EA003632B1 - Фитазы из микроорганизма monascus anka, способ их получения и корм для животных, содержащий указанные фитазы - Google Patents

Фитазы из микроорганизма monascus anka, способ их получения и корм для животных, содержащий указанные фитазы Download PDF

Info

Publication number
EA003632B1
EA003632B1 EA199900329A EA199900329A EA003632B1 EA 003632 B1 EA003632 B1 EA 003632B1 EA 199900329 A EA199900329 A EA 199900329A EA 199900329 A EA199900329 A EA 199900329A EA 003632 B1 EA003632 B1 EA 003632B1
Authority
EA
Eurasian Patent Office
Prior art keywords
phosphate
substrate
phytase
microorganism
phytic acid
Prior art date
Application number
EA199900329A
Other languages
English (en)
Other versions
EA199900329A1 (ru
Inventor
Тадаси Нагасима
Сатоси Куроянаги
Таданори Ямамура
Хидехару Аназава
Йоко Като
Сейдзи Сугимото
Кейити Яно
Original Assignee
Киова Хакко Когио Ко., Лтд.
Син Нихон Кемикал Ко., Лтд.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Киова Хакко Когио Ко., Лтд., Син Нихон Кемикал Ко., Лтд. filed Critical Киова Хакко Когио Ко., Лтд.
Publication of EA199900329A1 publication Critical patent/EA199900329A1/ru
Publication of EA003632B1 publication Critical patent/EA003632B1/ru

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14—Hydrolases (3)
    • C12N9/16—Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1)
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23K—FODDER
    • A23K20/00—Accessory food factors for animal feeding-stuffs
    • A23K20/10—Organic substances
    • A23K20/189—Enzymes
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S426/00—Food or edible material: processes, compositions, and products
    • Y10S426/807—Poultry or ruminant feed

Abstract

Настоящее изобретение относится к фитазам, имеющим низкие значения Км для фитиновой кислоты, к способу получения фитаз путем использования микроорганизма, имеющего способность продуцировать и накапливать фитазы, и к корму, содержащему фитазы. В соответствии с настоящим изобретением новые фитазы разлагают фитиновую кислоту как антитрофический фактор, содержащийся в корме, повышая таким образом питательную ценность корма и одновременно делая возможной эффективную утилизацию фосфата, высвобождающегося при указанном разложении.

