DE60014348T2 - Messung und verwendung von molekularen wechselwirkungen - Google Patents

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Description

  • GEBIET DER ERFINDUNG
  • Diese Erfindung betrifft Verfahren zur Messung von zwischenmolekularen Wechselwirkungen und zur Trennung, Sortierung und Klassierung von Teilchen. Insbesondere betrifft diese Erfindung die Messung der Affinität zwischen verschiedenen Bindungspartnern, z.B. bei einer Wechselwirkung zwischen Antigen und Antikörper.
  • ALLGEMEINER STAND DER TECHNIK
  • Als Grundlage für Enzym-Ligand-Wechselwirkungen, Antigen-Antikörper-Wechselwirkungen und für die Bindung von Molekülen an Rezeptoren ist die spezifische Molekülerkennung ein grundlegender Vorgang. Molekülerkennung wird erreicht durch nichtkovalente Wechselwirkungen wie elektrostatische Wechselwirkung (Wasserstoffbrückenbindung) und hydrophobe Wechselwirkungen. Thermodynamische Messungen der Bindungskonstanten und der freien Energie, Enthalpie- und Entropieänderungen geben Einblicke in die molekulare Grundlagen der Erkennung, insbesondere wenn sie gekoppelt sind mit Ergebnissen aus der Röntgenbeugung und der ortsgerichteten Mutagenese, wenn möglich.
  • Die direkte Messung der Wechselwirkungskraft wurde mithilfe der Rasterkraftmikroskopie (AFM) sowie der Oberflächenkraftmessapparatur [SFA] durchgeführt. Obwohl die AFM die Kräfte des Bindungsbruchs messen kann, weist das Verfahren den Nachteil auf, dass nicht mehrere Messungen gleichzeitig erfolgen können. Bisher ist AFM bei Avidin-Biotin-Wechselwirkungen (Florin et al, Science, 1995; 264:415), bei der DNA-Hybridisierung (Boland et al, PNAS, 1995; 92:5291), Antigen-Antikörper-Wechselwirkungen (Dammer et al, Biophys. J., 1996; 70:2437) und Haftglykoproteinen (Dammer et al, Science, 1995 ; 267:1173) angewandt worden.
  • Die Trennung von biologischen Molekülen auf der Grundlage ihrer relativen Affinität zu Liganden ist ein anerkanntes Verfahren. So werden zum Beispiel in der Affinitätschromatographie die zu trennenden Bestandteile durch eine Säule gegeben, die einen bestimmten Liganden enthält. Der interessierende Bestandteil bindet bevorzugt und stark an die Säule und wird in der Säule zurückbehalten, während die anderen Bestandteile entfernt werden. Der gebundene Stoff kann zu einem späteren Zeitpunkt aus der Säule herausgelöst werden.
  • Trennverfahren sind ein wichtiger Bestandteil vieler Forschungsversuche. Die Erhöhung der Empfindlichkeit oder Selektivität dieser Verfahren ist daher wünschenswert.
  • Kolomenskii et al, J. Appl. Phys., 1998; 84(4):2404–10, beschreibt Untersuchungen zur Oberflächenreinigung und Haftung, die mithilfe von lasererzeugten Oberflächenschallimpulsen durchgeführt wurden. Die Impulse wiesen eine niedrige Wiederholfrequenz (20 Hz) und gleich bleibende Energie auf. Das Verfahren wurde im Vakuum durchgeführt und ist daher nicht zur wirtschaftlichen Nutzung geeignet. Zur Erfassung der Entfernung der Teilchen wurde ein Lichtmikroskop verwendet und es war nicht möglich, zwischen Teilchen verschiedener Größe zu unterscheiden.
  • WO-A-98/45692 offenbart die Verwendung eines Piezokristallsensors zur Bestimmung der Bildung / Dissoziation von Clathrathydraten. Kurosawa et al, Chem. Pharm. Bull, 1990; 38(5):1117–20, beschreibt die Verwendung eines solchen Sensors zur Erfassung der Agglutination bei auf Latex befindlichen Antikörpern. WO-A-98/40739 offenbart ebenfalls einen solchen Sensor, der eine Scheibe enthält, auf der bestimmte Bindungseinheiten immobilisiert sind, und der eingesetzt wird, um das Vorhandensein von Zellen in einem Träger anzuzeigen. Diese Sensoren messen eine Änderung der Resonanzfrequenz bei gleich bleibender Spannung.
  • Zurzeit werden, wo möglich, die meisten Viren nachgewiesen, indem die Probe in Zellen gezüchtet wird, da dieses Verfahren empfindlich, jedoch zeitaufwendig ist. Der direkte Nachweis von viraler DNA oder RNA in klinischen Proben kann mithilfe der Polymerase-Kettenreaktion und bestimmten Primern erfolgen, die auf das interessierende Virus zugeschnitten sind. Da die Polymerase-Kettenreaktion einen Verstärkungsschritt beinhaltet, ist Kreuzkontamination ein Hauptproblem und es ist schwierig, zuverlässige quantitative Verfahren zu schaffen. Weitere direkte Verfahren sind die Elektronenmikroskopie, die Immunelektronenmikroskopie sowie Verfahren, die auf dem Antigennachweis mit enzymgekoppelten Antikörpern beruhen. Diese Verfahren sind häufig recht unempfindlich und erfordern daher verhältnismäßig große Mengen der Viruspartikel.
  • KURZDARSTELLUNG DER ERFINDUNG
  • Die vorliegende Erfindung beruht auf der Erkenntnis, dass die Bindungen zwischen einem Zielmolekül oder ein mit einem Teilchen verbundenes Zielmolekül und einer Oberfläche aufgebrochen werden können, indem die Oberfläche bei steigender Amplitude mechanisch in Schwingungen versetzt wird, was zur Ablösung des Zielmoleküls oder Teilchens von der Oberfläche führt. Die erforderliche Beschleunigung und damit Kraft hängt von einer Vielzahl von Größen ab, einschließlich der Masse des Moleküls oder Teilchens, der Art der Bindung an die Oberfläche und der geometrischen Form oder Größe des Zielmoleküls oder Teilchens. Die vorliegende Erfindung kann daher zur Trennung oder Klassierung verschiedener Zielmoleküle eingesetzt werden oder zum Nachweis ihres Vorhandenseins.
  • Gemäß einem ersten Gesichtspunkt der vorliegenden Erfindung umfasst ein Verfahren zur Abtrennung eines Zielanalyten aus einer Zusammensetzung die folgenden Schritte:
    • (i) die Zusammensetzung mit einem Bindungspartner für den Analyt in Berührung bringen, wobei der Bindungspartner auf einer Oberfläche immobilisiert ist; und
    • (ii) die Oberfläche in Schwingungen versetzen, sodass die Amplitude auf einen Wert ansteigt, bei dem der Analyt oder andere Bestandteile der Zusammensetzung von der Oberfläche entfernt werden.
  • Die vorliegende Erfindung kann zur Bestimmung des Vorhandenseins oder der Größe von Teilchen, oder zur Bestimmung der Affinität zwischen Bindungspartnern eingesetzt werden.
  • Die Erfindung kann bei einer Vielzahl physikalischer und chemischer Bindungen angewendet werden, von recht schwachen Wechselwirkungen wie Wasserstoffbrückenbindungen bis zu kovalenten Bindungen.
  • Eine Vorrichtung, die für die Verwendung in der vorliegenden Erfindung geeignet ist, umfasst eine Oberfläche, auf der ein Bindungspartner immobilisiert ist; Mittel, um die Oberfläche mit steigender Amplitude in Schwingungen zu versetzen; und Vorrichtungen zur Erfassung eines Dissoziationsvorgangs.
  • Insbesondere kann die Vorrichtung ein Schallwandlerelement (ATD) enthalten, z.B. eine Schwingquarzmikrowaage (QCM) oder Oberflächenwellenelemente oder jegliches piezoelektrische Material, das in Schwingungen versetzt werden kann, z.B. durch Anlegen einer Wechselspannung oder eines magnetischen Felds. Hierbei handelt es sich um kostengünstige Vorrichtungen im Vergleich zu einem AFM und sie können mehrfach genutzt werden. Ein weiterer Vorteil der Verwendung einer solchen Vorrichtung ist, dass die meisten Bindungen gleichzeitig aufgebrochen werden, was zu einem nachweisbaren Geräusch führt und zu scharfen Rauschpeaks bei bestimmten Beschleunigungen (an das ATD angelegte Spannung). Ein weiterer Vorteil ist, dass das ATD als empfindliches Mikrofon zur Erfassung der Schallemission verwendet werden kann, wenn der Dissoziationsvorgang erfolgt.
