DE2241258B2 - Kontinuierliches verfahren zur umwandlung von methan in eiweisstoffe durch kontinuierliche kultivierung von methan verwertenden mikroorganismen - Google Patents
Kontinuierliches verfahren zur umwandlung von methan in eiweisstoffe durch kontinuierliche kultivierung von methan verwertenden mikroorganismenInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein kontinuierliches Verfahren zur Umwandlung von Methan in Eiweißstoffe durch
kontinuierliche Kultivierung von Methan verwertenden Mikroorganismen.
Für die Herstellung von Mikroorganismenzcllen wurden bereits Verfahren beschrieben, bei denen
Mikroorganismen, die Methan verwerten, in einem wäßrigen Kulturmedium, das Nährsalze enthält, in
Gegenwart von Methan und eines Gases, das freien Sauerstoff enthält, kultiviert werden. Bei diesen
Verfahren werden Nitrate, Ammoniumsalze, z.B. Ammoniumchlorid oder Ammoniumsulfat, oder Ammoniak
oder Ammoniumhydroxyd als Stickstoffquelle verwendet.
Aus der FR-OS 20 16 899 ist ein kontinuierliches Verfahren zur Umwandlung von Methan in ein
Eiweißstoffe enthaltendes Zellmaterial bekannt, bei welchem ein pH zwischen ungefähr 6,0 und 7,5 und eine
NH4 + -Konzentration innerhalb von ungefähr 100 mg und 5000 mg pro Liter aufrechterhalten wird.
Es wurde nun gefunden, daß bei kontinuierlichen Verfahren die Verwendung von Ammoniumionen als
Stickstoffquelle zu einer Verlangsamung der Wachstumsgeschwindigkeit
von Methan verwertenden Mikroorganismen führt, was schließlich das Verschwinden des Mikroorganismus zur Folge hat, wenn nicht die
nachstehend beschriebenen, von der Anmelderin entwickelten Maßnahmen ergriffen werden.
Gegenstand der Erfindung ist ein kontinuierliches Verfahren zur Umwandlung von Methan in Eiweißstol
fe durch kontinuierliche Kultivierung von Methai verwertenden Mikroorganismen in einem wäßrige
Kulturmedium, das Nährsalze und Ammoniumione enthält und dem ein wäßriges Nährmedium zugesetz
wird, in Gegenwart von Methan und eines freiei Sauerstoff enthaltenden Gases, das dadurch gekenn
zeichnet ist, daß man den pH-Wert des Kulturmedium im Bereich von 4,5 bis 8,0 und die Ammoniumionenkon
zentration im Kulturmedium im Bereich von 2 bis 80 mg vorzugsweise 2 bis 50 mg pro Liter und die Produktions
geschwindigkeit unter stationären Bedingungen be wenigstens 0,81 g (Trockengewicht) Mikroorgjnismu
pro Liter und Stunde hält.
Dem Verfahren gemäß der Erfindung liegt dii Feststellung zugrunde, daß bei der kontinuierliche!
Kultivierung mit hohen Produktionsgeschwindigkeiter beispielsweise im Bereich von 0,81 bis 5,0 g (Trockenge
wicht) Mikroorganismus pro Liter und Stunde, dl· maximale Ammoniumionenkonzentration, die Methai
verwertende Mikroorganismen im Kulturmedium tole rieren können, etwa 100 mg/1 beträgt. Es wurdi
gefunden, daß bei Verfahren zur kontinuierlichei Kultivierung von Methan verwertenden Mikroorganis
men bei gegebenen Verdünnungsraten die Anwesenhei von Ammoniumionen oberhalb bestimmter entschei
dend wichtiger Konzentrationen im Kulturmedium ein< solche Erniedrigung der spezifischen Wachstumsge
schwindigkeit zur Folge hat, daß die Kultur zurr
jo Verschwinden gebracht wird und der technische Erfolg
ausbleibt.
Die Menge der Ammoniumionen wird im Bereich vor 2 bis 80 mg/1 gehalten. Man ist der Ansicht, dai.
unterhalb von 2 mg/1 das Wachstum durch Mangel ar Ammoniakstickstoff begrenzt ist. Bei der Durchführung
des Verfahrens wird der größte Teil der Ammoniumio nen, die dem wäßrigen Kulturmedium vorzugsweise all
Ammoniak oder Ammoniumhydroxyd zugesetzt wer den, unmittelbar durch die Mikroorganismen verwertet
Die verbleibenden Ammoniumionen werden danr innerhalb des angegebenen Bereichs gehalten. In dei
Praxis wird das Verfahren gewöhnlich bei einei Ammoniumionenkonzentration von etwa 10 bis 30 mg/
durchgeführt.
Die Ammoniumionenkonzentration im Kulturmedium kann durch Entnahme von Proben des Kulturmedi
ums in bestimmten Abständen und anschließende quantitative chemische Bestimmung der Ammoniumionen
ermittelt werden. Beispielsweise werden geeignete
so kolorimetrische Methoden auf der Grundlage dei Nesslerisierung von J. Paul (1958) in Analyst, 83
Seiten 37-42, und G. G. M e y η e 11 und E. M e y η e 1
(1965), Theory and Practice in Experimental Bacteriology, Cambridge University Press, beschrieben. Es ist auch
möglich, eine Sonde, vorzugsweise eine »Ammoniaksonde«, in Kombination mit einem pH-Meßgerät zur
kontinuierlichen oder diskontinuierlichen Bestimmung der Ammoniumionenkonzentration im Kulturmedium
zu verwenden.
Die Ammoniumionen werden vorzugsweise durch Zusatz von Ammoniak oder Ammoniumhydroxyd zum
Kulturmedium eingeführt.
Das Verfahren kann zweckmäßig nach einer der folgenden Methoden durchgeführt werden:
a) Der pH-Wert des dem Kulturmedium zugesetzten wäßrigen Nährmediums wird so gewählt, daß zur
Regelung der hiernach erhaltenen Wasserstoffio-
nenkonzentration im Kulturmedium innerhalb des pH-Bereichs von 4,5 bis 8,0 die Anwesenheit von
nicht mehr als 80 mg Ammoniumionen/I erforderlich is L
b) Der pH-Wert des Kulturmediums wird durch Zusatz von Säure oder Alkali mit Ausnahme von
Ammoniak oder Ammoniumhydroxyd im Bereich von 4,5 bis 8,0 und die Ammoniumkonzentration in
Abhängigkeit von durch Apparaturen bestimmten Werten der Ammoniumkonzentration im Kulturmedium
im Bereich von 2 bis 80 mg/1 gehalten.
Wenn Ammoniak oder Ammoniumhydroxyd sowohl als Stickstoffquelle als auch als einziges Mittel zur
Regelung des pH-Wertes des Kulturmediums nach der vorstehend beschriebenen Methode (a) verwendet wird,
muß das dem Kulturmedium zugesetzte wäßrige Nährmedium einen pH-Wert von weniger als 7,5 haben,
wobei der pH-Wert so weit unter dem pH-Wert des Kulturmediums liegen muß, daß eine solche Wasser-Stoffionenkonzentration
im Kulturmedium erhalten wird, daß die Menge von Ammoniumionen, die zu jedem gegebenen Augenblick zur Einstellung des pH-Werts
erforderlich ist, nicht über 80 mg/1 liegt.
