DE2450355C2 - - Google Patents
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Description
Die Erfindung betrifft N-Acyl-muraminsäurederivate
und diese Adjuvanzien enthaltende
Impfstoffe.
Die Erfindung ist auf lösliche Substanzen gerichtet, die als
immunulogische Adjuvanzien wirken und in den damit behandelten
Wesen die Immunreaktionen auf Antigene unterschiedlicher
Art stimulieren. Die Erfindung betrifft insbesondere
Adjuvanzien, die die Wirkung der schwachen Immunogene verstärken
und steigern.
Gegenstand der Erfindung sind insbesondere als Adjuvanzien geeignete
Substanzen, die für die Immunisierung von Menschen und
warmblütigen Tieren gegen durch Bakterien, Viren und Parasiten
hervorgerufene Infektionen und gegen verschiedene Gewebeantigene
normalen oder pathologischen Ursprungs, insbesondere
gegen Tumore, geeignet sind.
Man kennt bereits seit einiger Zeit Substanzen, die Adjuvanseigenschaften
besitzen. Es ist beispielsweise gut bekannt, daß
Materialien, wie die Zellen von Mycobakterien und die Zellwände
der Mycobakterien die Bildung der Antikörper in dem Wirt bzw.
den damit behandelten Wesen steigern und insbesondere die
Resistenz des Wirts gegen Infektionen erhöhen, die durch zahlreiche
Mikroorganismen verursacht werden. Die bekannten Substanzen
dieser Art, wie das komplette Freund′sche Adjuvans, das
vollständige Mycobakterienzellen enthält, haben sich aufgrund
der von ihnen hervorgerufenen nachteiligen Nebenreaktionen für
die Verwendung in der Therapie als unerwünscht erwiesen. Sie
können beispielsweise die Empfindlichkeit des Wirts gegenüber
Endotoxinen erhöhen, eine Tuberkulinhypersensibilität verursachen
und Granulome, Lymphoidgewebehyperplasien und bei der Ratte
unter gewissen Bedingungen eine experimentelle Polyarthritis
herbeiführen. Andererseits sind bisher die Adjuvanzien auf der
Grundlage von Mycobakteriensubstanzen wegen ihrer Unlöslichkeit
schwierig zu reinigen gewesen.
So ist insbesondere in der FR-PS 72 22 120
ein Verfahren beschrieben,
das die Herstellung eines löslichen und im wesentlichen von den
genannten Nachteilen freien Adjuvans ermöglicht. Insbesondere
kann ein derartiges Adjuvans beispielsweise mit einem Verfahren
bereitet werden, das im wesentlichen darin besteht, einen Mycobakterienstamm,
Nocardia-Zellen oder verwandte Mikroorganismen
zu züchten, die Zellen des kultivierten Stammes zu gewinnen,
sie aufzubrechen, die aufgebrochenen Zellwände beispielsweise
durch Differentialzentrifugieren zu gewinnen, die Wachse,
freien Lipide, Proteine und Nukleinsäuren abzutrennen und zu
entfernen, das von den Zellwänden stammende, von Lipiden befreite
Material mit einem mucolytischen Enzym, wie Lysozym,
zu digerieren, den festen Rückstand zu beseitigen und die
wäßrige Fraktion zu gewinnen, die die genannten löslichen
Mittel enthält. Man bewirkt anschließend eine Reinigung und,
mindestens in gewissen Fällen in Abhängigkeit von der Natur
des behandelten Ausgangsstamms, eine Fraktionierung der erhaltenen
Mittel, beispielsweise dadurch, daß man die wäßrige
Fraktion über ein Molekularsieb filtriert, beispielsweise
über eine mit Polydextrangel oder einem analogen Material, wie
dem unter der Bezeichnung "Sephadex® G 75" oder "Sephadex® G 50"
bekannten Gel, gefüllte Säule.
Beispielsweise ergibt, wenn der anfänglich gezüchtete Stamm
ein Stamm von Mycobacterium smegmatis ist, die Filtration der
wäßrigen Fraktion über "Sephadex® G 50" zwei aufeinanderfolgende
Elutionsbanden, die beide Substanzen mit Adjuvanseigenschaften
enthalten.
In der genannten Patentanmeldung ist angegeben, daß das fragliche
Adjuvans und insbesondere das aus der ersten der beiden
genannten Elutionsbanden gewonnene, wahrscheinlich aus einem
Oligomeren beteht, dessen monomere Einheiten im wesentlichen
jenen der Polymeren der Mikroorganismenzellwände, aus denen
sie extrahiert worden sind, mit Ausnahme ihrer Lipidteile, die
sehr klein und in gewissen Fällen nicht vorhanden sind,
entsprechen. Es ist ebenfalls festgestellt worden, daß das in
der zweiten der genannten beiden Elutionsbanden vorhandene
Adjuvans aus einem an neutralen Zuckern armen oder sogar freien
Oligomeren besteht, dessen monomere Einheit die Aminozucker
und die Aminosäuren der die Zellwände der genannten Mikroorganismen
bildenden Polymerisate und gegebenenfalls kleine
Lipidteile enthält.
Diese verschiedenen Adjuvanzien stellen sicherlich einen beträchtlichen
Fortschritt gegenüber den unlöslichen Adjuvanzien
dar, die zuvor beschrieben worden sind. Sie bestehen jedoch aus
Gemischen und man kann in der Tat daran denken, daß diese
Mittel, insbesondere durch die Anwendung des oben beschriebenen
Verfahrens, nur aus Mycobakterien, Nocardiae, und damit verwandten
Mikroorganismen erhalten werden können.
Die Erfindung betrifft nun lösliche N-Acyl-muraminsäurederivate,
die als lösliche Adjuvanzien mit geringem
Molekulargewicht verwendet werden können,
chemisch wohldefiniert sind und - was zumindest einen
Teil dieser Mittel anlangt - synthetisch hergestellt
werden können. Es hat sich andererseits gezeigt, daß
mindestens ein Teil dieser wohldefinierten und niedermolekularen
Adjuvanzien auf biochemischem Weg hergestellt
werden kann.
Die erfindungsgemäßen N-Acyl-muraminsäurederivate haben die
folgende allgemeine Formel:
in der R₁ einen L-Alanyl-, L-Seryl- oder Glycylrest und R₂ L-Lysin,
einen β-Hydroxy- oder L-Meso-alpha-epsilon-diamino-pimelinsäurerest
darstellt und, wenn R₂ eine Diaminosäure ist,
über eine Peptidbindung mit einer L-Alanin- oder D-Alaninaminosäure
verknüpft sein kann und Ac eine Acetyl- oder eine
Glycolylgruppe bedeutet.
Die Erfindung betrifft insbesondere die Verwendung dieser Mittel
oder Adjuvanzien zur Herstellung von Impfstoffen, deren immunogene
Wirkung sie durch ihre Fähigkeit verstärken, die Bildung von
Antikörpern gegen das impfende Antigen in dem Wirtsorganismus
zu begünstigen und zu steigern, und betrifft demzufolge auch
Impfstoffzubereitungen, die neben einem immunogenen oder antigenen
Impfstoff ein derartiges Adjuvans enthalten.
Die bevorzugten erfindungsgemäßen N-Acyl-muraminsäurederivate
haben als Rest R₁ einen L-Alanylrest.
Die Acyl-Gruppe der N-Acyl-muraminsäure wird durch
eine Acetyl-Gruppe
oder eine Glykolyl-Gruppe gebildet.