  • In den meisten Versuchen nach dem Stand der Technik, in denen ein ATD verwendet wird, wurden Änderungen der Resonanzfrequenz oder Phase gemessen, wenn das ATD mit gleich bleibender Spannung angesteuert wird. Im Gegensatz dazu wird bei der vorliegenden Erfindung die Ansteuerspannung und damit die Schwingungsamplitude des ATD erhöht.
  • Die vorliegende Erfindung weist vielfältige Anwendungsmöglichkeiten bei der Trennung, Sortierung und Klassierung auf. Die Beispiele zeigen, dass mit Streptavidin markierte Kugeln von normalen Latexkugeln an Luft mittels einer QCM mit einer biotinylierten Oberfläche und bei einer Ansteuerspannung über 0,1 V jedoch unter 6 V abgetrennt werden können. Die normalen Latexkugeln werden von der Oberfläche entfernt und nur die mit Streptavidin markierten Kugeln bleiben an der Oberfläche angeheftet (durch die stärkere Streptavidin-Biotin-Bindung). Dadurch wird eine neue Form von Trennungsverfahren erschlossen, die darauf beruht, eine bestimmte Zeit lang eine veränderliche Kraft aufzubringen, die zum Beispiel angewendet werden kann für die Klassierung und Sortierung von Teilchen, die Sortierung von Zellen, die Suche nach Phagen sowie für die Gestaltung neuer Biosensoren. Ein solches Trennverfahren ist kostengünstig und kann leicht mehrfach genutzt und automatisiert werden. So ist es zum Beispiel möglich, verschiedene Zieleinheiten an verschiedenen Punkten auf der gleichen Mikrowaage aufzubringen und eine Liganden-Bibliothek mit mehreren Zieleinheiten gleichzeitig zu vergleichen. Der Nachweis und die Untersuchung von Viruspartikeln, die eine feste Größe aufweisen, stellt ein weiteres Anwendungsgebiet dar. Ebenso wichtig ist, dass die Erfindung ein neues, empfindliches und möglicherweise quantitatives Hilfsmittel zur Untersuchung der Kräfte darstellt, die bei der Molekülerkennung auftreten.
  • BESCHREIBUNG
  • In der vorliegenden Erfindung sind Sensorvorrichtungen eingesetzt, die in Schwingungen versetzt werden können. Der Sensor kann auf verschiedene Arten in Schwingungen versetzt werden, z.B. durch den Einsatz von Oberflächenwellenelementen, Schwingquarzelementen, akustischen Plattenmoden und Biegeplattenelementen aus dünnen Membranen.
  • Viele verschiedene Sensoren, die für den Einsatz in der Erfindung geeignet sind, sind von gewerblichen Quellen zu beziehen. Eine Beschreibung von Sensoren, die für die vorliegende Erfindung verwendet werden können, ist enthalten in Acoustic Wave Sensors, Ballantine et al., (1997) Academic Press. Der Sensor ist vorzugsweise ein Oberflächenwellenelement oder insbesondere eine Schwingquarzmikrowaage (QCM).
  • Die QCM besteht üblicherweise aus einer Scheibe aus kristallinem Quarz mit Goldelektroden auf der Ober- und Unterseite. Aufgrund des umgekehrten Piezoeffekts erfährt sie eine Scherschwingung, wenn eine Wechselspannung an die Elektroden angelegt wird. Eine Erhöhung der Spannung führt zur Erhöhung der Schwingungsamplitude der QCM.
  • Der Quarzkristall ist außerdem ein empfindliches Mikrofon und kann zur Erfassung der Schallemission verwendet werden, die durch den Aufspaltungsvorgang zustande kommt. Es ist technisch einfacher, Schwingungen mit einer Frequenz anzuregen, die einer Hauptresonanzfrequenz entspricht und die Schallemission nahe einer weiteren Schwingungsart zu erfassen. Zum Beispiel wird die QCM mit ihrer Resonanzfrequenz angesteuert und die Schallemission wird bei ihrer dritten Harmonischen erfasst.
  • Zur Veranschaulichung kann der Begriff „Analyt" zur Beschreibung des Bindungspartners oder Bestandteils verwendet werden, der den auf der Oberfläche immobilisierten Bindungspartner berührt. Nach der Berührung bindet der Analyt durch zwischenmolekulare Wechselwirkung an den Sensor und erfährt eine Beschleunigung und dadurch wird eine Kraft auf den Analyten ausgeübt. Die Schwingungsamplitude steigt und bei einer bestimmten Grenzkraft erfolgt der Bindungsbruch. Ein bislang gebundener Analyt kann sich somit frei auf der Oberfläche bewegen.
  • Der Analyt kann jede mikroskopische Einheit sein, die auf dem Sensor durch eine zwischenmolekulare Wechselwirkung zurückbehalten werden kann. Der Analyt kann ein Eiweiß, Antikörper, Antigen, Enzym, Enzyminhibitor oder Polynukleotid sein. Der Analyt kann auch ein größeres Teilchen sein wie eine Bakterie, Zelle, ein Virus, Prion oder Phage. Weitere Beispiele für Teilchen, die besonders zur Verwendung für die vorliegende Erfindung geeignet sind, umfassen Mikrokügelchen jedes Stoffs, z.B. Siliziumdioxid, Gold oder Latex, oder große Makromoleküle wie Plasmiden. Der auf der Oberfläche immobilisierte Bindungspartner kann von der gleichen Art sein und kann entsprechend gewählt werden und abhängig von der passenden physikalischen oder chemischen Bindung.
  • Die Dissoziation kleinerer Analyten wird vorzugsweise durch Schallemission erfasst. Größere Teilchen können auch durch optische Hilfsmittel erfasst werden, z.B. Mikroskopie.
  • Gemäß dem ersten Gesichtspunkt der Erfindung wird die Trennung durchgeführt durch Immobilisierung des Zielmoleküls auf einer Sensoroberfläche über eine Wechselwirkung mit einem Bindungspartner. Die Oberfläche kann dann in Schwingungen versetzt werden, um die Moleküle auf der Oberfläche des Sensors zu spalten. Die Schwingungen werden durch stetige Steigerung der Amplitude und damit der Beschleunigung erzielt und können entweder gewählt werden, um das Zielmolekül von der Oberfläche zu entfernen oder um andere Bestandteile der Zusammensetzung von der Oberfläche zu entfernen, sodass das Zielmolekül an die Oberfläche gebunden bleibt. In einer bevorzugten Ausführungsform wird die Sensoroberfläche mithilfe eines piezoelektrischen Elements in Schwingungen versetzt, z.B. einer QCM. Dasselbe Piezoelement kann als Mikrofon verwendet werden, um Schallwellen zu erfassen, die durch einen Aufspaltungsvorgang entstehen.
  • Das Trennverfahren kann angewendet werden, um nach Molekülen zu suchen, die starke Wechselwirkungen mit einem bestimmten Bindungspartner aufweisen. So kann das Verfahren zum Beispiel angewendet werden, um Zellen auszusortieren, die bestimmte Rezeptormoleküle an der Zelloberfläche aufweisen oder um nach Antikörpern mit starker Affinität zu einem bestimmten Liganden zu suchen.
  • Verschiedene Liganden können an verschiedenen Punkten auf der Oberfläche angeordnet werden, zum Beispiel durch das Kontaktbelichtungsverfahren oder den Einsatz von Masken oder Fotolithografie. Danach kann ein Gemisch auf mehrere Partner mit starken Bindungen hin mit mehreren verschiedenen Liganden gleichzeitig durchsucht werden.
  • Insbesondere können bei der Erfindung Plättchen benutzt werden, die verschiedene Stoffe wie Rezeptoren aufweisen, die darauf immobilisiert sind. Allgemeiner können die Plättchen Stoffe aufweisen, die eine Prüfung auf verschiedene Infektionen, Krankheitserreger, Prione, Lebensmittelallergene, Viren, Bakterien usw. hin ermöglichen, z.B. bei klinischen Versuchen an Mensch und Tier und zur Hygieneüberwachung bei Lebensmitteln und Wasser. Weiterhin kann die Erfindung beim Screening von Bibliotheken, Phagendisplay usw. eingesetzt werden.
