DK158526B - Reagens til lipasebestemmelse og fremgangsmaade til fremstilling deraf - Google Patents
Reagens til lipasebestemmelse og fremgangsmaade til fremstilling deraf Download PDFInfo
- Publication number
- DK158526B DK158526B DK001380A DK1380A DK158526B DK 158526 B DK158526 B DK 158526B DK 001380 A DK001380 A DK 001380A DK 1380 A DK1380 A DK 1380A DK 158526 B DK158526 B DK 158526B
- Authority
- DK
- Denmark
- Prior art keywords
- weight
- reagent according
- buffer
- reagent
- protective colloid
- Prior art date
Links
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 title claims description 54
- 239000004367 Lipase Substances 0.000 title claims description 21
- 108090001060 Lipase Proteins 0.000 title claims description 19
- 102000004882 Lipase Human genes 0.000 title claims description 19
- 235000019421 lipase Nutrition 0.000 title claims description 19
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 15
- 239000000839 emulsion Substances 0.000 claims description 40
- XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N Urea Chemical compound NC(N)=O XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 33
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 31
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 26
- 102000005311 colipase Human genes 0.000 claims description 24
- 239000007983 Tris buffer Substances 0.000 claims description 23
- 108020002632 colipase Proteins 0.000 claims description 23
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M sodium chloride Inorganic materials [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 23
- UFTFJSFQGQCHQW-UHFFFAOYSA-N triformin Chemical compound O=COCC(OC=O)COC=O UFTFJSFQGQCHQW-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 21
- 239000000084 colloidal system Substances 0.000 claims description 20
- 230000001681 protective effect Effects 0.000 claims description 20
- 239000012190 activator Substances 0.000 claims description 19
- 239000002202 Polyethylene glycol Substances 0.000 claims description 18
- 239000004202 carbamide Substances 0.000 claims description 18
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 claims description 18
- 229920001223 polyethylene glycol Polymers 0.000 claims description 18
- 239000000872 buffer Substances 0.000 claims description 17
- 239000003755 preservative agent Substances 0.000 claims description 16
- 230000002335 preservative effect Effects 0.000 claims description 13
- HSINOMROUCMIEA-FGVHQWLLSA-N (2s,4r)-4-[(3r,5s,6r,7r,8s,9s,10s,13r,14s,17r)-6-ethyl-3,7-dihydroxy-10,13-dimethyl-2,3,4,5,6,7,8,9,11,12,14,15,16,17-tetradecahydro-1h-cyclopenta[a]phenanthren-17-yl]-2-methylpentanoic acid Chemical class C([C@@]12C)C[C@@H](O)C[C@H]1[C@@H](CC)[C@@H](O)[C@@H]1[C@@H]2CC[C@]2(C)[C@@H]([C@H](C)C[C@H](C)C(O)=O)CC[C@H]21 HSINOMROUCMIEA-FGVHQWLLSA-N 0.000 claims description 12
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 claims description 12
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims description 12
- -1 bile acid alkali salt Chemical class 0.000 claims description 8
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 8
- 239000000758 substrate Substances 0.000 claims description 8
- 230000008033 biological extinction Effects 0.000 claims description 7
- 239000003613 bile acid Substances 0.000 claims description 6
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 claims description 6
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims description 6
- LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N tris Chemical compound OCC(N)(CO)CO LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 5
- JKMHFZQWWAIEOD-UHFFFAOYSA-N 2-[4-(2-hydroxyethyl)piperazin-1-yl]ethanesulfonic acid Chemical compound OCC[NH+]1CCN(CCS([O-])(=O)=O)CC1 JKMHFZQWWAIEOD-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- 125000004432 carbon atom Chemical group C* 0.000 claims description 4
- 239000003995 emulsifying agent Substances 0.000 claims description 4
- 150000002402 hexoses Chemical class 0.000 claims description 4
- 150000002972 pentoses Chemical class 0.000 claims description 4
- OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N Calcium Chemical compound [Ca] OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- 239000007995 HEPES buffer Substances 0.000 claims description 3
- 239000003513 alkali Substances 0.000 claims description 3
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 3
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 claims description 3
- 230000008569 process Effects 0.000 claims description 3
- 239000006173 Good's buffer Substances 0.000 claims description 2
- 150000001540 azides Chemical class 0.000 claims description 2
- 239000011203 carbon fibre reinforced carbon Substances 0.000 claims description 2
- ZBCBWPMODOFKDW-UHFFFAOYSA-N diethanolamine Chemical compound OCCNCCO ZBCBWPMODOFKDW-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 2
- TWRXJAOTZQYOKJ-UHFFFAOYSA-L Magnesium chloride Chemical compound [Mg+2].[Cl-].[Cl-] TWRXJAOTZQYOKJ-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims 2
- 239000012928 buffer substance Substances 0.000 claims 2
- WFCSWCVEJLETKA-UHFFFAOYSA-N 2-piperazin-1-ylethanol Chemical compound OCCN1CCNCC1 WFCSWCVEJLETKA-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M Ilexoside XXIX Chemical compound C[C@@H]1CC[C@@]2(CC[C@@]3(C(=CC[C@H]4[C@]3(CC[C@@H]5[C@@]4(CC[C@@H](C5(C)C)OS(=O)(=O)[O-])C)C)[C@@H]2[C@]1(C)O)C)C(=O)O[C@H]6[C@@H]([C@H]([C@@H]([C@H](O6)CO)O)O)O.[Na+] DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M 0.000 claims 1
- 239000001110 calcium chloride Substances 0.000 claims 1
- 229910001628 calcium chloride Inorganic materials 0.000 claims 1
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 claims 1
- 125000005313 fatty acid group Chemical group 0.000 claims 1
- 229910001629 magnesium chloride Inorganic materials 0.000 claims 1
- 239000000178 monomer Substances 0.000 claims 1
- 238000005375 photometry Methods 0.000 claims 1
- PXIPVTKHYLBLMZ-UHFFFAOYSA-N Sodium azide Chemical compound [Na+].[N-]=[N+]=[N-] PXIPVTKHYLBLMZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 38
- KXGVEGMKQFWNSR-LLQZFEROSA-N deoxycholic acid Chemical compound C([C@H]1CC2)[C@H](O)CC[C@]1(C)[C@@H]1[C@@H]2[C@@H]2CC[C@H]([C@@H](CCC(O)=O)C)[C@@]2(C)[C@@H](O)C1 KXGVEGMKQFWNSR-LLQZFEROSA-N 0.000 description 22
- 229960003964 deoxycholic acid Drugs 0.000 description 21
- FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N D-Mannitol Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N 0.000 description 17
- 229930195725 Mannitol Natural products 0.000 description 16
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 16
- 229940040461 lipase Drugs 0.000 description 16
- 239000000594 mannitol Substances 0.000 description 16
- 235000010355 mannitol Nutrition 0.000 description 16
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 14
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 12
- BDERNNFJNOPAEC-UHFFFAOYSA-N propan-1-ol Chemical compound CCCO BDERNNFJNOPAEC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 10
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 description 9
- BAECOWNUKCLBPZ-HIUWNOOHSA-N Triolein Natural products O([C@H](OCC(=O)CCCCCCC/C=C\CCCCCCCC)COC(=O)CCCCCCC/C=C\CCCCCCCC)C(=O)CCCCCCC/C=C\CCCCCCCC BAECOWNUKCLBPZ-HIUWNOOHSA-N 0.000 description 8
- PHYFQTYBJUILEZ-UHFFFAOYSA-N Trioleoylglycerol Natural products CCCCCCCCC=CCCCCCCCC(=O)OCC(OC(=O)CCCCCCCC=CCCCCCCCC)COC(=O)CCCCCCCC=CCCCCCCCC PHYFQTYBJUILEZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 8
- PHYFQTYBJUILEZ-IUPFWZBJSA-N triolein Chemical compound CCCCCCCC\C=C/CCCCCCCC(=O)OCC(OC(=O)CCCCCCC\C=C/CCCCCCCC)COC(=O)CCCCCCC\C=C/CCCCCCCC PHYFQTYBJUILEZ-IUPFWZBJSA-N 0.000 description 8
- 229940117972 triolein Drugs 0.000 description 8
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 7
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 6
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 6
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 6
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 6
- 235000019626 lipase activity Nutrition 0.000 description 5
- 150000003626 triacylglycerols Chemical class 0.000 description 5
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 4
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 4