Description

Область техники
Настоящее изобретение относится к недорогим фитазам с низкими значениями константы Михаэлиса (сокращенно обозначаемой здесь далее как Км) для фитиновой кислоты, которые разлагают фитиновую кислоту как антитрофический фактор, содержащийся в корме, повышая тем самым питательную ценность корма и одновременно обеспечивая эффективную утилизацию фосфата, выделяющегося при указанном разложении.
Предпосылки к созданию изобретения
Фосфор является незаменимым элементом для каждого организма. Фосфор входит в состав растительного корма, используемого при разведении домашних животных, и от 50 до 70% фосфора присутствует в виде фитиновой кислоты. Фитиновая кислота, присутствующая в больших количествах в семенах растений, является главным запасаемым источником фосфата. Однако фитиновая кислота выводится из организма без переваривания и всасывания пищеварительных органах животных с единственным отделом желудка, таких как свиньи, куры и т.д., так что содержащийся в ней фосфор совсем не утилизируется, хотя она является главным запасаемым источником фосфата. Соответственно, неорганический фосфат добавляют к корму для животных с единственным отделом желудка с целью ускорения роста. Однако добавление фосфата к корму приводит к повышению количества фосфора в фекалиях. В последние годы, поскольку производство домашних животных увеличивается, количество фекалий домашних животных возрастает, создавая проблему для окружающей среды во всем мире. В частности, фосфор, содержащийся в фекалиях, указывается в качестве причины явления эвтрофикации озер и болот, и количество выделяемого с экскрементами фосфора приближается к тому, что требует регулирования, и возникает необходимость заниматься этим.
Кроме того, фитиновая кислота образует хелаты с двухвалентными металлами, важными как питательные источники, такими как магний, кальций, цинк, железо и т.д., делая их трудно усваиваемыми животными, в результате чего снижается питательная ценность корма. Поэтому фитиновую кислоту считают антитрофическим фактором.
Исходя из указанного выше, делаются попытки усовершенствований питательной ценности корма путем обработки корма ферментом для гидролиза фитиновой кислоты до инозита и неорганического фосфата, что позволяет фитиновой кислоте высвобождать фосфат для замещения им обычно добавляемого фосфата, посредством чего количество фосфора в фекалиях снижается, и фитиновая кислота как антитрофический фактор разлагается [Патент США № 3297548 (1967), 1. Νπίπίίοη 101, 1289-1294 (1971)]. Известные микроорганизмы для проду цирования фитазы (фермента, разлагающего фитиновую кислоту) включают бактерии, такие как БасШиз зиЬНИз и РзеиАотопаз, дрожжи, такие как ЗассИаготусез сегеугзгае, и нитчатые грибы, такие как АзрегуШиз 1еггеиз, АзрегуШиз ('/спит и АзрегуШиз аюатоп. Что касается фитазы, выделенной из АзрегуШиз бсиит, ее очистка и биохимические свойства описаны в Ргерагайуе Вюсйет., 18, 443-458 (1986) и ее нуклеотидная аминокислотная последовательность описаны в Сепе, 127, 87-94 (1993). Что касается фитазы, выделенной из АзрегуШиз тгатоп, ее нуклеотидная последовательность и аминокислотная последовательность описаны в Сепе, 133, 55-62 (1993).
Чтобы продемонстрировать способность, которой обладает фермент, необходимо, чтобы концентрация его субстрата была выше, чем константа Михаэлиса (Км), и в случае ферментов, имеющих такую же максимальную скорость реакции (Утах), фермент, имеющий более низкое значение Км, не снижает скорость реакции даже при более низкой концентрации субстрата, по сравнению с ферментом, имеющим более высокую величину Км. То есть, фермент, имеющий более низкое значение Км, может обеспечивать достаточную скорость разложения даже при более низкой концентрации субстрата, и количество неразложившегося субстрата, может быть сведено к минимуму по сравнению с ферментом, имеющим более высокое значение Км.
Константы Михаэлиса (Км) известных фитаз, выделенных из нитчатых грибов, составляют 250 мкМ для АзрегуШиз ('/спит (\АО 91/05053) и 330 мкМ АзрегдШиз огугае (Вюксг Вю1ес11. Вюсйет., 57, 1364-1365 (1993)).
С одной стороны, кислотные фосфатазы выделяют из различных микроорганизмов и сообщают их свойства, и, например, 2 кислые фосфатазы, выделенные из АзрегуШиз (1сиит, очищают и исследуют их свойства [Ргер. Вюсйет.. 18, 37-65 (1988)]. Однако указанные кислые фосфатазы не могут утилизировать фитиновую кислоту в качестве субстрата, так что их применение в целях усовершенствования питательной ценности корма, как указано выше, невозможно.
При указанных выше обстоятельствах существует потребность в фитазе, которая разлагает фитиновую кислоту как антитрофический фактор, содержащийся в корме, повышая тем самым питательную ценность корма и одновременно делая возможным эффективную утилизацию фосфата, высвобождающегося при указанном разложении.
Описание изобретения
Соответственно, цель данного изобретения заключается в обеспечении фитаз, имеющие низкими значениями Км для фитиновой кислоты, и способ получения указанных фитаз.
В результате широкого исследования для решения проблем, описанных выше, авторы настоящего изобретения обнаружили в микроорганизмах, принадлежащих к роду Мопа$еи$, новые фитазы, имеющие значения Км от 10 до 110 мкМ, когда в качестве субстрата применяли фитиновую кислоту, и они описали их свойства и разработали способ получения указанных фитаз, чтобы завершить создание данного изобретения.
То есть, данное изобретение относится к новым фитазам, имеющим значения Км от 10 до 110 мкМ, и способу получения указанных фитаз.
Конкретные примеры новых фитаз по изобретению включают 3 фитазы, имеющие следующие физико-химические свойства:
1. Фитаза I:
1) Км: 27 мкМ, когда в качестве субстрата применяют фитиновую кислоту;
2) оптимальная рН: 5,5;
3) рН-стабильность: устойчива в диапазоне рН 5,5 до 6,5;
4) оптимальная температура: 50°С;
5) термостойкость: устойчивая вплоть до 35°С;
6) субстратная специфичность: действует на фитиновую кислоту, п-нитрофенилфосфат, Ό-глюкоза-б-фосфат, фруктоза-6-фосфат, Όмиоинозит-2-фосфат, П-миоинозит-1-фосфат, Όмиоинозит-1,4-дифосфат и аденозинтрифосфат в качестве субстрата;
7) молекулярная масса: приблизительно от 80 до 100 кДа (метод гель-фильтрации); и
8) изоэлектрическая точка: р1 5,7 (метод хроматофокусировки) .
2. Фитаза II:
1) Км: 20 мкМ, когда в качестве субстрата применяют фитиновую кислоту;
2) оптимальная рН: 6,0;
3) рН-стабильность: устойчива в диапазоне рН 6,0 до 7,0;
