos de una clase adecuada de agentes de transferencia de azufre dirigidos a fosforotioatos son, por ejemplo, derivados de (2-cianoetil)sulfanilo tales como 4-[(2-cianoetil)sulfanil]-morfolina-3,5-diona o un reactivo correspondiente tal como 3-(ftalimidosulfanil)propanonitrilo o más preferiblemente 3-(succinimidosulfanil)propanonitrilo.
En muchas realizaciones, el agente de transferencia de azufre se selecciona de modo que reaccione más rápidamente con un H-fosfonato-diéster, particularmente el H-fosfonato-diéster formado por el acoplamiento del H-fosfonato y el alcohol, que con un H-fosfonato-monoéster y/o la especie activada formada por reacción del H-fosfonato-monoéster con el agente de acoplamiento.
El proceso de la presente invención puede realizarse convenientemente a una temperatura en el intervalo de aproximadamente -55ºC a aproximadamente 35ºC. Ventajosamente, la temperatura se encuentra en el intervalo de aproximadamente 0ºC a aproximadamente 30ºC. Muy preferiblemente, se emplea la temperatura ambiente (comúnmente en el intervalo de 10 a 25ºC, por ejemplo aproximadamente 20-25ºC).
La relación molar de H-fosfonato a alcohol en el proceso de la presente invención se selecciona a menudo de modo que esté comprendida en el intervalo que va desde aproximadamente 0,9:1 a 3:1, por lo general desde aproximadamente 1:1 a aproximadamente 2:1, y de modo preferible desde aproximadamente 1,1:1 a aproximadamente 1,5:1, tal como aproximadamente 1,2:1 cuando se preparan dímeros o aproximadamente 1,4:1 cuando se preparan unidades mayores. Sin embargo, en los casos en que están teniendo lugar al mismo tiempo acoplamientos en más de un hidroxilo libre, las relaciones molares se aumentarán proporcionalmente. La relación molar de agente de acoplamiento a alcohol se selecciona a menudo de modo que esté comprendida en el intervalo de aproximadamente 1:1 a aproximadamente 10:1, por lo general desde aproximadamente 1,5:1 a aproximadamente 6:1, y con preferencia desde aproximadamente 2:1 a aproximadamente 4:1. La relación molar de agente de transferencia de azufre a alcohol se selecciona a menudo de modo que esté comprendida en el intervalo que va desde aproximadamente 1:1 a aproximadamente 10:1, por lo general desde aproximadamente 1,5:1 a aproximadamente 5:1, y con preferencia desde aproximadamente 2:1 a aproximadamente 3:1.
En el proceso de la presente invención, el H-fosfonato y el alcohol pueden pre-mezclarse en solución, y puede añadirse a esta mezcla una mezcla del agente de acoplamiento y el agente de transferencia de azufre. Las adiciones de reactivos tienen lugar comúnmente de modo continuo o por incrementos a lo largo de un periodo de adición.
Las concentraciones de agente de acoplamiento y agente de transferencia de azufre empleadas en solución dependerán a menudo de la naturaleza del disolvente empleado. Se emplean comúnmente concentraciones de hasta 0,5M, por ejemplo, concentraciones comprendidas en el intervalo de 0,05M a 0,35M. En muchas realizaciones, se pueden emplear concentraciones de agente de transferencia de azufre de aproximadamente 0,2M, y concentraciones de agente de acoplamiento de aproximadamente 0,3M.
Cuando uno cualquiera o ambos del H-fosfonato y el alcohol se emplean como soluciones, la concentración empleada dependerá de la naturaleza del disolvente, y particularmente del peso molecular del H-fosfonato o alcohol. Pueden emplearse concentraciones comprendidas en los intervalos descritos para agentes de acoplamiento y agentes de transferencia de azufre, aunque en muchas realizaciones se emplean concentraciones de aproximadamente 0,1M.
En el proceso de la presente invención, es posible preparar oligonucleótidos que contienen a la vez enlaces internucleotídicos de fosfodiéster y fosforotioato-diéster en la misma molécula, por selección de agentes de transferencia de azufre apropiados, particularmente cuando el proceso se realiza de una manera gradual.
El proceso de acuerdo con la presente invención se emplea preferiblemente para producir oligonucleótidos que comprenden típicamente 2 o más residuos nucleotídicos. El límite superior dependerá de la longitud del oligonucleótido que se desea preparar. A menudo, los oligonucleótidos producidos por el proceso de la presente invención comprenden hasta 40 residuos nucleotídicos, comúnmente hasta 35 residuos nucleotídicos, y preferiblemente de 5 a 25, por ejemplo de 8 a 20, residuos nucleotídicos. Los pasos de acoplamiento y transferencia de azufre en el proceso de la presente invención se repiten un número suficiente de veces para producir la longitud y secuencia deseadas. El proceso de la presente invención es especialmente adecuado para la preparación de oligonucleótidos que comprenden 2, 3, 4, 5 ó 6 residuos nucleotídicos, y particularmente dímeros, trímeros y tetrámeros.
