DE69333201T2 - Vorrichtung und Test zur Bestimmung eines Antigens oder eines Antikörpers in einer Testprobe - Google Patents

Vorrichtung und Test zur Bestimmung eines Antigens oder eines Antikörpers in einer Testprobe Download PDF

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Description

  • Die vorliegende Erfindung betrifft ein Testverfahren zum Nachweis eines Antigens oder Antikörpers in einer Testprobe und die Ausrüstung zur Durchführung des Tests.
  • Insbesondere betrifft die Erfindung ein Sandwich-Verfahren, in dem die Testprobe, von der vermutet wird, dass sie bestimmte Antigene oder Antikörper enthält, mit einem festen Substrat in Kontakt gebracht wird, an dessen Oberfläche ein Antikörper oder Antigen gebunden ist, das mit dem Antigen oder Antikörper in der Testprobe einen Immunkomplex bilden kann, und bei dem der Immunkomplex, der gebildet wurde, unter Verwendung eines markierten Antikörpers/Antigens als Nachweisreagens bestimmt wird.
  • EP-A-0 296 398 beschreibt ein einstufiges Immunoassay-Verfahren zum Nachweis von vorhandenen Antikörpern (oder Antigenen), bei dem die Antigene auf ein festes Substrat getupft werden, ein Nachweisreagens und ein Serum als Anti körperquelle zugegeben werden, und alle diese drei Komponenten zusammen inkubiert werden.
  • EP-A-0 498 124 beschreibt insbesondere einen Immunoassay zum Nachweis von DERF II, das das Hauptallergen der Hausstaubmilbe ist, bei dem eine Probe in Form eines Extrakts mit einem monoklonalen Antikörper inkubiert wird, der selektiv DERF II erkennt.
  • WO-A-92 01051 beschreibt ein in vitro-Diagnoseverfahren für menschliche oder tierische Hydatidose, das das Inkontaktbringen von biologischem Material mit Immunogenpeptidsequenzen, die gegen monoklonale Antikörper gerichtet sind, umfasst.
  • Die Erfindung stellt insbesondere ein schnelles Testverfahren zur Verfügung, das sogar von Nichtexperten leicht durchgeführt werden kann, und ermöglicht es, dass die Reaktion direkt angezeigt wird, während es gleichzeitig einen hohen Empfindlichkeitsgrad hat.
  • Schließlich ist Gegenstand der Erfindung ein Testverfahren vom oben gekennzeichneten Typ, dadurch gekennzeichnet, dass das feste Substrat gleichzeitig mit der Testprobe und dem markierten Antikörper oder Antigen in Kontakt gebracht wird.
  • Der Begriff "gleichzeitig", wie im obigen Absatz verwendet, soll die folgenden Verfahren beeinhalten:
    • – vorheriges Mischen der Testprobe und des markierten Antikörpers oder des markierten Antigens, Inkontaktbringen des vorgemischten Produkts mit dem Substrat;
    • – Zugabe der Testprobe zum Substrat und sofortige Zugabe des markierten Antikörpers oder Antigens ohne zwischenzeitliche Waschschritte.
  • In einer bevorzugten Ausführungsform besteht der Nachweisantikörper oder das Nachweisantigen aus einem Antikörper oder einem Antigen, das mit einem kolloidalen Farbstoff konjugiert ist.
  • Obgleich das Verfahren der Erfindung generell anwendbar ist, ist es im Hinblick auf die Ziele, die damit erreicht werden sollen, besonders geeignet und vorteilhaft zum Nachweis von Umweltallergien und zum Nachweis von Antikörpern, die aus infektiösen und parasitischen Krankheiten resultieren.
  • In einer Ausführungsform betrifft der Test der Erfindung insbesondere den Nachweis von in der häuslichen Umgebung vorhandenen Allergenen.
