DE2539622A1 - Verfahren zur herstellung einer therapeutischen zubereitung und das dabei erhaltene produkt - Google Patents
Verfahren zur herstellung einer therapeutischen zubereitung und das dabei erhaltene produktInfo
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Description
PATENTANWÄLTE A. GRÜNECKER
OPL-ING.
H. KINKELDEY
DR-ING
*} C O Q β O O W. STOCKMAlR
(t D O J D t /, DR-ING AüElCAI-TECH)
K. SCHUMANN
m
DR RER NAT - DtPL,-fMVS
P. H. JAKOB
DlPU-INS
G. BEZOLD
MÜNCHEN
E. K. WEIL
8 MÜNCHEN 22
5. Sept. 1975 P 9556
LINDAU
I.E.C.E.B.A.(INSTITUT DE EECHERCHES CHIMIQUES ET BIOLOGIQUES
APPLIQUEES)
38, rue de Lisbonne, 75008 Paris, Fra.' :reich
Verfahren zur Herstellung einer therapeutischen Zubereitung und das dabei erhaltene Produkt
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung einer therapeutischen Zubereitung, die sich insbesondere für die
Behandlung von Infektionen im Hals-Hasen-Ohren-Bereich eignet
und aus einer Mischung von Ant igenfrakt ionen bakteriellen Ursprungs besteht oder diese enthält, durch Züchten einer
Bakterienkultur auf einem ÜTährmedium, Lysieren der Bakterien,
Extrahieren, Eeinigen und Mischen der dabei erhaltenen Antigenfraktionen,
sowie das dabei erhaltene Produkt; sie betrifft
insbesondere eine neue therapeutische Fasenzubereitung, ein Verfahren zu ihrer Herstellung sowie die Verwendung dieser
609812/0913
Ν (Ο83) 222362 TELEX Ο5-2938Ο TELEQSAMME MONAPAT
Zubereitimg für die Behandlung von infektiösen Erkrankungen im Hals-lTasen-Ohren-Bereich und insbesondere von Rhinitiden,
Rhinopharyngitiden, Otitiden und Sinusitiden.
Die einen Gegenstand der Erfindung "bildende neue Zubereitung
ist dadurch gekennzeichnet, daß sie 3 Gew.-Teile einer gereinigten
Antigenfraktion von Staphylococcus aureus 634-, 3 Gew.-.
Teile einer gereinigten Antigenfraktion von Staphylococcus aureus 636, 3 Gew.-Teile einer gereinigten Antigenfraktion von Staphylococcus
aureus 659·, 3 Gew.-Teile einer gereinigten Antigenfraktion
von Streptococcus 14-7, 3 Gew.-Teile einer gereinigten Antigenfraktion von Streptococcus pyogenes 155» 3 Gev/.-Teile
einer gereinigten Antigenfraktion von Streptococcus pyogenes 1178,
3 Gew.-Teile einer gereinigten Antigenfraktion von Diplococcus pneumoniae 209 5 3 Gew.-Teile einer gereinigten Antigenfraktion
von Diplococcus pneuraoniae 210 und 1 Gew.-Teil einer gereinigten Antigenfraktion von Neisseria catarrhalis 987 enthält.
Die hinter den oben genannten Stämmen angegebenen Nummern sind
diejenigen des Katalogs der Sammlung des "Centre International de Distribution de Souches et d1Informations sur les Types
Microbiens de Lausanne".
Die neun Stämme,von denen die in der erfindungsgemäßen Zubereitung
enthaltenen Antigenfraktionen abgeleitet sind, die einen
Teil der häufig in Kliniken vorkommenden pathogenen Stämme darstellen
und gegenüber denen es besonders interessant (vorteilhaft) ist, eine Immunität zu erzeugen, wurden aufgrund ihrer Fähigkeit,
Antigene zu bilden, ausgewählt. Selbstverständlich können die gereinigten Antigenfrakt ionen, die aus diesen neun Stämmen extrahiert
wurden, auch mit anderen Bestandteilen kombiniert werden, wie das aus dem weiter unten folgenden Beispiel B hervorgeht,
ohne daß dadurch der Eahmen der vorliegenden Erfindung verlassen
wird.
609812/0913
Das einen weiteren Gegenstand der Erfindung bildende Verfahren
zur Herstellung der vorstehend angegebenen erfindungsgemäßen therapeutischen Zubereitung, die sich insbesondere für die
Behandlung von infektiösen Erkrankungen im Hals-Nasen-Ohren-Bereich
eignet und eine Mischung von Antigenfraktionen bakteriellen Ursprungs enthält oder daraus besteht, das umfaßt
die Züchtung der Bakterien in einem im wesentlichen flüssigen Nährmedium, die Lysis der Bakterien, die Extraktion der Antigenfraktionen
und ihre Reinigung sowie das anschließende Mischen dieser Fraktionen)ist dadurch gekennzeichnet, daß die Lysis
der Bakterien in dem Nährmedium der Kultur auf enzymatischem Wege bei 60 bis 65°C mittels Papain und dann bei 37°C mittels
Trypsin durchgeführt wird, wobei jedes Enzym nach seiner Verwendung
durch 30-minütiges Er?/ärmen auf 100 bis 120°C zerstört
wird (inaktivierung), und daß die Extraktion und die Reinigung der Antigenfraktionen die folgenden Stufen umfassen:
a) Eliminierung der bei der Lysis erhaltenen festen Substanzen
bakteriellen Ursprungs durch Zentrifugieren,
b) Absorption der in dem flüssigen Milieu nach dem Zentrifugieren enthaltenen Antigenfraktionen an einem festen Träger, insbesondere
an Aktivkohle,
■Ό Abtrennung der Aktivkohle, an welcher die Antigenfraktionen
absorbiert worden sind, durch Zentrifugieren,
d) Eluieren der Antigenfraktionen aus der Aktivkohle mittels einer wäßrigen Ammoniaklösung, und
e) Verdampfen des Ammoniaks und Einengen des Eluats und anschließende
Lyophilisierung unter Bildung eines Pulvers aus den gereinigten Antigenfraktionen.