Como se ha expuesto previamente, el método de la invención puede utilizarse en la síntesis de secuencias de RNA, 2'-O-alquil-RNA, 2'-O-alcoxialquil-RNA y 2'-O-alquenil-RNA. 2'-O-(grupo protector, v.g. fpmp)-5'-O-(4,4-dimetoxitritil)-ribonucleósido 3'-H-fosfonatos 9 y 2'-O-(alquil, alcoxialquil o alquenil)-5'-O-(4,4-dimetoxitritil)-ribonucleósido 3'-H-fosfonatos 10a-c se pueden preparar, por ejemplo, a partir de los bloques de construcción de nucleósidos protegidos correspondientes, p-cresil H-fosfonato de amonio y cloruro de pivaloílo.
2
Para secuencias de ribozimas quimioterapéuticamente útiles, la síntesis de RNA en escala relativamente grande es una cuestión de importancia práctica considerable. La incorporación de 2'-O-alquil, 2'-O-alquil sustituido y 2'-O-alquenil [especialmente 2'-O-metil, 2'-O-alil y 2'-O-(2-metoxietil)]-ribonucleósidos (Sproat, B.S. en "Methods in Molecular Biology, Vol. 20. Protocols for Oligonucleotides and Analogs", Agrawal, S., compilador, Humana Press, Totowa, 1993) en oligonucleótidos es actualmente una cuestión de gran importancia, dado que estas modificaciones confieren tanto resistencia a la digestión por las nucleasas como propiedades de hibridación satisfactorias a los oligómeros resultantes.
El paso de transferencia de azufre se lleva a cabo sobre el producto del acoplamiento de H-fosfonato in situ, es decir sin separación y purificación del compuesto intermedio producido por la reacción de acoplamiento. Preferiblemente, el agente de transferencia de azufre se añade al mismo tiempo que el agente de acoplamiento. El reactivo de transferencia de azufre empleado y el agente de acoplamiento se seleccionan ambos para minimizar las reacciones secundarias, de tal modo que se favorece la velocidad de acoplamiento sobre la velocidad de la reacción secundaria del H-fosfonato-monoéster con el agente de transferencia de azufre. La elección de los reactivos está influenciada por la naturaleza del H-fosfonato y el alcohol que deben acoplarse.
El procedimiento de acoplamiento presente difiere del seguido en el enfoque de H-fosfonato para síntesis en fase sólida (Froehler et al., Methods in Molecular Biology, 1993) en el sentido de que la transferencia de azufre se realiza en cada paso de acoplamiento en lugar de sólo una vez después del ensamblaje de la secuencia de oligómeros entera.
Los grupos protectores pueden eliminarse utilizando métodos conocidos en la técnica para el grupo y función protector(a) particular. Por ejemplo, grupos protectores transitorios, particularmente gamma-cetoácidos tales como los grupos protectores de tipo levulinoílo, pueden eliminarse por tratamiento con hidrazina, por ejemplo, hidrazina tamponada, tal como el tratamiento con hidrazina en condiciones muy suaves descrito por van Boom, J.H.; Burgers, P.M.J. Tetrahedron Lett., 1976, 4875-4878. Los oligonucleótidos parcialmente protegidos resultantes con funciones 3'-hidroxi libres pueden convertirse luego en los H-fosfonatos correspondientes que son compuestos intermedios que se pueden emplear para la síntesis de bloques de oligonucleótidos y sus análogos fosforotioato.
Cuando se desprotege el producto deseado una vez que se ha producido éste, los grupos protectores en los átomos de fósforo que producen enlaces fosforotioato se eliminan comúnmente en primer lugar. Por ejemplo, un grupo cianoetilo puede eliminarse por tratamiento con una amina fuertemente básica tal como DABCO, 1,5-diazabiciclo-[4.3.0]non-5-eno (DBN), 1,8-diazabiciclo[5.4.0]undec-7-eno (DBU) o trietilamina.