  • Das erste Anzeichen für die mögliche Rolle von Milben bei der Verursachung von Allergien stammt aus den zwanziger Jahren des vorigen Jahrhunderts; später, um 1960, zeigte eine weitere Reihe von Experimenten eindeutig, dass Milben der Gattung Dermatophagoides (Pteronyssinus und Farinae) und insbesondere ihre Exkremente eine erhebliche Menge eines Allergens, Der p I genannt, enthalten, und die Hauptursache von Allergien durch Hausstaub sind.
  • Seitdem nahmen die Bestätigungen bis zu einem Ausmaß zu, das zu der Überzeugung geführt hat, dass Allergien durch Milben im Hausstaub ein weltweites Problem darstellen, welche eine Reihe von klinischen Symptomen verursachen, die von Asthma über Rhino-Konjunktivitis bis zur atopischen Dermatitis reichen, bei Erwachsenen genauso wie bei Kindern. Es wird davon ausgegangen, dass 5 bis 10 % der europäischen Bevölkerung durch Formen von Allergien, die durch Gegenwart von Milben hervorgerufen werden, beeinträchtigt werden, und bei einer weiteren Prozentzahl, obgleich noch nicht sensibilisiert, könnte dies als Ergebnis auftreten, wenn sie weiterhin Milben und ihren Fäkalien länger ausgesetzt bleiben. Neuere epidemiologische Untersuchungen haben gezeigt, dass ständige Gehalte des Allergens Der p I von 0,5–2 μg/g Staub, entsprechend 25–100 Milben/g Staub, von einem erhöhten Risiko der Allergiebildung begleitet sind. Aus diesem Grund fällt die Kontrolle der Umgebungskonzentrationen von Milben in das Gebiet der präventiven Medizin.
  • Die "Verteilung" von Milben kann je nach den Lebensräumen varueren und ist ein wichtiger Faktor bei Veränderungen von Symptomen der Atmung. Die Identifizierung von "Orten", die im Haus von Milben befallen sind, ist somit äußerst wichtig, da sie es ermöglicht, dass Verfahren zur Dekontaminierung der Umgebung angewendet werden können (beispielsweise die Verwendung von Acariziden), was die Entfernung von Milbenkolonien und das Entfernen der Fäkalien, welche eine wichtige Quelle der Allergene sind, ermöglicht. Von diesen präventiven Maßnahmen ist bekannt, dass sie zusammen mit einer geeigneten immuntherapeutischen Behandlung mit Desensibilisierungsextrakten beim Patienten zu einer klinischen Verbesserung führen. Ein besonderer Beitrag zur Bereitstellung einer effektiven Milbenkontrolle im Hausstaub ist die Entwicklung von Nachweisverfahren, die anders sind als die mikroskopischen Bestimmungen, und welche schnell, einfach und ausreichend empfindlich sind.
  • Obgleich die mikroskopische Technik erstmals zeigen konnte, das Milben im Hausstaub vorhanden sind, und somit ihre potentielle Rolle als Ursache von Allergien gezeigt hat, ist sie nicht unbedingt das beste Verfahren für die Routineanalyse. Sie bleibt ein unentbehrliches Instrument für den Wissenschaftler, der die vorherrschende Spezies in den verschiedenen geographischen Regionen aufzeigen will, oder der die biologischen Eigenschaften der verschiedenen Milben untersuchen will, hat aber bei Anwendung in Routineanalysen von Staubproben eine Reihe von Nachteilen:
    • – die Herstellung der Probe, die untersucht werden soll, und die mikroskopische Untersuchung selbst sind sehr mühselige, zeitintensive Vorgänge und benötigen geeignetes, trainiertes Personal;
    • – sie identifiziert die Exkremente nicht, welche erhebliche Mengen an Allergenen enthalten.
  • In den letzten Jahren wurden neue Techniken zur Identifizierung von Allergenen, die in der häuslichen Umgebung vorhanden sind, verfügbar gemacht. Eine dieser Techniken basiert auf der Verwendung von monoklonalen Antikörpern, die für das Allergen (Der p I) von Milbenfäkalien im Hausstaub spezifisch sind.
