ES2118756T5 - Estimuladores de hematopoyesis de multiples dominios. - Google Patents
Estimuladores de hematopoyesis de multiples dominios.Info
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- C07K2319/75—Fusion polypeptide containing domain for protein-protein interaction containing a fusion for binding to a cell surface receptor containing a fusion for activation of a cell surface receptor, e.g. thrombopoeitin, NPY and other peptide hormones
Abstract
SE SUMINISTRAN NUEVAS PROTEINAS DE FUSION, IL3-X O X-IL3, EN DONDE X ES UNA LIMFOQUINA FUNDIDA AL IL3.
Description
Estimuladores de hematopoyesis de múltiples
dominios.
La presente invención se refiere a moléculas de
fusión caracterizadas por la presencia de interleuquina 3 [IL3]
fusionada a IL3 con o sin una secuencia adaptadora. La molécula de
fusión puede caracterizarse por tener la actividad habitual de ambos
péptidos que forman la molécula de fusión o puede caracterizarse
además por tener una actividad biológica o fisiológica mayor que
simplemente la función aditiva de la presencia de IL3 o X. La
molécula de fusión puede proporcionar también inesperadamente un
efecto incrementado sobre la actividad de cada una de las proteínas
de fusión o una actividad diferente de la esperada por la presencia
de IL3 o X.
La nueva proteína de fusión
NH_{2}-IL3-X o
NH_{2}-X-IL3 proporcionada por la
presente invención es una proteína homogénea sustancialmente libre
de asociación con otros materiales proteicos de mamífero. La entidad
IL3 es IL3 nativa. La entidad X de las fórmulas anteriores
representa IL3, la secuencia de ADN codificadora de la cual está
fusionada en marco con el ADN que codifica la región de IL3, bien
directamente o mediante un adaptador. Por ``fusionadas en marco'' se
quiere significar que no existe un terminador de la traducción entre
los marcos de lectura de las proteínas IL3 y X. Según es utilizado
en la presente, el término ``directamente'' define la fusión de las
secuencias de ADN que codifican X e IL3 sin un adaptador peptídico.
La entidad X puede estar fusionada al extremo 5' ó 3' de la molécula
de ADNc de IL3.
Las secuencias de ADN y proteínas de la molécula
de IL3 están publicadas y pueden ser construidas por una variedad de
técnicas actualmente estándar en el oficio. Ver, por ejemplo, la
publicación de PCT WO 88/00598, publicada el 28 de Enero de
1988.
La fusión de la secuencia de IL3 a la secuencia
de X puede realizarse mediante la utilización de vectores
intermediarios según se describe en los ejemplos posteriores.
Alternativamente, la secuencia de IL3 puede ser insertada
directamente en un vector que contiene la región que codifica la
proteína X, o viceversa. Las técnicas para clonar secuencias de ADN
en fagos o plásmidos son conocidas por los expertos en la
materia.
Pueden utilizarse conectores y adaptadores para
unir las secuencias de IL3 y X, así como para reemplazar secuencias
perdidas, en los lugares en que el sitio de restricción empleado
está interno en la región de interés. Los adaptadores que unen las
dos moléculas están diseñados preferiblemente para que permitan a
las proteínas IL3 y X plegarse y actuar independientemente una de
otra. La secuencia de un adaptador ejemplar utilizado en los
ejemplos presentes estaba basada en una secuencia encontrada en la
transcriptasa inversa del VIH-1, y se cree que une
el dominio C-terminal de esa proteína al penúltimo
dominio. Se sabe que este péptido es susceptible a proteolisis suave
y por tanto se cree que está en la superficie externa de la
proteína. La secuencia está altamente cargada, lo que incrementará
la solubilidad de cualquier proteína que la contenga. En la fusión
de las moléculas de IL3 y X, pueden insertarse entre las dos
moléculas múltiples copias de la secuencia del adaptador de
elección. La presente invención no está limitada, por tanto, por la
forma, tamaño o número de las secuencias adaptadoras empleadas. Otra
secuencia adaptadora ejemplar útil para producir las proteínas de
fusión de la presente invención es Gly Ser Gly Ser Glu Asp Cys
Glu Asp Ser Gly Ser Gly. De hecho, el único requisito para la
secuencia adaptadora es que no interfiera funcionalmente de manera
adversa con el plegamiento de los componentes individuales de la
molécula de fusión. Además, tales adaptadores pueden estar ausentes
completamente en una molécula
NH_{2}-IL3-X o
NH_{2}-X-IL3 fusionada
directamente.
