ES2216143T3 - Uso de hemicelulosa en alimentos con bajo contenido calorico. - Google Patents
Uso de hemicelulosa en alimentos con bajo contenido calorico.Info
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Abstract
PROCEDIMIENTO PARA QUE LOS ANIMALES MONOGASTRICOS MEJOREN LA EFICACIA CON LA QUE APROVECHAN LAS RACIONES DIETETICAS DE BAJO CONTENIDO CALORICO. LA ADICION DE UN ENZIMA DE UNA HEMICELULASA, COMO LA MANANASA, A LAS RACIONES DIETETICAS QUE NO TIENEN UN SUPLEMENTO DE GRASA CONCENTRADA O QUE CONTIENEN GRASA REDUCIDA MEJORA LA EFICACIA CON LA QUE LOS ANIMALES MONOGASTRICOS APROVECHAN LAS RACIONES.
Description
Uso de hemicelulosa en alimentos con bajo
contenido calórico.
La presente invención se relaciona con una
composición de alimento que comprenda una harina de semilla
leguminosa; (b) aminoácidos esenciales y (c) una enzima de
hemicelulosa, en donde la composición de alimento tiene una cantidad
de grasa concentrada añadida menor del 2%, y un contenido total de
energía que se puede metabolizar de menos de 3086 Kcla/Kilogramo por
usarse en métodos para alimentar animales monogástricos, y más
particularmente, a composiciones alimenticias que emplean uno o más
hemicelulosas, tal como la mananasa, la cual disminuye el alimento
para ganar, o incrementar la ganancia de peso de animales que se
alimentaron con una dieta baja en calorías que contiene la
enzima.
La población mundial sigue creciendo, pero la
tierra para la producción de alimentos es finita. J.E. Cohen,
Discover 17:42-47 (1996). Con el objetivo de
mantenerse al día con la demanda creciente de alimentos, se
necesitarán mejoras en la uso de fuentes de alimentos para mantener
los estándares de vida actuales. Un planteamiento para la
eficiencia mejorada ha sido mejorar la digestión de alimentos
mediante la inclusión de enzimas. Chesson, A., Enzimas
complementarias para mejorar la uso de dietas de cerdos y aves de
corral, págs. 71-89, en Haresign, W. y D.J.A. Cole
(eds.), Recent Advances in Animal Nutrition -1987,
Butterworths, Londres. La digestión auxiliada de manera enzimática
no solamente produce más carne por libra de alimento, sino que
también reduce el volumen de estiércol y el costo de
eliminación.
Se han reconocido claramente cuatro tipos de
enzimas en el mercado por su valor en los alimentos de animales. En
las dietas que contienen trigo, centeno o triticalo, se ha mostrado
que la enzima xilanasa
(endo-1,4-\beta-D-xilanohidrolasa,
E.C. 3.2.1.8) es beneficiosa. Petterson y colaboradores, British
Journal of Nutrition 62:139-149, (1989). El
trigo, el centeno y el triticalo híbrido de trigo/centeno contienen
grandes cantidades de arabinoxilano de polisacárido sin almidón en
la pared celular del endosperma. Los animales monogástricos no
digieren el arabinoxilano, pero la xilanasa microbiana lo
hiroliza.
Un segundo ejemplo de una enzima con uso
difundido en los alimentos, es la \beta-glacanasa
[celulosa,
endo-1,4-\beta-D-glucan
4-glucanohidrolasa E.C. 3.2.1.4; o
endo-1,3- (1,3 ; 1,4)-\beta -D-
glucan 3(4)-glucanohidrolasa E.C. 3.2.1.6]
de la cual se ha mostrado que es especialmente beneficiosa en
dietas que contienen cebada y avena. Rotter y colaboradores,
Nutrition Reports Internacional 39:107-120
(1989). Además de interferir con la digestión, el glucano provoca
un estiércol húmedo y pegajoso que induce ampollas de pechuga en
las aves de corral. En la práctica, la xilanasa y la
\beta-glucanasa se aplican juntas ya que tanto el
arabinoxilano como el glucano están presentes en los granos de
cereal. Petterson y colaboradores, Animal Production
51:210-20 (1990).
El uso de enzimas que separan el fósforo a partir
de un ácido fítrico (hexacisfosfato de mio-inositol)
es un tercer ejemplo de la uso beneficiosa de las enzimas en el
alimento de animales. Simons y colaboradores, British Journal of
Nutrition, 64:525-540 (1990). En los animales
monogástricos, no se libera el fosfato a partir del ácido fítico
durante la digestión, sino que se libera en el estiércol a través
de la acción microbiana. El ácido fítico tiene un contenido
significativo en los alimentos típicos. El escape de fosfato llega
a ser un problema durante la eliminación del estiércol porque
provoca la eutrofización de los ríos, lagos o bahías cercanas. La
incorporación de la fitasa disminuye el contenido de fosfato en el
estiércol y disminuye de manera significativa la necesidad de
añadir sales de fosfato a las dietas.
La mananasa es otra enzima que ha ganado uso
comercial en las dietas que se basan en maíz y en frijol de soya. El
alimento disminuido para la ganancia, o la ganancia de peso
incrementado, de los animales monogástricos que se alimentan con
una dieta que contiene mananasa, fue inesperado en una dieta que se
basa en maíz. Hasta el descubrimiento de que la
endo-1,4-\beta-mananasa
bacteriana (E.C. 3.2.1.78, también conocida como manan
endo-1,4- \beta-manosidasa, ver
McCleary, B.V., \beta-D-Mananasa,
Methods in Enzymology 160:596-609, (1988)
aumenta la eficiencia del alimento en dietas de
maíz-frijol de soya, las enzimas no se usaban
frecuentemente en los alimentos de aves de corral o de cerdos que
se criaban con dietas de maíz-soya. La Patente de
los Estados Unidos de Norteamérica Número 5,429,828, la cual se
incorpora a la presente como referencia, enseña un método para
mejorar la eficiencia de energía de alimentos de animal que
contienen hemicelulosa, mediante la adición hemicelulosa,
especialmente mananasa, a la dieta.
Fue inesperado el efecto positivo de la adición
de la
endo-1,4-\beta-D-mananasa
en la eficiencia de la alimentación en una dieta que se basa en
maíz. En la cebada o la avena que contiene glucano
enlazado-mezclado, o trigo, centeno y triticalos
que contienen arabinoxilano, el polímero antinutritivo representa
un gran porcentaje del endosperma de la semilla. En contraste,
existe solamente un contenido muy pequeño de polímeros que se basan
en la
1,4-\beta-D-manan
en las dietas comunes que se basan en maíz. La fuente principal de
galactomanan en una dieta común que se basa en maíz, es la harina
de frijol de soya (que se añade principalmente como una fuente de
proteína). Basados en el análisis completo de azúcar y en el
porcentaje de polisacáridos sin almidón, la harina de frijol de
soya podría contener el orden de 1.3 por ciento de manan. De esta
manera, una dieta con el 30 por ciento de harina de frijol de soya,
tendría solo aproximadamente 0.4 por ciento de polímero de manan.
La energía agregada que se derivaría de una digestión completa de
este pequeño porcentaje de la dieta, no podría explicar el gran
mejoramiento que se ve en la conversión del alimento y la ganancia
de peso.
En muchas áreas del mundo, se utilizan raciones
de dieta que contienen un bajo contenido de energía que se puede
metabolizar. Las raciones de dieta en estos países no se suplementan
con grasa. Como consecuencia, existe una necesidad de incrementar la
eficiencia de energía para la uso de las dietas bajas en grasa. En
los países en desarrollo o desarrollados, se están eliminando la
grasa concentrada complementaria de la dieta, por razones de salud.
Además, existe un número sorprendente de problemas asociados con la
adición de grasa concentrada a las raciones de dieta, para
incrementar el contenido de energía que se puede metabolizar (ME,
por sus siglas en inglés) del alimento (Rouse, R.H., Calidad de
Grasa, el confuso mundo de las grasas de alimento, págs.
55-63 en: Proceedings of the 1994
Maryland Nutrition Conference, marzo 24-25,
Baltimore, MD, University of Maryland Feed Industry Council, Collage
Park, MD).
Se sabe que la oxidación de los ácidos grasos no
saturados en la grasa, lleva a la formación de peróxidos y de
radicales libres. Esto a su vez lleva a la oxidación de los
nutrientes y las vitaminas del alimento. También hay evidencia
disponible que indica que las dietas elevadas en grasa pueden llevar
a falla ventricular y/o problemas de ascitis en pollos tiernos
(Mulins, T.M. y W.W. Taylor, Efectos de una dieta elevada en grasa
en el crecimiento, hipertrofia ventricular derecha, falla
ventricular derecha, y formación de ascitis en pollos tiernos,
Resumen 25, p 11, Southern Poultry Science Society, 16^{th}
Annual Meeting, Enero 16-17, 1995, Atlanta,
Georgia). Algunas fuentes de grasa de alimento para animales
incluye grasa de desperdicio de restaurante, la cual se ha
hidrogenado de manera parcial para crear ácidos grasos no naturales
con enlaces dobles trans, que pueden interferir con la
fertilidad, el metabolismo de los ácidos grasos y el valor de
energía del alimento (Rouse, supra). Otra cuestión es la
presencia de ácidos grasos libres en las grasas comerciales que
pueden tener efectos adversos en la producción, y pueden tener un
efecto antimicrobiano en el intestino de pollo (Rouse,
supra). Las grasas mezcladas también están contaminadas
frecuentemente con PCBs, residuos de pesticida, metales pesados, y
gosipol a partir del extracto de jabón de aceite de semilla de
algodón (Rouse, supra). Los gerentes de molinos de alimentos
tienen que vigilar todos estos aspectos. Es bien sabido que la
grasa inferida (y los materiales disueltos en ella, como el PCB),
pueden incorporarse directamente dentro de la grasa del animal que
la consume, y que ésta puede presentar riesgos importantes de
salud. Además, la grasa en las raciones de los animales puede
influir el sabor de la carne. Por ejemplo, más de 1 por ciento de
aceite de pescado en las dietas de los pollos provocará un olor
distintivo de tipo-pescado en la carne o los huevos
(Lesson, S., y J.D. Summers, Capítulo 2: Evaluación del ingrediente
en la fórmula de dieta, en Comercial Poultry Nutrition,
University Books, Guelph, Ontario, 1991). El efecto del alto
contenido de grasa (especialmente grasa animal) en el sabor del
producto, es otro aspecto al que algunos productores han empezado a
prestar atención. Es de interés general la capacidad para evitar el
uso de grasa y todavía obtener la misma productividad.