Der pH-Wert des wäßrigen Nährmediums liegt gewöhnlich im Bereich von 1,0 bis 7,5 und für die
meisten praktischen Zwecke im Bereich von 2,0 bis 3,5.
Das wäßrige Nährmedium kann aus beliebigen bekannten Medien, die für Fermentationen unter
Verwendung von Methan als Kohlenstoffquelle verwen- jo det werden und aus denen die Stickstoffquelle teilweise
oder ganz weggelassen worden ist, ausgewählt werden oder darauf basieren. Die Menge jedes Nährstoffs muß
so eingestellt werden, daß gewährleistet ist, daß das Medium unbegrenztes Wachstum des Mikroorganismus Vi
mit der gewünschten in der Erfindungsdefinition angegebenen Geschwindigkeit ermöglicht.
Der natürliche pH-Wert des Nährmediums hängt von der Zusammensetzung der Nahrsalzs ab und kann für
die Zwecke der Erfindung zu hoch oder zu niedrig sein. Demzufolge kann eine Säure oder ein Alkali zur
Einstellung des gewünschten pH-Wertes des Nährmediums erforderlich sein. Der pH-Wert eines Nährmediums,
das Natrium- und/oder Kaliumphosphatsalze als Phosphatquelle enthält, kann zu hoch sein, so daß der
Zusatz einer Säure, z. B. Schwefelsäure oder Phosphorsäure, notwendig ist. Andererseits kann der pH-Wert
eines Nährmediums, das Phosphorsäure als Phosphatquelle enthält, zu niedrig sein, so daß der Zusatz von
Alkali, z. B. von Natriumhydroxyd, erforderlich sein kann. Der erforderliche pH-Wert des Nährmediums
hängt von der Zelldichte und vom pH-Wert ab, bei dem die Fermentation durchgeführt werden soll. Die
Zelldichte kann beispielsweise abhängig sein von der Sauerstoffübertragungsgeschwindigkeit, wobei Sauerstoff
der begrenzende Nährstoff bei einer gegebenen Verdünnungsrate ist, oder von der Methanübertragungsgeschwindigkeit,
wobei Methan der begrenzende Nährstoff ist. Der erforderliche genaue pH-Wert kann
empirisch durch einfache Versuche für jede bestimmt.· bo
Kombination von Fermentationsbedingungen bestimmt werden.
Zweckmäßig kann Ammoniak oder Ammoniumhydroxyd dem Kulturmedium in Abhängigkeit von einer
automatischen Titrationsapparatur zugesetzt werden. Diese Apparatur ist mit einer Elektrode zur Messung
der pH-Wertänderung im Kulturmedium und Mitteln zum Zusatz von Ammoniak oder Ammoniumhydroxyd
zum Kulturmedium in Abhängigkeit von diesen Änderungen versehen, so daß ein gewünschter pH-Wert
während der Fermentation aufrechterhalten wird.
Die in dieser Weise zugesetzte Ammoniak- oder Ammoniumhydroxydmenge entspricht der Summe der
Menge von Ammoniumionen, die für unbegrenztes Wachstum des Mikroorganismus erforderlich ist, und
der Menge, die zur Regelung des pH-Wertes durch Neutralisation der überschüssigen Wasserstoffionen, die
aus dem wäßrigen Nährmedium stammen, das dem Kulturmedium als Nährstoff zugesetzt wird, erforderlich
ist.
Es kann auch nach der Methode (b) gearbeitet werden. Bei dieser Methode wird der pH-Wert des
Kulturmediums durch Zusatz einer Säure oder eines Alkalis mit Ausnahme von Ammoniak oder Ammoniumhydroxyd
im Bereich von 4,5 bis 8,0 und die Ammoniumionenkonzentration des Nährmediums vorzugsweise
durch Zusatz von Ammoniak oder Ammoniumhydroxyd in Abhängigkeit von der Anzeige der
Apparatur zur Bestimmung der Ammoniumionenkonzentration im Kulturmedium im Bereich von 2 bis
80 mg/1 gehalten. Die Ammoniumionenkonzentration des Nährmediums kann nach den vorstehend beschriebenen
Methoden bestimmt werden.
Als Alkali, das mit Ausnahme von Ammoniak oder Ammoniumhydroxyd zur Regelung des pH-Wertes des
Kulturmediums verwendet wird, eignen sich Alkalihydroxyde, z. B. Natriumhydroxyd. Als Säuren eignen sich
beispielsweise Schwefelsäure und Phosphorsäure.
Die vorstehend beschriebene Arbeitsweise erleichtert die Verwendung eines wäßrigen Nährmediums, das
einen beliebigen pH-Wert hat, jedoch wird ein Medium mit einem pH-Wert unter 4,0 bevorzugt, um die
Mineralsalze in Lösung zu halten. Bei Durchführung des Verfahrens nach einer der vorstehend beschriebenen
Methoden liegt die obere Grenze des pH-Wertes des Kulturmediums zweckmäßig bei 7,5, vorzugsweise im
Bereich von 5,0 bis 7,0.
Die Arbeitstemperatur kann im Bereich von 30 bis 48°C liegen. Bei Verwendung von Methylococcus
capsulatus wird vorzugsweise bei einem pH-Wert im Bereich von 6,0 bis 7,0 und bei einer Temperatur im
Bereich von etwa 42 bis 48°C gearbeitet.
Das Verfahren wird normalerweise bei Normaldruck durchgeführt, jedoch kann auch bei Drücken bis etwa
3,5 atü gearbeitet werden.
Normalerweise sollte bei Verwendung von Luft-Methan-Gemischen der Sauerstoffgehalt etwa 10 bis 19%,
vorzugsweise etwa 16 bis 18 Vol.-°/o, und der Methangehalt
etwa 10 bis 50%, vorzugsweise 15 bis 25 Vol.-%, betragen. Das Methan kann in methanhaltigen Gasen,
z. B. Erdgas, vorhanden sein. Mit Sauerstoff angereicherte Gase, z. B. mit Sauerstoff angereicherte Luft,
können verwendet werden.
Die Bedingungen, unter denen das Verfahren durchgeführt werden kann, sind selektiv für Mikroorganismen,
die Methan verwerten. Es ist nicht notwendig, die Fermentation aseptisch durchzuführen. Hauptsächlich
aus wirtschaftlichen Gründen wird nichtkeimfreies Arbeiten bevorzugt.
Die Mikroorganismen können vom Kulturmedium nach bekannten Verfahren, z. B. durch Zentrifugieren
und/oder Filtration, die mit einer Ausflockungsstufe kombiniert werden können, abgetrennt werden.
Die Methan verwertenden Mikroorganismen können unter Anwendung beliebiger bekannter Isoliermethoden
für diesen Typ von Mikroorganismen erhalten
werden. Geeignete Methoden werden von S h e e h a n und Johnson in »Applied Microbiology« 21, Nr. 3,
1971, Seiten 511—515, und von Whittenbury in
Journal of General Microbiology 1970, 61, Seiten 205—218, beschrieben. Bevorzugt al:; Bakterium wird
Methylococcus capsulatus. Methan verwertende Mikroorganismen sind auch durch öffentliche Hinterlegungsstellen
für Mikroorganismen erhältlich (vgl. zum Beispiel DT-OS 19 18 705).
