DE3712440C2 - Testsystem und Verfahren zur Bestimmung mehrerer Substanzen auf der Basis der Bestimmung einer pH-Änderung - Google Patents
Testsystem und Verfahren zur Bestimmung mehrerer Substanzen auf der Basis der Bestimmung einer pH-ÄnderungInfo
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-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N31/00—Investigating or analysing non-biological materials by the use of the chemical methods specified in the subgroup; Apparatus specially adapted for such methods
- G01N31/22—Investigating or analysing non-biological materials by the use of the chemical methods specified in the subgroup; Apparatus specially adapted for such methods using chemical indicators
- G01N31/221—Investigating or analysing non-biological materials by the use of the chemical methods specified in the subgroup; Apparatus specially adapted for such methods using chemical indicators for investigating pH value
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Description
Die Erfindung betrifft ein Testsystem und ein Verfahren
zur Bestimmung mehrerer Substanzen in einem
für alle Bestimmungen gemeinsamen Reagenz (Grundsystem),
wobei durch Zugabe eines für jede Bestimmung spezifischen
Reagenzes (Komponente) direkt oder indirekt eine den
pH-Wert verändernde Reaktion ausgelöst wird, die gemessen
werden kann.
Die Bestimmung analytischer Parameter, insbesondere in
der klinischen Chemie, erfolgt in der Regel mit einem
für jeden dieser Parameter spezifischen Reagenz. Bedingt
durch die unterschiedlichen Methoden laufen dabei Reak
tionen ab, die wiederum mit verschiedenen Meßtechniken
erfaßt werden. So werden eine Reihe von Substanzen und
Enzymen direkt oder indirekt entweder über dinukleotid
abhängige Reaktionen, wie Harnstoff, Glucose oder Trans
aminasen, oder über Farbreaktionen, wie Magnesium, Kupfer,
Eisen oder Phosphatasen nachgewiesen. Für die Vielzahl
der Tests werden demnach eine große Zahl von Reagenzien
und unterschiedliche Meßmethoden benötigt.
Seit langem gibt es Bestrebungen, eine Vereinfachung von
Testsystemen zu erreichen. Dabei wurde insbesondere Wert
auf die Vereinheitlichung von Reagenzien und Meßmethoden
gelegt. Dies hat bereits zu einer Reihe von neuen Test
anordnungen geführt. Aus der EP 44 388 ist bekannt, daß
zur Untersuchung eines bestimmten Parameters mehrere
Proben des gleichen Parameters nacheinander in einer
Küvette bestimmt werden. Die nacheinander ausgelösten
Reaktionen addieren sich, so daß über einen auf die
gleiche Art zugegebenen Standard aus den einzelnen Signal
stufen die Konzentrationen des gesuchten Parameters in
den einzelnen Proben bestimmt werden können. Dieses System
hat den Vorteil, daß verschiedene Proben des gleichen
Parameters mit einem einheitlichen Reagenz über eine ein
heitliche Meßreaktion nachgewiesen werden können. Als
Nachteil muß jedoch gewertet werden, daß für jeden unter
schiedlichen Parameter ein eigenes Reagenz benötigt wird.
Ein weiteres System betrifft die gleichzeitige Messung
verschiedener Enzyme in einer Küvette, wobei die Indika
torreaktionen bei unterschiedlichen Wellenlängen wechsel
weise gemessen werden. Aus den so erhaltenen Signalen
kann die Aktivität jedes einzelnen Enzyms berechnet
werden (US 3 925 162). Damit besteht die Möglichkeit, in
einem einzigen Testansatz mehrere Enzyme gleichzeitig zu
bestimmen, vorausgesetzt, die Indikatorreaktionen können
deutlich unterschieden werden. Außerdem erfordert ein
solches System eine komplizierte Meßmethodik, da die
unterschiedlichen Reaktionen einen ständigen Wellenlängen
wechsel und ein entsprechend kompliziertes Auswertever
fahren erfordern. Zudem sind nur wenige Anwendungen mög
lich, da die erforderliche Voraussetzung optisch deutlich
unterscheidbarer Meßreaktionen bei gleichen Reaktions
bedingungen nicht häufig gegeben ist. Demnach ist die
angestrebte Vereinfachung in diesem System nur mit großen
Einschränkungen möglich.