Los vectores para utilizar en la construcción de
las moléculas de fusión y en el método de expresión de las nuevas
proteínas de fusión NH_{2}-IL3-X o
NH_{2}-X-IL3, forman también parte
de esta invención. Los vectores que contienen las secuencias de ADN
de NH_{2}-IL3-X o
NH_{2}-X-IL3 que codifican las
proteínas de fusión de la invención o los vectores que incorporan
secuencias modificadas según se describe en la presente, son también
realizaciones de la presente invención y útiles para la producción
de las proteínas NH_{2}-IL3-X o
NH_{2}-X-IL3.
Los vectores empleados en el método contienen
también secuencias reguladoras seleccionadas en asociación operativa
con las secuencias de ADN codificadoras de la invención y son
capaces de dirigir la replicación y expresión de las mismas en
células huésped seleccionadas. La utilización de regiones
reguladoras para controlar la transcripción de los genes de fusión
puede permitir el crecimiento de las células huésped hasta una
densidad elevada sin o con bajos niveles de expresión del gen de
fusión, y posteriormente la inducción de la expresión cambiando las
condiciones del entorno, tales como nutrientes, temperatura y
similares. Se proporcionan también por la presente invención células
huésped transformadas con tales vectores para utilización en la
producción de NH_{2}-IL3-X o
NH_{2}-X-IL3 recombinantes.
La presente invención abarca también las nuevas
secuencias de ADN de fusión, libres de asociación con secuencias de
ADN que codifican otras proteínas de primates, y que codifican las
proteínas de fusión NH_{2}-IL3-X
o NH_{2}-X-IL3. Las secuencias de
ADN pueden ser fusionadas en marco bien directamente o mediante un
adaptador para llevar las secuencias a una proximidad entre sí
preferida. Las secuencias de ADN que codifican los polipéptidos IL3
y X pero que difieren de la IL3 o de X que existen de forma natural
en la secuencia de los codones, debido a las degeneraciones del
código genético o a variaciones alélicas (cambios de bases que
tienen lugar de forma natural en la población de la especie y que
pueden resultar o no en un cambio de aminoácidos) están también
abarcadas por esta invención.
La presente invención proporciona también un
método para producir las moléculas de fusión
NH_{2}-IL3-X
o
\break\hbox{NH _{2} -X-IL3}. El método implica (1) cultivar en un medio de cultivo una célula o línea celular adecuada, que ha sido transformada con una secuencia de ADN que codifica la expresión de una molécula de fusión NH_{2}-IL3-X o
\hbox{NH _{2} -X-IL3}en asociación operativa con una secuencia controladora de la expresión, bajo condiciones que permiten la expresión de la proteína de fusión y (2) recoger la proteína de fusión así producida a partir de los medios de cultivo. Las células adecuadas preferidas son células bacterianas. Por ejemplo, las diferentes cepas de E. coli (por ejemplo, HB101, MC1061 y las cepas utilizadas en los ejemplos siguientes) son bien conocidas como células huésped en el campo de la biotecnología. Varias cepas de B. subtilis, Pseudomonas, de otros bacilos y similares pueden ser también empleadas en este método. Otras células adecuadas son células de mamífero, por ejemplo COS y CHO.
