DE2344886C3 - Synthetisch modifizierte Derivate des basischen Trypsin-Kalllkrein-Inhibitors aus Säugetierorganen und Verfahren zu ihrer Herstellung - Google Patents
Synthetisch modifizierte Derivate des basischen Trypsin-Kalllkrein-Inhibitors aus Säugetierorganen und Verfahren zu ihrer HerstellungInfo
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Description
IO
in der X für die Zahl O bis 10 steht, Y Wasserstoff
oder einen geradkettigen oder verzweigten In verschiedenen Säugerorganen, besonders in
Alkylrest mit 1 bis 5 Kohlenstoffatomen, der ge- i5 Rinderlunge, ist ein Trypsin-Kallikrein-Inhibitor entgebenenfalls
durch eine Carboxyl-, Hydroxyl- haken, der auf verschiedene Weise hieraus isoliert
•der Carbonamidgruppe substituiert ist, wobei werden kann und der, in reiner Form, seit über
<er Rest 15 Jahren als polyvalenter Proteinasen- und Esterasen-NH—
CH — CO Inhibitor mit großem Erfolg als Therapeutikum bei I ao Enzymentgleisung eingesetzt wird.
γ . Dieser Trypsin-Kallikrein-Inhibitor ist ein basisches
γ . Dieser Trypsin-Kallikrein-Inhibitor ist ein basisches
Polypeptid mit einem Molekulargewicht von 6500
auch den Prolin-Rest bedeuten kann, und wobei und einem isoelektrischen Punkt von etwa 10,5. Er
Y, falls X = 0 ist, besteht aus einer einzigen Peptidkette von 58 Amino-
nxj nnrrti a5 sä^11» deren Primärstruktur aus Biochemical and
— CHjCOOH Biophysical Research Communication, Bd. 20, S. 463
oder bis 468 (1965) bekannt ist und die durch 3 Disulfid-
— CH, — CH1 — COOH brücken vernetzt ist.
Der hohe therapeutische Wert des Inhibitors
bedeutet und falls X für die Zahlen 1 bis 10 steht, 30 beruht darin, verschiedene Proteinasen und Esteirasen,
zumindest eine Seitenkette Y wie Trypsin, Chymotrypsin, Kathepsin, Plasmin und
Kallikrein zu hemmen. Hierzu werden, hauptsächlich
CH1 COOH intravenös, bisweilen erhebliche Mengen des Inhi-
oder bitors injiziert. Hierbei ist zu beobachten, daß der
— CH2 — CH1 — COOH 35 Inhibitor nach relativ kurzer Zeit bevorzugt in der
Niere des Versuchstieres oder des Menschen gespei-
darstellt, worin weiterhin W —OH bedeutet, chert wird. Es wird heute angenommen, daß dies
doch bei Anwesenheit von mindestens zwei darauf beruht, daß das stark basische Inhibitormole-Carboxylgruppen
in den Seitenketten auch kül auf unspezifische Weise an saure Mukopoly-
40 saccharide oder Nukleinsäuren gebunden wird. Ledig-
— NH1, NH — CH1, Hch 1,5% des nativen Inhibitors werden mit dem
NH CH, OCH Όήη ausgeschieden; um eine Ausscheidung der über-
" ' wiegenden Restmenge zu ermöglichen, wird vom
°°er Organismus zuerst je eine amino- und carboxyl-
OC2H, 45 ständige Aminosäure (Arginin bzw. Alanin) abgebaut,
der Inhibitor aggregiert zu einer höher molebedeuten kann. kularen Form und wird dann erst sehr langsam aus
2. Verfahren zur Herstellung von Verbindungen der Niere ausgeschwemmt.
nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß Versuche mit chemisch modifiziertem Inhibitor,
man den Trypsin-Kallikrein-Inhibitor, dessen fünf so bei dem über alle freien Aminogruppen eine Maleoyl-
primäre Aminogruppen durch sauer leicht abspalt- gruppe eingeführt worden war, und der sich als inak-
bare Schutzgruppen geschützt sind, mit Amino- tiv bewies, haben gezeigt, daß diese Substanz, deren
säuren oder Peptiden der allgemeinen Formel II, isoelektrischer Punkt wesentlich erniedrigt war, sehr
NH1-CH-CO- /NH-CH-CO-\ W' v'e* rascner aus der Niere ausgeschwemmt wurde
ι [ι \ m\ 55 und mit dem Urin ausgeschieden werden konnte.