In einem weiteren Beispiel werden verschiedene Zucker in
einem einheitlichen Reagenz bestimmt, in welchem Glucose,
Fructose und Sorbit unter Zugabe verschiedener Enzyme
(Hexokinase, Phosphoglucoisomerase sowie einem Gemisch
aus Sorbitdehydrogenase und Lactatdehydrogenase) nach
einander in der gleichen Küvette nachgewiesen werden.
Letztlich entsteht bei allen Reaktionen Glucose-6-phosphat,
das mit der Glucose-6-phosphatdehydrogenase über die
NADPH-Bildung einheitlich nachgewiesen wird (Methoden der
Lebensmittelanalytik, Boehringer Mannheim, 1984). Auf
diese Weise wird die Bestimmung von drei Zuckern in einem
einzigen Testansatz mit einem einzigen Meßprinzip ermög
licht. Allerdings muß die angegebene Reihenfolge einge
halten werden, so daß nur Glucose für sich allein bestimmt
werden kann, während die Bestimmung von Fructose die vor
herige von Glucose und die von Sorbit die vorherigen von
Glucose und Fructose voraussetzt. Zudem beschränkt das
gewählte Meßprinzip die Methode prinzipiell auf die Ana
lyse von Zuckern oder auf die am Zuckerstoffwechsel be
teiligten Enzyme oder Komponenten. Parameter, die nicht
zu dieser Klasse von Verbindungen gehören, wie Harnstoff
oder Lactatdehydrogenase, können mit diesem System nicht
bestimmt werden. Die Ursache dafür ist darin zu sehen,
daß nur eine einzige, überdies hochspezifische Indikator
reaktion zur Verfügung steht, die stets die Bildung von
Glucose-6-phosphat voraussetzt.
Nach dem Stand der Technik wird zwar die Möglichkeit der
Verwendung einheitlicher Reagenzien genutzt, die Indika
torreaktionen (Meßreaktionen) sind jedoch so beschaffen,
daß unterschiedliche Parameter entweder auch unterschied
liche Meßreaktionen erfordern (z. B. bei der gleichzei
tigen Messung von mehreren Enzymen in einer Küvette) oder
aber, bei einer einheitlichen Meßreaktion (z. B. bei der
Bestimmung von mehreren Zuckern in einer Küvette), die
Parameter nicht mehr unabhängig voneinander gemessen
werden können. Dadurch wird die Verwendungsmöglichkeit
dieser Systeme stark eingeschränkt.
Universeller einsetzbar ist dagegen eine pH-Veränderung
als Indikatorreaktion. Damit können die verschiedensten
Substrate und Enzyme bestimmt werden, da pH-verändernde
Reaktionen sowohl chemisch als auch enzymatisch weit ver
breitet sind und so eine Vielzahl unterschiedlicher Re
aktionen ausgenutzt werden kann; die Beschränkung auf
eine einzige mögliche Indikatorreaktion entfällt. Die
Messung kann je nach Bedarf auf verschiedene Weise er
folgen, z. B. mit einer pH-Elektrode oder photometrisch
bei Verwendung eines pH-Indikators.
Ein System, mit dem verschiedene Parameter einheitlich
über pH-verändernde Reaktionen nachgewiesen werden
können, ist aus Clin. Chem. 30, 556-559 (1984) bekannt,
wobei in einem Fließ-Injektionssystem über eine pH-
Elektrode Harnstoff, Creatinin und Glucose bestimmt
werden. Allerdings wird für jeden Parameter ein eigenes
Reagenz benötigt, so daß bei Wechsel von einer Bestimmung
zu einer anderen jedesmal das ganze System gespült und
neu äquilibriert werden muß. Lediglich die pH-Veränderung
und die darauf beruhende Messung bleibt gleich. Die be
kannten Systeme nutzen zwar die Möglichkeit der univer
sellen pH-Veränderung und kommen damit dem Ziel einer
Vereinfachung von analytischen Bestimmungsmethoden bezüg
lich der Messung näher. Durch die erforderlichen spezi
fischen Reagenzien wird jedoch der so erreichte Vorteil
wieder deutlich eingeschränkt.