Beispiel 1
Stufe A
Stufe A
Methode zur Gewinnung einer Kultur
von Methan verwertenden Bakterien
für die Verwendung beim Verfahren
von Methan verwertenden Bakterien
für die Verwendung beim Verfahren
Jeweils 500 ml einer Aufschlämmung von methanhaltigem
Schlamm aus stillstehenden Becken wurden in Abständen von einem Tag während einer Zeit von
5 Tagen zu einem belüfteten und gerührten Fermenter gegeben, der ein Arbeitsvolumen von 3,0 1 hatte und 3,0 1
eines wäßrigen Mediums der folgenden Zusammensetzung enthielt:
10
KH2PO4
Na2HPO4-12 H2O
NaNO3
MgSO4-7 H2O
FeSO4 -7 H2O
Ca(NO3)2-4 H2O
CuSO4-5 H2O
ZnSO4-7 H2O
MnSO4 H2O
Na2MoO4-2 H2O
Entmineralisiertes und
entsalztes Wasser
pH-Wert
NaNO3
MgSO4-7 H2O
FeSO4 -7 H2O
Ca(NO3)2-4 H2O
CuSO4-5 H2O
ZnSO4-7 H2O
MnSO4 H2O
Na2MoO4-2 H2O
Entmineralisiertes und
entsalztes Wasser
pH-Wert
1600,0 mg/1
2928,0 mg/1
1180,0 mg/1
80,0 mg/1
14,0 mg/1
25,0 mg/1
4,0 mg/1
0,34 mg/1
0,30 mg/1
0,24 mg/1
bis 1000 ml
6,0
6,0
25
Der Fermenter wurde bei einer Temperatur von 45° C, einer Verdünnungsrate von 0,084/Stunde und
einer Rührerdrehzahl von 1000 UpM gehalten.
Der pH-Wert wurde durch Zusatz von 0,5 N-Natriumhydroxyd
nach Bedarf bei 6,7 gehalten. Ein Gasgemisch aus 33 Vol.-% Methan, 64 Vol.-% Luft und
3 Vol.-°/o Kohlendioxyd wurde in den Eintritt des Fermenters in einer Menge von 20 V/V/Stunde
eingeführt.
Eine Methan verwertende Bakterienpopulation wurde der natürlichen Entwicklung unter diesen selektiven
Bedingungen überlassen.
Nach einer Betriebszeit von 7 Tagen unter Verwendung dieses Mediums unter den vorstehend beschriebenen
Bedingungen erreichte die Bakterienponulation eine Zelldichte von I1Og Trockengewicht/l. Diese
Population hatte die nachstehend genannte Zusammensetzung. Nur ein Methan verwertender Bakterienstamm
konnte von dieser Population isoliert werden. Die anderen Bakterientypen waren nicht in der Lage,
Methan zu verwerten. Der Anteil der Methan verwertenden Bakterien an den anderen Bakterientypen
betrug zahlenmäßig etwa 90 bis 95%. Das Methan verwertende Bakterium war ein Coccus mit einem
Durchmesser von etwa 1,1 bis 1,4 μ. Er war kapselbildend und konnte sowohl Methan als auch Methanol,
aber keine Glucose verwerten. Auf einem festen Medium, hergestellt durch Zusatz von 1,0% (Gewicht/
Volumen) Agar zum eingangs beschriebenen Fermentationsmedium, hatten die Kolonien nach Bcbrülung für 3
bis 4 Tage bei 45°C unter einer Methan-Luft-Atmosphäre (Volumenverhältnis 1 : 1) die folgende Morphologie:
Der Durchmesser betrug etwa 1 bis 2 mm, und das Aussehen war weiß, glatt und abgerundet. Diese
Merkmale stimmen in jeder Hinsicht mit den Merkmalen eines Stammes von Methylococcus capsulatus
überein, die von J. W. F ο s t e r und R. H. D a ν i s in Journal of Bacteriology, 91 (1966), Seite 1924, und
von R. Whittenbury, K. C. Phillips und J. F. Wilkinson in Journal of General Microbiology,
61 (1970), Seite 205, beschrieben wurden. Das Methan verwertende Bakterium ist bei der ATCC unter der
Hinterlegungsnummer 19 069 erhältlich.
Stufe B
Zwischenstufe zum Aufbau der Zelldichte für den
Betrieb unter stationären Bedingungen
Betrieb unter stationären Bedingungen
3,0 1 Kulturmedium, das die gemäß Stufe A erhaltene.
Methan verwertende Bakterienpopulation enthielt, wurden zum Anfahren eines kontinuierlich betriebenen,
mit Rührer versehenen Fermenters verwendet, der ein Arbeitsvolumen von 3,0 1 hatte. Ein wäßriges Medium
der folgenden Zusammensetzung wurde dem Fermenter kontinuierlich zugeführt:
KH2PO4
Na2HPO4 12 H2O
NaNO3
MgSO4-7 H2O
Ca(NO3J2-4 H2O
CuSO4-5 H2O
FeSO4-7 H2O
J5 ZnSO4ZH2O
J5 ZnSO4ZH2O
MnSO4 H2O
CoCI2-6 H2O
Na2MoO4-2 H2O
H2SO4 (3,6 N)
H NO3 (13,6 N)
H NO3 (13,6 N)
Entmineralisiertes und
entsalztes Wasser
pH-Wert
Der Fermenter wurde bei einer Temperatur von 45°C, einer Verdünnungsrate von 0,18 und einer
Rührergeschwindigkeii von 150OUpM gehalten. Gas wurde dem Fermenter in einer Menge von 30 V/V/Stunde
zugeführt. Das Gas bestand aus 20 Vol.-% Methan
so und 80 Vol.-% Luft. Nach den ersten wenigen Minuten, in denen der pH-Wert mit 1,0 N-NaOH geregelt wurde,
wurde der pH-Wert durch Zusatz von 1,0 N-H2SO4 oder
I1ON-NaOH nach Bedarf aus einer automatischen
Titrationsapparatur bei 6,0 gehalten. Die Fermentation wurde durchgeführt, bis die Zelldichte auf etwa 5,0 g/l
(Trockengewicht) gestiegen war. Dann wurde auf ein Medium der folgenden Zusammensetzung übergegangen:
335,0 | mg/1 |
277,5 | mg/1 |
1193,8 | mg/1 |
160,0 | mg/1 |
90,0 | mg/1 |
4,6 | mg/1 |
14,5 | mg/1 |
0,6 | mg/1 |
0,8 | mg/1 |
0,03 | mg/1 |
0,3 | mg/1 |
0,34 | ml/1 |
3,1 | ml/1 |
bis 1000 ml | |
1,3 | |
60 H3PO4
MgSO4-ZH2O
KCl
FeSO4-7 H2O
CaCl2
CuSO4S H2O
CuSO4S H2O
ZnSO4-7 H2O
MnSO4 H2O
Na2MoO4-2 H2O
722,5 mg/1
375,0 mg/1
250,0 mg/1
37,5 mg/1
75,0 mg/1
15,0 mg/1
2,25 mg/1
0,75 mg/1
1,0 ms/1
CoCl2-6 H2O
NaOH
Entsalztes und
cntmineralisiertcs Wasser
pH-Wert
Stufe C
0,35 mg/l
250,0 mg/1
250,0 mg/1
bis 1000 ml
3,0
3,0
Betrieb unter stationären Bedingungen unter
Verwendung von Ammoniumhydroxyd sowohl als
Stickstoffquelle als auch zur pH-Regelung
des Kulturmediums
Zeit | Zufuhr des | Zelldichte | Überschüssige |
Nährmediums | NHi +-Konzentration | ||
im Kulturmedium | |||
Std. | ml/Stunde | g/l | mg/l |
0 | 510 | 4,9 | 16,2 |
12 | 510 | 5,1 | 7,5 |
24 | 510 | 4,9 | 12,3 |
36 | 510 | 5,0 | 10,9 |
48 | 510 | 5,2 | 9,2 |
60 | 510 | 5,1 | 20,3 |
72 | 510 | 4,9 | 31,7 |
84 | 510 | 5,0 | 25,5 |
96 | 510 | 5,0 | 18,4 |
lieh betriebenen Produktionsfermcnters mit einei
Arbeitsvolumen von 3,01 verwendet. Ein wäßrige Medium der folgenden Zusammensetzung wurde der
Fertnenter kontinuierlich zugeführt:
II)
Der pH-Wert wurde durch Zusatz von 1,1 N-Ammoniumhydroxyd
aus einer automatischen Titrationsapparatur in Abhängigkeit von den pH-Änderungen im
Kulturmedium bei 6,0 gehalten. Die Fermentation wurde wenigstens 7 Tage unter stationären Bedingungen
durchgeführt. Die Zelldichte unter diesen Bedingungen stabilisierte sich bei etwa 5,0 g/l, wobei Bakterienzellen
mit einer Geschwindigkeit von etwa 0,9 g (Trockengewicht) pro Liter und Stunde erhalten wurde.