- AWDRATDZQPNJFN-VAYUFCLWSA-N taurodeoxycholic acid Chemical compound C([C@H]1CC2)[C@H](O)CC[C@]1(C)[C@@H]1[C@@H]2[C@@H]2CC[C@H]([C@@H](CCC(=O)NCCS(O)(=O)=O)C)[C@@]2(C)[C@@H](O)C1 AWDRATDZQPNJFN-VAYUFCLWSA-N 0.000 description 4
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 3
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 3
- KXGVEGMKQFWNSR-UHFFFAOYSA-N deoxycholic acid Natural products C1CC2CC(O)CCC2(C)C2C1C1CCC(C(CCC(O)=O)C)C1(C)C(O)C2 KXGVEGMKQFWNSR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 3
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 3
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 3
- 150000004665 fatty acids Chemical group 0.000 description 3
- 239000003921 oil Substances 0.000 description 3
- 235000019198 oils Nutrition 0.000 description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 3
- 150000005846 sugar alcohols Chemical class 0.000 description 3
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 3
- 102000013142 Amylases Human genes 0.000 description 2
- 108010065511 Amylases Proteins 0.000 description 2
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 2
- VTYYLEPIZMXCLO-UHFFFAOYSA-L Calcium carbonate Chemical compound [Ca+2].[O-]C([O-])=O VTYYLEPIZMXCLO-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 2
- QNAYBMKLOCPYGJ-REOHCLBHSA-N L-alanine Chemical compound C[C@H](N)C(O)=O QNAYBMKLOCPYGJ-REOHCLBHSA-N 0.000 description 2
- LRHPLDYGYMQRHN-UHFFFAOYSA-N N-Butanol Chemical compound CCCCO LRHPLDYGYMQRHN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102000019280 Pancreatic lipases Human genes 0.000 description 2
- 108050006759 Pancreatic lipases Proteins 0.000 description 2
- 206010033645 Pancreatitis Diseases 0.000 description 2
- UYXTWWCETRIEDR-UHFFFAOYSA-N Tributyrin Chemical compound CCCC(=O)OCC(OC(=O)CCC)COC(=O)CCC UYXTWWCETRIEDR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- XSTXAVWGXDQKEL-UHFFFAOYSA-N Trichloroethylene Chemical compound ClC=C(Cl)Cl XSTXAVWGXDQKEL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 2
- 235000004279 alanine Nutrition 0.000 description 2
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 2
- 239000008346 aqueous phase Substances 0.000 description 2
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 2
- 239000011575 calcium Substances 0.000 description 2
- 229910052791 calcium Inorganic materials 0.000 description 2
- 230000008859 change Effects 0.000 description 2
- 150000003841 chloride salts Chemical class 0.000 description 2
- 239000000470 constituent Substances 0.000 description 2
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 description 2
- 230000007062 hydrolysis Effects 0.000 description 2
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 description 2
- 238000011068 loading method Methods 0.000 description 2
- 239000004006 olive oil Substances 0.000 description 2
- 235000008390 olive oil Nutrition 0.000 description 2
- 229940116369 pancreatic lipase Drugs 0.000 description 2
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 2
- 239000012071 phase Substances 0.000 description 2
- 239000001267 polyvinylpyrrolidone Substances 0.000 description 2
- 235000013855 polyvinylpyrrolidone Nutrition 0.000 description 2
- 229920000036 polyvinylpyrrolidone Polymers 0.000 description 2
- 241000894007 species Species 0.000 description 2
- BHQCQFFYRZLCQQ-UHFFFAOYSA-N (3alpha,5alpha,7alpha,12alpha)-3,7,12-trihydroxy-cholan-24-oic acid Natural products OC1CC2CC(O)CCC2(C)C2C1C1CCC(C(CCC(O)=O)C)C1(C)C(O)C2 BHQCQFFYRZLCQQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- LDVVTQMJQSCDMK-UHFFFAOYSA-N 1,3-dihydroxypropan-2-yl formate Chemical compound OCC(CO)OC=O LDVVTQMJQSCDMK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- OWEGMIWEEQEYGQ-UHFFFAOYSA-N 100676-05-9 Natural products OC1C(O)C(O)C(CO)OC1OCC1C(O)C(O)C(O)C(OC2C(OC(O)C(O)C2O)CO)O1 OWEGMIWEEQEYGQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 244000215068 Acacia senegal Species 0.000 description 1
- GUBGYTABKSRVRQ-XLOQQCSPSA-N Alpha-Lactose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)O[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-XLOQQCSPSA-N 0.000 description 1
- 239000004382 Amylase Substances 0.000 description 1
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 1
- BHPQYMZQTOCNFJ-UHFFFAOYSA-N Calcium cation Chemical group [Ca+2] BHPQYMZQTOCNFJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004380 Cholic acid Substances 0.000 description 1
- FBPFZTCFMRRESA-FSIIMWSLSA-N D-Glucitol Natural products OC[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-FSIIMWSLSA-N 0.000 description 1
- FBPFZTCFMRRESA-JGWLITMVSA-N D-glucitol Chemical compound OC[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-JGWLITMVSA-N 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-QTVWNMPRSA-N D-mannopyranose Chemical compound OC[C@H]1OC(O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-QTVWNMPRSA-N 0.000 description 1
- 229920002307 Dextran Polymers 0.000 description 1
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 1
- 108090000371 Esterases Proteins 0.000 description 1
- 229920000084 Gum arabic Polymers 0.000 description 1
- SQUHHTBVTRBESD-UHFFFAOYSA-N Hexa-Ac-myo-Inositol Natural products CC(=O)OC1C(OC(C)=O)C(OC(C)=O)C(OC(C)=O)C(OC(C)=O)C1OC(C)=O SQUHHTBVTRBESD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 101000876022 Homo sapiens Colipase Proteins 0.000 description 1
- 101001134456 Homo sapiens Pancreatic triacylglycerol lipase Proteins 0.000 description 1
- GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N Lactose Natural products OC[C@H]1O[C@@H](O[C@H]2[C@H](O)[C@@H](O)C(O)O[C@@H]2CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N 0.000 description 1
- JLVVSXFLKOJNIY-UHFFFAOYSA-N Magnesium ion Chemical compound [Mg+2] JLVVSXFLKOJNIY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- GUBGYTABKSRVRQ-PICCSMPSSA-N Maltose Natural products O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)OC(O)[C@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-PICCSMPSSA-N 0.000 description 1
- FSVCELGFZIQNCK-UHFFFAOYSA-N N,N-bis(2-hydroxyethyl)glycine Chemical compound OCCN(CCO)CC(O)=O FSVCELGFZIQNCK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010033647 Pancreatitis acute Diseases 0.000 description 1
- 229920003171 Poly (ethylene oxide) Polymers 0.000 description 1
- 239000004698 Polyethylene Substances 0.000 description 1
- 108010071390 Serum Albumin Proteins 0.000 description 1
- 102000007562 Serum Albumin Human genes 0.000 description 1
- NINIDFKCEFEMDL-UHFFFAOYSA-N Sulfur Chemical compound [S] NINIDFKCEFEMDL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 101001134452 Sus scrofa Pancreatic triacylglycerol lipase Proteins 0.000 description 1
- WBWWGRHZICKQGZ-UHFFFAOYSA-N Taurocholic acid Natural products OC1CC2CC(O)CCC2(C)C2C1C1CCC(C(CCC(=O)NCCS(O)(=O)=O)C)C1(C)C(O)C2 WBWWGRHZICKQGZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- GSEJCLTVZPLZKY-UHFFFAOYSA-N Triethanolamine Chemical compound OCCN(CCO)CCO GSEJCLTVZPLZKY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000000205 acacia gum Substances 0.000 description 1
- 235000010489 acacia gum Nutrition 0.000 description 1
- CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N acetone Substances CC(C)=O CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 1
- 201000003229 acute pancreatitis Diseases 0.000 description 1
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 1
- BNABBHGYYMZMOA-AHIHXIOASA-N alpha-maltoheptaose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)O[C@H](O[C@@H]2[C@H](O[C@H](O[C@@H]3[C@H](O[C@H](O[C@@H]4[C@H](O[C@H](O[C@@H]5[C@H](O[C@H](O[C@@H]6[C@H](O[C@H](O)[C@H](O)[C@H]6O)CO)[C@H](O)[C@H]5O)CO)[C@H](O)[C@H]4O)CO)[C@H](O)[C@H]3O)CO)[C@H](O)[C@H]2O)CO)[C@H](O)[C@H]1O BNABBHGYYMZMOA-AHIHXIOASA-N 0.000 description 1
- 235000001014 amino acid Nutrition 0.000 description 1
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 description 1
- 235000019418 amylase Nutrition 0.000 description 1
- 239000003125 aqueous solvent Substances 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N beta-D-glucose Chemical compound OC[C@H]1O[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N 0.000 description 1
- GUBGYTABKSRVRQ-QUYVBRFLSA-N beta-maltose Chemical compound OC[C@H]1O[C@H](O[C@H]2[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)O[C@@H]2CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-QUYVBRFLSA-N 0.000 description 1