Der vorliegenden Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, die oben erwähn
ten Nachteile möglichst zu vermeiden, und zwar durch die Entwicklung
eines Reagenzes, in welchem mehrere Substanzen unabhängig vonein
ander mit einer auf verschiedene Weise auslösbaren, aber stets mit der
gleichen Methode gemessenen Nachweisreaktion bestimmt werden
können.
Diese Aufgabe wurde durch ein Testsystem gelöst, das die Bestimmung
verschiedener Substanzen durch eine den pH-Wert verändernde Reaktion
und einer darauf beruhenden Messung erlaubt.
Gegenstand der Erfindung ist ein Testsystem zur Bestimmung mehrerer
Substanzen auf der Basis der Bestimmung einer pH-Änderung, das eine
Pufferlösung mit einem definierten pH-Wert und eine für die jeweilige
Nachweisreaktion spezifische Komponente enthält und das dadurch
gekennzeichnet ist, daß die Pufferlösung für alle Substanzen gleich ist.
Die Pufferlösung enthält gegebenenfalls einen pH-Indikator.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung ist ein Verfahren zur quantitativen
Bestimmung mehrerer Substanzen auf der Basis der Bestimmung einer
pH-Änderung mit Hilfe dieses Testsystems, das dadurch gekennzeichnet
ist, daß ein für alle Bestimmungen gleicher Reaktionsträger mit der
gleichen Pufferlösung eingesetzt wird und nach Zugabe der für die jewei
lige Nachweisreaktion spezifischen Komponente und der Probe die für alle
Bestimmungen gleiche Messung der pH-Änderung erfolgt.
Das erfindungsgemäße Testsystem enthält eine Pufferlösung mit einem
definierten pH-Wert und die für die jeweilige Nachweisreaktion spezi
fischen Komponenten, wobei die Pufferlösung und die Komponenten ent
weder getrennt oder gemeinsam in einem Reaktionsträger zusammen
gebracht werden.
Bei den zu bestimmenden Substanzen handelt es sich z. B. um Substrate,
Enzyme, Ionen, Gase, vorzugsweise um Substrate und Enzyme, die in
Körperflüssigkeiten vorkommen wie Harnstoff, Creatinin, Pyruvat, Tri
glyceride, Glucose, Lactose, Sorbit, Arginin, Magnesium, Calcium, Urease,
Creatininiminohydrolase, Lactatdehydrogenase, Malatdehydrogenase,
Glucosedehydrogenase, Formiatdehydrogenase, Arginase, Hexokinase,
Sorbitdehydrogenase, β-Galaktosidase, Lipoproteinlipase.
Die pH-Änderung kann entweder an der Substanz selbst erfolgen (direkt)
oder auch an einem oder mehreren hervorgegangenen Folgeprodukten
(indirekt), z. B. chemisch durch ein oder mehrere Enzyme, Komplexbildung,
Adsorption oder andere Maßnahmen.
Direkte Reaktionen werden beispielsweise durch Enzyme hervorgerufen,
deren Reaktion selbst eine pH-Änderung bewirkt. So führt die Hydrolyse
von Harnstoff durch Urease zu einer stöchiometrischen Bildung von
Ammoniak und damit zu einem pH-Anstieg. Dasselbe gilt für die Hydrolyse
von Creatinin durch Creatininiminohydrolase. Ebenso bewirkt die große
Gruppe der Dehydrogenasen eine pH-Änderung: bei Verbrauch von
NAD(P)H + H⁺ eine Alkalisierung, bei Bildung von NAD(P)H + H⁺ eine
Ansäuerung des Mediums. Dazu gehören beispielsweise die Enzyme
Lactatdehydrogenase, Malatdehydrogenase, Glucosedehydrogenase oder
Formiatdehydrogenase. Ebenso ist eine rein chemische, nicht enzyma
tische pH-Veränderung möglich, wie die Komplexierung von Glucose mit
Borat, die zu einer Ansäuerung des Mediums führt.