Der auf Methan bezogene Ausbeutefaklor, d.h. das
Gewicht der Zellen (Trockengewicht), die pro Gewichtseinheit
des bei der Fermentation verbrauchten Methans erzeugt wurde, betrug 0,66. Der auf Sauerstoff 2r>
bezogene Ausbeutefaktor betrug 0,21.
Die folgenden Ergebnisse sind typisch für die während des Versuchs erhaltenen Resultate:
Die überschüssige Ammoniumionenkonzentration wurde in 10-ml-Proben des Kulturmediums nach einer
kolorimetrischen Methode bestimmt.
Die vorstehenden Ergebnisse zeigen, daß durch Verwendung eines Mediums mit einem genauen
pH-Wert, der speziell auf eine Fermentation unter ganz bestimmten stationären Bedingungen abgestimmt ist,
die überschüssige Acidität im Kulturmedium auf eine Höhe begrenzt wird, die nur eine sehr begrenzte
Neutralisation durch Ammoniumhydroxyd erfordert. r>5
Diese Ammoniumhydroxydmenge führt zu einer überschüssigen Anuiioniumioncnkonzcntration im Kulturmedium,
die normalerweise zwischen 7,5 und 31,7 mg/l liegt. Die Hauptmenge des der Fermentation zugeführten
AmmoniumhydiOxyds wurde sofort als Stickstoff- wi
quelle für das Wachstum der Methan verwertenden Bakterienkultur ausgenutzt.
3,0 I eines Kulturmediums, das die Methan verwerten- br>
de Baktcrienpopulation enthielt, die gemäß den Isolicr-
und Zclldichtc-Aufbaustufen A und I? von Beispiel 1 erhalten wurde, wurden zum Anfahren eines kontiniiier-
KH2PO4 | 335,0 mg/l |
Na2HPO4-12 H2O | 277,5 mg/l |
MgSO4 -7 H2O | 200,0 mg/l |
CaCI2 | 50,0 mg/l |
NaSO4 (wasserfrei) | 500,0 mg/l |
ZnSO4? H2O | 5,0 mg/l |
CuSO4-5 H2O | 2,0 mg/l |
MnSO4H2O | 0,2 mg/l |
NaMoO4 ·2 HO | 3,0 mg/l |
CoCI2-6 H2O | 0,01 mg/l |
FeSO4? H2O | 5,0 mg/l |
H2SO, | 2,3 Milliäquiva- |
lent/l | |
Entmineralisiertes und | |
entsalztes Wasser | zur Auffüllung auf 1 1 |
pH | 3,1 |
Stufe C
Betrieb unter stationären Bedingungen unter
Verwendung von Ammoniumhydroxyd sowohl
als Stickstoffquelle als auch zur pH-Regelung
des Kulturmediums
Der Fermenter wurde bei einer Temperatur voi 45°C, einer Verdünnungsrate von 0,18 und eine
Rührergeschwindigkeit von 1500UpM gehalten. Ga wurde dem Fermenter in einer Menge von 30 V/V/Stun
de zugeführt. Das Gas bestand aus 20 Vol.-% Methai und 80 Vol.-% Luft.
Der pH-Wert wurde durch Zusatz von 1,1 N-Ammo
niumhydroxyd nach Bedarf bei 6,0 gehalten. Di( Fermentation wurde unter stationären Bedingungen fü
eine Zeit von 7 Tagen durchgeführt. Die Zelldichti unter diesen Bedingungen betrug 4,5 g/l, wobei Bakte
rienzellen in einer Menge von 0,31 g (Trockengewicht pro Liter und Stunde erzeugt wurden. Der auf Methai
bezogene Ausbeutefaktor, d. h. das Gewicht der Zellet (Trockengewicht), das pro Gewichtseinheit des den
Fermenter zugeführten Methans erzeugt wurde, belruj 0,66. Der auf Sauerstoff bezogene Ausbeutefaktoi
betrug 0,21.
Durch Zusatz eines wäßrigen Nährmediums, dai einen pH-Wert von 3,1 hatte und 2,3 Milliäquivalen
H2SO4/! enthielt, zum Kulturmedium bei einer Verdün
nungsrate von 0,18/Stunde war die resultierendt Wasserstoffionenkonzentration in der wäßrigen Phase
derart, daß die Ammoniumionenmenge, die in dei wäßrigen Phase in jedem gegebenen Augenblicl·
erforderlich war, um den pH-Wert während de; kontinuierlichen Betriebs unter stationären Bedingun
gen bei 6 zu halten, im Bereich von 5,0 bis 50 mg/ variierte. Das Ammoniumhydroxyd wurde sowohl al;
Sticksloffquelle als auch als Mittel zur Regelung de; pH-Wertes des Kulturmediums verwendet.