Existe una necesidad continua por una eficiencia
más elevada en la producción de alimentos y la urgencia para
proporcionar soluciones solamente se incrementará con el tiempo. No
siempre es posible o deseable el uso de dietas de energía elevada,
las cuales incluyen diferentes porcentajes de grasa para promover el
crecimiento eficiente del animal, debido al costo elevado de la
grasa o de los aceites vegetales, o a las cantidades limitadas de
grasa animal disponible en algunas de las partes más altamente
pobladas del mundo (por ejemplo, en India o China). Existe una
ineficacia básica en el uso de la grasa disponible en el alimento.
Por ejemplo, en las industrias química y del jabón, la grasa podría
tener más valor. Finalmente, existe un número de aspectos y
problemas de salud asociados con la incorporación de grasas
concentradas exógenas en las dietas de animales. Estos aspectos son
una indicación adicional de que se necesita urgentemente una dieta
de alimento de animal de grasa reducida, caloría reducida que
mantenga una eficiencia elevada de alimentación.
Existe por lo tanto una necesidad por un método
que incremente la eficiencia con la que los animales monogástricos
utilicen las raciones de alimento que contenga un contenido bajo de
energía que se pueda metabolizar. De igual manera, existe una
necesidad por una ración de alimento que los animales monogástricos
puedan utilizar de manera eficiente, sin la adición de grasa.
De conformidad con lo anterior, es un objetivo de
la presente invención proporcionar una composición alimenticia para
su uso en un método para incrementar la eficiencia con la que los
animales monogástricos utilizan las raciones de alimento que
contienen un contenido bajo de energía que se puede metabolizar.
Es otro objetivo de esta invención proporcionar
una composición alimenticia para su uso en un método para
incrementar la eficiencia con la que los animales monogástricos
utilizan las raciones de alimento que no contienen grasa
concentrada agregada.
Estos y otros objetivos se consiguen, de
conformidad con una realización de la presente invención mediante el
suministro de una composición de alimento que comprende (a) una
harina de semilla leguminosa; (b) aminoácidos esenciales y (c) una
enzima de hemicelulosa, en donde la composición de alimento tiene
una cantidad de grasa concentrada añadida menor al 2%, y un
contenido total de energía que se puede metabolizar, de menos de
3086 Kcal/Kilogramo.
Otra realización de la invención es una
composición de alimento que comprende (a) una harina de frijol de
soya; (b) aminoácidos esenciales y (c) una enzima de hemicelulosa,
en donde la composición de alimento tiene un contenido total de
energía que se puede metabolizar, de menos de 3086
Kcal/Kilogramo.
Otra realización de la invención es una
composición e alimento que comprende (a) una harina de frijol de
soya; (b) aminoácidos esenciales y (c) una mananasa, tal como la
endo-1,4-\beta-D-mananasa,
en donde la composición de alimento tiene una cantidad de grasa
concentrada añadida menor al 2%, y un contenido total de energía que
se puede metabolizar, de menos de 3086Kcal/Kilogramo.
Todavía otra realización de la invención, es una
composición de alimento que comprende (a) una harina de frijol de
soya; (b) aminoácidos esenciales y (c) una mananasa, tal como la
endo-1,4-\beta-D-mananasa,
en donde la composición de alimento tiene una cantidad de grasa
concentrada añadida menor al 2%, y un contenido total de energía que
se puede metabolizar, de menos de 3086 Kcal/Kilogramo y no contiene
esencialmente grasa concentrada agregada.
Otra realización de la invención es una
composición de alimento que comprende (a) una harina de frijol de
soya; (b) aminoácidos esenciales y (c) una mananasa, tal como la
endo-
1,4-\beta-D-mananasa,
en donde la composición de alimento tienen un contenido total de
energía que se puede metabolizar, de menos de 3086 Kcal/Kilogramo y
que contiene menos del 2 por ciento de grasa concentrada
agregada.
La Figura 1 muestra un Diagrama de Flujo de Bomba
- Cabeza Doble - para la aplicación de la
endo-1,4-\beta-mananasa
de Molino de Alimento, de conformidad con la presente
invención.
La Figura 2 muestra un ejemplo de la Aplicación
Exitosa de la Enzima en un Molino de Alimento que produce hasta 50
toneladas de Alimento en forma de Píldoras por Hora, de conformidad
con la presente invención.
En la presente invención se puede utilizar
cualquier hemicelulosa, incluyendo cualquier mananasa, y más
específicamente la
endo-1,4-\beta-D-mananasa,
la cual es efectiva para disminuir el alimento a ganancia, o la
ganancia de peso incrementado, de un animal que consume una dieta
baja en grasas. Como un ejemplo, una fuente preferida de enzima es
la
endo-1,4-\beta-mananasa
del Bacillus lentus (ATCC 5045) (Fodge y Anderson,
supra; Fodge, Anderson, y Pettey, supra), fabricada
como un producto con el nombre de fábrica Hemicell ®.
Cuando se valora el valor agregado de la enzima,
frecuentemente se usa un sistema "Punto", el cual es la suma de
los puntos de "peso" (P_{w}) y los puntos de "conversión
de alimento, FC" (P_{pc}). La conversión de alimento se
calcula por medio de dividir el peso del alimento consumido, por el
peso vivo. Se definen los dos tipos de puntos como sigue:
P_{w} = (Peso_{PRUEBA}-
Peso_{CONTROL}) \ / \ 0.06 \ Libras \ (a \ los \ 45 \
\text{días})
P_{pc} = (FC_{CONTROL} -
FC_{PRUEBA}) \ / \
0.01
En la mayoría de las pruebas científicas que se
condujeron en los Estados Unidos de Norteamérica, se observaron
mejorías de apenas 5 a 8 puntos (ver Tabla 2) en los pollos, y se
observaron resultados comparables tanto con pavos, como con cerdos
(no se muestran los datos). Sin embargo, ocasionalmente, se observó
un mejoramiento dramático sobre la aplicación de la
endo-1,4-\beta-D-mananasa
(Rue, J.R., H.R. Zhang, Z.C. Liang, T. Li y F.R. Meng, Aplicación
de la
endo-1,4-\beta-D-mananasa
en la Industria Alimenticia, Zhongguo Siliao (China
Feed) 24:19-21, 1995).
Uno de los inventores condujo experimentos en
cuatro lugares diferentes en China. Promediando los resultados de
las cuatro pruebas, hubo un mejoramiento de 24.6 puntos después del
uso de la
endo-1,4-\beta-D-mananasa.
En la Tabla 1 se resumen los datos de Rue y colaboradores. Se
examinaron las diferencias entre las dietas que se usaron. Basados
en las diferencias, comenzamos algunas pruebas científicas
controladas de manera cuidadosa, para investigar la causa del mayor
impacto de la \beta-mananasa. El resultado
inesperado fue que el contenido de grasa, y/o el contenido de
kilocalorías de la ración, fue la clave para aumentar el efecto de
la
endo-1,4-\beta-D-mananasa,
como se describe más adelante.
Se ajusta la concentración de mananasa a 1000
MU/litro, como se determinó mediante un ensayo de reducción de
azúcar. También se puede determinar la concentración de la enzima,
por ejemplo, con un ensayo de viscosidad o un ensayo basado en
tinta azul. Generalmente, se usa el ensayo de tinta azul como un
ensayo rápido para verificar el progreso de las fermentaciones, y el
ensayo de reducción de azúcar se usa para ensayos de control de
calidad del producto final y muestras de alimento. El producto
final tiene un pH ajustado a entre 7,0 y 7,5, y se estabiliza la
solución de la enzima contra el crecimiento microbiano secundario
mediante la adición de 150 g/litro de cloruro de sodio. De esta
forma, la enzima es muy estable y se mantiene a la temperatura
ambiente hasta que se usa.
El producto de enzima se aplica de preferencia al
alimento de dos maneras. En un primer método, se seca la enzima
sobre granos de frijol de soya (malla de 20-80,
Archer Daniels Midland), usando un secador de lecho fluidificado
Glatt Air a una concentración de enzima de 100 MU por 0,45 kg. De
preferencia se mantiene el contenido final de humedad del producto
de enzima seco, a menos del 8 por ciento. Se agrega este producto
cuando se formula el alimento, y se mezcla a una proporción de una
libra de producto seco de
endo-1,4-\beta-D-mananasa
por 900 kg. de alimento. Generalmente se usa el método del producto
seco cuando no se calienta el alimento mezclado a una temperatura
elevada (por ejemplo, menos de 16º F) durante el procesamiento para
la formación de píldoras. Una tendencia reciente en la fabricación
de alimentos, es el uso de temperaturas muy elevadas en los
formadores de píldoras de alimento y/o expansores y extrusores de
alimento. Por otro lado, en muchos casos se puede rociar el producto
líquido de la enzima de
endo-1,4-\beta-D-mananasa,
sobre píldoras de alimento formadas previamente, a una proporción
de 100 Mu/ton. En un lugar en la línea de producción de alimento
corriente abajo desde el enfriador de gránulo, de preferencia se
esparce el alimento que cae dentro de un flujo de profundidad ancho
pero poco profundo, mediante un cono o placa en el tubo o ducto
justamente enfrente del área en donde se rocía la enzima. De esta
manera, aproximadamente 100 mililitros de
endo-1,4-\beta-D-mananasa
líquida se diluyen de manera continua con agua usando una bomba de
cabeza doble y se rocían a través de una boquilla a una presión
moderada en un patrón uniforme sobre la corriente de alimento que
cae. De manera alternativa, la enzima diluida se deja caer sobre un
disco giratorio, el cual a su vez rocía la enzima sobre una cortina
de alimento que pasa alrededor del disco, mediante el conocido
método roto-revestidor.
Todavía un tercer método, es rociar la enzima
dentro de un dispositivo de mezclado de píldoras, localizado
usualmente después de que se ha aplicado algún otro componente de
alimento líquido, tal como grasa o vitaminas. La cantidad de
humedad que se agrega al alimento en este proceso es insignificante,
de manera que la enzima se absorbe inmediatamente y la humedad que
se agregó no promueve el crecimiento microbiano ni desgasta la
estructura del gránulo. Después de la adición de la enzima, el
alimento pasa a través de un mezclador para asegurar que se obtiene
la distribución uniforme de la enzima en el alimento. Se prefiere
la maquinaria que mantiene una velocidad de flujo uniforme del
alimento más allá del rocío.