γ \ Y / Em biologisch V°U wirksamer Inhibitor, der einen
^ lx niedrigeren LP. aufweist, wäre deshalb von erheb-
in der Y und X die angegebene Bedeutung haben, lichem Wert. Es ist nun prinzipiell möglich, durch
vorhandene Carboxylgruppen in Y jedoch als Acylierung der freien Aminogruppen die positiven
tert.-Butylester vorliegen, W' tert-Butoxy bedeu- 60 Ladungen zu verringern und so den isoelektrischen
tet, doch bei Anwesenheit von mindestens 2 tert.- Punkt zu senken. Bei allen diesen Umsetzungen wird
Butylestergruppen in den Seitenketten auch aber ein in der Aktivität zumindest abgeschwächtes,
wenn nicht sogar inaktives Reaktionsprodukt erhalten,
— NH1, — NH — CH,, da die 5 Aminogruppen des Moleküls 4 gleichberech-NH
C1H , OCH 6j listen «-Aminogruppen des Lysins und 1 a-Amino-
, ' * gruppe zuzuordnen sind, andererseits aber das an
otler der Pos. 15 befindliche Lysin entscheidend für die
-OC1H8 inhibitorische Wirkung der Substanz ist. Eine Sub-
mtuierung der Aminograppe des Lysin 15 bewirkt bei Anwesenheit von mindestens 2 tert-Butylester-
dcn.Verlust.ta: biologischen Aktivität gruppen m den Seitenketten auch
Überraschenderweise wurde nun gefunden, daß
durch Verlängerung der 5 vorhandenen Carboxyl- -NH — NH-CH
gruppen mit sauren Peptiden die Aktivität des Inhi- 5 *' _ „ _ *
bitors nur wenig oder nicht verändert wird, dagegen Nti — MH5. —OCH1
aber durch Senkung des isoelektrischen Punktes der oder
modifizierte Inhibitor viel rascher aus der Niere aus- OC1H
geschieden wird als das nicht modifizierte Molekül. S
Gegenstand der Erfindung sind somit halbsynthe- io bedeuten kann, in Gegenwart von 1-Hydroxybenzo-
tisch hergestellte Derivate des basischen Trypsin- triazol und Dicyclohexylcarbodiimid umsetzt und
Kallikrein-Inhibitors aus Säugerorganen, dadurch anschließend die Schutzgruppen sauer abspaltet
gekennzeichnet, daß die 5 vorhandenen Carboxyl- Um den Trypsin-Kallikrein-Inbibitor an seinen
gruppen des Pephdmoleküls amidarüg durch Peptid- Carboxylgruppen modifizieren zu können, werden
reste der allgemeinen Formel I verlängert sind, 15 zweckmäßig die Aminogruppen durch sauer leicht
NH-CH-CO- /NH CU cn \ w abspaltbare Aminoschutzgruppen, wie z.B. tert-
-Nn γη «-υ /jnh-ch-cu-\ W Alkoxycarbonylgruppen blockiert Die Einführung
' I ' ) der häufig verwendeten Boc-Gruppen gelingt auf
* \ Y Ix verschiedenen Wegen. Sowohl mit Boc-azid als auch
ao mit Boc-activestern, wie z. B. dem p-Nitrophenyl-
in der X für die Zahl O bis 10 steht, Y Wasserstoff ester oder dem N-Hydroxysuccinimidester lassen sich
oder einen geradkettigen oder verzweigten Alkylrest die Boc-Gruppen einführen. In allen Fällen entsteht
mit 1 bis 5 Kohlenstoffatomen, der gegebenenfalls ein papierelektrophoretisch einheitliches Produkt,
durch einen Carboxyl-, Hydroxyl- oder Carbonamid- Diese N-geschützten Verbindungen werden in An-
gruppe substituiert ist, wobei der Rest a5 Wesenheit von 1-Hydroxy-benzotriazol und Dicyclohexylcarbodiimid
mit einer Verbindung der allgemei-
NH — CH — CO nen Formel II in Dimethylformamid oder Dimethyl-
I acetamid umgesetzt. Mit Trifluoressigsäure oder
Y HCl/Eisessig werden die Schutzgruppen abgespalten
30 und das Rohprodukt entweder dialysiert oder über
auch den Prolin-Rest bedeuten kann, und wobei Y, Sephadex G 25®, einem vernetzten Dextrangel, chro-
falls X = O ist, matographiert. Es empfiehlt sich das dialysierte Produkt
zur weiteren Reinigung ebenfalls über Sepha-
— CHgCOOH dex G 25® zu chromatographieren oder aber einer
oder 35 Verteilungschromatographie an Sephadex LH 20®,
— CH2 — CH2 — COOH einem vernetzten alkylierten Dextrangel, zu unter
werfen.
bedeutet und falls X für die Zahlen 1 bis 10 steht, Um den isoelektrischen Punkt des Trypsin-Kalli-
zumindest eine Seitenkette Y krein-Inhibitors zu senken, muß der ankondensierte
40 Aminosäure- oder Peptidrest mindestens zwei Carb-
— CH2 — COOH oxylgruppen besitzen. Unter den natürlich vorkom«
oder menden Aminosäuren kommen nur Asparaginsäure
-CH2-CH2-COOH und Glutaminsäure in Frage. Bei Dipeptiden und
höheren Peptiden ist es möglich, neben den sauren
darstellt, worin weiterhin W — OH bedeutet, doch 45 Aminosäuren auch andere aliphatische Aminosäuren,
bei Anwesenheit von mindestens zwei Carboxyl- wie z. B. Glycin, Alanin, Leucin, Valin, Isoleucin,
gruppen in den Seitenketten auch Serin, Threonin, Asparagin, Glutamin oder Prolin
einzubauen. Vorzugsweise werden aber auch bei -NH2 NH — CH9 höheren Peptiden Asparaginsäure und Glutamin-
jqjj Q jj OCH 5° säure als Peptidbausteine verwendet. Sund zwei oder
25 3 mehr Carboxylgruppen in dem anzukondensierenden
oder Peptid in Form der tert-Butylester vorhanden, kön-
OC2H6 nen weitere Carboxylgruppen in Form von Amiden
oder Alkylestern vorliegen. Nach der sauren Behandbedeuten kann, sowie ein Verfahren zur Herstellung 55 lung mit Trifluoressigsäure oder HCl/Eisessig bedieser
Peptide, das dadurch gekennzeichnet ist, daß kommt man auf diese Weise Trypsün-Inhibitoren,
man den Trypsin-Kallikrein-Inhibitor, dessen fünf die neben einem niedrigen isoelektrischen Punkt zuprimäre
Aminogruppen durch sauer leicht abspalt- sätzlich Amidgruppen oder Alkylestergruppcn bebare
Schutzgruppen geschützt sind, mit Aminosäuren sitzen.
oder Peptiden der allgemeinen Formel II, 60 Zum Nachweis der Abnahme des !basischen und
Zunahme des sauren Charakters bei den erfindungs-
NH2-CH-C0-/NH-CH-C0-\ W' gemäß hergestellten Inhibitor-Derivaten wurde der
III Ι (Π) native Inhibitor und modifizierte Präparate der
γ \ Y Jx Mikrozonen-elektrophorese auf Celluloseacetat-Folie
65 im Diäthyl-Barbituratpuffer von pH 8,(5 unterworfen.