- 239000007998 bicine buffer Substances 0.000 description 1
- 230000033228 biological regulation Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 210000001124 body fluid Anatomy 0.000 description 1
- 239000010839 body fluid Substances 0.000 description 1
- 229940098773 bovine serum albumin Drugs 0.000 description 1
- 229910000019 calcium carbonate Inorganic materials 0.000 description 1
- 229910001424 calcium ion Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 1
- 238000006555 catalytic reaction Methods 0.000 description 1
- BHQCQFFYRZLCQQ-OELDTZBJSA-N cholic acid Chemical compound C([C@H]1C[C@H]2O)[C@H](O)CC[C@]1(C)[C@@H]1[C@@H]2[C@@H]2CC[C@H]([C@@H](CCC(O)=O)C)[C@@]2(C)[C@@H](O)C1 BHQCQFFYRZLCQQ-OELDTZBJSA-N 0.000 description 1
- 235000019416 cholic acid Nutrition 0.000 description 1
- 229960002471 cholic acid Drugs 0.000 description 1
- 239000000356 contaminant Substances 0.000 description 1
- 239000007857 degradation product Substances 0.000 description 1
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 1
- 229940009976 deoxycholate Drugs 0.000 description 1
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 239000008121 dextrose Substances 0.000 description 1
- 235000014113 dietary fatty acids Nutrition 0.000 description 1
- 238000007865 diluting Methods 0.000 description 1
- 230000002183 duodenal effect Effects 0.000 description 1
- 230000001804 emulsifying effect Effects 0.000 description 1
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 239000000194 fatty acid Substances 0.000 description 1
- 229930195729 fatty acid Natural products 0.000 description 1
- 239000000945 filler Substances 0.000 description 1
- 235000021588 free fatty acids Nutrition 0.000 description 1
- 238000007710 freezing Methods 0.000 description 1
- 230000008014 freezing Effects 0.000 description 1
- 235000011389 fruit/vegetable juice Nutrition 0.000 description 1
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 1
- 102000046759 human PNLIP Human genes 0.000 description 1
- 150000002440 hydroxy compounds Chemical class 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 230000005764 inhibitory process Effects 0.000 description 1
- CDAISMWEOUEBRE-GPIVLXJGSA-N inositol Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)[C@@H]1O CDAISMWEOUEBRE-GPIVLXJGSA-N 0.000 description 1
- 229960000367 inositol Drugs 0.000 description 1
- FZWBNHMXJMCXLU-BLAUPYHCSA-N isomaltotriose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1OC[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)C=O)O1 FZWBNHMXJMCXLU-BLAUPYHCSA-N 0.000 description 1
- 150000002576 ketones Chemical class 0.000 description 1
- 230000003907 kidney function Effects 0.000 description 1
- 239000008101 lactose Substances 0.000 description 1
- 230000031700 light absorption Effects 0.000 description 1
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 1
- 150000004668 long chain fatty acids Chemical group 0.000 description 1
- 229910001425 magnesium ion Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 1
- QYSGYZVSCZSLHT-UHFFFAOYSA-N octafluoropropane Chemical compound FC(F)(F)C(F)(F)C(F)(F)F QYSGYZVSCZSLHT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920001542 oligosaccharide Polymers 0.000 description 1
- 229920001515 polyalkylene glycol Polymers 0.000 description 1
- 229920000573 polyethylene Polymers 0.000 description 1
- 229940057838 polyethylene glycol 4000 Drugs 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 238000011867 re-evaluation Methods 0.000 description 1
- 230000035484 reaction time Effects 0.000 description 1
- 238000001953 recrystallisation Methods 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- CDAISMWEOUEBRE-UHFFFAOYSA-N scyllo-inosotol Natural products OC1C(O)C(O)C(O)C(O)C1O CDAISMWEOUEBRE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 159000000000 sodium salts Chemical class 0.000 description 1
- 239000000600 sorbitol Substances 0.000 description 1
- 239000011593 sulfur Substances 0.000 description 1
- 229910052717 sulfur Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000004094 surface-active agent Substances 0.000 description 1
- WBWWGRHZICKQGZ-GIHLXUJPSA-N taurocholic acid Chemical compound C([C@@H]1C[C@H]2O)[C@@H](O)CC[C@]1(C)[C@@H]1[C@@H]2[C@@H]2CC[C@@H]([C@@H](CCC(=O)NCCS(O)(=O)=O)C)[C@@]2(C)[C@H](O)C1 WBWWGRHZICKQGZ-GIHLXUJPSA-N 0.000 description 1
- 150000004670 unsaturated fatty acids Chemical group 0.000 description 1
- 210000002700 urine Anatomy 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/34—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase
- C12Q1/44—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase involving esterase
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10T—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER US CLASSIFICATION
- Y10T436/00—Chemistry: analytical and immunological testing
- Y10T436/10—Composition for standardization, calibration, simulation, stabilization, preparation or preservation; processes of use in preparation for chemical testing
- Y10T436/107497—Preparation composition [e.g., lysing or precipitation, etc.]
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Description
i
DK 158526B
Den foreliggende opfindelse angår et genfortyndeligt tørreagens til turbidimetrisk bestemmelse af lipase, hvilket reagens ved vandtilsætning danner en emulsion med et indhold af substratolie, beskyttelseskolloid, emulgator og aktivator.
5
Endvidere angår opfindelsen en fremgangsmåde til fremstilling af tørreagenset.
Bestemmelserne af enzymerne amylase (E.C. 3.2.1.1) og 10 lipase (E.C. 3.1.1.3) har en høj udsagnskraft for pankre-assygdommens diagnostik. I tilfælde af akut pankreatitis sker der i løbet af få timer en undertiden meget massiv forøgelse af begge enzymer i serumet. I tilfælde af intakt nyrefunktion bliver imidlertid amylasen som følge af dens 15 lave molekylvægt hurtigt igen udskilt, medens lipaseakti-viteten i serumet vedbliver at være forøget i længere tid.
En sikker diagnose af pankreatitis kan fås ved bestemmelse af begge enzymerne.
20 Lipasen splater primært α-esterbindingen i et triglycerid, fortrinsvis med langkædede fedtsyrerester, til dannelse af di-glyceridet og den frie fedtsyre. Den videre omsætning til dannelse af monoglyceridet forløber betydeligt langsommere.
25 Medens de sædvanlige af enzymer katalyserede reaktioner forløber i den vandige fase, fungerer lipasen kun ved grænsefladen oliedråber/vand. Herved adskiller den sig fra esteraserne, som kun reagerer i den vandige fase. Foruden de kemiske parametre bliver kinetiken derfor i høj grad på-30 virket af beskaffenheden af substratets overflade.
Titrimetriske lipasebestemmelsesmetoder kendes. De kunne imidlertid som følge af den til dels vanskelige håndtering, længere reaktionstid og det højere prøvebehov kun i be-35 grænset omfang vinde indpas i det klinisk-kemiske rutine laboratorium.
DK 158526 B
2
De væsentlige ulemper ved den titrimetriske bestemmelsesmetode, nemlig det høje prøvebehov og de lange inkubationstider, undgås ved de turbidimetriske metoder, ved hvilke uklarhedsklaringen i en triglycerid/vand-emulsion kontrolleres 5 fotometrisk. Et betydeligt problem ved den turbidimetriske bestemmelse er imidlertid fremstillingen af en emulsion, der til stadighed har pålidelig ens dråbestørrelse.
Denne er af særlig betydning, da reaktionens kinetik påvirkes kraftigt af størrelsen af triglyceriddråberne. Fra 10 tysk fremlæggelsesskrift nr. 1.961.983 kendes ganske vist allerede en olivenolie-tøremulsion, der er egnet til den titrimetriske bestemmelse af lipaseaktiviteten. Med denne tøremulsion er triglyceridindholdet imidlertid ikke egnet til en fotanetrisk bestemmelse af uklarhedsklaringen som 15 følge af den høje lysabsorption. Ved fortynding af dette reagens med henblik på også at gøre det egnet til den turbidimetriske, kinetiske lipasebestemmelse forskydes imidlertid parametrene således, at man ikke længere opnår en reaktion af nulte orden.
20
Endvidere kendes fra tysk offentliggørelsesskrift 2.719.704 et reagens til anvendelse ved bestemmelse af en prøves lipaseak-tivitet. Det således kendte reagens består af en fast grundmasse af et ensartet med et triglycerid imprægneret hjælpe-25 stof, der består af polyethylenglycol og en sukkerart eller sukkeralkohol valgt blandt mannitol, inositol, sorbitol, maltose, dextrose, lactose og dextran samt blandinger deraf.