  • Das Verfahren besteht aus dem Fixieren einer geeigneten Menge an Anti-Der p I-monoklonalem Antikörper in der Vertiefung einer Mikrotiterplatte, gefolgt von der Inkubation mit der Staubprobe und einem zweiten Antikörper (monoklonal oder polyklonal), der spezifisch für Der p I ist und mit Biotin konjugiert ist. Die Reaktion zeigt sich kolorimetrisch unter Verwendung des Enzyms Peroxydase, das mit Streptavidin konjugiert ist, und dann eines geeigneten Substrats.
  • Die Methode ist sehr empfindlich und spezifisch, benötigt aber wie die Untersuchung mit dem Mikroskop eingearbeitetes Personal und eine spezielle Laborausrustung (eine Anzeige für die kolorimetrische Reaktion).
  • Trotz der Komplexität dieses Verfahrens ist das Verfahren sogar für Routinetests geeignet.
  • Dieses Verfahren hat eine Reihe von Einschränkungen: die Länge des Tests (nicht weniger als 3 Stunden), eine Vielzahl von Schritten in dem Verfahren und das Erkennen eines einzelnen Allergens, obgleich dies wichtig ist.
  • Einen technologischen und konzeptionellen Sprung hat die Entwicklung eines Kits ermöglicht, das auf der Identifizierung eines Markers, Guanin, beruht, welcher im Allgemeinen der endgültige Katabolit des Stickstoffkatabolismus von Spinnentieren ist. Guanin ist somit auch in Milbenfäkalien vorhanden, da Milben zur gleichen Familie gehören. Das Auffinden von Guanin im Hausstaub könnte somit die Gegenwart von Milben in der Umgebung anzeigen.
  • Das Verfahren ist semiquantitativ, leicht anzuwenden, schnell und in Routinetests anwendbar. Die Ergebnisse werden auf der Basis eines Tests ausgedrückt, der auf einem festen Substrat (Stäbchen) durch Entwicklung einer kolorimetrischen Reaktion durchgeführt wird, wobei deren Intensität auf einer Farbskala angezeigt wird.
  • Aufgrund seiner Vereinfachungen hat es den Vorteil, dass es von Nichtexperten durchgeführt werden kann.
  • Die Nachteile sind:
    • – Mangel an Spezifität, insbesondere bei Fällen mit schwach positiven Ergebnissen. Das Verfahren basiert auf der Annahme, dass das meiste Guanin, das im Hausstaub nachgewiesen wird, nur von Milbenfäkalien stammt, was nicht immer richtig ist. Beispielsweise kann die Gegenwart von Spinnen den Test stören;
    • – das Allergen in Milbenfäkalien ist nur eines der zahlreichen Allergene, die in Milben vorkommen. Ein wichtiges Allergen (Der p II genannt) ist im Gegensatz dazu nicht in den Fäkalien vorhanden, da es vom Milbenkörper abstammt; der Test ist nicht in der Lage, dieses zu identifizieren.
  • Der Mangel an Spezifität und mangelndes Erkennen von anderen wichtigen Milbenallergien sind zwei negative Aspekte dieses Tests, was zu einiger Verwirrung bei dem Personal führt, das den Test ausführt.
  • Das Verfahren, das vom Anmelder entwickelt wurde und nachstehend beschrieben wird, ermöglicht es, die Nachteile der bekannten Tests zu überwinden, während die gleichen Eigenschaften hinsichtlich einer vereinfachten Verwendung, einer direkten Anzeige der Reaktion (keine Abhängigkeit von spezifischen Ableseapparaturen), und ausreichender Durchführungsgeschwindigkeit beibehalten werden, wenn es insbesondere zum Nachweis von Milbenallergenen in Hausstaub verwendet wird.