Das erfindungsgemäße Verfahren wird in dem weiter unten folgenden
Diagramm I erläutert.
die Extraktion der gereinigten Antigenfraktionen sind zwei verschiedene Kulturmedien erforderlich, die jeweils eine Kohlenstoff
quelle, eine Stickstoffquelle und Mineralsalze enthalten:
609812/0913
a) Ein Milieu ( Medium ) für Staphylococcus aureus, Streptococcus und Diplococcus pneumoniae, wobei dieses Milieu
in einem Behälter mit einem Volumen von 300 1 hergestellt wird,
sowie
b) ein spezielles Milieu (Medium) für ITeisseria catarrhalis,
wobei dieses Milieu in einem Behälter mit einem Volumen von 5 1 hergestellt wird.
Obgleich es möglich ist, die acht Stämme von Staphylococcus, Streptococcus und Diplococcus gleichzeitig zu kultivieren und
gleichzeitig ihre Antigenfraktionen zu extrahieren, arbeitet
man vorzugsweise Stamm für Stamm, um ein eventuelles Risiko einer zusätzlichen Kontamination zu vermeiden und insbesondere
um im Augenblick der fertigen Mischung jede der Antigenfrakt ionen
besser dosieren zu können. Andere Vorteile und Merkmale der Erfindung gehen aus den nachfolgend beschriebenen Beispielen hervor,
auf die die Erfindung jedoch keineswegs beschränkt ist.
I.) Herstellung der gereinigten Antigenfrakt ionen von Staphylo-
1.) Nährmedium^iKulturmin-i^eu^
NaGl 1500 g
Dikaliumphosphat I5OO g
Monokaliumphosphat 600 g
Monoammoniumphosphat 600 g
Glucose 1500 g
Magnesiumsulfat 60 g
Glycerin 600 g
Autolysat von Bierhefe (des Hefepilzes) 600 g
Mangansulfat 6 g
Thiaminhydrοchlorid 1,50 g
Pyridoxinhydrochlorid 1,50 g
Calciumpantothenat 1,50 g
Nicotinsäure 1,50 g
Riboflavin 609812/0913 0,75 g
V/asser -■- ad JOO
Die Bestandteile des Nährmediums wurden in 50 1 Tfesser unter
Rühren gelöst. Fach dem Auffüllen des Volumens mit Wasser auf 300 1 wurde der pH-Wert durch Zugabe von Natronlauge auf 7j8
eingestellt. Fach erneutem Rühren wurde das Milieu 30 Minuten lang bei 100 bis 1200C, vorzugsweise bei 11O°C, sterilisiert.
2.) Erhaltung der SJ;ä.inme_
Die für die Extraktion der Antigenfrakbionen bestimmten Stämme
wurden erhalten durch Ernährung auf einer Maus Swiss Albinos, um ihre pathogenen und biochemischen Eigenschaften aufrechtzuerhalten.
Die Einimpfung in das Tier erfolgte auf intravenösem Wege.
Nach dem Tod der Tiere durch Blutvergiftung wurde durch Herz—
punktion das Blut steril entnommen, mit dem ein flüssiges Anreicherungsmilieu
und dann, ausgehend von dem flüssigen Milieu, ein festes Isolierungsmilieu geimpft wurde. Mit der so erhaltenen
Reinkultur wurde eine geeignete Menge des flüssigen Milieus, das als Inokulum für die technische Kultur dienen sollte, nach
dem nachfolgend unter Punkt 3.) beschriebenen Verfahren geimpft. Nach jeder neuen Isolierung wurde nach klassischen Identifizierung
sverfahr en die Übereinstimmung in bezug auf die biochemischen Eigenschaften geprüft.
3.) Herstellung de_s technischen Inokulums
Die Impfung mit der oben erhaltenen Reinkultur erfolgte auf 10 ml des flüssigen Milieus (wie unter 1.) beschrieben). Nach
2zi~stündigem Aufenthalt im Trockenschrank bei 37°C wurde dieses
Volumen steril in 5 1 Milieu der gleichen Zusammensetzung, die vorher sterilisiert worden war, eingeführt. Nach 24— stündigem.
Aufenthalt im Trockenschrank bei 37°C wurde dieses Volumen steril in 300 1 des vorher sterilisierten gleichen Milieus
eingeführt.
60981 2/091 3,
4.) Kultur_
Die Kultivierung wurde 24 Stunden lang unter Belüften des Milieus durch Einleiten von filtrierter Luft ("beispielsweise
mittels einer Millipore-Membran) durchgeführt, wobei die Temperatur des Milieus "bei 37°C gehalten wurde. Räch 24 Stunden
wurde die Kultivierung durch 1-stündige Sterilisierung des Milieus hei 100 bis 120°C gestoppt. In diesem Stadium wurden
zur Kontrolle der Sterilität 10 ml Milieu aseptisch entnommen.
5.) Ly.sis der Bakterien
Sie wurde durch enzymatische Hydrolyse durchgeführt und diente dazu, die Antigenfraktionen in dem Milieu freizusetzen. Nach
der Kontrolle der Sterilität des Milieus wurde diese enzymatische Hydrolyse in zwei Stufen durchgeführt:
zunächst bei 60 bis 65°C mittels Papain bei pH 6,5» dann bei 37 C mittels Trypsin bei pH 7·
Die enzymatische Lysis diente dazu, die Bakterienzelle abzubauen, damit sich in dem oben unter 4.) angegebenen Kulturmedium (in
dem die enzymatische Lysis durchgeführt wurde, die bei der Behandlung mit Trypsin bis zu pH 6,5 und bei der Behandlung mit
Trypsin bis zu pH 7 durchgeführt wurde) Antigene anreicherten.