  • Der zweite Gesichtspunkt der vorliegenden Erfindung ist ein Verfahren zur Bestimmung des Vorhandenseins oder der Größe von Teilchen, oder des Affinitätsgrads zwischen Molekülen. Vorzugsweise ist ein Molekül an einer Sensoroberfläche immobilisiert und das andere ist an einem Teilchen immobilisiert, z.B. einem Mikrokügelchen. Das Teilchen wird dann an den Sensor über die interessierende zwischenmolekulare Wechselwirkung angeheftet. Die funktionalisierten Teilchen werden dann durch Anlegen einer Spannung an den Sensor in Schwingungen versetzt. Mit steigender Schwingungsamplitude erreicht die Kraft einen kritischen Wert, bei dem der Bindungsbruch erfolgt. An diesem Punkt kann mithilfe eines empfindlichen Verstärkers ein kennzeichnendes Geräusch erfasst werden, und die Bewegung der Teilchen kann beobachtet werden, z.B. mit einem Lichtmikroskop. Die Stärke des Signals hängt von der Anzahl der Teilchen ab, die an die Sensoroberfläche gebunden sind. Wenn die QCM, wie nachfolgend in Beispiel 1 beschrieben, verwendet wird, mit physisorbierten Mikrokügelchen, wird ein Rauschen üblicherweise bei 0,1- V erfasst, abhängig von der Größe der Mikrokügelchen, wobei dies einsetzt, wenn im Mikroskop zu sehen ist, dass die Mikrokügelchen sich verschieben und fortbewegen. Das erzeugte Rauschen kann gegen die Amplitude (oder angelegte Spannung) aufgetragen werden, was als Aufspaltungskraft-Spektrum bezeichnet wird. Der Punkt, an dem der Bindungsbruch erfolgt, ist aus der Darstellung zu erkennen, da es einen Rausch-Peak gibt. Folglich kann die Spannung bestimmt werden, bei der der Bindungsbruch erfolgt. Durch geeignete Eichversuche mit Teilchen, die bekannte Bindungsdichten und -stärken aufweisen, kann dieses Verfahren quantitativ gemacht werden. Weiterhin ist die Höhe des Schallemissions-Peaks ein Maß für die Anzahl gebundener Teilchen.
  • Die vorliegende Erfindung kann zur Untersuchung jeder zwischenmolekularen Wechselwirkung benutzt werden, ist jedoch insbesondere geeignet zur Untersuchung von Enzym-Ligand-Wechselwirkungen, Antigen-Antikörper-Wechselwirkungen und Rezeptor-Ligand-Wechselwirkungen oder einer Wechselwirkung zwischen einem großen Makromolekül und seinem natürlichem Bindungspartner. Das Verfahren kann auch zur Untersuchung von Hybridisierungsvorgängen zwischen Polynukleotiden verwendet werden. Daher kann der Ligand gemäß dem ersten Gesichtspunkt der Erfindung zum Beispiel ein Eiweiß, Antikörper oder Antigen sein, ein Enzym, Enzyminhibitor, Polynukleotid oder ein größeres Makromolekül wie ein großes Plasmid oder ein Virus. Gemäß dem zweiten Gesichtspunkt der Erfindung kann jeder Stoff an die Oberfläche oder das Teilchen gebunden sein.
  • Die folgenden Beispiele veranschaulichen die Erfindung.
  • In den Beispielen wird die Spektroskopie der Kraft der Aufspaltung zur Messung der Adhäsionskräfte zwischen einer Oberfläche und einem kleinen Teilchen verwendet. Diese Wirkung beruht darauf, eine Oberfläche mit Mikroteilchen darauf in Schwingungen zu versetzen, mit monoton steigender Amplitude und somit steigender Beschleunigung. Dies wird erreicht durch Ansteuern der Oberfläche mit einem piezoelektrischen Element, in diesem Fall mit einer Schwingquarzmikrowaage (QCM). Wenn die Amplitude steigt, steigt auch die Beschleunigung und somit die Kraft, die auf das Teilchen ausgeübt wird. Der Bruch sämtlicher Bindungen, die das Teilchen mit der Oberfläche verbinden, verursacht Schallwellen und die gleiche piezoelektrische Einrichtung wird als empfindliches Mikrofon verwendet, um diese Schallwellen zu erfassen, die durch den Aufspaltungsvorgang erzeugt werden. Eine vereinfachte Darstellung der Vorrichtung, die in Beispielen 1 bis 5 verwendet wird, ist in 1 gezeigt; eine allgemeinere vereinfachte Darstellung der bevorzugten Vorrichtung ist in 8 gezeigt.
  • Genauer gesagt zeigt 1 einen Schaltplan, der einen piezoelektrischen Wandler (10) umfasst, einen Erzeuger zur Erzeugung einer reinen f-Sinusschwingung (11), einen 3f + Δf-Erzeuger (12), einen 3f + Δf-Filter (13), einen Lock-in-Verstärker und Analog-Digital-Wandler (14) und einen Computer (15), der einen Dateneingang und einen Regelausgang aufweist, die durch die Pfeile angezeigt sind. In den Beispielen 1 bis 5 ist f = 14,2 MHz und Δf ist 82 kHz. Teilchen (16) sind auf der Oberfläche des Trägers angeordnet.
  • 8 zeigt einen piezoelektrischen Wandler (21) (z.B. QCM, Oberflächenwellenelement usw.) und einen Regelverstärker (22) mit Eingang (23) und Ausgang (24), die in der Lage sind, geregelt durch ein Signal (25) eine gleichmäßig steigende Ausgangsamplitude zu liefern. Der Schaltplan umfasst auch einen Bandpassempfänger (26) (zum Beispiel ähnlich einem ESB-Empfänger) und einen oder mehrere Analog-Digital-Wandler (27), die über eine Verbindung (28) Daten liefern. Der Schaltplan umfasst außerdem ein Regel-, Aufnahme- und Datensignalverarbeitungsgerät (29) (zum Beispiel einen Computer oder spezialisierten digitalen Signalprozessor). Der Kontakt, der durch eine unterbrochene Linie (30) angezeigt ist, kann ersetzt werden durch verbesserte Filter- und Kopplungsvorrichtungen, z.B. kann es ein passives L, C, R Netzwerk sein.
  • Bei Verwendung des Schaltplanes, der in 8 gezeigt ist, stellen der Verstärker (22) mit dem Wandler (21), gemeinsam mit wahlweisen Filter-/Kopplungsmitteln (30) ein einfaches Oszillatornetzwerk dar, das vorzugsweise mit einer Frequenz Schwingungen erzeugt, bei der der Wandler wirksam ist; bei QCM kann das eine Resonanzfrequenz der Fundamentalserie sein. Diese Schwingungsfrequenz (F) ist z.B. 14 MHz. Geregelt durch den Regler (29) über die Verbindung (25) steigt die Amplitude der Ansteuerspannung an Ausgang (24) gleichmäßig. Das austretende Schallemissionssignal an Punkt (30) kann mithilfe eines wahlweisen Filters/Kopplers geglättet werden und dann dem Eingang des Bandpassempfängers (26) zugeführt werden. Der Arbeitsfrequenzbereich des Empfängers kann nach einem maximalen Signal-Rausch-Kriterium gewählt werden, z.B. der Resonanzschwingungstyp nahe der dritten Harmonischen (3*F + ΔF), z.B. 42,082 MHz.
  • Ein oder mehrere Analog-Digital-Wandler (27) mit einem großen dynamischen Bereich wandeln einfache oder phasenverschobene Ausgangssignale. Die Daten werden dann digital bei (29) weiterverarbeitet, um ein Nutzsignal zu gewinnen, und dann aufgezeichnet und/oder dem Betrachter angezeigt. Der Verstärker (22) kann zusätzlich mit einem oder mehreren passiven Ausgangs- und/oder Eingangsfilter(n) ausgestattet sein, die das Signal-Rausch-Verhältnis verbessern und auch gewährleisten, dass der Oszillator über den Wandler bei der richtigen Frequenz und der richtigen Phasenverschiebung von Strom zu Spannung arbeitet.
  • 9 zeigt einen bevorzugten Oberflächenwellen-Sensor zur Verwendung in der Erfindung. Er umfasst Mittel (31) zur Erzeugung einer Hochfrequenzspannung an Ausgang (32) mit steigender Amplitude, die die Wandlerelektroden (33) ansteuert. Die Elektrodenanordnung (33) ist für die Erzeugung von Oberflächenwellen mit hoher Amplitude an einem Piezosubstrat (34) optimiert. Die Elektrodenanordnung (37) ist für die bestmögliche Wandlung von Schallemission in ein elektrisches Signal optimiert. Die Anordnung kann vielschichtig sein und ein oder mehrere Elektrodenpaar(e) umfassen. Die Vorrichtung umfasst außerdem eine Regeleinheit (35) zur Regelung des Erzeugers (31) über eine Verbindung (36) und zum Empfang der erzeugten Signale an einem oder mehreren Eingängen (38) und zur Datensignalverarbeitung, z.B. Korrelationsanalyse.