La selección de las células adecuadas y los
métodos para la transformación, cultivo, amplificación, selección y
producción y purificación de los productos son conocidas en la
técnica. Ver, por ejemplo, Gething y Sambrook, Nature,
293:620-625 (1981); Kaufman y col., Mol.
Cell. Biol., 5(7):1750-1759 (1985) o
Howley y col., Patente de EE.UU. 4.419.446.
Células de levaduras, células fúngicas o células
de insectos conocidas por los expertos en la materia, pueden ser
también útiles como células huésped para la expresión de las
moléculas de fusión de la presente invención. Ver, por ejemplo
Miller y col., Genetic Engineering,
8:277-298 (Plenum Press 1986) y las
referencias citadas en ella.
La recogida de la proteína de fusión de la
invención a partir de un lisado celular o de un extracto del medio
de cultivo de cualquiera de las células huésped anteriormente
descritas, puede llevarse a cabo por técnicas de aislamiento de
proteínas convencionales.
Composiciones farmacéuticas que contienen una
cantidad terapéuticamente eficaz de las proteínas de
fusión
\break\hbox{NH _{2} -IL3-X}o NH_{2}-X-IL3, mezcladas con un vehículo farmacéuticamente aceptable, están incluidas en esta invención. Estas composiciones farmacéuticas son adecuadas para el tratamiento de varios estados patológicos o de enfermedad, particularmente aquellos caracterizados por un nivel disminuido de células mieloides, eritroides, linfoides o megacariocíticas del sistema hematopoyético o combinaciones de las mismas. Además, las proteínas de fusión pueden ser utilizadas para la preparación de composiciones farmacéuticas adecuadas para activar células mieloides y/o linfoides maduras. Por ejemplo, composiciones farmacéuticas conteniendo la molécula de fusión NH_{2}-IL3-IL11 pueden ser útiles para la estimulación de la producción y/o desarrollo de megacariocitos y plaquetas. Entre las condiciones susceptibles al tratamiento con las composiciones farmacéuticas de la presente invención está la leucopenia, una reducción del número de leucocitos (glóbulos blancos) circulantes de la sangre periférica. La leucopenia puede ser inducida por exposición a ciertos virus o a radiación. Es a menudo un efecto colateral de la exposición a fármacos quimioterapéuticos. Las composiciones farmacéuticas de esta invención pueden evitar los efectos colaterales indeseables causados por fármacos disponibles actualmente. Adicionalmente, la faceta multidominio de las proteínas de esta invención puede permitir dosificaciones menores de las composiciones farmacéuticas a utilizar en comparación con la utilización de composiciones farmacéuticas que contienen las linfoquinas individuales IL3 o X solas.
Varias inmunodeficiencias o trastornos inmunes
pueden ser también susceptibles al tratamiento con las composiciones
farmacéuticas de la presente invención. Estas composiciones
farmacéuticas, solas o en combinación con otros regímenes de
tratamiento, pueden ser útiles para tratar o corregir
inmunodeficiencias que son el resultado de infecciones víricas, por
ejemplo, VIH, VLTHI o VLTHII, exposiciones severas a radiación,
terapia del cáncer o el resultado de otro tratamiento médico.
Dependiendo de la identificación de X, las composiciones
farmacéuticas pueden ser utilizadas para tratar otras deficiencias
de las células sanguíneas, incluyendo trombocitopenia (deficiencia
de plaquetas) o anemia (deficiencia de glóbulos rojos). Otras
utilizaciones son en el tratamiento de pacientes en recuperación de
trasplantes de médula ósea.
Tales composiciones farmacéuticas contienen una
cantidad terapéuticamente eficaz de la proteína de
fusión
\break\hbox{NH _{2} -IL3-X}o NH_{2}-X-IL3 de la presente invención en mezcla con un vehículo farmacéuticamente aceptable. Esta composición es preparada para ser administrada sistémicamente parenteralmente. Alternativamente, la composición es preparada para ser administrada intravenosamente. Si se desea, la composición es preparada para ser administrada subcutáneamente. Cuando se prepara para ser administrada sistémicamente, la composición terapéutica para utilización en esta invención está en forma de una solución acuosa libre de pirógenos, parenteralmente aceptable. La preparación de tal solución de proteínas farmacéuticamente aceptable, teniendo en cuenta el pH, la isotonicidad, la estabilidad y similares, está dentro de la experiencia en la materia.