En un modo más preferido del proceso de rociado,
se utiliza ya sea un dispositivo de flujo como la fabrica
Milltronics, Arlington, Texas, que proporciona el ajuste de la
velocidad de rociado basado en la velocidad de flujo del alimento,
o un dispositivo roto-revestidor como la fabrica
APEC (Automated Process Equipment Corporation), Lake Odessa,
Michigan (Stemler, T., Extendiendo el procesamiento de alimento más
allá del molino de gránulo, Feed Management 45:4, 1994). El
coeficiente de variación para el nivel de enzima en el alimento,
deberá ser de 15 por ciento o menos, en un caso preferido. La
aplicación de más de la cantidad objetivo de 100 MU enzima por
tonelada de alimento no es perjudicial, sino que probablemente
proporciona poco o ningún beneficio. En el Ejemplo 3 más adelante se
da una descripción más detallada de un modo preferido de la
aplicación de la enzima y de la instalación del equipo para usarse
en un molino de granulación de alimento de temperatura elevada.
Se ha conducido un gran número de pruebas de
corral de alimentación de animales y pruebas de campo de escala
completa con la endo-
1,4-\beta-D-mananasa,
como se describió anteriormente. En los casos en donde las pruebas
se conducen de manera apropiada con suficientes repeticiones para
producir resultados estadísticamente significativos, y en donde la
enzima se aplicó de manera uniforme al nivel apropiado, y en donde
se evitaron otros escollos comunes, tal como alimentos no
uniformes, los datos generalmente apoyan la eficiencia incrementada
del alimento con la incorporación de la mananasa en el alimento. En
la Tabla 2 se resumen seis experimentos de alimentación de pollos
de prueba de corral. También se condujeron los estudios con pavos, y
cerdos de diferentes crías, con composiciones de alimentos y
ubicaciones geográficas diferentes. Ocasionalmente, las pruebas
trabajaron mucho mejor de lo esperado, como en Rue y colaboradores,
supra. Prueba en China (Tabla 1). El examen de las
diferencias en estas pruebas que fueron extraordinarias, llevó a la
invención actual.
La Tabla 3 compara la composición de una dieta
optimizada de pollo tierno de los Estados Unidos de Norteamérica,
con las dietas que se usan en el estudio de rue, R.J. y
colaboradores (Tabla 1). Las dos dietas estás basadas en
maíz-frijol de soya, pero existen algunas
diferencias. En las dietas chinas se agregó poca o ninguna grasa, y
la ME (energía que se puede metabolizar) promedió aproximadamente
6.3 por ciento más que en las dietas de los Estados Unidos de
Norteamérica. Otra observación es que la dieta china usó un 44 por
ciento de proteína de harina de frijol de soya (SBM 44), mientras
que las dietas de los Estados Unidos de Norteamérica usaron 48 por
ciento de proteína de harina de frijol de soya (SBM 48). El
porcentaje más elevado de proteína significa que hay menos fibra en
la harina que se deriva a partir de hollejos de frijol de soya.
Debido a que los hollejos de frijol de soya son ricos en manan
(Whistler, R.L. y J. Saarnio, Galactomanan a partir de hollejos de
frijol de soya, J. Am. Chem. Soc., 79:6055-6057),
el porcentaje que se calculó para la cantidad de galactomanan en
las dos formulaciones es en promedio aproximadamente 66 por ciento
más para las dietas chinas, aunque en ambos casos es baja. Los
niveles de proteína cruda fueron similares, pero el contenido de
lisina en las dietas chinas es significativamente mayor, basados en
el nivel recomendado por el National Research Council (NRC). La
dieta de los Estados Unidos de Norteamérica en la Tabla 3, tendría
un total de aproximadamente 4.7 por ciento de lisina ex exceso
sobre una base mezclada, pero la dieta china tienen aproximadamente
13.8 por ciento de lisina en exceso, en comparación con la
recomendación del Nacional Research Council sobre una base mezclada.
Usando los experimentos de prueba de corral de crecimiento de pollo
bien diseñados y conducidos cuidadosamente, se valoraron los efectos
de la grasa (dietas de energía más elevada, Dieta B) con la
endo-1,4-\beta-D-mananasa,
manteniendo bajo y constante el contenido de manan. En el Ejemplo 1
más adelante, se describen los detalles del experimento de
alimentación.
En la Tabla 4 se resumen las dietas que se usaron
en la prueba de alimentación en el Ejemplo 1 (descrito en detalle en
el Ejemplo 2). La dieta A tuvo aproximadamente 3 por ciento menos
grasa que la dieta B en cada una de las fases de crecimiento
(iniciador, criador y terminador), pero la dieta A sería
aproximadamente 85 Kcal/Kilogramo más grande que una dieta de pollo
tierno chino típico. Se mantuvo igual la cantidad de proteína cruda
en las dos dietas y los niveles de proteína de frijol de soya que se
agregaron estuvieron muy cercanos. Las cantidades de lisina y de
otros aminoácidos esenciales, vitaminas y minerales estuvieron tan
cerca de ser idénticos como fue práctico. La dieta A tuvo más maíz
agregado para compensar la eliminación de grasa concentrada. Esto es
beneficiosos porque los costos de maíz son significativamente
menores que los de la grasa. Se probó cada dieta tanto con, como sin
enzima de
endo-1,4-\beta-D-mananasa
en 8 corrales con 70 aves por corral. Se determinó la prueba a los
45 días.
En la Tabla 5 se resume el resultado de la
prueba. Usando los dos tipos de alimento, hubo un mejoramiento
altamente significativo de manera estadística (P < 0.05) después
de la inclusión de la enzima de endo-
1,4-\beta-D-mananasa.
Sin embargo, el mejoramiento que se vio mediante la inclusión de la
1,4-\beta-D-mananasa
en la dieta A, fue más de dos veces mejor que el mejoramiento que
se vio en la dieta B después de la adición de la enzima. Cuando se
examina la Kcal que se requieren para producir una libra de peso
vivo de ave, la Kcal/x 0,45 kg viva disminuyó por 40 en la dieta B,
pero disminuyó por 91 en la dieta A. Quizás lo más importante es la
comparación entre la dieta B sin la enzima y la dieta A baja en
grasa, con la enzima. Las conversiones de alimento y pesos no
fueron estadísticamente diferentes al comparar los dos casos, pero
la kcal por libra viva disminuyó por 131 en la dieta A más la
\beta-mananasa. Estos datos demuestran que es
posible eliminar 3 por ciento de grasa de las dietas al reducir el
contenido de Kcal por aproximadamente 143 Kcal/kilogramo, sin la
degradación del desempeño, si se agrega una endo-
1,4-\beta-D-mananasa
efectiva a 100 MU/tonelada, como se definió.
Debido al costo elevado de la grasa concentrada
como se usa actualmente en la industria, es muy significativo el
beneficio económico al utilizar la dieta A más la enzima. No se
anticipó este resultado sorprendente. Se cree que el contenido más
elevado de manan en el SBM 44 es una diferencia significativa entre
la dieta típica de los Estados Unidos de Norteamérica y la china, la
cual provocó que la enzima de mananasa tuviera un impacto mayor en
la dieta china. Estos resultados inesperados muestran que la grasa
también es de importancia clave y que la endo-
1,4-\beta-D-mananasa,
está mejorando actualmente el nivel de energía del alimento, mucho
más de lo que se reconocía anteriormente. Con el objetivo de obtener
el beneficio completo del incremento de la Kilocaloría después de
uso de la mananasa, de preferencia se deberían ajustar los
aminoácidos esenciales hacia arriba como corresponde, de manera que
no se hagan limitantes.
El método de mejoramiento de alimento de esta
invención no es único para cualquier fuente de la
endo-1,4-\beta-D-mananasa.
Se pueden identificar fácilmente otras mananasas después de su
aislamiento de la naturaleza y su producción mediante la tecnología
d ADN convencional o recombinante, bien conocida en la técnica. Se
han aislado los genes de codificación de la mananasa, a partir de
diferentes fuentes (Luthi, E., N.B. Jasmat, R.A. Grayling, D.R. Love
y P.L. Bergquist, Clonación, análisis de secuencia, y expresión en
la Escherichia coli de una coficiación de gen para una
\beta-mananasa, a partir de la bacteria
extremadamente termifílica Caldocellum saccharolyticum,
Appl. Environ. Microbiol. 57:694-700, 1991;
Akino, T., C. Kato, y K. Horikoshi, Se producen dos
\beta-mananasas de Bacillus que tienen
terminaciones COOH en Escherichia coli que lleva pMAH5,
Appl. Environ. Microbiol. 55:3178-3183,
1989). Además, se pueden mejorar las enzimas para usarse en este
método mediante las técnicas que se conocen colectivamente como
ingeniería de proteína, bien conocida en la técnica. Se hacen los
cambios en la estructura de la proteína a través de mutación. Por
ejemplo, se puede mejorar las mananasas en estabilidad a través
del cambio de residuos específicos en la secuencia de aminoácido
que producen una susceptibilidad oxidativa disminuida,
susceptibilidad proteolítica, o de manera alternativa, una
estructura más puenteada a temperaturas incrementadas. Se pueden
predecir fácilmente estos cambios, después de la determinación de
la estructura de cristal tridimensional de la proteína, mediante
cristalografía de rayos-x. De manera alternativa, se
pueden hacer mejorar mediante mutagénesis dirigida al área, pero
aleatoria de la secuencia del gen, seguida por el rastreo de las
enzimas mutantes resultantes para las propiedades mejoradas
deseadas.
En un modo preferido de la invención, se utiliza
una mananasa que tiene estabilidad térmica incrementada que puede
soportar el tratamiento de calor por vapor que se envía al alimento
durante la granulación, expansión, o extrusión. En este caso, de
preferencia se incorpora la enzima directamente en una forma seca
con los otros ingredientes del alimento, antes de la granulación. Se
puede conseguir la estabilidad térmica incrementada, por ejemplo,
mediante una combinación de métodos. Uno es empezar con la enzima
que tiene estabilidad térmica inherente, tal como una enzima aislada
a partir de un microorganismo termofílico. Sin embargo, la actividad
específica deber ser suficiente a los 40ºC como para liberar
aproximadamente 100 MU/tonelada, como se describió en este método.