  • Bei Verwendung des Oberflächenwellen-Sensors erzeugt der Erzeuger (31) eine Hochfrequenzspannung, die geeignet ist, eine wirksame Wandlerfrequenz an Ausgang (32) zu schaffen, und diese wird dann den erzeugenden Wandlerelektroden (33) zugeführt, die auf dem Piezosubstrat (34) (gepunktete Linie) angeordnet sind. Die Amplitude der Hochfrequenzspannung steigt über die Zeit, geregelt durch die Regeleinheit (35) über die Verbindung (36). Die Empfängerelektroden (37) wandeln die Schallemission, die von der wirksamen Fläche kommt, in ein elektrisches Signal um, das dem Empfänger/der Regeleinheit (35) und dem Eingang/den Eingängen (38) zugeführt wird. Die Daten, die nach der Analog-Digital-Wandlung entstehen, werden einer Signalverarbeitung unterzogen, um Nutzsignale zu erhalten. Die Ergebnisse werden schließlich aufgezeichnet und/oder dem Bediener angezeigt.
  • Einige Ergebnisse der Beispiele sind in 2 bis 7 und in 10 gezeigt. In 2A, 2B, 3A, 3B, 4A, 4B, 4C, 4D, 6B, 7 und 10 ist Signalrauschen (S; willkürliche Einheiten) gegen Amplitude (A; Volt) dargestellt. In 5A, 5B, 6A und 6C ist Signalrauschen (S; willkürliche Einheiten) gegen Teilchenzahl (N) dargestellt.
  • Die folgenden Abkürzungen werden verwendet:
  • BSA:
    Rinderserumalbumin
    LB:
    Luria Nährmedium
    DIC:
    Dimethylaminoisopropylchlorid
    DMAP:
    Dimethylaminopyridin
    EDC:
    1,3-Dimethylaminopropyl-3-Ethylcarbodiimidin
    NHS:
    N-Hydroxysuccinimid
    PBS:
    phosphatgepufferte Kochsalzlösung
  • Beispiel 1
  • Latexkugeln mit einem Durchmesser von 5 μm wurden mit der Oberfläche eines QCM-Sensors über eine große Anzahl der interessierenden Bindung verbunden. Der Grad der Bedeckung der verwendeten Kugeln betrug 1 % der Oberfläche der QCM. Die Kugeln wiesen nur 1 % Abweichung in ihrem Durchmesser auf.
  • Der QCM-Sensor enthielt polierte Quarzscheiben, mit einem AT-Schnitt bei 35° hergestellt, 8,25 mm im Durchmesser. Es wurden Chromschichten (20 bis 30 nm dick) und anschließend Goldschichten (100 bis 120 nm dick) aufgebracht.
  • Drei verschiedene Bindungen wurden bei Versuchen untersucht, die an Luft durchgeführt wurden: eine physikalische Bindung (Latex-Gold), eine Streptavidin-Biotin-Bindung und eine kovalente Bindung (Amidbindung). Die physikalische Bindung wurde durch unmittelbares Aufbringen der Latexkugeln auf der Sensoroberfläche und Trocknung in Stickstoff hergestellt. Die Streptavidin-Biotin-Bindung wurde durch Aufbringen von biotinyliertem BSA auf die Oberfläche und Trocknung in Stickstoff hergestellt. Die chemische Bindung wurde hergestellt, indem unter Verwendung eines in Ethanol gelösten Thiols mit endständiger Säuregruppe (12-Merkaptododekansäure) eine Thiolmonolage gebildet wurde; diese wurde dann mit EDC-NHS aktiviert und die Kugeln mit endständiger Aminogruppe wurden dann hinzugegeben, um die Amidbindung zu bilden.
  • Die Versuche wurden in einer Kammer durchgeführt, die mit zwei optischen Fenstern versehen ist: eins um die Laserbeleuchtung der Probe zu gewährleisten und das andere um die Beobachtung des gestreuten Laserlichts mit einem Lichtmikroskop zu ermöglichen. Die QCM wurde in die Kammer gestellt. Ein Signalerzeuger, Ausführung DS345 (Stanford Research Systems), wurde zur Ansteuerung der QCM verwendet.
  • Bewegung und Ablösung der Teilchen wurden mit einem Olympus BH-2 Lichtmikroskop beobachtet, ausgestattet mit einer CCD Panasonic WL-SL300 Videokamera. Die Hauptmesseinrichtung war ein Lock-In-Verstärker, SR 844 (Stanford Research Systems). Das Bezugssignal wurde dem Lock-In-Verstärker über einen zweiten Erzeuger zugeführt, der auf den ersten abgestimmt wurde. Sämtliche Vorrichtungen wurden zur Regelung des Versuchs und zur Datenerfassung an einen Computer angeschlossen.
  • 2A zeigt das Aufspaltungskraft-Spektrum für die Streptavidin-Biotin-Bindung (1) und für die chemische Bindung (2); 2B ist das Spektrum für die physikalische Bindung.
  • Durch die Aufnahme der Aufspaltungskraft-Spektren ist es möglich, mit Versuchen die Kraft oder Spannung zu bestimmen, die notwendig ist, um die Bindungen aufzuspalten. Dies kann zur Trennung verwendet werden. Wie in 2A dargestellt, können, wenn ein Gemisch von 5 μm-Kugeln vorhanden ist, von denen einige auf der Oberfläche Streptavidin aufweisen und einige nicht, durch Anlegen einer Spannung an eine QCM mit Biotin auf der Oberfläche von über 0,1 V, aber unter 6 V, z.B. 1 V, die zwei Mengen Kugeln getrennt werden, damit nur mit Streptavidin markierte Kugeln auf der Oberfläche zurückbleiben. Dieses Verfahren kann auch angewendet werden, um mit Streptavidin markierte Kugeln nachzuweisen, da sich nur diese Kugeln an die Oberfläche binden würden, wenn sie bei 1 V in Schwingungen versetzt wird.
  • Um die Messung quantitativ zu machen, wurde die Schwingungsamplitude der QCM bei verschiedenen Spannungen auf der Grundlage von Versuchsdaten berechnet, um damit die Kraft auf die Mikrokugel einschätzen zu können. Diese Schätzung erfolgte durch Messung des Stromverbrauchs der QCM und ihres Q-Faktors (oder Gütefaktor – die umgekehrte relative Resonanzbandbreite = f/ΔfResonanz). Die Amplitude A ist gegeben durch: A = [QP/2π3 faM]1/2 wobei Q der Q- oder Gütefaktor ist, P der elektrische Strom, der von der QCM verbraucht wird, f die Resonanzfrequenz des Quarzkristalls und M die effektive Masse der QCM-Quarzscheibe, die in die Bewegung einbezogen ist. Der Q-Faktor wurde bei 6 V als etwa 15.000 bestimmt, wodurch sich eine Schätzung der Schwingungsamplitude der QCM von 60 nm ergibt. Die Kraft auf die Kugel beträgt daher 9 μN. Das müsste mit der Kraft von 160 pN2 verglichen werden, die benötigt wird, um eine einzige Streptavidin-Biotin-Bindung aufzuspalten und zeigt, dass etwa 60.000 Bindungen gleichzeitig aufgespalten werden. Schätzungen geben an, dass dies 50 % oder mehr von der Anfangsmenge der Streptavidin-Biotin-Bindungen zwischen der Kugel und der Oberfläche entspricht. Das bedeutet, dass die meisten Bindungen, die die Kugel mit der Oberfläche verbinden, gleichzeitig aufgespalten werden. Dadurch kommen die scharfen Peaks zustande, die in den Spektren der Kraft der Aufspaltung beobachtet wurden sowie das nachweisbare Rauschen bei der Trennung der Bindung.
  • Beispiel 2
  • Dieses Beispiel zeigt, dass die Verfahren der Erfindung auch in Lösung durchgeführt werden können. Der Q-Faktor der QCM wird aufgrund der Flüssigkeitsbelastung sinken und senkt dadurch die Schwingungsamplitude bei einer bestimmten Spannung, im Vergleich zu Luft. Es werden Zähigkeitskräfte vorhanden sein, die auf die Mikrokugel einwirken und ihre effektive Masse wird aufgrund der damit verbundenen Wasserschicht zunehmen und die Kraft auf die Kugel erhöhen.
  • 3 zeigt das Aufspaltungskraft-Spektrum für 5 μm-Latexkugeln, die über eine Streptavidin-Biotin-Bindung (3A) und eine chemische Bindung (3B) mit der Oberfläche verbunden sind. Die Aufspaltung findet bei 1 V bzw. 10 V statt.