Los grupos fenilo y fenilo sustituido en los enlaces internucleotídicos de fosforotioato y en los residuos de bases pueden eliminarse por tratamiento con oximatos, por ejemplo con el conjugado base de una aldoxima, preferiblemente la de E-2-nitrobenzaldoxima o piridina-2-carboxaldoxima (Reese, et al., Nucleic Acids Res. 1981). Kamimura, T. et al., en J. Am. Chem. Soc., 1984, 106 4552-4557 y Sekine, M. et al., Tetrahedron, 1985, 41, 5279-5288 en un enfoque para la síntesis de oligonucleótidos por el enfoque de fosfotriéster en solución, basado en compuestos intermedios de S-fenil-fosforotioato; y van Boom y sus colaboradores en un enfoque para síntesis de oligonucleótidos, basado en compuestos intermedios de S-(4-metilfenil)fosforotioato (Wreesman, C.T.J. et al., Tetrahedron Lett., 1985, 26, 933-936) han demostrado todos ellos que el desbloqueo de S-fenil-fosforotioatos con iones oximato (utilizando el método de Reese et al., 1978; Reese, C.B.; Zard, L. Nucleic Acids Res., 1981, 9, 4611-4626) conducía a enlaces internucleotídicos fosfodiéster naturales. En la presente invención, el desbloqueo de los fosforotioatos protegidos en S-(fenilo) con la base conjugada de E-2-nitrobenzaldoxima transcurre suavemente y sin escisión internucleotídica detectable alguna.
\newpage
Otros grupos protectores básicos, por ejemplo grupos benzoílo, pivaloílo y amidina pueden eliminarse por tratamiento con amoniaco acuoso concentrado.
Los grupos tritilo (con inclusión de monometoxi- y dimetoxi-tritilo) presentes pueden eliminarse por tratamiento con ácido. Con relación a la estrategia de desbloqueo global en la síntesis de oligodesoxirribo-nucleótidos, otra consideración importante de la presente invención es que la eliminación del grupo protector tritilo, a menudo un grupo DMTr 5'-terminal ("destritilación") debería proceder sin despurinación concomitante, especialmente de cualesquiera residuos de 6-N-acil-2'-desoxiadenosina. De acuerdo con una realización de la invención, los presentes inventores han encontrado que dicha despurinación, que quizás es difícil de evitar por completo en la síntesis en fase sólida, puede suprimirse totalmente efectuando la "destritilación" con una solución diluida de cloruro de hidrógeno a baja temperatura, particularmente cloruro de hidrógeno aprox. 0,45M en solución en dioxano-diclorometano (1:8 v/v) a -50ºC. En estas condiciones de reacción, la "destritilación" puede completarse rápidamente, y en ciertos casos después de 5 minutos o menos. Por ejemplo, cuando se trató 6-N-benzoil-5'-O-(4,4'-dimetoxitritil)-2'-desoxiadenosina con cloruro de hidrógeno en dioxano-diclorometano en tales condiciones, la "destritilación" era completa al cabo de 2 minutos, pero no se detectó despurinación alguna ni siquiera después de 4 horas.
Los grupos protectores sililo pueden eliminarse por tratamiento con fluoruro, por ejemplo con una solución de sal fluoruro de tetraalquil-amonio tal como fluoruro de tetrabutilamonio.
Los grupos protectores Fpmp pueden eliminarse por hidrólisis ácida en condiciones suaves.
El proceso de la presente invención puede emplearse para la preparación de secuencias oligonucleótidos con (a) exclusivamente enlaces internucleotídicos fosfodiéster, (b) exclusivamente enlaces internucleotídicos fosforotioato-diéster y (c) una combinación de enlaces internucleotídicos fosfodiéster y fosforotioato-diéster a la vez.
Será evidente que cuando el proceso de la presente invención se aplica a la síntesis por bloques, están disponibles cierto número de estrategias alternativas en lo que respecta a la ruta para dar el producto deseado. Éstas dependerán de la naturaleza del producto deseado. Por ejemplo, puede prepararse un octámero por la preparación de dímeros, acoplarse para producir tetrámeros, los cuales se acoplan luego para producir el octámero deseado. Alternativamente, un dímero y un trímero pueden acoplarse para producir un pentámero, que puede acoplarse con un trímero adicional para producir el octámero deseado. La elección de la estrategia está a discreción del usuario. Sin embargo, la característica común de tal acoplamiento por bloques es que un H-fosfonato oligómero que comprende dos o más unidades se acopla con un alcohol oligómero que comprende también dos o más unidades. Muy frecuentemente, se acoplan 3' H-fosfonatos oligonucleotídicos con oligonucleótidos que tienen funciones 5'-hidroxi libres.
