ES2206565T3 - Sistema para liberar y aislar acidos nucleicos. - Google Patents

Sistema para liberar y aislar acidos nucleicos.

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ES2206565T3 ES96909143T ES96909143T ES2206565T3 ES 2206565 T3 ES2206565 T3 ES 2206565T3 ES 96909143 T ES96909143 T ES 96909143T ES 96909143 T ES96909143 T ES 96909143T ES 2206565 T3 ES2206565 T3 ES 2206565T3
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Burkhard Stolz
Manfred Pasch
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Abstract

UN PROCEDIMIENTO PARA LIBERAR Y AISLAR ACIDOS NUCLEINICOS DE COMPARTIMENTOS BIOLOGICOS DE UNA MUESTRA NECESITA UN APARATO APTO PARA LA RECOGIDA DE UNO O VARIOS RECIPIENTES PARA EL TRATAMIENTO DE LA MUESTRA; PARA EL CONTROL TERMOSTATICO DE LOS RECIPIENTES PARA EL TRATAMIENTO DE LA MUESTRA; PARA AGITAR LOS RECIPIENTES PARA EL TRATAMIENTO DE LA MUESTRA Y PARA LA PRECIPITACION MAGNETICA DE PARTICULAS MAGNETICAS. CON ELLO, SE SIMPLIFICA CONSIDERABLEMENTE EL AISLAMIENTO DE ACIDOS NUCLEINICOS.

Description

Sistema para liberar y asilar ácidos nucleicos.
Son objeto de la invención un sistema para liberar y aislar ácidos nucleicos y un procedimiento para la utilización de dicho sistema.
Los sistemas de detección que se basan en la determinación de los ácidos nucleicos de una muestra están cobrando un renovado interés en los últimos tiempos. Esto se debe, entre otras cosas, a la especificidad que se puede lograr con esta detección. En este sentido, las detecciones de ácidos nucleicos son en principio mejores que (superiores a) las detecciones de antígenos. Los antígenos suelen estar presentes en las muestras de una forma relativamente accesible, mientras que los ácidos nucleicos, en especial en las detecciones de organismos, requieren por lo general varias etapas para hacerse accesibles. Por otro lado, los ácidos nucleicos habitualmente están presentes en concentraciones muy bajas. En particular para el aislamiento de ácidos nucleicos a partir de muestras celulares se han practicado hasta el presente procedimientos de purificación laboriosos.
La sensibilidad de los sistemas de enriquecimiento y de preparación de muestras actualmente disponibles en el mercado para ácidos nucleicos a menudo no es lo suficientemente elevada. Cuando se preparan muestra con procedimientos automatizados, a menudo la seguridad de evitar la contaminación no es suficiente como para permitir una amplificación p.ej. mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR). Además, los sistemas de preparación de muestras actualmente disponibles requieren disolventes orgánicos (mezclas de fenol- y/o cloroformo-alcohol) para la obtención de los ácidos nucleicos.
Los procedimientos empleados actualmente recurriendo a la inmovilización de los ácidos nucleicos aplican fundamentalmente dos principios para aislar los ácidos nucleicos. En una primera posibilidad se succionan las muestras líquidas que contienen los ácidos nucleicos a través de una matriz de fase fija, con lo cual los ácidos nucleicos quedan retenidos en la matriz de fase fija. Esto presupone la realización previa de una etapa de lisis, que tendría lugar en un recipiente aparte. A continuación se separan los ácidos nucleicos de la matriz de fase fija por succión de un líquido eluyente a través de ella. La solución de elución de los ácidos nucleicos se trasvasa por succión a un recipiente en el que se procesa. Sin embargo, se ha constatado que los dispositivos empleados actualmente no son satisfactorios en lo que respecta a la pureza requerida para la ejecución de una operación ulterior de amplificación, p.ej. la PCR.
Según el segundo principio se precipitan los ácidos nucleicos y se separan mediante una centrífuga. Sin embargo, para este procedimiento es imprescindible trabajar en un sistema operativo por partidas (batch, es decir, discontinuo). En tal procedimiento se trata por ejemplo una solución que contiene células en un primer recipiente de reacción con agentes lisantes. A continuación se trasvasa por pipeteo la mezcla reaccionante de este recipiente a un tubo de centrifugación. Este tubo tiene una pieza intercalada en el que pueden adsorberse los ácidos nucleicos liberados, mientras que el resto del líquido puede ocupar la zona inferior del tubo durante la centrifugación. Para lavar los ácidos nucleicos absorbidos se trata dicha pieza intercalada una o varias veces con un líquido de lavado. Para ello, la pieza intercalada tiene que trasladarse a otro tubo de centrifugación, con el fin de que los restos del líquido de muestra no mojen otra vez dicha pieza intercalada. En la última etapa, la pieza intercalada se coloca en un nuevo recipiente. Los ácidos nucleicos se trasladan por centrifugación de una solución de elución a través de la pieza intercalada a otro recipiente, en el que existe una solución idónea para el procesado posterior. Sin embargo, este procedimiento adolece por un lado de un gran riesgo de contaminación y requiere por otro lado un gran número de cambios de recipientes de reacción.
En el documento EP-A-0 265 244 se describe un procedimiento y un dispositivo, en el que se realiza la detección de los ácidos nucleicos mediante la fijación sobre partículas magnéticas y la separación de dichas partículas magnéticas. En el método descrito se efectúan etapas de calentamiento, de agitación y de separación magnética. Para ello, la muestra se disgrega antes de efectuar la separación de las partículas magnéticas. Además, las distintas etapas del proceso se efectúan en diversos emplazamientos (estaciones) de modo que se requiere el transporte de la muestra a través de los distintos emplazamientos.
En el estado de la técnica se conoce además el documento WO 92/05443, en el que se describe un aparato para la separación de las partículas magnéticas cargadas con reactivo. En el documento se describe un dispositivo combinado de separación/agitación, que trabaja con placas de microvaloración.
Es objetivo de la presente invención consiste en desarrollar un sistema que permita superar totalmente o por lo menos parcialmente los inconvenientes del estado de la técnica. En particular, con este sistema los ácidos nucleicos pueden absorberse y desorberse de una matriz de fase fija, sin que para estas etapas se requiera el uso de una centrífuga.
Un aspecto importante de la invención consiste en un alojamiento para el recipiente de procesado de las muestras, que puede mantenerse a temperatura constante y puede ponerse en movimiento, de modo que se logre la mezcla completa de las sustancias que se hallan dentro del recipiente de procesado de las muestras. Este alojamiento dispone además de una conexión a un sistema generador de una depresión (p.ej. bomba peristáltica, bomba de émbolo). Con el alojamiento es posible además separar partículas magnéticas dentro del recipiente de procesado de muestras. Las ventajas importantes de la invención son la protección contra la contaminación (tanto de una muestra a otra, como del sistema al medio ambiente) así como la posibilidad de admitir un número suficientemente grande de recipientes de procesado de muestras, con el fin de garantizar la viabilidad económica de dicho sistema.
Es también objeto de la invención un procedimiento según la reivindicación 1 para liberar y aislar o detectar ácidos nucleicos existentes en compartimentos biológicos de una muestra.
Otro objeto de la invención es un sistema de liberación y aislamiento de ácidos nucleicos a partir de una suspensión de compartimentos biológicos con partículas magnéticas según la reivindicación 5.
En el sentido de la invención, los ácidos nucleicos son ácidos nucleicos que existen en compartimentos biológicos. Se entiende por compartimentos biológicos en especial las células, por ejemplo las de origen vírico o bacteriano. De forma especialmente preferida, las células están presentes en un estado fundamentalmente aislado. En principio pueden procesarse también en el sentido de la invención los compartimentos multicelulares. Estos compartimentos con sus ácidos nucleicos están presentes en una muestra en el inicio del procedimiento de la invención. Esta muestra es con preferencia una suspensión de los compartimentos biológicos en un líquido. Estas muestras pueden obtenerse por ejemplo a partir de líquidos corporales, p.ej. sangre, saliva u orina.
En el sentido de la invención se entiende por liberación de ácidos nucleicos la salida de dichos ácidos nucleicos de los compartimentos biológicos. Esta salida puede efectuarse de múltiples maneras. La salida tiene lugar con preferencia por destrucción de la pared que delimita los compartimentos biológicos frente al líquido. Esto puede realizarse por ejemplo por tratamiento de los compartimentos con medios que destruyan la pared celular, p.ej. la proteinasa K.
Se entiende por aislamiento de ácidos nucleicos la separación de dichos ácidos nucleicos de otros componentes de la muestra. Los demás componentes de la muestra son por ejemplo las paredes de los compartimentos biológicos, sus productos de descomposición, otros ingredientes que forman parte de los compartimentos biológicos así como otros ingredientes del líquido que rodea los compartimentos biológicos de la muestra. Entre ellos se cuenta por ejemplo las proteínas, los inhibidores de enzimas, en especial las enzimas que degradan a los ácidos nucleicos, como son la DNasa y la RNasa. En este sentido, el aislamiento puede entender también como una especie de purificación o lavado de los ácidos nucleicos. Este aislamiento puede ser tanto específico como inespecífico en lo que respecta a otros ácidos nucleicos existentes en la muestra.
Según la invención se entiende por detección de ácidos nucleicos un procedimiento en el que se determina la presencia o la cantidad de los ácidos nucleicos. Estos procedimientos pueden realizarse con fines cuantitativos o también cualitativos. Para la ejecución de detecciones cuantitativas se realiza normalmente un ensayo comparativo con una muestra que contiene una cantidad conocida de los ácidos nucleicos a detectar. La detección puede ser además específica de secuencia o inespecífica de secuencia. Para hacer que las detecciones sean específicas se emplean por lo general sondas, que están caracterizadas porque presentan una secuencia de nucleobases que son más o menos características de los ácidos nucleicos de la muestra. En el supuesto de que se desee una detección específica de los ácidos nucleicos, se empleará una sonda que contenga una secuencia de bases que sea complementaria de la secuencia de bases que tiene el ácido nucleico a detectar, pero no sea complementaria de otros ácidos nucleicos de la muestra. Las sondas pueden ser moléculas que contienen un grupo que puede detectarse de modo directo o indirecto. Estos grupos directamente detectables son por ejemplo grupos radiactivos (P^{32}) coloreados o fluorescentes o átomos metálicos. Los grupos detectables de modo indirecto son por ejemplo compuestos activos en sentido enzimático o inmunológico, por ejemplo anticuerpos, antígenos, haptenos, enzimas o enzimas parciales activas en sentido enzimático. Estos pueden detectarse en una reacción ulterior o en una secuencia de reacciones. Son preferidos en especial los haptenos, p.ej. la digoxigenina o la biotina. Tales sondas marcadas con haptenos pueden detectarse fácilmente en una reacción ulterior con un anticuerpo marcado contra el hapteno.