4) оптимальная температура: 50°С;
5) термостойкость: устойчивая вплоть до 50°С;
6) субстратная специфичность: действует на фитиновую кислоту, п-нитрофенилфосфат, Ό-глюкоза-б-фосфат, фруктоза-6-фосфат, Όмиоинозит-2-фосфат, О-миоинозит-1-фосфат, Όмиоинозит-1,4-дифосфат и аденозинтрифосфат в качестве субстрата;
7) молекулярная масса: приблизительно 120 кДа (метод гель-фильтрации) ; и
8) изоэлектрическая точка: р1 4,8 (метод хроматофокусировки).
3. Фитаза III:
1) Км: 107 мкМ, когда в качестве субстрата применяют фитиновую кислоту;
2) оптимальная рН: 2,5;
3) рН-стабильность: устойчива в диапазоне рН 2,0 до 8,0;
4) оптимальная температура: 45°С;
5) термостойкость: устойчивая вплоть до 60°С;
6) субстратная специфичность: действует на фитиновую кислоту, п-нитрофенилфосфат, О-глюкоза-6-фосфат, фруктоза-6-фосфат, Όмиоинозит-2-фосфат, П-миоинозит-1-фосфат, Όмиоинозит-1,4-дифосфат и аденозинтрифосфат в качестве субстрата;
7) молекулярная масса: приблизительно 140 кДа (метод гель-фильтрации);
8) изоэлектрическая точка: рI 5,2 (метод хроматофокусировки) ; и
9) Ν-концевая аминокислотная последовательность: показана в 8ЕО Ю N0:1.
Микроорганизмами, применяемыми в настоящем изобретении, могут быть любые микроорганизмы, продуцирующие новые фитазы, имеющие значения Км от 10 до 110 мкМ, когда в качестве субстрата применяют фитиновую кислоту и примерами являются микроорганизмы, принадлежащие к роду Мопа$еи$. Конкретно, может быть указан Мопа$еи$ апка ГЕ0 30873. Кроме того, животные клетки, обладающие способностью продуцировать новые фитазы, имеющие значения Км от 10 до 110 мкМ, когда в качестве субстрата применяют фитиновую кислоту, могут быть также применимы в данном изобретении.
Микроорганизм, обладающий способностью продуцировать новую фитазу, культивируют в соответствии с традиционной методикой культивирования до тех пор, пока не образуется и не накопится новая фитаза, и новую фитазу выделяют из культуры, посредством чего может быть получена новая фитаза. Здесь далее, микроорганизм или мутант, применяемый для получения новой фитазы, называют организмом, продуцирующим новую фитазу.
Если организм, продуцирующий новую фитазу, является прокариотическим, таким как ЕпскепсШа сок, или эукариотическим, таким как нитчатый гриб, дрожжевой гриб и т.д., средой для культивирования указанного микроорганизма может быть натуральная или синтетическая среда, при условии, что такая среда содержит источник углерода, источник азота, неорганические соли и т.д., которые могут ассимилироваться микроорганизмом, и в которой микроорганизм может быть эффективно культивирован.
Источник углерода может быть любым способным ассимилироваться микроорганизмом и включает глюкозу, фруктозу, сахарозу, мелассы, содержащие такой сахар, углеводороды, такие как крахмал, гидролизаты крахмала и т.д., органические кислоты, такие как уксусная кислота, пропионовая кислота и т.д., и спирты, такие как этанол, пропанол и т.д.
Источник азота включает аммиак, аммониевые соли различных неорганических и органических кислот, таких как хлорид аммония, сульфат аммония, ацетат аммония, фосфат ам мония и т.д., и другие азотистые соединения, а также пептон, мясной экстракт, дрожжевой экстракт, экстракт кукурузы, гидролизаты казеина, соевый жмых, гидролизаты соевого жмыха и широкое разнообразие микроорганизмов, получаемых путем ферментации, и переваренные материалы.
Неорганические вещества включают дигидрофосфат калия, моногидрофосфат калия, фосфат магния, сульфат магния, хлорид натрия, сульфат железа (II), сульфат марганца, сульфат меди, карбонат кальция и т.д.
Далее, среда, содержащая пшеничные отруби, рисовые отруби и т. д. в качестве источников углерода, азота и неорганических веществ, обогащенная подходящими солями, может быть применена в качестве среды для культивирования нитчатых грибов.
Культивирование проводят в аэробных условиях во встряхиваемой культуре или погруженной культуре с постоянным перемешиванием при аэрации. Температура культуры, предпочтительно, составляет от 15 до 40°С, и период культивирования обычно составляет от 16 до 96
ч. Во время культивирования значение рН поддерживают в диапазоне от 3,0 до 9,0. Установление значения рН среды осуществляют неорганической или органической кислотой, раствором щелочи, мочевиной, карбонатом кальция или аммиаком.
Во время культивирования к среде могут быть добавлены антибиотики, такие как ампициллин, тетрациклин и т.д.
Если культивированию подлежат нитчатые грибы в среде, содержащей твердые компоненты, такие как пшеничные отруби и т.д., нитчатые грибы засевают, смешивают в достаточной степени с твердыми компонентами и распределяют в виде тонкого слоя на множестве лотков из алюминия или нержавеющей стали в камере для выращивания и культивируют при регулируемых условиях температуры, влажности и вентиляции. Конкретно, грибы подвергают стационарному культивированию в культуральной камере при влажности 100% при 25-35°С в течение 3-10 суток.
Если организм, продуцирующий новую фитазу, представляет собой животные клетки, среда для культивирования животных клеток включает обычно применяемую среду ΚΡΜΙ 1640, среду Еад1е ΜΕΜ и среды, содержащие околоплодную сыворотку крупного рогатого скота в указанных выше средах, и т. д.
Культивирование проводят в таких условиях, как наличие 5% СО2 и т.д. Температура культуры, предпочтительно, составляет от 35 до 37°С, и период культивирования обычно составляет от 3 до 7 суток.
Во время культивирования к среде могут быть добавлены антибиотики, такие как канамицин, пеницилин и т.п.
Для выделения и очистки новой фитазы из культуры организма, продуцирующего новую фитазу, могут быть использованы традиционные методы выделения и очистки ферментов.
Например, если новая фитаза накапливается в клетках организма, продуцирующего новую фитазу, клетки выделяют из культуры путем центрифугирования, затем промывают и разрушают с помощью ультразвукового дезинтегратора, пресса Егеисй, гомогенизатора МаШоиСаийи, диномельницы или тому подобного, посредством чего получают свободный от клеток экстракт. Супернатант, полученный путем центрифугирования свободного от клеток экстракта, повергают высаливанию, например, сульфатом аммония, обессоливанию, осаждению органическим растворителем, анионообменной хроматографии на смоле, такой как диэтилоаминоэтил (ИЕАЕ)-Сефароза и ΌΙΑΙΟΝ НРА-75 (Мй8иЫ8Й1 Сйетюа1 1иби81г1е8 Ыб.), катионообменной хроматографии на смоле, такой как 8Сефароза ЕЕ (Рйагташа), гидрофобной хроматографии на смоле, такой как бутил-Сефароза и фенил-Сефароза, гель-фильтрации на молекулярных ситах, хроматофокусировке и электрофорезу, такому как изоэлектрическое фокусирование, посредством чего может быть получен очищенный ферментный препарат.