Endelig kendes fra Chemical Abstracts Vol. 84, (1976), nr.
30 70752E, Rathelot et. al., en fremgangsmåde til bestemmelse af pancreatisk lipase og colipase. Ved hjælp af denne fremgangsmåde blev hydrolysehastigheden af langkædede triglycerider ved hjælp af ren kvægpankreasli påse bestemt i nærværelse af varierende mængder galdesyresalte og colipase. Den enzymkatalyserede 35 hydrolyse af langkædede triglycerider ved hjælp af pankreasli-pase fra nogle arter blev aktiveret ved tilsætning af colipase
DK 158526B
3 fra andre arter. Undersøgelser vedrørende aktiveringen af pancreas! ipase ved hjælp af colipase i nærværelse af galdsyresal-te muliggjorde re-evaluering af de optimale betingelser for bestemmelsen af lipase og udviklingen af en procedure til ana-5 lyse af colipase.
Den foreliggende opfindelse tager derfor sigte på at angive et især til den turbidimetriske eller nephelometriske aktivitetsbestemmelse af lipase egnet reagens, som foreligger i tør form og ved hjælp af simpel tilsætning af vand kan overføres til en emulsion med reproducerbar ens dråbestørrelse. Et yderligere formål med opfindelsen er at angive te sådant reagens, med hvilket dråbestørrelsen i den gendannede emulsion kan reguleres ved hjælp af tørreagensets kvantitative sammensætning og i vid udstrækning er uafhængig af den til fremstilling af tørreagens benyttede tri'glycerinemulsion. Herved skal det undgås, at anvenderen selv skal fremstille triglyceridemulsionen umiddelbart før prøvens gennemførelse. Da nemlig substratover- 2 Π fladens beskaffenhed i stort omfang bestemmer enzymets aktivitet (Clin. chem. 23, 522-531, 1977), kræves der til pålidelige resultater en substatoverflade, der konstant vedbliver at være ens, også i henseende til dråbestørrelsen. Emulsionskvaliteten er imidlertid stærkt afhængig af 2 5 fremstillingsteknikken og er erfaringsmæssigt endog ved overholdelse af bestemte forskrifter forskellig ved gennemførelse af forskellige personer, så at betydelige afvigelser optræder i de målte aktivitetsværdier. Også denne vanskelighed skal afhjælpes ved hjælp af opfindelsen.
30
Disse formål opnås ved hjælp af et genfortyndeligt - tørreagens til især turbidimitrisk bestemmelse af lipase, der ved vandtilsætning danner en emulsion med et indhold af substratolie, beskyttelseskolloid, emulgator og aktivator, 3 5 hvilket reagens er ejendommeligt ved, at det indeholder 0,2 til 10 vægt-S flydende triglycerid, 20 til 90 vægt-% beskyttelseskolloid,
DK 158526B
4 5 til 60 vægt-% galdesyrealkalisalt, 0,001 til 0,1 vægt-% colipase, 0,1 til 2,0 vægt-% konserveringsmiddel, eventuelt 5 til 20 vægt-% urinstof, 5 3 til 50 vægt-% puffermateriale for pH 6,0 til 10,5 og o,5 til 5 vægt-% aktivator.
Det har overraskende vist sig, at med sammensætningen i-følge opfindelsen af et tørreagens opnås altid samme drå-bestørrelse i den gendannede emulsion i tilfælde af uforandret kvantitativ sammensætning, og desuden også at beskaffenheden af substratoverfladen reproducerbart er således beskaffen, at der altid opnås en høj reaktionshastighed og et reaktionsforløb af nulte orden, hvilket er forudsæt-15 ning for en i praksis tilfredsstillende turbidimetrisk, kinetisk aktivitetsbestemmelse.
Ved hjælp af ændring af den kvantitative sammensætning indenfor rammerne af de ovenfor for de enkelte bestanddele 20 i reagenset angivne variationsbredder kan der uafhængigt af fremstillingen fastlægges en bestemt dråbestørrelse for den gendannede eller genfortyndede emulsion. Eftersom reagensmængdens begyndelsesekstinktion bliver betinget af indholdet af triglycerid, skal man i reglen gå ud fra en 25 bestemt ønsket triglyceridkoncentration, og mængderne af de øvrige bestanddele kan derefter afpasses efter de givne forhold med hensyn til den tilstræbte dråbestørrelse.
Som triglycerid egner sig i og for sig såvel naturlige som 30 syntetiske triglycerider med fedtsyrerester mellem ca. 4 og ca.. 22 carbonatomer. Eksempelvis har også tributyrin vist sig egnet. Imidlertid foretrækkes triglycerider med længe- rekædede, umættede fedtsyrerester, især triglycerider, hvis fedtsyrerester indeholder 8 til 20 carbonatomer og 1 til 8, 3 5 fortrinsvis 1 til 3 qarbon-carbon-dobbeltbindinger. P.g.a. sin lette tilgængelighed foretrækkes især triolein, men også olivenolie er meget velegnet. Den foretrukne triglyceridmængde andrager 0,2 til 2,0 vægt-%.
5
DK 158526B
Som beskyttelseskolloid kommer de af kemikeren hertil kendte stoffer i betragtning, såsom polyhydroxyforbindelser, serumalbumin, polyvinylpyrrolidon, faste polyethylenoxider og lignende. Polyhydroxyforbindelser foretrækkes, især monomer eller 5 polymer pentose eller hexose med 1 til 10 pentose- eller hexo* se-enheder i molekylet og/eller ved stuetemperatur fast poly-ethylenglykol. Foretrukne eksempler på egnede hydroxyforbin-delser er mannitol og lignende sukkeralkoholer, oligosaccharid af glucose, mannose, maltoheptaose, polyethylenglykol med en middelmolekylvægt mellem 3500 og 7000 og lignende. Andre anvendelige beskyttelseskolloider er f.eks. aminosyrer, såsom alanin, plantegummiarter, såsom gummi arabicum osv. Den foretrukne mængde beskyttelseskolloid eller en blanding af beskyttelseskolloider andrager 50 til 70 vægt-%. Særlig egnet har en *5 blanding af sukkeralkohol og polyalkylenglykol vist sig at være .
Som galdesyre kommer de kendte overfladeaktive galdesyrer, såsom cholsyre, taurocholsyre, desoxycholsyre, taurodesoxy- 20 cholsyre, glydodesoxycholsyre eller salte deraf, især natriumsaltet i betragtning. Den foretrukne mængde andrager 10 til 15 vægt-%.
En yderligere væsentlig bestanddel af reagenset ifølge opfin- 25 delsen er colipase. Særlig egnet er en for forureninger fri colipase. Den foretrukne mængde andrager 0,003 til 0,01 vægt-%.
Som konserveringsmidler anvendes indenfor opfindelsens rammer sådanne, som ikke påvirker den enzymatiske aktivitet af lipa- o 0 sen, der skal bestemmes. Særligt egnede er alkaliazideE·, især natriumazid. Også andre konserveringsmidler, såsom eksempelvis thiozid og andre svovlholdige konserveringsmidler, er imidlertid ligeledes egnede. Den foretrukne mængde konserveringsmiddel andrager 0,2 til 0,7 vægt-%.
Reagenset ifølge opfindelsen indeholder endvidere urinstof, fortrinsvis 10 til 15 vægt-%.
35
DK 158526 B
6
Som puffermateriale egner sig alle kendte puffere, der er i stand til indenfor rammerne af reagenset ifølge opfindelsen at indstille en pH- værdi mellem 6,0 og 10,5. Det foretrukne pH-område ligger mellem 8,3 og 9,5. Eksempler på egnede puffere 5 er diethanolaminpuffer, triethanolaminpuffer, tris-puffer og goodpuffer, såsom hepes-puffer (velegnet til tilsætning før lyophiliseringen), taps-puffer og bicine. Især foretrækkes tris-puffer. Den foretrukne puffermaterialemængde ligger mellem 3 og 10 vægt-%. En yderligere aktivator er calciumioner. Da 10 disse danner uopløselige forbindelser med desoxycholsyre, foretrækkes taurodesoxycholsyre som galdesyre i tilfælde af tilstedeværelse af calcium, da denne syre tillader højere calciumkoncentrationer i området fra 1 til 5 mmol.
15 Udover de nævnte væsentlige bestanddele kan reagenset ifølge opfindelsen også til bestemte formål yderligere indeholde indifferente tilsætningsstoffer (fyldstoffer), som letter håndteringen.
20 Endelig indeholder reagenset ifølge opfindelsen også aktivator for lipasen. Lipaseaktivatorer kendes. Chlorider foretrækkes, især natriumchlorid, men også andre alkali- eller jordalkali-chlorider, for så vidt de ikke fører til dannelse af uopløselige forbindelser med andre bestanddele af reagenset ifølge 25 opfindelsen eller prøven. Også magnesiumioner virker aktiverende .