Una segunda opción es aumentar la termoestabilidad de una enzima
mesofílica a través de la ingeniería de proteína, como se mencionó
anteriormente, o mutagénesis dirigida al área de mutación aleatoria
y la selección de enzimas con propiedades mejoradas. Todavía una
tercera opción es mezclar las enzimas con productos químicos
estabilizantes y/o agregar recubrimientos que eviten la penetración
del vapor, pero los cuales no interfieran con la solubilización
rápida y la actividad en el intestino del animal.
Se sabe que ciertos azúcares como la trealosa
(Colaco, C., S. Sen, M. Thangavelu, S. Pinder y B. Roser,
Estabilidad extraordinaria de enzimas secadas en trealosa:biología
molecular simplificada, Bio/Technology
10:1007-1011, 1992; Roser, B.J., Protección de
proteínas y similares, Patente de los Estados Unidos de
Norteamérica Número 4,891,319), estabilizan las proteínas. También,
se sabe que ciertos problemas químicos tales como el
2,3-difosfoglicerato cíclico (Seely, R.J., y D.E.
Fahrney, El 2,3-difosfoglicerato cíclico a partir
del Metanobacterium termoautotrófico, es el enantiómero D, Current
Microbiol. 10:85-88, 1984; Hensel, R. y
H.Koning, Termoadaptación de bacterias metanogénicas mediante
concentración de ión intracelular, FEMS Microbiol. Lett.
49:75-79,1988) y el
di-mio-inositol-1,1'-fosfato
(Scholz, S., J. Sonnenbichler, W. Schafer, y R. Hensel,
Di-mio-inositor-1-1'-fosfato:
un fosfato de inositol nuevo aislado a partir del Pyrococcus
woesei, FEBS 306:239-242, 1992) así como altas
concentraciones de sal (Breitung, J., R.A. Schmitz, K.O. Stetter y
R. K. Thauer, Ciclohidrolasa de N^{5},
N^{10}-metilentetra-hidrometanopterina
a partir de la Methanopyrus kandleri extremadamente termofílica:
incremento de la eficiencia catalítica y termoestabilidad en la
presencia de sales, Arch. Microbiol. 156:517-524,
1991), están involucrados en la estabilización de las proteínas en
algunos microorganismos extremadamente termofílicos. De esta manera,
se pueden usar las enzimas termofílicas, las mutaciones
estabilizantes, los productos químicos estabilizantes, o una
combinación de estos factores para preparar mananasas que soporten
el calentamiento durante la formación de gránulo de alimento, en un
modo preferido de esta invención.
Los microorganismos productores de mananasa se
seleccionar fácilmente a partir de la naturaleza, por medio de
seleccionar microbios que puedan crecer sobre una goma basada en
mananasa, como la única fuerte de carbonato. Se esperaría que
cualquier suelo rico en materia orgánica fuera posible fuente de
estos microbios. Por ejemplo, se sabe que muchos tipos de
hemicelulosa de madera de árbol contienen cantidades significativas
de manan (Sjostrom, E., Capítulo 3, Polisacáridos de la Madera, en
Wood Chemistry, Fundamentals and Applications, páginas
49-67, Academic Press. Nueva York, 1981). Por lo
tanto, es muy probable que los lugares con madera en descomposición
sean fuentes ricas de mananasas. También se esperaría que ciertos
tipos de lugares agrícolas sean fuentes ricas de microbios que
produzcan mananasa. Por ejemplo, los lugares para el cultivo y
procesamiento de coco/copra, o el cultivo y procesamiento de otras
especies botánicas de las cuales se sabe que son una fuente rica de
manan, probablemente tendrán abundantes microbios que degradan
mananasa, que produzcan
endo-1-\beta-D-mananasas.
Ya se han descrito varias fuentes de
endo-1-\beta-D-mananasas
(McCleary, B.V., \beta-D-Mananasa,
Methods in Enzymology 160:596-610, 1988);
incluyendo el hongo (Jonson, K.G.,
\beta-mananasas exocelulares a partir de hongo
hemicelulótico, World J. Microbiol. Biotechnol.
6:209-217, 1990; Araujo, A. Y O.P. Ward, Estudios
sobre enzimas que degradan galactomanan producidas por el
Sporotrichum cellulophilum, J. Industrial Microbiol.
8:229-236, 1991; Kurasakabe, I., G.G., Park, N.
Kumita, T. Yasui y K. Murakami, Especificidad de la
\beta-mananasa a partir del Penicillium
purpurogenum para el glucomanan de Konjac, Agric. Biol.. Chem.
52:519-524, 1988) termofílicos extremos (Luthi y
colaboradores, 1991, supra; Bicho, P.A., T.A. Clark, K.
Mackie, H.W. Morgan y R.M. Daniel, La caracterización de un
endo-1-\beta-D-mananasa
termoestable clonada a partir del Caldocellum
saccharolyticum, Appl. Microbio. Biotechnol.
36:337-343, 1991), los hipertermófilos (Adams,
M.W., y R.M. Kelly, Enzimas a partir de Ambientes Extremos,
Chemical & Engineering News, páginas 32-42, 18
de diciembre de 1995), el Streptomyces (Kusakae, I., R. Takahashi,
\beta-mananasa de Streptomyces , Methods in
enzymology 160: 611-614, 1998; Takahashi, R., I.
Kusakabe, H. Kobayashi, K. Murakami, A. Maekawa y T. Suzuli,
Purificación y algunas propiedades de la mananasa a partir de la
Streptomyces sp., Agric. Biol.. Chem. 48:2189-2195,
1984) y especies de Bacillus (Araujo, a., y O.P. Ward,
Hemicelulosa de las especies de Bacillus: estudios
comparativos preliminares sobre la producción y propiedades de las
mananasas y galactanasas, J. Appl. Bacteriol.
68:253-261, 1990; Akino y colaboradores, 1989,
supra; Akino,. , T., N. Nakamura y K. Horikoshi,
Caracterización de tres \beta-mananasas de un
Bacillus sp. Alcalofílico, Agric. Biol.. Chem.
52:773-779, 1988; Emi y colaboradores, 1972,
supra). También están disponibles comercialmente las
mananasas del Aspergillus Níger (dos ejemplos son las
Enzimas Solvay, Hemicelulosa y Novo Nordisk, Gamanasa ^{MR}.)
Una vez que se ha identificado la población
microbiana como una fuente potencial de enzima de mananasa, basados
en la capacidad para crecer sobre manan como la única fuente de
carbono, se pueden identificar fácilmente los microbios individuales
que secretan la mananasa por medio de sobreponer cultivos cultivados
en cajas de Petri con manan modificado con tinta azul disuelto en
soluciones de agarosa fundida. Desde que la agarosa se solidifica,
los microbios que producen mananasa generan zonas claras aparentes
provocadas por la difusión rápida de los fragmentos de manan
etiquetados por tinta azul. Una vez que se identificaron, se usan
los métodos estándares incluyendo el mejoramiento genético
(Rowlands, R.T., Mejoramiento industrial de cepa: procedimientos de
mutagénesis y clasificación aleatoria, Enzyme Microb. Technol. 6:
3-10, 1984) y la tecnología de fermentación, ambos
bien conocidos en la técnica, para producir suficiente enzima para
las pruebas. Una vez que se ha identificado la mananasa útil, se
usan los mejoramientos de la cepa, los cuales podrían incluir la
clonación y la expresión de gen, para mejorar adicionalmente la
producción de enzima mediante los métodos de fermentación. En
algunos casos, hasta podría ser recomendable clonar el gen de
mananasa antes del subcultivo y purificación de las especies
microbianas individuales que producen la mananasa. Se puede aislar
el ADN directamente de fuentes naturales, clonarse dentro de
vectores de expresión en, por ejemplo, E. Coli, seguidos por
la clasificación de los clones recombinantes para la producción de
la mananasa deseada (Robertson, D.E., E.J. Mathur, R.V. Swanson,
B.L. Marrs, y J.M. Short, El descubrimiento de biocatalizadores
nuevos a partir de la diversidad microbiana, SIM News,
46:3-8, 1996).
Una fuente alternativa de mananasa útil en esta
aplicación, es a partir de una fuente botánica. Debido a que los
mananos se usan frecuentemente como polímeros de almacenamiento en
las semillas, ciertas semillas en germinación tal como la Mielga
(Medicago sativa) o Guar (Cyamopsis tetragonolobus),
son buenas fuentes de mañanazas (McCleary, 1988, supra). Se
germanarían las semillas, después se procesarían para rendir una
fuente concentrada de la enzima. De manera alternativa, se podrían
cultivar las semillas completas en germinación dentro de una harina,
para uso directo en el alimento. En este caso, las semillas podrían
tener dos propósitos en el alimento, primero como una fuente de
enzima de mañanaza, y en segundo lugar como una fuente de proteína y
carbohidrato. Sin embargo, si las semillas en germinación tienen
alguna otra propiedad anti-nutritiva que sea más
fuerte que el efecto de la mañanaza, entonces probablemente ese tipo
de semilla no sería significativamente útil en este método. También
es posible diseñar plantas de manera genética para provocar que se
produzca una mañanaza en sus frutos, semillas, tallos u hojas. Como
un ejemplo de numerosos ejemplos que se podrían citar, se ha
expresado una enzima extraña en la Brassica napus (van
Rooijen G.J.H., y M.M. Moloney, Cuerpos grasosos de semilla de
planta como portadores para proteínas extrañas,
Bio/Technology 13:72-77, 1995), una planta de
semilla de aceite comercial que se cultiva a gran escala. La
ingeniería genética de planta es todavía otra fuente posible de la
enzima de mañanaza bien conocida en la técnica, que se puede usar
para la práctica de esta invención.
Todavía otro planteamiento para introducir la
mañanaza en alimento en el tracto digestivo, y un modo preferido de
esta invención, es modificar genéticamente el animal (es decir,
cerdos, pollos o pavos), de manera que se sintetice la
endo-1-\beta-D-mananasa
en el tracto digestivo. Esto se logra mediante la introducción de
un gen de mañanaza con una estructura alterada ta, que esté bajo el
control de secuencias reguladoras de genes que codifican para las
enzimas que se secretan dentro de diferentes partes del tracto
digestivo, se puede dirigir la secreción de mananasa a diferentes
lugares para optimizar su impacto. Se ha usado este tipo de
tecnología transgénica, por ejemplo, para provocar la producción de
proteínas heterólogas dentro de la leche en las glándulas mamarias
de animales diseñados (Campbell, A.M., Tecnología transgénicas,
Biopharm. 9:28, 1996; Velander, W.H., J.L. Johnson, R.L. Page, C.G.