Descripción del sistema
Es objeto de la invención un sistema de liberación y/o aislamiento de ácidos nucleicos a partir de una suspensión de compartimentos biológicos, que contiene los componentes siguientes:
- una unidad de alojamiento (10) para uno o varios recipientes de procesado de la muestra (A),
- una unidad de termostato (20) para mantener constante la temperatura de los recipientes de procesado de la muestra (A) y de los líquidos existentes en su interior,
- un agitador (30) para agitar los recipientes de procesado de la muestra (A) y
- un separador (40) para la separación magnética de las partículas magnéticas contra una pared de cada uno de los recipientes de procesado de la muestra (A),
- una unidad de bomba (50) para eliminar el líquido del recipiente de procesado de la muestra (A).
El sistema tiene una superficie fácil de limpiar y protege al usuario de quemaduras (p.ej. mediante un encamisado de plástico).
En la figura 1 y 2 se representa esquemáticamente un sistema con las unidades de la invención.
El sistema posee una unidad de alojamiento (10) para los recipientes de procesado de las muestras. Esta unidad de alojamiento contiene varias depresiones (12), también llamadas cavidades, en las que se alojan los recipientes de las muestras. La disposición de las cavidades es con preferencia lineal o lineal en subgrupos que están dispuestos en ángulo recto entre sí. La distancia entre las cavidades equivale con preferencia a la distancia de los hoyos de una placa de microvaloración, también es preferida una distancia que sea el doble de la distancia citada. La geometría de las cavidades será acorde con la geometría de los recipientes de muestras que tienen que alojarse en ellas.
El recipiente de procesado de la muestra (A) puede adoptar en principio una forma cualquiera. Tales recipientes de procesado de muestras pueden ser p.ej. los hoyos de una placa de microvaloración (p.ej. un formato de 96 hoyos). Sin embargo, serán con preferencia recipientes cilíndricos que poseen una abertura superior de entrada y, con preferencia especial, una abertura inferior de vaciado (A11). Un recipiente de procesado de muestras de este tipo puede utilizarse para el procesado de contaminación reducida de muestras que contengan ácidos nucleicos. Estos recipientes son por lo general de plástico, p.ej. de polipropileno.
En el marco de la presente invención pueden utilizarse con preferencia especial recipientes como los descritos en números de expediente 29505652.5 y 29505707.6 de las solicitudes de modelos (industriales) registrados de Alemania.
Mantener el líquido a una temperatura constante dentro de los recipientes de procesado de muestras se realiza según la invención con una unidad de termostato (20). Esta unidad, compuesta en principio por los componentes habituales de termostatos, está integrada por lo menos en parte en la unidad de alojamiento (10), en la que pueden colocarse (posicionarse) los recipientes de procesado de muestras. La unidad (10) contiene en especial un bloque metálico, que posee buenas propiedades de conductividad térmica. Este bloque tiene una forma adaptada a la forma exterior de los recipientes de procesado de muestras de tal manera que estos recipientes, que se hallan en el alojamiento, con su pared exterior tienen a ser posible un buen contacto con el bloque metálico, de modo que sea posible una transferencia térmica eficaz. En función de la reacción a realizar en el recipiente de procesado de muestras se elevará o se bajará la temperatura del bloque. El abanico de temperaturas abarca de 4 a 95ºC. La elevación de la temperatura se realiza de forma ideal con varias resistencias eléctricas, que se hallan en la mayor proximidad posible del recipiente de procesado de muestras. El enfriamiento del líquido del recipiente de procesado de muestras se realiza con elementos Peltier, colocados igualmente en la mayor proximidad posible de los recipientes de procesado de muestras. La regulación de la temperatura se efectúa con preferencia mediante un regulador "fuzzy" o un regulador PIDT. En la unidad de termostato están colocadas sondas termométricas en número suficiente y en lugares representativos.
Otra forma de ejecución de la unidad de termostato (20) posee un bloque en cuyo interior circula el líquido. Como medios para mantener constante la temperatura se emplean líquidos; por lo general agua o soluciones salinas acuosas. El líquido empleado para mantener constante la temperatura se alimenta con preferencia a través de tubos flexibles desde una unidad de calentamiento o de enfriamiento mediante una bomba de recirculación, entrando directamente por los orificios (21) del bloque (10). La capacidad del depósito del sistema de acondicionamiento de la temperatura (indicado en la figura 1 como calentador y enfriador) fuera del módulo DNA es un múltiplo del volumen total del módulo DNA, con lo cual se reduce al mínimo este parámetro molesto (que puede interferir) cuando se acciona la válvula de 2 vías. El calentador y el enfriador mantienen constante la temperatura de los materiales antes de entrar en el recipiente y, en caso necesario, se dotan de cadencia o intermitencia. Un regulador acciona la válvula; el calentador y el enfriador junto con el caudal idóneo de la bomba de recirculación permiten alcanzar las velocidades de calentamiento o de enfriamiento deseadas. En esta forma de ejecución se entiende por unidad de termostato (20) la combinación del bloque en cuyo interior circula el líquido, bomba de recirculación, calentador, enfriador y válvula de 2 vías. Se denomina módulo DNA el dispositivo que consta de unidad de alojamiento de recipientes de procesado de muestras, agitador y separador.
El sistema permite trabajar con partículas magnéticas (beads, bolas, perlas). Se entiende por partículas magnéticas aquellas que pueden transportarse en una dirección determinada por acción de un imán. Entre ellas se cuentan por ejemplo los materiales ferromagnéticos o superparamagnéticos. En el sentido de la invención son preferidos en especial los materiales ferromagnéticos. Las partículas son partículas fijas de un diámetro pequeño. En el sentido de la invención son idóneas en particular las partículas que tienen un tamaño medio de grano superior a 2,8 \mum, pero inferior a 200 \mum. Tienen con preferencia especial un tamaño medio de grano comprendido entre 10 y 15 \mum. La distribución de tamaños de grano es con preferencia homogénea. Estas partículas se han modificado en su superficie de modo que pueden fijar los compartimentos biológicos. Las partículas magnéticas adecuadas para ello son las partículas magnéticas de látex, ya conocidas y disponibles en el mercado, sobre las que pueden fijarse p.ej. anticuerpos. Para fijar los compartimentos biológicos sobre las partículas magnéticas se emplean en especial anticuerpos, dirigidos contra los antígenos de la superficie de los compartimentos biológicos. Tales partículas magnéticas son también productos comerciales.
Pueden emplearse también pigmentos magnéticos de vidrio, en cuya superficie se fijan los ácidos nucleicos. Tales pigmentos magnéticos de vidrio son conocidos por la solicitud de patente alemana 19537985.3.
Para que pueda realizarse con éxito el procedimiento de la invención es necesario fijar las partículas magnéticas para determinadas etapas de reacción sobre la pared interior del recipiente de procesado de muestra y poder soltarlas de nuevo y ponerlas en suspensión en una etapa posterior. En el sentido de la invención se realiza de modo especialmente preferido para el posicionado de los imanes un acercamiento del separador (40) al recipiente de procesado de muestra mediante uno o varios imanes permanentes o electroimanes fijados a dicho separador. La distancia entre el imán del recipiente de procesado de muestra, necesaria para que la separación sea eficaz, dependerá en gran manera de la magnitud del campo magnético generado por el imán y del tamaño y de la capacidad magnética de las partículas magnéticas. También el tipo de etapas de procesado que vayan a realizarse posteriormente (p.ej. carga mecánica de los imanes) tiene su influencia en la intensidad de campo magnético a aplicar. En el supuesto de que sea un imán permanente, este se colocará en la proximidad del recipiente desde una posición, que no es suficiente para separar las partículas magnéticas, de modo que las partículas magnéticas se mantengan pegadas a la pared interior del recipiente. En caso de usarse un electroimán, este se conecta y se mantiene activo hasta que termina el procesado de los compartimentos biológicos retenidos.
Con la expresión "posicionado del imán cerca del recipiente" se tiene que entender también el caso en el que el recipiente se coloque cerca del imán. A fin de cuentas, lo que importan es únicamente el movimiento relativo del imán hacia el recipiente.
El separador (40) está provisto con preferencia de un imán que puede moverse en un tramo predeterminado, p.ej. sobre raíles o con preferencia por movimiento del imán sobre un círculo, p.ej. alrededor de un eje situado junto al recipiente de la muestra, en dirección al recipiente de procesado de muestras. El separador contiene además un motor que puede ejecutar el movimiento del imán hacia el recipiente de procesado de muestras y también su alejamiento del mismo.
En otra forma de ejecución, el separador (40) está provisto de una cremallera que puede accionarse linealmente mediante un motor de corriente continua o, como alternativa, mediante un motor paso a paso. Dispuesto en ángulo recto con respecto a la cremallera se halla un dispositivo de paro de los imanes, en este caso imanes permanentes. Las posiciones finales del movimiento del imán pueden detectarse con células fotoeléctricas. Se asigna con preferencia un imán a cada recipiente de procesado de muestras, que por su cara frontal se aproxima a dicho recipiente. Pero también es posible aproximar 2 imanes a cada recipiente de procesado de muestras. En este supuesto se aproxima en cada caso 1 imán a 2 recipientes, de modo que para n recipientes se necesitan solamente n+1 imanes.
