DE2230046C3 - Verfahren zum Herstellen von L-Arginin durch Fermentation - Google Patents
Verfahren zum Herstellen von L-Arginin durch FermentationInfo
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- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
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- C12P13/04—Alpha- or beta- amino acids
- C12P13/10—Citrulline; Arginine; Ornithine
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Description
Die Erfindung bezieht sich auf ein Verfahren zur Herstellung von L-Arginin (im folgenden als Arginin
bezeichnet) durch Fermentation.
Arginin ist eine wichtige Aminosäure, die in der pharmazeutischen und Nahrungsmittel-Industrie in
großem Umfang verwendet wird. Es wird in technischem Umfang aus Proteinhydrolysaten mit verhältnismäßig
hohen Kosten nach einem umständlichen Isolierungsverfahren gewonnen. Es ist bekannt, daß
bestimmte wilde Stämme von Kohlenwasserstoff assimilierenden Corynebacterium und Brevibacterium
diese Aminosäure in einer sehr geringen Konzentration zu bilden vermögen (vgl. US-Patentschrift 32 22 258 und
34 40 141).
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, einen Mikroorganismus zur Verfugung zu stellen, der in einem
wäßrigen Medium Arginin in größerer Ausbeute bilden kann.
Die Erfindung ist in den zwei Ansprüchen definiert.
Zur Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahren wii'd ein Mutantenstamm von Microbacterium verwendet,
der sich durch bekannte Mutationsverfahren von einem Urstamm von Microbacterium, welcher kein
extrazelluläres Arginin bilden kann, ableiten läßt. Dieser Arginin wirksam produzierende Mutantenstamm ist
widerstandsfähig gegen eine das Wachstum des Urstamms hemmende Substanz, wie 2-Thienylserin,
D-Serin, Äthionin, 2-Thiazolalanin, a-Amino-/i-hydroxyvalerinsäure,
6-Chlorpurin und Schwefeldrogen (SuI-foguanidin, Sulfomerazin, Sulfisomezol, Sulfisoxazol und
dergleichen).
Die für die Zwecke der Erfindung zu verwendenden Kulturmedien sind übliche Medien und enthalten
assimilierbare Kohlenstoffquellen, assimilierbare Stickstoffquellen, anorganische Ionen und, falls notwendig,
kleinere organische Nährbestandteile. Bei den assimilierbaren Kohlenstoffquellen handelt es sich um
Kohlenstoffhydrate wie Glucose, Sucrose, Stärke, Stärkehydrolysate oder Melassearten, organische Säuren
wie Essigsäure, Gluconsäurc Bernsteinsäure und Zitronensäure und um Alkohole, wie Äthanol und bei
einem bestimmten Stamm um n-Alkane. Assimilierbare Stickstoffquellen enthalten Ammoniumsalze, Nitrate,
Aminosäuren, Harnstoff und gasförmiges Ammoniak.
Für eine gute Arginin-Ausbeute wird die Fermentation aerob unter Belüftung und Rühren durchgeführt.
Beste Ergebnisse erfordern eine pH-Steuerung im Bereich von 5 bis 9. Der gewünschte pH kann mit Hilfe
von gasförmigem oder wäßrigem Ammonaik, Kaliumcarbonat, Alkalihydroxyd, Harnstoff organischen oder
anorganischen Säuren aufrechterhalten werden.
Wenn die Fermentation bei 24 bis 37° C durchgeführt wird, wird die maximale Konzentration von Arginin in
der Nährbrühe in 2 bis 7 Tagen erreicht.
Das in der Fermentationsbrühe angesammelte Arginin kann auf übliche Weise isoliert werden, z. B. unter
Anwendung eines Ionen-Austauscherharzes in Verbindung mit Ausfällen Das Arginin konnte durch seine
Ninhydrin-Reaktion auf einem Papierchromatogramm, durch den Rf-Wert auf dem Papierchromatogramm,
durch eine positive Sakaguchi-Reaktion und durch Wachstumskurven von Arginin erfordernde Mutanten
vn Milchsäurebakterien identifiziert werden. Das Arginin in der Brühe wurde durch Prüfung an lebenden
Leuconostoc mesentroiden ATCC 8042 bestimmt.