Die Papain- und Trypsinmengen sind nicht kritisch. Der vereinfachte
Mechanismus dieses Vorgangs ist folgender: die Enzyme (selbst wenn sie in geringer Menge vorhanden sind) zerstören
die Zellwand und legen einen Teil der Cy t oplasmamembr an frei ;
diese Membran wird anschließend zerstört (i) durch die vorhandene osmotische Druckdifferenz zwischen der Cytoplasmamasse und
dem Milieu der enzymatischen Lysis und/oder (ii) durch den enzymatischen Abbau; daraus folgt, daß die.(in der Zellwand und
vor allem im Innern der Cytoplasmamem.bran enthaltenen) Antigene
oder mindestens ein Teil davon in das Milieu der enzymatischen Lysis gelangt. Allgemein kann davon ausgegangen werden, daß die
Enzyme die Abtrennung der Antigene von den sie umgebenden Substanzen oder eventuellen Substraten, mit denen sie verbunden
609812/0913 -
sind, und die Gewinnung eines Bakterienextrakts (einer Antigenfraktion),
der aus jedem vollständigen Antigen erhalten wird und in seiner Struktur die Antigenzentren des vollständigen
Antigens (I1antigene complet) beibehält, erlaubt. Darüber hinaus
ist die Behandlungsdauer, die von den Enzymmengen abhängt,
nicht übermäßig kritisch. Zur Erzielung von guten Ergebnissen in bezug auf die Menge und Qualität der extrahierten Antigene
wird empfohlen:
- für 300 1 Milieu (Medium) 25 bis 35 g Papain (mit einem Gehalt
von 660 Einheiten pro mg Enzym) (bezüglich der Definition des Gehaltes bzw. Titers vgl. das Arzneibuch Pharmacopee francaise
von 1949) zu verwenden, wobei die Behandlung 3 Stunden lang
bei 60 bis 65°0 und einem pH-Wert von 6,5 durchgeführt wird;
- 30 Minuten lang auf iOO bis 120°C zu erwärmen, um das Papain
zu zerstören;
- für 500 1 Milieu (Medium) anschließend 12 bis 18 g Trypsin
(mit einem Gehalt von mindestens 30 Internationalen Einheiten
pro mg Enzym (bezüglich der Definition des Gehaltes bzw. Titers vgl. das Arzneibuch Pharmacopee franeaise von 1965) zu
verwenden, wobei die Behandlung 3 Stunden lang bei 37°C urd
einem pH-Wert von 7 durchgeführt wird; und
- 30 Minuten lang auf 100 bis 120 C zu erwärmen, um das Trypsin
zu zerstören.
Bei diesem Beispiel wurden die folgenden Bedingungen angewendet: Behandlung mit 30 g Papain (mit einem Gehalt von 660 Einheiten
(U)/mg) für 300 1 Milieu bei 600C und einem pH-Wert von 6,5 für
einen Zeitraum von 3 Stunden; 30-minütige Erwärmung auf 100°C; Behandlung mit 15 g Trypsin (mit einem Gehalt von mindestens
30 Internationalen Einheiten (IU)/iag) für 300 1 Milieu bei 37°C
und einem pH-Wert von 7 für einen Zeitraum von 3 Stunden und anschließendes 30-minütiges Erwärmen auf 100°C.
6.) Extrakt i£n_de_r__Antigenf raktionen_
Zunächst wurden die Bakterienkörper durch Zentrifugieren entfernt,
Die die Antigenfraktionen enthaltenden 300 1 Kulturmedium wurden
60981 2/091 3
anschließend abgetrennt (gewonnen). Diese Antigenfraktionen
wurden danach an einem Träger, "beispielsweise an Aktivkohle (insbesondere OENO-Kohle)^adsorbiert. Es wurde erneut in der
Zentrifuge behandelt, um die an der Kohle adsorbierten Antigenfraktionen zurückzugewinnen, die anschließend mittels einer
wäßrigen Ammoniaklösung eluiert wurden. Die Antigenfraktionen befanden sich dann in dem Ammoniakwasser.
Die Losung wurde durch einen Verdampfer geführt, der dazu diente,
das Ammoniak zu entfernen und die wäßrige Lösung einzuengen. Die Einengung der wäßrigen Lösung erfolgte unter üblichen Bedingungen;
sie diente dazu, einen solchen Gehalt an Antigenfraktion
zu erhalten, daß diese lyophilisiert werden konnte. Auf
diese Weise kann man von 2 Volumina oder besser von 5 Volumina,
oder von mehr als 1 Volumina auf 1 Volumen einengen. Die Lyophilisierung dieser wäßrigen Lösung stellt die letzte Stufe der Extraktion
dar. Die gereinigten Antigenfraktionen liegen dann in Form eines Pulvers vor.
II.) Herstellung der aus Heisseria catarrhalis extrahierten
Auch in diesem Falle änderte sich das Prinzip nicht, das Kulturmedium
war jedoch ein anderes (dies war auf die Schwierigkeiten bei der Kultivierung dieses Keims zurückzuführen); darüber hinaus
erfolgte die Kultivierung in einem 5 1-Behälter und dauerte
4-8 Stunden. Nachfolgend werden nur die Unterschiede in bezug auf
die Herstellung^der aus Staphylococcus aureus, Staphylococcus
und Diplococcus pneumoniae extrahierten Antigenfraktionen angegeben:
Nä.hrmedium__ ( KuI turmi1 ieu)_
Pferdeserum 250 ml
Bouillon T ad 5 1
609812/0913
_g der Bouillon_T_
Pepton 200 g
Glucose 1Og
NaCl 25 S
destilliertes V/asser ad 5 1
Zur Herstellung dieses Milieus wurde das Pferdeserum steril in die sterile Bouillon T eingeführt und auf pH 7j2 eingestellt.
Das Milieu vmrde anschließend 4-5 Minuten lang bei 1000G sterilisiert.