Para efectuar la separación, los imanes tienen que aproximarse cuanto sea posible a los recipientes de procesado de muestras, con el fin de lograr un alto porcentaje de separación de partículas magnéticas. Es importante además que el recorrido de los imanes entre las posiciones sea suficiente. En función del material magnético empleado y de la geometría de los imanes, los imanes tendrán que guardar una distancia de hasta 40 mm con respecto al recipiente de procesado de las muestras con el fin de evitar una separación fortuita. Para el funcionamiento del instrumento es importante que las fuerzas magnéticas sólo actúen sobre las partículas del recipiente de procesado de muestras cuando sea necesario o deseado. Por consiguiente, en su posición inactiva el imán deberá desplazarse a una distancia tal del recipiente que el campo magnético no tenga ya ningún efecto significativo sobre el movimiento de las partículas.
Esto puede realizarse además de modo que no varíe la distancia entre imán y recipiente de procesado de muestras. Sin embargo, los campos magnéticos pueden interrumpirse con un metal \mu que se mueve entre el recipiente y el imán.
Otra disposición posible de los imanes consiste en un eje giratorio, accionado por un motor de corriente continua. Con esta forma de ejecución es posible mover los imanes en una circunferencia. Los imanes propiamente dichos pueden estar dispuestos en cualquier posición de este eje, de modo que cuando el eje se mueve tiene lugar una aproximación o un alejamiento de los imanes con respecto a los recipientes de procesado de muestras. Es ventajoso además un accionamiento, en el que en los lados opuestos del sistema están dispuestos en cada caso 1 eje con un gran número de imanes. Los ejes se accionan mediante una correa dentada movida por un motor. En esta disposición se aproximan en cada caso 2 imanes de forma síncrona hacia las caras frontales de los recipientes de procesado de muestras.
Los imanes de la presente invención están provistos con preferencia de una masa comprendida entre 0,5 y 5 g, con preferencia especial entre 1 y 4 g. Las medidas externas, empleadas en el prototipo, son de 10 mm x 10 mm x 3 mm. Como material idóneo de un imán permanente han dado buenos resultados los materiales de tierras raras (p.ej. NeFeB, VACODYM 370 HR) con un máximo de BH óptimo en las medidas más pequeñas. Para una separación eficiente es ventajoso dimensionar de forma muy acusada el gradiente del campo magnético. Por este motivo, el posicionado del imán debería realizar en la mayor proximidad posible del recipiente. Como materiales de los recipientes de procesado de muestras se emplean con preferencia aquellos que tienen una atenuación lo menor posible del campo magnético, p.ej. el polipropileno.
En la unidad constructiva para alojamiento de los recipientes de procesado de muestras se sujetan por la cara inferior de la cavidad tubos flexibles (51) que a su vez están conectados a un sistema generador de presiones negativas. Se asigna un tubo flexible a cada cavidad. En la zona del fondo de los recipientes de procesado de muestras están previstas aberturas, por consiguiente, con la generación de presión negativa (vacío) puede sacarse por succión el contenido de los recipientes de procesado de muestras y trasvasarse al depósito de desechos (waste). En la ejecución correspondiente a la figura 2, cada cavidad posee una junta que, en el momento de succionar el desecho, impide que se succione aire entre el recipiente de procesado de muestra y la entrada (14).
El sistema de vacío consta fundamentalmente de una bomba de émbolo (50) que está conectada con las cavidades mediante un sistema de tubos flexibles. Entre ambos está situado un depósito de desechos (waste), en el que se recoge el líquido. El líquido succionado de los recipientes de procesado de muestras es desecho. Por lo demás, entre cada recipiente de procesado de muestras y el recipiente de desecho está interpuesta una válvula. Esta válvula permite transmitir el vacío a cada cavidad, cuando el sistema se conecta al vacío de forma permanente desde la bomba pasando por el depósito de desechos (waste) hasta la válvula. Según la invención es posible una succión tanto paralela como secuencial de los recipientes de procesado de muestras.
En otra forma de ejecución se sustituyen la bomba de émbolo y las válvulas por una bomba peristáltica. En este caso, el frasco de desechos no está conecta de forma permanente al vacío, el frasco se halla en la dirección del flujo detrás de las cavidades y la bomba peristáltica. Esta disposición sólo permite un vaciado paralelo por succión de las cavidades. Pueden utilizarse también varias bombas peristálticas, que se conectan a un número determinado de cavidades. De este modo es posible un funcionamiento parcialmente secuencial.
El movimiento de los recipientes de procesado de muestras se efectúa con preferencia en sentido horizontal. Se mueve con preferencia especial la unidad de alojamiento (10), que contiene depresiones o cavidades (12) ocupadas en cada caso por un recipiente de muestras, de modo que se agiten todos los recipientes de muestras alojados en ellas. Con un amortiguador de vibraciones (11) se reduce la transmisión del movimiento a la totalidad del aparato. En el sentido de la invención es preferido el uso de un agitador (sacudidor) (30) que efectúa el movimiento de los recipientes (A) de procesado de muestras. Esta unidad puede ser en principio cualquier dispositivo mecánico apropiado para mezclar líquidos dentro de un recipiente. A continuación se describe un ejemplo preferido de tal unidad.
Un motor paso a paso con una excéntrica y una masa compensadora mueven de un bastidor fijo (1) la unidad de alojamiento (10), colocada sobre un amortiguador de vibraciones solidario con este bastidor, en un recorrido circular excéntrico de amplitud fija y frecuencia variable. La amplitud preferida A es de \leq 1,5 mm, la frecuencia preferida (f) es mayor que 1 Hz y menor que 50 Hz. La duración del mezclado o de la resuspensión se sitúa en función de las propiedades físicas del material de muestra entre 5 y 30 s. Cambiando la excéntrica se puede variar la amplitud.
La combinación del sistema de la invención y una máquina automática de pipeteo como tal no es obvia, porque requiere prever un posicionado definido de los recipientes de las muestras antes y después de las etapas de pipeteo. La agitación (sacudida) de los recipientes conduce a que, después de cada sacudida, los recipientes ocupan una posición diferente. En el supuesto de que la posición de los recipientes durante el proceso de pipeteo no se haya especificado exactamente, se corre el riesgo de que la operación de pipeteo no pueda realizarse correctamente. Por ello hay que procurar que después de la agitación (por sacudida) el recipiente se halle en una posición definida, también llamada base (home), en la que puede realizarse el pipeteo u operaciones de otro tipo.
Es ventajoso el uso de un motor paso a paso con respecto al uso de un motor de corriente continua para garantizar que se alcanzará una posición base (home) definida. La posición base puede detectarse con ventaja mediante una célula fotoeléctrica.
En lo referente a la ejecución constructiva existen todavía las siguientes posibilidades alternativas no invasivas, cuyo diseño es en todos los casos más costoso (variantes 1 y 2) o bien cuyas operaciones de mezclado (3) duran más.
1. Una combinación de uno, dos o tres accionamientos lineales de la unidad de alojamiento en el plano o en el espacio (ejes X, Y, Z) para generar p.ej. figuras de Lissajous.
2. Basculación por inclinación del bastidor (1) en un ángulo determinado y contraposición de la unidad de alojamiento (10).
3. Agitador magnético.
4. Girar o batir (golpear) el módulo DNA.
La conjunción de los componentes del sistema puede ser por un lado funcional, p.ej. por integración de los imanes en la unidad 10. Por otro lado, los componentes del sistema pueden ensamblarse temporalmente, por ejemplo si el funcionamiento de las unidades se regula en un orden idóneo para una aplicación deseada, en tal caso la regulación puede efectuarse mediante un programa informático o cuando el mismo usuario inicia las distintas operaciones parciales.
Descripción del procedimiento
Variante A
En una primera etapa se incuba la muestra en un recipiente de procesado de muestra junto con las partículas magnéticas (beads) que pueden fijar los compartimentos biológicos, agitando (sacudiendo) el recipiente de procesado de muestras.
La incubación de las muestras con las partículas magnéticas puede practicarse del modo que se quiera. Es necesario que tanto la muestra como las partículas magnéticas se hayan introducido en el recipiente de procesado de muestra. Para el procedimiento de la invención, en principio no tiene mayor importancia el método de introducción ni el orden. Sin embargo se pipetean al recipiente de procesado de muestra con preferencia las partículas magnéticas en forma de suspensión con un contenido conocido de partículas magnéticas. La muestra se pipetea al recipiente de procesado de muestra ya sea antes, ya sea después.
La incubación se realiza en condiciones idóneas hasta que se haya fijado sobre las partículas magnéticas una cantidad suficiente de compartimentos biológicos. Se trata por lo general de un período de tiempo comprendido entre 1 min y 10 min. El recipiente de procesado de la muestra se cierra para ello con preferencia de modo adecuado, p.ej. con una tapa y/o con una válvula.
Una característica importante de la invención consiste en que durante la incubación se agita la mezcla que se halla en el recipiente de procesado de muestra. Tal agitación puede realizarse a intervalos. Sin embargo, la agitación puede realizarse a lo largo de todo el período de incubación o bien solamente durante partes del mismo. La agitación (por sacudidas) sirve para lograr un mezclado suficiente de los compartimentos biológicos y las partículas magnéticas dentro del líquido, en especial para lograr la suspensión o resuspensión de las partículas (beads) y la aceleración de la difusión. De este modo se reduce el período de incubación necesario para que los compartimentos biológicos se fijen sobre las partículas magnéticas.
Después de la incubación y fijación de los compartimentos sobre las partículas magnéticas se separan dichos compartimentos biológicos del líquido de la muestra que los rodea. Esto se efectúa en condiciones en las que las partículas magnéticas permanecen pegadas a la pared del recipiente. El tipo de separación dependerá del tipo de recipiente de procesado de muestras. El líquido puede quitarse p.ej. por pipeteo. Sin embargo, en una forma preferida de ejecución, en la que el recipiente de procesado de muestra está provisto de un orificio de vaciado por abajo, el líquido se succiona simplemente a través de tal orificio. Este tipo de vaciado supone muy poca carga mecánica para las partículas magnéticas y evita por tanto que las partículas magnéticas se despeguen de la pared del recipiente.