Vedrørende virkemåden af de enkelte bestanddele i reagenset ifølge opfindelsen indenfor opfindelsens rammer foreligger 30 der ikke klarhed i enhver henseende. Det antages imidlertid, at colipasen ophæver en som følge af det høje indhold af galdesyresalt, især af desoxycholat, taurodesoxycholat eller glykodesoxycholat, bevirket hæmning af enzymet og forbedrer lineariteten af reaktionsforløbet. Urinstof synes at udøve en 35 indflydelse på emulsionens vand/lipid-overflade og at stabilisere denne.
i
DK 158526B
Fremgangsmåden ifølge opfindelsen til fremstilling af tørrea--genset er ejendommelig ved, at man fresmtiller en vandig emulsion af triglyceridet, som indeholder galdesyresalt, colipase, mindst 10 vægt% beskyttelseskolloid, i det mindste en del af 5 konserveringsmidlet og eventuelt aktivator, lyofiliserer emulsionen og i lyofilisatet iblander puffermateriale, lirinstof og eventuelt resterende beskyttelseskolloid og konserveringsmiddel samt eventuelt yderligere aktivator.
10 Tørreagenset ifølge opfindelsen fremstilles ved lyofi 1isering af en ifølge sædvanlige metoder fremstillet emulsion af triglyceridet, hvilken emulsion indeholder galdesyresalt, colipase, mindst 10 vægt% beskyttelseskolloid, i det mindste en del af konserveringsmidlet og eventuelt aktivator. Derved 15 bliver puffermateriale, urinstof og eventuelt også en del af beskyttelseskolloidet og konserveringsmidlet samt eventuelt aktivatoren først tilsat efter lyofi 1isering af "tøremulsionen". Emulsionen, der er blevet underkastet lyofi 1isering, kan fremstilles ifølge sædvanlige metoder, eksempelvis ved indfø-20 ring af alle bestanddelene i det vandig opløsningmiddel, emulgering ved hjælp af sædvanlige metoder, såsom ultralyd, kol-loidmølle og lignende, og derefter indfrysning ved ca. -40eC og tørring i vakuum under de sædvanlige betinelser, altså ca. 13,33 til 13,33xl0“3 Pa.
25
Ved lyofi 1iseringen skal galdesyresalt, colipase, mindst 20% beskyttelseskolloid, i det mindste en del af konserveringsmidlet og eventuelt aktivatoren være tilsat. En foretrukken fremgangsmåde til fremstilling af den til lyofi 1 iser ingen 30 bestemte vandige emulsion består i, at man opløser de nævnte bestanddele med undtagelse af triglyceridet i vand og i opløsningen derefter indsprøjter en opløsning af triglyceridet i et flygtigt organisk opløsningsmiddel i en fin stråle under omrøring. Som flygtige organiske opløsningsmidler egner sig 35 især alifatiske alkoholer og ketoner med 1 til 4 carbonatomer.
DK 158526 B
8
Galdesyresaltene renses fortrinsvis for forureninger, såsom nedbrydningsprodukter og lignende, eksempelvis ved hjælp af ekstraktion med n-butanol under alkaliske betingelser, omkrystallisation fra alkohol-acetone og lignende 5 rensningsmetoder.
De øvrige bestanddele i reagenset ifølge opfindelsen, nemlig puffermaterialet, urinstof og eventuelt yderligere be-skyttelseskolloid, konserveringsmiddel og aktivator, kan 10 sættes til lyophilisatet umiddelbart efter dets fremstil ling eller først senere.
Det har overraskende vist sig, at reagenset ifølge opfindelsen efter genfortyndingen tilvejebringer en ekstinktion eller en 15 ekstinktionsændring pr. tidsenhed, der i vidt omfang er uafhængig af udgangsemulsionens ekstinktion og reagensets fremstilling. Endvidere er ekstinktionskonstanten for den gendannede eller genfortyndende emulsion overraskende god.
20 Denne overraskende egenskab ved reagenset ifølge opfindelsen blev ved bestemmelse af dråbestørrelsesfordelingen før og efter lyofiliserihgen' undersøgt ved hjælp af en coulter-tæller. Med dette apparat er det muligt at bestemme den procentuelle fordeling af partikler med diametre fra 480 til 25 16000 nmi afstande fra 100 til 1000 nm. Det viste sig herved, at dråbefordelingen før lyofiliserihgen svingende kraftigt fra mængde til mængde, og efter lyofiliseringen og eventuelt yderligere fremgangsmådetrin, såsom iblanding af reagensets andre bestanddele og lignende, til stadighed udviste et godt overens-30 stemmende fordelingsmønster (indstilling af en termodynamisk ligevægt). Den således fremstillede tøremulsion udmærker sig endvidere ved, at også ved termisk belastning (tre uger/35°C) sikres en udmærket konstant dråbefordeling. Den maksimale dråbefordeling blev fundet ved 500 til 1000 nm.
35 Den er derfor særlig egnet til den fotometriske registrering af uklarhedsklaringen ved 340 eller 365 nm.
Ved en partikelstørrelse væsentligt under 340 nm er en
DK 158526B
9 nedbrydning af triglyceriddråberne ikke længer konstaterbar, hvorimod store dråber ikke er noget ideelt substrat for lipasen.
5 En væsentlig fordel ved reagenset ifølge opfindelsen består i, at det såvel i tilfælde af human pankreasli-pase som i tilfælde af svinepankreaslipase udviser samme aktivitetsændring pr. tidsenhed. Da disse to lipaser ved den titrimetriske prøve ifølge Rick ligeledes viser 10 samme aktivitetskoncentrationer, er det muligt at benytte en svinepankreasholdig standard til kalibreringen.
En yderligere væsentlig fordel ved reagenset ifølge opfindelsen er mangelen på en stillings-fase. Det er kendt, 15 at ved turbidimetriske lipaseprøver optræder der først et reaktionsforløb af nulte orden efter nogen tid. Et sådant reaktionsforløb er imidlertid ubetinget nødvendigt for den nøjagtige bestemmelse af aktivitetskoncentrationen af et enzym (se H.U. Bergmeyer, Grundlagen der enzymatischen 20 Analyse, 1979, 58ff). Tiden indtil opnåelse af dette reaktionsforløb betegnes som stillings-fase.
De følgende eksempler belyser opfindelsen yderligere i forbindelse med tegningen.
25 På tegningen viser fig. 1 dråbestørrelsesfordelingen efter genfortynding, såvel i frisk tilstand som efter 3 ugers belastning ved 35°C i tør 30 tilstand, der er målt på coulter-tælleren, fig. 2 fordelingen af dråbestørrelsen med og uden belastning (se eksempel 7), 35 fig. 3 (sammen!igningséksempel - eksempel 8) ligeledes fordelingen af dråbestørrelsen med og uden belastning, og 10
DK 158526B
fig. 4 også dråbestørrelsesfordelingen belastet og ubelastet (se eksempel 9 ).
5 Eksempel 1 0,06 g CaCl2, 22,72 g natriumdesoxycholat, 25,35 g polye-thylenglykol, molekylvægt 4000, 1,1 g natriumazid, 0,02 g colipase og 50,8 dele mannitolopløses i 1,0 1 destilleret vand. I den opnåede opløsning indsprøjtes under omrøring 10 1,42 g triolein, som er opløst i 32 ml n-propanol, ved et tryk på 2 bar gennem en dyse med 1,5 mm diameter. Den således opnåede trioleinemulsion indfryses ved -40°C og tørres ved hjælp af lyofiliserihg..
15 8,95 g natriumdesoxycholat, 7,25 g tris, 1,20 g tris, HC1, 7,5 g polyethylenglykol, molekylvægt 4000, 1,97 g NaCl, 16,2 g urinstof og 56,9 g manitol blandes tørt med hinanden. 2 vægtdele af den således opnåede pufferblanding bliver ved hjælp af en spiralblander blandet med 1 vægtdel 20 . ..
af lyofilisatet til dannelse af et homogent reagens.
Til gennemførelse af lipasebestemmelsen optages 150 mg af dette reagens i 2,5 ml vand, blandes med 0,1 ml prøve og måles fotometrisk ved 365 nm og 25°C mod vand. Som prøve 25 egner sig eksempelvis serum, duodenalsaft, urin og andre legemsvæsker.
Rigtigheden af metoden blev konstateret ved sammenligning med den titrimetriske metode ifølge Rick. Ved en undersø-30 gelse af 60 humansera med forskellig lipaseaktivitet opnåedes følgende data:
Korrelation: (x = Rick; y = prøve ifølge opfindelsen) Y = 0,93 · x - 20; r = 0,96.