Los ejemplos siguientes describen la construcción
y producción de proteínas de fusión ilustrativas de esta
invención.
Para obtener una proteína de fusión
NH_{2}-IL3-X, se obtuvieron dos
secuencias de ADNc de IL3 de acuerdo con los procedimientos
descritos en la publicación de PCT WO 88/00598, publicada el 28 de
Enero de 1988. Las dos secuencias de ADNc fueron fusionadas entre sí
con una pieza corta de ADN. Este ADN codificaba un péptido adaptador
diseñado para permitir a las dos proteínas IL3 plegarse y actuar
independientemente una de otra.
La secuencia de este péptido adaptador estaba
basada en una secuencia encontrada en la transcriptasa inversa del
VIH-1 según se describió anteriormente. La secuencia
del adaptador utilizado en esta fusión es según sigue:
\global\tabcolsep=3pt
Gly | Asp | Ala | Asn | Arg | Glu | Thr | Lys | Leu | Gly | Lys | Gly | ||
C | GGT | GAT | GCT | AAC | CGT | GAA | ACT | AAG | CTT | GGT | AAA | GG | |
G | CCA | CTA | CGA | TTG | GCA | CTT | TGA | TTC | GAA | CCA | TTT | CCA | T |
\global\tabcolsep=6pt
El esquema utilizado para fusionar los ADNcs de
IL3 y la región adaptadora emplea técnicas de ingeniería
recombinante convencionales tales como las descritas en Maniatis y
col., ``Molecular Cloning, A Laboratory Manual'', Cold Spring Harbor
Laboratory, Cold Spring Harbor, New York (1982). La construcción de
las fusiones está esquematizada en la Fig. I. Brevemente descrita,
la secuencia del ADNc de IL3, menos la secuencia que codifica su
líder secretor, tenía los extremos 5' y 3' que aparecen en la
porción superior de la Tabla A siguiente. Estas secuencias de IL3
después de digestión con XbaI y con nucleasa de Mung Bean, o
con NdeI, tenían los extremos 5' y 3' que aparecen en la
porción inferior de la Tabla A.
extremo 3' del gen: | \hskip5cm\hbox{} | extremo 5' del gen: | |||||
ATC | TTC | TAG | A | CAT | ATG | GCT | |
TAG | AAG | ATC | T | GTA | TAC | CGA | |
Ile | Phe | stop | Met | Ala | |||
- -XbaI- | - -NdeI- | ||||||
extremo 3' del gen: | extremo 5' del gen: | ||||||
ATC | TT | T | ATG | GCT | |||
TAG | AA | AC | CGA |
Las secuencias de IL3 digeridas fueron insertadas
en un plásmido, pALhIL3-781, diseñado para la
expresión de proteínas heterólogas intracelularmente en E.
coli. Este plásmido se describe solamente para ilustración. Las
técnicas descritas para producir las moléculas de fusión descritas
pueden emplear otros plásmidos conteniendo las mismas o diferentes
secuencias componentes, sitios de restricción y similares. Este
plásmido ejemplar es una forma modificada de pAL181 [ATCC Depósito
#40134] que contiene un secuencia terminadora de la transcripción
adicional. El plásmido pALhIL3-781, según se
representa en la Fig. I, se caracteriza por la secuencia de ADNc
completa de la IL3 madura fusionada en marco con una metionina
iniciadora y con un sitio de unión de ribosomas separado
apropiadamente; el principal promotor hacia la izquierda del fago
lambda para controlar y conducir la transcripción del ADNc de IL3;
una secuencia más allá del extremo 3' de la secuencia de IL3 que
hace que termine la transcripción y tres sitios de restricción
únicos dentro del plásmido. Un sitio 5' al gen de IL3 y que abarca
la secuencia codificadora de la metionina iniciadora es NdeI.