Una operación especialmente importante es resuspensión de las partículas magnéticas retenidas sobre la pared del recipiente en el segundo líquido que se añade. Para ello se aleja el imán de las proximidades del recipiente, de modo que las partículas magnéticas ya no permanecen pegadas a la pared del recipiente por acción del imán. Tal como se ha descrito anteriormente es posible también apartar el recipiente de la proximidad del imán. Según la presente invención se ha constatado que no basta el simple alejamiento del imán para la resuspensión, a menos que de modo complementario y con preferencia simultáneo se agite (por sacudidas) el recipiente. Esta agitación se lleva a cabo con el agitador (sacudidor) (30). Tal agitación produce un reparto homogéneo de las partículas magnéticas en el segundo líquido. Este segundo líquido puede introducirse en el recipiente de procesado de muestra p.ej. por pipeteo antes de apartar el imán, pero también después de que se haya alejado el imán.
El procedimiento de la invención puede utilizarse también para la purificación ulterior de los compartimentos biológicos. Para ello, la suspensión de partículas magnéticas, sobre las que se han fijado los compartimentos biológicos, se posiciona en un recipiente de procesado de muestra en relación con un imán de tal manera que las partículas magnéticas con sus compartimentos biológicos adheridos se retengan sobre la pared del recipiente, a continuación se saca del recipiente el líquido (que había contenido los compartimentos biológicos) y seguidamente se resuspenden las partículas magnéticas en un segundo líquido, en este caso un líquido de lavado, previo alejamiento del imán de las proximidades del recipiente, de modo que las partículas magnéticas ya no estén retenidas por el imán sobre la pared del recipiente, al tiempo que se agita (sacude) el recipiente. Este proceso de lavado puede repetirse tantas veces como se quiera, hasta lograr que los compartimentos biológicos tengan una pureza suficiente.
Como operación adicional del procedimiento de la invención está prevista a continuación la disgregación (lisis) de los compartimentos biológicos. El experto en la materia conoce perfectamente los procedimientos de disgregación de compartimentos biológicos, así como las condiciones específicas de determinados tipos de compartimentos, p.ej. células. Por ejemplo, para disgregar bacterias se añade a los compartimentos una mezcla de proteinasa K y se incuban durante un tiempo determinado, que se requiere para la rotura o bien para la digestión total o parcial de las paredes celulares, liberándose los ácidos nucleicos contenidos en el interior de los compartimentos biológicos. Para ello se trabaja con preferencia a una temperatura superior a la temperatura ambiente y comprendida con preferencia especial entre 70 y 95ºC. La mezcla resultante de la disgregación de las células se denominará en lo sucesivo mezcla de disgregación. La incubación se lleva a cabo con preferencia durante un tiempo de 5 a 20, con preferencia especial de 10 a 15 minutos.
En particular cuando la disgregación de las células se ha realizado a temperatura ambiente o a una temperatura ligeramente superior, es preferido calentar seguidamente la mezcla de disgregación a temperaturas más elevadas, por ejemplo a 70ºC o, en caso de muestras potencialmente infecciosas, a 95ºC. En tal caso si se desea puede inactivarse el reactivo de la lisis, en el supuesto de que pueda molestar en etapas posteriores.
A continuación se enfría la mezcla de disgregación, a saber en condiciones que dependen de la finalidad del procedimiento de la invención. Si el aislamiento de los ácidos nucleicos tiene que realizarse sobre una fase fija, entonces se ajustan las condiciones que permitan dicha unión del ácido nucleico sobre la fase fija. Un procedimiento idóneo de fijación de ácidos nucleicos es la incubación de los ácidos nucleicos liberados junto con superficies de vidrio en presencia de sales caotrópicas. Tal procedimiento se ha descrito por ejemplo en el documento EP-A-0 389 063. En él, los ácidos nucleicos se unen a la superficie de vidrio de modo inespecífico, mientras que otros componentes de los compartimentos biológicos así como de los reactivos de disgregación no se unen a dicha superficie de vidrio o lo hacen de forma insignificante. Con preferencia, a continuación se retira, p.ej. se succiona del recipiente de procesado de muestras el líquido que contiene los componentes restantes, mientras la superficie de vidrio y los ácidos nucleicos fijados en ella pueden permanecer en el recipiente de procesado de muestras. En una forma preferida de ejecución, esta fase fija se introduce en el recipiente de procesado de muestra en forma de vellón (tejido no tejido) de fibras de vidrio y se incuba con la mezcla. Con ello se inmovilizan los ácidos nucleicos sobre las fibras de vidrio y pueden sacarse fácilmente del recipiente de procesado de muestra junto con el vellón de fibras de vidrio.
Para el caso de que los ácidos nucleicos tengan que detectarse después de su liberación, entonces se hibridan con una sonda. Esta sonda es, tal como se descrito anteriormente, una molécula provista de una secuencia complementaria del ácido nucleico a detectar o de una parte del mismo. En un caso preferido, la sonda es un oligonucleótido marcado con un grupo detectable. El enfriamiento de la mezcla reaccionante se realiza por tanto en condiciones en las que pueda tener lugar una hibridación del ácido nucleico a detectar con la sonda de ácido nucleico. El experto ya sabe cuáles son estas temperaturas. En otra forma de ejecución, como procedimiento de detección de ácidos nucleicos se realiza una hibridación entre el ácido nucleico a detectar y una sonda de ácido nucleico unida a una fase fija. Para ello puede emplearse la sonda en cualquier fase fija, en el supuesto de que solo sea separable de la mezcla reaccionante restante, p.ej. cavidades de placas de microvaloración o la pared interior del recipiente de procesado de muestras. El experto ya conoce los procedimientos de inmovilización de sondas de ácidos nucleicos, en especial de las sondas llamadas de captura, descritas p.ej. en el documento EP-A-0 523 557.
En general, después del enfriamiento de la mezcla se separan los ácidos nucleicos a aislar o a detectar del líquido que los rodea, que contiene event. otros restos de la mezcla de disgregación y event. de reactivos empleados para unir los ácidos nucleicos sobre la fase fija. Para ello y en función de la fase fija empleada se puede realizar una filtración o se puede sacar la fase fija del recipiente de procesado de muestra o se puede sacar el líquido por pipeteo de dicho recipiente.
Seguidamente, los ácidos nucleicos quedan disponibles para la eliminación de su unión con la fase fija o para su detección directa por procedimientos habituales, ya conocidos del experto, destinados a detectar secuencias de ácidos nucleicos o para su marcado.
Variante B (no según reivindicación 1)
En una primera etapa se pipetea la muestra junto con el reactivo lisante y partículas magnéticas de vidrio (beads), que pueden fijar los ácidos nucleicos contenidos en los compartimentos biológicos, a un recipiente de procesado de muestra, seguidamente se cierra el recipiente y se agita. Es necesario que tanto la muestra y el reactivo lisante como las partículas magnéticas de vidrio se introduzcan en el recipiente de procesado de muestras. Para el procedimiento de la invención no tienen mayor importancia en principio ni el tipo de introducción, ni su orden. Sin embargo, es preferido que las partículas magnéticas de vidrio se pipeteen al recipiente de procesado de muestra en forma de suspensión con un contenido conocido de partículas magnéticas de vidrio. La muestra se pipetea a dicho recipiente de procesado ya sea antes, ya sea después. Lo importante es que la muestra, las partículas magnéticas de vidrio y el reactivo lisante se mezclen de modo homogéneo mediante la agitación.
Otra etapa del procedimiento de la invención consiste en la siguiente disgregación (lisis) de los compartimentos biológicos. El experto conoce también los procesos para la disgregación de compartimentos biológicos así como las condiciones específicas que requieren determinados compartimentos, p.ej. las células. Para disgregar por ejemplo bacterias se añade a los compartimentos biológicos una mezcla de proteinasa K y se incuban durante un tiempo determinado, necesario para romper o bien digerir total o parcialmente las paredes celulares y liberar los ácidos nucleicos contenidos en el interior de los compartimentos biológicos. Para ello se trabaja con preferencia a una temperatura superior a la temperatura ambiente y comprendida con preferencia especial entre 70 y 95ºC. La mezcla resultante de la disgregación de las células se denominará en lo sucesivo mezcla de disgregación. La incubación se lleva a cabo con preferencia durante un tiempo de 5 a 20, con preferencia especial de 10 a 15 minutos.
En particular cuando la disgregación de las células se ha realizado a temperatura ambiente o a una temperatura ligeramente superior, es preferido calentar seguidamente la mezcla de disgregación a temperaturas más elevadas, por ejemplo a 70ºC o, en caso de muestras potencialmente infecciosas, a 95ºC. En tal caso si se desea puede inactivarse el reactivo de la lisis, en el supuesto de que pueda molestar en etapas posteriores.
Una característica importante de la invención consiste en que durante la incubación se agita la mezcla que se halla en el recipiente de procesado de muestra. Tal agitación puede realizarse a intervalos. Sin embargo, la agitación puede realizarse a lo largo de todo el período de incubación o bien solamente durante partes del mismo. La agitación (por sacudidas) sirve para lograr un mezclado suficiente de los compartimentos biológicos y las partículas magnéticas dentro del líquido, en especial para lograr la suspensión o resuspensión de las partículas (beads) y la aceleración de la difusión. De este modo se reduce el período de incubación necesario para que los compartimentos biológicos se fijen sobre las partículas magnéticas.
A continuación se enfría la mezcla de disgregación, a saber en condiciones que dependen de la finalidad del procedimiento de la invención. Los ácidos nucleicos liberados del compartimento biológico tienen que fijarse de modo inespecífico sobre la superficie de las partículas magnéticas de vidrio. Para lograr una mejora de las propiedades de fijación se añade i-propanol o etanol a la mezcla de disgregación después de la lisis, en función del tipo del compartimento biológico. A continuación tiene lugar otro mezclado a fondo de la mezcla por agitación del recipiente de procesado de la muestra. De este modo, los ácidos nucleicos se unen de modo inespecífico sobre la superficie de la fase fija, mientras otros componentes del compartimento biológico y los reactivos de disgregación no se adsorben sobre la superficie de vidrio o lo hacen en cantidades insignificantes.