Die Lysis der Bakterien, die Extraktion der Antigenfraktionen und die lyophilisierung wurden anschließend nach dem in
bezug auf Staphylococcus, Streptococcus und Diplococcus beschriebenen Verfahren durchgeführt. Die Molekulargewichte Jeder
der gemäß I.) und II.) erhaltenen neun Antigenfraktionen betrugen etv/a 12000.
III.) Mi£c]p-£S—Τ^λ^^0]*^
1 Gev/._ö?eil der gereinigten und ly.ophylisierten Antigenfraktion
von Heisseria catarrhalis wurde mit jeweils 3 Gew.-Teilen der
gereinigten und lyophilisierten Antigenfraktionen von Staphylococcus
aureus 634-, 636 und 659, Streptococcus 147, ^53 und II78
und Diplococcus pneumoniae 209 und 210 gemischt.
Durch Wiederholung des Beispiels A wurde eine bevorzugte erfindungsgemäße
Zubereitung hergestellt, indem man in der Stufe III die Antigenfraktionen der neui Stämmen mit Natriummercurothiolat,
Natriumchlorid und Wasser mischte zur Herstellung der folgenden Zubereitung:
gereinigte Antigenfraktion, extrahiert aus Staphylococcus
aureus 634 3 mg
" Staphylococcus
aureus 636 3 mg
" Rnqfin/nqn Staphylococcus
bUyöU/uaiJ aureus 659 3 mg
gereinigte Antigenfraktion, extrahiert aus Streptococcus
147 3 mg
" Streptococcus
pyogenes 155 3 mg
" Streptococcus
pyogenes 1178 3 mg
" Diplococcus
pneumoniae 209 3 mg
" Diplococcus
pneumoniae 210 3 mg
" Neisseria
catarrhalis 987 Ί mg
Natriummercurothiolat 0,25 mg
Natriumchlorid 90 mg
destilliertes V/asser ad 10 ml
Unter Berücksichtigung der Mengenverhältnisse der Zubereitung I
vmrde auf die gleiche Weise wie oben eine Zubereitung II hergestellt.
gereinigte Antigenfraktion, extrahiert aus Staphylococcus
aureus 634 4,5 mg
" Staphylococcus
aureus 636 4,5 mg
" Staphylococcus
aureus 659 4,5 mg
" Streptococcus
14-7 4,5 mg
" Streptococcus
pyogenes I55 4,5 mg
" Streptococcus
pyogenes 1178 4,5 mg .
" Diplococcus
pneumoniae 209 4,5 mg
" . Diplococcus
^ pneumoniae 210 4,5 mg
" Heisseria
catarrhalis 987 1,5 mg
Natriummercurothiolat ' 0 3^5 mp
Natriumchlorid 135 mg
destilliertes Wasser ßO9812/ogi3 ' ad 15 ml
Die Zubereitung II, konditioniert in I5 ml-Fläschchen für die
Verabreichung durch Einsprühen in die Nasenhöhle^wurde -vorläufig
mit "Rhinapten" und "Rhinapten ITebuliseur" bezeichnet. Nachfolgend
sind die Ergebnisse von damit durchgeführten pharmakologischen und klinischen Versuchen zusammengefaßt,
Toxizität
Durch Untersuchung der akuten Toxizität bei der Maus per os konnte gezeigt v/erden, daß die DL-O (minimale tödliche Dosis)
jeder der neun Antigenfraktionen in den Zubereitungen I und II
mehr als 4- g/kg beträgt. Es konnte außerdem gezeigt werden, daß die DL-O der Mischung der neun -«-ntigenfraktionen deutlich oberhalb
1,8 g/kg liegt und daß die DL-O der Zubereitungen I und II 4-0 mg/kg beträgt (dies entspricht einer Dosis der Mischung der
neun Antigenfraktionen von 100 mg/kg).
Durch Untersuchung der subakuten Toxizität bei der Maus und bei der Ratte per os der Mischung der neun Antigenfralrfcionen in den
Zubereitungen I und II in Dosen von 1 mg/kg und 10 mg/kg während eines Zeitraumes von 13 Wochen an 5 Tagen pro Woche konnte das
Fehlen einer Mortalität festgestellt werden.
Pharmakoloprische Versuche '
Bei der pharmako logisch en Untersuchung mit einem Tier stieß man
im Prinzip auf zwei praktische Schwierigkeiten: einerseits war es schwierig, in Höhe der Nasenhöhlen lokal eine experimentell
hervorgerufene Infektion zu erzeugen, die nicht innerhalb eines Zeitraumes spontan ausheilte, der zu kurz v/ar, um zuverlässige
Erfahrungen sammeln zu können, andererseits ist das Einsprühen, das eine für den Menschen gut geeignete Verabreichungsform darstellt,
beim Tier kaum geeignet, da dieses die Einträufelung oder die Einwirkung eines Aerosolnebels besser verträgt. Zur
Beseitigung dieser Schwierigkeiten wurden vier Versuchsreihen durchgeführt:
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a) Immunologische Eigenschaften der neun Antigenfraktionen
_ __und_ihr_er>_Mis£hun£ gemäß den Zuberei-tungen I und II_in vitro
Es wurde gezeigt, daß die Extrakte der neun Stämme (Staphylococcus
aureus 634, 636 und 659, Streptococcus 147, Streptococcus pyogenes
115 und 1178, Diplococcus pneumoniae 209 und 210 und Neisseria
catarrhalis 987) eine Antigenstruktur aufweisen, wobei das Verfahren
von Kolmer angewendet wurde; jede gemäß Beispiel A erhaltene
Fraktion und die Mischung dieser Fraktionen ergaben eine
positive Reaktion mit Immunseren, die bei einem'Tier (Kaninchen)
erzeugt worden waren durch Injektion von Suspensionen jedes der neun Stämme in Formaldehyd (die Suspension wurde erhalten durch
Zugabe von Formaldehyd zu dem Nährmedium der Kultur des Beispiels A, die den Stamm enthielt, und anschließendes Zentrifugieren).