Beispiel 3
Stufe B
Stufe B
Zwischenstufe zum Aufbau der Zelldichte für den
Betrieb unter stationären Bedingungen
Betrieb unter stationären Bedingungen
5,0 I Kulturmedium, das die Methan verwertende und gemäß Stufe A von Beispiel I erhaltene Baktcriennonu-
ίο
lation enthielt, wurden zum Anfahren eines kontinuierlich
betriebenen, mit Rührer versehenen Fermenters verwendet, der ein Arbeitsvolumen von 5,0 I hatte. Ein
wäßriges Medium der folgenden Zusammensetzung wurde dem Fermenter kontinuierlich zugeführt:
KH2PO4
Na2HPO4-12 H2O
NaNO3
MgSO4-7 H2O
Ca(NO3)2-4H2O
CuSO4-5 H2O
FeSO4-7 H2O
ZnSO4-7 H ,O
MnSO4-H2O
CoCI2-6H2O
Na2MoO4-2 H2O
H2SO4 (3,6 N)
HNO3(13,6N)
Entmineralisiertes und
entsalztes Wasser
pH
NaNO3
MgSO4-7 H2O
Ca(NO3)2-4H2O
CuSO4-5 H2O
FeSO4-7 H2O
ZnSO4-7 H ,O
MnSO4-H2O
CoCI2-6H2O
Na2MoO4-2 H2O
H2SO4 (3,6 N)
HNO3(13,6N)
Entmineralisiertes und
entsalztes Wasser
pH
782,0 mg/l
647,5 mg/l
2 785,5 mg/l
373,0 mg/l
210,0 mg/l
10,6 mg/l
33,8 mg/l
1.3 mg/l
1,8 mg/l
0,06 mg/l
0,75 mg/l
0,8 m!/l
7,3 ml/l
bis 1000 ml 1,3
wenigstens 7 Tage durchgeführt. Die Bakterienzellen wurden mit einer Geschwindigkeit von etwa 2,5 g
(Trockengewicht) pro Liter und Stunde erzeugt. Die überschüssige Ammoniumionenkonzentration im Kulturmedium
wurde nach der im Beispiel 2 beschriebenen Methode bestimmt. Die folgenden Ergebnisse sind
typisch für die während des Versuchs erhaltenen Resultate:
Zufuhr von
Nährmedium
Nährmedium
Std. ml/Std.
Zelldichte
g/l
Überschüssige
NH4+ -Konzentration
im Kulturmedium
mg/l
20 0
12
24
36
48
60
72
84
96
12
24
36
48
60
72
84
96
820
820
820
820
820
820
820
820
820
820
820
820
820
820
820
820
820
Der Fermenter wurde bei einer Temperatur von 45°C, einer Verdünnungsrate von 0,18 h-' und einer Rührergeschwindigkeit
von 3000 UpM betrieben. Gas wurde dem Eintritt des Fermenters in einer Menge von 66 V/V
und Stunde zugeführt. Das Gas bestand aus 18,2 Vol.-%
Methan und 81,8 Vol.-% Luft. Der pH-Wert wurde auf 6,1 eingestellt und anschließend durch Zusatz von 1,0
N-H2SO4 oder 1,0 N-NaOH nach Bedarf aus einer
automatischen Tilrationsapparatur bei 6,1 gehalten.
Unter diesen Bedingungen stieg die Zelldichte allmählich auf etwa 14 g (Trockengewicht) pro Liter. In
dieser Phase wurde auf ein Medium der folgenden Zusammensetzung übergegangen:
14,1 | 14,4 | 4 |
14,0 | 11,5 | |
14,1 | 9,2 | |
14,0 | 10,4 | |
14,0 | 18,3 | |
14,1 | 17.6 | |
14,2 | 20,4 | |
14,1 | 21,2 | |
14,0 | 18,5 | |
Beispiel | ||
Stufe B |
Zwischenstufe zum Aufbau der Zelldichte für den
Betrieb unter stationären Bedingungen
Betrieb unter stationären Bedingungen
5,01 Kulturmedium, das die gemäß Stufe A von Beispiel 1 erhaltene, Methan assimilierende Baklerienpopulation
enthielt, wurden zum Anfahren eines kontinuierlich betriebenen, mit Rührer versehenen
Fermenters verwendet, der ein Arbeitsvolumen von 5,0 I hatte. Ein wäßriges Medium der folgenden Zusammen-
KH2PO4 | Stufe C | 937,5 mg/l | Setzung wurde dem Fermentcr k( | Dntinuierlich zugefü |
Na2HPO4-12 H2O | Hotrinh iinlpr *it:ition:irnn Rnrlii | 787,5 mg/l | ||
MgSO., -7 H2O | 562,5 mg/l | id KH2PO4 | 782,0 mg/l | |
FcSO4-7 H2O | 50,6 mg/l | Na^HPO4-12 H2O | 647,5 mg/l | |
CaCI2 | 112,5 mg/l | NaNO, | 2 785,5 mg/l | |
CuSO4-5 H2O | 20,5 mg/l | MgSO4? H2O | 373,0 mg/l | |
ZnSO4 7 H2O | 2,5 mg/l | Ca(NO,)2-4H2O | 210,0 mg/l | |
MnSO4-H2O | 1,7 mg/l | « CuSO4S H2O | 10,6 mg/l | |
Na2MoO4-2 H2O | 1,5 mg/l | FeSO4-7 H2O | 33,8 mg/l | |
CoCI2-OH2O | 0,5 mg/l | ZnSO4-7 H2O | 1,3 mg/l | |
Na2SO4 | 225,0 mg/l | MnSO4-H2O | 1,8 mg/l | |
H2SO4(3,6 N) | 0,2 ml/l | CoCI2-6H2O | 0,06 mg/l | |
Entmineralisiertes und | w Na2MoO4 2H2O | 0,75 mg/l | ||
entsalztes Wasser | bis 1000 ml | H2SO4(3,6N) | 0,8 ml/1 | |
pH | 2,6 | HNO,(13,6N) | 7,3 ml/l | |
Entmineralisiertes und | ||||
entsalztes Wasser | bis 1000 ml | |||
ηυιιηϊπΜΐ iinfcr | 11 pH-Wert | 1,3 |
Verwendung von Ammoniumhydroxyd sowohl als Stickstoffquelle als auch zur pH-Regelung
des Kulturmediums
Der pH-Wert des Kulturmediums wurde durch wi
Zusatz von 1,1 N-NH4OH-L.ösung aus einer automatischen
Titrationsapparatur in Abhängigkeit von pH-Änderungen im Kulturmedium bei 6,1 gehalten. Das
Ammoniumhydroxyd diente sowohl als Stickstoffquelle für das Wachstum als auch als Neutralisationsmiltel. hi
Die Zelldichte stabilisierte sich unter diesen Bedingungen bei etwa 14 g (Trockengewicht)/!. Die Fermentation
wurde unter stationären Bedingungen für Der Fermenter wurde bei einer Temperatur von
45°C, einer Verdünnungsrate von 0,10 h ' und einer Rührergeschwindigkeit von 3000 LJpM betrieben. Gas
wurde dem Eintritt des Fermenters in einer Menge von 66 V/V/Stunde zugeführt. Das Gas bestand aus
18,2 Vol.-% Methan und 81,8 Vol.-% Luft. Der pH-Wert
.viirde auf 6,1 eingestellt und dann durch Zusatz von 1,0
N-H2SO4 oder 1,0 N-NaOI l-l.ösung (nach Bedarf) aus
einer automatischen Titrationsapparatur bei 6,1 gehalten.