Una vez finalizada la unión sobre la fase fija se activan los campos magnéticos y se precipita sobre la pared interior del recipiente de procesado de muestras el pigmento magnético de vidrio con el ácido nucleico adherido y se saca el líquido sobrenadante del recipiente. Sin embargo, en una forma preferida de ejecución, en la que el recipiente de procesado de muestra está provisto de una abertura inferior para el vaciado, el líquido se succiona simplemente a través de dicha abertura. Este tipo de eliminación ejerce una carga mecánica pequeña sobre las partículas magnéticas y evita por tanto que dichas partículas magnéticas se despeguen de la pared del recipiente.
En la siguiente etapa de procesado se resuspenden las partículas magnéticas de vidrio en un líquido de lavado. Para ello se retira el imán de las proximidades del recipiente, de modo que las partículas magnéticas ya no se mantienen pegadas a la pared del recipiente por acción de dicho imán. Tal como se ha descrito anteriormente, el recipiente puede alejarse también de las proximidades del imán. Según la invención, no basta con el simple alejamiento del imán para lograr la resuspensión, a menos que el recipiente además se agite, con preferencia de forma simultánea. Esta agitación se realiza de nuevo mediante un sacudidor (30) y se traduce en un reparto homogéneo de las partículas magnéticas en el líquido de lavado. Este líquido de lavado puede introducirse en el recipiente de procesado de muestra p.ej. por pipeteo antes de retirar el imán, pero también después de haber retirado dicho imán. La operación de lavado puede repetirse tantas veces como se quiera, hasta que los ácidos nucleicos aislados tengan una pureza suficiente.
Los ácidos nucleicos fijados están disponibles a continuación ya sea para romper su unión con la fase fija, ya sea para la detección directa mediante procedimientos de detección de ácidos nucleicos que el experto ya conoce, ya sea para el marcado.
El procedimiento de la invención aplica, pues, una combinación de etapas de procesado que requieren una unidad de alojamiento (10) para albergar uno o varios recipientes de procesado de muestra, una unidad de termostato (20) para mantener constante la temperatura de los recipientes de procesado de muestra y de los líquidos contenidos en su interior, un agitador (sacudidor) (30) para agitar los recipientes de procesado de muestra y una unidad (40) para la deposición magnética de las partículas magnéticas sobre la pared interior de cada recipiente de procesado de muestra. De modo sorprendente, estas etapas de proceso y estas unidades pueden realizarse en un solo bloque de reacción. Se entiende pues como bloque de reacción un dispositivo que contiene las unidades 10, 20, 30 y 40 ensambladas entre sí de forma total o parcial. Según la invención se puede ejecutar de forma simple y en un solo aparato un proceso que hasta el presente requería la ejecución de un gran número de operaciones manuales. Se ha constatado en particular que los bloques de reacción de la presente invención son muy eficaces. Los procesos de liberación y de aislamiento de ácidos nucleicos pueden realizarse en ellos con mayor rapidez que hasta ahora. Por otro lado es posible también realizar las etapas mencionadas sin sacar el ácido nucleico del recipiente. Si se compara con el estado de la técnica anterior, esto supone un progreso considerable en cuanto a la dedicación de tiempo y también a la evitación de contaminaciones. En efecto, hasta ahora se realizaban los enfriamientos de las suspensiones sacando manualmente el recipiente de procesado de muestra del aparato y sumergiendo dicho recipiente en un baño de enfriamiento. Tal proceder no parece satisfactorio con vistas al diagnóstico rutinario del futuro.
En la figura 3 se representa un procedimiento de la invención para aislar ácidos nucleicos. En la descripción de un procedimiento que se efectúa en el ejemplo siguiente se toma como referencia esta figura. El recipiente de la muestra se halla en un alojamiento de la unidad 10, con preferencia está previsto que el recipiente de muestra tenga un nervio o talón (A20) que encaja con la forma interior del alojamiento (p.ej. una forma exterior cónica). Los recipientes mostrados en su sección longitudinal pueden fabricarse fácilmente con polipropileno por la técnica de moldeo por inyección.
La principal ventaja de la invención consiste en que el sistema puede adaptarse en gran medida al uso de diferentes tamaños de partículas magnéticas. Es relativamente flexible y puede utilizarse en los métodos más diversos.
Con el ejemplo siguiente se ilustra con mayor detalle el objeto de la invención.
Ejemplo 1
El procedimiento de la invención es un procedimiento, cuyos fundamentos son conocidos por el experto en diagnóstico basado en ácidos nucleicos. En cuanto a los detalles experimentales que no se mencionen explícitamente a continuación se remite al contenido completo de la obra Molecular Cloning, coordinador J. Sambrook y col., editorial CSH 1989.
En una forma especial de ejecución del procedimiento de la invención se efectúan las siguientes operaciones (ver figura 3) para el procesado de soluciones de muestra que contengan ácidos nucleicos. En una primera etapa (I) se incuba el líquido de muestra que contiene células en un recipiente de muestras (A) con un material, sobre el que se fijan las células de las que tienen que obtener los ácidos nucleicos. Para ello, este material puede estar provisto de propiedades específicas de unión para la superficie de las células, p.ej. por inmovilización de anticuerpos sobre los antígenos de superficie o ser un material absorbente (A16, no mostrado), pero puede preverse también un material con propiedades filtrantes (A15, no mostrado) que retiene las células cuando pasa a través de él el líquido que las contiene, p.ej. cuando se saca del recipiente de la muestra. El experto ya conoce las condiciones para inmovilizar células sobre una superficie, ver p.ej. Methods in Enzymology, vol. 171, Biomembranes / Part R Transport Theory: Cell and Model Membranes, coordinadores Sidney Fleischer, Becca Fleischer, departamento de Biología Molecular, Universidad Vanderbilt, Nashville, Tennessee, páginas 444 y sig. o 581 y sig.
Durante la incubación, el recipiente de la muestra se mantiene con preferencia cerrado con una tapa (B) para asegurar que se evitará cualquier contaminación activa o pasiva.
En otra etapa se saca el líquido del recipiente de la muestra, mientras que las células, cuyos ácidos nucleicos se pretende aislar, permanecen en el recipiente de muestra en estado fijado sobre el material. El material que fija las células es un material de tipo partícula, por lo tanto para retenerlo se puede recurrir al uso de un material magnético (fabricante: Dynal, Oslo, Noruega) y aproximar un imán desde fuera hasta el recipiente de la muestra. El líquido puede sacarse por succión a través del orificio de vaciado (A11) aplicando un ligero vacío. Para ello, el orificio de vaciado deberá estar provisto de una válvula que se abra cuando aplique un vacío desde el exterior.
Para separar después de las células los componentes de las muestras eventualmente molestos se prevén una o varias operaciones de lavado. Para ello se introduce un líquido de lavado en el recipiente de la muestra, en el que deberán disolverse las eventuales impurezas, pero que fundamentalmente no debe romper la unión de las células con la superficie del material que las fija. El experto en la materia ya conoce estas soluciones de lavado, p.ej. por los métodos de separación de células o por las instrucciones adjuntas a los kits de lavado de ácidos nucleicos. Dependerán básicamente del tipo de fijación existente entre las células y el material.
Después de haber succionado la última solución de lavado del recipiente de la muestra (A) se ponen en contacto las células lavadas y concentradas con un líquido idóneo de lisis para liberar los ácidos nucleicos de las células. Los reactivos de esta solución de lisis dependerán en gran manera del tipo de las células inmovilizadas (Rolfs y col., PCR, Clinical Diagnostics and Research, editorial Springer, 1992, pp. 84 y sig.). En el supuesto de que las células sean bacterias, la solución de lisis contendrá con preferencia proteinasa K para descomponer la pared celular. Si se desea, la lisis se favorece por calentamiento o enfriamiento y mezclado de la mezcla reaccionante por agitación (por sacudidas) del recipiente de la muestra. Al finalizar esta disgregación, los ácidos nucleicos a aislar se hallan libres en la solución.
También durante la lisis, el recipiente de reacción se mantiene con preferencia cerrado con una tapa para evitar las contaminaciones procedentes del entorno. Una vez finalizada la lisis se retira la tapa, con preferencia mediante un dispositivo mecánico adecuado. Seguidamente se introduce un objeto moldeado (C) en el recipiente de muestra, que contiene una mezcla de productos de disgregación de las células y los ácidos nucleicos, el contorno exterior de dicho objeto moldeado (C12) se ajusta el contorno interior (A17) del recipiente de la muestra. Este objeto moldeado es hueco y está cerrado en el sentido del recipiente de muestra y de la mezcla reaccionante con un filtro (C11) (matriz porosa). La introducción del objeto moldeado (C) se realiza con preferencia mediante un elemento constructivo (B11) de la tapa (B), que contiene además un elemento constructivo (B10) idóneo para cerrar el recipiente de la muestra. En este caso, el objeto moldeado se sujeta con la tapa (II) y se introduce en el recipiente de la muestra al mismo tiempo que el cierre de dicho recipiente. Durante esta operación, la mezcla reaccionante penetra (IV) además a través del filtro (C11) y alcanza la cavidad interior (C14) del objeto moldeado. Si se prevé un filtro se puede evitar por un lado que las partículas grandes penetren en dicha cavidad y por otro lado, gracias a las propiedades de fijación de ácidos nucleicos, se logra una fijación de los ácidos nucleicos sobre el filtro durante el mismo paso de la mezcla reaccionante a través del filtro. En este caso se elige un material de filtro que contenga fibras de vidrio.
En la etapa siguiente, por el orificio de vaciado (A11) del recipiente de la muestra se saca por succión la mezcla restante de reacción de lisis del dispositivo constituido por A y C. De este modo se elimina también la solución que ha penetrado en la cavidad interior (C14) del cuerpo hueco, de forma que a ser posible el filtro ya no contenga resto alguno de líquido. A continuación se quita la etapa (B) empleada hasta el momento, quedando inicialmente el objeto moldeado (C) dentro del recipiente de la muestra (encajado) (V).
Al mismo tiempo o después se prepara un recipiente de elución (D) para recibir el objeto moldeado (C) (ya sea dentro del sistema de la invención, ya sea fuera del mismo). Se quita la tapa eventualmente colocada sobre este recipiente (VI). Antes del traslado del objeto moldeado (C) al recipiente de elución (D) se deposita previamente con preferencia la solución de elución en el recipiente, p.ej. por pipeteo. La composición de la solución de elución dependerá del tipo de fijación de los ácidos nucleicos sobre el material del filtro (C). Contiene reactivos, cuya acción provoca la elución, es decir el despegue de los ácidos nucleicos inmovilizados del material. La tapa (B), que inicialmente cerraba el recipiente de elución, se coloca (VII) sobre el recipiente de la muestra (A) con el objeto moldeado (C).