Das Verfahren zur Herstellung der erfindungsgemäßen
N-Acyl-muraminsäurederivate besteht darin, daß man
N-Acyl-muraminsäure, deren freie OH-Gruppen, mit Ausnahme
derjenigen der Propionyl-Gruppe der Muraminsäure,
zuvor geschützt worden sind, mit dem entsprechenden
Peptid umsetzt, dessen freie OH-Gruppen ebenfalls zuvor
geschützt worden sind.
Weitere Gegenstände, Ausführungsformen und Vorteile der Erfindung
ergeben sich aus den folgenden, auf bevorzugte erfindungsgemäße
Adjuvanzien gerichteten Beispielen.
Im folgenden wird die chemische Synthese der erfindungsgemäßen
N-Acetyl-muraminsäure-Moleküle, an denen die
Di-, Tri- bzw. Tetra-Peptidketten gebunden werden,
erläutert.
Im folgenden sei zunächst die Synthese der fraglichen Di-,
Tri- und Tetra-Peptide vor deren Kupplung mit der N-Acetylmuraminsäure
erläutert.
Im folgenden sind angegeben, die Synthesen:
des Hydrochlorids des Benzylesters von L-Alanyl-D-Isoglutamin:
des Hydrochlorids des Benzylesters von L-Alanyl-D-Isoglutamin:
L-Ala-D-Glu-α-NH₂,HCl,
des Hydrochlorids des Benzylesters von [L-Alanyl-D-Isoglutaminyl]-(L),Z-
(D)-meso-Diaminopimelyl-(L),[D-Alanin],(D)-Amid:
[L-Ala-D-Glu-α-NH₂]-(L)-,Z-(D)-m-DAP-(L)-(O-Ala-OBzl), (D)-NH₂,HCl
des Hydrochlorids des Benzylesters von [L-Alanyl-D-Isoglutaminyl]-(L),Z-
(D)-meso-Diaminopimelyl-(D)-amid:
[L-Ala-D-Glu-α-NH₂]-(L),Z-(D)-m-DAP-(L)-(OBzl), (D)-NH₂,HCl
Die angegebenen Abkürzungen bedeuten:
Z=die Benzyloxycarbonyl-Gruppe,
BOZ=die tert.-Butyloxycarbonyl-Gruppe,
m-DAP=meso-αα′-Diaminopimelinsäure,
OSu=Succinimidester.
Z=die Benzyloxycarbonyl-Gruppe,
BOZ=die tert.-Butyloxycarbonyl-Gruppe,
m-DAP=meso-αα′-Diaminopimelinsäure,
OSu=Succinimidester.
Die Schmelzpunkte sind in Kapillarröhrchen mit der Vorrichtung
von Dr. Tottoli bestimmt worden und
nicht korrigiert. Die Bestimmungen der physikalischen Konstanten
und die Elementaranalysen erfolgten an Proben, die im allgemeinen
während 20 Stunden bei 78°C im Vakuum 1,33×10-2 mbar getrocknet
worden sind. Die Elementaranalysen wurden mit einer automatischen
CHN-Mikroanalysenvorrichtung durchgeführt. Die
optischen Drehwerte wurden mit Hilfe eines elektronischen
Polarimeters bestimmt. Die Chromatographien
erfolgten auf mit Kieselgel beschichteten Dünnschichtplatten
in einer Lösungsmittelmischung A, das heißt einer
n-Butanol/Pyridin/Essigsäure/Wasser-Mischung (30/20/6/24
Volumen/Volumen) oder einer Lösungsmittelmischung B, das heißt
einer Chloroform/Methanol/Ammoniak-Mischung (2/2/1 Volumen/Volumen).
Man setzt aus 6,12 g (7,80 mMol) des Dicyclohexylammoniumsalzes
der BOC,Z-meso-Diaminopimelinsäure (das man nach den
Methoden von P. Dezelee und E. Bricas (Biochem. 1970, 9, 823) und
P. Dezelee und E. Bricas ("Peptides 1969: Proceedings of the
Tenth European Peptide Symposium" (E. Scoffonc, Ed) Seiten 347
bis 355, North Holland, Amsterdam) hergestellt hat mit einer
4n Chlorwasserstoffsäurelösung in Tetrahydrofuran die Säure
frei. Der erhaltene ölige Rückstand wird mit 25 ml Tetrahydrofuran
aufgenommen und man versetzt die auf -10°C abgekühlte
Lösung mit 4,05 ml (15,6 mMol) Isobutylchlorcarbonat und 2,2 ml
(15,6 mMol) Triäthylamin. Nach Ablauf von 10 Minuten leitet man
während 30 Minuten bei Raumtemperatur einen trockenen Ammoniakstrom
in die Lösung ein. Es bildet sich ein sehr voluminöser
weißer Niederschlag, der nach dem Abdestillieren des Tetrahydrofurans
mit einer Mischung aus Äthylacetat (60 ml) und
Wasser (20 ml) aufgenommen wird. Die organische Lösung wird
dann zweimal mit jeweils 20 ml einer 1m Natriumbicarbonatlösung
und dann mit Wasser bis zur Neutralität gewaschen.
Anschließend trocknet man die Lösung über Magnesiumsulfat und
engt sie zur Trockene ein. Der erhaltene feste Rückstand wird
aus einer Äthylacetat/Hexan-Mischung umkristallisiert, wobei man
2,06 g (Ausbeute 63%) der Titelverbindung erhält.
Schmelzpunkt: 169°C bis 172°C.
Schmelzpunkt: 169°C bis 172°C.
Analyse: C₂₀H₃₀O₆N₄=422,49
ber.: C 56,9, H 7,2, N 13,3%;
gef.: C 56,8, H 7,5, N 13,5%.
ber.: C 56,9, H 7,2, N 13,3%;
gef.: C 56,8, H 7,5, N 13,5%.
Man löst 1,86 g (4,4 Mol) des Diamids der BOC,Z-meso-Diaminopimelinsäure
in 14 ml einer 1n Chlorwasserstoffsäurelösung
in Essigsäure. Nach 30 Minuten bei 25°C engt man die Lösung
zur Trockene ein und trocknet den Rückstand in Gegenwart von
Natriumhydroxid in einem Exsikkator. Das Produkt wird schließlich
aus einer Methanol/Äther-Mischung kristallisiert. Man erhält
1,5 g der Titelverbindung (Ausbeute 90,5%).
Schmelzpunkt: 138°C bis 140°C. Rf (A)=0,7.
Schmelzpunkt: 138°C bis 140°C. Rf (A)=0,7.
Dieses Produkt erhält man nach der von Dezelee und Bricas angegebenen
Methode (Lefrancier und E. Bricas, Bull. Soc. Chim. Biol.,
1967, 49, 1257) zur Herstellung des BOC-(D)-meso-Diaminopimelinsäure-
(D)-monobutyloxycarbonylhydrazids [BOC-(D)-
m-DAP-(D)-NH-NH-BOC].
Man stellt den pH-Wert einer Lösung von 1,144 g (3,2 mMol)
des Hydrochlorids des Diamids der Z-meso-Diaminopimelinsäure
in 100 ml destilliertem Wasser bei 37°C mit einer 1n Kaliumhydroxidlösung
auf einen Wert von 8,6 ein. Dann gibt man
3 ml einer zuvor aktivierten Leucin-Aminopeptidase-Lösung zu
(das heißt eine 90 Minuten auf 37°C gehaltene Mischung aus
0,8 ml einer Lösung von Leucinaminopeptidase, die 2 mg Protein
pro ml enthält, 0,7 ml destilliertem Wasser, 1,5 ml eines
0,5m Tris-Puffers (pH 8,5) und 3 ml einer 0,025m Magnesiumsulfatlösung).
