ES2199226T3 - Polimeros biocompatibles que contienen mitades diagnosticas o terapeuticas. - Google Patents
Polimeros biocompatibles que contienen mitades diagnosticas o terapeuticas.Info
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Abstract
SE PRESENTA UNA COMPOSICION MEDICA BIOCOMPATIBLE QUE INCLUYE UN PORTADOR POLIMERICO, UNA CADENA PROTECTORA UNIDA AL PORTADOR POLIMERICO Y UN GRUPO INFORMADOR UNIDO AL PORTADOR O AL PORTADOR Y A LA CADENA PROTECTORA. LA INVENCION TAMBIEN SE REFIERE A UNA COMPOSICION PARA TRATAR UNA ENFERMEDAD EN UN PACIENTE UTILIZANDO UNA TECNICA DE FORMACION DE IMAGENES QUE PUEDE DETECTAR EL GRUPO INFORMADOR PARA OBTENER UNA IMAGEN VISIBLE DE LA DISTRIBUCION DE LA COMPOSICION.
Description
Polímeros biocompatibles que contienen mitades
diagnósticas o terapéuticas.
La presente invención trata de una composición
médica biocompatible.
Ejemplos de nuestras composiciones descritas en
detalle más adelante pueden incluir agentes terapéuticos o
diagnósticos y tienen una vida media en sangre prolongada, baja
toxicidad y baja inmunogenicidad, y se pueden detectar mediante
técnicas de formación de imágenes médicas, por ejemplo, imágenes de
resonancia magnética para angiografía y como marcadores para la
entrega diana.
La detección precisa de anomalías en el cuerpo de
un paciente es un requisito esencial para el diagnóstico y el
tratamiento adecuado de la enfermedad. Los procedimientos de
visualización, como por ejemplo las imágenes de resonancia
magnética (MRI), son cada vez más importantes para lograr esa
detección precisa. MRI es no invasivo y no requiere la exposición
de los humanos a radiaciones potencialmente dañinas. En MRI, los
tejidos de diferente origen, como los tejidos normales y los
alterados, por ejemplo, los tejidos cancerígenos, se pueden
distinguir por diferencias en los tiempos de relajación T1, el
tiempo de relajación del retículo del espín o el tiempo de
relajación longitudinal o T2, el tiempo de relajación del espín o
el tiempo de relajación transversal. Debido a estas diferencias, se
produce la intensidad de la señal diferencial, que da lugar a
varios grados de contraste en las imágenes de MR. Cuanto mayor sea
la diferencia en T1 o T2, más pronunciado será el contraste. Sin
embargo, en muchos casos el tejido enfermo o alterado es
isointensivo, es decir, el tejido enfermo o alterado tiene la misma
intensidad de señal diferencial que el tejido normal y, por tanto,
no se distingue del tejido normal si no se usan agentes de
contraste especiales.
En esos casos, las técnicas de formación de
imágenes de MR empleadas para elucidar los defectos en la perfusión
de la sangre se basan en la diferenciación de la sangre que fluye
de los tejidos estacionarios que están alrededor, como por ejemplo,
angiografía por MR (MRA). Tres técnicas angiográficas
dimensionales, como por ejemplo las técnicas "tiempo de vuelo"
(TOF) y "contraste de fases" (PC), ofrecen imágenes detalladas
de vasos intracraneales. Sin embargo, la MRA tradicional, es decir,
la MRA de tiempo de vuelo, depende de la velocidad de flujo y de la
forma de flujo y, por lo tanto, la angiografía de alta calidad de
vasos periféricos con alta resistencia de flujo generalmente
resulta imposible debido a un efecto denominado saturación de los
vasos. Para solucionar este problema, se han usado los agentes de
contraste para reducir selectivamente los tiempos de relajación de
la sangre.
El ácido
dietilenotriamino-pentaacético de gadolinio (III)
(Gd-DTPA) dimeglumina es un agente de contraste muy
usado que es relativamente pequeño (MW 538) y se extravasa en el
primer paso a través de los capilares. Sin embargo, el uso de
Gd-DTPA para la angiografía por MR en todos los
organismos, excepto el cerebro, es limitado, debido a que la vida
media en sangre del Gd-DTPA es inferior a 20
minutos y la vida biológica en las personas del
Gd-DTPA es de, aproximadamente, 90 minutos. La
extravasación da como resultado una rápida reducción en la
proporción de señales de vaso/músculo, lo cual dificulta la
detección precisa de anomalías y de enfermedades. Además, la
dimeglumina de Gd-DTPA, que se usa en la práctica
clínica, es inmunogenética, lo cual no favorece que se administre de
forma repetida al mismo paciente.
Se producen problemas parecidos si se usa
ferrioxamina-B como agente de contraste. Además, la
ferrioxamina-B causa una precipitada bajada de la
presión sanguínea después de su administración intravenosa.
Los agentes de contraste de MRI que se han creado
usando macromoléculas naturales y sintéticas ofrecen la ventaja de
una elevada relaxividad molecular, debido a los múltiples grupos
quelantes acoplados a un espinazo de polímeros simple. Estos grupos
pueden quelar cationes paramagnéticos, como por ejemplo en
Gd-DTPA-poli-l-lisina,
o producir alta relaxividad debido a la presencia de óxido de
hierro, por ejemplo en coloides que contienen hierro. Sin embargo,
los coloides basados en óxido de hierro tienen su propio sitio
específico independiente de ligandos de acumulación en el cuerpo,
como por ejemplo, el hígado, el bazo y los tejidos linfoides.
Los grupos quelantes pueden unirse a diversos
polímeros naturales, como por ejemplo, proteínas y polisacáridos, y
a polímeros sintéticos. La unión química, por ejemplo por
conjugación, de DTPA con albúmina de suero bovino dará como
resultado un agente de contraste macromolecular, que es conveniente
para algunas aplicaciones, como por ejemplo, angiografía de NMR,
pero debido a la eficaz identificación de la albúmina modificada
por macrófagos y de receptores de albúmina en células endoteliales,
este agente de contraste tiene una vida media en sangre corta.
También es inmunogenético y tóxico para los órganos del sistema
reticuloendotelial. Por lo tanto, el uso de imágenes de MR es
limitado.
Una forma de reducir la antigenicidad de la
albúmina consiste en enmascararla con polímeros naturales y
sintéticos, como por ejemplo, brazos separadores, mediante enlace
covalente, pero esto deja pocos grupos reactivos en el glóbulo
proteico que son necesarios para unir los quelatos y cationes
paramagnéticos. Por lo tanto, el uso de tales compuestos en la
formación de imágenes de MR es limitado.
Los polímeros sintéticos de
1-aminoácidos, tales como
poli-l-lisina (PL), constituyen una
alternativa a las proteínas naturales modificadas como columnas
vertebrales para agentes de contraste. PL modificado con DTPA se
puede usar como vehículo radionucleido para los objetivos mediados
por anticuerpos diana en medicina nuclear. Se ha sugerido
poli-l-lisina DTPA, es decir,
poli-l-lisina con grupos de DTPA
ligados a grupos amino épsilon de residuos de lisina como
complexona de Gd, es decir, un compuesto que forma un complejo con
Gd, para su uso en angiografía por MR. También se sabe que la
toxicidad de
DTPA-poli-l-lisina
es menor que la de la DTPA-albúmina. Sin embargo,
las mitades de DTPA en
DTPA-poli-l-lisina
son reconocidas por las células Kupffer del hígado y algunas
células de los riñones, probablemente fagocitos glomérulonefrales,
lo cual produce una elevada y relativamente rápida eliminación del
agente de contraste de la sangre. Por ejemplo, 90% del agente
inyectado de forma intravenosa, como por ejemplo
poli-l-lisina-DPTA(Gd)
(MW 48,7 kD), se elimina de la circulación en 1 hora
(t_{1/2}=0,134 h) y se acumula en los riñones, el hígado y los
huesos. Además, la síntesis de
DTPA-poli-l-lisina
se puede realizar con un reactivo de enlaces cruzados, como por
ejemplo anhídrido cíclico de DTPA. En consecuencia, resulta difícil
evitar la formación de productos de enlaces cruzados de peso
molecular relativamente alto y la preparación obtenida es
heterogénea.
Los polímeros que contienen nitrógeno, como por
ejemplo polietilenamina, se han modificado con derivados
monofuncionales del ácido acético para formar una molécula en la
que los residuos de nitrógeno y de ácido acético del espinazo
participan en la formación de compuestos con cationes trivalentes.
Sin embargo, debido a la extensiva acumulación no deseable en el
hígado, el uso de compuestos paramagnéticos de ácido
polietilenaminoacético no está muy extendido en MRI.
Los agentes de contraste poliméricos, como por
ejemplo los dendrímeros, constituyen una familia diferente de
macromoléculas con valor potencial limitado como agentes de
contraste. No se ha demostrado que esta familia de agentes sea
biocompatible y, por tanto, su valor para la formación de imágenes
in vivo es limitado.
Se han descrito anteriormente varios agentes
quelantes basados en polisacáridos; sin embargo se ha demostrado
que su complemento de activación, que es una característica de los
polisacáridos, impide su uso extensivo en la formación de imágenes
de MR.
La vida media en sangre y la inmunogenicidad son
características cruciales de cualquier agente de contraste
designado para la terapia o el diagnóstico médico. En algunos
casos, como la terapia de sustitución de enzimas, la rápida
eliminación de los agentes terapéuticos de la circulación y la
acumulación en células que presentan antígenos limitan su uso
potencial en el tratamiento de la enfermedad. Para solucionar este
problema, se ha sugerido que se modifiquen químicamente los agentes
macromoleculares, como por ejemplo las enzimas, con varios
polímeros naturales y sintéticos. Los dextranos, poliaminoácidos
sintéticos, y los polietilen glicoles se usan muy frecuentemente.
Sin embargo, sólo el polietilen glicol (PEG) y su monometil éster
(MPEG) son adecuados para prolongar la vida media en sangre y
simultáneamente reducir la inmunogenicidad del agente terapéutico.
El motivo para modificar determinantes antigénicos mediante MPEG se
puede explicar por medio de la selección de la carga electrostática
de la micromolécula protegida, como por ejemplo, las proteínas, y
mediante la capacidad de formar numerosos enlaces con agua en
soluciones.
Se asocian aproximadamente tres moléculas de agua
con cada unidad de óxido de etileno y forman la microatmósfera de
agua inmediatamente adyacente para el polímero. Esto evita, en gran
medida, las interacciones adsortivas de proteínas y células con
cadenas de PEG. El uso de PEG en sus formas activadas, como por
ejemplo PEG o MPEG activado por
4,6-dicloro-s-triazina,
no es deseable para la modificación de proteínas, porque el
producto activado está contaminado con subproductos y es altamente
humidosensible. Se han formado enlaces estables y virtualmente no
biodegradables mediante la conjugación de MPEG, por ejemplo
reaccionando
4,6-dicloro-s-triazina
y 1,1-carbonildilmidazol con grupos aminos.
Se usan PEG y MPEG en agentes de contraste para
la formación de imágenes médicas. Las modificaciones covalentes de
desferroxamina-B con MPEG mejoran la tolerancia del
cuerpo de dichos agentes de contraste in vivo, pero no dan
como resultado cambios significativos en la eficacia de la formación
de imágenes. También se han usado agentes de contraste que
contienen MPEG o PEG como componente de mezclas paramagnéticas o en
polímeros paramagnéticos de enlaces cruzados.
Los agentes de contraste diana de los sitios de
interés ayudan a incrementar la eficacia de los procedimientos de
formación de imágenes de MR. Agentes de diagnóstico de este tipo
pueden incluir combinaciones de un ligando y un agente de contraste
paramagnético acoplados mediante una fuerte interacción, como por
ejemplo un enlace químico covalente.