  • Das Verfahren wird unter Verwendung von Antikörpern, vorzugsweise polyklonalen Antikörpern (erhalten beispielsweise aus Kaninchen), in einem "Sandwich" durchgeführt, und ist in der Lage, alle verschiedenen Allergene, die in Milben vorhanden sind, und nicht nur Der p I, zu erkennen. Experimente mit Natriumdodecylsulfatgel-Elektrophorese auf Polyacrylamidgel (SDS – PAGE) mit der Übertragung der abgetrennten Allergene auf Nitrocellulose-(Blotting)-Papier und nachfolgendes Inkontaktbringen mit Milbenantiserum hat ganz klar diese Tatsache aufgezeigt.
  • Der polyklonale Antikörper, der für Milben spezifisch ist, wird auf ein festes Substrat, vorzugsweise Nitrocellulose, das den sogenannten "reaktiven Streifen" darstellt, aufgebracht. Anschließend wird dieser reaktive Streifen in ein Testrohr eingebracht, zu dem dann gleichzeitig die zu untersuchende Staubprobe und der Nachweisantikörper (Antimilbenantikörper, konjugiert mit einem kolloidalen Farbstoff) zugegeben wird.
  • Die Entwicklung eines farbigen Flecks zeigt die Anwesenheit von Milben im Hausstaub an.
  • Es wurde festgestellt, dass die Kombination der Schritte der Zugabe der Probe und der Zugabe des Detektorreagens, die normalerweise durch Waschen getrennt und auseinandergehalten werden, zu einem Einzelschritt unerwarteterweise zu einer Verbesserung in der Empfindlichkeit des Verfahrens und zu einer größeren Vereinfachung und Schnelligkeit der Durchführung führt, was ein stärker ausgeprägtes Signal liefert. Wenn das gleiche Verfahren so durchgeführt wird, dass der Schritt der Zugabe der Probe von dem Schritt der Zugabe des Nachweisreagens getrennt ist, ist es deutlich weniger zur Analyse von Hausstaubproben geeignet, was durch das Fehlen des Erkennens mehrerer positiver Ergebnisse ersichtlich ist, welche im Gegensatz dazu durch die "Einstufen"-Version des Verfahrens, das gemäß der Erfindung durchgeführt wird, und durch Untersuchung unter dem Mikroskop nachgewiesen werden. Eine mögliche Theorie zur Erklärung dieses Phänomens ist, dass die "Einstufen"-Version die Bildung eines Immunkomplexes, (Milben-) Antigen/Antikörper, induziert, welcher beim Ausfällen das Einfangen der Milbenallergene durch die Milbenantikörper, die auf dem Nitrocellulosepapier fixiert sind, erleichtert.
  • Durch Einfügen einer Reihe von Waschvorgängen mit einem geeigneten Puffer zwischen der Zugabe der Probe (Milben) und der Zugabe des Nachweisreagens können einige Allergene, die aus der Probe extrahiert werden, durch die Waschvorgänge selbst verloren gehen, was die Zugabe des Nachweisreagens uneffektiv macht. Die wässrige Lösung, in der die Antikörper dispergiert sind, würde zur gleichen Zeit dahingehend wirken, die Allergenproteine aus den vorhandenen Milben zu extrahieren, wodurch ermöglicht wird, dass die Analyse auch mit Hausstaubproben durchgeführt werden kann, und nicht notwendigerweise mit wässrigen Extrakten, die vorher aus dem Staub hergestellt wurden.
  • Das Verfahren, das vom Anmelder entwickelt wurde, könnte potentiell auf die quantitative Bestimmung von verschiedenen Antigenen oder alternativ Antikörpern mit besonderer Spezifität angewendet werden, was es somit äußerst nützlich in all diesen Situationen macht, sowohl bei Menschen als auch auf dem veterinären Gebiet, wo Tests benötigt werden, welche einfach, aber ausreichend schnell und empfindlich sind für die Diagnose von bestimmten pathologischen Zuständen. Die Beispiele, die folgen, stellen eine genaue Beschreibung einer Ausführungsform der erfindungsgemäßen Testmethode, die vorher beschrieben wurde, dar.