Russel, A. Subramanian, T.D. Wilkins, F.C. Gwazdauskas, C. Pittius,
W.N. Drohan, Expresión de nivel elevado de una proteína heteróloga
en la leche de cerdos transgénicos usando el ADNc que codifica la
proteína humana C, Prc. Natl. Acad. Sci.
89:12003-12007, 1992; Hansson, L., M. Elund, A.
Elund, T. Johansson, S.L. Marklund, S. Fromm, M. Stromqvist, Y J.
tornell, Expresión y caracterización de la dismutasa de superóxido
extracelular humana biológicamente activa en la lecha de ratones
transgénicos, J. Biol.. Chem. 269:5358-5363,
1994).
Independientemente del método de fabricación o
introducción dentro del trato digestivo, se debe probar la
efectividad de cualquier mañanaza individual en este método en
pruebas de alimentación de animales. Esta prueba se puede conducir
de la mejor manera mediante un protocolo similar a aquel que se
describe en detalle en los Ejemplos 1 y 2. De preferencia se debe
determinar la cantidad de enzima que se agrega dentro de la prueba,
de conformidad con el pH y las temperaturas cono se usan en la
presente, aún si estas condiciones no son óptimas para las enzimas
que se van a probar. Después, se utilizan 100 MU de enzima por
tonelada de alimento.
Para los propósitos de esta invención, se dan las
siguientes definiciones con respecto a ciertos aspectos de la
tecnología que se usa durante el desarrollo de esta invención. Se
considera que el manan es cualquier polímero de carbohidrato que se
puede degradar de manera parcial o extensiva mediante la
endo-1,
4-\beta-D-mananasa
de la enzima. De esta manera, el término manan incluye los polímeros
basados en \beta-1,
4-D-manan, tal como el galactomanan
que tiene ramificaciones de galactosa enlazada 1,6 (cualquier otro
azúcares de ramificación) en la estructura básica del polímero de
1,4-\beta-D-manan,
o el glucomanan que tiene algunos residuos de
1,4-\beta-D-glucosa
interdispersados en la cadena de polímero principal. Algunos
ejemplos prácticos de mananos y sus fuentes, de conformidad con esta
definición, incluye la goma de guar (Cyamopsis tetragonolobus), goma
de algarroba, palma de tagua (marfil vegetal), manan e copra
(palma), manan de salep, mana de café, mana de arveja (Ceratonia
siliqua) (Whistler, R.L. y C.L. Samart, Polysaccharide Chemistry,
Acedemic press, (1953)), harina de girasol, harina de alfalfa,
(Tookey y colaboradores, J. Afr. Foods Chem.
10:131-133, 1962), harina de girasol y harina de
dátil (Düsterhöft y colaboradores, J. Science Foor Agr.
59:151-160, 1962). Los galactomananos están
esparcidos de manera amplia en la naturaleza., Por ejemplo, los
galactomananos están presentes en el endosperma de la mayoría, pero
no en todas, las semillas leguminosas (Ehistler y Samr. 1953,
supra). Por lo tanto, se pronostica el efecto beneficioso
por añadir una mañanaza efectiva con cualquier alimento que contenga
una cantidad significativa de cualquier alimento que contenga una
cantidad significativa de cualquier harina de semilla leguminosa que
sea positiva para el manan del endosperma.
Para los propósitos de esta invención, también se
describe la endo-1,
4-\beta-D-mananasa
(E.C. 3.2.1.78) mediante otros nombres, tal como
endo-1, 4-\beta-D-
manosidasa de manan, o simplemente endo-mananasa,
mananasa o hemicelulosa. Se define una mañanaza efectiva para las
aplicaciones de alimento de animal como una proeparación de enzima
(purificada o cruda), con la capacidad de reducir de manera
enzimática la viscosidad de la gona de algarroba o soluciones de
goma guar, y que sea efectiva para incrementar la conversión de
alimentos en pruebas de alimentación controladas de manera
científicia, usando dietas basadas en maíz/harina de semilla de
leguminosa (por ejemplo, harina de frijol de soya), dietas como las
describieron primero Fodge y Anderson (Fodge y Anderson,
supra, Patente de los Estados Unidos de Norteamérica
5,429,828). La harina de frijol de soya es un producto comercial
actual que se usa ampliamente y disponible principalmente cono una
fuente de proteína en ditas de alimentación animal. La harina de
frijol de soya está enriquecida por la proteína a través de la
extracción del aceite de frijol de soya y la mayoría del hollejo, y
actualmente es la fuente principal de manan en las dietas de
alimentación animal altamente optimizadas. La harina de frijol de
soya está disponible generalmente en una forma que es 44 por ciento
proteína cruda, llamada SMB 44, ó 48 por ciento proteína cruda,
llamada SBM 48 para los propósitos de esta invención. En los países
en desarrollo, también están disponibles harinas de frijol de soya
con contenidos de proteína menores de 44 por ciento.
Se pronostica la interacción positiva del efecto
de la mañanas con dietas bajas en energía que se puede metabolizar
para el mejoramiento del alimento, con dietas que contienen otras
fuentes de manan, particularmente una fuente de manan a partir de
otros miembros de la familia de las leguminosas, tales como
chícharos, frijoles, lentejas, alfalfa y otros. La familia de
plantas leguminosas para los propósitos de esta invención, es el
nombre común que se usa para significar la familia Leguminosae o
Fabaceae, también conocida comúnmente como la familia impulso de
las plantas. Muchos miembros de esta familia, como los frijoles de
soya, son ricos en proteína de alta calidad y contienen mana en su
endosperma (Whistler y Smart, 1953, supra). Muchos son
deseables como componentes de aliemntos y tienen valor mejorado a
través de la práctica de esta invención.
Para los propósitos de esta invención, se puede
obtener una unidad de
endo-1,4-\beta-D-mananasa
mediante los métodos de ensayo que se describen en la presente. Una
dosis efectiva de mañanaza es equivalente a 100,000,000 unidades
(100 MU) por tonelada de alimento. Hemicell® es la marca comercial
registrada de una mañanaza efectiva para los propósitos de esta
invención, pero se puede utilizar cualquier otra mañanaza efectiva
en esta invención.
La energía que se puede metabolizar (ME) es la
cantidad de energía (medida en kilocalorías/kilogramo) en el
alimento que puede ingerir una animal. La energía que se puede
metabolizar para un componente de alimento dado, varía de especie a
especie del animal que lo consume. Se ha publicado el contenido
aproximado de energía que se puede metabolizar de los ingredientes
de alimentos comunes (Dale, N., Tabla de análisis de ingredientes:
Edición 1995, Feedstuffs 67:24-39, 1995). Los
nutriólogos de animales usan esta información cuando se formulan
dietas balanceadas y cuando se vuelven a formular sobre una base de
costos menores, ya que el precio y la disponibilidad de los
componentes del alimentos varían. Para los propósitos de esta
invención, se define la energía que se puede metabolizar de un
alimento mediante la suma de la energía que se puede metabolizar
(ME) suministrada por cada componente a niveles que se definen en la
Tabla de Análisis de Ingredientes de Feedstuffs (Dale, 1995,
supra), o versiones actualizadas de esta referencia.
Los requerimientos de aminoácidos esenciales del
NRC para los propósitos de esta invención, son como se publicaron en
el artículo de referencia de Feedstuffs, tanto para cerdo (Easter,
R.A., J. Odle, G.R. Hollis y D.H. Baker, Asignaciones de nutrientes
dietéticos para cerdos, Feedstuffs 67:40-46, 1995) y
aves de corral (Waldroup, P.W. Asignaciones de nutrientes dietéticos
para aves de corral, Feedstuffs 67:69-76, 1995). Se
define el requerimiento en esta referencia en términos de la
cantidad de aminoácidos requeridos por unidad de contenido de
energía que se puede metabolizar de la dieta.
Para los propósitos de esta invención, se define
la manipulación transgénica como la causante de la producción de una
proteína en un animal a través de la aplicación de ADN recombinante.
Se define el ADN recombinante como la manipulación in vitro
del ADN, ya sea aislado a partir de fuentes naturales, o sintetizado
completamente de manera química, seguido de la introducción dentro
de un organismo para el propósito de su expresión subsecuente. Se
define la mutación como el cambio de la secuencia de ADN de un gen
mediante la mutagénesis, ya sea dirigida al área, dirigida al sitio
o aleatoria, para los propósitos de esta invención.
Se mide fácilmente la
endo-1.4-\beta-D-mananasa
mediante cualquier método conocido; por ejemplo, mediante un ensayo
de azúcar de reducción.
En un ensayo de azúcar de reducción ejemplar, se
usan los siguientes materiales:
- ácido 3, 5-dinitrosalicílico (DNS); Aldrich, > 98 por ciento puro
- Fenol - grado de reactivo
- Sal de Rochelle (potasio, tartrato de sodio, grado de reactivo
- Hidróxido de sodio (NaOH)
- Ácido clorhídrico (HCl)
- Sulfito de sodio (anhidro)
- Goma de algarroba (Sigma Chemicla Co., producto # G0753
- Regulador de trishidroximetilamimometano (Tris)
- D(+)-manosa, grado de reactivo (Sigma, producto # M-4625)
- Tetraciclina-HCL
- Baño de agua a 40ºC
- Baño de agua hirviendo
- Centrifugadora de la parte superior de mesa Sorvall
- Microcentrifugadora (por ejemplo, Eppindorph, tubos de plástico de 1.5 mililitros)
- Mezcladora de vórtice
- Espectrofotómetro (para leer a 50 nm)
- Medidor de pH
- Tubos de vidrio de 16 x 100 milímetros
- Tubos de vidrio de 13 x 100 milímetros
- Barras de agitación magnéticas y placa magnética para agitar/calentar
- Vasos de laboratorio, matraces volumétricos, botellas de almacenamiento
- Balanza analítica
- Dispositivo de pipeta variable (1 mililitro) con puntas desechables
- Matraces desviados de agitación de 250 mililitros (Bellco)
- Agitador de matraz de plataforma (New Brunswick Scientific)
Se puede usar el Reactivo de Ácido
Dinitrosalicílico (DNS) como un reactivo. Para hacer 1 litro de una
solución de cepa estable, se disuelven en agua los siguientes
ingredientes.
NaOH | 10 gramos (se agrega primero) |
DNS | 10 gramos |
Fenol | 2 gramos |
Sal Rochelle | 200 gramos |
Se madura la solución 1 día antes de usarse y se
almacena en la oscuridad. Se debe preparar una solución de trabajo
diariamente, mediante la adición de 0.5 gramos/litro de sulfito de
sodio anhidro a la solución cepa.