Prøvens linearitet bibeholdtes indtil ca. 13oo Rick-enheder.
35
DK 158526B
En Rick-enhed = 1 jimol FFA/minut = 1U
FFA = frigjorte fedtsyrer.
5 Eksempel 2 1,500 g mannitol, 0,900 g polyethylenglykol, molekylvægt 4000, 0,524 g natriumdesoxycholat, 1,5 mg colipase og 8 mg natrium-azid opløses i 50 ml destilleret vand. I denne opløsning ind-sprøjtes gennem en fin dyse under omrøring 145 mg triolein, som er opløst i 5,0 ml propanol. Den opnåede emulsion indfryses ved -40°C og lyofiliseres.
3,50 g urinstof, 3,73 g natriumdesoxycholat, 0,4 g NaCl, 1 mg 15 natriumazid, 2 mg calciumcarbonat, 1,355 g tris og 0,200 g tris, HC1 blandes intimt med hinanden. Hertil sættes det findelte, tørre lyophilisat, og der blandes homogent.
Den komplette blanding = 12,266 g indeholder; 20 triolein 0,145 g = 1,2 vægt-% mannitol·. 1,500 g polyethylenglykol 0,900 g, tilsammen 2,4 g = 19,6 vægt-% natriumdesoxycholat 4,254 g =34,7 vægt-% colipase 1,5 mg 25 natriumazid 9 mg tris i 1,355 g tris, HC1 0,200 g, tilsammen'1,555 g = 12,7 vægt-% urinstof 3,5 g =28,5 vægt-%
NaCl 0,4 g 30 CaCOg 0,2 mg 37 mg af denne blanding opløses i 2,5 ml destilleret vand og måles fotometrisk med 200 μΐ prøve (serum) ved 340 nm og 25 eller 30°C mod vand eller luft. Udfra ekstinktionsforskel-35 len/minut opnås bestemmelsen af lipaseaktiviteten.
Dråbestørrelsesfordelingen efter genfortynding, såvel i frisk tilstand som efter 3 ugers belastning ved 35°C i tør tilstand, der er målt på coulter-tælleren, vises i fig. 1 på tegningen.
DK 158526B
12
Eksempel 3 8.41 g kvægserumalbumin, 12,2 g nåtriumdesoxycholat, 0,02 g natriumazid og 0,034 g colipase opløses i 100 ml destilleret ® vand. Under omrøring bliver en opløsning af 3,5 g triolin i 7 ml propanol under tryk indsprøjtet i denne opløsning. Den således dannede emulsion indfryses ved -40°C og lyofi-liseresi 17.4 g mannitol, 4 g fast polyethylenglykol, 7 g urinstof, 10 7,47 g nåtriumdesoxycholat, 0,82 g NaCl, 0,2 g natriumazid, 2.71 g tris og 0,4 g tris, HC1 formales og blandes intimt med hinanden. Hertil sættes den findelte tøremulsion, og der blandes homogent.
15 90 mg af dette pulverformede reagens sættes til 2 ml destil leret vand, og efter opløsning tilsættes 100 jul prøve (serum) . Reaktionen følges fotometrisk ved 340 (365) nm Hg.
Eksempel 4 20 8.41 g alanin, 1,22 g nåtriumdesoxycholat, 0,02 g natriumazid og 0,034 g colipase opløses i 100 ml destilleret vand. Under omrøring indsprøjtes en opløsning af 3,5 g triolein i 7 ml propanol under tryk i denne opløsning. Den således dannede 25 emulsion indfryses ved -40°C og lyofiliseres.
17.4 g mannitol, 4 g fast polyethylenglykol, 7 g urinstof, 7,47 g nåtriumdesoxycholat, 0,82 g NaCl, 0,2 g· natriumazid, 2.71 g tris og 0,4 g tris, HC1 formales og blandes intimt 30 med hinanden. Derpå tilsættes den findelte tøremulsion, og der blandes homogent.
90 mg af dette pulverformede reagens indføres i 2 ml destilleret vand, og efter opløsning tilsættes 100 jil prøve (serum) .
35 Reaktionen følges fotometrisk ved 340 (365) nm Hg.
13
DK 158526B
Eksempel 5 4,205 g polyethylenglykol, molekylvægt 4000, 4,205 g kvægse-rumalbumin, 1,22 g natriumdesoxycholat, 0,02 g natriumazid 5 og 0,034 g colipase opløses i 100 ml destilleret vand. Under omrøring indsprøjtes en opløsning af 3,5 g triolein i 7 ml propanol under tryk i denne opløsning. Den således dannede emulsion indfryses ved -40°C og lyofiliseres.
10 17,4 g mannitol, 4 g polyethylenglykol, molekylvægt 4000, 7 g urinstof, 7,47 g natriumdesoxycholat, 0,82 g NaCl, 0,2 g natriumazid, 0,71 g tris og 0,4 g tris, HC1 formales og blandes intimt med hinanden. Hertil sættes den findelte tøremulsion, og der blandes homogent.
15 90 mg af dette pulverformede reagens sættes til 2 ml destilleret vand, og efter opløsning tilsættes 100 pi prøve (serum). Reaktionen følges fotometrisk ved 340 (365) nm Hg.
20
Eksempel 6 6,73 g polyethylenglykol (polywachs 4000) , 1,68 g polyvi-nylpyrrolidon, 1,22 g natriumdesoxycholat, 0,02 g natrium-25 azid og 0,034 g colipase opløses i 100 ml destilleret vand.
Under omrøring indsprøjtes en opløsning af 3,5 g triolein i 7 ml propanol under tryk i denne opløsning. Den således dannede emulsion indfryses ved -40°C og lyofiliseres..
30 17,4 g mannitol, 4 g polyethylenglykol, 7 g urinstof, 7,47 g natriumdesoxycholat, 0,82 g NaCl, 0,2 g natriumazid, 2,71 g tris og 0,4 g tris, HC1 formales og blandes intimt med hinanden. Hertil sættes den findelte tøremulsion, og der blandes homogent.
90 mg af dette pulverformede reagens sættes til 2 ml destilleret vand, og efter opløsning tilsættes 100 pi Prøve 35
DK 158526B
14 (serum). Reaktionen følges fotometrisk ved 340 (365) nm Hg.
Eksempel 7 (sammenligningseksempel; for lidt galdesyresalt) 5 4,69 g mannitol, 4,69 g polyethylenglykol (polywachs 4000), 0,38 g natriumdesoxycholat, 0,o2 natriumazid og 0,034 g co-lipase opløses i 100 ml destilleret vand. Under omrøring indsprøjtes en opløsning af 3,5 g triolein i 7 ml propanol under tryk i denne opløsning. Den således dannede emulsion 10 indfryses ved -40°C og lyofiliseres.
17,4 g mannitol, 4 g polyethylenglykol, molekylvægt 4000, 7 g urinstof, 7,47 g natriumdesoxycholat, 0,82 g NaCl, 0,2 g natriumazid, 2,71 g tris og o,4 g tris, HC1 formales og 15 blandes intimt med hinanden. Hertil sættes den findelte tøremulsion, og der blandes homogent.
90 mg af dette pulverformede reagens indføres i 2 ml destilleret vand, og efter opløsning tilsættes 100 pi prøve 20 (serum). Reaktionen følges fotometrisk ved 340 (365) nm Hg.
Fordelingen af dråbestørrelsen med og uden belastning (se eksempel 2) er vist i fig. 2 på tegningen.
25
Eksempel 8 (sammenligningseksempel) 3,76 g mannitol, 5,63 g polyethylenglykol, molekylvægt 4000, 0,19 g natriumdesoxycholat, 0,02 g natriumazid og 0,034 g 30 colipase opløses i 100 ml destilleret vand. Under omrøring indsprøjtes en opløsning af 3,5 g triolein i 7 ml propanol under tryk i denne opløsning. Den således dannede emulsion indfryses ved -40°C og lyofiliseres.
35 17,4 g mannitol, 4 g polyethylenglykol, molekylvægt 4000, 7 g urinstof, 7,47 g natriumdesoxycholat, 0,82 g NaCl, 0,2 g natriumazid, 2,71 g tris og 0,4 g tris, HC1 formales og
DK 158526 B
15 blandes intimt med hinanden. Hertil sættes den findelte tøremulsion, og der blandes homogent.
90 mg af dette pulverformede reagens sættes til 2 ml destil-5 leret vand, og efter opløsning tilsættes 100 μΐ prøve (serum). Reaktionen følges fotometrisk ved 340 (365) nm Hg.
Fordelingen af dråbestørrelsen med og uden belastning (se eksempel 2) er vist i fig. 3 på tegningen.