El proceso de la presente invención se puede emplear también para preparar oligonucleótidos cíclicos, especialmente oligodesoxirribonucleótidos cíclicos y ribonucleótidos cíclicos. En la preparación de oligonucleótidos cíclicos, se prepara un oligonucleótido que comprende una función H-fosfonato, a menudo un 3' ó 5' H-fosfonato, y se introduce una función hidroxi libre por desprotección apropiada. La posición de la función hidroxi libre se selecciona usualmente de modo que corresponda al H-fosfonato, por ejemplo una función 5'-hidroxi se acoplaría con un 3' H-fosfonato, y una función 3'-hidroxi se acoplaría con un 5' H-fosfonato. Las funciones hidroxi y H-fosfonato pueden acoplarse luego intramolecularmente en solución en presencia de un agente de acoplamiento, y esta reacción va seguida por una transferencia de azufre in situ.
El producto deseado, particularmente un oligonucleótido desprotegido, tal como un oligonucleótido desprotegido que comprende exclusivamente fosfodiéster o exclusivamente enlaces internucleotídicos fosforotioato, o una mezcla de fosfodiéster y al menos un enlace internucleotídico fosforotioato, se purifican ventajosamente por métodos conocidos en la técnica, tales como uno o más de cromatografía de intercambio iónico, cromatografía en fase inversa, y precipitación a partir de un disolvente apropiado. Puede emplearse también el procesamiento ulterior del producto mediante, por ejemplo, ultrafiltración.
El método de acuerdo con la invención se ilustrará ahora con referencia a los ejemplos siguientes, que no pretenden ser limitantes:
En los ejemplos, debe indicarse que en los casos en que los residuos de nucleósidos y los enlaces internucleotídicos están escritos en cursiva, ello indica que los mismos están protegidos de algún modo. En el presente contexto, A, C, G, T y T (que no está escrito en cursiva) representan 2'-desoxiadenosina protegida en N-6 con un grupo benzoílo, 2'-desoxicitidina protegida en N-4 con un grupo benzoílo, 2'-desoxiguanosina protegida en N-2 y en O-6 con grupos isobutirilo y 2,5-diclorofenilo, timina protegida en O-4 con un grupo fenilo, y timina desprotegida. Por ejemplo, como se indica en el esquema 3, p(s) y p(s') representan S-(2-cianoetil)- y S-(fenil)-fosforotioatos, respectivamente, y p(H), que no está protegido y por consiguiente no está escrito en cursiva, representa un H-fosfonato-monoéster si está situado al final de una secuencia o fijado a un monómero, pero en caso contrario representa un H-fosfonato-diéster.
Ejemplos N-[(2-Cianoetil)sulfanil]succinimida
Se calentaron N-bromosuccinimida (17,80 g, 0,10 mol) y disulfuro de di-(2-cianoetilo) (17,20 g, 0,10 mol), a reflujo, en 1,2-dicloroetano seco (30 ml) en una atmósfera de argón durante 2 h. Después que la mezcla de reacción se hubo enfriado a la temperatura ambiente, se añadió hexano (300 ml) y la mezcla se agitó durante 10 min. La capa superior se decantó y el residuo aceitoso se trituró con acetato de etilo (20 ml) durante 10 min. El sólido obtenido se recogió por filtración y se lavó con éter (70 ml) para dar el compuesto del título como un sólido blanquecino (12,4 g, 67,3%) (encontrado, en material recristalizado en etanol absoluto: C, 45,8; H, 4,3; N, 15,2. C_{7}H_{8}N_{2}O_{2}S requiere: C, 45,64; H, 4,38; N, 15,21%), p.f. 110-112ºC; \delta_{H} [(CD_{3})_{2}SO] 2,71 (4H, s), 2,75 (2H, t, J 6,9), 3,02 (2H, t, J 6,9); \delta_{C} [(CD_{3})_{2}SO] 17,9, 32,8, 118,2, 177,9.
N-(Fenilsulfanil)succinimida
N-Bromosuccinimida (8,90 g, 50,0 mmol) y disulfuro de difenilo (10,9 g, 49,9 mmol) se calentaron, a reflujo, en 1,2-dicloroetano seco (40 ml) durante 2 h. Después que la mezcla de reacción se hubo enfriado a la temperatura ambiente, se añadió hexano (150 ml) y la mezcla se agitó durante 30 min. El producto se recogió por filtración y se lavó con hexano (50 ml). La recristalización en metanol absoluto dio el compuesto del título como cristales incoloros (6,2 g, 59,8%), p.f. 110-112ºC (lit. ^{7}115-116ºC; \delta_{H} [(CD_{3})_{2}SO] 2,84 (4H, s), 7,32 (5H, m); \delta_{C} [(CD_{3})_{2}SO] 28,8, 126,3, 127,6, 129,2, 135,3, 177,2.