Анализ структуры очищенного ферментного препарата может быть осуществлен в соответствии с методиками, обычно используемыми в белковой химии, например, методиками, описанными в Рго1ет 81гис1ига1 АиаЙ818 £ог Сеие С1ошид, написанной ШзазЫ Шгаио и опубликованной Токю Кадаки ИоДи (1993).
Если новая фитаза секретируется во внеклеточное пространство, культуру подвергают, например, центрифугированию для получения растворимой фракции. Если в числе ингредиентов среды присутствуют твердые компоненты, такие как пшеничные отруби и т. д., новую фитазу экстрагируют добавлением горячей воды или тому подобным и подвергают таким обработкам, как центрифугирование, чтобы получить растворимую фракцию. Из данной растворимой фракции препарат очищенного фермента новой фитазы может быть получен в соответствии с теми же методиками, как выделение и очистка супернатанта свободного от клеток экстракта, как описано выше.
В настоящем изобретении активность новой фитазы может быть определена в соответствии со стандартной методикой измерения активности (смотри сравнительный пример ниже).
Далее, значение Км новой фитазы может быть определено по диаграмме Ьтетеа1йегВигк, где активность новой фитазы, которую определяют в соответствии со стандартной методикой измерения активности, графически изображают при различных концентрациях субстрата.
Новая фитаза по изобретению может быть использована на различных стадиях, необходимых для превращения соли фитата в инозит и неорганический фосфат, например при производстве корма для животных, переработке соевых бобов, жидкого корма для свиней и птицы, и для получения инозита или инозит монофосфата из солей фитатов.
Корм для животных, содержащий новую фитазу по изобретению, может быть получен путем смешивания указанного фермента с носителями, такими как чешуйки пшеницы, сушки смеси в распылительной колонне или в псевдоожиженном слое и добавления стабилизаторов осмотического давления, таких как сорбит, и консервантов, таких как бензойная кислота, к высушенному материалу. Количество новой фитазы в корме для животных составляет от 10 до 5000 Ед., предпочтительно от 100 до 1000 Ед. на кг корма для животных.
Краткое описание чертежей
На фиг. 1 показана оптимальная рН для фитазы I.
На фиг. 2 показана оптимальная рН для фитазы II.
На фиг.3 показана оптимальная рН для фитазы III.
На фиг. 4 показана оптимальная рНстабильность фитазы I.
На фиг. 5 показана оптимальная рНстабильность фитазы II.
На фиг. 6 показана оптимальная рНстабильность фитазы III.
На фиг. 7 показана оптимальная температура для фитазы I.
На фиг. 8 показана оптимальная температура для фитазы II.
На фиг. 9 показана оптимальная температура для фитазы III.
На фиг. 10 показана термостойкость фитазы I.
На фиг. 11 показана термостойкость фитазы II.
На фиг. 12 показана термостойкость фитазы III.
Наилучший способ осуществления изобретения
Здесь, далее, настоящее изобретение подробно описано ссылкой на примеры. Однако настоящее изобретение не ограничивается примерами.
Сравнительный пример (методика измерения активности фитазы).
В настоящем изобретении стандартное измерение активности фитазы проводили следующим образом.
0,5 мл 0,2М ацетатного буфера, рН 5,5, (или буфера глицин-НС1 , рН 2,5, в случае исследования активности кислой фосфатазы при разложении фитиновой кислоты), содержащего 2,5 мМ фитат натрия (81дта), выдерживали при 37°С в течение 5 мин и добавляли 0,5 мл рас твора фермента, для запуска реакции (в итоге 1,25 мМ фитат натрия-0,1М ацетатный буфер, рН 5,5, или 0,1М буфер глицин-НС1, рН 2,5). После выдерживания при 37°С в течение 20 мин добавляли 2 мл раствора, останавливающего ферментативную реакцию, (т.е. смесь, состоящую из 10 мМ молибдата аммония, 5 н. серной кислоты и ацетона в соотношении 1:1:2), для остановки реакции, и добавляли 0,1 мл 1М лимонной кислоты и смешивали с реакционным раствором. Оптическую плотность данного раствора при 380 нм измеряли спектрофотометром (НйасЫ и-2000). 1 единицу активности фитазы определяли как количество фермента, позволяющее высвободить 1 мкмоль неорганического фосфора в минуту.
Пример 1 (получение фитаз).
В колбу Эрленмейера емкостью 2000 мл вносили 200 мл среды для продукции фитазы [1% сахарозы, 0,2% ΝαΝΟ3, 0,05% М§8О4-7Н2О, 0,05% КС1, 0,001% Ее8О4-7Н2О, 0,1% экстракта кукурузы (э.к.), рН 5,5], закрывали пробкой из силиконовой губки и стерилизовали при 120°С в течение 20 мин. Инокулируют туда гифы Мопа$еи$ апка ГЕО 30873 и подвергают стационарному культивированию в течение 10 суток с получением фитаз. В качестве сырого раствора фитазы использовали 980 мл полученной культуры и таким образом получали 6 единиц фитаз.
Пример 2 (очистка фитаз).
Сырой раствор фитазы обессоливали путем пропускания его через Ультрафильтр (молекулярная масса исключения 10000, ЛбуаШес). Полученный раствор фермента наносили на колонку с ΌΕΆΕ-Сефарозой Е.Е. (Рйагтааа), предварительно уравновешенную 20 мМ буфером МЕ8, рН 6,0 (Ка1ауата Кадаки). После промывания 20 мМ буфером МЕ8 (рН 6,0) фитазы I и III элюировали 20 мМ буфером МЕ8 (рН 6,0), содержащим 0,05М №С1. Далее, фитазу II элюировали 20 мМ буфером МЕ8 (рН 6,0), содержащим 0,1М №С1. Каждый отделенный таким образом раствор фермента обессоливали и концентрировали примерно в 20 раз, соответственно, с помощью Ультрафильтра (молекулярная масса исключения 10000, ЛбуаШес). Затем каждый фермент наносили на колонку с ΌΕΆΕ-Сефарозой Е.Е. (Рйагташа), предварительно уравновешенную 20 мМ буфером МΕ8 (рН 6,0). После промывания 20 мМ буфером МΕ8 (рН 6,0) белок элюировали по линейному градиенту от 0 до 0,3 М №С1, посредством чего получали фракции фитазы I, II и III. Каждый из полученных таким образом растворов ферментов концентрировали примерно в 20 раз с помощью Ультрафильтра (молекулярная масса исключения 10000, ЛбуаШес) и наносили на колонку ТОУО-реаг1 НХУ-55Е (Токой Согрогайоп), предварительно уравновешенную 20 мМ буфером МΕ8, рН 6,0, содержащим 0,05 М КС1. Фитазы I, II и III элюировали, соответст венно, 20 мМ буфером рН 6,0, содержащим 0,05 М КС1.
Фитазы I, II и III очищали, соответственно, на стадиях, указанных выше.
Пример 3 (измерение Км фитаз I, II и III).