in der Y und X die angegebene Bedeutung haben, Der native Inhibitor wandert hierbei zur Kathode,
vorhandene Carboxylgruppen in Y jedoch als tert,- während die modifizierten Präparate je nach modi-Butylester
vorliegen, W' tert.-Butoxy bedeutet, doch fizierender Gruppe mehr oder weniger weit zur
Anode wandern. Für den nativen Inhibitor beträgt sammengebracht, eine bestimmte Extinktion bei
die kathodische Wanderungsstrecke etwa 3 mm. Für 405 πιμ bewirkt, mit steigenden Mengen des Inhidie
modifizierten Präparate, wobei die modifizierende bitors im konstanten Volumen zusammen inkubiert
Gruppe in den einzelnen Fällen eine, zwei, drei oder wird. Nach 30 Minuten Vorinkubation wird die
vier saure Aminosäuren enthält, betragen die an- 5 Standardmenge BAPA zugesetzt. Die Reaktion wird
odischen Wanderungsstrecken etwa 1,5 mm, 8 mm, nach 30 Minuten BAPA-InKubation bei 37°C durch
13,5 mm und 17 mm. Zusatz von verdünnter Essigsäure gestoppt und die
Die Modifizierung des Inhibitors führt demnach aufgetretene Gelbfärbung gemessen. Trägt man in
zu Präparaten, deren basischer Charakter vermin- einem Diagramm die zugesetzten Inhibitormengen
dert und saurer Charakter vermehrt ist. Die Modi- io gegen die entsprechenden Extinktions-Werte auf, so
fizierung nut einer Gruppe, die eine einzige saure erhält man eine Kurve, aus der leicht ermittelt werden
Aminosäure enthält, führt bereits zu einer solchen kann, welche Inhibitormenge die stets konstant zuErniedrigung
des isoelektrischen Punktes, daß bei gesetzte Trypsinmenge in ihrer Wirkung um die Hälfte
pH 8,6 der saure Charakter geringfügig den basischen zu hemmen imstande war. Da bekannt war, welche
Charakter überwiegt 15 Aktivität bzw. Menge Trypsin zugesetzt wurde, kann
Die aus den Dissoziationskonatanten der funktio- zurückgerechnet werden, wieviel Milligramm des
nellen Gruppen des Inhibitors und seiner erfindungs- Inhibitors wieviel Trypsin zu hemmen imstande waren.
gemäß hergestellten Derivate schätzbaren isoelek- In diesem Test sind etwa 1 mg des modifizierten
falschen Punkte betragen für den nativen Inhibitor Inhibitors in der Lage, etwa 3 mg Trypsin zu inaktietwa
10,5 und für modifizierte Präparate, wobei die »o vieren.
modifizierte Gruppe eine, zwei, drei oder vier saure Der erfindungsgemäß modifizierte Trypsin-Kalli-
Aminosäuren enthält, etwa 8,6, 5,1, 4,8 und 4,6. krein-Inhibitor dient als Arzneimittel bei Blutungen
Zum fluoreszenz-mikroskopischen Nachweis der als Folge einer überschießenden Fibrinolyse; so z. B.
Nierenspeicherung von Inhibitor und modifiziertem in der Chirurgie bei Prostatablutungen oder Wundinhibitor
wurden jeweils 3 Kaninchen mit einem »5 heilungsstörungen, in der Inneren Medizin als Zusatz-Gewicht
von 2,5 kg jeweils zur gleichen Zeit mit therapie bei Hämophilen, in der Gynäkologie bei
20 mg nativem bzw. 20 mg erfindungsgemäß modi- Placenta praevia, intrauterinem Fruchttod und atofizierten
Inhibitor intravenös injiziert. Nach 2 Tagen nischem Nachbluten und zur Prophylaxe bei Operawurden
die Nieren entnommen, geschnitten und mit tionen an parenchymatösen Organen und bei Prostaeinem
nuoreszeinmarkierten y-Globulin-Präparat 3° tectomien und Fettembolien.
inkubiert, das aus dem Antiserum von Kaninchen Die neuen erfindungsgemäßen Arzneimittel werden
gewonnen worden war, welche vorher mehrere Male in steriler isotonischer Lösung intravenös injiziert
mit Inhibitor und Adjuvans nach Freund zur oder im Dauertropf nach Verdünnen in Infusions-Steigerung
der Antikörperbildung geimpft worden lösungen wie z. B. physiologischer Kochsalzlösung
waren. 35 gegeben.
Hierbei bot sich unter dem Fluoreszenz-Mikroskop
folgendes Bild: Beispiel 1
folgendes Bild: Beispiel 1
Alle Nierenschnitte der mit dem nativen Inhibitor Trypsin-Kallikrein-Inhibitor-penta-L-glutaminsäure
behandelten Tiere zeigten über das gesamte Gesichtsfeld verteilt große, zum Teil konfluierende fluores- 4° Zu einer Suspension von 900 mg Pcnta-Boc-Trypzierende
Stellen, während die Schnitte aus den Nieren sin-Kallikrein-Inhibitor, 386 mg (1,3 mMol) HCl-H-derjenigen
Tiere, die den modifizierten Inhibitor GIu(OBUt)-OBu4, 175 mg (1,3 mMol) HOBt und
erhalten hatten, meistens keine Fluoreszenz zeigten 0,17 ml (1,3 mMol) N-Äthylmorpholin in 10 ml Di-
und nur in einigen wenigen Fällen kleine leuchtende methyiformamid gibt man bei O0C 284 mg DCC und
Stellen enthielten. Dieser Versuch zeigte auf eindeu- 45 rührt 1 Stunde bei 0° C und 24 Stunden bei Raumtige
Weise, daß der Inhibitor, dessen isoelektrischer temperatur. Der Niederschlag wird abgesaugt und
Punkt gesenkt ist, weitaus weniger bis gar nicht in das Filtrat eingeengt. Der Rückstand wird mit Äther
der Niere gespeichert wird. verrieben und getrocknet. Ausbeute 1,39 g.