Se puede preparar el Sustrato de Goma de
Algarroba (LBG, por sus siglas en inglés) a 5 gramos/litro mediante
la adición lenta de goma de algarroba dentro de una solución de
agitación rápida de Regulador Tris de 50 mM (pH 7,5) a la
temperatura ambiente. Después de que se dispersa bien el polvo, se
calienta lentamente la suspensión hasta que hierva y se hierve a
fuego lento durante 1 hora con agitación rápida sobre una placa de
agitación calentada para obtener un gel muy consistente, bien
hidratado. Se debe asegurar que no haya terrones pequeños de gel no
hidratado en la solución. Si hay algunos, se tiene que empezar de
nuevo usando una adición más lenta de la LBG a la solución de
regulador Tris. Se enfría a la temperatura ambiente y se ajusta la
solución al volumen final deseado para dar 5 gramos/litro de goma de
algarroba. Se agrega la tetraciclina-HCl (30
miligramos(mililitro) a la solución de goma como un
preservativo. Se almacena a 4ºC cuando no se usa. Después de
almacenar, se agita bien antes de usarse.
Se pueden obtener las Soluciones Estándares y la
Curva Estándar mediante la preparación de una serie de soluciones
estándares de D-(+)-manosa disueltas en agua en el
rango de concentración de 0,1 a 0,5 gramos/litro. Se agregan 0,6
mililitros de cada estándar de manosa (por duplicado o triplicado),
con 1,5 mililitros de solución de trabajo de ácido dinitrosalicílico
en tubos de vidrio de 13 x 100 milímetros. También se incluye una
reacción con alícuotas de 0,6 mililitros de agua como un blanco de
reactivo para centrar el espectrofotómetro. Se calienta en un baño
de agua hirviendo durante 5 minutos, se enfría a la temperatura
ambiente y se lee la absorbencia a 550 nm. El resultado esperado es
una respuesta de dosis lineal entre 0,25 y 1,7 unidades de O.D.
[Nota – En los ensayos de enzima (que se describen más adelante),
solamente se usan los datos generados en el rango de 0,25 a 1,2
O.D. en los cálculos, ya que debido a la limitación del sustrato,
la reacción de la enzima no es lineal más allá de este rango]. Se
calcula la inclinación de la curva estándar (O.D. 550/gramos/litro
de manosa) a partir de la porción lineal de la curva solamente.
Esta curva estándar variará con el Lote de
reactivo de ácido dinitrosalicílito que se obtuvo. Si se anticipan
diferentes ensayos, es aconsejable obtener un lote grande de ácido
dinotrosalicílico cuando se compra.
En la Figura anexa se muestra una curva estándar
típica. La inclinación de esta curva es igual a 4.706
O.D./gramos/
litro de manosa.
litro de manosa.
Se preparan las muestras mediante la dilución de
muestras líquidas a aproximadamente 100,000 U/litro (0.1 MU/litro),
en regulador de Tris-HCl de 20 mN (pH 7,5). Para una
exactitud mejor, primero se determina la densidad de la solución de
enzima, después se usa una balanza analítica para hacer las
soluciones por peso, de manera muy exacta. Se extraen las muestras
sólidas del alimento de animal, antes del ensayo. Se agregan 10
gramos de portador de enzima sólida a 10 mililitros de agua en un
matraz de agitación no desviado de 250 mililitros y se mezcla a 200
rpm a la temperatura ambiente durante 30 minutos. Se transfiere algo
de la solución del extracto a un tubo de la centrifugadora
Eppindorph y se pasa por centrifugación (10.000 - 12.000 RPM)
durante 2 minutos. Se remueve algo del sobrenadante del líquido
transparente y se diluye dentro de un regulador de
Tris-HCl de 20 mM (pH 7,5) hasta aproximadamente 0.1
MU/litro por ensayo.
En un ensayo de enzima, de preferencia todos los
ensayos se hacen por duplicado o triplicado a cada nivel de dilución
que se prueba. Se pesan 4 gramos de sustrato da goma de algarroba en
tubos de vidrio de 16 x 100 milímetros y se llevan a 40ºC en un baño
de agua. [Nota - pesar la solución de goma da algarroba es más
exacto por su viscosidad hace difícil pasarla por la pipeta]. Se
agregan 0,8 mililitros de solución de enzima, se agita vigorosamente
con una mezcladora de vórtice, se vuelve a poner en el baño a 40ºC y
se empieza el cronometraje. Se incluye un tubo con agua en lugar de
la enzima, como un control para centrar el espectrofotómetro. Se
debe mezclar la reacción de enzima aproximadamente cada 5 minutos e
inmediatamente antes de tomar las muestras. A los 12, 18 y 24
minutos, se remueven alícuotas de 0,6 mililitros de la reacción y
se agregan a 1,5 mililitros de reactivo de trabajo de ácido
dinitrosalicílico, en un tubo de vidrio de 13 x 100 milímetros.
Inmediatamente se pasa por el vórtice para detener la reacción. Se
coloca en un baño de agua hirviendo durante exactamente 5 minutos.
Se enfría a la temperatura ambiente, se pasa por centrifugación
durante 10 minutos a 2.700 RPM en una centrifugadora de parte
superior de mesa y se lee la densidad óptica (O.D., por sus siglas
en inglés) del sobranadante, a 550 nm. Usando las lecturas que
producen números en el rango lineal del ensayo (entre 0.25 y 1.2
O.D: 550), se calcula proporción de enzima como O.D./minuto.
Una unidad ChemGen para la manasa de Hemicell
tiene una definición arbitraria que se definió originalmente a
partir del método de viscosidad. Se eligió el tamaño de la unidad,
basados en ciertas características de desempeño, y no se puede
comparar de manera directa a otros métodos de ensayo sin el factor
de conversión. Cuando se correlacionó el método de viscosidad con el
método de azúcar de reducción que se describe aquí, 1 Unidad de CG
produce 0.574 microgramos de azúcar de reducción/minuto a partir de
la goma de algarroba. De esta manera, 1 CG MU produce 0.574 gramos
de azúcar de reducción/minuto.
En términos prácticos, se puede realizar el
cálculo de la siguiente manera.
\frac{O.D./min. \
(ensayo)}{O.D./g/litro \ de \ manosa \ (Curva \ Estándar)} =
g/litro/min. de
manosa
\frac{G/Litro/min \ de \
manosa}{0,094914 g/Litro/min./MU/Litro} = MU/Litro (en solución de
ensayo)
Para la
endo-1,4-\beta-D-mananasa-
Líquida:
MU/Litro (en sol. de ensayo) X factor de dilu. =
MU/Litro (sol. orig.)
Para la
endo-1,4-\beta-D-mananasa-Seca:
MU/Litro (en sol. de ensayo) X factor de dilu. =
MU/Litro (extrac. orig.)
MU/Litro (extrac orig.) X 0,1 Litro/0,01 kg =
MU/Kg
También se puede obtener la
endo-1,4-\beta-D-
mañanaza mediante un ensayo de viscosidad.
Este método es un ensayo muy sensible para las
actividades de tipo de mañanaza que hidroliza los enlaces
manosídicos internos de la goma de algarroba. Se mide la reducción
correspondiente en la viscosidad del sustrato, con un viscómetro
calibrado y se usa para calcular la unidad de actividad que define
CehmGen (Unidad CG). Se usa este ensayo cuando la actividad que se
va a medir es baja, o cuando se necesita una exactitud elevada. Sin
embargo, el procedimientos toma mucho tiempo.
De preferencia, se usan los siguientes materiales
y aparato:
Se usa un viscómetro tipo
Canon-Fenske calibradode tamaño 100. Se suministra
un viscómetro adecuado como el Número de Catálogo
2885-100 de Scientific Products, 1210 Waukegan
Road, McGaw Park, I11., 60085.
Se usa un baño de agua de vidrio a temperatura
constante, mantenida a 40ºC +/- 0.1ºC. Se suministra un baño
adecuado como el Número de Catálogo W3520-10 de
Scientific Products.
Dos cronómetros electrónicos
Medidor de pH
Vasos de laboratorio, matraces volumétricos (1000
mililitros, 500 mililitros)
NaOH, HCl
Glicina (grado de reactivo)
Mezcladora magnética/placa caliente y barras de
agitación magnéticas
Pipetas de 10 mililitros, pipetas de 2.0
mililitros
Pipeta de 1,0 mililitro con puntas desechables
(por ejemplo, Pipettman, Rainin Instruments)
Pipeta de 1,0 mililitro con puntas desechables
(por ejemplo, Pipettman, Rainin Instruments)
Balanza analítica
Tubos de vidrio de 18 x 150 milímetros
Dispositivo de succión (diseñado para usarse con
pipetas)
Mezcladora de vórtice de tubo
Papel aluminio
De preferencia, se usan los siguientes reactivos
y soluciones en el ensayo de viscosidad:
Se puede usar la Goma de Algarroba en Polvo
suministrada por Sigma Chemical Company. Las gomas de algarroba
pierden viscosidad con el tiempo. Para resultados exactos, se debe
preparar el sustrato fresco cuando menos una vez al mes. Para un
buen sustrato, el T_{s} (ver más adelante) debe ser mayor de 110
segundos.
Se prepara la goma de algarroba a 2 gramos/litro
(0,2 por ciento) mediante la adición lenta de la goma da algarroba
dentro de un solución de agitación rápida de agua desionizada a la
temperatura ambiente. Se agregan 2 gramos de goma de algarroba a
aproximadamente 900 mililitros de agua desionizada de manera muy
lenta, con agitación rápida sobre una placa de agitación. Después
de que se dispersó bien el polvo, se calienta la suspensión
lentamente hasta que hierva y se hierve lentamente mezclando
rápidamente de manera continua, sobre una placa de agitación
calentada durante una hora o más, para obtener un gel muy
consistente, bien hidratado. Se debe asegurar que no haya terrones
pequeños de gel no hidratado en la solución. Si hay algunos, se
tiene que empezar de nuevo usando una adición más lenta de la LBG a
la solución de agua se enfría a la temperatura ambiente y se ajusta
la solución al volumen final deseado mediante la transferencia
cuantitativa a un matraz volumétrico de 1000 mililitros, se diluye
hasta el volumen con agua, y se mezcla. Después del almacenamiento,
se mezcla bien antes de usarse. El pH del producto final deberá
estar cerca de un pH de 6.