  • Ein Rückgang der kritischen Spannung bei der Streptavidin-Biotin-Bindung um den Faktor sechs, von 6 V auf 1 V beim Übergang von Luft zu Wasser, und die Trennung der chemischen Bindung in Wasser weisen darauf hin, dass die letztere Wirkung vorherrschend ist. Dieses Beispiel zeigt damit deutlich, dass die Lösung von Bindungen und damit auch Trennung und biosensorische Wirkung in Wasser, Flüssigkeit oder anderem möglich sind.
  • Angenommen, dass die Bindungsdichte bei der physikalischen, der Streptavidin-Biotin- und der chemischen Bindung gleich ist und da Mikrokugeln gleicher Größe bei diesen Versuchen verwendet wurden, kann ein verhältnismäßiger Maßstab der Kraft der Aufspaltung erzielt werden. Dieser beträgt 1 : 60 600 für die physikalische Streptavidin-Biotinchemische Bindung. Dieser Maßstab erscheint vernünftig und veranschaulicht den dynamischen Bereich dieses Verfahrens. Mit der Durchführung geeigneter Eichversuche mit bekannten Bindungsdichten sollte es möglich sein, diese Messungen quantitativ zu machen.
  • Beispiel 3
  • Das Beispiel veranschaulicht den Nachweis von Viren und insbesondere von genetisch veränderten Bakteriophagen, die ein Maltose bindendes Eiweiß aufweisen, das mit dem pIII-Hüllprotein der Phagen verschmolzen ist, da sowohl die Phagen als auch die Maltosebindungswechselwirkung hinreichend beschrieben und leicht verfügbar sind. Der Phage ist ein langer, dünner, fadenförmiger Virus, der aus einem beweglichen Stab von 1 μm Länge und 6 nm Durchmesser besteht. Die genetisch veränderten Phagen präsentieren zusätzlich bis zu 5 Maltose bindende Eiweiße an einem Ende des Virus als Verbindungen mit dem pIII-Hüllprotein des Phagen auf; siehe McCafferty et al, Nature, 1990, 348:552. Diese Phagen können spezifisch an Amyloseharz gereinigt werden.
  • Eine Verschmelzung eines Maltose bindenden Eiweißes mit der Aminoendgruppe der Indolglyzerolphosphatsynthase wurde auf der Oberfläche einer fd-Phage als eine Verschmelzung mit der Aminoendgruppe des mit dem Gen III verschlüsselten Hüllproteins präsentiert. Zu diesem Zweck wurde ein fd-Phagenvektor, pJB113, erzeugt; er verschlüsselte eine genetische Fusion zwischen MalE (E. coli), trpC (E. coli) und Gen III. Dieser Phagenvektor trug einen Tetrazyklin-Resistenzmarker. Der unveränderte Konkurrenzphage war der VCS M13 K07 Helferphage (Stratagen), der einen Kanamyzin-Resistenzmarker trug.
  • Durch Zugabe von 10 μl Phagenstammlösung zu 3 ml einer LB-Kultur des Escherichia coli Stamms TG1 mit mittlerer logarithmischer Phase wurde eine Bakteriophagen-Konzen tration von 1 × 1012 KBE/ml erzielt. Nach 2 Stunden Schütteln (250 rpm) bei 37 °C wurde 1 ml der Kultur in 100 ml LB eingeimpft und bei 350 rpm, 37 °C eine Stunde lang geschüttelt. Tetrazyklin (10 μg/ml) oder Kanamyzin (50 μg/ml) wurde zu der pJB113- bzw. VCS-Kultur hinzugegeben, die über Nacht bei 30 °C, 250 rpm wachsen gelassen wurde. Die Bakterien wurden in Pellets geformt (15 Min., 4,1 krpm) und die Phagen aus dem Überstand durch Zugabe von NaCl und PEG6000 ausgefällt bis auf eine Endkonzentration von 0, 5 M bzw. 4 % (v/v). Nachdem sie für eine Stunde auf Eis gestellt wurden, wurden die Phagen durch Schleudern (30 Min., 4,1 krpm) zurückgewonnen und das Phagenpellet wurde in 1 ml H2O resuspendiert und bei 4 °C gelagert.
  • Lösliche Stärke (500 mg, 0,01 mmol, 1 val) wurde in DMF (10 ml) gelöst und 5 Min. gerührt (teilweise löslich). DIC (7,8 μl, 6,3 mg, 0,05 mmol, 5 val) und DMAP (kat.) wurden zu 11-Merkaptododekansäure (11,5 mg, 0,05 mmol, 5 val) in DMF (0,5 ml) hinzugegeben und diese Lösung wurde zu der Stärkelösung hinzugegeben. Die Reaktion wurde über Nacht bei Raumtemperatur rühren gelassen. Die Reaktion wurde dann mithilfe einer Rührzelle mit einer Membran, Trenngrenze 10000 MW, durch Spülen der Lösung mit milliQ-Wasser (6mal 50 ml) und Konzentrieren gereinigt, gefolgt von Gefriertrocknung über Nacht.
  • Die Oberfläche wurde mit der veränderten Stärke vorbehandelt, die eine Thiolgruppe enthielt, sodass sie chemisch mit der Oberfläche gekoppelt werden konnte. Die QCM (wie in Beispiel 1 vorbereitet) wurde für 12 Stunden in eine Lösung der Stärke in Methanol (1 μg pro ml) gesetzt. Die Proben wurden dann gewaschen und unter einem Stickstoffstrom getrocknet. Die Viren wurden aus der Lösung auf die Oberfläche aufgebracht und bei Raumtemperatur getrocknet, für die Versuche an Luft. Verschiedene Virenkonzentrationen wurden durch Verdünnung hergestellt. Um die Versuche durchzuführen, bei denen die Maltose das Maltose bindende Eiweiß hemmt, wurden 100 nM Maltose zu der Phagenlösung hinzugegeben.
  • Die Oberfläche der QCM wurde somit mit einer Schicht löslicher Kartoffelstärke beschichtet (die verzweigte Polymere der Maltose enthält), die chemisch mit der Goldoberfläche über eine Schwefel-Gold-Bindung verbunden ist. Die Versuche wurden sowohl an Luft als auch in Wasser durchgeführt.
  • 4A zeigt das Aufspaltungskraft-Spektrum, das in Wasser bei einer Mischung, die zu gleichen Teilen aus Maltose bindenden Phagen (–) und unveränderten Phagen (...) bestand, entstanden ist, wobei die Abtastung über 500 Sekunden erfolgte. Es sind etwa 500 Millionen von jeder Phagenart auf der Oberfläche der Goldelektrode vorhanden. Bei den unveränderten und damit unspezifisch gebundenen Phagen wurde ein Aufspaltungs-Peak bei 1,2 V erfasst. Die entsprechenden Aufspaltungs-Peaks der Maltose bindenden Phagen lagen um 9 V und sind stärker als bei den unspezifisch gebundenen Phagen aufgrund der höheren Energie, die bei der Trennung der Bindung frei wird. An Luft wurden bis 10 V keine Peaks von den spezifisch gebundenen Maltose bindenden Phagen beobachtet; 4B zeigt die Ergebnisse an Luft nur für die unspezifisch gebundenen Phagen. Der Peak erscheint bei 7,5 V, ein Anstieg von etwa 6 über dem Peak, der in Wasser gefunden wurde. Eine zweite Abtastung (...) weist so gut wie keine Peaks auf, was darauf hinweist, dass die Phagen von der Oberfläche entfernt wurden. Damit ist bestätigt, dass die zusätzlichen Flüssigkeitsreibungskräfte und der Anstieg der effektiven Masse des Teilchens es leichter machen, die Bindungen zwischen den Phagenpartikeln und der Oberfläche in Wasser aufzuspalten als an Luft.
  • Wie scharf die Peaks im Aufspaltungskraft-Spektrum sind, ist offensichtlich mit der Beobachtung verbunden, dass die Aufspaltung der Bindung bei einer Schwellenspannung auftritt; dadurch kommt es zu den Schallschwingungen, die in einer kurzen Zeitdauer auftreten und damit das Verfahren sehr empfindlich machen. Außerdem ist das Signal von den spezifisch bindenden Phagen klar getrennt von den unspezifisch bindenden Phagen und bei einer höheren Amplitude, was bedeutet, dass die unspezifische Adsorption die Messung der spezifischen Adsorption nicht beeinflusst. Es ist eine viel größere Kraft notwendig, um die spezifische Wechselwirkung zwischen den Maltose bindenden Eiweißen auf den Phagen und der mit Stärke beschichteten Oberfläche aufzuspalten als die, die notwendig ist, die unspezifische Wechselwirkung zwischen unveränderten Phagen und der Oberfläche aufzuspalten.