In Vorversuchen wurde durch Doppeldiffusion Die so gewonnene Substanz wird in 10 ml Trifluornoch
festgestellt, daß das verwendete Antikörper- 50 essigsäure gelöst. Man läßt 30 Minuten bei Raum-Präparat
nicht nur gegen den nativen Inhibitor, son- temperatur stehen und engt anschließend im Vakuum
dem auch dessen erfindungsgemäße Umsetzungspro- ein. Der Rückstand wird mit Äther verrieben und
dukte reagierte. abgesaugt. Ausbeute 1,17 g.
Zur Aktivitätsbestimmung der modifizierten Tryp- Die so gewonnene Substanz wird gegen Wasser
sin-Kallikrein-Inhibitoren wurde wie folgt verfahren: 55 dialysiert und gefriergetrocknet. Ausbeute 710,3 mg.
Die Inhibitorlösung wird mit einer festgelegten 325 mg der dialysierten und gefriergetrockneten
Menge (entsprechend einer bestimmten Aktivität) Substanz werden an Sephadex LH 20® (100 χ 2,5-cm-
Trypsinlösung vorinkubiert; nach kurzer Zeit setzi Säule) in dem System Eisessig/Butanol/Wasser
man ein geeignetes Trypsinsubstrat, z. B. N-Benzoyl- (2:4: 20) Chromatographien. Es werden 228 mg
arginin-4-nitroanilid (BAPA) zu und mißt nach 60 einer reinen Fraktion isoliert.
einiger Zeit und nach Abstoppen der Reaktion die Aminosäureanalyse: Verhältnis GIy zu GIu = 6:8,5
durch nicht gehemmtes Trypsin bewirkte Abspaltung (theoret. 6 : 8).
von p-Nitroanilin bedingte Gelbfärbung quantitativ
von p-Nitroanilin bedingte Gelbfärbung quantitativ
am Photometer bei geeigneter Wellenlänge, z. B. B e i s ρ i e 1 2
40I mV"· 1 Auu· ^u λ η · 65 Trypsin-Kallikrein-Inhibitor-penta-(Glu-Glu-OH)
Im einzelnen wird hierbei so verfahren, daß eine
Trypsinmenge (Trypsin, kristallisiert, reinst), die, 900 mg Penta-Boc-Trypsin-Kalükrein-Inhibitor wer-
vorher ermittelt, in 30 Minuten bei 37°C BΑΡΛ zu- den mit 625 mg (1,3 mMol) HCl-H-GIu(OBu')-
Glu(OBut)-OBut analog Beispiel 1 umgesetzt. Nach Glu(Oüu*)-Asp(OBut)-OBut analog Beispiel 1 umBehandlung
mit Trifluoressigsäure und anschließender gesetzt. Nach Behandlung mit Trifiuoressigsäui e wer-Dialyse
werden 770,4 mg Rohsubstanz gewonnen. den 1,266 g Rohsubstanz gewonnen, die in 0,1 m
500 mg dieser Rohsubstanz werden wie bei Beispiel 1 Essigsäure über Sephadex G 25® (200 χ 4-cm-Säule)
gereinigt. Ausbeute 382 mg einer reinen Fraktion. 5 Chromatographien werden. Ausbeute 727 mg einer
Aminosäureanalyse: Verhältnis GIy zu GIu = 6:14,6 reinen Fraktion,
(theoret. 6:13). Aminosäureanalyse: Verhältnis GIy zu GIu zu Asp
= 5,5:13,6:10,0 (theoret. 6 :13 :10).
Beispiel 3
Trypsin-Kallikrein-Inhibitor-penta-(Glu-Glu-Glu-OH) 10 Beispiele
Trypsin-Kallikrein-lnhibitor-penta-(Asp-Glu-Asp)
900 mg Penta-Boc-Trypsin-Kallikrein-Inhibitor werden
mit 867 mg (1,3 mMol) HCl · H-GIu(OBu1)- 900 mg Penta-Boc-Trypsin-Kallikrein-Inhibitor wer-Glu(OBut)-Glu(OBut)-OBut
analog Beispiel 1 um- den mit 830 mg (1,3 mMol) HCl · H-Asp(OBu4)-gesetzt.
Nach Behandlung mit Trifluoressigsäure 15 Glu(OBul)-Asp(OBut)-OBut analog Beispiel 1 umwerden
1,355 g Rohsubstanz gewonnen, die in 0,1 m gesetzt. Nach Behandlung mit Trifluoressigsäure wer-Essigsäure
über Sephadex G 25® (200 χ 4-cm-Säule) den 1,25 g Rohsubstanz gewonnen, die in 0,1m
Chromatographien werden. Ausbeute 674,9 mg einer Essigsäure über Sephadex G 25® (200 X 4-cm-Säule)
reinen Fraktion. Chromatographien werden. Ausbeute 628,4 mg einer Aminosäureanalyse-.Verhältnis GIy zu GIu = 6:18,3 20 reinen Fraktion.
(theoret. 6:18). Aminosäureanalyse: Verhältnis GIy zu GIu zu Asp
B e i s ρ i e 1 4 = 6,0: 8,0:15,1 (theoret. 6:8:15).