Después de la aplicación sistemática, un agente
de contraste de este tipo se acumula en el sitio diana que está
determinado por la especificidad de los ligandos. En consecuencia,
el sitio de acumulación se diferencia fácilmente del tejido que lo
rodea debido a que aparece hiper- (o hipo-) intensivo en imágenes
de MR. El ligando que dirige al agente de contraste al sitio diana
puede ser específico de los receptores en las células normales o en
las células alteradas de un determinado órgano o tejido. En el
primer caso, el agente de contraste se acumulará en un tejido
normal; en el segundo caso, se acumulará en un tejido alterado.
El éxito a la hora de diseñar un agente de
contraste diana está determinado principalmente por las siguientes
propiedades: 1. afinidad al sitio diana; 2. antigenicidad, es
decir, la capacidad de pasar a través del endotelio capilar y 3.
vida media en sangre del ligando o molécula (vector) diana. El
enlace de un agente de contraste con una molécula de ligando diana,
como por ejemplo un anticuerpo o sus fragmentos, que crea un agente
de contraste diana, como por ejemplo un catión paramagnético
quelado, un coloide paramagnético o una combinación de un quelato y
un coloide paramagnético conjugados en una molécula diana,
normalmente reduce su valor potencial por diversos motivos, como por
ejemplo, una afinidad reducida a un sitio diana, una antigenicidad
aumentada o una vida media reducida. Por ejemplo, el enlace de un
fragmento de un anticuerpo pequeño, como por ejemplo una molécula
quimérica Fab o Fv, con una molécula paramagnética grande, como por
ejemplo un polímero-DTPA o un coloide
superparamagnético, como por ejemplo óxido de hierro, para formar un
agente de contraste objetivo aumentará la respuesta inmune del
organismo recipiente al agente debido a las propiedades
coadyuvantes del propio agente. La molécula paramagnética o el
propio coloide pueden ser reconocidos por las proteínas opsónicas
del organismo recipiente y el agente de contraste puede resultar
retenido en órganos del sistema reticuloendotelial. Como resultado,
el hígado y el bazo eliminan el agente de contraste de la
circulación antes de que se logre una concentración sustancial en
el sitio diana. Además, un agente de contraste de este tipo puede
ser reconocido como un antígeno extraño que puede dar lugar a
anticuerpos huésped no deseables.
El documento
EP-A-397307 describe una preparación
de medicamento de copolímeros de bloque soluble en agua que incluye
un segmento hidrófilo, como por ejemplo polietilen glicol, y un
segmento hidrófobo, como por ejemplo el ácido poliaspártico, con un
medicamento como adriamicina ligado al segmento hidrófobo.
Según la invención se proporciona una composición
médica biocompatible que incluye un vehículo polimérico y que se
caracteriza porque comprende además una pluralidad de cadenas
protectoras unidas al protector polimérico y uno o más grupos de
referencia unidos al vehículo polimérico y porque dicho grupo de
referencia es una complexona o un grupo terapéutico; las cadenas
protectoras protegen al vehículo polimérico y al grupo de
referencia del contacto con otras macromoléculas uniendo de forma
extensiva el agua a las cadenas protectoras.
El vehículo polimérico se puede elegir entre los
poliaminoácidos, polietilenaminas, sacáridos naturales,
polisacáridos aminados, oligosacáridos aminados, poliamidoaminas,
ácidos poliacrílicos o polialcoholes.
El vehículo polimérico se puede elegir entre los
poliaminoácidos, polietilenaminas, sacáridos naturales,
polisacáridos aminados, oligosacáridos aminados, poliamidoaminas,
ácidos poliacrílicos o polialcoholes.
La invención también muestra una composición que
tiene la siguiente fórmula:
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{
\+ O \+ \+ O\+\cr \+ \hskip0.5mm || \+ \+ ||\+\cr
[[-- \hskip-2mm \+C--NH-- \hskip-2mm \+CH--][-- \hskip-2mm \+
C--NH-- \hskip-2mm \+CH--]] _{k} \cr \+
\+ \hskip1mm | \+ \+ \hskip1mm |\cr \+ \+ R _{1}
\+ \+
R _{2} \cr}
donde los grupos
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{
\+ O \+ \+ \+ \+ O\+\cr \+ \hskip0.5mm || \+ \+ \+
\+ \hskip0.5mm ||\+\cr
[-- \hskip-2mm \+C--NH-- \hskip-2mm \+CH--]
\+ \hskip0.5cm y \hskip0.5cm \+
[-- \hskip-2mm \+C \hskip-0.3mm --NH-- \hskip-2mm \+CH--]\cr
\+ \+ \hskip0.5mm | \+ \+ \+ \+ \hskip0.5mm |\cr
\+ \+ R _{1} \+ \+ \+ \+
R _{2} \cr}
se pueden unir en cualquier orden, como por
ejemplo, la unidad R_{1} se puede repetir varias veces en la
cadena antes de que se produzca la unidad R_{2} y viceversa;
donde k es 100-560; R_{1} es
(CH_{2})_{4}NHCO(CH_{2})_{n}COOCH_{2}CH_{2}A-B-OR_{3},
donde n es 2-6; A es
[OCH_{2}CH_{2}]_{x} donde x es 15-220;
B es [OCH_{2}CH_{2}]_{x} o
[OCH(CH_{3})CH_{2}]_{y}, donde y + x es
17-220; R_{2} es un grupo quelante; y R_{3} es
H, (CH_{2})_{y}CH_{3} o (CH_{2})_{y}COOH y
p es 0-7.
En esta composición, el grupo quelante puede ser,
por ejemplo, ácido dietilenotriamino-pentaacético,
1,4,7,10-tetraazociclododecano-N,N',N'',
N'''-ácido tetraacético, ácido
1,4,7,10-tetraazociclododecano-N,N',N'',
-triacético, ácido etileno-bis (oxietilenonitrilo)
tetraacético o ácido etilenodiaminotetraacético.
El poliaminoácido de la composición
preferiblemente tiene 20-560 unidades aminoácidas,
un peso molecular de 1.000-100.000 daltons y
preferiblemente es no-proteico. El poliaminoácido
puede ser un polímero de una sola especie o de, al menos, dos
especies diferentes de aminoácidos, o puede ser un copolímero de
bloque.
El poliaminoácido puede incluir fragmentos de
poliaminoácidos unidos por enlaces divisibles, como por ejemplo,
enlaces S-S. En concreto, el poliaminoácido puede
ser, por ejemplo, poli-l-lisina,
poli-d-lisina,
poli-alfa,beta-(2-aminoetil)-D,
L aspartamida o
ácido-l-poliaspártico.
Las cadenas protectoras de la composición pueden
ser, por ejemplo, polietilen glicol, metoxipolietilen glicol,
metoxipolipropilen glicol, un copolímero de polietilen glicol,
metoxipolietilen glicol o metoxipolipropilen glicol o derivados de
los mismos. Además, las cadenas protectoras pueden ser copolímeros
de bloque de polietilen glicol y uno del grupo de poliaminoácidos,
polisacáridos, poliamidoaminas, polietilenaminas o polinucleidos.
Las cadenas protectoras pueden ser también copolímeros de
polietilen glicol que incluyen un monoéster de un ácido
dicarboxílico. Las cadenas protectoras preferiblemente tienen un
peso molecular de 500-10.000 daltons.
El grupo de referencia puede ser una complexona,
como por ejemplo un grupo quelante. El grupo quelante puede ser,
por ejemplo, ácido dietilenotriamino-pentaacético,
ácido trietilenotetramino-hexaacético, ácido
etilenodiaminotetraacético,
1-2-diaminociclohexano-N,N',N'',N'''-ácido
tetraacético, N,N'-Di
(2-hidroxibencil) etilenodiamina, ácido
N-(2-hidroxietil)etilenodiaminotriacético,
ácido nitrilotriacético, ácido
etileno-bis(oxietileno-nitrilo)
tetraacético,
1,4,7,10-tetraazociclododecano-N,
N',N'',N'''-ácido tetraacético, ácido
1,4,7,10-tetraazociclododecano-N,N',
N''-triacético,
1,4,7-tris(carboximetil)-10-(2'-hidroxipropil)-1,4,7,10-tetraazociclodecano,
1,4,7-triazociclonano-N,N',N''-á-
cido triacético o 1,4,8,11-tetraazociclotetradecano-N, N', N'', N'''-ácido tetraacético.
cido triacético o 1,4,8,11-tetraazociclotetradecano-N, N', N'', N'''-ácido tetraacético.
La composición puede incluir también un
radionucleido que emita rayos alfa, beta o gamma unido a la
complexona. El radionucleido puede ser galio 67, indio 111,
tecnecio 99m, cromo 51, cobalto 57, molibdeno 99 o una molécula
unida a un isótopo de yodo.
El grupo de referencia puede incluir también un
agente de diagnóstico, como por ejemplo un agente de contraste, que
puede incluir un elemento paramagnético o superparamagnético o una
combinación de un elemento paramagnético y un radionucleido. El
elemento paramagnético se puede elegir del grupo de metales de
transición o lantánidos con números atómicos 21-29,
42, 44 ó 57-71. El elemento paramagnético puede
ser, por ejemplo, gadolinio (III), disprosio (III), holmio (III),
europio (III), hierro (III) o manganeso (II).
El grupo de referencia puede incluir un agente
terapéutico, como un medicamento citostático, antibiótico,
hormonal, analgésico, psicotrópico, antiinflamatorio, antivírico o
antifúngico o una linfocina.
La composición puede incluir además un grupo
diana unido al vehículo polimérico o a una de las cadenas
protectoras o a ambos. El grupo diana puede ser un anticuerpo, un
fragmento de un anticuerpo, un anticuerpo quimérico, una enzima,
lectina o un ligando sacárido.
La composición puede incluir también un grupo de
referencia que sea una partícula, una partícula coloidal o un
precipitado coloidal. El precipitado coloidal puede incluir un
óxido, un sulfuro o un hidróxido de un elemento de transición o
lantánido con números atómicos 21-29, 42, 44 ó
57-71. El grupo de referencia puede ser también un
coloide de óxido de silicio o un polímero que contenga silicio,
azufre o carbono o una molécula que contenga flúor, como por
ejemplo un fluorocarburo.
El grupo de referencia puede ser también un grupo
de piridilditioacil, como por ejemplo, un grupo
N-(2-pyridilditio)propionil,
N-hidroxisuccinimidil,
N-hidroxisulfosuccinimidil, imidazolil,
benzotriazolil, aminoalquilo, aldehído, tioaiquil, tiolano, acilo
haloideo, alquilo haloideo o fenilo haloideo o un grupo diazo- o
hidrazo-, como por ejemplo un grupo
4-hidrazionoxietil,
4-hidrazinobencil, diasirinil, azidofenilo o
azidoalquilo.
Además, la invención presenta un procedimiento
para preparar la composición uniendo el vehículo polimérico con la
pluralidad de cadenas protectoras para crear un vehículo protegido
y, después, unir el vehículo protegido con el grupo de referencia.
Si las cadenas protectoras incluyen un análogo del metoxipolietilen
glicol, la unión del vehículo polimérico con el análogo produce un
gel semiestable. El procedimiento puede incluir además la unión de
un grupo diana al vehículo, a uno de los grupos protectores o a
ambos.
La invención también muestra una composición para
su uso en el tratamiento de una enfermedad de un paciente o el uso
de la composición para fabricar un medicamento para el tratamiento
de una enfermedad, administrándolo al paciente en una cantidad
efectiva terapéutica o diagnósticamente de la composición o del
medicamento de la invención. El procedimiento puede incluir además
una exploración del paciente mediante una técnica de formación de
imágenes que puede detectar al grupo de referencia para obtener una
imagen visible de la distribución de la composición.
La administración puede realizarse mediante una
inyección intravascular o intraperitoneal y la técnica de formación
de imágenes puede ser, por ejemplo, imágenes de resonancia
magnética, imágenes de medicina nuclear, tomografía de emisión
positrónica o tomografía computerizada de emisión simple de
fotones.