Preparación de DMTr-Tp(s)T-Lev (B=B'=timin-1-ilo)
DMTr-Tp(H) (B = timin-1-ilo) (0,852 g, 1,2 mmol) y HO-T-Lev (B' = timin-1-ilo) (0,340 g, 1,0 mmol) se evaporaron juntos con piridina seca (2 ml) y el residuo se redisolvió luego en piridina seca (6 ml) a la temperatura ambiente. A esta solución se añadió, gota a gota durante un periodo de 5 min, una solución de N-[(2-cianoetil)sulfanil]succinimida (0,46 g, 2,5 mmol) y fosforoclorurato de difenilo (0,52 ml, 3,5 mmol) en piridina seca (6 ml). Después de 5 min, se añadió agua (1 ml). La mezcla de reacción se agitó luego durante 5 min adicionales antes de distribuirla entre diclorometano (50 ml) y solución acuosa saturada de hidrogenocarbonato de sodio (50 ml). La capa orgánica se separó y se lavó luego adicionalmente con solución acuosa saturada de hidrogenocarbonato de sodio (2 x 30 ml). Las capas orgánicas reunidas se secaron (MgSO_{4}) y se concentraron a presión reducida. El residuo se fraccionó por cromatografía en columna corta sobre gel de sílice: la evaporación de las fracciones apropiadas, que se eluyeron con CH_{2}Cl_{2}-MeOH (96:4 v/v) dio DMTr-Tp(s)T-Lev (B = B' = timin-1-ilo) como una espuma incolora (1,009 g, 99,3%); \delta_{P}[(CD_{3}) _{2}SO] 27,9, 27,7, 27,0 (aprox. 0,7%).
Ejemplos adicionales del proceso de la presente invención se llevaron a cabo por adición de una solución de fosforoclorurato de difenilo 5b (2,5 mmol) y N-[(2-cianoetil)sulfanil]- o N-(fenilsulfanil)-succinimida (8a ó 8b, 2,5 mmol) en piridina anhidra (6 ml) gota a gota durante un periodo de 5 min a una solución agitada del H-fosfonato monómero (1,2 ó 1,4 mmol) y el componente 5'-OH (1,0 mmol) disuelto en piridina anhidra (6 ml) a la temperatura ambiente. Después de un periodo adicional de 5-25 min (véase tiempo total de reacción), los productos se sometieron al tratamiento de acabado y se cromatografiaron. Los resultados obtenidos se dan en la tabla 1.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(Tabla pasa a página siguiente)
TABLA 1
3

Claims (28)

1. Un proceso para la preparación de un fosforotioato-triéster que comprende acoplar un H-fosfonato con un alcohol en presencia de un agente de acoplamiento para formar de este modo un H-fosfonato-diéster, y subsiguientemente, el H-fosfonato-diéster se hace reaccionar con un agente de transferencia de azufre para formar con ello un fosforotioato-triéster caracterizado porque la reacción de acoplamiento entre el H-fosfonato y el alcohol tiene lugar en presencia del agente de transferencia de azufre.
2. Un proceso de acuerdo con la reivindicación 1, en el cual el H-fosfonato es un nucleósido u oligonucleótido protegido que comprende una función 3' H-fosfonato.
3. Un proceso de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 y 2, en el cual el alcohol es un nucleósido u oligonucleótido protegido que comprende una función 5'-hidroxi libre.
4. Un proceso de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en el cual el agente de acoplamiento es un fosforoclorurato de diarilo de fórmula (ArO)_{2}POCl, en la cual Ar representa fenilo, 2-clorofenilo, 2,4,6-triclorofenilo o 2,4,6-tribromofenilo.
5. Un proceso de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en el cual el agente de transferencia de azufre tiene la fórmula química general:
L ------ S ------ D
en la cual L representa un grupo lábil, y D representa un grupo arilo, un grupo metilo, un grupo alquilo sustituido o un grupo alquenilo.
6. Un proceso de acuerdo con la reivindicación 5, en el cual el grupo lábil es una morfolina-3,5-diona, ftalimida, succinimida, maleimida o indazol, y D representa un grupo 4-halofenilo, grupo 4-alquilfenilo, grupo metilo, grupo bencilo, grupo alquilbencilo, grupo halobencilo, grupo alilo, grupo crotilo, grupo 2-cianoetilo o un grupo 2-(4-nitrofenil)etilo.
7. Un proceso de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en el cual el H-fosfonato y el alcohol se seleccionan independientemente del grupo constituido por desoxirribonucleósidos, oligodesoxirribonucleósidos, ribonucleósidos, 2'-O-(alquil, alcoxialquil o alquenil)-ribonucleósidos, oligorribonucleótidos y 2'-O-(alquil, alcoxialquil o alquenil)-oligorribo-nucleótidos.
8. Un proceso de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en el cual el H-fosfonato o el alcohol, preferiblemente el alcohol, está unido a un soporte sólido.