Otro sitio es incorporado dentro de la secuencia de terminación de
la traducción en el extremo 3' del gen de la IL3, XbaI. El
sitio restante está a 5' de la secuencia de terminación de la
transcripción, HindIII.
Se prepararon dos muestras del plásmido. Una fue
cortada con NdeI y HindIII y el fragmento pequeño que
contenía el ADNc de IL3 fue purificado (ver la parte derecha de la
Fig. I). El segundo fue cortado con XbaI, tratado con
exonucleasa de Mung Bean para eliminar las colas de ADN de hebra
sencilla, y digerido con HindIII. Se aisló el fragmento más
grande (ver parte izquierda de la Fig. I). Los dos fragmentos
aislados fueron mezclados con oligonucleótidos adaptadores
sintéticos de la secuencia mostrada anteriormente y tratados con
polinucleótido ligasa T4.
La secuencia de la región de unión entre las dos
secuencias de IL3 después de la ligadura fue según sigue:
\global\tabcolsep=3pt
Phe | Gly | Asp | Ala | Asn | Arg | Glu | Thr | Lys | Leu | Gly | Lys | Gly | |
TC | TTC | GGT | GAT | GCT | AAC | CGT | GAA | ACT | AAG | CTT | GGT | AAA | GGT |
AG | AAG | CCA | CTA | CGA | TTG | GCA | CTT | TGA | TTC | GAA | CCA | TTT | CCA |
Met | |
ATG G | |
TAC C |
\global\tabcolsep=6pt
Los plásmidos en los que las dos secuencias
codificadoras de IL3 y una o más secuencias adaptadoras se habían
fusionado, fueron seleccionados por las colonias que hibridaban con
las secuencias adaptadoras y se verificó la secuencia de las uniones
de la fusión. La presencia de plásmidos con más de un adaptador
insertado entre las secuencias de IL3 fue inesperada. Estos
plásmidos con adaptadores múltiples provienen probablemente de una
pequeña cantidad de contaminación de nucleasa en la ADN ligasa o de
alguna nucleasa de Mung Bean sobrante que eliminó la cola de hebra
sencilla TA del adaptador dúplex permitiéndole ligarse al extremo
romo de un adaptador dúplex adyacente.
Una vez que se construyeron los plásmidos, fueron
transformados en cepas de E. coli apropiadas, tales como
W3110 (lambda PamcI857) [M. Rosenberg y col., Meth. Enzymol.,
101:123-137 (1983) y Sambrook y col., citada
anteriormente] para la expresión de la IL3 multidominio. Los dos
plásmidos seleccionados para este experimento contenían dos
secuencias de ADNc de IL3 separadas por una y tres secuencias
adaptadoras respectivamente. El pALIL31-781 que
contiene una copia del adaptador está ilustrado en la porción
inferior de la Fig. I. Estas moléculas de fusión producían proteínas
de 31 y 34 kilodaltons, respectivamente.
Las proteínas se acumulaban dentro de las células
como cuerpos de inclusión insolubles y fueron solubilizadas y
replegadas por métodos estándar [ver, por ejemplo, la Patente de
EE.UU. Nº 4.512.922]. Cuando se analizaron en el ensayo con CML
descrito posteriormente en el Ejemplo 9, las proteínas demostraron
una actividad IL3 igual o mayor que la actividad de la IL3 natural o
recombinante.
Para expresar las proteínas de fusión de los
ejemplos, los ADNs de los plásmidos descritos anteriormente que
codifican las proteínas de fusión son transferidos a vectores de
expresión apropiados, de los que se conocen numerosos tipos en la
técnica, para la expresión en mamíferos, insectos, levaduras,
fúngica y bacteriana, por técnicas estándar de biología
molecular.