Los ejemplos de nuestra composición permiten que
se administren dosis muy pequeñas de un elemento paramagnético, por
ejemplo gadolinio, a un paciente y aún así se obtienen imágenes
excelentes, como por ejemplo imágenes de MR. Por ejemplo, el grupo
de referencia puede incluir gadolinio suministrado en una dosis
inferior a 0,05 mmol Gd/Kg de peso corporal del paciente.
Preferentemente, la dosis es de aproximadamente 0,02 a 0,04 mmol
Gd/kg de peso corporal.
\newpage
Los ejemplos de nuestra composición se pueden
usar como agente de contraste o para fabricar un agente de
contraste para el tratamiento de un paciente mediante la
exploración de un vaso submilimétrico del paciente para obtener una
imagen visible del vaso submilimétrico. Un vaso submilimétrico es
aquél que tiene un diámetro interior inferior a un milímetro.
Según se usa en la presente invención, el término
"unido" significa que tiene enlaces covalentes y no
covalentes, por ejemplo, enlaces hidrogénicos, iónicos o
Van-der-Waals. Estos enlaces pueden
estar formados entre al menos dos átomos o iones iguales o
diferentes como resultado de la redistribución de las densidades
electrónicas de dichos átomos o iones.
Un "vehículo polimérico" es una molécula que
comprende varias mitades químicas unidas que pueden ser iguales o
diferentes y sirve como sitio donde se une un grupo de referencia y
es protegido por las cadenas protectoras.
Una "cadena protectora" es una molécula que
protege a una molécula portadora y a un grupo de referencia del
contacto con otras macromoléculas mediante la unión extensiva del
agua con las cadenas.
Una "complexona" es una molécula o varias
moléculas o radicales químicos o mitades que constituyen un medio
favorable para la unión de un ion (un catión o un anión). La
disociación del ion del medio se interrumpe debido a la estabilidad
cinética y/o termodinámica de la unión.
Una "molécula quelante", "grupo
quelante" o "quelato" es una complexona que une
cationes.
Un "grupo de referencia" es un átomo, ion,
molécula o complexona que se puede unir a un vehículo polimérico o
cadena protectora para producir un efecto que se puede detectar
mediante cualquier procedimiento de examen químico, físico o
biológico de un paciente. Un grupo de referencia puede ser un agente
terapéutico o de diagnóstico.
Los términos "derivado" o "análogo"
según se usan en la presente invención quieren decir un compuesto
cuya estructura central es igual o muy parecida a la de un
compuesto padre, pero que tiene una modificación química o física,
como un grupo lateral diferente o adicional; el término incluye a
los copolímeros de compuestos padre que se pueden unir a otros
átomos o moléculas.
Los términos "ligando", "grupo diana" o
"molécula vector" quieren decir cualquier átomo, ion o
molécula unida a un vehículo y/o a una cadena protectora y/o a un
grupo de referencia para aumentar la acumulación de la composición
en un sitio diana de un organismo en mayor medida que si el
ligando, el grupo diana o la molécula vector estuvieran
ausentes.
El término "fragmento de poliaminoácido" se
refiere a radicales de un solo aminoácido o varios aminoácidos
unidos que se pueden unir para formar un poliaminoácido.
Un "gel semiestable" es un gel que forma una
fase líquida en estado constante o si varían la temperatura el pH u
otras condiciones.
El término "representación de vasos" se
refiere a la obtención de imágenes de un vaso o vasos donde se
puede dilucidar la orientación y la localización espacial de los
vasos.
El término "aminado" describe moléculas que
incluyen grupos aminos unidos.
Una "cantidad diagnósticamente efectiva" de
la composición es una cantidad que ofrezca una imagen de la
composición en el paciente.
Una "cantidad terapéuticamente efectiva" de
la composición es una cantidad que proporcione un beneficio
terapéutico al paciente.
Algunas características importantes de los
ejemplos de nuestras composiciones que las hacen ser
sorprendentemente convenientes para las imágenes de MR incluyen: 1)
la capacidad de quelar cationes paramagnéticos para conseguir una
elevada relaxividad, lo cual es esencial para su uso como agente de
contraste NMR, 2) un agente de contraste con una vida media en
sangre extendida, 2) una vida media en sangre extendida, 3) baja
toxicidad y 4) no-inmunogenicidad.
Esta invención también ofrece las ventajas de
tener que administrar sólo una dosis del agente de contraste, junto
con proporciones mejoradas de señales/ruidos en las imágenes de
diagnóstico obtenidas.
Las siguientes propiedades son comunes a las
composiciones de la invención: 1) relaxividad incrementada de cada
catión paramagnético comparado con Gd-DTPA, 2)
grandes cantidades de grupos quelantes en cada molécula, 3)
concentración en sangre mejorada después de la inyección
intravenosa, 4) sitios mejorados de permeabilidad endotelial
anormal y 5) tiempo de circulación prolongado en comparación con
Gd-DTPA.
\newpage
Otras características y ventajas de la invención
se desprenderán de la siguiente descripción de las formas de
realización preferidas y de las reivindicaciones.
La figura 1 es un diagrama de tres esquemas para
sintetizar las composiciones de la invención.
La figura 2 es un gráfico de la eliminación de la
sangre de productos marcados de [^{111}ln] y MPEG saturados de
Gd(MW 5
kD)-poli-l-lisina(MW
53,5 kD)-DTPA (cuadrados) y MPEG(MW 2
kD)-poli-l-lisina(MW
41 kD)-DTPA (rombos).
La figura 3 es un gráfico de la biodistribución
de productos marcados [^{111}ln] y MPEG saturados de Gd(MW
5
kD)-poli-l-lisina(MW
53,5 kD)-DTPA 90 horas después de la inyección
intravenosa.
La figura 4 es un gráfico de la respuesta a
Gd-DTPA de ratones inyectados con
Gd-DTPA-BSA (cuadrados) y
MPEG(MW 5 kD)-
poli-l-lisina(MW 53,5
kD)-DTPA(Gd) (rombos).
La figura 5 es un gráfico del efecto de MPEG
marcado de Gd(MW 2
kD)-poli-l-lisina(MW
41 kD)-DTPA (cuadrados) o MPEG marcado de
Gd(MW 5
kD)-poli-l-lisina(MW
25 kD)-DTPA (rombos) en valores T1 de sangre en
diversas concentraciones.
La figura 6 es un gráfico de la mejora
dependiente de dosis de los vasos, con la proporción vaso/músculo
determinada por la digitalización de intensidades de las señales de
diversas arterias grandes, como por ejemplo, la aorta, ilíaca y
femoral y los tejidos musculares que los rodean.
La figura 7 es un gráfico del
curso-tiempo de un agente de contraste en vasos
grandes en un estudio comparativo.
Las figuras 8a y 8b son imágenes de resonancia
magnética de la cabeza de una rata en reconstrucción de píxeles en
brillo en 3 dimensiones que muestra la imagen antes (Fig. 8a) y
después (8b) de una inyección intravenosa de MPEG(MW 5
kD)-poli-l-lisina(MW
25 kD)-DTPA(Gd).
La figura 9 es una imagen de MR de dos ratas en
reconstrucción de píxeles en brillo en 3 dimensiones después de una
inyección intravenosa de MPEG(MW 5
kD)-poli-l-lisina(MW
25 kD)-DTPA(Gd) (imagen izquierda) y
dimeglumina de adopentato (imagen derecha).
Las figuras 10a y 10b son imágenes de MR de un
conejo en reconstrucción de píxeles en brillo en 3 dimensiones de
la proyección lateral (Fig. 10a) y cráneo caudal (ver Fig. 10b)
después de una inyección intravenosa de MPEG(MW 5
kD)-poli-l-lisina(MW
25 kD)-DTPA(Gd).
Las figuras 11a y 11b son imágenes de MR de la
ijada izquierda y el muslo de una rata en reconstrucción de píxeles
en brillo en 3 dimensiones antes (Fig. 11a) y después (Fig. 11b) de
una inyección intravenosa de MPEG(MW 5
kD)-poli-l-lisina(MW
25 kD)-DTPA(Gd). Las imágenes se tomaron dos
semanas después de la inyección de células de adenocarcinoma mamario
R3230 en la ijada izquierda de la rata.
Las composiciones de esta invención incluyen una
entidad química simple que incluye un vehículo polimérico, una
cadena protectora unida al vehículo polimérico y un grupo de
referencia. Por ejemplo, la composición puede tener la siguiente
fórmula:
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{
\+ O \+ \+ O\+\cr \+ \hskip0.5mm || \+ \+ ||\+\cr
[[-- \hskip-2mm \+C--NH-- \hskip-2mm \+CH--][-- \hskip-2mm \+
C--NH-- \hskip-2mm \+CH--]] _{k} \cr \+
\+ \hskip1mm | \+ \+ \hskip1mm |\cr \+ \+ R _{1}
\+ \+
R _{2} \cr}
donde los grupos
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{
\+ O \+ \+ \+ \+ O\+\cr \+ \hskip0.5mm || \+ \+ \+
\+ \hskip0.5mm ||\+\cr
[-- \hskip-2mm \+C--NH-- \hskip-2mm \+CH--]
\+ \hskip0.5cm y \hskip0.5cm \+
[-- \hskip-2mm \+C \hskip-0.3mm --NH-- \hskip-2mm \+CH--]\cr
\+ \+ \hskip0.5mm | \+ \+ \+ \+ \hskip0.5mm |\cr
\+ \+ R _{1} \+ \+ \+ \+
R _{2} \cr}
se pueden unir en cualquier orden; donde k es
100-560; R_{1} es
(CH_{2})_{4}NHCO(CH_{2})_{n}COOCH_{2}CH_{2}A-B-OR_{3},
donde n es 2-6; A es
[OCH_{2}CH_{2}]_{x} donde x es 15-220;
B es [OCH_{2}CH_{2}]_{x} o
[OCH(CH_{3})CH_{2}]_{y}, donde y + x es
17-220; R_{2} es un grupo quelante; y R_{3} es
H, (CH_{2})_{y}CH_{3} o (CH_{2})_{y}COOH y
p es
0-7.
El vehículo polimérico puede elegirse de
poliaminoácidos, por ejemplo, polímeros lineales o ramificados de
una sola especie de aminoácidos o de diferentes especies de
aminoácidos, como por ejemplo copolímeros de bloque regulares o
estáticos de poliaminoácidos, como por ejemplo
poli-l-o
poli-d-lisina preferiblemente
lineales, poli-alfa,
beta-(2-aminoetil)-d,l-aspartamida
o ácido-l-poliaspártico.
El peso molecular del vehículo del poliaminoácido
está preferiblemente entre 1.000 y 100.000 daltons. Se prefieren
los poliaminoácidos con distribuciones de peso molecular (MW)
reducido a los que tienen distribuciones de peso molecular amplio.
Los poliaminoácidos se unen con enlaces peptídicos o, cuando se
obtienen mediante la condensación de uno o más fragmentos de
poliaminoácidos o aminoácidos individuales con enlaces divisibles,
como por ejemplo, enlaces S-S que se pueden dividir
in vivo. Los poliaminoácidos pueden ser naturales o
sintéticos, son preferiblemente no-proteicos y están
preparados mediante síntesis química o mediante técnicas de
recombinación, tales como la ingeniería genética.
El vehículo polimérico también puede comprender
polietilenaminas, como por ejemplo polímeros que contienen aminos
ramificados o polietilenaminas carboxilatadas, es decir, que
reaccionan con derivados de anhídrido carbónico; sacáridos
naturales que contienen aminoácidos o ácidos carboxílicos, como por
ejemplo ácido galacturónico, ácido glucurónico, ácido manurónico,
ácido hialurónico, ácido péctico, ácido neuramínico, ácido
algínico; carragenina, polisacáridos u oligosacáridos aminados
(lineales o ramificados); o polisacáridos u oligosacáridos
carboxílicos, por ejemplo, que reaccionan con derivados de
anhídrido carbónico que dan como resultado la unión de grupos
carboxílicos.