9. Un proceso de acuerdo con la reivindicación 8, en el cual un alcohol está unido a un soporte sólido, el alcohol es un nucleósido o nucleótido que tiene un grupo hidroxi libre en la posición 5', y está unido al soporte sólido por la posición 3'.
10. Un proceso de acuerdo con la reivindicación 8 ó 9, en el cual un alcohol unido a un soporte sólido se pone en contacto con una solución que comprende un H-fosfonato, un agente de acoplamiento y un agente de transferencia de azufre.
11. Un proceso de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7, en el cual el proceso se lleva a cabo en fase de solución.
12. Un proceso de acuerdo con la reivindicación 11, en el cual una solución que comprende el agente de acoplamiento y el agente de transferencia de azufre se añade a una solución que comprende el H-fosfonato y el alcohol.
13. Un proceso de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en el cual se emplea un oligonucleótido H-fosfonato y/o un oligonucleótido que comprende una función 3' ó 5'-hidroxi libre y uno cualquiera o ambos del oligonucleótido H-fosfonato y el oligonucleótido que comprende una función 3' ó 5'-hidroxi libre comprenden uno o más enlaces internucleotídicos fosfotioato.
14. Un proceso de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en el cual el fosforotioato-triéster comprende de 2 a 8, preferiblemente de 2 a 4 residuos nucleotídicos.
15. Un proceso para la preparación de un oligonucleótido, oligonucleótido-fosforotioato u oligonucleótido/oligo-nucleótido-fosforotioato mixto desprotegido que comprende:
a) acoplar un nucleósido protegido u oligonucleótido H-fosfonato que comprende una función 3' ó 5' H-fosfonato con un nucleósido u oligonucleótido protegido que comprende una función 3' ó 5'-hidroxi libre en presencia de un agente de acoplamiento para formar de este modo un H-fosfonato-diéster y, in situ, hacer reaccionar el H-fosfonato-diéster con un agente de transferencia de azufre para producir un fosforotioato-triéster, en el cual la reacción de acoplamiento entre el H-fosfonato y el alcohol tiene lugar en presencia del agente de transferencia de azufre; y
b) desproteger el fosforotioato-triéster producido en a) para formar de este modo un oligonucleótido, oligonucleótido-fosforotioato u oligonucleótido/oligonucleótido-fosforotioato mixto desprotegido.
16. Un proceso de acuerdo con la reivindicación 15, en el cual el oligonucleótido, oligonucleótido-fosforotioato u oligonucleótido/oligonucleótido-fosforotioato mixto desprotegido se purifica posteriormente.
17. Un proceso de acuerdo con la reivindicación 15 ó 16, en el cual el nucleósido u oligonucleótido H-fosfonato protegido comprende una función 3' H-fosfonato y el nucleósido u oligonucleótido protegido que comprende una función hidroxi libre comprende una función 5'-hidroxi libre.
18. Un proceso de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 15 a 17, en el cual el agente de acoplamiento es un fosforoclorurato de diarilo de fórmula (ArO)_{2}POCl, en la cual Ar representa fenilo, 2-clorofenilo, 2,4,6-triclorofenilo o 2,4,6-tribromofenilo.
19. Un proceso de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 15 a 8, en el cual el agente de transferencia de azufre tiene la fórmula química general:
L ------ S ------ D
en la cual L representa un grupo lábil, y D representa un grupo arilo, un grupo metilo, un grupo alquilo sustituido o un grupo alquenilo.
20. Un proceso de acuerdo con la reivindicación 19, en el cual el grupo lábil es una morfolina-3,5-diona, ftalimida, succinimida, maleimida o indazol, y D representa un grupo 4-halofenilo, grupo 4-alquilfenilo, grupo metilo, grupo bencilo, grupo alquilbencilo, grupo halobencilo, grupo alilo, grupo crotilo, grupo 2-cianoetilo o un grupo 2-(4-nitrofenil)etilo.
21. Un proceso de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 15 a 20, en el cual se emplea un oligonucleótido H-fosfonato y/o un oligonucleótido que comprende una función 3'- ó 5'-hidroxi libre y uno cualquiera o ambos del oligonucleótido H-fosfonato y el oligonucleótido que comprende una función 3'- ó 5'-hidroxi libre comprenden uno o más enlaces internucleotídicos fosforotioato.