  • 4C zeigt das Ergebnis eines Gegenversuchs, der an Luft mit den Maltose bindenden Phagen durchgeführt wurde, wenn deren Bindungsstelle mit Maltose blockiert ist und die Phagen dann in der Mitte der QCM (obere Darstellung) oder über die gesamte Oberfläche (untere Darstellung) aufgebracht sind; es ergab sich ein ähnliches Verhalten wie bei den unveränderten Phagen, sodass bestätigt werden konnte, dass der Unterschied auf diese spezifischen Wechselwirkungen zurückzuführen ist. 4D zeigt das Aufspaltungskraft-Spektrum in Wasser mit nur 1000 Phagen auf der Oberfläche und zeigt, dass der Aufspaltungsvorgang immer noch nachweisbar ist. Es ist eine kleine Verschiebung in der Peak-Lage vorhanden, die auf kleinere Veränderungen des Q- oder Gütefaktors der QCM zurückzuführen ist, im Ergebnis der Belastungsveränderung.
  • Die Ergebnisse lassen auch darauf schließen, dass es möglich sein sollte, die unspezifisch gebundenen Phagen von den Maltose bindenden Phagen abzutrennen, indem die QCM mit einer Spannung angesteuert wird, die über der liegt, die notwendig ist, die Bindungen mit den unspezifisch gebundenen Phagen aufzuspalten, aber unter der für die Maltose bindenden Phagen. Dies deutet auf eine andere Möglichkeit hin, Phagenbibliotheken auf Bindung hin zu durchsuchen, wobei die Bindungsaffinität der Phagen, die auf der Oberfläche geblieben sind, überprüft wird durch Überprüfung der Höhe der angelegten Spannung und der Dauer, während der sie angelegt wird, vorausgesetzt, dass die Phagen lebensfähig bleiben.
  • Um die Empfindlichkeit des Verfahrens zu bestimmen, wurde ein Verdünnungsversuch durchgeführt, mit den Maltose bindenden Phagen in Wasser. 5A zeigt (bei den stärksten Rausch-Peaks um 9 V), dass die Stärke des Signals über mindestens fünf Größenordnungen auf einer Linie mit der Anzahl der Phagen verläuft und dass die Anwesenheit von etwa 200 Phagen auf der QCM mit 99 % Wahrscheinlichkeit nachgewiesen werden kann. 5B zeigt eine ähnliche Kurve für die unspezifisch bindenden Phagen an Luft und gibt eine Nachweisempfindlichkeit von 100 Phagen mit 99 Wahrscheinlichkeit an. Die Anzahl der Maltose bindenden Phagen auf der Oberfläche bei geringer Verdünnung wurde durch direkte Bildgebung mittels eines AFM bestätigt.
  • Dieses Beispiel zeigt, dass die Anzahl der Phagen auf der QCM-Oberfläche nachgewiesen werden kann. Im Gegensatz dazu wird mit der Polymerase-Kettenreaktion die Anzahl der Nachbildungen viraler DNA in Lösung nachgewiesen. Wird angenommen, dass sich sämtliche Viruspartikel in der Probelösung an die Oberfläche binden, was geschehen wird, wenn entweder eine starke Wechselwirkung zwischen Virus und Oberfläche vorhanden ist oder die Lösung verdampfen kann, sodass die Viren auf der Oberfläche zurückbleiben, dann ist ein direkter Vergleich der Empfindlichkeit möglich. Die Empfindlichkeit der Polymerase-Kettenreaktion liegt bei etwa 100 Nachbildungen viraler DNA pro ml, was vergleichbar mit der Nachweisempfindlichkeit für Phagen nach diesem Beispiel ist (das nicht optimiert ist). Die Elektronik kann verbessert werden und es ist Spielraum für die weitere Verbesserung der Empfindlichkeit vorhanden, um möglicherweise mindestens eine Größenordnung. Zum Beispiel wurden die Phagen in diesen Versuchen gleichmäßig über die Oberfläche der QCM verteilt. Jedoch weisen sowohl die Amplitude als auch die Empfindlichkeit der QCM eine räumliche Abhängigkeit auf, was bedeutet, dass das vorherrschende Signal aus der Mitte der QCM kommt (wie in 4C gezeigt). Das bedeutet, dass weniger und damit stärkere Peaks aufgezeichnet werden könnten, wenn die Phagen nur in der Mitte der QCM aufgebracht würden, was zu einer verbesserten Empfindlichkeit führen würde.
  • Dieses Verfahren kann einfach auf den Nachweis von menschlichen Viren ausgeweitet werden, durch die Verwendung spezifischer Antikörper des Virus', die an die Oberfläche der QCM gebunden sind. Diese Antikörper bilden spezifische Wechselwirkungen zwischen dem Virus, der an die Oberfläche der QCM gebunden ist. Diese Antikörper bilden spezifische Wechselwirkungen zwischen dem Virus und der Oberfläche, die bei einer bestimmten Oberflächenbeschleunigung aufgespalten werden können. Unspezifische Adsorption durch ähnlich große oder größere Teilchen, die in der Probe vorliegen, ergibt Peaks bei niedriger Spannung, wie jetzt gezeigt werden konnte, und dies sollte die Untersuchung nicht beeinflussen, obwohl die Adsorption durch Makromoleküle auf der Oberfläche die Anzahl der Antikörper senken kann, die für die Bindung an den Virus verfügbar sind. Die meisten gewöhnlichen Viren weisen eine größere effektive Masse auf als die Phagen, die für dieses Beispiel verwendet wurden, obwohl die Anzahl und Stärke der spezifischen Wechselwirkungen mit der Oberfläche unterschiedlich sein werden. Das bedeutet, dass die erforderliche Spannung ähnlich hoch oder niedriger sein sollte.
  • Dieses Beispiel zeigt, dass die Spektroskopie der Kraft der Aufspaltung keinen Verstärkungsschritt erfordert, quantitativ ist und das Vermögen hat, schnell und kostengünstig zu sein. Dies könnte zur schnellen Erkennung einer Virusinfektion in vielen Situationen führen, einschließlich bei Patienten in einem klinischen Umfeld oder bei Pflanzen und Tieren in der Landwirtschaft.
  • Beispiel 4
  • Dieses Beispiel veranschaulicht einen Virusbindungstest. Für diese Untersuchung wurden Schwingquarzmikrowaagen-Plättchen aus polierten Quarzscheiben, mit einem AT-Schnitt in einem Winkel von 35 °C (HyQ, Cambridge, UK) hergestellt und in einem Edwards-Vakuumbedampfer mit einer 30 nm dicken Haftschicht aus Chrom beschichtet, dann mit einer 200 nm Schicht Gold, wie durch geeichte elektrische Leitfähigkeit bestimmt. Diese Plättchen wurden anschließend 18 Stunden lang in eine 1 mM Lösung Merkaptododekansäure in Ethanol spektroskopischer Reinheit eingetaucht, gründlich mit Ethanol und anschließend mit Wasser gespült und dann unter einem Strom Stickstoff getrocknet. Diese Plättchen wurden anschließend 20 Min. lang in eine Mischung aus NHS (100 mM) und EDC (400 mM) eingetaucht. Sie wurden gründlich mit Wasser gespült, anschließend 1 Stunde lang in eine 50 μg/ml Lösung monoklonaler Maus-IgG-Antikörper eingetaucht, die gegen HSV I Glykoprotein D in 10 mM PBS bei pH 7,0 hergestellt wurde. Sie wurden anschließend mit Wasser gespült und 10 Min. lang in eine 1 M Lösung Ethanolamin bei pH 8,5 eingetaucht. Sie wurden dann gründlich mit Wasser gespült und bei 4 °C in 1 ml PBS gelagert.
  • Die Anzahl der Viruspartikel/ml in einer mit Ficoll gereinigten Virusstammlösung wurde mithilfe der Elektronenmikroskopie mit einem inneren Standard von Latexkugeln bestimmt. Zehnfache Reihenverdünnungen einer HSV gD+ Stammlösung bei einer Konzentration von 5 × 1010 Viruspartikeln/ml wurden in PBS (10 mM Na2HPO4/ NaH2PO4, 2,7 mM KCl, 120 mM NaCl, pH 7,4) durchgeführt, das BSA (0,1 mg/ml) enthielt und bei 4 °C gelagert. Die QCM-Plättchen wurden dann mit lötfreien Kontakten in dem Gerät befestigt und entweder 1 μl oder 40 μl von jeder dieser Verdünnungen wurden auf die Oberfläche der Plättchen aufgebracht, die mit dem anti-gD IgG-Antikörper beschichtet waren. Nach 40 Min. wurde die Oberfläche gründlich mit Wasser gereinigt, anschließend mit 40 μl PBS bedeckt und die QCM wurde von 0–10 V abgetastet.