Una persona experta en la materia puede manipular
las secuencias que codifican las proteínas
NH_{2}-IL3-X y
\hbox{NH _{2} -X- IL3}eliminando cualquier secuencia reguladora de mamífero que flanquee las secuencias codificadoras, e insertando secuencias reguladoras bacterianas con el fin de crear vectores bacterianos para la expresión intracelular o extracelular de las proteínas de fusión de la invención por células bacterianas. El ADN que codifica las proteínas de fusión puede ser modificado posteriormente para que contenga codones diferentes con el fin de optimizar la expresión bacteriana según se conoce en el oficio. Las secuencias que codifican las proteínas de fusión pueden ser unidas operativamente en marco a secuencias de nucleótidos que codifican un polipéptido líder secretor, permitiendo la expresión bacteriana, secreción y procesamiento de las proteínas de fusión por métodos conocidos en el oficio. Alternativamente, las fusiones NH_{2}-IL3-X o NH_{2}-X-IL3 pueden ser construidas para expresión intracelular y la proteína puede ser aislada, mezclada y replegada por procedimientos bien conocidos en la técnica. La proteína de fusión expresada a través de cualquier ruta en células huésped bacterianas, puede ser luego recuperada, purificada y/o caracterizada con respecto a los parámetros físicoquímicos, bioquímicos y/o clínicos, todo por métodos conocidos.
Para obtener la expresión de la proteína de
fusión puede utilizarse un vector para células de mamífero, pXM, y
los procedimientos generales descritos en Y.C. Yang y col.,
Cell, 47:3-10 (1986). Ver, también,
Kaufman, Proc. Natl. Acad. Sci. USA,
82:689-693 (1985), Kaufman y col., J. Mol.
Biol., 159:511-521 (1982); y Kaufman,
Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 82:689-693
(1985) para las descripciones de las técnicas de construcción de
vectores y los componentes vectoriales útiles en la práctica de esta
invención.
Una persona experta en la materia puede construir
también otros vectores de expresión de mamífero comparables al
vector pXM insertando, por ejemplo, las secuencias de ADN de las
proteínas de fusión de los plásmidos respectivos con enzimas
apropiados y empleando técnicas bien conocidas de ingeniería
genética recombinante y otros vectores conocidos.
Para la integración estable de los ADNs
vectoriales y para la posterior amplificación de los ADNs
vectoriales integrados, pueden emplearse células CHO utilizando
métodos convencionales. La transformación de estos vectores con
NH_{2}-IL3-X o
NH_{2}-X-IL3 en células huésped
apropiadas puede tener como resultado la expresión de las proteínas
de fusión. Las líneas celulares resultantes pueden ser amplificadas
posteriormente mediante selección con fármacos apropiados, las
líneas celulares resultantes clonadas de nuevo y el nivel de
expresión determinado utilizando en ensayo apropiado para los
componentes de la proteína de fusión
NH_{2}-IL3-X.
Pueden realizarse manipulaciones similares para
la construcción de un vector de insectos para la expresión de estas
proteínas de fusión en células de insectos. [Ver, por ejemplo, los
procedimientos descritos en la patente Europea 155.476, publicada el
25 de Septiembre de 1985].
De forma similar se construyen vectores de
levaduras empleando secuencias reguladoras de levaduras para
expresar la proteína de fusión en células de levadura con el fin de
producir la proteína de fusión activa expresada intracelularmente o
secretada extracelularmente. [Ver, por ejemplo, los procedimientos
descritos en la publicación de PCT WO 86/00639, publicada el 30 de
Enero de 1986, y la patente Europea EP 123.289, publicada el 31 de
Octubre de 1984]. Pueden emplearse también vectores fúngicos en la
expresión de estas moléculas de fusión.