22. Un proceso para la síntesis de un oligonucleótido desprotegido, comprendiendo dicho proceso un proceso de ensamblaje en el cual se ensambla un oligonucleótido protegido, y un proceso de desprotección en el cual se produce el oligonucleótido desprotegido, comprendiendo el proceso de ensamblaje el acoplamiento de un nucleósido u oligonucleótido H-fosfonato protegido con un nucleósido u oligonucleótido protegido que comprende una función hidroxi libre en presencia de un agente de acoplamiento para formar de este modo un H-fosfonato -diéster, caracterizado porque el acoplamiento del nucleósido u oligonucleótido H-fosfonato protegido con el nucleósido u oligonucleótido protegido que comprende una función hidroxi libre tiene lugar en presencia del agente de transferencia de azufre.
23. Un proceso de acuerdo con la reivindicación 22, en el cual el oligonucleótido desprotegido es un oligonucleótido fosfodiéster, oligonucleótido fosforotioato o un oligonucleótido que comprende a la vez enlaces inter-nucleotídicos fosfodiéster y fosforotioato-diéster.
24. Un proceso de acuerdo con la reivindicación 22 ó 23, en el cual el nucleósido u oligonucleótido H-fosfonato protegido comprende un grupo 3'- ó 5' H-fosfonato.
25. Un proceso de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 22 a 24, en el cual el nucleósido u oligonucleótido protegido que comprende una función hidroxi libre comprende una función 3'- ó 5'-hidroxi libre.
26. Un proceso de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 22 a 25, en el cual el oligonucleótido se purifica posteriormente.
27. Un proceso para la preparación de un H-fosfonato -diéster, que comprende acoplar un H-fosfonato con un alcohol en presencia de un agente de acoplamiento, caracterizado porque la reacción de acoplamiento entre el H-fosfonato y el alcohol tiene lugar en presencia del agente de transferencia de azufre.
28. Un proceso de acuerdo con la reivindicación 27, en el cual el H-fosfonato es un nucleósido u oligonucleótido protegido que comprende una función 3' H-fosfonato y el alcohol es un nucleósido u oligonucleótido protegido que comprende una función 5'-hidroxi libre.
ES01907898T 2000-03-01 2001-02-23 Proceso para la preparacion de fosforoticato-triesteres. Expired - Lifetime ES2220721T3 (es)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GBGB0004889.2A GB0004889D0 (en) 2000-03-01 2000-03-01 Synthesis of oligonucleotides
GB0004889 2000-03-01

Publications (1)

Publication Number Publication Date
ES2220721T3 true ES2220721T3 (es) 2004-12-16

Family

ID=9886705

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES01907898T Expired - Lifetime ES2220721T3 (es) 2000-03-01 2001-02-23 Proceso para la preparacion de fosforoticato-triesteres.

Country Status (21)

Country Link
US (1) US7022833B2 (es)
EP (1) EP1272501B1 (es)
JP (1) JP2003525305A (es)
KR (1) KR20030032924A (es)
CN (1) CN1262557C (es)
AT (1) ATE266037T1 (es)
AU (2) AU2001235766B2 (es)
BR (1) BR0108771A (es)
CA (1) CA2401083A1 (es)
CZ (1) CZ20022930A3 (es)
DE (1) DE60103145T2 (es)
DK (1) DK1272501T3 (es)
ES (1) ES2220721T3 (es)
GB (1) GB0004889D0 (es)
HU (1) HUP0204249A3 (es)
IL (1) IL151238A0 (es)
MX (1) MXPA02008530A (es)
NO (1) NO20024155L (es)
NZ (1) NZ520778A (es)
PL (1) PL362067A1 (es)
WO (1) WO2001064702A1 (es)

Families Citing this family (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB9717158D0 (en) * 1997-08-13 1997-10-22 King S College London Solution synthesis of oligonucleotides and their phosphorothioate analogues
WO2003045969A1 (en) * 2001-11-21 2003-06-05 Avecia Biotechnology Inc. Coupling reagent for h-phosphonate chemistry
EP1386925A1 (en) 2002-07-31 2004-02-04 Girindus AG Method for preparing oligonucleotides
GB0229423D0 (en) * 2002-12-18 2003-01-22 Avecia Ltd Process
CA2744987C (en) 2008-12-02 2018-01-16 Chiralgen, Ltd. Method for the synthesis of phosphorus atom modified nucleic acids