Bei indirekten Reaktionen sind der eigentlichen pH-Änderung eine oder
mehrere pH-neutrale Reaktionen vorgeschaltet. Die Argininbestimmung
kann z. B. mit Arginase als erstem Enzym durchgeführt werden, wobei
Arginin in Ornithin und Harnstoff gespalten wird. Da diese Reaktion selbst
nicht den pH-Wert verändert, muß eine zweite Reaktion angeschlossen
werden. Das kann durch Urease erfolgen, da die Hydrolyse des ent
stehenden Harnstoffs zu einem Überschuß an Ammoniak führt und damit
zu einem Anstieg des pH-Wertes. Ebenso kann Lactose durch β-Galacto
sidase bestimmt werden, deren Reaktion pH-neutral die Bildung von Glu
cose und β-Galactose bewirkt. Die entstehende Glucose kann durch Glu
cosedehydrogenase weiter umgesetzt werden, wobei die Bildung von
NADH + H⁺ eine Ansäuerung des Mediums hervorruft.
Die Messung der pH-Änderung ist für alle Substanzen gleich und stellt das
gemeinsame Meßprinzip dar. Sie kann z. B. photometrisch, reflektome
trisch oder visuell mit Hilfe eines pH-Indikators, mit einer pH-Elektrode
oder einem Halbleitersystem, titrimetrisch, aber auch durch andere auf
eine pH-Änderung ansprechende Meßmethoden erfolgen.
Das erfindungsgemäße Testsystem enthält eine Pufferlösung mit einem
definierten pH-Wert und gegebenenfalls einen pH-Indikator. Die Bestand
teile können in trockener oder flüssiger Form vorliegen; sie sind für alle zu
bestimmenden Substanzen gleich. Außerdem kann die Pufferlösung noch
Bestandteile enthalten, die nicht für alle Nachweisreaktionen benötigt
werden, wie Detergentien, Stabilisatoren und/oder Hilfsstoffe.
Geeignete Puffersysteme für das Grundsystem sind z. B.
Imidazol, Imidazol-HCl, Tris(hydroxymethyl)aminomethan
(Tris), Bis-Tris-Bis-Tris-propan, Diethanolamin, Tri
ethanolamin, Aminomethylpropanol, vorzugsweise Imidazol
und Trispuffer.
Geeignete pH-Indikatoren für das Grundsystem sind z. B.
Phenolrot, Neutralrot, Kresolrot, Rosolsäure, m-Kresol
purpur, o-Kresolphthalein, Thymolblau, Phenolphthalein,
Methylrot, Neutralrot, 3-Nitrophenol, 4-Nitrophenol,
Chlorphenolrot, Bromphenolrot, Bromkresolpurpur, Brom
thymolblau, Xylenolblau, vorzugsweise Phenolrot, Neutral
rot und Kresolrot. Die Konzentration der pH-Indikatoren
sollte im Bereich von 0,005 bis 0,25% liegen.
Ein Grundsystem kann z. B. Imidazolpuffer, pH 5,5, und
den pH-Indikator Phenolrot oder Trispuffer, pH 7,0, und
den pH-Indikator m-Kresolpurpur für alkalische Reaktionen
oder Imidazolpuffer, pH 8,5, und den pH-Indikator Neutral
rot für eine saure Reaktion enthalten. Die jeweilige
Pufferkonzentration richtet sich nach der gewünschten
Empfindlichkeit der Tests; im allgemeinen liegt sie
zwischen 5 und 50 mmol/l, kann aber für empfindliche
Messungen auch ohne weiteres auf 1 bis 2 mmol/l erniedrigt
werden. Je schwächer die Konzentration des Puffers ist,
desto empfindlicher, aber auch störanfälliger wird der
Test.
Zur Bestimmung von Harnstoff, Creatinin, Pyruvat, Arginin
und der Enzyme Urease, Creatininiminohydrolase, Lactatde
hydrogenase und Arginase ist ein Imidazolpuffer vom
pH-Wert 5,5 und Phenolrot oder auch ein Trispuffer vom
pH-Wert 7,0 und m-Kresolpurpur als pH-Indikator geeignet.
Zur Bestimmung von Glucose, Magnesium, Sorbit und der
Enzyme Glucosedehydrogenase, Hexokinase und Sorbitdehydro
genase wird vorzugsweise ein Imidazolpuffer vom pH-Wert
8,5 und Neutralrot als pH-Indikator eingesetzt.