  • Die Ergebnisse sind in 6. dargestellt. In 6A ist Signal (Rausch-Peak nahe 7,5 V) gegen die Anzahl der gD+ Herpes-simplex-Viruspartikel bei den Proben mit 1 μl (o) und 40 μl (⎕) dargestellt; die Reinheit der Linie ist gut. In 6B ist Rauschen gegen Amplitude für den gD+- und gD-- Virus dargestellt. Der gD--Virus, der keine spezifische Wechselwirkung mit dem Antikörper auf der Oberfläche aufweist, zeigt keinen Peak; im Gegensatz dazu zeigt der gD+-Virus einen scharfen Peak nahe 7,5 V.
  • Beispiel 5
  • Für diesen Bakterienbindungstest wurden QCM-Plättchen wie in Beispiel 4 hergestellt. E. coli und S. aureus (Laborstämme) wurden in Hirn-Herz/0,5 % Hefeextrakt-Nährmedium gezüchtet und über Nacht bei 37 °C angesetzt. 1 ml Probe jeder Kultur wurde an eine Konzentration von 1010 KBE/ml angeglichen, wie durch optische Dichte bestimmt, und 2 Min. lang bei 12.000 g zentrifugiert; das Pellet wurde in sterilem PBS resuspendiert. 10 μl der Bakteriensuspension wurden auf ein QCM-Plättchen aufgebracht, das mit einem anti-E. coli IgG-Antikörper auf ähnliche Weise beschichtet war, wie in Beispiel 4 für den anti-HSV-Antikörper beschrieben. Nach 40 min. wurde die Oberfläche gründlich mit Wasser gereinigt, mit 40 μl PBS bedeckt und die QCM anschließend von 0–10 V abgetastet.
  • Die Ergebnisse sind in 7 dargestellt. Die Rauschen/Amplitude-Darstellung zeigt ein scharfes Signal bei etwa 6 V für E. coli und keins für S. aureus.
  • Beispiel 6
  • In diesem Beispiel wurde ein Oberflächenwellenelement verwendet, wie in 9 gezeigt. In diesem Fall wurde ein einziges Gerät benutzt (HP8512a, Hewlett Packard), das einen Verstärker (1) und Empfänger und Regeleinheit (5) in einem einzigen Gerät verbindet. Das Gerät ist auf eine Dauerstrich- und Power Sweep-Betriebsart eingestellt. Das Oberflächenwellenelement war das handelsübliche RF1171 von RF Monolitics, Inc. Etwa 100,00 Latexkugeln, 1 μm im Durchmesser, wurden auf die Oberfläche des Oberflächenwellenelement aufgebracht. Das entstandene Spektrum ist in 10 dargestellt. Eine Zahl von Peaks werden beobachtet, die auf der sauberen Oberfläche nicht vorhanden sind. Das zeigt, dass ein SAWS-Bauelement eingesetzt werden kann, um den Aufspaltungsvorgang nachzuweisen. Die verschiedenen Peaks entsprechen wahrscheinlich Kugelanhäufungen verschiedener Größe auf der Oberfläche und damit werden die Peaks an verschiedenen Stellen beobachtet.

Claims (27)

  1. Verfahren zum Abtrennen eines Zielanalyten aus einer Zusammensetzung, das die folgenden Schritte umfasst: (i) die Zusammensetzung mit einem Bindungspartner für den Analyt in Berührung bringen, wobei der Bindungspartner auf einer Oberfläche immobilisiert ist; und (ii) die Oberfläche in Schwingungen versetzen, sodass die Amplitude auf einen Wert ansteigt, bei dem der Analyt oder ein anderer Bestandteil der Zusammensetzung von der Oberfläche entfernt wird.
  2. Verfahren nach Anspruch 1, wobei der Analyt oder ein anderer Bestandteil gezielt entfernt und abgetrennt wird.
  3. Verfahren nach Anspruch 1, wobei das Entfernen des Analyten oder eines anderen Bestandteils erfasst wird.
  4. Verfahren nach Anspruch 3 zum Bestimmen der Affinität zwischen Bindungspartnern oder einer Eigenschaft eines der Bindungspartner, die von der Affinität abhängt.
  5. Verfahren nach Anspruch 3 zum Bestimmen der Bindungsstärke zwischen den Bindungspartnern.
  6. Verfahren nach Anspruch 3 zum Bestimmen des Vorhandenseins des anderen Bindungspartners.
  7. Verfahren nach Anspruch 3, wobei der andere Bindungspartner ein Teilchen ist oder auf einem Teilchen immobilisiert ist.
  8. Verfahren nach Anspruch 7 zum Bestimmen der Größe oder des Vorhandenseins des Teilchens.
  9. Verfahren nach einem der Ansprüche 3 bis 8, wobei der Dissoziationsvorgang durch Schallemission erfasst wird.
  10. Verfahren nach Anspruch 9, wobei die Oberfläche bei einer Frequenz in Schwingungen versetzt wird, die einer Hauptresonanzfrequenz entspricht, und die Schallemission nahe einer weiteren Resonanzfrequenz erfasst wird.
  11. Verfahren nach Anspruch 10, wobei die Oberfläche Teil einer Schwingquarzmikrowaage (QCM) ist und die QCM in Schwingungen versetzt wird, indem sie mit ihrer Grundresonanzfrequenz angesteuert wird, und die QCM die Schallemission nahe der dreifachen Grundfrequenz erfasst.
  12. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei der oder jeder Bindungspartner ein Eiweiß, Antikörper, Antigen, Enzym, Enzyminhibitor oder Polynukleotid ist.
  13. Verfahren nach Anspruch 1 bis 11, wobei der oder jeder Bindungspartner eine Zelle, eine Bakterie, ein Virus, Prion oder Phage ist.
  14. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei verschiedene Bindungspartner an verschiedenen Punkten auf der Oberfläche immobilisiert sind.
  15. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei die Oberfläche Teil eines piezoelektrischen Wandlers oder eines Schallwandlers ist.
  16. Verfahren nach Anspruch 13, wobei der Wandler eine Schwingquarzmikrowaage oder ein Oberflächenwellenelement ist.
  17. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, das in einer Flüssigkeit durchgeführt wird.
  18. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 16, das an Luft durchgeführt wird.
  19. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei die Oberfläche in der Ebene der Oberfläche in Schwingungen versetzt wird.
  20. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei Schritt (ii) umfasst, die Oberfläche bei monoton steigender Amplitude in Schwingungen zu versetzen.
  21. Vorrichtung zum Erfassen der Dissoziation der Bindungspartner, die Folgendes umfasst: Schallwandlerelement mit einer Oberfläche, auf der ein Bindungspartner immobilisiert ist; Oszillator, der die Oberfläche mit steigender Amplitude in der Ebene der Oberfläche in Schwingungen versetzt; und Detektor zum Erfassen einer Veränderung der Amplitude einer weiteren, gleichzeitig stattfindenden Schwingung, die durch einen Dissoziationsvorgang verursacht wird.
  22. Vorrichtung nach Anspruch 21, wobei der Detektor Schallemission erfasst.
  23. Vorrichtung nach Anspruch 21 oder Anspruch 22, wobei der immobilisierte Bindungspartner ein Eiweiß, Antikörper, Antigen, Enzym, Enzyminhibitor oder Polynukleotid ist.
  24. Vorrichtung nach Anspruch 21 oder Anspruch 22, wobei der immobilisierte Bindungspartner eine Zelle, eine Bakterie, ein Virus, Prion oder Phage ist.
  25. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 21 bis 24, wobei verschiedene Bindungspartner an verschiedenen Punkten auf der Oberfläche immobilisiert sind.
  26. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 21 bis 25, wobei die Oszillator- und Detektorelemente einen piezoelektrischen Wandler oder Schallwandler umfassen.