Unter diesen Bedingungen stieg die Zelldichte allmählich auf etwa 25 g (Trockengewicht)/!. In dieser
Phase wurde auf ein Medium der folgenden Zusammensetzung übergegangen:
Fermenter hatte ein Arbeilsvolumen von 5,01 und
enthielt 5,0 I eines wäßrigen Mediums der folgenden Zusammensetzung:
KH2PO4 | 1 875,0 mg/1 | 5 | KH2PO4 | 1 600,0 mg/1 |
Na2HPO4 ■ 12 H2O | 1 575,0 mg/1 | Na2HPO4 · 12H,O | 2 928,0 mg/1 | |
MgSO4 · 7 H2O | 1 125,0 mg/1 | NaNO3 | I 180,0 mg/1 | |
FeSO4 · 7 H2O | 101,4 mg/1 | MgSO4 · 7 H2O | 80,0 mg/1 | |
CaCI2 | 225,0 mg/1 | FeSO4 ■ 7 H2O | 14,0 mg/1 | |
CuSO4 · 5 H2O | 41,0 mg/1 | IO | Ca(NO3)2 -4H2O | 25,0 mg/1 |
ZnSO4 -7H2O | 5,0 mg/1 | CuSO4 · 5 H2O | 4,0 mg/1 | |
MnSO4 · H2O | 3,4 mg/1 | ZnSO4 · 7 H2O | 0,34 mg/1 | |
Na2MoO4 · 2 H2O | 2,9 mg/1 | MnSO4 · H2O | 0.30 mg | |
CoCI2 · 6 H2O | 1,0 mg/1 | Na2MoO4 · 2 H2O | 0,24 mg/1 | |
Na^SO4 | 450,0 mg/1 | 15 | Entmineralisiertes und | |
H2SO4 (36 N) | 0,4 ml/1 | entsalztes Wasser | zur Auffüllung | |
Entsalztes und | auf 1 Liter | |||
entmineralisiertes Wasser | bis 1000 ml | pH-Wert | 6,25 | |
pH-Wert | 2,3 | |||
Stufe C
Betrieb unter stationären Bedingungen unter
Verwendung von Ammoniumhydroxyd sowohl als
Stickstoffquelle aus auch zur pH-Regelung
des Kulturmediums
Der pH-Wert des Kulturmediums wurde durch Zusatz von 1,1 N-NH4OH-Lösung aus einer automatischen
Titrationsapparatur in Abhängigkeit von den pH-Änderungen im Kulturmedium bei 6,1 gehalten. Das
Ammoniumhydroxyd diente sowohl als Stickstoffquelle für das Wachstum als auch als Neutralisationsmittel.
Die Zelldichte stabilisierte sich unter diesen Bedingungen bei etwa 25,0 g (Trockengewicht)/!. Die
Fermentation wurde unter stationären Bedingungen für eine Zeit von wenigstens 7 Tagen durchgeführt. Die
Erzeugung an Bakterienzellen betrug etwa 2,5 g (Trockengewicht) pro Liter und Stunde. Die überschüssige
Ammoniumionenkonzentration im Kulturmedium wurde nach einer kolorimetri.chen Methode bestimmt.
Die folgenden Ergebnisse sind typisch für die während des Versuchs erhaltenen Resultate:
Zufuhr von
Nährmedium
Nährmedium
ml/Std
Zelldichte Überschüssige
NH4+ -Konzentration im Kulturmedium
g/l
mg/1
O | 415 |
12 | 415 |
24 | 415 |
36 | 415 |
48 | 415 |
60 | 415 |
72 | 415 |
84 | 415 |
96 | 415 |
25,0 | 21,6 | 5 |
25,0 | 22,0 | |
24,5 | 18,0 | |
25,0 | 19,5 | |
25,5 | 17,2 | |
25,0 | 22,0 | |
24,5 | 25,0 | |
24,5 | 30,2 | |
25,0 | 30,0 | |
Beispiel | ||
Stufe Λ |
Methode zur Gewinnung einer Kultur von Methan
verwertenden Bakterien für die Verwendung beim
Verfahren gemäß der Erfindung
Aufschlüminungcn von je 500 ml von niethanhaltigem
Schlamm aus stehenden Hecken wurden in täglichen Abständen für eine Zeit von 5 Tagen zu einem
belüfteten und gerührten Fermenter gegeben. Der Der Fermenter wurde bei einer Temperatur von
45°C, einer Verdünnungsrate von 0,084/Stunde und einer Rührergeschwindigkeit von 1000 UpM gehalten.
Der pH-Wert wurde durch Zusatz von 0,5 N-Natriumhydroxyd
nach Bedarf bei 6,75 gehalten. Ein Gasgemisch, das aus 33 Vol.-% Methan, 64 VoI.-% Luft
und 3 Vol.-% Kohlendioxyd bestand, wurde dem Eintritt des Fermenters in einer Menge von 20V/V/Stunde
zugeführt.
Eine Methan verwertende Bakterienpopulation wurde der natürlichen Entwicklung unter diesen selektiven
Bedingungen überlassen.
Nach einer Betriebsdauer von 7 Tagen unter Verwendung dieses Mediums unter den vorstehend
genannten Bedingungen erreichte die Bakterienpopulation eine Zelldichte von 1,10 g (Trockengewicht) pro
Liter. Sie hatte die nachstehend genannte Zusammensetzung. Nur ein Methan verwertender Stamm von
Bakterium konnte aus dieser Population isoliert werden. Die anderen Bakterienarten vermochten Methan nicht
zu verwerten. Der Anteil der Methan verwertenden Bakterien an den anderen Bakterienarten betrug
zahlenmäßig etwa 90 bis 95%. Das Methan verwertende Bakterium war ein Coccus mit einem Durchmesser von
etwa 1,1 bis 1,4 μ. Er war kapselbildend und konnte sowohl Methan als auch Methanol, aber keine Glucose
verwerten. Auf einem festen Medium, hergestellt durch Zusatz von 1,0% (Gew.-/Vol.) Agar zu dem zu Beginn
beschriebenen Fermentationsmedium hatten die Kolonien nach einer Bebrütungsdauer von 3 bis 4 Tagen bei
45°C unter einer Atmosphäre von Methan und Luft (Volumenverhältnis 50 :50) die folgende Morphologie:
Der Durchmesser betrug etwa 1 bis 2 mm, und das Aussehen war weiß, glatt und abgerundet. Diese
Merkmale stimmen in jeder Hinsicht mit den Merkmalen eines Stammes von Methylococctis capsulatus
übercin, der von ). W. Fo s t e r und R. H. D avis in J.
Bact. Vol. 91,(1955) 1924, und R. W h i 11 e η b u ry , K.
C. Phillips und |. F. Wilkinson in |. Gen.
Microbiology, 61 (1970) 205, beschrieben wurde.