Die für die jeweilige Nachweisreaktion erforderlichen Kom
ponenten sind Reagenzien in trockener oder flüssiger Form,
die spezifisch mit dem jeweiligen Parameter reagieren und
dadurch direkt oder indirekt die pH-verändernde Reaktion
hervorrufen, die meßtechnisch ausgewertet wird. Die Re
aktion kann z. B. chemisch durch ein oder mehrere Enzyme,
durch Komplexbildung oder durch Adsorption erfolgen. Die
Zugabe der gewählten Komponente zum Grundsystem kann auf
verschiedene Weise erfolgen, z. B. in flüssiger Form,
als Tablette oder in Form eines damit imprägnierten saug
fähigen Trägers.
Der für alle Bestimmungen gleiche Reaktionsträger ist
ein Gefäß oder eine Matrix zur Aufnahme des Grundsystems,
der Komponenten und der Probe, in welchem die Reaktion
ablaufen kann. Das Gefäß kann z. B. ein Reagenzglas, eine
Küvette oder ein Durchflußsystem sein, das die Bestimmung
mit einem flüssigen Reagenz erlaubt. Dies kann entweder
direkt durch Zugabe des flüssigen Reagenzes erfolgen oder
aber indirekt, wobei sich ein Trockenreagenz, z. B. ein
Lyophilisat, eine Tablette oder ein Granulat im Gefäß
befindet, das dann mit einem Solvent wie Wasser oder
Puffer aufgelöst und so zum gebrauchsfertigen Reagenz
wird.
Die Matrix kann ein saugfähiges Papier, ein Film oder ein
anderes Material wie ein Schwamm, ein Schlauch oder ein
Beutel sein, das zur Aufnahme von Reagenzien geeignet ist.
Das erfindungsgemäße Verfahren wird z. B. so durchgeführt,
daß in eine Küvette, die einen geeigneten Puffer und
einen geeigneten pH-Indikator enthält, die für die jewei
lige Nachweisreaktion spezifische Komponente vor oder
nach der Probe zugegeben wird. Im Falle von Phenolrot
als pH-Indikator wird die pH-Änderung bei 546 nm durch
Zu- oder Abnahme der roten Färbung des Mediums gemessen.
Im gleichen Puffersystem - ohne pH-Indikator - kann die
pH-Änderung auch mit einer pH-Elektrode bestimmt werden.
Ist das Grundsystem und die für die jeweilige Nachweis
reaktion spezifische Komponente in einer Matrix ent
halten, so wird die Reaktion durch die Zugabe der Probe
gestartet. Die gemessene pH-Änderung ist direkt propor
tional der Konzentration der zu bestimmenden Parameter.
Entgegengesetzt reagierende Parameter können nacheinander
in der gleichen Küvette bestimmt werden. Zweckmäßigerweise
stellt man dabei das verwendet Puffer/Indikatorsystem auf
einen mittleren pH-Wert ein. Nach Reaktion des ersten
Parameters (z. B. alkalische Reaktion) kann der zweite Para
meter zugegeben werden (saure Reaktion). Im ersten Fall
erfolgt dabei z. B. ein Absorptionsanstieg und anschließend
durch Zugabe des zweiten ein Absorptionsabfall.
Grundsystem: 5,0 mmol/l Imidazol, pH 5,5
Komponente für die jeweilige Bestimmung von:
- a) Harnstoff: Urease (200 kU/l)
- b) Pyruvat: Lactatdehydrogenase (500 kU/l), NADH (0,02 mol/l)
Reaktionsansatz:
2,0 ml Grundsystem
0,02 ml Probe
0,06 ml Komponente (Startreagenz)
0,02 ml Probe
0,06 ml Komponente (Startreagenz)
Die Messung des pH-Wertes erfolgt mit Hilfe einer pH-
Elektrode vor (1. Messung) und 5 Minuten nach Zugabe des
Startreagenzes (2. Messung). Die Differenz der pH-Werte
stellt das Ergebnis der Messung dar, aus dem die Konzen
tration der Probe berechnet werden kann.
Das Ergebnis zeigt, daß mit dem gleichen Grundsystem
je nach dem gewähltem Enzym (Komponente), unterschied
liche Parameter über eine pH-Messung direkt bestimmt
werden können. In diesem Fall ist die Zugabe eines
Indikators zum Reagenz nicht notwendig.