Man hält den pH-Wert der Lösung durch Zugabe
einer 0,1n H₂SO₄-Lösung mit Hilfe einer Vorrichtung zur
Konstanthaltung des pH-Wertes auf einem Wert von 8,6. Nach etwa
einer Nacht wird eine geringe Menge eines Niederschlags abfiltriert,
das Filtrat mit einer 2n Chlorwasserstoffsäurelösung
angesäuert und auf ein geringes Volumen eingeengt. Der
erhaltene Niederschlag wird nach dem Aufbewahren über Nacht bei
0°C abfiltriert (400 mg, Ausbeute 70%). Das Filtrat wird auf
4 ml eingeengt und über eine SE-Sephadex® (NH₄⁺) gefüllte
Kolonne (2×20 cm) geführt, die zuvor mit einer 1m Essigsäurelösung
ins Gleichgewicht gebracht worden ist. Das Hydrochlorid
des Z-(D)-meso-Diaminopimelinsäure-(D)-monoamids wird mit einer
0,1m Ammoniumacetatlösung in 1m Essigsäurelösung eluiert. Durch
Gefriertrocknen erhält man 100 mg des Produktes. Die beiden
Chargen werden aus einer Äthanol/Äther-Mischung umkristallisiert.
Man erhält 480 mg des Produktes (Ausbeute 84%).
Schmelzpunkt: 245°C bis 250°C.
Schmelzpunkt: 245°C bis 250°C.
[a] = 5° (c=0,5 HClN) · Rf (A) = 0,65.
Zu einer Lösung von 4,05 g (10 mMol) BOC-L-Alanyl-D-Isoglutamin
(2) in 30 ml Dimethylformamid gibt man 1,15 g (10 mMol)
N-Hydroxysuccinimid und 2,26 g (11 mMol) Dicyclohexylcarbodiimid.
Nach dem Stehenlassen über Nacht bei Raumtemperatur filtriert man
den Dicyclohexylharnstoff ab und engt das Filtrat zur Trockene
ein. Das Produkt wird aus einer Isopropylalkohol/Diisopropyläther-
Mischung umkristallisiert, wobei man 4 g des Produktes
(Ausbeute 100%) erhält. Schmelzpunkt: 69°C bis 70°C (unter
Zersetzung).
[α] = 12,2° (c=1 Dioxan).
Es scheint, als ob sich dieses Produkt ziemlich schnell zersetzt.
Es wird daher entweder in Gegenwart von P₂O₅ im Exsikkator
aufbewahrt oder unmittelbar vor seiner Verwendung hergestellt.
Man löst 1 g (2,5 mMol) des Benzylesters von BOC-L-Alanyl-D-
Isoglutamin (2) in 30 ml einer 1n Chlorwasserstoffsäurelösung
in Essigsäure. Nach 30 Minuten engt man die Lösung zur Trockene
ein, nimmt den Rückstand in einer minimalen Menge Methanol auf
und fällt das Produkt mit Äther aus. Man erhält 800 mg des Produktes
(Ausbeute 94%).
Schmelzpunkt: 153°C bis 157°C.
Schmelzpunkt: 153°C bis 157°C.
[α] = +8,1° (c=1 Methanol).
Analyse: C₁₅H₂₂O₄N₃Cl=342,87
ber.: C 52,5, H 6,5, N 12,3%;
gef.: C 52,5, H 6,4, N 12,2%.
ber.: C 52,5, H 6,5, N 12,3%;
gef.: C 52,5, H 6,4, N 12,2%.
Man löst 1,18 g (3,3 mMol) des Hydrochlorids des Z-(D)-meso-
Diaminopimelinsäure-monoamids in 5 ml destilliertem Wasser. Dann
gibt man bei 0°C 0,72 ml (6,6 mMol) N-Methylmorpholin und dann
eine Lösung von 1,2 g (3 mMol) des Succinimidesters von BOC-L-
Alanyl-D-Isoglutamin in 15 ml Dimethylformamid zu. Der zu Beginn
der Reaktion beobachtete Niederschlag löst sich nach 2 Stunden.
Nach 48 Stunden wird die Reaktionsmischung zur Trockene eingeengt
und mit 50 ml n-Butylalkohol, den man zuvor mit einer
1m Essigsäurelösung ins Gleichgewicht gebracht hat, und 20 ml
einer 1m Essigsäurelösung, die man zuvor mit n-Butylalkohol ins
Gleichgewicht gebracht hat, aufgenommen. Die n-Butanol-Phase
wird fünfmal mit kleinen Mengen der Essigsäurelösung extrahiert.
Die vereinigten wäßrigen Phasen werden dreimal mit 10 ml
n-Butylalkohol gewaschen. Die organischen Phasen werden schließlich
vereinigt und fast zur Trockene eingedampft. Durch Zugabe
von Äther erhält man 1,8 g eines Niederschlags, den man in
absolutem Äthanol aufnimmt. Das unlösliche Material wird abfiltriert
und das Filtrat auf ein minimales Volumen eingeengt.
Durch Ausfällen mit Äther erhält man 1,6 g der Titelverbindung
(Ausbeute 80%), die einen Erweichungspunkt von 10°C bis 110°C
und einen Schmelzpunkt von 115°C aufweist.
[α] = -5° (c=1 Methanol).
Analyse: C₂₈H₄₂O₁₀N₆=623,09
ber.: C 54,0, H 6,8, N 13,5%;
gef.: C 54,1, H 6,7, N 13,5%.
ber.: C 54,0, H 6,8, N 13,5%;
gef.: C 54,1, H 6,7, N 13,5%.
Man löst 570 mg (0,92 mMol) [BOC-Ala-D-Glu-α-NH₂]-(L),Z-(D)-
meso-DAP-(D)-NH₂ in 30 ml Tetrahydrofuran. Bei -15°C gibt man
0,26 ml (1 mMol) Isobutylchlorcarbonat und 0,11 ml (1 mMol)
N-Methylmorpholin zu. Nach 10 Minuten setzt man eine Lösung von
352 mg (1 mMol) D-Alanin-benzylester-p-toluolsulfonat in 10 ml
Tetrahydrofuran und 0,11 ml (1 mMol) N-Methylmorpholin zu. Man
erhält nach Ablauf einer Stunde bei Raumtemperatur einen solvatisierten
Niederschlag. Die Reaktion wird während weiterer
24 Stunden fortgesetzt. Nach dem Einengen zur Trockene nimmt man
den Rückstand mit 25 ml Äthylacetat und 10 ml destilliertem
Wasser auf. Die organische Phase wird nacheinander mit einer
10%igen Zitronensäurelösung, mit destilliertem Wasser, mit
einer 1m Natriumbicarbonatlösung und schließlich mit destilliertem
Wasser bis zu einem neutralen pH-Wert gewaschen. Die Äthylacetat-
Phase wird eingeengt und der erhaltene Rückstand in
einem Exsikkator in Gegenwart von P₂O₅ getrocknet. Das Produkt
wird in einer Äthylacetat/Petroläther-Mischung kristallisiert.
Man erhält 400 mg der Titelverbindung (Ausbeute 55%).
Erweichungspunkt: 180°C, Schmelzpunkt: 215°C (der optische
Drehwert einer methanolischen Lösung (c=1) kann wegen eines
zu geringen Wertes außer Betracht bleiben).
Analyse: C₃₈H₅₃O₁₁N₇=783,89
ber.: C 58,2, H 6,8, N 12,5%;
gef.: C 58,0, H 6,7, N 12,55%.
ber.: C 58,2, H 6,8, N 12,5%;
gef.: C 58,0, H 6,7, N 12,55%.