  • Beispiel 1:
  • VERFAHREN ZUM NACHWEIS VON MILBEN
  • 1a Herstellung des spezifischen Antikörpers
  • Ein Antimilbenserum aus Kaninchen, das durch Immunisierung durch subkutane Verabreichungen in dreiwöchigen Intervallen mit einem Milbenextrakt (Proteingehalt von 3 mg), der in einem kompletten Freund-Adjtivans (die ersten beiden Immunisierungen) oder im inkompletten Freund-Adjuvans (die folgenden Immunisierungen – mindestens vier) dispergiert war, erhalten wurde, wird mittels Affinitätschromatographie gereinigt.
  • Die mit 0,1 M Glycin-HCl-Puffer, pH 2,7, eluierten Fraktionen werden mit 1 M Phosphatpuffer, pH 7,2 (PBS-Zusammensetzung) neutralisiert, in einem Pool vereinigt, und dann der Poll gegen 10 mM Natriumphosphatpuffer und 2,7 mM NaCl, pH 7,4, dialysiert.
  • 1bA Herstellung des Farbstoffs
  • Einige Textilfarbstoffe sind in der Lage, gefärbte kolloidale Partikel zu bilden, welche von potentiellem Interesse für diagnostische Anwendungen sind, wenn sie mit Proteinen (Antikörpern, Antigenen...) kombiniert werden. Insbesondere auf dem Gebiet der Erfindung ist es bevorzugt, Textilfarbstoffe der Arten Brilliant Pink 5B, FBLN Blue und Red SamaronTM-Farbstoffe (Hoechst) zu verwenden. Alternativ ist die Verwendung von kolloidalem Gold als Farbstoff auf dem Gebiet der Erfindung vorstellbar. Im Falle des Farbstoffs Brilliant Pink 5BTM wird beispielsweise eine 5%-ige Lösung des Farbstoffs in Wasser hergestellt, um eine kolloidale Dispersion zu erhalten, welche dann 4 mal bei 20 000 g 20 Minuten lang zentrifugiert wird, und das Sediment dann in einem Volumen, das dem Anfangsvolumen entspricht, wieder suspendiert wird. Danach wird ein letztes Zentrifugieren bei 125 g 30 Minuten lang durchgeführt, um irgendwelche sehr großen Aggregate zu entfernen. Die überstehende Flüssigkeit in Form einer kol loidalen Dispersion wird dann spektrophotometrisch analysiert, um die Verwendungskonzentration zu untersuchen.
  • Zu diesem Zweck wird ein Aliquot aufgelöst und mit Ethanol verdünnt, um eine optische Dichte von 1000 zu ergeben, was spektrophotometrisch bei der geeigneten Wellenlänge (540 für Brilliant Pink) bestimmt wird.
  • Dieser Wert wird durch den Buchstaben A angezeigt.
  • Die kolloidale Dispersion ist einige Monate stabil, wenn sie in Gegenwart von Thiomersal (0,01%) bei 4°C aufbewahrt wird.
  • 1bB Herstellung des Antikörper-Farbstoff-Konjugats
  • Verschiedene Konzentrationen an Farbstoff (von A = 5 bis A = 50) wurden verwendet, um diesen an Antikörper (Proteinkonzentrationen, die von 5 bis 100 μg/ml varueren) unter Verwendung von 10 mM Phosphatpuffer mit einem pH-Wert, der im variablen Bereich von 6 bis 8,5 liegt, und mit NaCl-Konzentrationen von 2,7 mM bis 150 mM, zu binden.
  • Die experimentellen Bedingungen, die die größte Farbintensität des Flecks und somit das beste Signal ergeben, waren wie folgt: Phosphatpuffer 10 mM, pH 7,4, NaCl 5 mM, A = 30 und eine Antikörperkonzentration von 20 μg/ml.
  • Bei der Herstellung des Konjugats wurden geeignete Volumina an Farbstoff und Antikörper bis zu einer Endkonzentration des Farbstoffs von A = 30 und des Antikörpers von 20 μg/ml 14 Stunden lang in Kontakt gebracht, um es dem Antikörper zu ermöglichen, auf den gefärbten, kolloidalen Partikeln adsorbiert zu werden.