b) Immunisierung auf parenteralem Wege mit Antigenfraktionen und
_ ihrer__Mi. s_chung gemäß den Zubereitungen I und II
Kaninchen wurden 4 Ifochen lang dreimal pro Woche und 2 mg pro
Tag jede der Antigenfrakt ionen in den Zubereitungen I und II (die Antigenfraktion, extrahiert von Neisseria catarrhalis,
war ausgeschlossen, weil bei parenteraler Verabreichung bei ihr die Gefahr der Erzeugung von Schocks bestand) injiziert. Anschließend
wurde den Tieren das Serum entnommen, das mit den neun Antigenfrakt ionen und ihrer Mischung nach dem Verfahren von
Kolmer und dem Verfahren von Ouchterlony getestet wurde. Die Ergebnisse der beiden Verfahren bestätigten, daß die Antigenfraktionen
und ihre Mischung zu einer guten Immunisierung der Tiere führten. ■ '
c) Nachweis von Antikörpern in der Nasenschleimhaut bei dem be-
Der Versuch wurde durchgeführt durch Einträufelung (Ratte) und
Einwirkung eines Aerosols (Meerschweinchen), die dabei erhaltenen Ergebnisse, die übereinstimmten, sind nachfolgend nur in
60981 2/0913
"bezug auf die Versuche mit der Ratte angegeben.
Versuch sprοt qko11
Der Versuch wurde mit 40 Ratten durchgeführt, die wie folgt
aufgeteilt wurden:
Vergleichsjgruppe_£_ Männliche Ratten SPF (mittleres Gewicht 250 g)
Kr. 1 bis 10
weibliche Ratten SPF (mittleres Gewicht 250 g) Fr. 11 bis 20.
Behandelte_Grup_p_e:_ Männliche Ratten SPi1 (mittleres Gewicht 250 g)
Kr, 21 bis 30
weibliche Ratten SPi1 (mittleres Gewicht 250 g) Kr. 31 bis 40.
Die ^iere wurden auf nasalem 7/ege zweimal am Tage 8 Wochen lang
mit 11 Tropfen einer Lösung der Mischung der neun Antigenfraktionen der Zubereitung I des Beispiels B pro Hasenloch behandelt. Diese
Lösung enthielt 5 S der Mischung der gereinigten Antigenfraktionen
auf 100 ml destilliertes Wasser.
Die Vergleichsgruppe erhielt nur destilliertes Wasser unter den gleichen Bedingungen.
Nach 8-wöchiger Behandlung wurden die Tiere getötet und die Nasen-Schleimhäute
wurden entnommen. Die Nasenschleimhäute wurden anschließend mit physiologischem Serum gewaschen und in Gegenwart
von 0,5 ml einer isotonischen Natriumchloridlösung zerkleinert.
Nach einmaligem Abzentrifugieren der Peinteile wurde die überstehende
Flüssigkeit zur Durchführung der Kolmer-Reaktion gegen
die Antistaphylococcen-, Antistreptococcen-, Antipneumococcen-
und Antineisseria-Immunseren und zum Nachweis der Anwesenheit von Antikörpern verwendet.
Ergebnisse
Die Ergebnisse sind in den nachfolgenden Tabellen I und II für jede
609812/0913
Gruppe und Tier für Tier zusammengefaßt, wobei diese Ergebnisse außerdem jexveils in den Tabellen III und IV neu gruppiert wurden,
um den Prozentsatz entsprechend den Indikationen der Kolmer-Reaktion
anzugeben.
d) Nachweis der schützenden Eigenschaften der Antigenfraktionen
gegenüber experimentell mit Streptococcen und Staphylococcen
h^rvorg£rufenen_Infektionen_in vivo
Da es schwierig war, bei einem Tier eine für die Versuche braixch-,
bare Nas enracheninf ekt ion hervorzurufen, wurden bei einem Meerschweinchen
durch subkutane Injektion einer Mikrobendosis in der Nähe der minimalen Infektionsdosis (DMI) von Streptococcus pyogenes
155 (DMI = 0,5 ml des Milieus einer 24—stündigen Kultur dieses
Stammes) und von Staphylococcus aureus 636 (DMI = 0,5 ml des
Milieus einer 24—stündigen Kultur dieses Stammes) Abszesse hervorgerufen.
Anschließend wurde die Mischung der Antigenfrakt ionen
(ausschließlich der Fraktion von Neisseria catarrhalis) auf intramuskulärem
Wege in einer Menge von 8 mg/kg Mischung 5 Wochen lang jeden Tag verabreicht. Im Vergleich zu infizierten Vergleichstieren, denen die Mischung nicht verabreicht worden war, wurde
festgestellt, daß die behandelten Tiere besser geschützt waren.
