DE2321784C2 - Verfahren zur Herstellung von vernetzten Gelose- oder Agarose-Gelen sowie deren Verwendung - Google Patents
Verfahren zur Herstellung von vernetzten Gelose- oder Agarose-Gelen sowie deren VerwendungInfo
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- C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
- C08B—POLYSACCHARIDES; DERIVATIVES THEREOF
- C08B37/00—Preparation of polysaccharides not provided for in groups C08B1/00 - C08B35/00; Derivatives thereof
- C08B37/0006—Homoglycans, i.e. polysaccharides having a main chain consisting of one single sugar, e.g. colominic acid
- C08B37/0036—Galactans; Derivatives thereof
- C08B37/0039—Agar; Agarose, i.e. D-galactose, 3,6-anhydro-D-galactose, methylated, sulfated, e.g. from the red algae Gelidium and Gracilaria; Agaropectin; Derivatives thereof, e.g. Sepharose, i.e. crosslinked agarose
-
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- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
- C12N11/02—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
- C12N11/10—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a carbohydrate
Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von vernetzten Gelose- oder Agarose-Gelen sowie
deren Verwendung in der Chromatographie und in der Elektrophorese.
Gelose (cK*er Agar-Agar) und Agarose (ein neutrales,
aus Gelose isoliertes Polysaccharid) werden häufig entweder in Form von Platten aus dem hydratisierten
Gel in Immunodiffusions-, Elektrophorese- und Immunoelektrophoreseverfahren oder in Form von Körnchen zur Abtrennung von natürlichen Substanzen durch
Molekülausschlußchromatograyhie verwendet In der
granulären Form werden sie auch als Träger zum chemischen Fixieren von Enzymen, verschiedenen
Substanzen (selektive Chromatographie) oder ionisierten Gruppen (Ionenaustauscherchromatographie) verwendet
Diese Gele müssen .:n ihrer verschiedenen Anwendungsformen bei Temperaturen unterhalb 50° C und im
hydratisierten Zustand verwenr'rt werden, wodurch
ihre Verwendbarkeit begrenzt und ihre Kommerzialisierung schwierig gemacht wird. Die Bildung eines Gels
in Wasser geht nämlich im Prinzip auf die Anwesenheit von Wasserstoffbrücken zurück, weiche die Polysaccharidketten zu einem dreidimensionalen Netzwerk miteinander verbinden. Diese Bindungen sind sehr schwach
und infolgedessen durch physikalische oder chemische Agenden leicht aufspaltbar. Deshalb bildet Gelose oder
Agarose bei extremen (sauren oder basischen) pH-Werten, bei einer Temperatur oberhalb etwa 5O0C und in
Gegenwart bestimmter chemischer Substanzen, wie Harnstoff, kein Gel. Diese natürliche Zerbrechlichkeit
der Gele begrenzt ihre Verwendbarkeit sowohl in der Elektrophorese als auch in der Chromatographie und
damit auch als Träger für die Enzyme.
In der Chromatographie können die Körnchen oder Perlen nicht durch Wärme sterilisiert werden, was einen
schwerwiegenden Nachteil bei der Abtrennung von Viren oder biologischen Substanzen darstellt, die
aseptisch gehandhabt werden müssen. Wenn die Körnchen als Träger für die Enzyme dienen, ist es
außerdem nicht möglich, sie zu verwenden, wenn die Temperatur des Reaktionsmediums 400C übersteigt.
In der Elektrophorese werden Gelose- oder Agaroselösungen in geringen Konzentrationen (im allgemeinen
unterhalb 2%) verwendet, so daß die durch Abkühlen erhaltenen Gele weich und demzufolge sehr zerbrechlich (instabil) sind. Die Lösungen müssen deshalb auf
Glasplatten gegossen werden und anschließend müssen bei der Handhabung der Gele und beim Konservieren
der Elektrophoretogramme umfangreiche Vorsichtsmaßnahmen ergriffen werden. Letztere liefern nach
dem Trocknen besonders bröckelige Filme.
Es ist zwar aus der DE-OS 2131 139 bekannt, daß mit
Epichlorhydrin oder Epibromhydrin vernetzte Agar-Fraktionen zur Chromatographie besser geeignet als
unvernetzte sind. Aus der US-PS 28 05 220 ist ferner bekannt, andere Polysaccharide wie Stärke, mit
Cyanurchlorid unlöslich zu :aiachen. Die Vernetzung mit
Epihalogenhydrinen erfordert jedoch ein alkalisches Milieu. Deshalb sind Agaroüe und Gelose mit diesen wie
auch mit anderen Epoxiden nicht vernetzbar. Mit
ίο wasserunlöslicher Stärke sind aber chromatographische
Trennungen, wie sie erfindungsgemäß verbessert werden sollen, nicht in vergleichbarer Weise durchzuführen.
r5 Gelose- oder Agarose-Gele herzustellen, die den
Vorteil haben, daß sie gegen Agenden, welche die Wasserstoffbindungen schwächen, beständig sind, ohne
daß sie dabei ihre physikalisch-chemischen Haupteigenschaften verlieren.