Man löst 850 mg (1,1 mMol) BOC-L-Ala-D-Glu-α-NH₂(L),Z-(D)-
DAP-(L)-L-Ala-OBzl,(D)-NH₂ in 5 ml einer 1n Chlorwasserstoffsäurelösung
in Essigsäure. Nach 30minütiger Umsetzung bei 25°C
engt man die Lösung zur Trockene ein und kristallisiert den
Rückstand aus einer Methanol/Äther-Mischung aus. Man erhält die
Titelverbindung in einer Menge von 750 mg (Ausbeute 95%).
Schmelzpunkt: 90°C bis 100°C (wenig deutlich).
Schmelzpunkt: 90°C bis 100°C (wenig deutlich).
[α] = +3,5° (c=0,5 Methanol).
Analyse: C₃₃H₄₆ O₉N₇Cl, HCl 0,25 H₂O
ber.: C 52,2, H 6,3, N 12,9%;
gef.: C 52,26, H 6,14, N 12,69%.
ber.: C 52,2, H 6,3, N 12,9%;
gef.: C 52,26, H 6,14, N 12,69%.
Die Analyse der Aminosäuren von 0,5 mg des vollständig
hydrolysierten Derivats (wobei die Hydrolyse in Gegenwart
von 6n Chlorwasserstoffsäurelösung während 24 Stunden bei
110°C in einem vakuumdichten Röhrchen erfolgt) ergibt folgendes
Verhältnis: Ala 1,9; Glu 1; DAP 1.
Das hierfür eingesetzte Di-Z-meso-diaminopimelyl-(D)-monoamid
erhält man nach der von J. van Heÿenhoort, E. Bricas und C. Nicot
(Bull. Soc. Chim. 1969, 8, 2743) beschriebenen Methode.
Man bringt 4,57 g (10 mMol) dieses Derivats in 50 ml wasserfreiem
Äther in Suspension. Dann gibt man im Verlaufe von
30 Minuten bei 0°C unter Rühren 10 mMol feinpulverisiertes
Phosphorpentachlorid zu. Nach der vollständigen Lösung des
Phosphorpentachlorids filtriert man die Reaktionsmischung und
engt das Filtrat im Vakuum bei 40°C ein. Nach der Zugabe frischen
Lösungsmittels wiederholt man das Einengen mehrfach. Der Rückstand
wird dann in 10 ml Benzylalkohol aufgenommen und die Lösung
bei 0°C in einen Kolben gegossen, in dem sich 50 ml zuvor mit
Chlorwasserstoff gesättigten Äthers befinden. Unter Rühren der
Lösung läßt man die Temperatur auf 25°C ansteigen. Unter
Kohlendioxidentwicklung bildet sich ein Niederschlag. Man läßt
über Nacht stehen, filtriert den Niederschlag ab und wäscht ihn
mit Äther. Man erhält in dieser Weise die angegebene Titelverbindung.
Man löst 500 mg (2 mMol) Z-(D)-meso-Diaminopimelyl-(D)-monoamidbenzylester-
hydrochlorid in 10 ml Dimethylformamid. Dann gibt
man bei 0°C 0,22 ml (2 mMol) N-Methylmorpholin und schließlich
eine Lösung von 800 mg (2 mMol) BOC-L-Alanyl-D-Isoglutaminsuccinimidester
in 10 ml Dimethylformamid zu.
Nach 48 Stunden engt man die Reaktionsmischung zur Trockene ein
und nimmt sie mit 50 ml zuvor mit einer 1m Essigsäurelösung ins
Gleichgewicht gebrachtem N-Butylalkohol und 20 ml einer zuvor
mit n-Butylalkohol ins Gleichgewicht gebrachten 1m Essigsäurelösung
auf. Die n-Butanol-Phase wird fünfmal mit kleinen Mengen
der Essigsäurelösung extrahiert. Die vereinigten wäßrigen
Phasen werden dreimal mit 10 ml Butylalkohol gewaschen. Die organischen
Phasen werden schließlich vereinigt und zur Trockene
eingeengt. Durch Ausfällen mit Äther erhält man die angegebene
Titelverbindung (j).
Man löst 712 mg (1 mMol) BOC-L-Ala-D-Glu-α-NH₂(L),Z-(D)-m-
DAP-(L)OBzl,(D)-NH in 5 ml einer Lösung von Chlorwasserstoff
in Essigsäure. Nach 30minütiger Reaktion bei 25°C wird die
Lösung zur Trockene eingeengt, der Rückstand mit Methanol aufgenommen
und mit Äther ausgefällt. Man erhält 600 mg der Titelverbindung
(98%).
Die Analyse der Aminosäuren eines durch vollständiges saures
Hydrolysieren von 0,5 g des Derivats erhaltenen Hydrolysats
(wobei die Hydrolyse mit 6n Chlorwasserstoffsäurelösung während
24 Stunden bei 110°C in einem vakuumdicht verschlossenen Röhrchen
erfolgt) ergibt folgende Zusammensetzung: Ala 0,95, Glu 1,
DAP 0,90.
Die durchgeführten Reaktionen werden durch das folgende
Reaktionsschema I verdeutlicht. In diesem Schema steht die
Abkürzung "Ph" für die Phenyl-Gruppe und die Abkürzung "Ac"
für die Acetyl-Gruppe.
Man erhält diese Verbindung ausgehend von Benzyl-2-acetamido-
3,4,6-tri-O-acetyl-2-desoxy-β-D-glucopyranosid durch Desacetylieren
mit Natriummethanolat und Einführen der 4,6-O-Benzyliden-
Schutzgruppe nach der Methode von P. H. Gross und R. W. Jeanloz
(J. Org. Chem. 32 (1967), 2759).
Man löst 4 g Benzyl-2-acetamido-4,6-O-benzyliden-2-desoxy-β-D-
glucopyranosid (A) bei 90°C in 450 ml wasserfreiem und von
Peroxiden befreitem Dioxan. Nach der Zugabe einer 50%igen Suspension
von Natriumhydrid in Öl (wobei man 2,80 g der Suspension
verwendet), rührt man die Mischung während 2 Stunden bei 90°C.
Dann gibt man 1,840 g L-α-Chlorpropionsäure zu. 3 Stunden nach
der Zugabe der Säure versetzt man ein zweites Mal mit Natriumhydrid
(2,80 g der Suspension). Die Mischung wird anschließend
unter mechanischem Rühren über Nacht bei 65°C bis 67°C stehengelassen.
Nach dem Abkühlen in einem Eisbad zerstört man das
überschüssige Natriumhydrid vorsichtig durch Zugabe von Wasser
(110 ml). Die Mischung trennt sich in zwei Phasen auf. Die untere
Phase wird verworfen, während die obere Phase abgetrennt, filtriert
und im Vakuum eingedampft wird. Der Rückstand wird mit
250 ml Wasser verdünnt, wonach man die erhaltene wäßrige Lösung
mit Chloroform wäscht. Diese wäßrige Lösung wird anschließend
auf 0°C abgekühlt und bis zu einem pH-Wert von 3 mit 2,5m Chlorwasserstoffsäurelösung
versetzt. Die ausgefällte Verbindung
(der Formel I) wird sofort abgesaugt und gut mit kaltem Wasser
gewaschen. Nach der Kristallisation aus Methanol erhält man die
Verbindung (I) in reinem Zustand (3,64 g, 76% Ausbeute).
Schmelzpunkt: 264°C bis 265°C
Schmelzpunkt: 264°C bis 265°C
[α] = -52° (c=0,41 Äthanol).