609812/0913
- 15 Tabelle I
verp;leichsgru"ppe | Antistaphylo- coccen-Gegen- serum |
• | - | - | Antistrepto- coccen-Gegen- serum |
• | - | • | - | Antipneumo- coccen-G-egen- serum |
Ant-ineis s er ia- Gegenserum |
Ratten SPP Nr |
+ | + | - | - | - | - | - | ||||
1 | - | - | + | - | - | ||||||
2 | + | - · | . -. | - | |||||||
3 | - | + | |||||||||
4 | + | - | - | - | |||||||
5 | - | - | - | - | |||||||
6 | - | + | - | - | |||||||
7 | + | - | - | ||||||||
8 | - | t | - | - | |||||||
9 | - | - | - | ||||||||
10 | - | - | - | - | |||||||
11 | - | - | - | ||||||||
12 | + | - | . - | ||||||||
13 | - | - | |||||||||
14 | - | - | - | ||||||||
15 | + | - | - | ||||||||
16 | - | - | |||||||||
17 | - | - | |||||||||
18 | - | - | |||||||||
19 | - | - | |||||||||
20 |
Erläuterung: - negative Reaktion
+ schwach positive Reaktion
+ positive Reaktion
++ stark positive Reaktion
609812/0913
"behandelte Gruppe
Batten. SPF Br. |
Antistaphyio- e ο e c e n-G e g e rt- |
Antistreptococce Gegenserum |
■ | + | i- Antipne-umo- coccen-Gegen- serixGi |
Antineisseris j-egenserum |
21 | + | 4- | - | + " | + ; | |
22 | + | + | + | 4- | ||
23 | + | + | + | + | - | |
24 | 4+ | + | + . | . 4- | + | |
25 | + | 4- | 4- | + | ||
26 | + · - | 4+ | ■ - | ' + | ||
27 | 4- | + | + | 4- | ||
28 | - | - | - | - | ||
29 | + | t | + | |||
30 | 4- | 4- | + | - | ||
31 | + | t | 4- | 4- | ||
32 | 4-f | -H- | 4- | + | ||
33 | + | + | 4- | + | ||
34 | - | - | - | |||
35 | + | - | ||||
36 | + | - | + | |||
37 | + | + | + ' | |||
38 | 4-f | 4· | + · | |||
39 | +4- | + | + | |||
40 | + | 4- |
60981 2/0913
Verftleichsgruppe
Ergebnisse, ausgedrückt in
Oi
Ant-istaphylococcen-Gegrens er um
Antistreptococcen-Gegen serum
Antipneumo-
coccen-Geger)
serum
A.ntineisse- - ria-Gegenserum
_ negativ
+ s chwach - po " sitiv ^. positiv
μ. stark positi
65 15 %
20 %
75 7. 10 7.
5 %
100 %
100 %
behandelte Gruppe
Ergabnisse, ausgedrückt in |
Ant i s t aphy10- coccen-Gegen- serum |
Antistrepto- coccen-Gegen serum |
Antipneumo- -coccen-Ge- genserum |
Antineisse- ria-Gegen- serum |
» negativ | 10 7. | 15 7. | 25 % | 25 % |
+ schwach posi " tiv |
15 % | 20 % | 45 7. | 50 % |
"*" positiv | 55 7. | 55 7. | • 30 7. | 25 % |
■*"** stark posi-. tiv |
20 % | 10 % |
609812/0913
Die klinische Unter sue hung wurde rait der Zubereitung II des
Beispiels B durchgeführt, um die Effekte dieser Zubereitung
auf die infektiösen Erkrankungen des Hals-Fasen-Ohren-Bereiches
sowie das gegenüber isolierten Keinen erzeugte Immunisierungsvermögen
sowohl bei einem Kind als auch bei einem Erwachsenen zu untersuchen. Parallel dazu wurde eine Untersuchung des
sekretorischen Immunoglobulingehaltes vom Typ IgA in der Hasenschleimhaut
vor und nach der Behandlung durchgeführt. Diese klinische Untersuchung erstreckte sich auf 50 Patienten, die
in die in der nachfolgenden Tabelle V angegebenen Altersgruppen eingeteilt wurden und litten unter
a) Rhinitiden und Ehinopharyngotxden,
b) wiederholten Otitiden und/oder
c) Sinusitiden.
Die dabei erhaltenen Ergebnisse sind in der folgenden Tabelle VI zusammengefaßt.
6098 12/09 13
Alter
Anzahl der Fälle
Dosierung (a.)
O bis 5 Jahre
5 bis 10 Jahre
10 bis 20 Jahre
22
10
20 Jahre und darüber
Einsprühung in jedes Nasenloch
2 χ am Tage
Einsprühung in jedes Nasenloch
3 x am Tage
zweimaliges Einsprühen in jedes Nasenloch 2 χ am Tage
zweimaliges Einsprühen in jedes Nasenloch 3 χ am Tage
!Fußnote: (a) mittlere Behandlungsdauer: 2 bis 3 Wochen
Gesamtergebnisse
Ergebnisse
Anzahl der Fälle
Prozentsatz
sehr gut
mittelmäßig
3 34-
6 )
68 }
8 )
= 82
keine
Bei 82 % der brauchbaren Ergebnisse der Tabelle VI wurde eine
Wirksamkeit ab dem 15. Behandlungstag mit einer dauerhaften
Wirkung beobachtet, da bei der Mehrzahl der Patienten ihre Symptome während einer Dauer von 2 bis 3 Monaten nach Ende ihrer
Behandlung nicht wieder auftraten. Für alle 50 Patienten wurde
kein Fall der Unverträglichkeit beobachtet.