Das erfindungsgemäße Verfahren zur Herstellung von vernetzten Gelose- oder Agarose-Gelen ist
dadurch gekennzeichnet, daß man die Gele mit 2,4,6-TrichIor-l,3.5-triazin als Vernetzungsmittel behandelt und die bei der Behandlung gebildete Salzsäure
neutralisiert
Bei der Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens verhalten sich die unlöslich gemachten Gel-Perlen nach der Behandlung in gleicher Weise wie die
üblichen Perlen, weiche die gleiche Konzentration an
Agarose enthalten, d.h. daß insbesondere das Auflösungsvermögen gegenüber den untersuchten Substanzen unverändert bleibt So können beispielsweise die
mit erfindungsgemäß behandelten Peilen, die 2,4 und 6% Agarose enthalten, erhaltenen Kurven der Molekül-
Selektivität auf die jeweiligen Kurven gelegt werden, die
mit üblichen Perlen erhalten werden, welche jeweils die gleichen Mengenanteile an Agarose enthalten. Die
Sterilisation bei 1200C über einen Zeitraum von 15 Minuten in einem Autoklaven führt zu keiner Verände
rung der chromatographischen Eigenschaften der so
behandelten Gele.
Die erfindungsgemäß behandelten Gele behalten auch ihre physikalisch-chemischen Eigenschaften bei,
auf Grund deren sie in Elektrophorese-, Immunodiffu
sions- und Immunoelektrophoreseverfahren verwendet
werden, darüber hinaus weisen sie aber nach der Behandlung neue physikalische Eigenschaften auf: sie
sind gleichzeitig weich und beständig und können deshalb ohne Verwendung eines starren Trägers leicht
gehandhabt werden; sie können bei 120°C in einem Autoklaven sterilisiert werden.
Die Erfindung wird durch die folgenden Beispiele näher erläutert.
200 ml eines Gels mit 2% Agarose oder Gelose wurden in einer Lösung von 5 g Trichlortriazin in einem
Gemisch aus 75 ml Aceton und 25 ml Wasser, das vorher auf 500C erwärmt worden war, suspendiert.
Anschließend wurde 90 Minuten lang gerührt, dann wurde mit In NaOH die während der Umsetzung
gebildete Chlorwasserstoffsäure neutralisiert. Danach wurde das Gel mit entsalztem Wasser gewaschen, um
das Aceton und die Nebenprodukte der Umsetzung sowie den Überschuß von Trichlortriazin zu entfernen.
Das Ge! wurde erneut in 100 ml In NaOH suspendiert. Nach der Zugabe von 0,500 g Natriumborhydrid wurde die Suspension eine Stunde lang bei einer
Temperatur in der Nähe von 900C gehalten. Das so
behandelte Gel wurde mit warmem Wasser gewaschen, dann in kaltem Wasser wieder suspendiert, bis zu einem
pH-Wert von 4 mit In Essigsäure versetzt, 15 Minuten
lang gerührt, dann erneut mit entsalztem Wasser gewaschen und schließlich unter Vakuum abgesaugt
Die Mengen an verwendetem Trichlortriazin betrugen 8 g auf 200 ml eines 4%igen Gels und 12 g auf die
gleiche Menge eines 6°/oigen Gels.
Die nach diesem Verfahren erhaltenen Gele verhielten
sich ebenso wie die gewöhnlichen Gele mit der gleichen Konzentration an Agarose oder Gelose. Dies
geht aus Ausschlußchromatographie-Vergleichsversuchen hervor, die mit einem 4%igen Agarose-Gel in
Form von Perlen mit einem Durchmesser von 100 bis 160 μπι vor und nach der Behandlung mit Trichlortriazin
sowie nach 30minütiger Sterilisation bei 1200C durchgeführt
wurden. Durch mit dem Gel gefüllte Säulen, die einen Durchmesser von 20 mm und eine Höhe von
400 mm aufwiesen, ließ man eine Lösung von »Blue-Dextran 2000« (vgl. AnaL Biochem. 39, [1971],
S. 2Ö2-2Ö7) in dem Puffer iris-(Hydroxymethyi)-aminomethan
- HCl (03 m bei pH 7,4) laufen. Die aufzeichneten
Elutionskurven waren für die drei verschiedenen Gelformen identisch, was anzeigt daß das Auflösungsvermögen
des Gels mit 4% Agarose weder durch die Behandlung mit Trichlortriazin noch anschließend
durch die Sterilisierung des behandelten Gels verändert wurde.