  27. Vorrichtung nach Anspruch 26, wobei der Wandler eine Schwingquarzmikrowaage oder ein Oberflächenwellenelement ist.
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Families Citing this family (53)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20050233459A1 (en) * 2003-11-26 2005-10-20 Melker Richard J Marker detection method and apparatus to monitor drug compliance
CA2390261C (en) 1999-11-08 2014-04-22 University Of Florida Research Foundation, Inc. Marker detection method and apparatus to monitor drug compliance
US6981947B2 (en) * 2002-01-22 2006-01-03 University Of Florida Research Foundation, Inc. Method and apparatus for monitoring respiratory gases during anesthesia
US20050054942A1 (en) * 2002-01-22 2005-03-10 Melker Richard J. System and method for therapeutic drug monitoring
US7104963B2 (en) * 2002-01-22 2006-09-12 University Of Florida Research Foundation, Inc. Method and apparatus for monitoring intravenous (IV) drug concentration using exhaled breath
WO2002095359A2 (en) * 2001-05-23 2002-11-28 University Of Florida Method and apparatus for detecting illicit substances
DE10126798A1 (de) * 2001-06-01 2002-12-19 Nanotype Gmbh Verfahren zur Bestimmung einer Probe
US6865949B2 (en) 2003-01-31 2005-03-15 Hewlett-Packard Development Company, L.P. Transducer-based sensor system
US20070167853A1 (en) 2002-01-22 2007-07-19 Melker Richard J System and method for monitoring health using exhaled breath
WO2004034883A2 (en) * 2002-10-15 2004-04-29 Medtronic Inc. Synchronization and calibration of clocks for a medical device and calibrated clock
US7135806B2 (en) 2002-10-31 2006-11-14 Hewlett-Packard Development Company, L.P. Transducer-based sensor system with multiple drive signal variants
WO2004067130A2 (de) * 2003-01-26 2004-08-12 Eberhard-Karls-Universität Tübingen Univer Sität Sklinikum Verfahren zum separieren und nachweisen von zumindest einem analyten in biologischen matrizes
CA2517908A1 (en) * 2003-03-04 2005-02-10 Auburn University Methods of forming monolayers of phage-derived products and uses thereof
WO2004095012A1 (en) 2003-04-17 2004-11-04 Akubio Limited Crystal oscillator
US7117743B2 (en) 2003-07-31 2006-10-10 Hewlett-Packard Development Company, L.P. Multiple-transducer sensor system and method with selective activation and isolation of individual transducers
US6978656B2 (en) 2003-10-31 2005-12-27 Hewlett-Packard Development Company, L.P. Transducer-based sensor system and method
NZ528338A (en) * 2004-03-19 2006-10-27 Ind Res Ltd Biosensors for detecting bond rupture
US20050226773A1 (en) * 2004-04-01 2005-10-13 Honeywell International, Inc. Multiple modes acoustic wave sensor
US7539459B2 (en) * 2004-04-02 2009-05-26 Edwards Vacuum, Inc. Active noise cancellation system, arrangement, and method
US7497133B2 (en) 2004-05-24 2009-03-03 Drexel University All electric piezoelectric finger sensor (PEFS) for soft material stiffness measurement
CA2569554C (en) * 2004-06-04 2012-09-18 Michael H. Walter Bacteriophages that infect bacillus bacteria (anthrax)
US7749445B2 (en) 2005-05-02 2010-07-06 Bioscale, Inc. Method and apparatus for analyzing bioprocess fluids
US7648844B2 (en) 2005-05-02 2010-01-19 Bioscale, Inc. Method and apparatus for detection of analyte using an acoustic device
WO2007041206A2 (en) 2005-09-30 2007-04-12 Auburn University Drug delivery nanocarriers targeted by landscape phage
US8227261B2 (en) * 2005-11-23 2012-07-24 Bioscale, Inc. Methods and apparatus for assay measurements
US8171795B1 (en) 2006-01-23 2012-05-08 Drexel University Self-exciting, self-sensing piezoelectric cantilever sensor for detection of airborne analytes directly in air
US7942056B2 (en) * 2006-01-23 2011-05-17 Drexel University Self-exciting, self-sensing piezoelectric cantilever sensor
US8286486B2 (en) * 2006-05-10 2012-10-16 Drexel University Molecular control of surface coverage
GB0609382D0 (en) * 2006-05-11 2006-06-21 Univ Cambridge Tech Acoustic wave transducer substrate and measurements using the same
DE102006034842A1 (de) * 2006-07-27 2008-02-07 Siemens Ag Fluidsensor
US7914460B2 (en) * 2006-08-15 2011-03-29 University Of Florida Research Foundation, Inc. Condensate glucose analyzer
US8481335B2 (en) * 2006-11-27 2013-07-09 Drexel University Specificity and sensitivity enhancement in cantilever sensing
EP2100125A4 (de) 2006-11-28 2012-02-15 Univ Drexel Piezoelektrische mikrocantilever-sensoren für biosensorik
US7992431B2 (en) * 2006-11-28 2011-08-09 Drexel University Piezoelectric microcantilevers and uses in atomic force microscopy
WO2008109205A2 (en) * 2007-02-01 2008-09-12 Drexel University A hand-held phase-shift detector for sensor applications
US8512947B2 (en) * 2007-02-16 2013-08-20 Drexel University Detection of nucleic acids using a cantilever sensor
WO2008101199A1 (en) 2007-02-16 2008-08-21 Drexel University Enhanced sensitivity of a cantilever sensor via specific bindings
WO2009035732A2 (en) * 2007-05-30 2009-03-19 Drexel University Detection and quantification of biomarkers via a piezoelectric cantilever sensor
WO2009033056A1 (en) * 2007-09-06 2009-03-12 Bioscale, Inc. Reusable detection surfaces and methods of using same
US8241569B2 (en) * 2007-11-23 2012-08-14 Drexel University Lead-free piezoelectric ceramic films and a method for making thereof
RU2350957C1 (ru) * 2007-12-28 2009-03-27 Институт аналитического приборостроения Российской академии наук Устройство для иммунологических исследований биологических жидкостей
US8236508B2 (en) * 2008-01-29 2012-08-07 Drexel University Detecting and measuring live pathogens utilizing a mass detection device
US8741663B2 (en) 2008-03-11 2014-06-03 Drexel University Enhanced detection sensitivity with piezoelectric sensors
WO2009140660A2 (en) 2008-05-16 2009-11-19 Drexel University System and method for evaluating tissue
GB2473635A (en) * 2009-09-18 2011-03-23 Cambridge Entpr Ltd Detecting concentration of target species
US20110086368A1 (en) * 2009-10-08 2011-04-14 Drexel University Method for immune response detection
US8722427B2 (en) * 2009-10-08 2014-05-13 Drexel University Determination of dissociation constants using piezoelectric microcantilevers
JP2013533469A (ja) 2010-05-25 2013-08-22 アリックス インク 免疫診断における生物学的および化学的分析および用途における粒子の位置的自由度の検出のための方法および装置
GB201020237D0 (en) * 2010-11-30 2011-01-12 Cambridge Entpr Ltd Method and apparatus for characterising molecules
NL2017705B1 (en) * 2016-11-02 2018-05-18 Lumicks Tech B V Method and system for studying biological cells
US10191036B1 (en) * 2018-03-22 2019-01-29 NUB4U, Inc. System for detecting and removing biological analytes in fluids
RU184943U1 (ru) * 2018-04-09 2018-11-15 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт физики полупроводников им. А.В. Ржанова Сибирского отделения Российской академии наук Устройство для проведения высокоспецифичной детекции биомаркеров на кварцевом резонаторе
NL2026393B1 (en) * 2020-09-01 2022-05-04 Lumicks Ca Holding B V Sorting of cellular bodies based on force spectroscopy

Family Cites Families (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4242096A (en) * 1977-11-14 1980-12-30 Minnesota Mining And Manufacturing Company Immunoassay for antigens
US4314821A (en) * 1979-04-09 1982-02-09 Minnesota Mining And Manufacturing Company Sandwich immunoassay using piezoelectric oscillator
US4236893A (en) * 1979-04-09 1980-12-02 Minnesota Mining And Manufacturing Company Method for the assay of classes of antigen-specific antibodies
US4735906A (en) * 1984-11-28 1988-04-05 Texas A&M University Sensor having piezoelectric crystal for microgravimetric immunoassays
US5501986A (en) * 1988-04-06 1996-03-26 E. I. Du Pont De Nemours And Company Piezoelectric specific binding assay with mass amplified reagents
US4999284A (en) * 1988-04-06 1991-03-12 E. I. Du Pont De Nemours And Company Enzymatically amplified piezoelectric specific binding assay
US5552274A (en) * 1992-09-07 1996-09-03 Terumo Kabushiki Kaisha Method for detecting target sequences by oscillation frequency
IL114692A (en) * 1995-07-21 1999-10-28 Yissum Res Dev Co Determination of an analyte in a liquid medium
US5814525A (en) * 1996-01-25 1998-09-29 Sandia Corporation Piezoelectric biosensor with a ladder polymer substrate coating
IL120445A0 (en) 1997-03-13 1997-07-13 Yissum Res Dev Co Biosensor for cells
GB9706991D0 (en) 1997-04-05 1997-05-21 Univ Heriot Watt Clathrate hydrate dissociation point detection and measurement
US6086821A (en) * 1999-03-29 2000-07-11 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Ultrasonic force differentiation assay
US6308553B1 (en) * 1999-06-04 2001-10-30 Honeywell International Inc Self-normalizing flow sensor and method for the same

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Publication number Publication date
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