BR112012000828A8 (pt) 2009-07-06 2017-10-10 Ontorii Inc Novas pró-drogas de ácido nucleico e métodos de uso das mesmas
WO2012039448A1 (ja) 2010-09-24 2012-03-29 株式会社キラルジェン 不斉補助基
US9605019B2 (en) 2011-07-19 2017-03-28 Wave Life Sciences Ltd. Methods for the synthesis of functionalized nucleic acids
AU2013288048A1 (en) 2012-07-13 2015-01-22 Wave Life Sciences Ltd. Asymmetric auxiliary group
KR20220139425A (ko) 2012-07-13 2022-10-14 웨이브 라이프 사이언시스 리미티드 키랄 제어
KR101835401B1 (ko) 2012-07-13 2018-03-08 신 니뽄 바이오메디칼 라보라토리즈, 엘티디. 키랄 핵산 어쥬번트
US10322173B2 (en) 2014-01-15 2019-06-18 Shin Nippon Biomedical Laboratories, Ltd. Chiral nucleic acid adjuvant having anti-allergic activity, and anti-allergic agent
EP3095461A4 (en) 2014-01-15 2017-08-23 Shin Nippon Biomedical Laboratories, Ltd. Chiral nucleic acid adjuvant having immunity induction activity, and immunity induction activator
WO2015108048A1 (ja) 2014-01-15 2015-07-23 株式会社新日本科学 抗腫瘍作用を有するキラル核酸アジュバンド及び抗腫瘍剤
PT3094728T (pt) 2014-01-16 2022-05-19 Wave Life Sciences Ltd Desenho quiral

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB9501465D0 (en) 1995-01-25 1995-03-15 King S College London Nucleoside phosphorothioate derivatives,synthesis and use thereof
US6096881A (en) 1997-05-30 2000-08-01 Hybridon, Inc. Sulfur transfer reagents for oligonucleotide synthesis
GB9717158D0 (en) * 1997-08-13 1997-10-22 King S College London Solution synthesis of oligonucleotides and their phosphorothioate analogues
GB9924285D0 (en) * 1999-10-14 1999-12-15 Avecia Ltd Process

Also Published As

Publication number Publication date
US20030099981A1 (en) 2003-05-29
WO2001064702A1 (en) 2001-09-07
KR20030032924A (ko) 2003-04-26
PL362067A1 (en) 2004-10-18
CN1406242A (zh) 2003-03-26
GB0004889D0 (en) 2000-04-19
DK1272501T3 (da) 2004-08-16
DE60103145D1 (de) 2004-06-09
EP1272501B1 (en) 2004-05-06
CA2401083A1 (en) 2001-09-07
NO20024155D0 (no) 2002-08-30
CN1262557C (zh) 2006-07-05
MXPA02008530A (es) 2003-02-12
EP1272501A1 (en) 2003-01-08
NO20024155L (no) 2002-10-24
AU2001235766B2 (en) 2005-01-27
JP2003525305A (ja) 2003-08-26
CZ20022930A3 (cs) 2002-11-13
ATE266037T1 (de) 2004-05-15
HUP0204249A2 (hu) 2003-04-28
HUP0204249A3 (en) 2004-08-30
DE60103145T2 (de) 2005-05-04
BR0108771A (pt) 2002-11-26
AU3576601A (en) 2001-09-12
IL151238A0 (en) 2003-04-10
US7022833B2 (en) 2006-04-04
NZ520778A (en) 2004-05-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
ES2197491T3 (es) Sintesis en fase de solucion de oligonucleotidos.
ES2220721T3 (es) Proceso para la preparacion de fosforoticato-triesteres.
AU739468B2 (en) Activators for oligonucleotide synthesis
ES2382807T3 (es) Nuevos ácidos nucleicos artificiales del tipo de enlace N-O con reticulación
Wei Coupling activators for the oligonucleotide synthesis via phosphoramidite approach
WO1993001204A1 (en) Method and compounds for rna synthesis
AU2001235766A1 (en) Process for the preparation of phosphorothioate triesters
CA2386867A1 (en) Process for the preparation of phosphorothioate triesters and oligonucleotides
KR20220133878A (ko) 핵산 올리고머의 제조 방법
CA2421489A1 (en) Synthons for oligonucleotide synthesis
Diaz et al. Synthesis of oligodeoxynucleotides containing 2-substituted guanine derivatives using 2-fluoro-2′-deoxyinosine as common nucleoside precursor
US5756707A (en) Method of making 2'-O-alkyl pyrimidine ribonucleosides
Aviñó et al. 1 Methods for the synthesis of oligonucleotides
KR100228606B1 (ko) 올리고뉴클레오티드의 화학적 합성 방법
Nawrot et al. Bis (hydroxymethyl) phosphinic acid analogues of acyclic nucleosides; synthesis and incorporation into short DNA oligomers
AU749343C (en) Solution phase synthesis of oligonucleotides
US8193337B2 (en) Oxidation process
WO2003045969A1 (en) Coupling reagent for h-phosphonate chemistry
MXPA00001408A (es) Sintesis en fase de solucion de oligonucleotidos
AU2005315631A1 (en) Synthesis of phosphitylated compounds using a quaternary heterocyclic activator