Se disuelven 75 gramos de flicina en 450
mililitros de agua desionizada, se agregan NaOH de 5 N con mezclado
continuo, hasta que el pH sea de 9,0 +/- 0,05 por unidad, según se
determinó mediante un medidor de pH. Se transfiere de manera
cuantitativa a un matraz volumétrico de 500 mililitros y se diluye
al volumen con agua. Se verifica el pH de 9,0 en la solución
final.
Se prepara una solución de la muestra en agua
desionizada, de manera que 0,5 mililitros de la solución final
produzcan un cambio en la fluidez relativa (F_{R}), entre 0,035 y
0,045 por minuto bajo las condiciones que se especifican en el
Procedimiento más adelante. Esto corresponde a la actividad en el
reango de aproximadamente 1850 a 2400 CG U/litro en la muestra. No
se garantiza la linealidad del ensayo fuera de este rango de
actividad. Para muestras líquidas, se hacen diluciones en agua
usando una balanza analítica para medir la enzima y el agua que se
agrega, para una mejor exactitud.
Para las muestras que se extraen a partir de
sólidos, se pasa por centrifugación o se filtra para remover los
sólidos que pudieran obstruir el fino calibre del viscómetro.
Para realizar el procedimiento y el cálculo, se
limpia de manera escrupulosa el viscómetro por medio de extraer una
gran volumen de solución de detergentes (si es necesario remover
residuos adherentes), seguido por agua, a través del instrumento y
colocar el viscómetro calibrado previamente en el baño de agua de
vidrio a 40ºC en una posición exactamente vertical. Estos pasos son
necesarios entre cada medición.
Se pasan por pipeta 10 mililitros de agua
desionizada en el depósito del viscómetro y se permite reposar unos
cuantos minutos para equilibrar la temperatura. Se lleva el agua
hacia arriba dentro del viscómetro pasando la marca superior. Se
permite que fluya de regreso la solución, iniciando un cronómetro
cuando el menisco cae pasando la marca superior y detine el
cronómetro cuando el menisco cae pasando la segunda marca. Se repite
la medición varias veces. Se define el tiempo promedio como el
T_{W} (tiempo de efusión para el agua).
Se colocan 10 mililitros del sustrato de LEG en
un tubo de vidrio de 18 x 150 milímetros, se agregan2 mililitros de
regulador de glicina de 2,0 M (pH 9,0), se mezcla, se tapa con
papel aluminio y se coloca en agua a 40ºC durante unos pocos
minutos para calentar. Se agregan 0,5 mililitros de agua, se mezcla
rápidamente con una mezcladora vórtice, e inmediatamente se inicia
el primer cronómetro. Se pasan por la pipeta 10 mililitros de la
solución al depósito del viscómetro, se permite un minuto para
equilibrar, después se lleva la solución hacia arriba y se
determina el tiempo de efusión con el segundo cronómetro, esto será
el T_{S} (registrado en segundos). Cada vez que se determina el
T_{S}, se registra el tiempo transcurrido (T_{R}, tiempo de
reacción, registrado en minutos digitales) en el primer cronómetro,
cuando el menisco cae pasando la marca superior. En el caso ideal,
el T_{S} no cambiará, indicando que no hay pérdida de control de
la viscosidad. En este caso, el T_{S} para los cálculos, debe ser
el promedio de las determinaciones. En algunos casos, sin embargo,
existe una velocidad antecedente. Para las velocidades antecedentes,
se tratan los valores de efusión del sustrato como valores de
T_{T} para el cálculo con los valores de T_{R}
correspondientes, para calcular una velocidad antecedente como se
describe más adelante. El primer tiempo de efusión que se midió
después del inicio, se usa como T_{S} en este caso cálculo de la
velocidad antecedente. Algunos lotes de sustrato pueden llegar a
contaminarse con pequeñas cantidades de actividad de tipo mañanas.
Si se miden más de 500 U/L o si la T_{S} inicial es menor de 100
segundos, es mejor preparar una solución de sustrato nueva.
Se colocan 10 mililitros del sustrato de goma de
algarroba en un tubo de vidrio de 18 x 150 milímetros, se agregan 2
mililitros de regulador de glicina de 2,0 M (pH 9,0), se mezcla y
se coloca en el agua a 40ºC durante unos cuantos minutos para
calentarse. Se tapa el tubo con papel aluminio para evitar que la
evaporación del agua antes de su uso. Se agregan 0.5 mililitros de
solución de enzima, se mezcla rápidamente con una mezcladora
vórtice, y se inicia de inmediato el primer cronómetro para
determinar los valores del T_{R}. Se pasan por pipeta 10
mililitros de la solución al depósito del viscómetro, se permite un
minuto para equilibrar, después se lleva la solución hacia arriba.
Cuando el menisco pasa la marca superior, se registra el T_{R} en
el primer cronómetro y se empieza a determinar el tiempo de
efusión con el segundo cronómetro, este será el T_{T}. De
inmediato se vuelve a llevar la solución sobre la marca superior
para obtener un T_{T} en un segundo T_{R}. Se continúan
repitiendo las determinaciones, hasta que ha transcurrido un
período de aproximadamente 15 minutos después de la última medición
de T_{R}. Se recomiendan cuando menos cuatro puntos de
tiempo.
Para realizar el cálculo requerido, se usan los
datos para calcular la fluidez relativa (F_{R}) y el tiempo de
reacción normalizado (T_{N}), el cual es T_{R} más la mitad del
tiempo de efusión correspondiente. Se hacen los cálculos como
sigue:
F_{R} = (T_{S} - T_{W}) /
(T_{R} -
T_{W}),
Y
T_{N} = 0,5 (T\gamma /60 \ s
\ /min) + T_{R} = (T\gamma /120) +
T_{R}
Se trazaron las fluideces relativas (F_{R})
como la ordenada contra cuatro tiempos de reacción (T_{N}) como
la abcisa. Se deberá obtener una línea recta. La inclinación de la
línea corresponde al cambio de fluidez relativa por minuto
(F_{R}/min.), y es proporcional a la concentración de la enzima.
Usar la inclinación a través de una serie de puntos, es un mejor
criterio de actividad de enzima que usar un solo valor de fluidez
relativa. De manera ideal, el cambio de fluidez relativa debería
ser de aproximadamente 0,04/minuto. Si existe una degradación de
sustrato antecedente en la reacción, el trazo no será lineal en el
parte inicial del trazado. Se usan los datos después de que la
línea se hace lineal, para determinar la inclinación. Generalmente
usamos el programa de hoja dispersada de Lotus para trazar y
calcular los otros cálculos necesarios para obtener las
unidades.
CG/Litro = 9.397 x 10^{4} X F_{R} / min. De
esta manera, se calcula la concentración original de enzima muestra
como:
CG U/L (muestra orig.) = (1CG
U/L - Control de Sustrato U/L) X factor de
dilución
También se puede ensayar la
endo-1,4-\beta-D-mananasa
usando un ensayo de tinta azul.
De conformidad con este ensayo, se prepara un
sustrato de enzima, de referencia usando el procedimiento (Methods
in enzymology 160:538, 1988) que se describe para la producción del
RBB (azul brillante de remisol) -xilano que se adaptó APRA unir la
tinta azul RBB a la goma de algarroba. Se modificó el procedimiento
mediante la adición de goma da algarroba (LGB) al 0.7 por ciento y
tinta al 0.07 por ciento dentro de la reacción inicial. También,
después de la reacción con RBB en acetato de sodio e hidróxido de
sodio, se pasó por diálisis la solución de goma algarroba entintada
para remover la sal, antes de la precipitación con etanol. Esto
facilitó la resuspensión de la goma después de la precipitación. Se
puede precipitar la goma fijada con tinta con un volumen de etanol a
la temperatura ambiente, más bien que con dos volúmenes sobre hielo,
como se usó en el procedimiento del xilano.
Se disuelven 3,5 gramos de azul brillante de
remisol goma de algarroba en un litro de Tris-HCl de
50 mM, pH 7,5, mediante la adición lenta de polvo seco a un
regulador de pH agitado rápidamente. Se calienta con agitación hasta
que hierva, después se pone en la autoclave durante 20 minutos a
121ºC y se enfría a la temperatura ambiente. Se pasa por
centrifugación para remover el material no disuelto. Se vacía el
sobrenadante dentro del tubos adecuados, después se pone nuevamente
en la autoclave. La solución es estable durante cuando menos seis
meses, si no se introduce contaminación microbiana dentro de la
botellas. El blanco de reactivo en el ensayo (ver más adelante)
deberá dar una densidad óptica (OD) de menos de 0,15 cuando se lee
contra etanol al 70 por ciento. Si la densidad óptica es mayor, se
desecha el reactivo de azul brillante de
remisol-goma de algarroba.
A. Hacer diluciones apropiadas de las muestras y
estándares en agua no clorada Para la curva estándar, se hacen
diluciones que tengan aproximadamente 1,5, 2,0 y 2,5 MU/Litro,
usando una enzima estándar que se determinó previamente mediante el
método de azúcar de reducción. Se deben diluir las muestras de
prueba, de manera que la actividad caiga entre el rango de 1,5 a
2,5 MU/Litro. Para mejores resultados, se hacen las diluciones
usando matraces volumétricos y una balanza analítica para
determinar de manera exacta la cantidad de solución de enzima que
se agregó.
B. Se distribuyen 0,54 mililitros de reactivo de
azul brillante de remisol-goma de algarroba dentro
de tubos de microcentrifugadora de 1,5 mililitros, y se colocan los
tubos en una baño de agua a 40º durante cuando menos 10 minutos.
C. Para hincar la reacción, se agregan 20\muL
de enzima y se mezcla por medio de pasar por el vórtice. Se incuba
mcada muestra durante exactamente 10 minutos. Se deben probar las
muestras por duplicado para mejores resultados.
D. Se detiene la reacción mediante la adición de
0,9 mililitros de etanol absoluto (alcohol reactivo) y la mezcla
profunda. Se permite que reposen los tubos a la temperatura ambiente
durante cuando menos 10 minutos.
E. Se pasan los tubos pro centrifugación a
8.12000 RPM en una centrifugadora, durante tres minutos.
F. Se lee la densidad óptica a 590 nm usando un
blanco de reactivo tratado exactamente como las muestras de prueba
anteriores, usando 20 \muL de agua en lugar de la enzima, para
centrar el espectrofotómetro.
G. Se traza la densidad óptica de 590 nm que se
observó para los estándares, contra la actividad en MU/Litro en los
estándares diluidos y se determina la inclinación.
La actividad en las muestras (MU/Litro) = OD 590
nm x inclinación x factor de dilución de la muestra.