Los oligosacáridos de este tipo se pueden obtener
mediante alteración química de, por ejemplo, dextrano, manano,
xilano, pululano, celulosa, citosano, agarosa, fucoidano,
galactano, arabinano, fructano, fucano, quitina, pustulano, levano
o pectina. Además estos polisacáridos u oligosacáridos pueden ser
heteropolímeros u homopolímeros de monosacáridos, como por ejemplo,
glucosa, galactosa, manosa, galactosa, deoxiglucosa, ribosa,
deoxirribosa, arabinosa, fucosa, xilosa, xilulosa o ribulosa.
El vehículo polimérico puede ser un
poliamidoamino lineal, ramificado o dendrimérico; ácido
poliacrílico; polialcoholes, como por ejemplo, alcohol polivinílico
y polixilitol, a los que se unen químicamente grupos carboxílicos o
de aminos; u oligonucleidos.
La cadena protectora puede ser PEG,
preferiblemente esterificado por ácido dicarboxílico para formar un
polietilen glicol monoéster; MPEG, metoxipolipropileno glicol o un
copolímero de los mismos, preferiblemente a modo de éster con ácido
dicarboxílico, polietilen glicol-diácido, polietilen
glicol monoamino; MPEG monoamino; hidrácido de MPEG; MPEG imidazol
y derivados de todos los anteriores.
Además, la cadena protectora puede ser un
copolímero de bloque de PEG y un polímero, por ejemplo, de
poliaminoácidos, polisacáridos, poliamidoaminas, polietilenaminas o
polinucleidos (como se ha descrito previamente en el apartado de
vehículos poliméricos) Los bloques se alternan preferiblemente para
dar un copolímero de bloque. El peso molecular global de la cadena
protectora es preferiblemente de 500 a 10.000 daltons. La cadena
protectora se une preferiblemente al vehículo polimérico mediante
un enlace sencillo.
Los grupos de referencia de la invención se unen
preferiblemente a un vehículo polimérico pero también se pueden
unir a una cadena protectora. Los grupos de referencia incluyen
complexonas, como por ejemplo moléculas quelantes como ácido
dietilenotriamino-pentaacético (DTPA), ácido
trietilenotetramino-hexaacético (TTHA), ácido
etilenodiaminotetraacético (EDTA),
1,2-diaminociclohexano-N,N,N',N'-ácido
tetraacético,
N,N'-Di(2-hidroxibencil)etilenodiamina
(HBED), ácido N-(2-hidroxietil)
etilenodiaminotriacético, ácido nitrilotriacético, ácido
etileno-bis(oxietilenonitrilo) tetraacético
(EGTA),
1,4,7,10-tetraazociclododecano-N,N',N'',N'''-ácido
tetraacético (DOTA), ácido
1,4,7,10-tetraazociclododecano-N,N',N''-triacético
(DO3A),
1,4,7-tris(carboximetil)-10-(2'-hidroxipropil)-1,4,7,10-tetraazociclodecano
(HP-DO3A),
1,4,7-triazociclonano-N,N',N-ácido
triacético (NOTA),
1,4,8,11-tetraazociclotetradecano-N,
N',N'',N'''-ácido tetraacético (TETA), preferiblemente DOTA y DTPA, donde estas moléculas quelantes preferiblemente incluyen un agente de contraste, como por ejemplo un catión paramagnético y/o radionucleido.
N',N'',N'''-ácido tetraacético (TETA), preferiblemente DOTA y DTPA, donde estas moléculas quelantes preferiblemente incluyen un agente de contraste, como por ejemplo un catión paramagnético y/o radionucleido.
Los elementos paramagnéticos, por ejemplo los
cationes, incluyen metales de transición o lantánidos, como por
ejemplo elementos con números atómicos 21-29, 42,
44, 57-71, preferiblemente gadolinio (III),
disprosio (III), holmio (III), europio (III), hierro (III) o
manganeso (II).
\newpage
Los radionucleidos incluyen emisores de rayos
alfa-, beta- y gamma-, preferiblemente galio 67, indio 111,
tecnecio 99m, cromo 51, cobalto 57, molibdeno 99, moléculas, como
por ejemplo tirosina y ácido p-oxibenzoico, unidas
a isótopos de yodo, como por ejemplo yodo 131.
El grupo de referencia puede incluir también
moléculas que contienen flúor, por ejemplo los fluorocarburos.
El grupo de referencia puede incluir también
agentes terapéuticos, como por ejemplo citostáticos, antibióticos,
hormonas, por ejemplo factor del crecimiento, medicamentos
analgésicos, psicotrópicos, antiinflamatorios, antivíricos y
antifúngicos o linfocinas, como por ejemplo interleucina 2. Los
agentes terapéuticos se unen preferiblemente a un vehículo con
enlaces separables o semiestables.
El grupo de referencia puede incluir también una
partícula o partícula coloidal, o un precipitado coloidal de
óxidos, sulfuros y/o hidróxidos de elementos de transición y
lantánidos con números atómicos 21-29, 42, 44,
57-71 o coloides de óxido de silicio o polímeros
que contienen silicio o polímeros de átomos de azufre, carbono o
silicio. La partícula o partículas pueden contenerse como parte
integral de una membrana semipermeable o estar rodeadas por dicha
membrana.
Las composiciones pueden incluir también grupos
de referencia adicionales que se pueden elegir de
(CH2)_{p}COOH, donde p está entre 0 y 7; grupos de
piridilditioacil, como por ejemplo grupos de
N-(2-piridilditio)propionil;
N-hidroxisuccinimidil,
N-hidroxisulfosuccinimidil, imidazolil,
benzotriazolil, aminoalquilo, aminoacilo, aldehído, tioaiquil,
tiolano, acilo haloideo, alquilo haloideo o fenilo haloideo: diazo-
e hidrazo-, como por ejemplo grupos de
4-hidrazionoxietil,
4-hidrazinobencil, diazirinil, azidofenil o
acidoalquilo.
Los grupos anteriores se unen al vehículo
polimérico y/o a las cadenas protectoras y se necesitan para
conjugar o unir otros ligandos, como por ejemplo un grupo diana,
capaz de interactuar con receptores de superficie de células,
proteoglicanos, moléculas de adhesión, canales de iones o enzimas, a
las composiciones de esta invención.
El grupo diana puede incluir anticuerpos;
fragmentos de anticuerpos; anticuerpos quiméricos, en los que los
citados anticuerpos son policlonales o monoclonales; enzimas; cuasi
sustratos de enzimas; lectinas o ligandos sacáridos de lectinas
unidos de forma separable o no separable a la composición.
Las composiciones de esta invención se pueden
sintetizar usando cualquiera de los siguientes procedimientos (Ver
Fig.1). Se ofrece un ejemplo de síntesis que usa
poli-l-lisina como vehículo
polimérico, MPEG como cadena protectora y una complexona como grupo
de referencia. Esta composición sintética resulta especialmente
conveniente como agente de contraste macromolecular.
Esquema
1
Las composiciones pueden prepararse en dos fases,
reaccionando primero el poliaminoácido con análogos de MPEG
activados y reaccionando a continuación esta mezcla de reacción con
un compuesto de quelatos activados. Se prefiere este procedimiento
si se usa poli-l-lisina como
vehículo polimérico (Ver Fig.1).
Los grupos de
\varepsilon-aminos de
poli-l-lisina se reaccionaron con
derivados activados de MPEG carboxilatado, como por ejemplo ácido
ciorados, anhídridos, anhídridos mixtos, nitrones, isotiocianatos e
imidazol, y ésteres activados, como por ejemplo hidroxisuccinimida,
hidroxisulfosuccinimida, p-nitrofenil,
benzotriazolida.
La molécula quelante entra en reacción con los
grupos aminos restantes, ya sea de forma activada, por ejemplo
anhídrido, anhídrido mixto o isotiocianato, o de forma no activada.
Si la molécula quelante está en forma no activada, se activa para
obtener un éster activado en presencia de succinimida o
sulfosuccinimida y carbodiimida y, a continuación, se hace que
entre en reacción con los grupos aminos restantes. La reacción
puede ir precedida de una modificación química adicional del
espinazo del poliaminoácido o de las cadenas de MPEG que no estén
limitadas a reacciones resultantes de la formación o eliminación de,
al menos, un enlace químico.
La secuencia de la unión química de las cadenas
protectoras y un grupo de referencia a un vehículo polimérico se
puede invertir, es decir, la unión de un grupo de referencia
precede a la unión de las cadenas protectoras al vehículo
polimérico, pero preferiblemente el grupo de referencia se usa como
análogo activado monofuncional, es decir, una molécula de grupo de
referencia activado sólo forma una unión covalente con un vehículo
polimérico.
Esquema
2
Las composiciones también se pueden sintetizar
usando protocolos de síntesis de péptidos estándar con precursores
de aminoácidos tales como aminoácido-MPEG y
aminoácido-complexona. En este caso, se pueden
alternar mitades de complexona y PEG de forma controlada.
Esquema
3
Los oligómeros de
poliaminoácidos-MPEG se pueden conjugar con
oligómeros de aminoácidos-complexona para formar un
copolímero de bloque.
Los tres esquemas darán como resultado
composiciones predecibles con distribuciones de peso molecular
altamente predecibles.
Cuando se usan vehículos carboxilatados, tales
como los sacáridos carboxilatados o poliaminoácidos con carboxilos
en sus radicales, como el ácido
poli-l-aspártico, el vehículo
polimérico se activa preferiblemente en presencia de carbodiimida y
sulfosuccinimida como se describe en el ejemplo 2 de DTPA y, a
continuación, reacciona con las cadenas protectoras aminadas, como
MPEG monoamina a pH 7-9. La unión de la complexona
o el quelato se activa preferiblemente mediante la condensación de
carbodiimida.
Cuando se usa para obtener imágenes médicas, las
composiciones de esta invención preferiblemente tendrán una
molécula de poliaminoácido no-proteico que sirva
como vehículo de los análogos activados de moléculas quelantes
lineales o ramificados unidos de forma covalente, al que se une un
catión de referencia MR, es decir, quelado iónicamente. El vehículo
forma una entidad química simple con cadenas protectoras de
MPEG.
La ruta sintética de la preparación de las
composiciones de esta invención incluye la modificación covalente
del vehículo poliaminoácido. La conjugación de
1,1'-MPEG tratado con carbonildiimidazol con grupos
aminos requiere altos excesos del modificador, como por ejemplo
MPEG activado, lo cual conduce a la formación de geles semiestables
debido a que se reduce la solubilidad de los poliaminoácidos en
presencia de MPEG. El procedimiento para preparar
N-hidroxisuccinimidil MPEG-succinato
descrito en el esquema 1 da un producto con un contenido en éster
altamente activo, por ejemplo mayor de 75%, lo cual resulta
beneficioso para preparar las composiciones de esta invención. La
purificación especial de los intermediarios permite la eliminación
de peróxidos y produce una preparación para su uso in
vivo.
La unión de MPEG al vehículo polimérico, por
ejemplo un poliaminoácido, también evita la posible degradación del
poliaminoácido con el anhídrido cíclico de DTPA. Las cadenas de
MPEG evitan la formación de subproductos porque crean una barrera
estérica para degradar al reactivo. Por lo tanto, la formación de
productos de elevado peso molecular se puede controlar, lo cual hace
que los pasos para la síntesis sean predecibles. En consecuencia,
se obtiene una preparación homogénea con una distribución de peso
molecular reducido.