609812/0913
DIAGRAMM ί
KULTUR
Papain bei 60 bis 65 C, pH 6,5
30-minütige Erwärmung auf 100 bis 1200C (Papain-Inakt
ivi erung)
-.Trypsin bei 37 0, pH
30-minütige Erwärmung auf 100 bis 120°G (Trypsin-Inak·-
tivierung)
er υ. ν α
.J 4ι
die Anti- feste
genfraktion Bakterien-
enthalt ende rückst ände
Flüssigkeit
Aktivkohle für
die Absorption
der Antigenfraktion
^'weggeworfen
ZE IT TRIFUGIERUNG
Peststoffe: _ Flüssigkeit
an Kohle absor- I } weggeworfen
bierte Antigenfraktion
EL-UTION mit einer
wäßrigen MEU-Lösung
die Antigenfraktion enthaltendes Eluat
i Kohle
-Verdampfung | und | Einengung | |
i | |||
L | TOPHILI | S I | ERUNG |
pulVerförmige Antigenfraktion
R09812/0913
weggeworfen
Claims (10)
1. Verfahren zur Herstellung einer therapeutischen Zubereitung,
insbesondere für die Behandlung von Infektionen im Hals-lTasen-Ohren-Bereich, die aus einer Mischung von Antigenfraktionen
bakteriellen Ursprungs besteht oder diese enthält, durch Züchten einer Bakterienkultur auf einem Nährmedium,
Lysieren der Bakterien, Extrahieren, Reinigen und Mischen der dabei erhaltenen Antigenfraktionen, dadurch gekennzeichnet,
daß man auf einem flüssigen Eahrmedium, das eine Kohlenstoffquelle,
eine Stickstoffquelle und Mineralsalze enthält, jeden
der Stämme von Staphylococcus aureus 634-, Staphylococcus aureus
636, Staphylococcus aureus 659j Streptococcus 14-7, Streptococcus
pyogenes 155» Streptococcus pyogenes 1178» Diplococcus
pneumoniae 209» Diplococcus pneumoniae 210 und Neisseria
catarrhalis 98? (gemäß dem Katalog der Sammlung des "Centre
International de Distribution de Souches et d1Informations sur
les Types Microbiens de Lausanne") züchtet, daß man die Lysis
dieser Stämme in dem Kulturmedium auf enzymatischem Wege bei
60 bis 65°C mittels Papain, dann bei 37°C mittels Trypsin durchführt,
wobei jedes Enzym nach der Verwendung durch 30-minütiges Erhitzen auf 100 bis 120°C zerstört wird, daß man die Antigenfrakt
ionen extrahiert und reinigt unter Anwendung der folgenden Stufen: Eliminierung der festen Substanzen bakteriellen Ursprungs,
die bei der Lysis erhalten werden, durch Zentrifugieren, Absorption der in dem flüssigen Milieu nach dem Zentrifugieren
enthaltenen Antigenfraktionen auf einem festen Träger, insbesondere
auf Kohle, Abtrennung des Trägers, auf dem die Antigenfraktionen absorbiert worden sind, durch Zentrifugieren, Eluieren
der Antigenfraktionen aus dem Träger mittels einer wäßrigen llHj-Losung, Verdampfen des MH, und Einengen des Eluats und anschließende
Lyophilisierung unter Bildung von pulverförmigen Antigenfraktionen, und daß man die dabei erhaltenen neun Antigenfraktionen
miteinander mischt.
60981 2/0913
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man jeden der Stämme Staphylococcus aureus 634-, Staphylococcus
aureus 636, Staphylococcus aureus 659, Streptococcus 14-7,
Streptococcus pyogenes 155, Streptococcus pyogenes 1178,
Diplococcus pneuaoniae 209 und Diplococcus pneumoniae 210
getrennt auf einem Nährmedium züchtet, das I5OO g ITaCl, I5OO g
Dikaliumphosphat, 600 g Monökaliumphosphat, 600 g Monoammo-niumphosphat,
I5OO g Glucose, 60 g Magnesiumsulfat, 600 g Glycerin,
600 g Bierhefeautolysat, 6 g Mangansulfat, 1,50 g Thiaminhydrochlorid,
1,50 g Pyridoxinhydrochlorid, 1,50 g Calciumpantothenat, 1,50 g nikotinsäure, 0,75 g Riboflavin und Wasser
bis zum Auffüllen auf ein Volumen von 300 1 enthält.
3. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man den Stamm Neisseria catarrhalis 987 auf einem Nährmedium züchtet,
das 250 ml Pferdeserum, 200 g Pepton, 10 g Glucose, 25 g ITaOl-
und Wasser bis zum Auffüllen auf ein Volumen von 5 1 enthält.
4·. Verfahren nach mindestens einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch
gekennzeichnet, daß man jeden der neun Stämme getrennt einer enzymatischen Lysis unterwirft, die umfaßt:
eine 3-stündige Behandlung mit Papain bei 60 bis 65°0 und einem
pH-Wert von 6,5,
die Inaktivierung des Papains durch 30~minütiges Erwärmen auf
100 bis 1200C,
eine 3-stündige Behandlung mit Trypsin bei 37°G und einem pH-Wert von 7
eine 3-stündige Behandlung mit Trypsin bei 37°G und einem pH-Wert von 7
die Inaktivierung des Trypsins durch 30-minütiges Erwärmen auf
100 bis 1200G.
5· Verfahren nach mindestens einem der Ansprüche 1 bis 4-,
dadurch gekennzeichnet, daß man die lyophilisierten Antigenfraktionen
in Mengen von jeweils 3 Gew.-Teilen jeder der lyophilisierten Antigenfraktionen von Staphylococcus aureus 634-,
Staphylococcus aureus 636, Staphylococcus aureus 659, Streptococcus 14-7, Streptococcus pyogenes 155, Streptococcus p-yogenes
6098 12/0913
1178, Diplococcus pneumoniae 209 und Diplococcus pneumoniae
auf 1 Gew.-Teil der lyophilisierten Antigenfraktion von Neisseria·
catarrhalis 987 miteinander mischt.