Stufe B
Zwischenstufe zum Aufbau der Zelldichtc für den
Betrieb unter stationären Bedingungen
Betrieb unter stationären Bedingungen
5 1 Kulturmedium, das die in der voi stehend beschriebenen Weise erhaltene, Methan verwertende
Bakterienpopulalion enthielt, wurden zum Anfahren eines kontinuierlich betriebenen Prodiiktionsfermenters
mit einem Arbeitsvolumen von 5,01 verwendet. Ein
wäßriges Medium der folgenden Zusammensetzung wurde dem Fermenter kontinuierlich zugeführt:
KH2PO4 | 937,5 mg/l |
Na2HPO4 12H2O | 787,5 mg/l |
MgSO4 ■ 7 H2O | 562,5 mg/l |
H2SO4 | 706,0 mg/l |
CaCl2 (wasserfrei) | 112,5 mg/l |
FeSO4 ·7Η2Ο | 42,7 mg/l |
Na2SO4 (wasserfrei) | 225,0 mg/l |
CuSO4 · 5 H2O | 20,5 mg/l |
ZnSO4 · 7 H2O | 2,5 mg/l |
Na2MoO4 · 2 H2O | 1,5 mg/l |
MnSO4 · H2O | 1,7 mg/l |
CoCl2 ■ 6 H2O | 0,5 mg/l |
Wasser | zur Auffüllung |
auf 1 1 | |
pH-Wert | etwa 2,6 |
IO
20
Der Fermenter wurde bei einer Temperatur von 45°C, einer Verdünnungsrate von 0,18 und einer
Rührergeschwindigkeit von 3000 UpM betrieben. Gas in einer Menge von 66 V/V/Std. wurde dem Eintritt des
Fermenters zugeführt. Das Gas bestand aus 18,2 Vol-% Methan und 81,8 Vol.-% Luft. Der pH-Wert wurde mit
NaOH auf 6,5 eingestellt und anschließend bei 6,5 gehalten, indem 1,0 N-NaOH nach Bedarf aus einer
automatischen Titrationsapparatur zugesetzt wurde.
Der Stickstoff wurde als Ammoniumhydroxyd (1,1 N) jo
zugeführt, das in den Fermenter in allmählich steigender Menge so eingeführt wurde, daß eine Zelldichte von
etwa 10 g (Trockengewicht) aufgebaut wurde. Die »überschüssige« Ammoniumionenkonzentration im
Kulturmedium wurde ermittelt, indem alle 10 Minuten j-,
10 ml Kulturmedium entnommen wurden und dann die Ammoniumionenkonzentration nach der kolorimetrischen
Methode bestimmt wurde, die von ]. Paul in Analyst 83 (1958) 37-42 (oder G. G. Maynell und E.
M a y η e 11 »Theory and Practice of Experimental Bacteriology, Cambridge University Press), beschrieben
wird. Es ist auch möglich, die Ammoniumionenkonzentration mit einer »Ammoniaksonde« in Kombination
mit einem pH-Meßgerät zu bestimmen. Der »Überschuß« der Ammoniumionen im Kulturmedium wurde
bei einer Konzentration von 5 — 10 mg/l gehalten, indem die Menge, in der das Ammoniumhydroxyd in den
Fermenter gepumpt wurde, von Hand geregelt wurde.
Stufe C
Betrieb unter stationären Bedingungen unter Verwendung von Ammoniumhydroxyd als Stickstoffquelle
mit einer unabhängigen pH-Regelung unter
Verwendung von Natriumhydroxyd
Verwendung von Natriumhydroxyd
Als die Zelldichte des Fermenters in der Stufe B 13,5 g/l erreicht hatte, wurde mit dem Betrieb unter
stationären Bedingungen begonnen, wobei unter den gleichen Fermentationsbedingungen, wie sie für die
Stufe B beschrieben wurden, gearbeitet wurde. Der mi
»Überschuß« an Ammoniumionen wurde mit Hilfe einer der oben beschriebenen Methoden bei einer Konzentration
zwischen 5 und 10 mg/l gehalten. In dieser Phase war die Menge pro Zeiteinheit, in der das Ammoniumhydroxyd
in den Fermenter gepumpt wurde, mit hr>
Ausnahme von kleinen Korrekturen praktisch konstant.
Die Fermentation wurde unter stationären Bedingungen 17 Tage durchgeführt. Die Zclldichtc unter den
vorstehend genannten Bedingungen betrug 13,5 g/l bei einer Produktionsgeschwindigkeit an Bakterienzellen
von 13,5-0,18 g (Trockengewicht) pro Liter und
Stunde. Die auf Methan bezogene Ausbeute, d. h. das Gewicht der Zellen (Trockengewicht), die pro Gewichtseinheit
des dem Fennenter zugeführien Methans erzeugt wurden, betrug 0,63. Die auf Sauerstoff
bezogene Ausbeute betrug 0,23.
Beispiel 6
Stufe B
Stufe B
Zwischenstufe zum Aufbau der Zelldichte für den
Betrieb unter stationären Bedingungen
Betrieb unter stationären Bedingungen
3,01 Kulturmedium, das die gemäß Stufe A von
Beispiel 1 erhaltene. Methan verwertende Bakterienpopulation
enthielt, wurden zum Anfahren eines kontinuierlich unter Rühren betriebenen Fermenters mit einem
Arbeitsvolumen von 3,01 verwendet. Ein wäßriges Medium der folgenden Zusammensetzung wurde dem
Fermenter kontinuierlich zugeführt:
KH^PO4 | 335,0 mg/l |
Na2HPO4 · 12H2O | 277,5 mg/l |
MgSO4 · 7 H2O | 160,0 mg/l |
FeSO4 · 7 H2O | 14,5 mg/l |
CaCI2 | 40,0 mg/l |
CuSO4 · 5 H2O | 4,55 mg/l |
ZnSO4 · 7 H2O | 0,55 mg/l |
MnSO4 · H2O | 0,75 mg/l |
Na2MoO4 · 2 H2O | 0,32 mg/l |
CoCl2 ■ 6 H2O | 0,023 mg/l |
H2SO4 (3,6 N) | 0,125 ml/1 |
Entmineralisiertes und | |
entsalztes Wasser | zur Auffüllung |
auf 1000 ml | |
pH-Wert | 2,6 |
Der Fermenter wurde bei einer Temperatur von 45°C, einer Verdünnungsrate von 0,18 und einer
Rührergeschwindigkeit von 1500 UpM betrieben. Ein aus 20 VoL-0Zb Methan und 80 Vol.-% Luft bestehendes
Gas wurde dem Fermenter in einer Menge von 30 V/V/Std. zugeführt.
Stufe C
Betrieb unter stationären Bedingungen unter Verwendung
von Ammoniumhydroxyd als Stickstoffquclle mit unabhängiger pH-Regelung unter Verwendung
von Natriumhydroxyd
von Natriumhydroxyd
Der pH-Wert wurde durch Zusatz von 1,ON-Natriumhydroxyd
aus einer automatischen Titrationsapparatur in Abhängigkeit von pH-Werländcrungen im
Kulturmedium bei 6,6 gehalten. Eine 1,1 N-Ammoniumhydroxydlösung wurde mit einer Pumpe zugesetzl,
wobei die Menge gemäß der bestimmten Ammoniumionenkonzentration im Kulturmedium eingestellt wurde.
Die Ammoniumionenkonzcnlration wurde nach einer kolorimetrischen Methode bestimmt, die in Beispiel 5
(Stufe B) genannt ist. Die Fermentation wurde für eine Mindestzeit von 7 Tagen durchgeführt. Die Zclldichtc
unter diesen Bedingungen betrug etwa 5,0 g/l entsprechend einer Erzeugung von Bakterienzellen von
etwa 0,9 g (Trockengewicht) pro Liter und Stunde. Die folgenden Ergebnisse sind typisch für die während des
Versuchs erhaltenen Resultate;
15
Zeit
Sid.