Trypsin-Kallikrein-Inhibitor-penta-
(Glu-Glu-Glu-Glu-OH) ^ Bei. ρ ie 19
900 mg Penta-Boc-Trypsin-Kallikrein-Inhibitor wer- Trypsin-Kaüikrein-Inhibitor-penta (G Iu-Asp-Glu-Asp)
den mit 1,11g (1,3 mMol) HCI-H-GIu(OBu1)- }y v * VJ
GIu(OBUt)-GIu(OBUt)-GIu(OBUt)-OBu1 analog Bei- 900 mg Penta-Boc-Trypsin-Kallikrein-Inhibitor wer-
spiell umgesetzt. Nach Behandlung mit Trifluor- den mit 1,07 g (1,3 mMol) HCl-H-GIu(OBu1)-
essigsäure werden 1,15 g Rohsubstanz gewonnen, die 30 ASp(OBUt)-GIu(OBUt)-ASp(OBUt)-OBu1 analog Bei-
in 0,1 m Essigsäure über Sephadex G 25® (200 X 4cm- spiel 1 umgesetzt. Nach Behandlung mit Trifluor-
Säule) Chromatographien werden. Ausbeute 745 mg essigsäure werden 1,54 g Rohsubstanz gewonnen, die
einer reinen Fraktion. in 0,1m Essigsäure über Sephadex G 25® (2C0 χ 4-cm-
Aminosäureanalyse: Verhältnis GIy zu GIu = 6:23,4 Säule) Chromatographien werden. Ausbeute 634 mg
(theoret. 6: 23). 35 einer reinen Fraktion.
Aminosäureanalyse: Verhältnis GIy zu GIu zu Asp
B e i s ρ i e 1 5 = 5,7 :13,0:15,6 (theoret. 6:13:15).
Trypsin-Kallikrein-Inhibitor-penta-asparaginsäure
900 mg Penta-Boc-Trypsin-Kallikrein-Inhibitor wer- 4° B e i s ρ i e 1 10
den mit 365 mg (1,3 mMol) HCl-H-ASp(OBu1)- Trypsin-Kallikrein-Inhibitor-penta-(Glu-D-Glu-OMe)
OBu1 analog Beispiel 1 umgesetzt. Nach Behandlung
mit Trifluoressigsäure werden 1,083 g Rohsubstanz 900 mg Penta-Boc-Trypsin-Kallikrein-Inhibitor wer-
gewonnen, die in 0,1 m Essigsäure über Sephadex den mit 597 mg (1,3 mMol) HCl · H-GIu(OBu1)-G
25® (200 χ 4-cm-Säule) Chromatographien wer- 45 D-Glu(OBut)-OMe (J. Chem. Soc. Perkin I, 1972,
den. Ausbeute 707,6 mg einer reinen Fraktion. S. 1) analog Beispiel 1 umgesetzt. Nach Behandlung
Aminosäureanalyse: Verhältnis GIy zu GIu zu Asp mit Trifluoressigsäure weiden 1,2 g Rohsubstanz
= 6: 3,2:10,5 (theoret 6:3:10). gewonnen, die in 0,1 m Essigsäure über Sephadex
G 25® (200 χ 4-cm-Säule) Chromatographien werden
Beispiel6 5° Ausbeute 654 mg einer reinen Fraktion.
_. . „ .... . T ,.,.. ,. in,, A™.nm Aminosäureanalyse:VerhältnisGIyzuGIu = 6:13,1
900 mg Penta-Boc-Trypsin-Kallikrein-Inhibitor wer
den mit 610 mg (1,3 mMol) HQ · H-GIu(OBu*)- B e i s ρ i e 1 11
Asp(OBut)-OBu* analog Beispiel 1 umgesetzt Nach 55 Trypsin-KaUikrein-Inhibitor-penta(Asp-Glu-NHi)
Behandlung mit Trifluoressigsäure werden 1,1 g Rohsubstanz erhalten, die in 0,1 m Essigsäure über 900 mg Penta-Boc-Trypsin-Kallikrein-Inhibitor wei
Sephadex G 25® (2COx 4-cm-Säule) chrornatogra- den mit 533 mg (1,3 mMol) HCl · H-ASp(OBu*]
phiert werden. Ausbeute 759,3 mg einer reinen Frak- Glu(OBu*)-NH2 (gewonnen durch katalytische Hj
tion. 60 driening von Z-Asp(OBu*)-Glu(OBu*)-NH2, das i
Aminosäureanalyse: Verhältnis GIy zu GIu zu Asp J. Chem. Soc. C [1968], S. 531 beschrieben ist) anale
= 6,0: 8,5:10,5 (theoret 6:8:10). Beispiel 1 umgesetzt Nach Behandlung mit Trifluo:
essigsaure werden 1,18 g Rohsubstanz gewonnen, d
B e i s ρ i e 1 7 in 0,1 m-Essigsäure über Sephadex G 25 ® (200 χ 4-cn
900 mg Penta-Boc-Trypsin-Kallikrein-Inhibitor wer- Aminosäureanalyse: Verhältnis GIy: GIu: Asp
den mit 848 mg (1,3 mMol) HCl · H-GIu(OBu*)- = 6,0: 8,6:10,3 (theoret 6:8:10).
Beispiel 12
Trypsin-Kallikrein-Inhibitor-penta (Asp-Ser-Asp-OH)
Trypsin-Kallikrein-Inhibitor-penta (Asp-Ser-Asp-OH)
900 mg Penta-Boc-Trypsin-Kallikrein-Inhibitor werden
mit 702 mg (1,3 mMol) HCl · H-Asp(OBut)-Ser-Asp(OBut)-OBut
(J. Chem. Soc. C, Org., 1969, S. 2218) analog Beispiel 1 umgesetzt. Nach Behandlung
mit Trifluoressigsäure werden 1,3 g Rohsubstanz erhalten,
die in O.lm-Essigsäure über Sephadex G 25®
(200 χ 4-cm-Säule) chromatographiert werden.
Ausbeute 710 mg einer reinen Fraktion.
Aminosäureanalyse: Verhältnis Gly:Asp:Ser
= 6:15,5 : 4,9 (theoret. 6:15: 6).