IR-Spektrum: γ = 3320 (NH), 3080 (Ph), 1760 (COOH),
1660 (Amid I), 1565 (Amid II), 740 und
695 cm-1 (Ph).
Das allgemeine Prinzip der Herstellung ist das folgende:
Man kondensiert Benzyl-2-acetamido-4,6-O-benzyliden-3-O-
(D-1-carboxyäthyl)-2-desoxy-β-D-glucopyranosid (I) nach
Woodward et al. (Tetrahedron, Suppl. 8 (1966) 321) mit
L-Ala-(γ-O-Benzyl)-D-GluNH₂-hydrochlorid. Als Lösungsmittel
verwendet man eine Mischung aus N,N-Dimethylformamid und
Acetonitril (1/2 Volumen/Volumen). In dieser Weise erhält man
2-(Benzyl-2-acetamido-4,6,-O-benzyliden-2-desoxy-3-O-β-D-
glucopyranosyl)-D-propionyl-L-Ala-(γ-O-benzyl)-D-α-Glu NH₂
(III) in kristallinem Zustand mit einer Ausbeute von mehr als
80%. Das Woodward-Reagens K (N-Äthyl-5-phenylisoxazolium-3′-
sulfonat) ist ausgewählt worden, da es praktisch nicht zu einer
Racemisierung führt und mit Amiden von Glutamin-Typ sehr gute
Ergebnisse erzielen läßt, und dies auch in N-N-Dimethylformamid.
Der einzige Nachteil dieses zuletzt erwähnten Lösungsmittels
besteht darin, daß es zu einer geringeren Ausbeute führt, was
hier nicht der Fall ist, da eine Acetonitril/N,N-Dimethyl-
formamid-Mischung verwendet wird. Durch Behandeln des geschützten
Glycopeptids (III) mit 60%iger Essigsäure erhält man
2-(Benzyl-2-acetamido-2-desoxy-3-O-β-D-glucopyranosyl)-D-
propionyl-L-Ala-(α-O-benzyl)-D-α-Glu NH₂ (IV) in kristallinem
Zustand mit einer Ausbeute von etwa 70%. Das gewünschte Glycopeptid
(V) erhält man durch katalytisches Hydrieren der Verbindung
der Formel IV in Eisessig in Gegenwart von Palladium-auf-
Kohlenstoff. Die Verbindung konnte nicht in kristallinem Zustand
erhalten werden und die sehr starke Hygroskopizität dieses
Produktes erlaubte keine zufriedenstellende Elementaranalyse.
Das Material ist jedoch dünnschichtchromatographisch (Kieselgel,
Propanol/Wasser-Mischung, 3/3 Volumen/Volumen) sowie papierchromatographisch
(n-Butanol/Essigsäure/Wasser, 5/1/2
Volumen/Volumen/Volumen) homogen.
Die Synthese wird unter Anwendung der im folgenden angegebenen
experimentellen Bedingungen durchgeführt.
Die Schmelzpunkte wurden in Kapillarröhrchen mit Hilfe einer
Büchi-Vorrichtung bestimmt und sind nicht korrigiert. Die Drehwerte
sind mit Hilfe eines Polarimeters
bestimmt worden. Die Infrarotspektren wurden mit einem
Spektrophotometer aufgenommen. Die Homogenität
der hergestellten Verbindungen wurden chromatographisch
auf Glasplatten, die mit Kieselgel mit einer
Dicke von 0,25 mm) beschichtet sind, untersucht, wobei die
Chromatogramme durch Verdampfen einer 50%igen Lösung von konzentrierter
Schwefelsäure in Alkohol und Erhitzen mit Hilfe einer
Heizeinrichtung (Epiradiateur) entwickelt wurden. Die Säulenchromatographien
erfolgten auf Kieselgel (0,063-0,200 mm).
Die Papierchromatogramme erfolgten nach der absteigenden Technik
und werden auf Whatmann®-Papier Nr. 1 durchgeführt. Die Elementaranalysen
erfolgten durch den "Service Central de Micro-
Analyse du Centre National de la Recherche Scientifique
(Thiais).
Man gießt eine Lösung von 157 mg Benzyl-2-acetamido-4,6-O-
benzyliden-3-O-(D-1-carboxyäthyl)-2-desoxy-β-D-glucopyranosid
(I) (0,33 mMol) in 5 ml einer Acetonitril/N,N-Dimethylformamid-
Mischung (2/1 Volumen/Volumen), die ein Äquivalent (0,33 mMol)
Triäthylamin enthält, in eine bei 0°C gehaltene Suspension von
84,3 mg N-Äthyl-5-phenylisoxazolium-3′-sulfonat
Reagens K nach Woodward) in 5 ml Acetonitril. Die Mischung wird
bei 0°C gerührt, bis man eine klare Lösung erhält (wozu etwa
eine Stunde und 30 Minuten erforderlich sind). Dann gibt man
eine Lösung von 114,4 mg (0,33 mMol) L-Ala-(γ-O-Benzyl)-D-α-Glu
NH₂-hydrochlorid (II) in 5 ml einer Acetonitril/N,N-Dimethylformamid-
Mischung (2/1 Volumen/Volumen), die ein Äquivalent
(0,33 mMol) Triäthylamin enthält, zu. Nach dem Rühren bei
Raumtemperatur über Nacht verdampft man die Lösungsmittel im
Vakuum und extrahiert den erhaltenen festen Rückstand gut
mit heißem Wasser, um die Nebenprodukte zu entfernen. Der Feststoff
wird abgesaugt, getrocknet und aus Äthanol kristallisiert
und man erhält 208 mg (82%) der Verbindung der Formel III
(Schema I).
Schmelzpunkt: 243°C bis 245°C.
Schmelzpunkt: 243°C bis 245°C.
[α] = -20° (c=0,5, N,N-Dimethylformamid)
IR-Spektrum: γ 3440, 3320 (NH), 3080, 3060 (Ph),
1740 (Ester), 1645 (Amid I), 1540 (Amid II),
740 und 690 cm-1 (Ph).
Analyse: C₄₀H₄₈N₄O₁₁
ber.: C 63,15, H 6,36, N 7,36%;
gef.: C 62,96, H 6,22, N 7,49%.
ber.: C 63,15, H 6,36, N 7,36%;
gef.: C 62,96, H 6,22, N 7,49%.
Man bringt 200 mg der Verbindung III in 15 ml 60%iger Essigsäure
in Suspension und erhitzt während einer Stunde auf
100°C. Nach dem Abkühlen der Lösung verdampft man die Essigsäure
im Vakuum, wobei man die letzten Spuren der Säure durch
Zugabe von Wasser und durch Eindampfen beseitigt, während man
die Wasserspuren durch gleichzeitige Destillation von Toluol
entfernt. Der erhaltene Rückstand wird über eine mit 15 g
Kieselgel beschickte Säule chromatographiert (wobei man mit
einer Chloroform/Methanol-Mischung 85/15 Volumen/Volumen
eluiert). Die reinen Fraktionen werden vereinigt und im
Vakuum eingedampft, wobei man einen Rückstand erhält, der
aus chromatographisch reiner Verbindung der Formel IV
(siehe Schema I) besteht (129 mg, 73%). Man kristallisiert
dieses Produkt aus einer Tetrahydrofuran/Petroläther-Mischung
um. Man erhält 115 mg (Ausbeute 65%) der Verbindung IV.
Schmelzpunkt 217°C bis 219°C.
Schmelzpunkt 217°C bis 219°C.
[α] = -1° (c=0,45, N,N-Dimethylformamid)
IR-Spektrum: γ 3450, 3230 (OH,NH), 1740 (Ester),
1645 (Amid I, breite Bande), 1545 (Amid II),
720 und 690 cm-1 (Ph).