En todos los ensayos de proliferación descritos,
el formato básico es según sigue:
Las muestras y los estándares son diluidos en
medio de ensayo en placas de microvaloración con fondo en U, en un
volumen final de 100 \mul/pocillo. Diluciones seriadas de cinco
veces son apropiadas en la mayoría de los casos. Las células diana
son recogidas a partir de cultivos que crecen activamente,
centrifugadas, lavadas y resuspendidas en medio de ensayo a
concentraciones que han sido optimizadas para cada ensayo; se añaden
100 \mul de la suspensión de células a cada pocillo de tal forma
que el volumen final es de 200 \mul/pocillo. Las placas son
incubadas a 37ºC en un incubador completamente humidificado y
sometidas a un pulso con 0,5 \muCi de
[^{3}H]-timidina/pocillo según se describe en cada
ensayo posteriormente. La proliferación es medida por la
incorporación de [^{3}H]-timidina a las células.
La bioactividad es medida en unidades mitad de la dilución máxima,
en las que una concentración final de 1 unidad por ml de la fusión
IL3/X tiene como resultado una incorporación de
[^{3}H]-timidina del 50% en el ensayo.
El ensayo con CML para estimular la proliferación
de células blásticas leucémicas se realizó esencialmente de acuerdo
con los procedimientos descritos en Blood, 63
(4):904-111 (1984). Una solución madre de células
fue obtenida a partir de una bolsa congelada de sangre periférica de
un paciente con CML en fase estable. La bolsa fue descongelada y
vuelta a congelar en 500 alícuotas de 1,7 x 10^{7} células/vial.
Un día antes del establecimiento del ensayo se descongela un vial de
células y se lavan las células dos veces con 10 ml de RPMI + un 5%
de suero Humano AB inactivado por calor (HiHAB). Las células son
resuspendidas en 10 ml del mismo medio e incubadas durante una noche
en un 5% de CO_{2} a 37ºC. El día siguiente las células son
extraídas del cultivo, tratadas con Ficoll, lavadas y resuspendidas
en el medio de ensayo.
El ensayo es realizado en RPMI + un 10% de suero
de ternera fetal inactivado por calor (HiFCS), glutamina (GLN) 2 mM
y P/S (100 U/ml de penicilina, 100 \mug/ml de estreptomicina). La
densidad de siembra de las células es de 2 x 10^{4}
células/pocillo. Las placas son incubadas durante 48 horas en un 5%
de CO_{2} y sometidas a un pulso con
[^{3}H]-timidina durante las 6 horas finales del
ensayo. Las células CML responden a hGMCSF y a hIL3. Por tanto, para
cuantificar la actividad de cada citoquina de la proteína de fusión
del Ejemplo 2 de forma separada, es necesario incluir anticuerpos
neutralizantes hacia hGMCSF o hacia hIL3.
La línea celular MO7E derivaba de la sangre
periférica de un niño con leucemia megacarioblástica aguda. El
crecimiento de las células MO7E es dependiente de la presencia de
GMCSF humano, de IL3 humana o de IL4 humana.
Las células MO7E son mantenidas en DME más un 10%
de FCS inactivado por calor, glutamina y P/S suplementado con 8
unidades por mililitro de IL3 humana recombinante. El ensayo se
realiza en el mismo medio sin la adición de IL3 humana. La densidad
de siembra de las células es de 10^{4} células por pocillo. Las
placas son incubadas durante 3 días en un 10% de CO_{2} y
sometidas a un pulso con [^{3}H]-timidina durante
las 4 horas finales.
Según se describió en el ensayo con CML, las
células MO7E responden a hGMCSF y a hIL3, requiriendo la utilización
de anticuerpos neutralizantes.
Sobre la base de la incorporación de
[^{3}H]-timidina, las proteínas de fusión que
contienen IL3 de todos los ejemplos de fusión IL3/X son activas en
la estimulación de la proliferación de células blásticas leucémicas
en este ensayo con CML.