A continuación se describe adicionalmente la
presente invención, por medio de la referencia a los siguientes
ejemplos ilustrativos.
Se criaron pollos tiernos comerciales (50/50
machos/hembras Peterson X Arbor Acres) provistos por la ConAgra
Hatchery, Hurlock, Maryland, con 70 aves por corral desde el día 1
hasta el día 45, y se enviaron al sitio de prueba en el día de
salieron del cascarón. Se vacunaron todos los polluelos y se
trataron como normales en el criadero. La densidad fue de
0,076m^{2} por ave, usando corrales de 1,5 x 3,6 m, en tamaño. La
construcción fue una estructura de madera/bloque de concreto
calentada con la calefacción con aire a presión (más lámparas de
calor la primer semana) y luz incandescente. Se verificó la
temperatura diariamente y se mantuvo a 32ºC durante los primeros 3
días, después se redujo 17ºC por día, hasta que se alcanzaron
52,2ºC y se mantuvo hasta el final de la prueba. Se mejoró el
intercambio de aire mediante ventiladores con un retardo de tiempo
que transcurrió en promedio entre 1-4 minutos cada
10 minutos. Se condujo la prueba desde el 31 de octubre de 1995
hasta el 15 de diciembre de 1996 en la costa este de Maryland.
Se prepararon los alimentos usando los
requerimientos típicos conocidos en la industria de la avicultura y
las especificaciones comerciales. Se mezcló todo el alimento para
la pruebas completa y se hizo píldoras a aproximadamente 175ºC. Todo
el alimento que se utilizó en el experimento se preparó al mismo
tiempo e igualó o excedió los requerimientos nutricionales
establecidos por el National Research Council (Nutrient Requirements
of Poultry, 9ª. Edición Revisada, EAU; National Research Council,
1994). Se tomó una parta de la mezcla de control para la adición de
la enzima por medio de rociarla de manera uniforme con el
concentrado líquido. El alimento iniciador para los días 0 a 21
fueron píldoras desmenuzadas. Los alimentos de crecimiento y los
terminadores se usaron como píldoras completas.
Inicialmente se atrapan y se pesan veinticinco
polluelos. Se determinó el peso medio y se estableció un rango de
cinco gramos cerca del medio. Se escogieron de manera aleatoria los
polluelos con pesos dentro de este rango y se dividieron en 70 por
corral. Se usó un total de 3,840 polluelos machos y hembras (50/50)
en el experimento. Se verificaron todos los corrales tres veces al
día durante el estudio. De manera más específica, se verificaron la
disponibilidad de alimento y agua, el mantenimiento de temperatura,
y la condición general de los polluelos y la camada. Durante los
primeros siete días del experimento, se reemplazaron los polluelos
que murieron, a partir de un grupo de aves que se mantuvieron
separadas con sus dietas respectivas y escogidas aleatoriamente.
Los ocho corrales para cada uno de los diferentes
tratamientos se pusieron al azar a través de todo el edificio para
eliminar cualquier predilección posible provocada por la ubicación
física de los corrales en el edificio. Se recolectaron los
siguientes datos durante la prueba:
1. Los pesos corporales individuales en el día 21
y el día 45. Eficiencia del alimento en el día 21 y el día 45.
2. Se calculó la eficiencia de la alimentación
como la proporción alimento/ganancia. La ganancia fue la suma de los
peses del ave viva, así como el peso de cualquier ave muerta en el
día en que murió. Se determinó el peso del alimento mediante la
adición de cantidades conocidas de alimento a cada corral, y la
sustracción del peso de cualquier alimento que no se haya comido,
dejado en el corral en el momento de pesar a las aves.
3. El análisis de mortalidad incluyó la
mortalidad total, así como el día de la muerte.
4. Se calcularon las desviaciones estándares y
los coeficientes de variación para los pesos corporales
individuales, en el día 21 y el día 45.
5. Otras observaciones de las aves incluyeron el
plumaje y la apariencia física.
No hubo diferencias significativas que se hayan
observado entre ninguno de los grupos con respecto a la mortalidad,
plumaje o apariencia física. En la Tabla 5 anterior se resumen los
resultados y en el Ejemplo 6 (Tabla 8), se muestran los detalles de
las preparaciones dietéticas. En las Tablas 6 y 7 se dan los
detalles de los datos.
En las Tablas 6 y 7, se asignan los grupos de
tratamiento como sigue:
T1 | = | 3229 Kcal/Kg, sin enzima |
T2 | = | 3229 Kcal/Kg, más enzima |
T3 | = | 3085 Kcal/Kg, sin enzima |
T4 | = | 3085 Kcal/Kg, más enzima |
La tabla 8 proporciona una descripción detallada
de las dietas que se usaron en la prueba de corral que se describe
en el Ejemplo 4. Los ingredientes son bien reconocidos por cualquier
experto en la técnica de la nutrición animal. La dieta iniciadora se
usó en los días 0-21, la dieta de crecimiento, en
los días 22-39 y la dieta terminadora, en los días
40-45.
En muchos casos, podría ser preferible rociar la
enzima sobre las píldoras de alimento que se formaron previamente,
si se usan temperaturas extremas durante la formación de las
píldoras. En algunos lugares, se usan tiempo y temperaturas de
calentamiento durante la formación de píldoras que esencialmente
cocinan el alimento y por lo tanto, desnaturaliza la mayoría de las
enzimas efectivas en este método.
La Figura 1 muestra un diagrama de flujo de un
sistema de bombeo para recubrir el alimento con la enzima. La bomba
es una bomba de diafragma de dos cabezas (Duriron #E2-(16) (07)
115-68A31), que se usa para bombear el agua y la
endo-1,4-\beta-D-mananasa
en aproximadamente una proporción de 9 a 1 dentro de una salida
común. La mezcla fluye más allá de un amortiguador de impulso
(Blacoh #A301N) y se usa una válvula de solenoide (Asco #EF8210G87)
para evitar el flujo de agua mientras se apaga la bomba. Un medidor
de flujo (King Instruments, serie 7511, permite la inspección
visual de las velocidades del flujo del líquido y el color de la
solución de enzima diluida en agua.
Se usa el interruptor de presión ajustable (Omega
#PSW121) para detectar cualesquiera bloqueos de la línea y se apaga
de manera automática si se excede el ajuste de la presión. El ajuste
que se usa depende de la altura de la salida de la enzima en
relación con la bomba, y es generalmente ligeramente mayor que la
presión que se crea mediante la altura de la cabeza. Se proporcionan
válvulas para permitir el muestreo líquido y la cebación del lado
de la
endo-1,4-\beta-D-mananasa
de la cabeza de la bomba. Se reduce la presión de agua del
alojamiento a 15 10,2 kPa, antes de bombear mediante el regulador de
presión del agua. Se puede presurizar el tanque o tambor de
almacenamiento de la
endo-1,4-\beta-D-mananasa,
a 2 13,6 kPa con el regulador de aire, para evitar la pérdida del
cebador de la bomba.
Se proporciona la mezcla en el tanque de
almacenamiento a 1000 MU/Litro y se aplican 100 MU a cada tonelada
de alimento. Se ajusta la velocidad del flujo de agua a 900
mililitros por tonelada de alimento, usando el ajustador de
longitud de palada. Después se ajusta la velocidad del flujo de la
endo-1,4-\beta-D-mananasa
en el otro lado de la bomba, a 100 mililitros/tonelada. Se
verifica la velocidad mediante la medición de la velocidad del
concentrado de la enzima que está saliendo del tambor o tanque de
almacenamiento. De esta manera, después de la dilución en agua, se
aplica aproximadamente 1 litro de enzima líquida diluida a cada
tonelada de alimento, añadiendo solo aproximadamente 0,1 por ciento
de humedad. En un modo preferido. Se aplica la enzima al alimento a
través del equipo de revestimiento de grasa del molino ya
existente, conocido como roto-revestidor fabricadas
por APEC (Automatec Process Equipment, Co., Laural Drive, Lake
Odessa, Michigan, 48849). Típicamente, la enzima se pasará por
tubos al mismo lugar en donde la grasa cae sobre un plato giratorio
que la dispersa sobre una cortina delgada de alimento que cae
alrededor del plato a una velocidad uniforme. Usualmente, el equipo
de revestimiento de grasa se encuentra en la parte superior del
molino. El cambio de elevación crea suficiente presión en tubo que
contiene la enzima diluida, para asentar de manera apropiada las
válvulas de verificación de la bomba para su operación normal.
Se corre la señal de la computadora del molino a
través del lado normalmente cerrado del interruptor de presión al
iniciador del motor, la luz del piloto y la válvula de solenoide.
Por lo tanto, cuando al molino empieza a hacer el alimento, el
sistema de bombeo se enciende automáticamente, a menos que haya una
situación de sobre presión.
Se llevan las muestras de alimento a donde se
cargan dentro de recipientes o carretones para la verificación del
nivel de enzima. El método de ensayo que se usa es conocido en la
técnica como se describió anteriormente. Se consigue el éxito de la
aplicación cuando el nivel medio de la enzima es de 100 MU/tonelada,
y el coeficiente de variación (CV) es menor del 15 por ciento. La
Figura 2 muestra un ejemplo de una aplicación de enzima exitosa
sobre un período de varias semanas, en un molino de alimento que
puede producir hasta 50 toneladas de alimento en píldoras por
hora.
Claims (6)
1. Una composición de alimento que comprenda una
harina de semilla leguminosa; (b) aminoácidos esenciales y (c) una
enzima de hemicelulosa, en donde la composición de alimento tiene
una cantidad de grasa concentrada añadida menor del 2%, y un
contenido total de energía que se puede metabolizar de menos de 3086
Kcla/Kilogramo.
2. Una composición de alimento de conformidad con
la Reivindicación 1, en donde la harina de semilla leguminosa es
harina de frijol de soya.
3. Una composición de alimento de conformidad con
la Reivindicación 1, en donde dicha enzima de hemicelulosa es una
mañanasa.
4. Una composición de alimento de conformidad con
la Reivindicación 3, en donde la mañanaza es la
endo-1,4-\beta-D-mananasa
producida por el Bacillus lentus, designado ATCC 55045.
5. Una composición de alimento de conformidad con
la Reivindicación 1, en donde la composición de alimento
sustancialmente no incluye grasa concentrada.
6. Una composición de alimento de conformidad con
la Reivindicación 1, en donde el contenido de grasa concentrada
agregada, es menor del 1 por ciento.
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