Analyse: C₃₃H₄₄N₄O₁₁
ber.: C 58,92, H 6,59, N 8,32%;
gef.: C 58,78, H 6,50, N 8,25%.
ber.: C 58,92, H 6,59, N 8,32%;
gef.: C 58,78, H 6,50, N 8,25%.
Man hydriert 69 mg der Verbindung IV katalytisch in 10 ml
Eisessig in Gegenwart von 25 ml Palladium-auf-Kohlenstoff.
Nach Ablauf von 3 Stunden saugt man den Katalysator ab und
dampft das Filtrat im Vakuum ein. Man erhält in dieser Weise
die Verbindung der Formel V in Form eines stark hygroskopischen
glasigen Materials, das nicht kristallisiert werden kann.
Diese Verbindung ist dünnschichtchromatographisch (Kieselgel,
n-Propanol/Wasser 7/3 Volumen/Volumen) sowie papierchromatographisch
(n-Butanol/Essigsäure/Wasser, 5/1/2 Volumen/Volumen/
Volumen) rein: Rf=0,30. Die Entwicklung der Chromatogramme
erfolgt mit Hilfe des Sharon-Reagens (J. Biol. Chem. 239 (1964)
PC 2398) und mit Hilfe von Silbernitrat nach der Methode von
Trevelyan et al. (Nature, 166 (1950) 444). Dies bestätigt die
Hydrogenolyse der Glycosid-Funktion.
Eine mit einer sehr geringen Menge durchgeführte Untersuchung
zeigt die vollständige und augenblickliche Reaktion
mit einer Lösung von Diazomethan in Äther, was auf die Anwesenheit
einer freien Carbonsäure schließen läßt.
Nach der Hydrolyse erhält man als einzige, in der Aminosäure-
Analysevorrichtung nachweisbare Bestandteile Alanin, Glutaminsäure
und Muraminsäure.
Die schließlich erhaltene Verbindung (Mur-N-Ac-Ala-GluNH₂)
wird dann auf ihre Adjuvans-Wirkung untersucht.
Unter Anwendung der gleichen Verfahrensweise kann man ausgehend
von der Verbindung der Formel I N-Acetyl-muraminsäure-Dipeptid-
und -Tripeptid-Derivate herstellen, in denen man anstelle des
Hydrochlorids des Benzylesters von L-Alanyl-D-Isoglutamin
(Verbindung der Formel II des Schemas I, die weiter oben auch
als Verbindung e bezeichnet worden ist) das Hydrochlorid des
Benzylesters von [L-Alanyl-D-Isoglutaminyl]-(L),Z-(D)-meso-
Diaminopimelyl-(D)-amid (Verbindung k) bzw. das Hydrochlorid
des Benzylesters von [L-Alanyl-D-Isoglutaminyl]-(L),
Z-(D)-meso-Diaminopimelyl-(L),[D-Alanin],(D)-Amid (Verbindung h)
einsetzt.
Die erfindungsgemäßen Mittel besitzen eine starke Adjuvans-
Wirkung und sind frei von ernsten Nebenwirkungen, die die
therapeutische Anwendung der Mycobakterien und des Freund'schen
Adjuvans beschränken. Diese äußerst vorteilhaften Eigenheiten
ergeben sich durch die folgenden pharmakologischen Untersuchungen.
Man verabreicht weiblichen Meerschweinchen (Hartley) mit einem
Gewicht von 300 bis 350 g in die Sohle jeder der beiden Hinterpfoten
eine Emulsion, die aus gleichen Teilen des nicht kompletten
Freund'schen Adjuvans und einer Ovalbumin enthaltenden
physiologischen Lösung besteht (5 mg pro Meerschweinchen) und
das zu untersuchende Präparat. Man verwendet das nicht komplette
(das heißt keine Mycobakterien enthaltende) Freund'sche Adjuvans
(AIF) und das komplette Frend'sche Adjuvans (ACF)
als Vergleichssubstanzen.
Der Gehalt der Antiovalbumin-Antikörper wird 3 Wochen nach der
Injektion bestimmt. Der Gehalt der Antikörper ist in µg des
Antigen-Antikörper-Niederschlags am Äquivalenzpunkt pro ml Serum
angegeben.
Das Granulom (das in der folgenden Tabelle I mit dem Zeichen +
angegeben ist) wird 3 Wochen nach der Injektion beobachtet.
Die verzögerte Hypersensibilität gegenüber Ovalbumin wird
4 Wochen nach der Injektion an der Hautreaktion bestimmt. Sie
wird als Durchmesser des Erythems (E) in mm, die Induratio (I)
oder die Nekrose (N) 48 Stunden nach der subkutanen Injektion
von 10 µg oder 100 µg Ovalbumin angegeben.
Die in der folgenden Tabelle angegebenen Ergebnisse
verdeutlichen die bemerkenswerte Adjuvans-Aktivität der
erfindungsgemäßen Präparate.
Die in der obigen Tabelle angegebenen pharmakologischen Untersuchungen
zeigen, daß die Anwesenheit einer meso-DAP-Gruppe
in der an den Zuckerrest der N-Acyl-muraminsäure, ob diese
nun als solche vorliegt oder Teil eines längeren Glykans
bildet, gebundene Peptid-Gruppe nicht wichtig ist für die
Aufrechterhaltung der Adjuvans-Aktivität der fraglichen
Peptidglykan-Fragmente.
Man erhält erfindungsgemäß so mit Adjuvans-Substanzen, die zur
Steigerung der Wirksamkeit von Impfstoffen bakteriellen oder
viralen Ursprungs, insbesondere wenn sie schwache Immunogene
darstellen, verwendet werden können. Sie können insbesondere dafür
eingesetzt werden, die Immunisierung des Wirts (menschliche
Patienten oder Tiere) gegen Bakterien- oder Virus-Infektionen,
gegen Tumorantigene und gegen Protozoenantigene etc. zu begünstigen.
Sie sind ebenfalls in wirksamer Weise zur Herstellung
von Serum verwendbar. Sie können mit dem Antigen oder den
genannten Impfstoffen in pharmazeutisch verträglichen, sterilen
Wasser-Öl-Emulsionen verabreicht werden.
Zum Beispiel können die erfindungsgemäßen Substanzen in dem
nicht kompletten Freund'schen Adjuvans oder in einem aus
8,5 Teilen Hexadecan, 1,5 Teilen Sorbitandilaurat (das unter
der Handelsbezeichnung Arlacel erhältlich ist) oder Glycerinmonooleat
und 10 Teilen isotonischer Lösung suspendiert werden.
Es ist ferner festzuhalten, daß die erfindungsgemäßen Substanzen
bei geeigneten Verwendungsbedingungen ihre Adjuvans-Aktivität
selbst dann entfalten, wenn sie zu dem in Salzlösung gelösten
Antigen zugesetzt werden.
Es ist schließlich zu bemerken, daß diese Substanzen in Form
typischer Impfstoffzusammensetzungen verabreicht werden
können, die intramuskulär, intradermal oder subkutan oder
auch mit der Impflanzette verabreicht werden.
Claims (2)
1. N-Acyl-muraminsäurederivate der folgenden Formel
in derR₁ einen L-Alanyl-, L-Seryl- oder Glycylrest und
R₂ L-Lysin oder einen β-Hydroxy- oder L-Meso-alphaepsilon- diamino-pimelinsäurerest darstellt und, wenn R₂ eine Diaminosäure ist, über eine Peptidbindung mit einer L-Alanin- oder D-Alanin-aminosäure verknüpft sein kann und
Ac eine Acetyl- oder Glycolylgruppe bedeutet.