Los vehículos poliméricos preferiblemente
contienen enlaces peptídicos. Los mismos enlaces participan en la
conjugación de una molécula quelante con grupos reactivos de
radicales de aminoácidos. Por lo tanto, las composiciones son
potencialmente biodegradables por diversos péptidos no específicos
de animales. Para facilitar la eliminación in vivo del
vehículo polimérico y de cadenas protectoras junto con un grupo de
referencia o para mejorar la disociación de un grupo de referencia
desde el vehículo hasta el medio ambiente biológico, si dicho grupo
de referencia es un agente terapéutico, se pueden unir juntos
elementos del vehículo polimérico o de las cadenas protectoras o de
los grupos de referencia mediante una unión semiestable, como por
ejemplo los enlaces S-S. Se puede eliminar pequeñas
cantidades de composiciones retenidas del cuerpo mediante la
degradación en pequeños fragmentos. Sin embargo, se pueden usar
diversos derivados PEG activados para la preparación de las
composiciones, convirtiéndolos así en virtualmente no degradables
o, por el contrario, en lábiles. Sin embargo, las composiciones
lábiles no son deseables, pues la separación de MPEG dará como
resultado una acumulación más extensiva de las composiciones del
agente de contraste en el sistema reticuloendotelial.
El uso de las composiciones de esta invención en
la formación de imágenes de MR requiere la presencia de un grupo de
referencia MR, como un catión paramagnético, por ejemplo gadolinio
(III). La técnica de transquelación desarrollada en este
experimento se basa en una forma de realización de Harris y col., J
Polym. Sci., 22:341-52, que se incorpora en la
presente invención mediante referencias. Los solicitantes usaron
Gd-citrato para evitar el contacto del agente de
contraste con el óxido de gadolinio, usado previamente por Griess y
col., patente de Estados Unidos 4,647,447, o con el cloruro de
gadolinio, usado previamente por Bardy y col., patente de Estados
Unidos 4,804,529. El citrato de gadolinio forma fácilmente
contaminantes, tales como hidróxidos coloidales a valores de pH
superiores a 6,5, que están dentro del rango de valores de pH
óptimos para los agentes de contraste de NMR de esta invención. La
introducción de un paso de purificación especial, por ejemplo un
paso de cromatografía de cambio aniónico, permite la separación de
MPEG-PL-DTPA marcados de
Gd(Gd) de posibles contaminantes aniónicos, como por ejemplo
MPEG-PL-DTPA(Gd) con un bajo
grado de sustitución de grupos aminos con MPEG o pequeñas cantidades
de PL-DTPA(Gd).
Las cadenas protectoras, por ejemplo MPEG, de
esta invención no reaccionan con el componente C3 de complemento,
lo cual es una clara ventaja sobre agentes conocidos anteriormente,
como por ejemplo dextrano-DTPA(Gd), que se
sabe que reaccionan con el componente C3 de complemento.
MPEG evita la exposición de los grupos quelantes
y los cationes paramagnéticos a células receptoras, como por
ejemplo fagocitos glomerulonefrales, capaces de reconocerlos. MPEG
también forma una barrera estérica que evita la requelación de
cationes de Gd por seroproteínas tales como transferina. Las
composiciones de esta invención también evitan los posibles efectos
tóxicos retardados del gadolinio requelado.
La conjugación de MPEG reduce la toxicidad de la
composición de esta invención evitando la acumulación significativa
del polímero quelante en el hígado y el bazo. Los estudios de
toxicidad aguda de las composiciones de esta invención no han
mostrado ninguna aparente toxicidad en ratones en concentraciones
que superan entre 10 y 35 veces la dosis óptima. El examen
histológico de los tejidos de dichos ratones no ha mostrado ninguna
desviación de los animales de control.
La vida media en sangre de las composiciones de
esta invención se determinó en ratas. Los agentes de contraste
radioactivos y paramagnéticos se incorporaron a la composición
preparada según los ejemplos 1 y 3 para determinar de forma precisa
sus características farmacocinéticas in vivo. Se observaron
las ratas en distintos momentos usando una cámara gamma para
controlar la distribución de la composición. Como muestran los
datos presentados en la figura 2, la vida media en sangre del
agente de contraste descrito era igual a 24 horas para
MPEG(MW 5
kD)-poli-l-lisina(MW
53,5 kD)-DTPA marcado de [^{111}ln] y saturado
con gadolinio, mientras que un agente de contraste más pequeño MPEG
(MW 2
kD)-poli-l-lisina(MW
25 kD)-DTPA marcado de [^{111}ln] y saturado con
gadolinio se eliminó de la sangre a una velocidad más rápida con
t_{1/2} igual a 6 horas. Los dos únicos sitios del cuerpo en los
que se detectó la acumulación de estas composiciones en cantidades
significativamente mayores a 1% de la dosis inyectada por gramo de
tejido fueron el bazo y los riñones. Sin embargo, la cantidad total
de agente de contraste retenido en ambos riñones y en el bazo no
excedió el 7% del agente de contraste en la composición.
La figura 3 muestra la distribución típica de 90
horas tras la inyección de MPEG(MW
5kD)-poli-l-lisina(MW
53,5 kD)DTPA, marcado de [^{111}ln] y saturado con
gadolinio. La cantidad total de la composición retenida en el
hígado, bazo y ambos riñones estaba entre 15 y 18% después de 90
horas en circulación. Los datos anteriores indican que los agentes
de contraste de esta invención no se acumulan en el sistema
reticuloendotelial de los animales después de la inyección
intravenosa en cantidades significativas y se pueden eliminar de la
circulación, presumiblemente mediante la degradación en la sangre,
la excreción de bilis y la filtración renal.
La prevención de la interacción del grupo de
referencia con proteínas plasmáticas mediante cadenas MPEG impide
la unión de las composiciones con células capaces de reconocer la
opsonina, como por ejemplo fagocitos que presentan antígenos, y con
células sanguíneas inmunocompetentes., por ejemplo células B en
reposo. En consecuencia, la formación de una respuesta inmune al
propio grupo de referencia no es probable y se evita en gran medida
la producción de anticuerpos huésped al grupo de referencia. Esto
permite el uso repetido de la composición de esta invención si es
preciso. La respuesta inmune de los animales a las inyecciones
intravenosas de las composiciones de esta invención no ha detectado
ninguna formación de anticuerpos a PEG y al poliaminoácido
acetilado.
Los solicitantes detectaron la formación de baja
afinidad, por ejemplo concentración de 800-1.000,
de anticuerpos a DTPA(Gd) en animales inyectados con
BSA-DTPA(Gd) por ensayo inmunoabsorbente
unido a enzimas (ELISA) y demostraron que virtualmente no hay
respuesta en animales inyectados con composiciones de esta
invención (Ver Fig. 4). Sustancialmente, no se encontraron
anticuerpos detectables frente a DTPA(Gd), polilisina
acilada o MPEG en animales de forma intravenosa o intraperitoneal
con composiciones de esta invención 20 días después de la
inyección.
La combinación de una vida media en sangre
prolongada y falta de inmunogenicidad es una característica
importante de esta invención.
Las composiciones de esta invención han
demostrado una capacidad sorprendentemente elevada, por ejemplo de
hasta 13% por peso, para el gadolinio y un átomo R1/Gd
excepcionalmente elevado, por ejemplo 20mM-1
seg-1. Los experimentos preliminares mostraron que
se podían obtener angiogramas de alta calidad cuando se reducían
los valores T1 de sangre al menos en 5 partes como resultado de la
inyección del agente de contraste. Como se determina mediante la
medición de los valores T1 en sangre, la concentración de Gd que
permite una reducción en 5 partes en T1 corresponde a
aproximadamente 300 nmol. Gd/ml de sangre (Ver Fig. 5). En un
estudio humano típico, esto corresponde a una inyección de
aproximadamente 20 \mumol Gd/kg del peso corporal total, que es
cinco veces inferior para dimeglumina Gd-DTPA, que
es un agente de contraste de MR frecuentemente usado.
La dependencia de dosis de la proporción de
señales de vaso/músculo revela una meseta en la dosis de saturación
de 20 \mumoles de Gd/kg de peso corporal total (Ver Fig. 6). En
esta concentración, una imagen contrastada de vasos tenía una
proporción vaso/músculo de 5,5-6, que supone un
aumento de 4 veces sobre las preparaciones conocidas con
anterioridad administradas en una concentración de 50 \mumoles
Gd/Kg del peso corporal total. Las composiciones de esta invención
eran muy superiores, es decir, mayores de 200%, a
poli-l-lisina (MW 25
kD)-DTPA(Gd) a la hora de aumentar la
proporción sangre/músculo (Ver Fig. 7). En este estudio
comparativo, se inyectó a ratas con 20 \mumoles Gd/kg de
MPEG(MW 5
kD)-poli-l-lisina(MW
25 kD)-DTPA(Gd) (cuadrados MPEG) o con 50
\mumoles Gd/Kg de polilisina(MW 25
kD)-DTPA(Gd)
(PL-Gd-DTPA, rombos (Ver Fig. 7)).
El aumento en la proporción vaso/músculo se niveló en 30 minutos y
permaneció constante durante el tiempo de observación, que era de
100 minutos. Debido a que MPEG(MW 5
kD)-poli-l-lisina(MW
25 kD)-DTPA(Gd) tenía una proporción
vaso/músculo superior, las imágenes de la anatomía vascular
resultaron considerablemente mejores tras la administración de las
composiciones de esta invención que tras la administración de
PL-Gd-DTPA.
Esto permitió una reducción drástica de la dosis
de Gd necesaria para producir imágenes angiográficas de alta
calidad en ratas (Ver Fig. 8a y 8b). En un estudio, las imágenes de
MR de la cabeza de un gato se compararon antes (Ver Fig. 8a) y
después (Ver Fig. 8b) de la inyección intravenosa de MPEG(MW
5
kD)-poli-l-lisina(MW
25 kD)-DTPA (Gd) a 30 \mumol Gd/ml. Las imágenes
se tomaron 20 minutos después de la inyección en una Signa
(instrumentos GE, 1,5 T, 3-TOF SPGR/90 SE 60/6,5
256x192 2 NEX) usando un pliegue de superficie de 3 pulgadas. Las
reconstrucciones de píxeles en brillo en 3 dimensiones de mapas de
vasos ofrecieron una proporción de señales de vaso/músculo muy
elevada, eliminando la necesidad de sustracción de fondo.
Contrariamente a los agentes de contraste conocidos, las
composiciones de esta invención inyectadas a 30 \mumoles Gd/Kg de
peso corporal total sorprendentemente dieron como resultado que los
vasos submilimétricos tenían un diámetro interior inferior a 1
mm.
Un estudio comparativo entre MPEG(MW 5
kD)-poli-l-lisina(MW
25 kD)-DTPA(Gd) y dimeglumina de gadopentato
dieron resultados significativamente mejores para
PEG-poli-l-lisina(MW
25 kD)-DTPA(Gd). En un estudio, se inyectó a
una rata de forma intravenosa
MPEG-poli-l-lisina-DTPA(Gd)
(20 \mumol Gd/kg de peso corporal total) (imagen izquierda) y a
una rata se le inyectó de forma intravenosa dimeglumina de
gadopentato (100 \mumol Gd/kg de Magnevist®, laboratorios Berlex)
(imagen derecha). Inmediatamente, es decir, 10 minutos después de la
administración intravenosa de Gd-DTPA o del
derivado de MPEG, las proporciones vaso/músculo habían aumentado de
1,4 a 2,7 y de 1,4 a 4,5 respectivamente. Treinta minutos después de
la administración, las proporciones eran 2,0 para
Gd-DTPA y 5,8 para MPEG(MW
5kD)-poli-l-lisina(MW
25 kD)-DTPA(Gd) en un valor p inferior a
0,001 (Ver Fig. 9). Gd-DTPA inicialmente produjo un
pequeño aumento en el contraste de los vasos. Sin embargo, como
Gd-DTPA se distribuyó por el espacio extravascular,
se perdió el contraste. Las composiciones de derivados de MPEG de la
invención, debido a su distribución vascular exclusiva, dieron como
resultado proporciones elevadas. Las imágenes se tomaron en una
Signa usando una pliegue de superficie de 5 pulgadas (Ver Fig.