  • Das Konjugat wurde durch Zugabe eines 1/5 Volumens 5 mM NaCl, pH 7,4, 30% BSA, einstündige Inkubation und anschließendes Zentrifugieren bei 12 000 g über 20 Minuten bei 4°C stabilisiert.
  • Das Sediment wurde in einem dem Ausgangsvolumen entsprechenden Volumen an Pufferlösung aufgenommen, die aus 10 mM PBS, 5 mM NaCl, 5% BSA, 0,04% Thiomersal, pH 7,4, bestand.
  • Das so hergestellte Konjugat kann bei 4°C (es ist über einen kurzen Zeitraum stabil) oder gefriergetrocknet mit verbesserter Stabilität bis zu mindestens sechs Monaten aufbewahrt werden.
  • 1c Herstellung des reaktiven Streifens
  • Streifen (1 × 8 cm), zusammengesetzt aus einem transparenten Substrat, auf das ein kleines Quadrat (1 × 1 cm) Nitrocellulosepapier mit einer Porosität von 0,45 μm (bio-MAP, Agate Brianza, Mailand) befestigt war (bevorzugter nutzlicher Porositätsbereich 0,2–5 μm), wurden 5 Minuten lang in Wasser getaucht und dann getrocknet. Anschließend wurden 5 μg (bezogen auf den Proteingehalt) Antimilbenantikörper, durch Affinitätschromatographie gereinigt, auf jeden Streifen in einem 10 μl-Volumen Phosphatpuffer (10 mM, 2,7 M NaCl), pH 7,4, gegeben.
  • Bei diesem Verfahren bilden die Antikörper (Proteine) bei der Reaktion mit Nitrocellulose chemische Bindungen damit und bleiben darauf fixiert.
  • Die Verteilung der Lösung, die Antimilbenantikörper enthält, kann manuell mittels einer Mikropipette oder automatisch mit einem Verteilungsgerät durchgeführt werden.
  • Nachdem der Streifen 10 Minuten lang trocknengelassen wurde, um unspezifische Reaktionen zu vermeiden, wurden die reaktiven Stellen auf der Nitrocellulose mit 1,5% Casein in PBS, pH 7,4, als blockierendes Protein blockiert.
  • Nach 2-stündigem Inkubieren bei Umgebungstemperatur und unter Rühren wurde mehrere Male mit PBS-Tween 20 gewaschen; der so hergestellte reaktive Streifen wurde dann gefriergetrocknet. Der reaktive Streifen bleibt mindestens 6 Monate lang stabil.
  • Der wie oben beschrieben hergestellte reaktive Streifen wurde in ein geeignetes Polyvinyl- oder Polystyrolteströhrchen eingebracht; eine Hausstaubmenge, üblicherweise 60 bis 80 mg, wurde dann mit Hilfe eines Messlöffels dazugegeben. Der Hausstaub war vorher vom Schlafzimmerfußboden, aus Betten, aus Teppichen oder von anderen Haushaltsgegenständen gesammelt worden. Sofort danach wurde das Nachweisreagens (1–1,5 ml), bestehend aus einer Lösung, die die Anti-Acari-Antikörper, gereinigt durch Affinitätschromatographie und mit dem Farbstoff Brilliant Pink konjugiert (wie vorher beschrieben), enthielt, zugegeben.
  • Die Anwesenheit von Milben wurde durch die Entwicklung eines gefärbten Flecks nach einem geeigneten Inkubationszeitraum (nicht weniger als 30 Minuten) angezeigt. Der gefärbte Fleck wurde unter Waschen des reaktiven Streifens einfach unter fließendem Wasser sichtbar gemacht. Die Zugabe von Hausstaub, der eindeutig negativ war, zum Teströhrchen (keine Milben, festgestellt durch mikroskopische Untersuchung) lieferte keinen farbigen Fleck, was die Spezifität des Verfahrens zeigt.