R₂ L-Lysin oder einen β-Hydroxy- oder L-Meso-alphaepsilon- diamino-pimelinsäurerest darstellt und, wenn R₂ eine Diaminosäure ist, über eine Peptidbindung mit einer L-Alanin- oder D-Alanin-aminosäure verknüpft sein kann und
Ac eine Acetyl- oder Glycolylgruppe bedeutet.
2. Impfstoff enthaltend ein N-Acyl-muraminsäurederivat
nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet,
daß das N-Acyl-muraminsäurederivat zusammen mit
einem immunogenen Mittel und mit einer flüssigen
injizierbaren Zusammensetzung vorliegt.
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Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
FR7337806A FR2248025A2 (en) | 1973-10-23 | 1973-10-23 | Vaccine compsns. - contg. N-acyl muramic acid deriv. as adjuvant |
FR7422909A FR2292486A1 (fr) | 1974-07-01 | 1974-07-01 | Adjuvants immunologiques solubles dans l'eau, notamment pour vaccins, obtenus a partir de microbacteries et autres micro-organismes |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2450355A1 DE2450355A1 (de) | 1975-05-28 |
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Families Citing this family (61)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4186194A (en) * | 1973-10-23 | 1980-01-29 | Agence Nationale De Valorisation De La Recherche (Anvar) | Water soluble agents effective as immunological adjuvants for stimulating, in the host the immune response to various antigens and compositions, notably vaccines containing said water soluble agents |
FR2288527A2 (fr) * | 1974-10-22 | 1976-05-21 | Anvar | Compositions contenant de la n-acetyl-muramyl- l-alanyl - d-isoglutamine ou de l'acide n-acetyl-muramyl-l-alanyl - d-glutamique, exemptes d'huile et ayant des proprietes adjuvantes |
FR2326930A1 (fr) * | 1975-10-09 | 1977-05-06 | Anvar | Agents hydrosolubles depresseurs non specifiques des reponses immunitaires |
CH613709A5 (en) * | 1975-12-10 | 1979-10-15 | Ciba Geigy Ag | Process for the preparation of glucosamine derivatives |
FR2343482A1 (fr) * | 1976-03-10 | 1977-10-07 | Anvar | La 2- (2-acetamido-2-deoxy-3-o-d-glucopyranosyl) -d-propionyl-l-seryl-d-isoglutamine et medicaments la contenant |
US4574058A (en) * | 1978-02-24 | 1986-03-04 | Ciba-Geigy Corporation | Antigen derivatives and processes for their preparation |
US4397844A (en) * | 1978-02-24 | 1983-08-09 | Ciba-Geigy Corporation | Antigen derivatives and processes for their preparation |
CA1138436A (en) * | 1978-02-24 | 1982-12-28 | Gerhard Baschang | Process for the manufacture of novel antigens |
JPS54130516A (en) * | 1978-03-31 | 1979-10-09 | Yuuichi Yamamura | Acyllnnacetylmuramylpeptide derivativeeantigen combination |
HU186585B (en) * | 1978-05-18 | 1985-08-28 | Ciba Geigy Ag | Process for producing new muramil-peptide derivatives |
FR2428050A1 (fr) * | 1978-06-05 | 1980-01-04 | Anvar | Oligomeres de composes du type muramyl-peptide et medicaments les contenant |
FR2446292A1 (fr) * | 1979-01-12 | 1980-08-08 | Anvar | Muramyl-peptides fixes sur polymeres peptidiques et medicaments les contenant |
FI75578C (fi) * | 1979-07-25 | 1988-07-11 | Ciba Geigy Ag | Analogifoerfarande foer framstaellning av farmakologiskt verkande lipofila fosfatidylmuramylpeptider. |
US4406889A (en) * | 1980-02-15 | 1983-09-27 | Ciba-Geigy Corporation | Derivatives of aldohexoses, intermediates, processes for their manufacture, preparations containing such compounds, and their use |
GR78246B (de) * | 1981-01-23 | 1984-09-26 | Ciba Geigy Ag | |
AU549856B2 (en) * | 1981-02-27 | 1986-02-20 | Otsuka Pharmaceutical Factory, Inc. | Glycoprotein inhibiting toxoplasma multiplication |
JPS57144225A (en) * | 1981-03-04 | 1982-09-06 | Tadao Kokubu | Antigenetic preparation for treating nonspecific allergic diseases and its preparation |
JPS58126797A (ja) * | 1982-01-22 | 1983-07-28 | Dainippon Pharmaceut Co Ltd | ジサツカライドトリペプチド及びジサツカライドテトラペプチドの製法 |
FR2523154A1 (fr) * | 1982-03-09 | 1983-09-16 | Fabre Sa Pierre | Procede de preparation de proteoglycanes immunostimulants inducteurs d'interferon, proteoglycanes obtenus et medicaments les contenant |
JPS58198496A (ja) * | 1982-05-14 | 1983-11-18 | Dainippon Pharmaceut Co Ltd | グルコサミニルムラミルペプチド誘導体 |
FR2529463B1 (fr) * | 1982-07-05 | 1986-01-10 | Centre Nat Rech Scient | Procede et dispositif pour l'encapsulation dans les erythrocytes d'au moins une substance a activite biologique, notamment des effecteurs allosteriques de l'hemoglobine et erythrocytes ainsi obtenus |
US4522811A (en) * | 1982-07-08 | 1985-06-11 | Syntex (U.S.A.) Inc. | Serial injection of muramyldipeptides and liposomes enhances the anti-infective activity of muramyldipeptides |
FR2546756B1 (fr) * | 1983-06-03 | 1985-11-29 | Centre Nat Rech Scient | Nouveaux derives immunostimulants, leur preparation et leur application comme medicament |
US4772466A (en) * | 1983-08-22 | 1988-09-20 | Syntex (U.S.A.) Inc. | Vaccines comprising polyoxypropylene-polyoxyethylene block polymer based adjuvants |
US4606918A (en) * | 1983-08-22 | 1986-08-19 | Syntex (U.S.A.) Inc. | Polyoxypropylene-polyoxyethylene block polymer based adjuvants |
US4770874A (en) * | 1983-08-22 | 1988-09-13 | Syntex (U.S.A.) Inc. | Polyoxypropylene-polyoxyethylene block polymer based adjuvants |
US4933179A (en) * | 1983-08-22 | 1990-06-12 | Syntex (U.S.A.) Inc. | Feline leukemia virus antigen vaccines |
US5171568A (en) * | 1984-04-06 | 1992-12-15 | Chiron Corporation | Recombinant herpes simplex gb-gd vaccine |
CA1261264A (en) * | 1984-11-29 | 1989-09-26 | Shigeo Suzuki | Immunopotentiating agents and method |
EP0192609A3 (de) * | 1985-02-20 | 1988-04-27 | Ciba-Geigy Ag | Acylierte Hexosederivate und Verfahren zu ihrer Herstellung |
US5554372A (en) * | 1986-09-22 | 1996-09-10 | Emory University | Methods and vaccines comprising surface-active copolymers |
US4895835A (en) * | 1987-11-20 | 1990-01-23 | Nisshin Oil Mills, Ltd. | Muramyl peptide derivatives and use thereof |
US5149529A (en) * | 1988-04-08 | 1992-09-22 | Board Of Trustees Of Leland Chiron Corporation | Compositions and treatment for herpes simplex |
US5208022A (en) * | 1988-05-19 | 1993-05-04 | State University Of New York (Suny) | Non-malignant cells coupled to adjuvants and their use in a method to induce anti-tumor immunity |
US5416070A (en) * | 1988-07-08 | 1995-05-16 | Immunotherapeutics, Inc. | Composition for macrophage activation |