Очищенные фитазы I, II и III измеряли в соответствии стандартной методикой измерения активности, где фитиновую кислоту использовали в качестве субстрата при различных концентрациях в диапазоне от 0,00625 до 0,8 мМ. Для определения Км графически изображали обратную величину результата ЬшетеаШегВигк. Величины Км фитаз I, II и III для фитиновой кислоты составляли 27, 20 и 107 мкМ.
Пример 4 (физико-химические свойства фитаз I, II и III).
(1) Оптимальная рН: Буфер в стандартной методике измерения активности заменяли 0,2 М буфером, указанным ниже, и активность при каждом значении рН измеряли в соответствии со стандартной методикой измерения активности.
Буфер глицин-НС1 рН 2,0-3,5.
Буфер уксусная кислота-ацетат натрия рН
3.5- 5,5.
Буфер МЕ8 (буфер Гуда) рН 5,0-7,0.
Буфер Трис-НС1 рН 7,0-9,0
Результаты показаны на фиг. 1, 2 и 3.
Фитазы I, II и III проявляли максимальную активность при рН 5,5, рН 6,0 и рН 2,5, соответственно.
(2) рН-стабильность: После того, как раствор фермента выдерживали при 30°С в течение 60 мин в 50 мМ буфере, указанном ниже, активность измеряли в соответствии со стандартной методикой измерения активности.
Буфер глицин-НС1 рН 2,0-4,0.
Буфер уксусная кислота-ацетат натрия рН
4.5- 5,5.
Буфер МЕ8 (буфер Гуда) рН 5,5-7,0.
Буфер Трис-НС1 рН 7,0-9,0.
Результаты показаны на фиг. 4, 5 и 6.
Фитаза I была стабильна в диапазоне рН
5.5- 6,5, фитаза II в диапазоне рН 6,0-7,0 и фитаза III - в диапазоне рН 2,0-8,0.
(3) Оптимальная температура: После того, как температуру реакции, использованную для измерения активности фермента, изменяли в диапазоне от 30 до 70°С, активность при каждой температуре измеряли согласно стандартному методу измерения активности.
Результаты показаны на фиг. 7, 8 и 9.
Обе фитазы I и II проявляли максимальную активность при 50°С. Фитаза III проявляла максимальную активность при 45°С.
(4) Термостойкость: Затем раствор фермента выдерживали при 4-70°С в течение 10 мин в 20 мМ буфере МЕ8 (рН 6,0), активность измеряли в соответствии со стандартной методикой измерения активности.
Результаты показаны на фиг. 10, 11 и 12.
Фитаза I была стабильна вплоть до 35°С, фитаза II - вплоть до 50°С и фитаза III - вплоть до 60°С.
(5) Субстратная специфичность: Активность измеряли в соответствии со стандартной методикой измерения активности, используя каждый субстрат, приготовленный в концентрации 2,5 мМ, и результаты показаны в табл. 1.
Каждая из фитаз I, II и III имела низкую субстратную специфичность.
Таблица 1. Субстратная специфичность фитаз
Фитазы
I II III
Фитиновая кислота 100 100 37.8
п-Нитрофенилфосфат 224 53.9 100
Э-Миоинозит-( 1,4)-дифосфат 99.6 53.5 93.9
Э-Миоинозит-2-фосфат 53.9 11.1 43.5
Э-Миоинозит-1 -фосфат 87.9 17.7 53.5
Глюкоза-6-фосфат 152 30.9 128
Фруктоза-6-фосфат 211 29.6 95.0
Аденозин-трифосфат 223 42.0 191
(6) Молекулярная масса: Молекулярную массу определяли по методу гель-фильтрации на ТОУО-реаг1 Н^-55Р (размеры колонки 1,0 х 119 см, 93,4 мл). Калибровочную кривую строили, используя в качестве стандартов РНКазу А (Мол. м. 15500), овальбумин (Мол. м. 42700), альбумин (Мол. м. 63300) и альдолазу (Мол. м. 163000) .
Молекулярные массы фитаз I, II и III составляли от 80 до 100, 120 и 140 кДа соответственно.
(7) Изоэлектрическая точка: Фитазу наносили на Полибуферную обменную колонну РВЕ94 (Рйагшааа), предварительно уравновешенную 20 мМ буфером МЕ8 (рН 6,0), и затем элюировали 10% Полибуфером 74-НС1 (рН 4,0). Газоэлектрическую точку фитазы определяли путем измерения значения рН элюированной фракции с помощью рН-метра.
Результаты показали, что изоэлектрические точки фитаз I, II и III составляли рI 5,7, 4,8 и 5,2, соответственно.
Пример 5 (анализ Ν-концевой аминокислотной последовательности фитазы III).
Чтобы определить молекулярную массу фитазы III путем электрофореза в 8Ό8полиакриламидном геле (8Ό 8-РАСЕ), фермент очищали до высокой степени чистоты. К 12,5% мультигелю (ИайсЫ Кадаки К.К.) добавляли 50 мкл фермента, очищенного согласно примеру 2, и подвергали нативному РАСЕ согласно методу В. 1. ИауЦ [Αηη. Ν.Υ. Асай. 8ск, 121, 404-427 (1964)]. После электрофореза гель надрезали на кусочки шириной 5 мм и погружали их в 1 мл 20 мМ буфера МЕ8 (рН 6,0) и выдерживали при 4°С в течение 12 ч с тем, чтобы экстрагировать фермент. После того, как экстракт концентрировали в 15-20 раз в роторном испарителе, фракцию фитазы идентифицировали в соответствии со стандартной методикой измерения активности, описанной в сравнительном примере.
После восстановления меркаптоэтанолом 10 мкл активной фракции подвергали 8Ό8-ΡΑΟΕ с получением фитазы III высокой чистоты. Исходя из данного результата, молекулярную массу фитазы III определяли как приблизительно 65 кДа.
Анализ Ν-концевой аминокислотной последовательности фитазы III проводили следующим образом. То есть, фитазу III, очищенную в примере 2, подвергали 8Ό8-ΡΑΟΕ при восстановлении меркаптоэтанолом и затем электрически переносили в мембрану РУЭЕ (РгоВ1ой, Регкт Е1тег) согласно методу Р. Майийапа [1В.С., 262, 10035-10038 (1987)]. Мембрану, содержащую перенесенный в нее фермент, окрашивают Соотазые В1ие и полосу фермента с молекулярной массой около 65 кДа вырезали и анализировали его Ν-концевую аминокислотную последовательность в соответствии с методикой, рекомендуемой в инструкциях производителя, в газофазном белковом секвенаторе (РР80-10. ЗЫтабхи Согрогайои). Аминокислотная последовательность, полученная таким образом, показана в 8ЕО ГО N0:1. В результате исследования гомологии описанной здесь аминокислотной последовательности путем использования белковой базы данных было обнаружено, что она является новой последовательностью.
Промышленное применение
В соответствии с настоящим изобретением, могут быть обеспечены фитазы, имеющие низкое значение Км для фитиновой кислоты, и способ получения путем использования микроорганизма, обладающего способностью продуцировать и накапливать фитазы.
Фитазы могут быть добавлены к корму для разложения фитиновой кислоты как антитрофического фактора, содержащегося в корме, с увеличением, таким образом, питательной ценности корма, и одновременно становится возможной эффективная утилизация фосфата, высвобождающегося при указанном разложении.
Список последовательностей
8ЕО ГО ΝΟ: I
ДЛИНА: 17
ТИП: аминокислотная
КОЛИЧЕСТВО ЦЕПЕЙ: одна ТОПОЛОГИЯ: линейная МОЛЕКУЛЯРНЫЙ ТИП: пептид ОПИСАНИЕ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТИ:
РНе С1п Зег Уа1 Не Зег С1и Ьуз 61п РЬе Зег С1п 15 10
С1и РЬе Ъеи Азр Азп