Photometrische Bestimmung von Harnstoff, Pyruvat, Urease
und Lactatdehydrogenase
Grundsystem
5,0 mmol/l Imidazol-HCl, pH 5,5
200 mmol/l Kaliumchlorid
0,1% Phenolrot
200 mmol/l Kaliumchlorid
0,1% Phenolrot
Komponente für die jeweilige Bestimmung von:
- a) Harnstoff: Urease (200 kU/l)
- b) Pyruvat: Lactatdehydrogenase (500 kU/l), NADH (0,02 mol/l)
- c) Urease: Harnstoff (2 mol/l)
- d) Lactatdehydrogenase: Pyruvat (0,1 mol/l), NADH (0,02 mol/l)
Reaktionsansatz:
1,0 ml Grundsystem (Grundreagenz)
0,03 ml Komponente (spezifisches Reagenz)
0,01 ml Probe (Startreagenz).
0,03 ml Komponente (spezifisches Reagenz)
0,01 ml Probe (Startreagenz).
Die Messung der Absorption bei 546 nm erfolgt mit Hilfe
eines Photometers vor (1. Messung) und 5 Minuten nach
Zugabe des Startreagenzes (2. Messung). Die Differenz
der Absorptionen (A₅₄₆ für Endpunktbestimmungen bzw.
A₅₄₆/min. für kinetische Bestimmungen) stellt das Ergeb
nis der Messung dar. Daraus kann über Faktor, Standard
oder Extinktionskoeffizient die Konzentration oder Akti
vität der Probe berechnet werden.
Das Ergebnis zeigt, daß mit dem gleichen Reagenz, je
nach dem gewählten Enzym bzw. Substrat (Komponente),
unterschiedliche Parameter über einen weiten Linearitäts
bereich bestimmt werden können. In diesem Fall handelt
es sich um eine alkalische Reaktion.
Grundsystem:
5,0 mmol/l Imidazol-HCl, pH 8,5
200 mmol/l Kaliumchlorid
0,1% Neutralrot
200 mmol/l Kaliumchlorid
0,1% Neutralrot
Komponente für die jeweilige Bestimmung von:
- a) Glucose: Glucosedehydrogenase (250 kU/l), NAD (0,1 mol/l)
- b) Triglyceride: Lipoproteinlipase (10 kU/l)
Reaktionsansatz:
analog Beispiel 2, jedoch mit dem Unterschied, daß das
Probenvolumen für die Triglyceridbestimmung 0,1 ml be
trägt.
Ebenso wie in Beispiel 2 werden auch hier unterschied
liche Parameter mit einem Reagenz bestimmt. Nur handelt
es sich in diesem Fall um eine saure Reaktion.
Photometrische Bestimmung von Harnstoff und Glucose nach
einander in derselben Küvette durch eine alkalische und
eine anschließende saure Reaktion.
Grundsystem:
3,0 mmol/l Tris-HCl, pH 6,5
200 mmol/l Kaliumchlorid
0,1% Kresolrot
200 mmol/l Kaliumchlorid
0,1% Kresolrot
Komponente für die jeweilige Bestimmung von:
- a) Harnstoff: Urease (200 kU/l)
- b) Glucose: Glucosedehydrogenase (250 kU/l) NAD (0,1 mol/l)
Reaktionsansatz analog Beispiel 2:
Das Ergebnis zeigt, daß in einem Grundreagenz nicht nur
eine alkalische oder eine saure Reaktion, sondern bei
entsprechender Zusammensetzung auch beides möglich ist.
Dadurch können zwei oder mehr Parameter nacheinander in
derselben Küvette bestimmt werden.
Reflektometrische Bestimmung von Harnstoff und Pyruvat
mit Hilfe eines mit einem Grundsystem getränkten Papier
streifens.
Grundsystem
Ein 30 cm langer und 5 cm breiter Filterpapierstreifen
(Schleicher und Schüll 1450 CV) wird mit der folgenden
Lösung getränkt:
6,0 mmol/l Imidazol, pH 5,4
80 mmol/l Kaliumchlorid
0,2% Phenolrot
80 mmol/l Kaliumchlorid
0,2% Phenolrot
Das getränkte Papier wird 10 Minuten in einem auf 80°C
erhitzten Luftstrom getrocknet und in 1 × 3 cm große
Stücke geschnitten.