Para retirar el objeto moldeado (C) del recipiente de la muestra (A) se saca (VIII) dicho objeto (C) con la tapa (B). La combinación de tapa y objeto moldeado se introduce seguidamente en el recipiente de elución (IX). El objeto moldeado (C) contiene con preferencia medios (C13), no mostrados) para fijar el objeto moldeado al recipiente de elución (D), que hacen que el objeto moldeado solamente puede sacarse del recipiente (D) por destrucción del objeto moldeado (C) o del recipiente (D) o por aplicación de una fuerza mayor que la necesaria para soltar la tapa (B) del objeto moldeado (D). No se pretende sacar el objeto moldeado del recipiente de elución.
Durante la introducción del objeto moldeado (C) en el recipiente de elución, la solución de elución depositada previamente penetra en el filtro (C11) y separa el ácido nucleico inmovilizado de la matriz fija. En función de la solución de elución depositada previamente, el filtro quedará simplemente impregnado de dicha solución o bien la solución de elución junto con los ácidos nucleicos soltados otra vez penetrará en la cavidad interior (C14). Para que la elución de los ácidos nucleicos sea lo más completa posible, el contorno interior del recipiente de elución deberá adaptarse del modo más estrecho posible al contorno exterior del objeto moldeado.
En la etapa siguiente se quita (X) la tapa (B) de la combinación de objeto moldeado (C) y recipiente de elución (D). Se utiliza la tapa para alojar (XI) un cuño (E) y para introducirlo (XII) en la cavidad interior del objeto moldeado (C). Esta tapa engrana desde dentro en el cuño (E). Se presiona el cuño contra el filtro (C11) con una fuerza tal que el líquido del filtro penetre en la cámara interior del cuño por el orificio existente en la superficie de apriete. Este proceso es especialmente eficaz cuando la superficie de apriete se adapta en su contorno exterior, por lo menos en la zona en la que tiene que efectuarse la compresión y vaciado (acción de exprimir), al contorno interior del objeto moldeado (C). El cuño (E) puede fijarse con preferencia en esta posición, p.ej. por enclavamiento. El dispositivo descrito está relativamente bien cerrado con la tapa, por lo tanto la solución que contiene ácidos nucleicos puede guardarse dentro de este dispositivo.
Para sacar una cantidad deseada de solución de ácidos nucleicos puede quitarse la tapa (XIII) y a través de un orificio de la cámara interior del cuño puede retirarse la cantidad deseada, p.ej. mediante una operación de pipeteo (XIV). A continuación se vuelve a colocar la tapa.
Seguidamente se presenta el diagrama de flujo adecuado para el procedimiento descrito.
Aparato Usuario
automático (programado) manual
- mantener temperatura constante - pipetear
- vaciar por succión - colocar tubos, un elemento intercalado de
- separar (fase fija magnética) fibra de vidrio, un recipiente secundario
- mezclar / resuspender (back-up) sobre el aparato
Las operaciones manuales se representan impresas en negrita. Las operaciones no manuales o los procesos parciales se ponen en marcha mediante el accionamiento por ejemplo de una tecla.
A continuación, el recipiente de la muestra A se denomina tubo, el recipiente de elución D se denomina recipiente secundario (back-up), el objeto moldeado C se denomina elemento intercalado de fibra de vidrio y el cuño E se denomina cuño de exprimir.
(Tabla pasa a la página siguiente)
1
2
3
Si se desea se pueden enjuagar los tubos flexibles de succión y los escotes con un líquido de lavado y de este modo quedan limpios (antes o después de la ejecución del procedimiento y en ausencia de recipientes de muestra).
Otra forma de ejecución del sistema de liberación y de aislamiento de ácidos nucleicos se representa en las figuras de 4 a 8.
La figura 4 contiene una representación en perspectiva del sistema.
La figura 5 contiene un esquema de los elementos interiores que componen el sistema.
La figura 6 representa la unidad de alojamiento de los recipientes de procesado de muestra.
La figura 7 representa una sección de una posición de alojamiento de un recipiente de muestra.
La figura 8 representa una corredera con imanes.
El sistema representado en la figura 4 contiene 4 unidades de alojamiento (100) para recipientes de muestras. Las unidades de alojamiento (100) están montadas sobre un soporte (101). Moviendo el soporte (101) se pueden mover y agitar (por sacudidas) a la vez las 4 unidades de alojamiento (100). En la vista detallada de las piezas internas (figura 5) se puede ver con detalle cómo se efectúa el movimiento del soporte (101). En sus 2 extremos, el soporte posee en cada caso un escote (vaciado) circular (102), en el que se introduce un perno o pivote (103). El perno (103) está dispuesto de forma excéntrica sobre el eje de un motor (104), de modo que cuando gira el eje del motor se produce un desplazamiento del soporte en un plano. En la vista detallada de las piezas internas (figura 5) se advierte además que la unidad de alojamiento (100) está provista de aletas de refrigeración (105). Con los ventiladores (106) dispuestos en el fondo del sistema se impulsa una corriente de aire que pasa entre las aletas de refrigeración.
En la figura 6 se representa con detalle la unidad de alojamiento (100). La unidad de alojamiento posee 6 posiciones de alojamiento distintas (107) para albergar los recipientes de procesado de muestra. Las posiciones de alojamiento (107) están unidades mediante un bastidor (108) térmicamente conductor al elemento Peltier (109) y este con las aletas de refrigeración (105). En el bastidor (108) se halla un calentador de resistencias para calentar las posiciones de alojamiento y los detectores de temperatura. El bastidor (108) está montado sobre un elemento Peltier (109) que mantiene un intercambio térmico con las aletas de refrigeración (105). El calentamiento de los recipientes de procesado de muestra se efectúa mediante los elementos calefactores alojados en el bastidor. Para enfriar los recipientes de procesado de muestra se enfrían con el elemento Peltier (109) las posiciones de alojamiento (107). El calor cedido por el elemento Peltier a la cara opuesta se evacua mediante las aletas de refrigeración (105).
En la figura 7 se representa la sección de una posición individual de alojamiento (107). La posición de alojamiento posee un orificio taladrado en el que se halla un recipiente de muestra (110). El recipiente de muestra y el orificio taladrado guardan entre sí una relación estrecha, de modo que sus paredes se tocan, con el fin de facilitar una transmisión térmica eficaz. El recipiente de la muestra presenta con preferencia una ligera conicidad, es decir, se estrecha en su parte inferior, ya que de este modo, en caso de que la posición de alojamiento posea la conicidad correspondiente, se puede conseguir un buen contacto entre ambas paredes. La conicidad será con preferencia de 0,5 a 1º. En la zona inferior de la posición de alojamiento se halla un elemento intercalado que, en su cara inferior, presenta un escote o vaciado (112), en el que puede atornillarse la oliva de un tubo flexible. La pieza intercalada (112) posee en su cara superior un vaciado o escote, en el que se inserta la parte estrechada del recipiente de muestra (110). Para lograr un cierre estanco entre este escote y la parte estrechada del recipiente de muestra se coloca en esta parte un anillo de junta (113) en forma de junta tórica, que abraza la parte estrechada del recipiente de muestra. Para sacar líquidos del recipiente de muestra (110) se conecta dicho recipiente de muestra (110) al vacío mediante un tubo flexible que está unido al escote o vaciado (112).
El uso del sistema según la invención prevé que pueda aplicarse un campo magnético a los recipientes de muestra (110) mientras están en las posiciones de alojamiento (107) con el fin de retener las partículas magnéticas. A tal fin se aproxima el conjunto de imanes dispuesto del modo representado en la figura 8 a las posiciones de alojamiento (107).
La figura 8 muestra una disposición móvil de 4x6 imanes (114), equivalente al número de 4 unidades de alojamiento (110), cada una de ellas con 6 posiciones de alojamiento (107). La disposición mostrada en la figura 8 está provista de un carril (115), sobre el que están montadas las 4 unidades, cada una de ellas con 6 imanes. El carril (115) está montado sobre un soporte (116) dotado además de un motor (117). Sobre el eje del motor está montada una rueda dentada (no representado) que engrana con una cremallera (118). El soporte (116) puede desplazarse sobre cilindros (120) mediante rodamientos de bolas lineales (119). En la posición, en la que tiene lugar una separación de las partículas magnéticas, los imanes (114) están tocando con sus superficies frontales directamente a las caras achatadas (121) de las posiciones de alojamiento (107). Para alejar los imanes de las posiciones de alojamiento se activa el motor (117) y el soporte junto con el carril (115) se desplaza linealmente.