9).
Se realizaron experimentos de imágenes con el
tórax de conejos y cerdos minipig (peso corporal 40 kg) que
demostraban la viabilidad de visualizar las arterias pulmonares y
coronarias usando las composiciones de esta invención (Ver Fig. 10a
y 10b). En un estudio, se inyectó de forma intravenosa a un conejo
MPEG(MW 2
kD)-poli-l-lisina(MW
41 kD)-DTPA(Gd) (20 \mumol Gd/ml). Las
imágenes se tomaron 20 minutos después de la inyección en una Signa
usando un pliegue de superficie de 5 pulgadas.
La utilidad de las composiciones de esta
invención para revelar anomalías de vasos en condiciones
patológicas inducidas de forma experimental se probó en conejos y
ratas. Mediante la angiografía MR TOF (tiempo de vuelo) en 3D podía
visualizarse de forma fiable el estrechamiento de la arteria
femoral en el sitio de estenosis experimental. Para la
visualización de anomalías en los vasos en progresión de tumores,
se usaron ratas con adeno carcinoma mamario R3230. En un estudio, se
muestran las imágenes de MR de la ijada izquierda y el muslo de una
rata antes (Ver Fig. 11a) y 20 minutos después (Ver Fig. 11b) de
una inyección intravenosa de MPEG (MW 5
kD)-poli-l-lisina(MW
25 kD)-DTPA(Gd) a 20 \mumol Gd/ml. Las
imágenes se tomaron en una Signa (instrumentos GE, 1,5 T, 3 TOF
SPGR/60 SE 60/6,5 256x192 2 NEX) usando un pliegue de superficie de
3 pulgadas.
Los experimentos con neoplasia en ratas usando 20
\mumol Gd/kg ofrecieron angiogramas de contraste mejorado
meramente informativos. La localización, tamaño y límites del tumor
y venas de descenso podía reconocerse fácilmente en imágenes de MR
en 3D. Por lo tanto, las composiciones de esta invención pueden
usarse para detectar neoplasia y neovascularidad tumoral, lo cual es
muy importante en la práctica clínica para la organización y la
planificación quirúrgicas.
Se realizaron estudios adicionales con animales
usando las composiciones de la invención para investigar in
vivo la formación de imágenes gamma, la biocinética, la
respuesta inmune y la formación de imágenes de resonancia
magnética.
Ratas Sprague-Dawley
(200-250 g) fueron inyectadas en la vena de la cola
usando una aguja de sonda 26 con 1-10 mg/0,5 ml de
producto I ó III, marcado de [^{111}ln] y Gd, como se describe en
el ejemplo 6. Se obtuvieron imágenes en una cámara gamma (de Ohio
Nuclear) usando un colimador de energía media paralelo 30, 60 y 120
minutos y 24 y 70 horas después de la inyección.
Se estudió la biocinética de Gd y productos (III
o I) marcados [^{111}ln] usando ratas
Sprague-Dawley de 230 a 250 g. Se inyectó a los
animales en la vena de la cola 1-10 mg de polímero
(60-70 \muCi/kg, 2 \mum/kg Gd) usando una aguja
de sonda 26, anestesiándolos con éter. Se detectó una ligera
variación en la cinética dentro de estos límites de dosis. La
biodistribución del producto marcado se determinó en 16 órganos, es
decir, tejidos de órganos, midiendo la radioactividad en cada
momento indicado en los gráficos. Se usaron dos ratas por cada
punto (Ver Fig. 3).
Una muestra de 0,2 ml de producto (0,5 mmol
Gd/kg, es decir, una dosis de formación de imágenes de 20 veces) se
inyectó por vía intravenosa o intraperitoneal en ratones (n=2)
C_{3}H/He. Los animales de control recibieron
BSA-DTPA(Gd) una cantidad igual de
Gd-DTPA, preparada como se describe en Hnatowich
D.J y col. Science 1979, en el mismo volumen de solución salina. Se
observó a los animales durante dos semanas por si mostraban signos
de toxicidad. No se detectaron signos de toxicidad. Después del
periodo de 2 semanas, se recogió sangre de la vena de la cola de
los animales y se detectó una concentración de anticuerpos mediante
un ensayo inmunoabsorbente unido por enzimas (ELISA). Las placas
ELISA fueron recubiertas con
ovalbúmina-DTPA(Gd),
ovalbúmina-MPEG, BSA o
poli-l-lisina acetilada (MW 70.000).
Sólo partes de la placa recubierta con
ovalbúmina-DTPA(Gd) mostraron un enlace
específico de inmunoglobalinas de ratón.
Para visualizar vasos sanguíneos en animales de
experimentos, se inyectó 0,005-0,05 mmol Gd/kg de
producto II en ratas Sprague-Dawley macho
(260-360) usando una aguja de mariposa de sonda 26
en 0,3 ml de solución salina estéril bajo anestesia inducida por
barbitúricos. Se aplicaron pliegues de superficie de 5 pulgadas
para dos animales y de 3 pulgadas para un animal (Ver Fig. 8a y 8b y
Fig. 9).
En experimentos con conejos y cerdos minipig, se
intubó a los animales. La anestesia se realizó mediante el uso de
un isoflurano inhalado. La electrocardiografía se monitorizó
constantemente. Se inyectó 0,03 mmol Gd/kg del producto II mediante
un catéter insertado en la arteria femoral izquierda. Se usó un
pliegue de superficie de extremidades para los estudios con conejos;
se aplicó un pliegue de cabeza en los estudios con cerdos minipig
(Ver Fig. 10a y 10b).
En estudios con ratas se obtuvieron 48 imágenes
de cortes sagitales de General Electric CSI (grosor = 0,7 mm)
usando una secuencia de pulso SPGR TOF en 3D
T1-ponderado (1,5 T, SE 50/6,5, ángulo de giro 60).
En estudios con conejos y cerdos minipig se retrataron hasta 80
cortes (Ver Fig. 10a y 10b).
Las composiciones de esta invención se pueden
usar en la obtención de imágenes médicas y administrar de forma
intravenosa o mediante inyección de bolus. Las imágenes vasculares
son mejoradas debido a cambios en la relaxividad o radioactividad
de la sangre. Los agentes de contraste se pueden usar para la mejora
de imágenes vasculares de grandes vasos, como por ejemplo arterias
y venas, o para visualizar vasos pequeños, como por ejemplo
capilares submilimétricos. La resolución de las imágenes se aumenta
proporcionando información más detallada. Los agentes de contraste
pueden usarse para la representación de la anatomía vascular, la
determinación de estenosis de vasos, la vascularidad anormal, por
ejemplo neovascularidad, perfusión normal, defectos de perfusión u
obtención de imágenes funcionales del cerebro.
Las composiciones de esta invención pueden
comprender también un agente terapéutico, como por ejemplo una o
más especies de medicamentos citostáticos, analgésicos,
antiinflamatorios, antivíricos, antifúngicos o psicotrópicos. Las
composiciones de esta invención que incluyen agentes terapéuticos
son beneficiosas porque la prolongada circulación de la composición
en la sangre prolonga considerablemente el efecto terapéutico del
agente terapéutico. Para lograr un efecto terapéutico, el agente
terapéutico debe separarse lentamente o dejar al vehículo
polimérico. Esto se puede conseguir mediante la unión o colocación
separada de una membrana semipermeable alrededor del vehículo para
formar una vesícula, permitiendo que el medicamento concentrado en
las zonas próximas al vehículo polimérico se difunda lentamente a
través de la membrana y dentro del espacio intravascular. Las
composiciones de esta invención que incluyen agentes terapéuticos
se pueden administrar de forma intravascular o por inyección de
bolus.
Las composiciones de esta invención se describen
en los siguientes ejemplos y en el apartado de experimentos que
componen la forma de realización de la presente invención y no se
debe pensar que limitan el alcance de la invención.
Disolver 6,5 g de MPEG (MW 2000) en 25 ml de
dioxano libre de peróxido a 60ºC y mezclar con una solución
precalentada de 1,6 g de anhídrido succínico en un exceso molar de
5 partes en 25 ml de dioxano. Disolver 300 mg de
N,N'-dimetilaminopiridina como catalizador en 10 ml
de dioxano y añadir a la mezcla de la reacción. Incubar la mezcla
hasta 90ºC durante 5 horas.
Eliminar el dioxano mediante evaporación
giratoria a 40ºC y disolver el sólido en una cantidad mínima, por
ejemplo 7-10 ml, de cloruro de metileno, enfriar a
-10ºC y filtrar con un filtro de vidrio poroso para eliminar el
precipitado de ácido succínico. Añadir 300 ml de éter etílico por
cada 5 ml de filtrado y mantener la solución turbia a -20ºC para
precipitar el succinato de MPEG. Filtrar el precipitado con un
filtro de vidrio poroso y lavar con éter etílico.
Disolver 5,6 g del precipitado seco con 40 ml de
agua y pasar por una resina AG 50W X8 (15 g de resina húmeda
tratada con 50% de etanol y agua desionizada) en un filtro de
vidrio poroso de 30 micrómetros para eliminar el catalizador
restante.
Se obtuvo una muestra de 5 g de succinato de
MPEG2000 (86% de producto) como sólido amorfo blanco. El Rf era de
0,8 en placas 60 TLC de gel de sílice (de EM Sciences)
(desarrollado mediante una solución de cloroformo:metanol:15mM CaC12
en una proporción de 65:35:2). El Rf era de 0,5 en placas
RP-18 TLC (de EM Sciences) en el mismo sistema
después de teñirlo con vapor de yodo.
Disolver el producto MPEG de succinato
liofilizado (2 g, 0,5 mmol) en 10 ml de dioxano libre de peróxidos,
que haya pasado la prueba de sensibilidad a los peróxidos.
Secuencialmente, añadir 0,11 g N-hidroxisuccinimida
(Fluka Chemie AG, Buchs, Suiza) y 0,15 g (0,55 mmol, 1,1 de exceso
molar) de diciclohexilcarbodiimida (Fluka Chemie AG, Buchs, Suiza)
a la mezcla. Agitar la mezcla de reacción durante 6 horas a
temperatura ambiente y enfriar en hielo. Eliminar la
diciclohexilurea mediante filtrado con un filtro de vidrio poroso o
un filtro de fibra de vidrio GF-C. Eliminar el
dioxano mediante un evaporador giratorio y añadir 10 ml de cloruro
de metileno y mezclar con 100 ml de éter agitándolo continuamente.
Almacenar el precipitado a -20ºC por la noche. Separar el producto
mediante filtrado y recristalizar a partir de una mezcla de
dicloroetano:éter en una proporción de 1:9.
El porcentaje del éster activado en sólido se
determinó mediante la solubilización de 1,5 mg de producto en DMSO
anhidro (100 \mul). Añadir 10 \mul de la solución a 800 \mul
de fosfato sódico 0,05 M (pH 8,5). Registrar la absorbencia a 260
nm durante 30 minutos. Se produjo un aumento en la absorbencia
debido a la hidrólisis del éster activado (e260=8260 [mol
cm]-1 para N-hidroxisuccinimida a
pH 8,5). Se observó que aproximadamente 75% de la composición
obtenida era un éster activado. El Rf era de 0,95 en el gel de
sílice 60 (desarrollado mediante una solución de
cloroformo:metanol:15mM CaC12 en una proporción de 65:35:2) después
de la visualización UV con vapores de amoniaco.
Disolver 816 mg de
poli-l-lisina (PL hidrobromuro, MW
67.700 (Sigma Chemical Co), DP:324 residuos de
\hbox{l-lisina,} grupos aminos épsilon 25
mM de l- lisina, hidrobromuro) en 38 ml de 0,1 M de carbonato (pH
8,7). Disolver 3,1 g de MPEG éster succinilhidroxisuccimidil
(MPEGOSu, MW 2,200) en 15 ml de DMSO seco. Añadir la solución de
MPEGOSu gota a gota a la solución de PL agitándolo e incubar la
mezcla durante 2 horas agitándolo.