Komponente für die jeweilige Bestimmung von:
- a) Harnstoff: Urease (1000 kU/l)
- b) Pyruvat: Lactatdehydrogenase (1500 kU/l) NADH (0,1 mol/l)
Reaktionsansatz:
1,0 ml Probe
0,01 ml Komponente (spezifisches Reagenz).
0,01 ml Komponente (spezifisches Reagenz).
Das getränkte Filterpapier wird in den Reaktionsansatz
eingetaucht und die überschüssige Flüssigkeit wird
abgestreift. Die Messung erfolgt im Reflektometer bei
einer Wellenlänge von 580 nm.
Das Ergebnis zeigt, daß mit der gleichen Reaktionsmatrix,
je nach dem gewählten Enzym (Komponente), unterschied
liche Parameter über einen weiten Konzentrationsbereich
bestimmt werden können. Die Auswertung erfolgt über die
bei reflektometrischen Bestimmungen üblichen, nicht
linearen Auswerteverfahren.
Claims (10)
1. Testsystem zur Bestimmung mehrerer Substanzen auf der Basis der
Bestimmung einer pH-Änderung, enthaltend eine Pufferlösung mit
einem definierten pH-Wert und eine für die jeweilige Nachweisreak
tion spezifische Komponente, dadurch gekennzeichnet, daß die
Pufferlösung für alle Substanzen gleich ist.
2. Testsystem nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die
Pufferlösung einen pH-Indikator enthält.
3. Verfahren zur quantitativen Bestimmung mehrerer Substanzen auf
der Basis der Bestimmung einer pH-Änderung mit Hilfe des Test
systems nach den Ansprüchen 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet,
daß ein für alle Bestimmungen gleicher Reaktionsträger mit der
gleichen Pufferlösung eingesetzt wird und nach Zugabe der für die
jeweilige Nachweisreaktion spezifischen Komponente und der Probe
die für alle Bestimmungen gleiche Messung der pH-Änderung erfolgt.
4. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß als Reak
tionsträger ein Gefäß zur Aufnahme von Trockensubstanzen oder
Flüssigkeiten verwendet wird.
5. Verfahren nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, daß als Gefäß
eine Küvette verwendet wird.
6. Verfahren nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, daß als Reak
tionsträger eine Matrix verwendet wird.
7. Verfahren nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, daß die Matrix
die Pufferlösung enthält und die für die jeweilige Nachweisreaktion
spezifische Komponente vor oder nach der Probe zugegeben wird.
8. Verfahren nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, daß die Matrix
die Pufferlösung und die für die jeweilige Nachweisreaktion spezi
fische Komponente enthält und die Reaktion durch die Zugabe der
Probe gestartet wird.
9. Verfahren nach den Ansprüchen 3-8, dadurch gekennzeichnet, daß
der pH-Wert der Pufferlösung nach der Bestimmung mindestens
einer Substanz durch eine gegenläufige Reaktion zurückgestellt wird,
um mindestens eine weitere Reaktion in der ursprünglichen Richtung
zu ermöglichen.
10. Verfahren nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, daß die
gegenläufige Reaktion durch mindestens eine weitere pH-antago
nistische Reaktion hervorrufende Substanz bewirkt wird.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE19873712440 DE3712440C2 (de) | 1987-04-11 | 1987-04-11 | Testsystem und Verfahren zur Bestimmung mehrerer Substanzen auf der Basis der Bestimmung einer pH-Änderung |
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| DE19873712440 DE3712440C2 (de) | 1987-04-11 | 1987-04-11 | Testsystem und Verfahren zur Bestimmung mehrerer Substanzen auf der Basis der Bestimmung einer pH-Änderung |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DE3712440A1 DE3712440A1 (de) | 1988-10-20 |
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Family Cites Families (3)
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| EP0044388A2 (de) * | 1980-07-21 | 1982-01-27 | F. HOFFMANN-LA ROCHE & CO. Aktiengesellschaft | Verfahren zur Bestimmung von einem oder mehreren Parametern in Proben |
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1987
- 1987-04-11 DE DE19873712440 patent/DE3712440C2/de not_active Expired - Fee Related
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