10
Eksempel 9 8,88 g mannitol, 0,86 g natriumdesoxycholat, 0,1 g natrium- azid og 0,034 g colipase opløses i 100 ml destilleret vand.
Under omrøring indsprøjtes en opløsning af 2,5 g triolin i 15 7 ml propanol under tryk i denne opløsning. Den således dannede emulsion indfryses ved -40°C og lyofiliseres.
22,4 g mannitol, 4 g polyethylenglykol med molekylvægt 4000, 2Q 2 g urinstof, 7,47 g natriumdesoxycholat, 0,82 g NaCl, 0,2 g natriumazid, 2,71 g tris og 0,4 g tris, HC1 formales og blandes intimt med hinanden. Hertil sættes den findelte tøremulsion, og der blandes homogent.
2 g 90 mg af dette pulverformede reagens indføres i 2 ml destilleret vand, og efter opløsning tilsættes 100 ^il prøve (serum) . Reaktionen følges fotometrisk ved 340 (365) nm Hg.
Dråbestørrelsesfordelingen belastet og ubelastet (se eksempel 3Q 2) er vist i fig. 4 på tegningen.
Eksempel 10 I 1000 ml destilleret vand opløses: 75 g mannitol, 25 g polyethylenglykol med molekylvægt 4000, 20 g taurodesoxycholat, 55 mmol HEPES-puffer, pH 6,8, 0,3 g 35
Claims (15)
1. Genfortyndeligt tørreagens, især til turbidimetrisk 20 bestemmelse af lipase, hvilket reagens ved vandtilsætning danner en emulsion med et indhold af substratolie, beskyt-telseskolloid, emulgator og aktivator, kendetegnet ved, at det indeholder 0,2 til 10 vægt-% flydende trigly-cerid, 20 til 90 vægt-% beskyttélseskolloid, 5 til 60 vægt-% 25 galdesyrealkalisalt, 0,001 til 0,1 vægt-% colipase, 0,1 til 2,0 vægt-% konserveringsmiddel, 5 til 20 vægt-% urinstof, 3 til 50 vægt-% puffermateriale for pH 6,0 til 10,5, og 0,5 til 5 vægt-% aktivator.
2. Reagens ifølge krav 1, kendetegnet ved, at triglyceridets fedtsyrerester indeholder 8 til 20 carbon-atomer og 1 til 8 carbon-carbon-dobbeltbindinger.
3. Reagens ifølge krav 1 eller 2, kendetegnet 35 ved, at det indeholder 0,2 til 2,0 vægt-% triglycerid. DK 158526 B
4. Reagens ifølge ethvert af de foregående krav, kendetegnet ved, at beskyttelseskolloidet består af en eller flere polyhydroxyforbindelser.
5. Reagens ifølge krav 4, kendetegnet ved, at po- lyhydroxyforbindelsen er en monomer eller polymer pentose eller hexose med 1 til 10 pentose- eller hexose-enheder i molekylet og/eller en fast polyethylenglykol.
5 Lyofilisatet opløses i·2,0 ml destilleret vand. Lipasebe-stemmelsen gennemføres ved tilsætning af 100 pi serum og fotometrisk måling ved 340 eller 365 nm. Ved en lagring af lyofilisatet ved 4°C og 35°C blev der ef^ 10 ger 3 uger ikke fastslået nogen forskel i begyndelsesekstinktionen og i prøveforløbet ved opløsning i redistilleret vand. HEPES = 2-[4-(2-hydroxyethyl)-piperazin-(l)]-ethansulfon-15 syre. P_a_t_e_n_t_k_r a v
6. Reagens ifølge ethvert af de foregående krav, kendetegnet ved, at det indeholder 50 til 70 vægt-% beskyt-telseskolloid.
7. Reagens ifølge ethvert af de foregående krav, kende-I5 tegnet ved, at det indeholder 10 til 15 vægt-% galdesyresalt.
8. Reagens ifølge ethvert af de foregående krav, kendetegnet ved, at det indeholder 0,003 til 0,01 vægt-% co-lipase. 20
9. Reagens ifølge ethvert af de foregående krav, kendetegnet ved, at det som konserveringsmiddel indeholder et alkaliazid.
10. Reagens ifølge ethvert af de foregående krav, ken detegnet ved, at det indeholder 10 til 15 vægt-% u~ rinstof.
11. Reagens ifølge ethvert af de foregående krav, k e n -30 det egnet ved, at det indeholder 3 til 10 vægt-% pufferstof .
12. Reagens ifølge ethvert af de foregående krav, kendetegnet ved, at det som pufferstof indeholder HEPES- 35 puffer, tabs-puffer, good-puffer,, tris-puffer, triethanol-amin-puffer eller diethanolamin-puffer. DK 158526B
13. Reagens ifølge ethvert af de foregående krav, kendetegnet ved, at det som aktivator indeholder et natrium-, calcium- eller magnesiumchlorid.
14. Fremgangsmåde til fremstilling af tørreagenset ifølge ethvert af kravene 1 til 13, kendetegnet ved, at man fremstiller en vandig emulsion af triglyceridet, som indeholder galdesyresalt, colipase, mindst 10 vægt-% beskyt-telseskolloid, i det mindste en del af konserveringsmidlet 10 og eventuelt aktivator, lyofiliserer emulsidnen og i lyofi-lisatet iblander puffermateriale, urinstof og eventuelt resterende beskyttelseskolloid og konserveringsmiddel samt eventuelt yderligere aktivator.
15. Fremgangsmåde ifølge krav 14, kendetegnet ved, at man i en opløsning af beskyttelseskolloid, galdesyresalt, colipase og eventuelt konserveringsmiddel og aktivator under omrøring i en fin stråle indsprøjter en opløsning af triglyceridet i et flygtigt,organisk opløsningsmiddel. 20 25 30 35
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE2904305A DE2904305C2 (de) | 1979-02-05 | 1979-02-05 | Reagens zur Lipasebestimmung und Verfahren zu seiner Herstellung |
| DE2904305 | 1979-02-05 |
Publications (3)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DK1380A DK1380A (da) | 1980-08-06 |
| DK158526B true DK158526B (da) | 1990-05-28 |
| DK158526C DK158526C (da) | 1990-10-29 |
Family
ID=6062202
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| DK001380A DK158526C (da) | 1979-02-05 | 1980-01-02 | Reagens til lipasebestemmelse og fremgangsmaade til fremstilling deraf |
Country Status (18)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4343897A (da) |
| EP (1) | EP0014252B1 (da) |
| JP (1) | JPS55104900A (da) |
| AR (1) | AR219647A1 (da) |
| AT (1) | ATE2227T1 (da) |
| AU (1) | AU515131B2 (da) |
| CA (1) | CA1139201A (da) |
| CS (1) | CS236458B2 (da) |
| DD (1) | DD148830A5 (da) |
| DE (2) | DE2904305C2 (da) |
| DK (1) | DK158526C (da) |
| ES (1) | ES487676A1 (da) |
| FI (1) | FI69640C (da) |
| HU (1) | HU181539B (da) |
| IE (1) | IE49039B1 (da) |
| IL (1) | IL59132A (da) |
| SU (1) | SU1367867A3 (da) |
| ZA (1) | ZA80630B (da) |
Families Citing this family (23)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0021572A1 (en) * | 1979-06-04 | 1981-01-07 | American Hospital Supply Corporation | A substrate for use in a turbidimetric assay for lipase and a method for making this substrate |
| US4806469A (en) * | 1982-09-20 | 1989-02-21 | The Dow Chemical Company | Process for the determination of lipase activity |
| ATE21415T1 (de) * | 1983-09-07 | 1986-08-15 | American Hospital Supply Corp | Rekonstituierbares trockenreagenz fuer diagnostische zwecke und verfahren zu seiner herstellung. |
| DE3413118A1 (de) * | 1984-04-06 | 1985-10-24 | Miles Laboratories, Inc., Elkhart, Ind. | Analysenverfahren und mittel zum nachweis esterolytischer und/oder proteolytischer enzyme |
| DE3516001A1 (de) * | 1985-05-03 | 1986-11-06 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Lipasefarbtest |
| DE3618049A1 (de) * | 1986-05-28 | 1987-12-03 | Miles Lab | Verfahren zur herstellung von reagenzschichten die hydrophobe reagenzien enthalten |
| US4963479A (en) * | 1986-10-07 | 1990-10-16 | Hoechst Celanese Corporation | Reagent system for an alpha-amylase assay containing aromatic substituted glycoside |
| US5158872A (en) * | 1986-10-07 | 1992-10-27 | Hoechst Celanese Corporation | Aromatic substituted glycoside |