El grado de modificación se comprobó mediante la
dosificación de ácido trinitrobenzenosulfónico, como se usó en
Spadaro, A.C.C. y col. Anal. Biochem. 96:317 (1979). Mezclar 10
\mul de la muestra, 100 \mul de agua, 100 \mul de 10% tritón
X-100, 100 \mul de 1M de tetraborato de sodio y
0,35 ml de 2 mg/ml de TNBS en un tubo. Incubar durante 45 minutos.
Detener la incubación añadiendo 2,3 mg/ml de sulfato sódico en 5M
NaH_{2}PO_{4}. La absorbencia se determinó a 420 nm y se
comparó con la de PL. Se determinó que la cantidad de grupos
modificados era igual al 30%.
Se preparó una suspensión de un anhídrido cíclico
de DTPA (0,5g/ml en DMSO) añadiendo porciones de 200 \mul (1,5 g
de cDTPA total) a la solución de PL y MPEG y se ajustó el pH a 8
con 5 N NaOH después de cada adición. Se volvió a comprobar la
cantidad de grupos aminos dosificables y no se detectó ningún grupo
libre de aminos.
Diluir la mezcla de reacción de
MPEG-poli-l-lisina-DTPA
(MPEG-PL-DTPA) a 300 ml con 0,2 M
de citrato sódico (pH 6), filtrar con un filtro de nilón de 45\mu
y dializar una célula transparente usando una membrana con corte de
100 kD (para proteínas globulares). Concentrar hasta
30-50 ml y diluir a 300 ml con citrato. Repetir el
procedimiento 2 veces usando agua en lugar de citrato en la última
fase. Concentrar la solución hasta 15 ml y liofilizar.
Alternativamente, se puede filtrar la muestra a través de una
membrana estéril de 0,2 \mum y almacenar a 4ºC. A continuación se
muestra una tabla del análisis químico teórico y real:
| Análisis químico | |||
| Teórico | %C 46,7 | %H 7,0 | %N 8,0 |
| Real | %C 41,2 | %H 6,4 | %N 9,7 |
Disolver 40 g de MPEG (MW 5000) en 250 ml de
dioxano libre de peróxidos a 60ºC y mezclar con una solución
precalentada de 8 g de anhídrido succínico (exceso molar de 10
veces) en 50 ml de dioxano. Disolver 900 mg de
N,N'-dimetilaminopiridina como catalizador en 10 ml
de dioxano y añadir a la mezcla de reacción. Incubar la mezcla a
90ºC durante 8 horas.
Eliminar el dioxano mediante evaporación
giratoria a 40ºC y disolver el sólido en 20 ml de cloruro de
metileno, enfriar hasta -10ºC y filtrar con un filtro de vidrio
poroso para eliminar el precipitado de ácido succínico. Añadir 300
ml de éter etílico por cada 10 ml de filtrado y precipitar la
solución turbia de succinato de MPEG a -20ºC. Filtrar el
precipitado con un filtro de vidrio poroso (10-20
\mu, Corning) y lavar con éter etílico frío.
Diluir 35 g del precipitado seco con 100 ml de
agua y pasar por una resina AG 50W X8 (25 g de resina húmeda
tratada con 50% de etanol y agua desionizada) en un filtro de
vidrio de 100 micrómetros para eliminar el catalizador restante.
Para reducir la cantidad que contamina los peróxidos, tratar la
solución de succinato de MPEG2000 en agua con 10 nM de borohidruro
de sodio durante 4 horas a temperatura ambiente. Liofilizar la
solución, volver a disolver la solución en cloruro de metileno
(0,1g/ml) y sedimentar de nuevo la solución añadiendo éter
dietílico. Se obtuvo una muestra de 30 g de succinato de MPEG5000
(un 83% de producto) como sólido amorfo blanco. El Rf era de 0,5 en
RP-18 TLC en placas (de EM Sciences) (desarrollado
en una solución de cloroformo:etanol:agua en una proporción de
65:25:4) después de teñirlo con vapor de yodo.
Disolver 5,29 g (1 mmol) del producto de
succinato de MPEG liofilizado en 40 ml de tetrahidrofurano libre de
peróxidos, que haya pasado la prueba de sensibilidad a los
peróxidos, y añadir 0,17 g de N-hidroxisuccinimida
(1,5 mmol, Fluka Chemia AG, Buchs, Suiza) y 0,3 g (1,1 mmol) de
diciclohexilcarbodiimida (Fluka). Agitar la mezcla de reacción
durante 6 horas a temperatura ambiente y, a continuación, enfriar
en hielo. Eliminar la diciclohexilurea mediante filtrado con un
filtro de vidrio poroso (20-30 \mu, Corning).
Eliminar el tetrahidrofurano en un evaporador giratorio, añadir 10
ml de cloruro de metileno y mezclar con 100 ml de éter agitándolo
continuamente. Precipitar a -20ºC durante la noche. Separar el
producto mediante filtrado y recristalizar a partir de una mezcla
de dicloroetano:éter en una proporción de 1:9.
El porcentaje del éster activado en sólido
obtenido se determinó como se describe en el ejemplo 1.
Disolver 620 mg de
poli-l-lisina (PL hidrobromuro, MW
41.100, (Sigma Chemical Co.) DP: 196 residuos de
l-lisina, 25 mM grupos de aminos épsilon de
l-lisina, hidrobromuro) en 112 ml de 0,1 M de
carbonato (pH 8.7) Disolver 2,9 g de éster de metoxipolietilen
glicolsuccinil-hidroxisuccimidil (MPEGOSu, MW 5.200)
en 5 ml de DMSO seco. Añadir la solución de PEGOSu gota a gota a la
solución de PL agitándolo e incubar la mezcla durante 2 horas sin
dejar de agitar. Comprobar el grado de modificación mediante
dosificación de ácido trinitrobenzenosulfónico como se describe en
el ejemplo 1.
Preparar una suspensión de un anhídrido cíclico
de DTPA (0,5g/ml en DMSO) añadiendo porciones de 200 \mul (1,5 g
de cDTPA total) a la solución de MPEG-PL y ajustar
el pH a 8 con 5 N NaOH después de cada adición. Alternativamente se
puede preparar la solución mezclando 2,5 mmol de DTPA, 0,5 mmol de
N-hidroxisulfosuccinimida (pH 4) y 0,5 mmol de etil
diaminopropilcarbodiimida en 50 ml de agua. A continuación se mezcla
la solución durante 3 minutos y se añade a la mezcla la solución de
MPEG-PL (pH 8). Comprobar la cantidad de grupos
aminos dosificables. (No se detectó ningún grupo amino
dosificable).
Diluir la mezcla de reacción a 300 ml con 0,2 M
de citrato sódico (pH 6), filtrar con un filtro de nilón de 45\mu
y dializar una célula transparente usando una membrana con corte de
50 kD (para proteínas globulares). Concentrar hasta
30-50 ml y diluir a 300 ml con citrato. Repetir el
procedimiento 2 veces usando agua en lugar de citrato en la última
fase. Concentrar la solución hasta 15 ml y liofilizar.
Alternativamente, filtrar la muestra a través de una membrana
estéril de 0,2 \mum y almacenar a 4ºC. A continuación se muestra
una tabla del análisis químico teórico y real:
| Análisis químico | |||
| Teórico | %C 51,2 | %H 8,2 | %N 2,7 |
| Real | %C 46,4 | %H 7,8 | %N 3,7 |
Realizar la preparación según los procedimientos
del ejemplo 1, usando poli-l-lisina
con un MW medio de 110.000.
Realizar la preparación según los procedimientos
de los ejemplos 1 y 2, usando
poli-l-lisina con un MW medio de
87.400 y MPEG (MW 5000) succinil succinato.
Disolver 50 mg de
N-\varepsilon-benzoloxicarbonil-poli-l-lisina
en 3 ml de dimetilformamida y trátelo con 10 mg de
N-succinimidil 3-(2-piridilditio)
propionato en presencia de 20 \mul de trietilamina. Incubar el
producto durante la noche y precipitar añadiendo 20 ml de agua.
Secar por congelación el producto precipitado y dividir en dos
partes iguales. Volver a disolver la primera parte en
dimetilformamida (0,5 ml) y tratar durante 20 minutos con 10 mM
beta-mercaptoetanol y precipitar añadiendo 10 ml de
agua saturada con nitrógeno y secar por congelación. Disolver de
nuevo este producto junto con la segunda parte del compuesto en 2
ml de dimetilformamida y añadir 5 \mul de trietilamina. Agitar la
mezcla a temperatura ambiente durante la noche. Precipitar el
producto y lavar con agua, a continuación disolver de nuevo el
producto en 1 ml de un HBr en una solución de ácido acético
cristalizado, incubar durante 1 hora y mezclar con 20 ml de éter
etílico destilado. Lavar el precipitado con éter y convertirlo en
un derivado de MPEG y, después, en un derivado de
MPEG-DTPA como se describe en el ejemplo 1, usando
DMFA en lugar de DMSO para solubilizar
MPEG-succinil succinato y DTPA anhídrido
cíclico.
Preparar 100-500 \mul de
solución de citrato [^{111}ln] (pH 4,5) con actividad total de
30-500 \muCi. Disuelva 1 mg de productos I, II,
III o IV como se ha preparado anteriormente en solución salina de
equilibrio de citrato (CBS) de 10 mM de citrato, 0,15 M NaCl (pH
6,6). Mezclar las soluciones e incubar durante 30 minutos a
temperatura ambiente. Purificar mediante diálisis con 4 cambios de
100 ml de CBS. Se halló que el producto dializado incorporaba
98-100% de la radioactividad.
Preparar 100 ml de 20 mM de solución GdCl_{3}
en 0,2 M de citrato (pH 5,5). Disolver 0,1-100 mg
de productos I, II, III o IV en 1,5 ml de agua y poner en bolsas de
diálisis con poros lo suficientemente pequeños para retener
moléculas mayores de 10 kD. Poner las bolsas de diálisis en la
solución de citrato-Gd durante 8-10
horas. A continuación, sustituir la solución de
citrato-Gd por 0,2M de citrato y, por último, con
100 mM de solución salina (la osmolaridad es 300 mOsm). Esterilizar
mediante filtrado y liofilizar los productos marcados de
gadolinio.
Preparar según los procedimientos del ejemplo 4
y, a continuación, transferir las bolsas de diálisis a la solución
de citrato-Gd como se describe en el ejemplo 7.
Se preparó una solución de productos marcados de
gadolinio o [^{111}ln] y de gadolinio en 50-100
mg de polímero/ml de 5 mM de citrato sódico (pH 6). Cargar la
solución en una columna de Sephadex A-25 (1 x 40 ml,
5 mM de citrato, pH 6) y eluir material no enlazado con el mismo
reactivo que se ha recogido, dializado con agua y liofilizado.
Aunque los ejemplos anteriores presentan pautas
generales y específicas para la preparación y uso de los agentes de
contraste de esta invención, un experto en la materia puede reunir
moléculas candidatas adicionales y comparar sus características con
las que reivindica esta invención.
Los radios hidrodinámicos aparentes se
determinaron usando filtración en gel en una columna de Ultragel
AcA-34 (de LKB-IBF, Francia) (1x40
ml) y LALLS (analizador de partículas submicrónicas
N-4MD de Coulter, Hialeah, FL).