Die F i g. 1 zeigt 3 Elutionskurven, die unter Verwendung von »Blue-Dextran 2000« durch Gelfiltration
über ein polymerisiertes,4°/oiges Agarosegel
a) vor der Polymerisation (durchgezogene Kurve)
b) nach der Polymerisation (gestrichelte Kurve) bzw.
c) nach der Sterilisation (strichpunktierte Kurve)
erhalten wurden. Die Verhältnisse der Elutionsvolumina
(in ml) des zweiten Maximums (v2) zum ersten Maximum
(v\) der jeweiligen Kurven betrugen:
a) V2M = X »3
b) V2M-1,84 bzw.
c) V2A-, = 1,82.
40
45
Es wurden 200 ml eines Gels mit 2% Agarose oder
Gelose in 100 ml entsalztem Wasser suspendiert. Dann
wurden 6 g Trichlortriazin in 100 ml Dioxan gelöst und
diese Lösung wurde langsam unter Rühren bei Umgebungstemperatur in die Gelsuspension gegossen.
Nach etwa lOminütigem Rühren wurde die Suspension mit In NaOH neutralisiert. Das Rühren und Neutralisieren
wurde fortgesetzt, bis der pH-Wert sich bei etwa 7 stabilisierte.
Es wurde eine Stunde lang auf 60 bis 65° C erwärmt,
wobei die sich bei der Umsetzung von TrichlortriazL·!
mit Agarose bildende Säure neutralisiert wurde. Man ließ abkühlen und das Gel wurde bis zur Eliminierung
der Chloride gewaschen. Nach dem erneuten Suspendieren in 100 ml In NaOH wurde das Gel nach dem in
Beispiel 1 angegebenen Verfahren mit Natriumborhydrid behandelt Auf 200 ml 4%iges Gel mußten 8 g
Trichlortriazin verwendet werden, während auf 200 ml
6%iges Gel 12 g Trichlortriazin verwendet werden mußten.
Die mit »Blue-Dextran 2000« erhaltenen Elutionskurven zeigen, daß die 4%igen Agarose-Perlen nach der
Behandlung in dem Dioxanmilieu und nach der Sterilisation das gleiche Auflösungsvermögen aufwiesen
wie die nicht-behandelten Perlen.
200 ml *:ines Gels mit 2% Agarose oder Gelose
wurden in 1000 ml entsalztem V**sser suspendiert
Außerdem wurden 6 g Triehlortriaziü ir 150 ml Aceton
gelöst und diese Lösung wurde zu der Gelsuspension zugegeben. Die Mischung wurde langsam auf eine
Temperatur in der Nähe von 600C gebracht und dann wurden 90 ml In NaOH und 1 Natriumborhydrid
Natriumbohrhydrid zugegeben. Das Rühren wurde 1 Stunde lang bei 6O0C fortgesetzt Nach dem Abkühlen
wurde das Gel bis zur Eliminierung der Chloride gewaschen und dann unter Vakuum abgesaugt Die
verwendeten Mengen an Trichlortriazin betrugen 8 g auf 200 ml des 4°/oigen Gels und 12 g auf die gleiche
Menge des 6%igen Gels.
150 mg Trichlortriazin wurden in 23 ml Aceton
gelöst Außerdem wurde eine 13% ige Lösung (100 ml) von Agarose oder Gelose in 0,1 m Trinatriumcitrat
hergestellt. Die Trichlortriazinlösung wuide «n die
Agaroselösung (oder die Geloselösung), die vorher auf 500C erwärmt worden war, gegossen. Unter ständigem
Ruh. en wurde die Temperatur auf 70°C gebracht dann wurde eine In NaOH-Lösung (25 ml), die vorher auf
700C erwärmt worden war, zugegeben. Die Mischung wurde zur Herstellung einer Gelschicht einer Dicke von
2 mm in Kunststoffkasten (4 8,2 mm ■ 133 mm große Kasten für 100 ml Gel) gegossen. Die Polymerisation
war bei Umgebungstemperatur nach etwa 15 Stunden beendet. Die Platten wurden anschließend mit warmem
Wasser (von etwa 700C) bis zur Neutralität gewaschen.
In der Figur bedeuten:
Ve das Elutionsvolumen in ml (Milliliter)
T d;: Transmission des Eluats in %, gemessen bei 282 nm (Nanometer)
T d;: Transmission des Eluats in %, gemessen bei 282 nm (Nanometer)
Hierzu 1 Blatt Zeichnungen
Claims (2)
1. Verfahren zur Herstellung von vernetzten Gelose- oder Agarose-Gelen, dadurch gekennzeichnet, daß man die Gele mit 2,4,6-Trichlor-134-triazin als Vernetzungsmittel behandelt und die bei der Behandlung gebildete Salzsäure
neutralisiert.
2. Verwendung von mach Anspruch 1 erhaltenen vernetzten Gelose- oder Agarose-Gelen für chromatographische Zwecke:
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