6. Verfahren zur Herstellung eines aus Antigenfraktionen
bakteriellen Ursprungs bestehenden Produkts nach mindestens einem der Ansprüche 1 bis 59 dadurch gekennzeichnet, daß man
a) getrennt züchtet
-jeden der Stämme Staphylococcus aureus 634-, Staphylococcus
aureus 636, Staphylococcus aureus 659» Streptococcus 14-7 j
Streptococcus pyogenes 155» Streptococcus pyogenes 1173,
Diplococcus pneumoniae 209 und Diplococcus pneumoniae 210 (entsprechend dem Katalog der "Collection du Centre International
de Distribution de Souches et d1Informations sur les
Types Microbiens de Lausanne") auf einem flüssigen Nährmedium,
das 1500 g ITaCl, I5OO g Dikaliumphosphat, 600 g Monokaliumphosphat,
600 g Monoammoniumphosphat, I5OO g G-lucose, 60 g
Magnesiumsulfat, 600 g Glycerin, 600 g Bierhefeautolysat,
6 g Mangansulfat, 1,50 g Thiaminhydrochlorid, 1,50 g Pyridoxinhydrochlorid,
1,50 g Calciumpantothenat, 1,50 g Nikotinsäure, 0,75 g Riboflavin und Wasser bis zum Auffüllen auf ein
Volumen von 300 1 enthält,
- den Stamm Neisseria catarrhalis 987 (entsprechend dem Katalog
der "Collection du Centre International de Distribution de Souches et d1Informations sur les Types Microbiens de Lausanne")
auf einem flüssigen Nährmedium, das 250 ml Pferdeserum, 200 g
Pepton, 10 g Glucose, 25 g NaGl und Wasser bis zum Auffüllen auf ein Volumen von 5 1 enthält5
b) die Kulturen jedes der neun Stämme einer enzymatischen Lysis
unterv/irft, die umfaßt
- eine 3-stündige Behandlung mit Papain bei 6O0C und bei einem
• , pH -VTert von 6,5,
- die Inaktivierung des Papains durch 30-minütiges Erwärmen auf
1000C,
6 09812/0913
- eine 3-stündige Behandlung mit Trypsin bei 37°C ί*&& einem
pH -Wert von 7,
- die Inaktivierung des Trypsins durch 30-minütiges"Erwärmen
auf 10O0C;
c) das bei der enzymatischen Lysis jedes Stammes erhaltene Milieu
zentrifugiert, um die festen Substanzen bakteriellen Ursprungs zu eliminieren;
d) jede der in dem flüssigen Milieu nach dem Zentrifugieren enthaltenen
Antigenfraktxonen auf Kohle absorbiert;
e) jedes erhaltene Milieu zentrifugiert, um die Kohle abzutrennen,
auf der jede der Antigenfraktxonen fixiert ist;
f) jede der auf der Kohle absorbierten Antigenfrakt ionen mit einer
wäßrigen WH--Lösung eluiert;
g) das in jedem Eluat enthaltene Ammoniak verdampft und jede zurückbleibende
wäßrige Lösung einengt und lyophilisiert und
h) jede der so erhaltenen neun Antigenfrakt ionen in einer Menge von
3 Gew.-Teilen jeder der lyophilisierten Antigenfraktxonen von
Staphylococcus aureus 634-, Staphylococcus aureus 636, Staphylococcus
aureus 659j Streptococcus 14-7, Streptococcus pyogenes
155j Streptococcus pyogenes 1173, Diplococcus pneumoniae 209
und Diplococcus pneumoniae 210 mit 1 Gew.-Teil der lyophilisierten Antigenfraktion von Heisseria catarrhalis 987 mischt.
7. Produkt, das sich für die Behandlung von Infektionen im Hals-Fasen-Ohren-Bereich und insbesondere von Bakterieninfektionen
der Nasenhöhlen eignet, dadurch gekennzeichnet, daß es aus Antigenfraktionen
besteht, wie sie bei dem Verfahren nach mindestens einem der Ansprüche 1 bis 6 erhalten werden.
609812/0913
8. Produkt nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß es aus Antigenfraktionen besteht, wie sie nach dem Verfahren, gemäß
Anspruch 6 erhalten werden, und daß jede darin enthaltene Antigenfraktion ein Molekülargeivicht von etwa 12000 aufweist.
9. Therapeutische Zubereitung für die Behandlung von Infektionen des Hals-iTasen-Ohren-Bereiches und insbesondere von ·
bakteriellen Infektionen der Nasenhöhlen, dadurch gekennzeichnet, daß sie enthält 3 Gew.-Teile der gereinigten Antigenfraktion
von Staphylococcus aureus 634-, 3 Gew.-Teile der gereinigten
Antigenfraktion von Staphylococcus aureus 636, 3 Gew.-Teile
der gereinigten Antigenfraktion von Staphylococcus aureus 659»
3 G-evr.-Teile der gereinigten Antigenfraktion von Streptococcus
14-7» 3 Gew.-Teile der gereinigten Antigenfraktion von Streptococcus
pyogeiies 155» 3 Gew.-Teile der gereinigten Antigenfraktion
von Streptococcus pyogenes 1178, 3 Gew.-Teile der gereinigten Antigenfraktion von Diplococcus pneumoniae 209 und 3 Gew.—Teile
der gereinigten Antigenfraktion von Diplococcus pneumoniae auf 1 Gew.-Teil der gereinigten Antigenfraktion von Neisseria
catarrhalis 987 (entsprechend dem Katalog der "Collection du
Centre International de Distribution de Souches et d'Informations sur les Types Microbiens de Lausanne"), 0,25 Gew.-Teile Natriummercurothiolat,
90 Gew.-Teile KaCl und destilliertes Wasser zum Auffüllen auf 10 Volumenteile.
10. Zubereitung nach Anspruch 95 dadurch gekennzeichnet, daß
sie in 15 ml-Fläschchen für das Einsprühen in die Nasenhöhle
konditioniert wird und daß sie das Produkt gemäß Anspruch 8 enthält und besteht aus
4,5 mg der gereinigten Antigenfraktion von Staphylococcus aureus634,
4,5 mg der gereinigten Antigenfraktion von Staphylococcus aureus636,
4,5 mg der gereinigten Antigenfraktion von Staphylococcus aureus659,
4,5 mg der gereinigten Antigenfraktion von Streptococcus 147 4,5 mg der gereinigten Antigenfraktion von Streptococcus pvogenes
609812/0913
4,5 mg der gereinigten Antigenfraktion von Streptococcus
pyogenes 1178,
4,5 mg der gereinigten Antigenfraktion von Diplococcus
pneumoniae 209,
4,5 mg der gereinigten Antigenfraktion von Diplococcus
pneumoniae 210,
1,5 mg der gereinigten Antigenfraktion von ITeisseria
catarrhalis 987,
0,375 mg Fatriummercurottiiolat,
135 mg NaCl und
Wasser in einer Menge zum Auffüllen auf ein Endvolumen von 15-ml,
609812/0913
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