US4950645A (en) * | 1988-07-08 | 1990-08-21 | Immunotherapeutics, Inc. | Composition for macrophage activation |
EP0538762B1 (de) * | 1991-10-22 | 1996-04-10 | Kao Corporation | Haarkosmetikum |
US5462735A (en) * | 1993-06-10 | 1995-10-31 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture | Pasteurella haemolytica subunit vaccine containing capsular polysaccharide and muramyl dipeptide |
GB9320820D0 (en) * | 1993-10-08 | 1993-12-01 | Biokine Tech Ltd | Compounds for medicinal use |
US6156319A (en) * | 1994-07-25 | 2000-12-05 | The Trustees Of The University Of Pennsylvania | Soluble herpesvirus glycoprotein complex vaccine |
US6117432A (en) * | 1995-04-20 | 2000-09-12 | Societe D'exploitation De Produits Pour Les Industries Chimiques (S.E.P.P.I.C.) | Therapeutic composition comprising an antigen or an in vivo generator of a compound comprising an amino acid sequence |
FR2733151B1 (fr) | 1995-04-20 | 1997-05-23 | Seppic Sa | Composition therapeutique comprenant un antigene ou un generateur in vivo d'un compose comprenant une sequence d'acides amines |
US6689370B1 (en) | 1995-04-20 | 2004-02-10 | Societe D'exploitation De Produits Pour Les Industries Chimiques (S.E.P.P.I.C.) | Therapeutic composition comprising an antigen or an in vivo generator of a compound comprising an amino acid sequence |
US6376541B1 (en) | 1998-11-06 | 2002-04-23 | Alcon Manufacturing, Ltd. | Upregulation of endogenous prostaglandins to lower intraocular pressure |
EP1670508B1 (de) | 2003-02-28 | 2012-10-24 | Trustees Of The University Of Pennsylvania | Zusammensetzungen, verfahren und kits für pockenvirus-untereinheits-vakzine |
US7112564B2 (en) * | 2003-04-09 | 2006-09-26 | Zylacta Corporation | Biodegradable glucosaminemuramyl peptides for apoptosis modulation |
CA2538418A1 (en) * | 2003-09-17 | 2005-04-21 | Eli Lilly And Company | Synthetic polysaccharide antigens for immunological intervention in disease |
JP2008522951A (ja) * | 2004-07-19 | 2008-07-03 | ベイラー・カレツジ・オブ・メデイシン | サイトカインシグナル伝達調節物質の調節および免疫療法のための応用 |
AU2005332599B2 (en) * | 2005-06-08 | 2012-02-16 | Yisheng Biopharma (Singapore) Pte. Ltd. | Polyinosinic acid-polycytidylic acid-based adjuvant |
CN101501055B (zh) * | 2005-06-23 | 2016-05-11 | 贝勒医学院 | 负性免疫调节因子的调节和免疫疗法应用 |
US20070166239A1 (en) * | 2006-01-13 | 2007-07-19 | Haixiang Lin | Mucosal immunogenic substances comprising a polyinosinic acid - polycytidilic acid based adjuvant |
US20070166800A1 (en) * | 2006-01-13 | 2007-07-19 | Haixiang Lin | Immunogenic substances comprising a polyinosinic acid-polycytidilic acid based adjuvant |
WO2008116347A1 (en) | 2007-03-26 | 2008-10-02 | General Regeneratives Limited | Methods for promoting protection and regeneration of bone marrow using cxcl9 and anti-cxcl9 antibodies |
JP2011505144A (ja) * | 2007-11-30 | 2011-02-24 | ベイラー カレッジ オブ メディシン | 樹状細胞ワクチン組成物およびその使用 |
RU2478644C2 (ru) * | 2008-11-11 | 2013-04-10 | Общество С Ограниченной Ответственностью "Корус Фарм" | Способ производства фармакологически приемлемой смеси веществ, содержащей низкомолекулярные компоненты пептидогликана клеточной стенки грамотрицательных бактерий и обладающей иммуностимулирующей активностью |
WO2011038002A1 (en) | 2009-09-22 | 2011-03-31 | Yale University | Immunogenic epitopes as targets for universal cancer vaccines |
EP2741785B1 (de) | 2011-07-12 | 2018-09-05 | Philadelphia Health and Education Corporation | Neuer clostridium-difficile-dna-impfstoff |
WO2015116178A1 (en) | 2014-01-31 | 2015-08-06 | Thomas Jefferson University | Fusion proteins for modulating regulatory and effector t cells |
EP2951199A4 (de) | 2013-01-31 | 2016-07-20 | Univ Jefferson | Fusionsproteine zur modulation von regulatorischen und effektor-t-zellen |
US10610564B2 (en) | 2015-02-26 | 2020-04-07 | Stc.Unm | IRGM and precision autophagy controls for antimicrobial and inflammatory disease states and methods of detection of autophagy |
WO2020140007A1 (en) | 2018-12-28 | 2020-07-02 | University Of Rochester | Gene therapy for best1 dominant mutations |
Family Cites Families (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE1155134B (de) * | 1958-06-07 | 1963-10-03 | Hoechst Ag | Verfahren zur Herstellung von Blutplasmaersatzmitteln aus Kollagenabbauprodukten |
BE791472A (fr) * | 1971-11-19 | 1973-05-16 | Anvar | Adjuvants immunologiques solubles dans l'eau, notamment pour vaccins, obtenus a partir de mycobacteries et micro-organismes apparentes, et leur procede d'obtention |
US4186194A (en) * | 1973-10-23 | 1980-01-29 | Agence Nationale De Valorisation De La Recherche (Anvar) | Water soluble agents effective as immunological adjuvants for stimulating, in the host the immune response to various antigens and compositions, notably vaccines containing said water soluble agents |
DE2434231A1 (de) * | 1974-07-16 | 1976-02-05 | Thiemann Chem Pharm Fab | Aromatische n-lost-verbindungen, verfahren zu ihrer herstellung und n-lost-verbindungen enthaltende arzneimittel |
IL48325A (en) * | 1974-10-22 | 1979-05-31 | Anvar | Immunological-free adjuvant compositions containing n-acetyl muramyl-alanyl-d-isoglutamine or n-acetyl-muramyl-l-alanyl-d-glutamicn acid |
FR2321896A1 (fr) * | 1975-08-29 | 1977-03-25 | Anvar | Agents adjuvants immunologiques actifs en solution aqueuse |
CH613709A5 (en) * | 1975-12-10 | 1979-10-15 | Ciba Geigy Ag | Process for the preparation of glucosamine derivatives |
US4082735A (en) * | 1976-04-26 | 1978-04-04 | Syntex (U.S.A.) Inc. | Novel immunological adjuvant compounds and methods of preparation thereof |
US4082736A (en) * | 1976-04-26 | 1978-04-04 | Syntex (U.S.A.) Inc. | Novel immunological adjuvant compounds and methods of preparation thereof |
FR2358159A1 (fr) * | 1976-07-16 | 1978-02-10 | Anvar | Le diamide de l'acide 2-(2-acetamido-2-deoxy-3 - o-d-glucopyranosyl) - d-propionyl-l-alanyl-d-glutamique et medicaments le contenant |
-
1974
- 1974-10-22 US US05/516,991 patent/US4186194A/en not_active Expired - Lifetime
- 1974-10-23 GB GB45807/74A patent/GB1496332A/en not_active Expired
- 1974-10-23 DE DE19742450355 patent/DE2450355A1/de active Granted
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-
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-
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