La línea celular TF-1 derivaba de
la médula ósea de un paciente con eritroleucemia [T. Kitamura,
Universidad de Tokio]. Las células son cultivadas en RPMI más un 10%
de FCS inactivado por calor, glutamina y P/S, suplementado con 100
unidades por ml de GMCSF humano recombinante. El ensayo es realizado
en el mismo medio sin la adición de hGMCSF. La densidad de siembra
de las células es de 7,5 x 10^{3} células por pocillo. Las placas
son incubadas durante 3 días en un 5% de CO_{2} y sometidas a un
pulso con [^{3}H]-timidina durante las 4 horas
finales. Según se describió en el ensayo con CML, las células
TF-1 responden a hGMCSF y a hIL3 requiriendo la
utilización de anticuerpos neutralizantes.
Sobre la base de la medida de incorporación de
timidina, las proteínas de fusión IL3/X son activas en este ensayo
estimulando la proliferación de estas células de eritroleucemia.
32D Es una línea celular murina dependiente de
IL3 cultivada en RPMI con un 10% de FCS inactivado por calor,
glutamina y P/S con un 20% de medio condicionado de WeHi 3B como
fuente de IL3 murina. Estas células proliferan en presencia de
GCSF.
El ensayo es realizado en RPMI, conteniendo un 5%
de FCS inactivado por calor, glutamina y P/S. La densidad de siembra
es de 2 x 10^{4} células por pocillo. Las placas son incubadas
durante 24 horas en un 5% de CO_{2} y sometidas a un pulso con
[^{3}H]-timidina durante las 4 horas finales.
DA2 Es una línea celular murina dependiente de
LIF que crece igualmente bien en IL3 murina. Las células son
mantenidas en RPMI con un 5% de FCS inactivado por calor, glutamina,
P/S y 500 unidades/ml de LIF humano recombinante.
El ensayo de DA2 es realizado en el mismo medio
que el ensayo de 32D. La densidad de siembra de las células es de
7,5 x 10^{3} células por pocillo. Las placas son incubadas durante
3 días y sometidas a un pulso con [^{3}H]-timidina
durante las 4 horas finales.
Claims (9)
1. Una proteína de fusión de fórmula
NH_{2}-IL3-X o
NH_{2}-X-IL3 sustancialmente libre
de asociación con otros materiales proteicos, en la que IL3 es IL3
nativa, X es IL3, y ``-'' entre ``IL3'' y ``X'' representa un enlace
peptídico o una secuencia adaptadora peptídica.
2. Una secuencia de ADN que codifica la proteína
de fusión de la reivindicación 1.
3. Un vector plasmídico que contiene la secuencia
de ADN de la reivindicación 2 en asociación operativa con una
secuencia de control de la expresión capaz de dirigir la expresión
de la secuencia de ADN de la reivindicación 2 en una célula
huésped.
4. Una célula huésped transformada con el vector
plasmídico de la reivindicación 3.
5. Un proceso para producir una proteína de
fusión de acuerdo con la reivindicación 1 que comprende (1) cultivar
la célula huésped de la reivindicación 4 en un medio de cultivo bajo
condiciones que permitan la expresión de la proteína y (2) recoger
la proteína de fusión a partir de los medios de cultivo.
6. Una composición farmacéutica que contiene una
cantidad terapéuticamente eficaz de la proteína de fusión de la
reivindicación 1 opcionalmente junto con un vehículo
farmacéuticamente aceptable.
7. La composición farmacéutica de la
reivindicación 6 para el tratamiento de leucopenia.
8. Utilización de la proteína de fusión de
acuerdo con la reivindicación 1 para la preparación de una
composición farmacéutica para el tratamiento de leucopenia.
9. Un proceso para la preparación de la
composición farmacéutica de la reivindicación 6 ó 7 que comprende la
combinación de la proteína de fusión de la reivindicación 1 con un
vehículo farmacéuticamente aceptable.
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