Herstellung der Ausgangssubstanzen
a. Z-Glu(OBut)-Glu(OBut)-OBut
a. Z-Glu(OBut)-Glu(OBut)-OBut
10,4 g (20 mMol) Z-GIu(OBUt)-OH · DCHA werden a°
zwischen 100 ml Äther und 20 ml 1 n-H;!SO4 bei 0°C
verrührt. Die Atherphase wird mit Natriumsulfat
getrocknet und eingeengt. Der Rückstand wird in 50 ml Dimethylformamid gelöst. Zu dieser Lösung
gibt man 5,91 g (20 mMol) HCl · H-Ghi(OBut)-OBut, *5
2,7 g (20 mMol) HOBt, 2,6 ml N-Äthylmorpholin und bei 00C 4,4 g DCC (als Dimethylformamid-Lösung)
Man rührt IStunde bei 00C, 2 Stunden bei Raum-S^IM Üb N
Q9H61N3O12 (763,94):
^Sdi? '.'.'. C S
^Sdi? '.'.'. C S
2 8A' N
d. HCl · H-GlufOButVGluiOBu^-GlufO'Bu'VOBu»
£ 6™Μί>
Z" °lu((?Bu ^HOf n '>
15
S^AnH^t H HCti· ^ RtrtemperatUr
stehen. Anderntags wird der Niederschlag abgesaugt
und das Filtrat eingeengt Der Rückstand wird in
Essigester gelost und die Lösung nacheinander mit NaHCO3-Lösung, KHSO.-Lösung, NaHCO3-Lösung
und Wasser gewaschen, mit Natriumsulfat getrocknet und eingeengt. Der Rückstand wird in Essigester
über etwa 30 g basisches Al2O3 (Woelm Aktivstufe I)
G !»(01 u')-OBu» werden in M -thanol wie be. b. kat»
!ytlSch hyUnert- Ausbeute 4-8 g Öl (95 %).
C31H55N3O10 · HCl (666 3)
C31H55N3O10 · HCl (666 3)
e· Z-GIu(OBUt)-GIu(OBUt)-GIu-(OBu1)-Glu(OBul)-OBut
Zu einer Lösung von 3,9 g (5,85 mMol) HCl · H-GIu(OBu1)
- GIu(OBu4) - GIu(OBu4) - OBu1, 0,79 {
(5·85 mMoI>
H0Bt und °'76 ml (5>85 mMol>
N-Äthylmorpholin in 50 ml Dimethylformamid gibt mar
3,05 g (5,85 mMol) Z-Glu(OBUt)-OTcp. Man rühri
IStunde bei Raumtemperatur und arbeitet wie be
c. auf. Ausbeute 4,75 g (86%\ Schmp. 119 bis 120<C
[*]? = -29,1° (c = 1, Methanol).
QsH76N4O15 (949,2):
Berechnet C 60 75 H 8 08 N S 91 ·
gefunden ' C 60 6 H 8 0 N 5 8 '
gefunden ' C 60 6 H 8 0 N 5 8 '
f- HC1 · H-Glu(OBut)-Glu(OBut)-Glu(OBu')-Glu(OBut)-OBu4
4'4 S (4'63 mM°n Z-GlU(OBUt)-GlU(OBUt)-GIu(OBUt-GIu(OBUt)-OBUt
werden wie bei b. in Methanol katalytisch hvdriert
Ausbeute 3 85 ε öl ί98°/ϊ '
70N4O13 · HCl (851,5).
g· ζ"Ο!ι1(οΒ"ι)-Α5ρ(ΟΒιι')-ΟΒ·α'
Nach eimger Zeit knstalhs.ert das öl, Schmp. 880C
Berechnet ... C 62,26, H 8,01 N 4 84·
gefunden ... C 62,3, H 8,1, N 5,1. '
gefunden ... C 62,3, H 8,1, N 5,1. '
thaYof SSfSr ÄS^veSund Ä
Hilfe eines Autotitrators unter Zugabe von 2 η meS
nolischer HQ bei pH 4,5 hydriert. Nach beendeter
Hydrierung wird de? Ka'talysator abg^gt^d £s
Fütrat eingeengt Ausbeute 7,3 g öl (91 %)
CnH10N1O7 - Ha (481,04).
c. Z-Glu(OBut>Glu(OBut)-Glu(OBat)-OBut
Zu einer Lösung von 6,2 g (12.9 mMol) HQ · H-rührt. Die Ätherphase wird einmal mit Wasse. Sewascnen. mit Natriumsulfat getrocknet und ein-
Zu einer Lösung von 6,2 g (12.9 mMol) HQ · H-rührt. Die Ätherphase wird einmal mit Wasse. Sewascnen. mit Natriumsulfat getrocknet und ein-
geengt Der Rückstand wird in 2OOmi Dimethyl-
formamid gelöst. Zu dieser Lösung gibt man 28,1 g ^0-1 Mo1) HCl · H-Asp(OBut)-OBut, 13,5 g HOBI
(0,1 Mol), 13 ml N-Äthylmorpholin (0,1 Mol) und bei « O0C 22 g DCC (als Dimethylformamid-Lösung).
Man verfährt nun wie bei a. Der Rückstand kristalli-
gunfw^rl L Sh t ? S^
so f^nt T ■ ^Stan? m Ather
so f^nt T ■ ^Stan? m Ather
Methanol)
Q9H41N1O, (564,7):
Q9H41N1O, (564,7):
Berechnct ... C61,70, H7,86, N4,96;
" ' C 61'7' H 7'8' N 4'9'
" ' C 61'7' H 7'8' N 4'9'
Dimethylformamid gibt man 6,65 g (12,9 mMol) 60 34>5g (62 mMol) ZGIu(OBu^ASp(OBU)OBu
Z-GIu(OBUt)-OTCp, läßt 5 Minuten rühren und engt werden wie bei b. in Methanol katalytisch hydriert.
am Hochvakuum ein. Der Rückstand wird in Ausbeute 29,3 g öl (100%).