| DE3719196A1 (de) * | 1987-06-09 | 1988-12-29 | Behringwerke Ag | Verwendung von polyinylpyrrolidon (pvp) zur truebungsminderung von seren, kontrollseren enthaltend pvp und verfahren zu deren herstellung |
| ES2034037T3 (es) * | 1987-07-01 | 1993-04-01 | Abbott Laboratories | Un metodo turbidimetrico mejorado para la determinacion de lipasa en suero. |
| FR2619219A1 (fr) * | 1987-08-07 | 1989-02-10 | Strasbourg I Louis Pasteur Uni | Reactif sec pour la determination de la lipase pancreatique, procede de preparation dudit reactif sec et reactif sec et reactif sous forme d'emulsion obtenu par reconstitution du reactif sec. |
| JP2711332B2 (ja) * | 1988-04-15 | 1998-02-10 | 株式会社ヤトロン | 非水溶性物質の透明な水溶液が得られる凍結乾燥品の製造方法 |
| US5378609A (en) * | 1988-12-28 | 1995-01-03 | Ivan E. Modrovich | Lipase single reagent system |
| US5248598A (en) * | 1989-05-25 | 1993-09-28 | Ivan E. Modrovich | Lipase single reagent system |
| US5756357A (en) * | 1993-04-27 | 1998-05-26 | Dexsil Corporation | Method for detecting hydrocarbons in soil |
| US6117682A (en) * | 1993-04-27 | 2000-09-12 | Dexsil Corporation | Method for detecting hydrocarbons in water |
| US5679574A (en) * | 1995-01-09 | 1997-10-21 | Ensys Environmental Products, Inc. | Quantitative test for oils, crude oil, hydrocarbon, or other contaminants in soil and a kit for performing the same |
| US5759445A (en) * | 1995-05-24 | 1998-06-02 | Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. | Lipid-dispersed solution and process for producing the same |
| EP0949336A1 (en) * | 1998-03-20 | 1999-10-13 | Unilever Plc | Process for identification of organic material |
| FR2881139A1 (fr) * | 2005-01-26 | 2006-07-28 | Agronomique Inst Nat Rech | Composition pour la lyophilisation de proteines |
| JP5081680B2 (ja) * | 2008-03-25 | 2012-11-28 | 富士フイルム株式会社 | リパーゼ測定用乾式分析要素 |
| CN112858687B (zh) * | 2020-12-30 | 2023-09-15 | 宁波职业技术学院 | 一种血清淀粉样蛋白a检测试剂及其制备方法 |
| USD1071165S1 (en) * | 2022-11-28 | 2025-04-15 | Sensile Medical Ag | Medicine injector |
Family Cites Families (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3527674A (en) * | 1966-06-30 | 1970-09-08 | Calbiochem | Reagent material and method for urea assay |
| US3917515A (en) * | 1974-03-13 | 1975-11-04 | Jack M Goldberg | Serum lipase method and medium |
| US3898130A (en) * | 1974-03-18 | 1975-08-05 | American Hospital Supply Corp | Rapid enzymatic hydrolysis of triglycerides |
| US4115313A (en) * | 1974-10-08 | 1978-09-19 | Irving Lyon | Bile acid emulsions |
| GB1530238A (en) * | 1976-05-04 | 1978-10-25 | Du Pont | Method of determining lipase activity using a triglyceride reagent and method for preparing that reagent |
-
1979
- 1979-02-05 DE DE2904305A patent/DE2904305C2/de not_active Expired
- 1979-12-13 AT AT79105154T patent/ATE2227T1/de not_active IP Right Cessation
- 1979-12-13 DE DE7979105154T patent/DE2964508D1/de not_active Expired
- 1979-12-13 EP EP79105154A patent/EP0014252B1/de not_active Expired
- 1979-12-13 AR AR279278A patent/AR219647A1/es active
- 1979-12-26 CS CS799136A patent/CS236458B2/cs unknown
-
1980
- 1980-01-02 CA CA000342938A patent/CA1139201A/en not_active Expired
- 1980-01-02 DK DK001380A patent/DK158526C/da not_active IP Right Cessation
- 1980-01-07 IE IE20/80A patent/IE49039B1/en not_active IP Right Cessation
- 1980-01-14 ES ES487676A patent/ES487676A1/es not_active Expired
- 1980-01-15 IL IL59132A patent/IL59132A/xx not_active IP Right Cessation
- 1980-01-23 SU SU802872054A patent/SU1367867A3/ru active
- 1980-01-23 FI FI800199A patent/FI69640C/fi not_active IP Right Cessation
- 1980-01-28 US US06/115,864 patent/US4343897A/en not_active Expired - Lifetime
- 1980-01-29 DD DD80218712A patent/DD148830A5/de not_active IP Right Cessation
- 1980-02-01 AU AU55125/80A patent/AU515131B2/en not_active Ceased
- 1980-02-04 HU HU80249A patent/HU181539B/hu not_active IP Right Cessation
- 1980-02-04 ZA ZA00800630A patent/ZA80630B/xx unknown
- 1980-02-05 JP JP1215580A patent/JPS55104900A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP0014252A1 (de) | 1980-08-20 |
| ATE2227T1 (de) | 1983-01-15 |
| FI69640B (fi) | 1985-11-29 |
| FI69640C (fi) | 1986-03-10 |
| ES487676A1 (es) | 1980-06-16 |
| DE2964508D1 (en) | 1983-02-17 |
| DE2904305B1 (de) | 1980-08-14 |
| ZA80630B (en) | 1981-02-25 |
| EP0014252B1 (de) | 1983-01-12 |
| DD148830A5 (de) | 1981-06-10 |
| SU1367867A3 (ru) | 1988-01-15 |
| AU515131B2 (en) | 1981-03-19 |
| FI800199A7 (fi) | 1980-08-06 |
| JPS5728275B2 (da) | 1982-06-15 |
| DE2904305C2 (de) | 1981-07-02 |
| HU181539B (en) | 1983-10-28 |
| DK158526C (da) | 1990-10-29 |
| AR219647A1 (es) | 1980-08-29 |
| CS236458B2 (en) | 1985-05-15 |
| US4343897A (en) | 1982-08-10 |
| IE49039B1 (en) | 1985-07-10 |
| DK1380A (da) | 1980-08-06 |
| IE800020L (en) | 1980-08-05 |
| CA1139201A (en) | 1983-01-11 |
| IL59132A (en) | 1983-10-31 |
| AU5512580A (en) | 1981-01-29 |
| JPS55104900A (en) | 1980-08-11 |
| IL59132A0 (en) | 1980-05-30 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| DK158526B (da) | Reagens til lipasebestemmelse og fremgangsmaade til fremstilling deraf | |
| Stellwagen et al. | The dissociation and reconstitution of aldolase | |
| EP0641389B2 (en) | Reagent compositions for analytical testing | |
| US12534722B2 (en) | Euglobulin-based method for determining the biological activity of defibrotide | |
| US4543326A (en) | Stabilization of oxidase | |
| DK144643B (da) | Fremgangsmaade og reagens til bestemmelse af triglycerider | |
| Lee et al. | The effect of temperature on mitochondrial membrane-linked reactions | |
| CA1086615A (en) | Stabilised urease | |
| JPH0640836B2 (ja) | 血液又は血液から誘導された試料中の血清フルクトサミン含量を特異的に測定する際に蛋白質基質効果を回避するための方法及び製剤 | |
| NO151012B (no) | Substratpreparat og anvendelse derav | |
| CN113584125B (zh) | 一种液态稳定的5’-核苷酸酶校准品及检测试剂盒及其应用 | |
| US4409326A (en) | Stabilized enzymatic solutions and method for determining total cholesterol in human serum | |
| EP0044432B1 (en) | Stabilized enzymatic solutions and method for determining total cholesterol in human serum | |
| CN104611319A (zh) | 一种提高液态果糖氨基酸氧化酶热稳定性的方法 | |
| JPH0367600A (ja) | リパーゼ定量用単一試薬系およびその製造方法 | |
| GB2065881A (en) | Lipase determination method and reagent | |
| Nagradova et al. | The role of arginine residues in the function of d-glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase | |
| EP0297387B1 (en) | An improved turbidimetric method for the determination of serum lipase | |
| CA1191772A (en) | Process and reagent for determining the activity of chymotrypsin and trypsin in faeces | |
| JP3073076B2 (ja) | リパーゼ活性測定用組成物及びその組成物を用いるリパーゼ活性測定方法 | |
| CN107449746A (zh) | 一种脂肪酶检测试剂盒的制备方法 | |
| EP0886139A1 (en) | A reagent for measurement and a measurement method | |
| IL33898A (en) | Process and agent for the determination of the content of alkaline phosphatase in serum |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| PBP | Patent lapsed |