Claims (8)

  1. ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ
    1. Фитаза, полученная из микроорганизма Мопазсиз апка, обладающая следующими свойствами:
    а) значение константы Михаэлиса (Км) от 10 до 110 мкМ при использовании фитиновой кислоты в качестве субстрата;
    б) субстратная специфичность: пнитрофенилфосфат, фитиновая кислота, Όглюкозо-6-фосфат, фруктозо-6-фосфат, Όмиоинозит-2-фосфат, П-миоинозит-1-фосфат, Όмиоинозит-1,4-дифосфат и аденозинтрифосфат;
    в) оптимальное значение рН 2,5-6,0;
    г) рН-стабильность: устойчива в диапазоне рН 2,0-8,0;
    д) оптимальная температура 45-50°С;
    е) термостойкость: устойчива до 35-60°С;
    ж) молекулярная масса приблизительно 80-140 кДа (определена методом гельфильтрации);
    з) изоэлектрическая точка (рП 4,8-5,7 (определена методом хроматофокусировки).
  2. 2. Фитаза, полученная из микроорганизма Мопазсиз апка, обладающая следующими физико-химическими свойствами:
    а) Км 27 мкМ при использовании фитиновой кислоты в качестве субстрата;
    б) субстратная специфичность: действует на фитиновую кислоту, п-нитрофенилфосфат, П-глюкозо-6-фосфат, фруктозо-6-фосфат, Όмиоинозит-2-фосфат, П-миоинозит-1-фосфат, Όмиоинозит-1,4-дифосфат и аденозинтрифосфат в качестве субстрата;
    в) оптимальное значение рН 5,5;
    г) рН-стабильность: устойчива в диапазоне рН 5,5 до 6,5;
    д) оптимальная температура 50°С;
    е) термостойкость: устойчива вплоть до 35°С;
    ж) молекулярная масса приблизительно от 80 до 100 кДа (определена методом гельфильтрации) и
    з) изоэлектрическая точка рI 5,7 (определена методом хроматофокусировки).
  3. 3. Фитаза, полученная из микроорганизма Мопазсиз апка, обладающая следующими физико-химическими свойствами:
    а) Км 20 мкМ при использовании фитиновой кислоты в качестве субстрата;
    б) субстратная специфичность: действует на фитиновую кислоту, п-нитрофенилфосфат, П-глюкозо-6-фосфат, фруктозо-6-фосфат, Όмиоинозит-2-фосфат, П-миоинозит-1-фосфат, Όмиоинозит-1,4-дифосфат и аденозинтрифосфат в качестве субстрата;
    в) оптимальное значение рН 6,0;
    г) рН-стабильность: устойчива в диапазоне рН 6,0 до 7,0;
    д) оптимальная температура 50°С;
    е) термостойкость: устойчива вплоть до 50°С;
    ж) молекулярная масса приблизительно 120 кДа (определена методом гель-фильтрации) и
    з) изоэлектрическая точка рI 4,8 (определена методом хроматофокусировки).
  4. 4. Фитаза, полученная из микроорганизма Мопаксик апка, обладающая следующими физико-химическими свойствами:
    а) Км 107 мкМ при использовании фитиновой кислоты в качестве субстрата;
    б) субстратная специфичность: действует на фитиновую кислоту, п-нитрофенилфосфат, Ό-глюкозо-б-фосфат, фруктозо-6-фосфат, Όмиоинозит-2-фосфат, Б-миоинозит-1-фосфат, Όмиоинозит-1,4-дифосфат и аденозинтрифосфат в качестве субстрата;
    в) оптимальное значение рН 2,5;
    г) рН-стабильность: устойчива в диапазоне рН 2,0 до 8,0;
    д) оптимальная температура 45°С;
    е) термостойкость: устойчива вплоть до 60°С;
    ж) молекулярная масса приблизительно 140 кДа (определена методом гель-фильтрации);
    з) изоэлектрическая точка р1 5,2 (определена методом хроматофокусировки);
    и) Ν-концевая аминокислотная последовательность: показана в БЕЦ ΙΌ ΝΟ: 1.
  5. 5. Фитаза по п.1, где микроорганизм Мопаксик апка представлен штаммом ΙΕΟ 30873.
  6. 6. Способ получения фитазы, охарактеризованной в любом из пп.1-5, который включает культивирование микроорганизма Мопаксик апка, обладающего способностью продуцировать и накапливать фитазу до тех пор, пока фитаза образуется и накапливается, и выделение фитазы из культуральной среды или клеток микроорганизма.
  7. 7. Способ по п.6, где микроорганизм Мопаксик апка представлен штаммом ΙΕΟ 30873.
  8. 8. Корм для животных, содержащий фитазу, охарактеризованную в любом из пп.1-5.
EA199900329A 1996-09-25 1997-09-25 Фитазы из микроорганизма monascus anka, способ их получения и корм для животных, содержащий указанные фитазы EA003632B1 (ru)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP25356496 1996-09-25
PCT/JP1997/003414 WO1998013480A1 (fr) 1996-09-25 1997-09-25 Nouvelle phytase et son procede de preparation