Se prepararon soluciones de productos
I-IV en fórmulas marcadas de Gd en 1 mg de
polímero/ml y se determinaron los tamaños mediante el análisis de
peso del procesador de distribución de tamaño (SDP) en un ángulo de
90º dispersando antes y después de la formación de los complejos Gd
(Ver Tabla 1). El cálculo de los pesos moleculares se basó en la
determinación del grado de modificación de PL con MPEG, como se
describe en el ejemplo 1, asumiendo que en la segunda fase de la
modificación se sustituyeron todos los grupos aminos por DTPA.
| Determinación del tamaño y el peso molecular | ||||
| Producto | Diámetro | MW (LALLS) | MW aparente | MW calculado |
| (LALLS) | (AcA34) | |||
| I | 15,5\pm1 nm | 171 kD | 200 kD | 417 kD |
| II | 16,4\pm4 nm | 150 kD | 280 kD | 412 kD |
| III | 38,1\pm10,5 nm | ND | >380 kD | 860 kD |
| IV | 53\pm12 nm | ND | >380 kD | 960 kD |
| Nota: La columna AcA 34 se precalibró con marcadores de peso molecular de | ||||
| proteínas globulares; ND: no hay datos disponibles |
El contenido de Gd se determinó de forma
dosificada, (como en Korbl, J. Pribil, R., análisis químico
45:101-103 (1956)) o mediante espectroscopia de
emisión de plasma (de Gallbraith Labs, Knoxville TN). El contenido
de Gd no excedió el 13,18% por peso (0,8 mmol Gd/g polímero,
producto I). Normalmente, los productos II, III y IV contenían
aproximadamente 5% Gd por peso (0,32 mmol Gd/g polímero).
La determinación de los tiempos de relajación de
los protones H_{2}O se llevó a cabo usando un espectrómetro NMR
pulsado Minispec (IBM PC/20) a 20 MHz, 38ºC. Se diluyeron, como
convenía, productos marcados de Gd con CBS y se midieron los
parámetros de T1 y T2. Se usaron las secuencias de recuperación de
la inversión y de pulso CPMG para determinar los valores T1 y T2
respectivamente. Se registraron las dependencias de concentración
de los índices de relajación 1/T1 y 1/T2 y se ajustaron usando
regresión lineal (r=0,99). Los valores R1 y R2 se determinaron como
valores de pendiente (Ver Tabla 2).
| Relaxividades molecular y atómica | |||||
| Producto | R1 | R2 | R1/Gd | R2/Gd | (mMol-1 s-1) |
| I | 5061 | 5053 | 18,1 | 16,9 | |
| II | 2076 | 2035 | 17,6 | 17,1 | |
| IV | 4565 | 6547 | 18,5 | 19,0 |
Se usaron valores calculados de pesos moleculares
de productos marcados de Gd para determinar la relaxividad
molecular.
En las siguientes reivindicaciones se incluyen
otras formas de realización.
Claims (33)
1. Una composición médica biocompatible que
incluye un vehículo polimérico caracterizada porque además
comprende una pluralidad de cadenas protectoras unidas al vehículo
polimérico y uno o más grupos de referencia unidos al vehículo
polimérico y porque el citado grupo de referencia es una complexona
o un grupo terapéutico, protegiendo las cadenas protectoras al
vehículo polimérico y al grupo de referencia del contacto con otras
macromoléculas mediante la unión extensiva de agua con las cadenas
protectoras.
2. Una composición según la reivindicación 1,
caracterizada además porque tiene la fórmula:
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{
\+ O \+ \+ O\+\cr \+ \hskip0.5mm || \+ \+ ||\+\cr
[[-- \hskip-2mm \+C--NH-- \hskip-2mm \+CH--][-- \hskip-2mm \+
C--NH-- \hskip-2mm \+CH--]] _{k} \cr \+
\+ \hskip1mm | \+ \+ \hskip1mm |\cr \+ \+ R _{1}
\+ \+
R _{2} \cr}
donde los grupos
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{
\+ O \+ \+ \+ \+ O\+\cr \+ \hskip0.5mm || \+ \+ \+
\+ \hskip0.5mm ||\+\cr
[-- \hskip-2mm \+C--NH-- \hskip-2mm \+CH--]
\+ \hskip0.5cm y \hskip0.5cm \+
[-- \hskip-2mm \+C \hskip-0.3mm --NH-- \hskip-2mm \+CH--]\cr
\+ \+ \hskip0.5mm | \+ \+ \+ \+ \hskip0.5mm |\cr
\+ \+ R _{1} \+ \+ \+ \+
R _{2} \cr}
se pueden unir en cualquier orden, donde K es
100-560;
R_{1} es
(CH_{2})_{4}NHCO(CH_{2})_{n}COOCH_{2}CH_{2}A-B-OR_{3},
donde n es 2-6;
A es [OCH_{2}CH_{2}]_{x} donde x es
15-220;
B es [OCH_{2}CH_{2}]_{x} o
[OCH(CH_{3})CH_{2}]_{y}, donde y + x es
17-220;
R_{2} es un grupo quelante y
R_{3} es H, (CH_{2})_{y}CH_{3} o
(CH_{2})_{y}COOH e y es 0-7.
3. Una composición según la reivindicación 1,
caracterizada además porque el vehículo polimérico es un
poliaminoácido, polietileneiaminas, sacáridos naturales,
polisacáridos aminados, oligosacáridos aminados, poliamidoamino,
ácidos poliacrílicos o polialcoholes.
4. Una composición según la reivindicación 3,
caracterizada además porque el vehículo polimérico es un
poliaminoácido que tiene 20-560 unidades de
aminoácidos.
5. Una composición según la reivindicación 3,
caracterizada además porque el vehículo polimérico es un
poliaminoácido que es un polímero de una sola especie de
aminoácidos.
6. Una composición según la reivindicación 3,
caracterizada además porque el vehículo polimérico es un
poliaminoácido que es un polímero de, al menos, dos especies
diferentes de aminoácidos.
7. Una composición según la reivindicación 3,
caracterizada además porque el vehículo polimérico es un
poliaminoácido que es un copolímero de bloque.
8. Una composición según la reivindicación 3,
caracterizada además porque el vehículo polimérico es un
poliaminoácido que comprende fragmentos de poliaminoácidos unidos
por enlaces divisibles, preferiblemente enlaces
\hbox{S-S.} 9. Una composición según la reivindicación 3,
caracterizada además porque el vehículo polimérico es un
poliaminoácido que es poli-l-lisina,
poli-d-lisina,
poli-alfa,
beta-(2-aminoetil)-D, L aspartamida
o ácido poli-l-aspártico.
10. Una composición según cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, caracterizada además porque al
menos una de las cadenas protectoras es polietilen glicol,
metoxipolietilen glicol, metoxipolipropileno glicol, un copolímero
de polietilen glicol, metoxipolietilen glicol o metoxipolipropileno
glicol o un derivado de cualquiera de ellos.
11. Una composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 9, caracterizada además porque al menos
una de las mencionadas cadenas protectoras es un copolímero de
bloque de polietilen glicol y uno de poliaminoácidos,
polisacáridos, poliamidoaminas, polietilenaminas o
polinucleidos.
12. Una composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 9, caracterizada además porque al menos
una de las cadenas protectoras es un copolímero de polietilen
glicol que comprende un monoéster de un ácido dicarboxílico.
13. Una composición según cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, caracterizada además porque al
menos una de las cadenas protectoras tiene un peso molecular de
500-10.000 daltons.
14. Una composición según cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, caracterizada además porque el
grupo de referencia es una complexona que une cationes.
15. Una composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 13, caracterizada además porque el
grupo de referencia es un grupo piridilditioacil o un grupo diazo-
o hidrazo-.
16. Una composición según la reivindicación 15,
caracterizada además porque el grupo de referencia es un
grupo piridilditioacil que es un grupo
N-(2-piridilditio)propionil,
N-hidroxisuccinimidil,
N-hidroxisulfosuccinimidil, imidazolil,
benzotriazolil, aminoalquilo, aldehído, tioaiquil, tiolano, acilo
haloideo, alquilo haloideo o fenilo haloideo.
17. Una composición según la reivindicación 15,
caracterizada además porque el grupo de referencia es un
grupo diazo- o hidrazo- que es un grupo
4-hidrazionoxietil,
4-hidrazinobencil, diasirinil, azidofenil o
acidoalquilo.
18. Una composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 13, caracterizada además porque el
mencionado grupo de referencia es una molécula que contiene
flúor.
19. Una composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 13, caracterizada además porque el
mencionado grupo de referencia comprende un agente de contraste,
preferiblemente un elemento paramagnético o superparamagnético.
20. Una composición según la reivindicación 14,
caracterizada además porque comprende un radionucleido de
emisión de rayos alfa-, beta- o gamma- unido al mencionado grupo
quelante.
21. Una composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 13, caracterizada además porque el
mencionado grupo de referencia comprende un agente terapéutico,
preferiblemente un medicamento citostático, antibiótico, hormonal,
analgésico, psicotrópico, antiinflamatorio, antivírico o
antifúngico o una linfocina.
22. Una composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 13, caracterizada además porque el
grupo de referencia es un polímero que contiene silicio, azufre o
carbono, un coloide de óxido de silicio, una partícula coloidal o
un precipitado.
23. Una composición según la reivindicación 22,
caracterizada además porque el grupo de referencia es un
precipitado coloidal que incluye un óxido, sulfuro o hidróxido de
un elemento de transición o lantánido con números atómicos
21-29, 42, 44 ó 57-71.
24. Una composición según cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, caracterizada además porque
comprende un grupo diana, preferiblemente un anticuerpo, fragmento
de un anticuerpo, anticuerpo quimérico, enzima, lectina o un
ligando sacárido; estando unido el grupo diana al mencionado
vehículo polimérico, a una de las cadenas protectoras o a
ambos.
25. Un procedimiento para preparar una
composición según la reivindicación 1, que comprende la unión del
mencionado vehículo polimérico con la mencionada pluralidad de
cadenas protectoras para producir un vehículo protegido y la unión
del mencionado vehículo polimérico protegido con el mencionado grupo
de referencia.
26. Un procedimiento según la reivindicación 25
en el que al menos una de las mencionadas cadenas protectoras
comprende un análogo de metoxipolietilen glicol y la unión del
mencionado vehículo polimérico con el mencionado análogo produce un
gel semiestable.
27. Un procedimiento según la reivindicación 26
que comprende además la unión de un grupo diana al mencionado
vehículo, a la pluralidad de cadenas protectoras o a ambos de la
mencionada composición.
28. Una composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 24 para su uso en el tratamiento de una
enfermedad mediante la administración de una cantidad
terapéuticamente eficaz de la mencionada composición a un paciente y
la exploración del paciente usando una técnica de formación de
imágenes que puede detectar al mencionado grupo de referencia para
obtener una imagen visible de la distribución de la mencionada
composición.
\newpage
29. Uso de una composición según cualquiera de
las reivindicaciones 1 a 24 para la fabricación de un medicamento
para tratar una enfermedad mediante la administración de una
cantidad terapéuticamente eficaz del mencionado medicamento a un
paciente y la exploración del paciente usando una técnica de
formación de imágenes que puede detectar al mencionado grupo de
referencia para obtener una imagen visible de la distribución del
mencionado medicamento.
30. Una composición según la reivindicación 28 o
uso de una composición según la reivindicación 29, en la que la
mencionada administración es por inyección intravascular o
intraperitoneal.
31. Una composición según la reivindicación 28 o
uso de una composición según la reivindicación 29, en la que la
mencionada técnica de formación de imágenes es imágenes por
resonancia magnética, imágenes de medicina nuclear, tomografía de
emisión positrónica o tomografía computerizada de emisión simple de
fotones.
32. Una composición según la reivindicación 28 o
uso de una composición según la reivindicación 29, en la que el
tratamiento de una mencionada enfermedad comprende la exploración
de un vaso submilimétrico del paciente para obtener una imagen
visible del vaso submilimétrico.
33. Una composición según la reivindicación 28 o
uso de una composición según la reivindicación 29, en la que el
mencionado grupo de referencia comprende gadolinio suministrado en
una dosis inferior a 0,05 mmol Gd/kg de peso corporal del
paciente.
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