  • Die Empfindlichkeit des "Einstufen"-Fixierverfahrens der Erfindung wurde durch Vergleich mit einem "Zweistufen"-Testverfahren gezeigt, bei dem die Schritte der Zugabe der Probe unter Prüfung und der Schritt der Zugabe des Nachweisreagens durch mehrere Waschschritte, sowohl unter Verwendung eines Milbenextrakts, als auch unter Verwendung eines Serums aus Patienten, von denen bekannt ist, dass sie an Echinococcosis leiden, getrennt waren.
  • Die Vergleichsdaten sind in Tabelle 1 dargestellt, aus der die größere Empfindlichkeit des "Einstufen'-Verfahrens zum Nachweis von Milbenallergenen ersichtlich ist.
  • Eine weitere Bestätigung der Effektivität und der Empfindlichkeit des Verfahrens wurde erhalten, indem 5 Hausstaubproben durch das erfindungsgemäße Verfahren, wie in Beispiel 1 beschrieben, und durch das bekannte quantitative Laborverfahren, das als ELISA-Test bekannt ist, getestet wurden.
  • Die Ergebnisse des Vergleichs sind in Tabelle 2 dargestellt, aus der ersichtlich ist, dass die gezeigten Mengen sich sehr gut den Daten annähern, die mit denen des quantitativen Verfahrens nachweisbar sind.
  • TABELLE 1 VERGLEICH DES "EINSTUFIGEN" VERFAHRENS MIT DEM "ZWEISTUFIGEN"-VERFAHREN UNTER VERWENDUNG EINES MILBENEXTRAKTS
    Figure 00130001
  • TABELLE 2 VERGLEICH DES "EINSTUFIGEN" VERFAHRENS MIT DEM ELISA-TEST MIT HAUSSTAUBPROBEN
    Figure 00140001

Claims (9)

  1. Sandwich-Prüfverfahren zum Bestimmen von Milbenantigenen in einer Probe, bei dem die Probe, die verdächtigt wird, das Antigen zu enthalten, mit einem festen Substrat kontaktiert wird, an dessen Oberfläche ein Antikörper gebunden ist, der mit dem Antigen einen Immunkomplex bilden kann, und bei dem die Komplexbildung durch Zugabe eines markierten Antikörpers ermittelt wird, dadurch gekennzeichnet, dass das feste Substrat mit der Probe in Form von Staub und mit dem markierten Antikörper gleichzeitig kontaktiert wird.
  2. Prüfverfahren nach Anspruch 1, bei dem die Probe und der markierte Antikörper vorgemischt und das Vormischprodukt mit dem festen Substrat kontaktiert wird.
  3. Prüfverfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass der markierte Antikörper ein mit einem kolloidalen Farbstoff oder mit kolloidalem Gold konjugierter Antikörper ist.
  4. Prüfverfahren nach Anspruch 3, bei dem der kolloidale Farbstoff ein Textilfarbstoff ist.
  5. Prüfverfahren nach Anspruch 4, bei dem der Textilfarbstoff Brilliant Pink 5B ist.
  6. Prüfverfahren nach Anspruch 5, bei dem das feste Substrat, an den der Antikörper gebunden ist, ein reaktionsfähiger Streifen ist, dessen reaktionsfähiger Teil eine Porosität im Bereich von 0,2 bis 5 μm hat.
  7. Prüfverfahren nach Anspruch 6, bei dem die Porosität des reaktionsfähigen Teils des reaktionsfähigen Streifens 0,45 μm beträgt.
  8. Prüfverfahren nach Anspruch 5 oder 6, bei dem der reaktionsfähige Teil des reaktionsfähigen Streifens aus Nitrocelluose besteht.
  9. Prüfverfahren nach Anspruch 1 bis 8, bei dem der an das feste Substrat gebundene Antikörper und der markierte Antikörper ein polyclonaler Antimilben-Antikörper sind.
DE69333201T 1993-03-12 1993-12-29 Vorrichtung und Test zur Bestimmung eines Antigens oder eines Antikörpers in einer Testprobe Expired - Lifetime DE69333201T2 (de)

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