Publications (2)

Publication Number Publication Date
EA199900329A1 EA199900329A1 (ru) 1999-10-28
EA003632B1 true EA003632B1 (ru) 2003-08-28

Family

ID=17253131

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
EA199900329A EA003632B1 (ru) 1996-09-25 1997-09-25 Фитазы из микроорганизма monascus anka, способ их получения и корм для животных, содержащий указанные фитазы

Country Status (9)

Country Link
US (3) US6261592B1 (ru)
EP (1) EP0960934A4 (ru)
KR (1) KR20000036143A (ru)
CN (1) CN1231692A (ru)
AU (1) AU4397597A (ru)
CA (1) CA2266415A1 (ru)
EA (1) EA003632B1 (ru)
PL (1) PL332375A1 (ru)
WO (1) WO1998013480A1 (ru)

Families Citing this family (32)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0955362A4 (en) 1996-04-05 2002-08-14 Kyowa Hakko Kogyo Kk NOVEL PHYTASE AND GENE ENCODING SAID PHYTASE
AU2003203147B2 (en) 1998-03-23 2008-05-29 Novozymes A/S Phytase variants
US6451572B1 (en) 1998-06-25 2002-09-17 Cornell Research Foundation, Inc. Overexpression of phytase genes in yeast systems
CN100347303C (zh) * 1999-03-31 2007-11-07 康乃尔研究基金会有限公司 具有改良的肌醇六磷酸酶活性的磷酸酶
US6841370B1 (en) 1999-11-18 2005-01-11 Cornell Research Foundation, Inc. Site-directed mutagenesis of Escherichia coli phytase
FR2816632B1 (fr) * 2000-11-10 2002-12-20 Aventis Animal Nutrition Sa Nouvelles phytases bacteriennes et procede de production de ces phytases
CN100475051C (zh) * 2001-10-31 2009-04-08 菲特克斯有限责任公司 含有肌醇六磷酸酶的动物食物和方法
EP1546316B1 (en) * 2002-08-12 2010-12-01 Danisco US Inc. Mutant e. coli appa phytase enzymes and natural variants thereof, nucleic acids encoding such phytase enzymes, vectors and host cells incorporating same and methods of making and using same
US7309505B2 (en) * 2002-09-13 2007-12-18 Cornell Research Foundation, Inc. Using mutations to improve Aspergillus phytases
US20040063184A1 (en) 2002-09-26 2004-04-01 Novozymes North America, Inc. Fermentation processes and compositions
US20040253696A1 (en) 2003-06-10 2004-12-16 Novozymes North America, Inc. Fermentation processes and compositions
KR100581318B1 (ko) * 2003-12-15 2006-05-17 주식회사 중앙바이오텍 페니실리움 옥살리쿰 유래의 신규 파이테즈 유전자 및파이테즈를 생산하는 형질전환 피치아 파스토리스 균주
DK2258209T3 (da) 2004-09-27 2015-08-31 Novozymes As Phytasegranuler i dyrefoder
KR100622021B1 (ko) * 2004-12-17 2006-09-19 표용옥 건물 환기덕트의 방화 및 풍량조절 댐퍼용 핸들
GB0509956D0 (en) * 2005-05-16 2005-06-22 Danisco Method
US7919297B2 (en) 2006-02-21 2011-04-05 Cornell Research Foundation, Inc. Mutants of Aspergillus niger PhyA phytase and Aspergillus fumigatus phytase
JP5340138B2 (ja) * 2006-04-30 2013-11-13 フィード リサーチ インスティチュート チャイニーズ アカデミー オブ アグリカルチュアル サイエンシィズ 新規なフィターゼのクローニング及び発現
US8540984B2 (en) 2006-08-03 2013-09-24 Cornell Research Foundation, Inc. Phytases with improved thermal stability
CN101500430B (zh) 2006-08-07 2014-02-19 诺维信公司 用于动物饲料的酶团粒
WO2008017659A1 (en) 2006-08-07 2008-02-14 Novozymes A/S Enzyme granules for animal feed
US8192734B2 (en) 2007-07-09 2012-06-05 Cornell University Compositions and methods for bone strengthening
CN105934518A (zh) 2013-09-11 2016-09-07 诺维信公司 用于生产发酵产品的方法
US10980249B2 (en) 2014-06-27 2021-04-20 Dsm Ip Assets B.V. Method for improving the nutritional value of animal feed
CA3006992A1 (en) 2015-12-22 2017-06-29 Novozymes A/S Processes for improving fermentation product yield using phospholipase c
CA3070730A1 (en) 2017-09-15 2019-03-21 Novozymes A/S Enzyme blends and processes for improving the nutritional quality of animal feed
EP3701037A1 (en) 2017-10-23 2020-09-02 Novozymes A/S Processes for reducing lactic acid in a biofuel fermentation system
BR112020024347A2 (pt) 2018-05-31 2021-02-23 Novozymes A/S processos para aumentar o crescimento e a produtividade de levedura
BR112021014873A2 (pt) 2019-01-31 2021-10-05 Novozymes A/S Polipeptídeo, combinação de enzimas, polinucleotídeo, construto de ácido nucleico ou vetor de expressão recombinante, célula hospedeira recombinante, método de produção de um polipeptídeo, e, processo de produção de um produto de fermentação
AR119596A1 (es) 2019-08-05 2021-12-29 Novozymes As Mezclas de enzimas y procesos para producir un ingrediente alimenticio de alto contenido proteico a partir de un subproducto de la vinaza entera
MX2022006438A (es) 2019-12-16 2022-06-22 Novozymes As Procesos para obtener productos de fermentacion.
EP4149279A1 (en) 2020-05-15 2023-03-22 DSM IP Assets B.V. A method for improving the nutritional value of animal feed
WO2023237543A1 (en) 2022-06-08 2023-12-14 Dsm Ip Assets B.V. Means and methods for reducing phosphorus secretion by fish