Essigester gelöst und wie bei a. ausgeschüttelt
Nach Trocknen über Natriumsulfat wird eingeengt QiH38NjO7 · HQ (467,01).
und der Rückstand mit Petroläther verrieben. Es
wird auf 00C abgekühlt und abgesaugt
fX 3 T&Ä
- 1, Methanol).
« ™ W B (26,7 mMol) HQ · H-tVAsp(OBut)-OBut, 3,6 g (26,7 mMoO HOBt,
3,5 ml (26,7 mMol) N-Äthylmorpholin in 100 ml
Dimethylformamid gibt man bei Raumtemperatur 13,82 g (26JmMoI) Z-Glu(OBul)-OTcp. Man läßt
1 Stunde stehen und arbeitet wie bei c. auf. Ausbeute 24,7 g öl. Zur weiteren Reinigung wird das
öl in Äther gelöst über 75 g basisches Al2O3 chromatographiert.
Ausbeute 17,65 g amorphe Masse (88 %). [λ]? = -23,9° (c = 1, Methanol).
C38H69N3O12 (749,9):
Berechnet ... C 60,86, H 7,93, N 5,61;
gefunden ... C 60,3, H 7,9, N 5,6.
gefunden ... C 60,3, H 7,9, N 5,6.
n. HCl ■ H-GIu(OBUt)-ASp(OBUt)-GIu(OBu4)-Asp(OBut)-OBut
7 g (7,6 mMol) Z-GIu(OBUt)-ASp(OBUt)-GIu(OBUt)-Asp(OBul)-OBut
werden analog b. in Methanol katalytisch hydriert.
Ausbeute 6,1 g amorphe Substanz: (97,5%).
ίο C38H66N1O13 · HCl (823,4).
j. HCl-17 g (22,7 mMol)
Z - GIu(OBu1) - Glu(OBut) · Asp(OBul)-OBut
werden analog b. in Methanol katalytisch hydriert. Ausbeute 14,34 g amorphe Masse (97 %).
C30H53N3O10 · HCl (652,2).
k. Z-Asp(OBut)-Glu(OBut)-Asp(OBu'}-OBut
werden analog b. in Methanol katalytisch hydriert. Ausbeute 14,34 g amorphe Masse (97 %).
C30H53N3O10 · HCl (652,2).
k. Z-Asp(OBut)-Glu(OBut)-Asp(OBu'}-OBut
Zu einer Lösung von 12,5 g (26,7 mMoi) HC! · H-G
u(OBut)-Asp(OBut)-OBut und 3,5 ml (.16,7 mMol)
N Äthylmorpholin in 100 ml Dimethylformamid gibt man 11,25 2 (26,7 mMol) Z-Asp(OBut)-ONSu und
läßt etwa 20 Stunden bei Raumtemperatur reagieren. Aufgearbeitet wird analog c. Der Rückstand (18,4 g
öl) wird zur Reinigung in Äther gelöst und über 50 g basisches Al2O3 chromatographiert.
Ausbeute 13,4 g amorphe Substanz (68%).
[χ]? = -23,9° (c = 1, Methanol).
[χ]? = -23,9° (c = 1, Methanol).
C37H57N3On (735,9):
Berechnet ... C 60,4, H 7,81, N 5,71;
gefunden ... C 60,0, H 7,1, N 5,6.
gefunden ... C 60,0, H 7,1, N 5,6.
1. HCl · H-ASp(OBUtVGIu
12,8 g (17,4 mMol) Z-Asp(OBut)-Glu(OBut)-Asp(OBut)-OBut
werden analog b. in Methanol katalytisch hydriert.
Ausbeute 10,4 g amorphe Substanz (94%).
C29H51N3O10 · HCl (638,2).
m. Z-Glu(OBu4)-Asp(OBu4)-Glu(OBu4)-ASp(OBUt)-OBu*
o. Penta-Boc-Trypsin-Kallikrein-Inhibitor
α) 1,3 g Trypsin-Kallikrein-Inhibitor werden in 10 ml Wasser gelöst. Dazu gibt man 50 ml Dimethylformamid
und 4,4 ml ges. NaHCO3-Lösung. Nun
gibt man 430 mg Boc-ONSu zu, rührt 1 Stunde bei Raumtemperatur und läßt über Nacht stehen. Andern-
ao tags wird mit 2 η-Essigsäure auf pH 5 angesäuert. Die klare Lösung wird im Hochvakuum eingeengt.
Der Rückstand wird mit Wasser verrieben, abgesaugt, mit Wasser gut gewaschen und getrocknet. Mit Essigester
wird nochmals verrieben, abgesaugt und getrock-
»5 net. Ausbeute 880 mg.
Die Papierelektrophorese ergab im sauren Medium eine einheitliche Substanz, die vom Trypsin-Kallikrein-Inhibitor
verschieden war.
ß) 1,3 g Trypsin-Kallikrein-Inhibitor werden in 20 ml Dimethylformamid suspendiert. Dazu gibt man 270 mg HOBt, 480 mg Boc-ONp und 0,14 ml l.r,4.4'-Tetramethylguanidin. In mehreren Portionen werden noch 0,7 ml l.l',4.4'-Tetramethylguanidin und 480 mg Boc-ONp zugegeben. Man rührt insgesamt 2 Tage bei Raumtemperatur, engt ein und verrührt den Rückstand mit Essigester. Der Niederschlag wird mit Methanol verrieben und abgesaugt. Ausbeute 950 mg. Das gewonnene Produkt ist papierelektrophoretisch identisch mit der nach «) gewonnenen Substanz.