Einsatz des
Nährmediums
Nährmediums
ml/Std.
Aufnahme von 1,0 N-NaOH gem. Titration
ml/Stunde Zelldichte
g/l
Überschüssige
N H4+ -Konzentration
im Kulturmedium
mg/1
0
12
24
36
48
60
72
84
96
12
24
36
48
60
72
84
96
500
500
500
500
500
500
500
500
500
500
500
500
500
500
500
500
500
3,0
3,0
2,9
3,0
3,1
2,9
3,0
3,0
2,9
3,0
2,9
3,0
3,1
2,9
3,0
3,0
2,9
4,9
5,0
5,0
4,9
4,9
5,0
5,0
4,8
5,0
5,0
5,0
4,9
4,9
5,0
5,0
4,8
5,0
15,0
8,0
7,5
10,0
12,5
15,0
17,5
16,0
15,0
Die vorstehenden Ergebnisse zeigen, daß durch Zuführung von Ammoniumhydroxyd mit einer Pumpe in
Abhängigkeit von der überschüssigen NH4 + -Ionenkonzentration
im Kulturmedium eine Fermentation unter stationären Bedingungen durchgeführt werden kann.
Durch Neutralisation mit Natriumhydroxyd wird der pH-Wert des Kulturmediums konstant gehalten.
Stufe B
Zwischenstufe zum Aufbau der Zelldichte
Zwischenstufe zum Aufbau der Zelldichte
5,01 Kulturmedium, das die gemäß Stufe A von Beispiel 1 erhaltene, Methan verwertende Bakterienpopulation
enthielt, wurden zum Anfahren eines kontinuierlich betriebenen, mil Rührer versehenen Fermenters
mit einem Arbeitsvoll.men von 5,01 verwendet. Ein
wäßriges Medium der folgenden Zusammensetzung wurde dem Fermenter kontinuierlich zugeführt:
JO
HjPO4 | • 7 H2O | 6H2O | I 098,0 mg/1 |
MgSO4 | 825,0 mg/1 | ||
KCI | 275,0 mg/1 | ||
Na2SO4 | 7H2O | 210,0 mg/1 | |
FeSO4 · | 54,4 mg/1 | ||
CaCI2 | ■ 5 H2O | 75,0 mg/1 | |
CuSO4 | ■ 7 H2O | 20,6 mg/1 | |
ZnSO4 | • H2O | 2,9 mg/1 | |
MnSO4 | Na2MoO4 · 2 H2O | 0,8 mg/1 | |
CoCI2 · | 1,5 mg/1 | ||
0,5 mg/1 |
45
50 Entmineralisiertes und
entsalztes Wasser
entsalztes Wasser
pH-Wert
zur Auffüllung auf 1000 ml 2,25
Der Fermenter wurde bei einer Temperatur voi 45°C, einer Verdünnungsrate von 0,18 h-' und eine
Rührergeschwindigkeit von 3000 UpM betrieben. Eil aus 18,2 Vol.-% Methan und 81,8 Vol.-% Luf
bestehendes Gas wurde dem Eintritt des Fermenters ii einer Menge von 66 V/V/Std. zugeführt.
Eine 1,1 N-Ammoniumhydroxydlösung wurde mi
einer Pumpe in den Fermenter eingeführt. Di< zugeführte Menge wurde nach der Ammoniumionen
konzentration im Kulturmedium unter Anwendung dei in Beispiel 5 beschriebenen Bestimmungsmethodf
geregelt. Der pH-Wert wurde durch Zusatz vor 1,0 N-NaOH-Lösung aus einer automatischen Titra
tionsapparatur in Abhängigkeit von pH-Wertänderun gen im Kulturmedium bei 6,2 gehalten.
Stufe C
Betrieb unter stationären Bedingungen unter Verwendung von Ammoniumhydroxyd als Sticksloffquelle
bei unabhängiger pH-Regelung unter Verwendung von Natriumhydroxyd
Die Zelldichte unter diesen Bedingungen stabilisierte
sich bei etwa 14 g (Trockengewicht) pro Liter. Di« Fermentation wurde wenigstens 7 Tage unter stationä
ren Bedingungen durchgeführt. Die Erzeugung ar Bakterien betrug etwa 2,5 g (Trockengewicht) pro Litei
und Stunde.
Die folgenden Ergebnisse sind typisch für die während des Versuchs erhaltenen Resultate.
Zeit
Std.
Zufuhr des
Nährmediums
Nährmediums
ml/Std.
Aufnahme von 1,0 N-NaOH gem. Titration
ml/Stunde Zelldichte
g/l
Überschüssige
N H4+ -Konzentration
im Kulturmedium
mg/1
0 | 815 | 5,3 | 13,9 | 15,0 |
12 | 815 | 5,5 | 14,0 | 12,5 |
24 | 815 | 5,7 | 14,3 | 10,0 |
36 | 815 | 5,8 | 14,4 | 9,5 |
48 | 815 | 5,5 | 14,0 | 10,0 |
60 | 815 | 5,7 | 14,1 | 8,0 |
72 | 815 | 5,1 | 14,3 | 7,5 |
84 | 815 | 5,6 | 14,0 | 7,8 |
96 | 815 | 5,7 | 14,4 | 9,5 |
709 585/18;
Claims (3)
1. Kontinuierliches Verfahren zur Umwandlung von Methan in Eiweißstoffe durch kontinuierliche
Kultivierung von Methan verwertenden Mikroorganismen in einem wäßrigen Kulturmedium, das
Nährsalze und Ammoniumionen enthält und dem ein wäßriges Nährmedium zugesetzt wird, in Gegenwart
von Methan und eines freien Sauerstoff enthaltenden Gases, dadurch gekennzeichnet,
daß man den pH-Wert des Kulturmediums im Bereich von 4,5 bis 8,0 und die Ammoniumionenkonzentration
im Kulturmedium im Bereich von 2 bis 80, vorzugsweise 2 bis 50 mg pro Liter, und die
Produktionsgeschwindigkeit unter stationären Bedingungen bei wenigstens 0,81 g (Trockengewicht)
Mikroorganismus pro Liter und Stunde hält.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß der pH-Wert des dem Kulturmedium
zuzusetzenden wäßrigen Nährmediums so gewählt wird, daß zur Regelung des nach diesem Nährmediumzusatz
erhaltenen pH's des Kulturmediums innerhalb des pH-Bereiches von 4,5 bis 8,0 nicht
mehr als 80 mg Ammoniumionen pro Liter erforderlich sind.
3. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man den pH-Wert des Kulturmediums
durch Zusatz von Säure oder Alkali mit Ausnahme von Ammoniak oder Ammoniumhydroxyd im
Bereich von 4,5 bis 8,0 und die Ammoniumionenkonzentration in Abhängigkeit von durch Apparaturen
bestimmten Werten der Ammoniumionenkonzentration im Kulturmedium im Bereich von 2 bis 80 mg
pro Liter hält.
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JP (1) | JPS4828683A (de) |
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