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3297548A (en) 1964-07-28 1967-01-10 Int Minerals & Chem Corp Preparation of acid phytase
JPS57190050A (en) * 1981-05-16 1982-11-22 Hayashibara Biochem Lab Inc Production of monascus pigment
US5780292A (en) 1987-04-29 1998-07-14 Alko Group Ltd. Production of phytate degrading enzymes in trichoderma
CZ289014B6 (cs) 1989-09-27 2001-10-17 Dsm N. V. Vyčiątěná a izolovaná sekvence DNA kódující fungální fytázu, konstrukt pro expresi, vektory a transformované hostitelské buňky a způsob produkce fytázy
PT655890E (pt) 1992-07-31 2005-05-31 Ab Enzymes Gmbh Celulas recombinantes, construcoes de adn, vectores e metodos para expressao de enzimas degradantes de fitato em proporcoes desejadas

Also Published As

Publication number Publication date
US6372247B1 (en) 2002-04-16
AU4397597A (en) 1998-04-17
PL332375A1 (en) 1999-09-13
US6261592B1 (en) 2001-07-17
CN1231692A (zh) 1999-10-13
US6337085B1 (en) 2002-01-08
EA199900329A1 (ru) 1999-10-28
KR20000036143A (ko) 2000-06-26
CA2266415A1 (en) 1998-04-02
US20020037571A1 (en) 2002-03-28
WO1998013480A1 (fr) 1998-04-02
EP0960934A1 (en) 1999-12-01
EP0960934A4 (en) 2003-09-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EA003632B1 (ru) Фитазы из микроорганизма monascus anka, способ их получения и корм для животных, содержащий указанные фитазы
KR0169913B1 (ko) 신균주 바실러스속 ds11과 이로부터 생산되는 신규 파이타아제
Fu et al. Bacillus phytases: present scenario and future perspectives
Roopesh et al. Comparison of phytase production on wheat bran and oilcakes in solid-state fermentation by Mucor racemosus
US4959311A (en) Method of degrading keratinaceous material and bacteria useful therefore
Wang et al. Phytase of molds used in oriental food fermentation
US5171682A (en) Purified Bacillus licheniformis PWD-1 keratinase
Kumar et al. Screening, optimization and application of extracellular phytase from Bacillus megaterium isolated from poultry waste
DK143164B (da) Fremgangsmaade til fremstilling af sur protease
Qasim et al. ISOLATION, SCREENING AND PRODUCTION OF PHYTATE DEGRADING ENZYME (PHYTASE) FROM LOCAL FUNGI ISOLATE.
US3616234A (en) Method of preparing protease from candida lipolytica
CN111607575B (zh) 一种转氨酶phta、制备方法和应用
KR101190790B1 (ko) 신규 바실러스 속 ｃｊｂ－０１ 균주 및 사료 첨가제
JPH01199590A (ja) アスコルビン酸−２−リン酸の製造法
JPH0759562A (ja) フィターゼ及びその製造法
SU738392A1 (ru) Способ получени биомассы
KR100411485B1 (ko) 내열성 피타아제를 대량 생산하는 신규한 아스퍼질러스 속 균주와 이를 이용한 피틱산의 분해방법
KR19990086028A (ko) 신규한 파이타제 유전자, 재조합 파이타제 및 그 용도
CN111004789B (zh) 一种耐硫酸铵的木糖苷酶突变体v322dh328dt329e
CN110862976B (zh) 一种盐耐受性改良的木糖苷酶突变体k321dh328d及其应用
Tushir et al. Production of Novel Fungal Phytase and Its Applications
SU1495369A1 (ru) Питательна среда дл выращивани спорового посевного материала бактерий рода BocILLUS - продуцентов гидролитических ферментов
NO792328L (no) Fremgangsmaate for fremstilling av biologiske preparater
JPH05236955A (ja) 耐熱性アルカリホスファターゼの製造法
SU575037A3 (ru) Способ получени зеаксантина

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Lapse of a eurasian patent due to non-payment of renewal fees within the time limit in the following designated state(s)

Designated state(s): AM AZ BY KZ KG MD TJ TM RU