Lista de símbolos de referencia A Recipiente de muestra
10 orificio de entrada
11 orificio de vaciado
17 forma interior
19 forma exterior
20 nervio periférico
22 elemento para fijación de otros elementos funcionales
B Tapa
10 elemento para cerrar el recipiente de muestra A
11 elemento para asir el objeto moldeado C
C Objeto moldeado
11 matriz porosa
12 contorno exterior
13 medio para fijar el objeto moldeado en el recipiente de elución
14 cuerpo hueco
15 medio para fijar una tapa
16 contorno interior
17 medio para fijar un cuño E, periférico
18 nervio periférico, que puede romperse
19 borde
D Recipiente de elución
12 ranura de enclavamiento
E Cuño
10 superficie de apriete
11 contorno exterior
12 cámara interior
13 orificios en la superficie de apriete
14 abertura de extracción
15 junta
16 anillo de enclavamiento
17 rebajo (entalladura)
Aparato
1 bastidor
10 unidad de alojamiento de recipientes de muestra
11 amortiguador de vibraciones
12 depresión/cavidad
13 zócalo
14 entrada para calentar y enfriar A
20 unidad de termostato para mantener constante la temperatura de los recipientes de muestra
21 tubería del líquido de calentamiento/enfriamiento
30 agitador de los recipientes de muestra
40 separador para la separación magnética de las partículas magnéticas
41 eje para girar los segmentos magnéticos
42 segmentos magnéticos
50 bomba de vacío/unidad de bomba
51 tubo flexible (de vacío)
100 unidad de alojamiento de recipientes de muestra
101 soporte
102 escote circular
103 perno
104 motor
105 aletas de refrigeración
106 ventilador
107 posición de alojamiento
108 bastidor
109 elemento Peltier
110 recipiente de muestra
111 elemento intercalado
112 escote
113 anillo de junta
114 imán
115 carril
116 soporte
117 motor
118 cremallera
119 rodamiento de bolas lineal
120 cilindro

Claims (15)

1. Procedimiento para liberar y aislar o bien para liberar y detectar ácidos nucleicos de compartimentos biológicos de una muestra, que consta de las etapas siguientes:
- incubar la muestra en un recipiente de procesado de muestra junto con partículas magnéticas, que pueden fijar los compartimentos biológicos, agitando el recipiente de procesado de la muestra,
- posicionar un imán en la proximidad del recipiente de modo que las partículas magnéticas se retengan pegadas a la pared interior del recipiente,
- sacar el líquido resultante del recipiente,
- resuspender las partículas magnéticas en un segundo líquido mediante
a) el alejamiento del imán de la proximidad del recipiente, de modo que las partículas magnéticas ya no se mantengan pegadas a la pared de recipiente por acción del imán y
b) la agitación simultánea del recipiente,
- disgregar los compartimentos biológicos para obtener una mezcla de disgregación,
- calentar la mezcla disgregada,
- enfriar la mezcla en condiciones que permitan el aislamiento o la hibridación de los ácidos nucleicos que se pretende aislar o detectar,
caracterizado porque la retención de las partículas magnéticas sobre la pared interior del recipiente se realiza antes de la disgregación de los compartimentos biológicos y porque el líquido se saca del recipiente por un orificio inferior de vaciado.
2. Procedimiento según la reivindicación 1, caracterizado porque durante las etapas citadas no se sacan los ácidos nucleicos del recipiente.
3. Procedimiento según la reivindicación 1, caracterizado porque las etapas citadas se realizan en un único bloque de reacción.
4. Procedimiento según la reivindicación 1, caracterizado porque las partículas magnéticas tienen un tamaño mayor que 2,8 \mum.
5. Sistema para la liberación y el aislamiento de ácidos nucleicos de muestras biológicas con partículas magnéticas que consta de las unidades siguientes:
a) una unidad de alojamiento (10, 100) para uno o varios recipientes de procesado de la muestra (A),
b) una unidad de termostato (20) para mantener constante la temperatura de los recipientes de procesado de la muestra (A) y de los líquidos existentes en su interior,
c) un agitador (30) para agitar los recipientes de procesado de la muestra (A),
d) un separador (40) para la separación magnética de las partículas magnéticas contra una pared de cada uno de los recipientes de procesado de la muestra (A),
en el que las unidades mencionadas en los apartados a), b), c) y d) se integran en un único bloque de reacción en un ensamblaje ajustado recíprocamente y
uno o varios recipientes de procesado de muestra (A) están provistos de un orificio inferior de vaciado (A11), que está unido con un dispositivo de succión en la disposición de los recipientes de procesado de muestra dentro de la unidad de alojamiento.
6. Sistema según la reivindicación 5, caracterizado porque el dispositivo de succión consta de una unidad de bomba (50) para sacar el líquido del recipiente de procesado de muestra (A).
7. Sistema según la reivindicación 5 ó 6, caracterizado porque el separador (40) y la unidad de alojamiento (10) están montados de modo que el uno puede moverse con respecto al otro.
8. Sistema según la reivindicación 5, caracterizado porque la unidad de alojamiento (10, 100) puede moverse en un plano accionada por una excéntrica, dicho plano es perpendicular al eje o a los recipientes de procesado de muestra.
9. Sistema según la reivindicación 5, caracterizado porque la unidad de termostato contiene un calentador de resistencias y un elemento Peltier.
10. Sistema según la reivindicación 5, en el que los recipientes de procesado de muestra y las posiciones de alojamiento poseen una conicidad ajustada recíprocamente.
11. Sistema según la reivindicación 5, caracterizado porque mediante el dispositivo de succión se trasvasa el contenido del recipiente de procesado de muestras al depósito de desecho.
12. Sistema según la reivindicación 5, caracterizado porque una junta evita la succión de aire entre el recipiente de procesado de muestra y la entrada (inlet) (14).
13. Sistema según la reivindicación 6, caracterizado porque el dispositivo de succión consta fundamentalmente de una bomba de émbolo.
14. Sistema según la reivindicación 13, caracterizado porque el sistema posee varios recipientes de procesado de muestra, que se someten a una succión paralela o secuencial.
15. Sistema según la reivindicación 6, caracterizado porque el dispositivo de succión consta fundamentalmente por lo menos de una bomba peristáltica.
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Families Citing this family (89)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE19734135A1 (de) * 1997-08-07 1999-02-11 Boehringer Mannheim Gmbh System zum Zurverfügungstellen biologischer Materialien
WO1999013976A1 (en) * 1997-09-17 1999-03-25 Gentra Systems, Inc. Apparatuses and methods for isolating nucleic acid
DE69839294T2 (de) 1997-09-29 2009-04-09 F. Hoffmann-La Roche Ag Gerät zur Abscheidung magnetischer Teilchen
EP0905520B1 (en) * 1997-09-29 2008-03-26 F. Hoffmann-La Roche Ag Apparatus for separating magnetic particles
US7078224B1 (en) 1999-05-14 2006-07-18 Promega Corporation Cell concentration and lysate clearance using paramagnetic particles
DK1075328T3 (da) 1998-05-01 2006-03-27 Gen Probe Inc Automatiseret diagnostisk analysefremgangsmåde
US8337753B2 (en) 1998-05-01 2012-12-25 Gen-Probe Incorporated Temperature-controlled incubator having a receptacle mixing mechanism
AU2012232988B2 (en) * 1998-05-01 2014-09-25 Gen-Probe Incorporated System and method for incubating the contents of a reaction receptacle
EP1179058B1 (en) * 1999-05-14 2011-08-24 Promega Corporation Cell concentration and lysate clearance using paramagnetic particles
DK1069131T3 (da) 1999-07-15 2006-06-26 Qiagen Gmbh Fremgangsmåde til at skille partikelformige substrater fra en oplösning med et minimalt tab af partikler
WO2001020042A2 (en) * 1999-09-15 2001-03-22 Miraibio Inc. Method for processing biological samples
US6672458B2 (en) * 2000-05-19 2004-01-06 Becton, Dickinson And Company System and method for manipulating magnetically responsive particles fluid samples to collect DNA or RNA from a sample
CA2426246A1 (en) * 2000-10-18 2002-04-25 Clarity Technologies Incorporated Method and device for diluting a fluid and detecting analytes within a diluted fluid
US7829025B2 (en) 2001-03-28 2010-11-09 Venture Lending & Leasing Iv, Inc. Systems and methods for thermal actuation of microfluidic devices
US8895311B1 (en) 2001-03-28 2014-11-25 Handylab, Inc. Methods and systems for control of general purpose microfluidic devices
US20040029166A1 (en) * 2002-07-29 2004-02-12 Jsr Corporation Nucleic acid-separating method and nucleic acid-extracting reagent
DE10301240B4 (de) * 2003-01-15 2005-09-01 Hettlab Ag Reaktionskammersystem zur Bearbeitung von Proben
US8409528B2 (en) 2003-06-19 2013-04-02 Abbott Laboratories Apparatus and method for handling fluids for analysis
EP1681571B8 (en) 2003-06-19 2010-06-23 Abbott Laboratories Apparatus and method for handling fluids for analysis
EP2402089A1 (en) 2003-07-31 2012-01-04 Handylab, Inc. Processing particle-containing samples
US8852862B2 (en) 2004-05-03 2014-10-07 Handylab, Inc. Method for processing polynucleotide-containing samples
DE102004027161B3 (de) * 2004-06-03 2005-08-25 Siemens Ag Ventileinrichtung
US8211386B2 (en) 2004-06-08 2012-07-03 Biokit, S.A. Tapered cuvette and method of collecting magnetic particles
US20050287222A1 (en) * 2004-06-24 2005-12-29 Henry Aoki Method for producing water containing extracted ingredients from plant, animal, or mineral matter