ß) 1,3 g Trypsin-Kallikrein-Inhibitor werden in 20 ml Dimethylformamid suspendiert. Dazu gibt man 270 mg HOBt, 480 mg Boc-ONp und 0,14 ml l.r,4.4'-Tetramethylguanidin. In mehreren Portionen werden noch 0,7 ml l.l',4.4'-Tetramethylguanidin und 480 mg Boc-ONp zugegeben. Man rührt insgesamt 2 Tage bei Raumtemperatur, engt ein und verrührt den Rückstand mit Essigester. Der Niederschlag wird mit Methanol verrieben und abgesaugt. Ausbeute 950 mg. Das gewonnene Produkt ist papierelektrophoretisch identisch mit der nach «) gewonnenen Substanz.
γ) 7 g Trypsin-Kallikrein-Inhibitor werden in 77 ml Wasser gelöst. Dazu gibt man 315 ml Dimethylformamid,
24 ml ges. NaHCO3-Lösung und 14 ml Boc-azid.
Man rührt 5 Stunden bei 35° C. Mit 2 η-Essigsäure wird auf pH 5 angesäuert und engt im Hochvakuum ein.
Der Rückstand wird mit Wasser verrieben und abgesaugt. Ausbeute 6,5 g. Das gewonnene Produkt isi
papierelektrophoretisch identisch mit der nach a.)
gewonnenen Substanz.
Zu einer Lösung von 6,4 g (10 mMol) HCl · H-Asp(OBu4) - GIu(OBu4) - Asp(OBu4) - OBu4, 1,35 g
(10 mMol) HOBt und 1,3 ml (10 mMol) N-Äthylmorpholin in 40 ml Dimethylformamid gibt man 5 g
(10 mMol) Z-Glu(OBu4)-OTcp, läßt 1 Stunde bei
Raumtemperatur rühren und arbeitet analog c. auf. Der Rückstand wird mit Petroläther verrieben. Ausbeute 7,4 g (80%), Schmp. 196°C. [«]? = -24,6°
(c = 1, Methanol).
C«,H72N,C
Berechnet... C 59,98, H 7,88, N 6,08;
Befunden ... C59,6, H7,8, N6,1.
Boc = tert.-ButyloxycarbonyL
Z = BenzyloxycarbonyL
OBu4 = tert-Butylester,
ONp = 4-Nitrophenylester,
ONSu = N-Hydroxysuccmimidester,
OTcp = 2.4.5-Trichlorpheaylester,
DCHA = Dicyclohexylamin,
DCC = Dicyclohexylcarbodiimid,
HOBt = 1-Hydroxybenzotriazol.
Claims (1)
1. Derivate des basischen Trypsin-Kallikrein- setzt und anschließend die Schutzgruppen sauer
inhibitors aus Säugerorganen, worin die fünf vor- abspaltet.
handenen Carboxylgruppen des Peptidmoleküls 5 3. Pharmazeutische Zubereitungen für Injek-
amidartig durch Peptidreste der allgemeinen For- tioas- und Infusionszwecke, gekennzeichnet durch
mel I verlängert sind, einen Gehalt an einer Verbindung nach Anspruch
1.
Priority Applications (15)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19732344886 DE2344886C3 (de) | 1973-09-06 | Synthetisch modifizierte Derivate des basischen Trypsin-Kalllkrein-Inhibitors aus Säugetierorganen und Verfahren zu ihrer Herstellung | |
NL7411563A NL7411563A (nl) | 1973-09-06 | 1974-08-30 | Werkwijze voor het bereiden van synthetisch gemodificeerde trypsine-inhibitoren. |
ES429700A ES429700A1 (es) | 1973-09-06 | 1974-08-31 | Procedimiento para la preparacion de derivados del inhibidorde tripsina-calicreina basico obtenido de organos de mamife-ros. |
US05/503,066 US3953417A (en) | 1973-09-06 | 1974-09-04 | Synthetically modified trypsin inhibitors and process for preparing them |
SE7411157A SE414172B (sv) | 1973-09-06 | 1974-09-04 | Forfarande for framstellning av derivat av basisk trypsin-kallikreininhibitor fran deggdjursorgan |
AU72963/74A AU482483B2 (en) | 1973-09-06 | 1974-09-04 | Synthetically modified trypsin inhibitors and process for preparing them |
CA208,541A CA1030524A (en) | 1973-09-06 | 1974-09-05 | Synthetically modified trypsin inhibitors and process for preparing them |
AT716374A AT339472B (de) | 1973-09-06 | 1974-09-05 | Verfahren zur herstellung von neuen, synthetisch modifizierten trypsin-kallikrein-inhibitoren |
FR7430332A FR2242992B1 (de) | 1973-09-06 | 1974-09-06 | |
CH7412190A CH608787A5 (de) | 1973-09-06 | 1974-09-06 | |
GB3911074A GB1462493A (en) | 1973-09-06 | 1974-09-06 | Trypsin inhibitors and process for the production thereof |
BE148290A BE819639A (fr) | 1973-09-06 | 1974-09-06 | Inhibiteurs de trypsine modifies et leur procede de preparation |
JP49102877A JPS5052081A (de) | 1973-09-06 | 1974-09-06 | |
EG371/74A EG11583A (en) | 1973-09-06 | 1974-09-07 | Synthetically modified trypsin inhibitors and process for preparing them |
US05/636,728 US3992529A (en) | 1973-09-06 | 1975-12-01 | Method of treating excessive fibrinolysis with synthetically modified trypsin inhibitors |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
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DE19732344886 DE2344886C3 (de) | 1973-09-06 | Synthetisch modifizierte Derivate des basischen Trypsin-Kalllkrein-Inhibitors aus Säugetierorganen und Verfahren zu ihrer Herstellung |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
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DE2344886A1 DE2344886A1 (de) | 1975-04-03 |
DE2344886B2 DE2344886B2 (de) | 1976-08-12 |
DE2344886C3 true DE2344886C3 (de) | 1977-03-31 |
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