US7147108B2 (en) * 2004-10-29 2006-12-12 Hewlett-Packard Development Company, Lp. Method and apparatus for the separation and collection of particles
EP1871527B1 (en) * 2004-12-23 2017-09-27 Abbott Point of Care Inc. Molecular diagnostics system
EP2322940B1 (en) 2005-03-10 2014-10-29 Gen-Probe Incorporated Systems amd methods to perform assays for detecting or quantifing analytes within samples
WO2007005613A2 (en) * 2005-07-01 2007-01-11 Promega Corporation Network of buoyant particles for biomolecule purification
JP4862121B2 (ja) * 2005-11-21 2012-01-25 多摩川精機株式会社 蛋白質スクリーニング装置
FI20051248L (fi) * 2005-12-02 2007-06-03 Bio Nobile Oy Biologisten komponenttien rikastusyksikkö ja rikastusmenetelmä
WO2007070381A2 (en) 2005-12-09 2007-06-21 Promega Corporation Nucleic acid purification with a binding matrix
US10900066B2 (en) 2006-03-24 2021-01-26 Handylab, Inc. Microfluidic system for amplifying and detecting polynucleotides in parallel
US7998708B2 (en) * 2006-03-24 2011-08-16 Handylab, Inc. Microfluidic system for amplifying and detecting polynucleotides in parallel
US8883490B2 (en) 2006-03-24 2014-11-11 Handylab, Inc. Fluorescence detector for microfluidic diagnostic system
DK2001990T3 (en) 2006-03-24 2016-10-03 Handylab Inc Integrated microfluidic sample processing system and method for its use
US11806718B2 (en) 2006-03-24 2023-11-07 Handylab, Inc. Fluorescence detector for microfluidic diagnostic system
JP5382347B2 (ja) * 2006-10-11 2014-01-08 フルイディウム コーポレーション 使い捨て可能なマイクロ精製カード、方法、およびそのシステム
US8709787B2 (en) 2006-11-14 2014-04-29 Handylab, Inc. Microfluidic cartridge and method of using same
US7985375B2 (en) 2007-04-06 2011-07-26 Qiagen Gaithersburg, Inc. Sample preparation system and method for processing clinical specimens
US8703492B2 (en) 2007-04-06 2014-04-22 Qiagen Gaithersburg, Inc. Open platform hybrid manual-automated sample processing system
US8287820B2 (en) 2007-07-13 2012-10-16 Handylab, Inc. Automated pipetting apparatus having a combined liquid pump and pipette head system
EP2171460B1 (en) 2007-07-13 2017-08-30 Handylab, Inc. Polynucleotide capture materials, and methods of using same
US8105783B2 (en) 2007-07-13 2012-01-31 Handylab, Inc. Microfluidic cartridge
AU2013205255C1 (en) * 2007-07-13 2016-02-18 Handylab, Inc. Integrated apparatus for performing nucleic acid extraction and diagnostic testing on multiple biological samples
US8182763B2 (en) 2007-07-13 2012-05-22 Handylab, Inc. Rack for sample tubes and reagent holders
US9186677B2 (en) 2007-07-13 2015-11-17 Handylab, Inc. Integrated apparatus for performing nucleic acid extraction and diagnostic testing on multiple biological samples
US9618139B2 (en) 2007-07-13 2017-04-11 Handylab, Inc. Integrated heater and magnetic separator
JP5011012B2 (ja) * 2007-07-18 2012-08-29 株式会社日立ハイテクノロジーズ 核酸抽出装置
USD787087S1 (en) 2008-07-14 2017-05-16 Handylab, Inc. Housing
US8222397B2 (en) 2009-08-28 2012-07-17 Promega Corporation Methods of optimal purification of nucleic acids and kit for use in performing such methods
US8039613B2 (en) 2009-08-28 2011-10-18 Promega Corporation Methods of purifying a nucleic acid and formulation and kit for use in performing such methods
KR101718344B1 (ko) * 2009-10-16 2017-03-21 프로메가 코포레이션 가열, 쉐이킹, 및 자화 장치와 그의 작동 방법
EP2496941B1 (en) 2009-11-04 2016-07-13 Thomas M. Buchanan Methods and devices to enhance sensitivity and evaluate sample adequacy and reagent reactivity in rapid lateral flow immunoassays
US9953141B2 (en) 2009-11-18 2018-04-24 Becton, Dickinson And Company Laboratory central control unit method and system
US8728410B2 (en) * 2010-02-26 2014-05-20 Wisconsin Alumni Research Foundation Device for and method of extracting a fraction from a biological sample
US8603416B2 (en) * 2010-02-26 2013-12-10 Wisconsin Alumni Research Foundation Device for and method of extracting a fraction from a biological sample
EP2752668A3 (en) 2010-07-23 2014-10-15 Beckman Coulter, Inc. System Or Method Of Including Analytical Units
US9046507B2 (en) 2010-07-29 2015-06-02 Gen-Probe Incorporated Method, system and apparatus for incorporating capacitive proximity sensing in an automated fluid transfer procedure
US8993243B2 (en) 2011-01-10 2015-03-31 Wisconsin Alumni Research Foundation Method for isolating weakly interacting molecules from a fluidic sample
EP2678664B1 (en) 2011-02-24 2019-08-07 Gen-Probe Incorporated Systems and methods for distinguishing optical signals of different modulation frequencies in an optical signal detector
CA3082652A1 (en) 2011-04-15 2012-10-18 Becton, Dickinson And Company Scanning real-time microfluidic thermocycler and methods for synchronized thermocycling and scanning optical detection
USD692162S1 (en) 2011-09-30 2013-10-22 Becton, Dickinson And Company Single piece reagent holder
CN103959070B (zh) 2011-09-30 2017-05-10 贝克顿·迪金森公司 组合试剂条
CN104040238B (zh) 2011-11-04 2017-06-27 汉迪拉布公司 多核苷酸样品制备装置
WO2013070756A2 (en) 2011-11-07 2013-05-16 Beckman Coulter, Inc. System and method for processing samples
US9446418B2 (en) 2011-11-07 2016-09-20 Beckman Coulter, Inc. Robotic arm
US9046506B2 (en) 2011-11-07 2015-06-02 Beckman Coulter, Inc. Specimen container detection
WO2013070748A1 (en) 2011-11-07 2013-05-16 Beckman Coulter, Inc. Magnetic damping for specimen transport system
KR20140092375A (ko) 2011-11-07 2014-07-23 베크만 컬터, 인코포레이티드 원심분리기 시스템 및 작업 흐름
JP6190380B2 (ja) 2011-11-07 2017-08-30 ベックマン コールター, インコーポレイテッド 等分機システムおよびワークフロー
US20130158240A1 (en) 2011-12-15 2013-06-20 David Beebe Method Of Extracting A Fraction From A Biological Sample
CN107881219B (zh) 2012-02-03 2021-09-10 贝克顿·迪金森公司 用于分子诊断测试分配和测试之间兼容性确定的外部文件
US10564077B2 (en) 2012-09-05 2020-02-18 Wisconsin Alumni Research Foundation Device for and method of isolating and analyzing a fraction in a biological sample
US9766166B2 (en) 2013-01-09 2017-09-19 Wisconsin Alumni Research Foundation Device and method incorporating a slideable lid for extracting a targeted fraction from a sample
US8728411B2 (en) 2012-09-05 2014-05-20 Wisconsin Alumni Research Foundation Device for and method of isolating a fraction in a biological sample
US11029310B2 (en) 2013-03-14 2021-06-08 Wisconsin Alumni Research Foundation Device and method for extracting a targeted fraction from a sample
WO2014144627A1 (en) 2013-03-15 2014-09-18 Abbott Laboratories Automated diagnostic analyzers having rear accessible track systems and related methods
JP6165961B2 (ja) 2013-03-15 2017-07-19 アボット・ラボラトリーズAbbott Laboratories 前処理カルーセルを有する診断分析装置および関連方法
JP6431522B2 (ja) 2013-03-15 2018-11-28 アボツト・モレキユラー・インコーポレイテツド 核酸の精製のための1工程法
US9400285B2 (en) 2013-03-15 2016-07-26 Abbot Laboratories Automated diagnostic analyzers having vertically arranged carousels and related methods
US10040062B2 (en) 2014-01-14 2018-08-07 Wisconsin Alumni Research Foundation Device and method for transferring a target between locations
CN104117429B (zh) * 2014-07-18 2016-08-17 东南大学 一种加热振荡磁分离装置
DE102014216016A1 (de) * 2014-08-13 2016-02-18 Axagarius Gmbh & Co. Kg Vorrichtung zur Aufreinigung von Nukleinsäuren
CN104531526B (zh) * 2015-01-14 2016-08-24 湖南圣维基因科技有限公司 一种磁珠法核酸提取装置
EP3178556A1 (de) * 2015-12-10 2017-06-14 Holger Behnk Küvette und messverfahren
US10427162B2 (en) 2016-12-21 2019-10-01 Quandx Inc. Systems and methods for molecular diagnostics
CN110208063A (zh) * 2019-06-27 2019-09-06 中国农业科学院农业质量标准与检测技术研究所 一种在线自动化磁性纳米材料震荡-解吸装置
CN111205965A (zh) * 2020-03-25 2020-05-29 广州高盛生物科技股份有限公司 一种微量dna提取工作站及dna提取方法
CN112725172B (zh) * 2021-02-06 2023-08-15 浙江省人民医院 一种检测细菌大环内酯类耐药基因的试剂盒

Family Cites Families (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ZA877772B (en) * 1986-10-23 1988-04-20 Amoco Corporation Target and background capture methods and apparatus for affinity assays
EP0339980B1 (en) * 1988-04-26 1994-07-20 Nippon Telegraph And Telephone Corporation Magnetic micro-particles, method and apparatus for collecting specimens for use in labelling immune reactions, and method and device for preparing specimens
US5536475A (en) * 1988-10-11 1996-07-16 Baxter International Inc. Apparatus for magnetic cell separation
NL8900725A (nl) * 1989-03-23 1990-10-16 Az Univ Amsterdam Werkwijze en combinatie van middelen voor het isoleren van nucleinezuur.
AU7575291A (en) * 1990-04-06 1991-10-30 Syngene, Inc. Process and composition for performing dna assays
WO1992005443A1 (en) * 1990-09-15 1992-04-02 Medical Research Council Reagent separation
AU8951191A (en) * 1990-10-29 1992-05-26 Dekalb Plant Genetics Isolation of biological materials using magnetic particles
US5466574A (en) * 1991-03-25 1995-11-14 Immunivest Corporation Apparatus and methods for magnetic separation featuring external magnetic means
FR2679660B1 (fr) * 1991-07-22 1993-11-12 Pasteur Diagnostics Procede et dispositif magnetique d'analyse immunologique sur phase solide.
GB9212164D0 (en) * 1992-06-09 1992-07-22 Medical Res Council Preparation of nucleic acids
ATE212723T1 (de) * 1993-09-17 2002-02-15 Hoffmann La Roche Analysengerät mit einer vorrichtung zum abtrennen magnetischer mikropartikel
DE4420732A1 (de) * 1994-06-15 1995-12-21 Boehringer Mannheim Gmbh Vorrichtung zur Behandlung von Nukleinsäuren aus einer Probe
JP3115501B2 (ja) * 1994-06-15 2000-12-11 プレシジョン・システム・サイエンス株式会社 分注機を利用した磁性体の脱着制御方法及びこの方法によって処理される各種装置

Also Published As

Publication number Publication date
DE19512368A1 (de) 1996-10-02
JP3773264B2 (ja) 2006-05-10
JPH11503315A (ja) 1999-03-26
EP0819255B1 (de) 2003-10-08
DE59610764D1 (de) 2003-11-13
ATE251754T1 (de) 2003-10-15
WO1996031781A1 (de) 1996-10-10
EP0819255A1 (de) 1998-01-21
US6117398A (en) 2000-09-12

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