300 ml Anteile eines Mediums welches 10 g/dl Glukose, 0,2 g/dl KH2PO4, 1,5 g/dl (NH4J2SO4, 0,04 g/dl
MgSO4 · 7 H2O, 50 μg/l Biotin, 50 μg/l Thiamin · HCl,
1 mg/dl FeSO4 · 7 H2O, 1 mg/dl MnSO4 · 4 H2O und
1 ml/dl Sojaprotein-Hydrolysat enthielt und einen pH von 7,5 aufwies, wuren in 1000 ml fassende Fermentationsgefäße
gegeben und in der Hitze sterilisiert.
Das Gefäß wurde mit Microbacterium ammoniaphi-Ium AJ 3353 (FERM-P 976) geimpft, die vorher in schräg
gehaltenen Reagenzglaskulturen auf bouillon agar kultiviert waren. Das so geimpfte Gefäß wurde unter
Lüften und 48 Stunden langem Rühren bei 31 °C gehalten, wobei der pH mit gasförmigem Ammoniak bei
7,5 eingestellt wurde. Die gebildete Brühe enthielt 0,41 g/dl Arginin. 21 dieser Brühe wurden zur
Entfernung von Zellen zentrifugiert. Die überstehende Flüssigkeit wurde durch eine Säule geschickt, die mit
einem lonen-Austauscherharz, Amberlite C-50; NH4-Typ,
beschickt war. Das Arginin wurde mit 2-n NH2OH eluiert. Das Eluat wurde zum Ausfällen von rohem
kristallinen Arginin konzentriert. Dabei wurden 4,9 g Kristalle erhalten.
In ein 1000 ml fassendes Fermentationsgefäß wurden
300 ml Proben eines Mediums gegeben, das 0,3 g/dl Ammoniumacetat 0,4 g/dl Kaliumacetat, 0,1 g/dl
KH2PO4, 0,04 g/dl MgSO4 · 7 H2O, 1 mg/dl
FeSO4 · 7 H2O, 1 mg/dl MnSO4 · 4 H2O, 2 ml/dl Sojaprotein-Hydrolysat,
50 μg/l Biotin, 50 μg/l Thiamin. HCl,
0,5 ml/dl Maisbrühe und 0,3 g/dl Harnstoff enthielt und sich bei einem pH von 7,2 befand. Anschließend wurde
in der Hitze sterilisiert.
In das Fermentationsgefäß wurden Microbacterium ammoniaphilum AJ 3353 (FERM-P 976) auf einem
Medium gegeben, das 0,5 g/dl Glukose, 1 g/dl Hefeextrakt und 1 g/dl Pepton enthielt; es wurde zusammen
mit 15 ml der gebildeten Brühe in das Fermentationsgefäß gegeben. Die Fermentation wurde unter Rühren mit
1200 μίτι bei 31,5°C durchgeführt, wobei 300 ml/min
Luft in das Gefäß eingeleitet wurden. Während der Fermentation wurde der pH des Mediums auf 7,0 bis 7,7
gehalten durch Zugeben von 60%iger Essigsäure oder gasförmigem Ammoniak. Nach 48 Stunden waren 36,6 g
Essigsäure verbraucht und es hatten sich 0,24 g/dl Arginin in der Brühe gebildet.
In ein 1000 ml fassendes Fermentationsgefäß wurden 300 ml Proben eines Mediums gegeben, das 1,5 g/dl
Äthanol, 0,5 g/dl (NH4J2SO4, 0,1 g/dl KH2SO4, 0,04 g/dl
MgSO4 · 7 H2O, 1 mg/dl FeSO4 ■ 7 H2O, 2 ml/dl Soja-
3 4
protein-Hydrolysat, 100μg/dl Biotin, 50 μg/l Thiamin. 300 ml/min durchgeführt Während der Fermentation
HCl und 0,5 ml/dl Maisbrühe enthielt Die Flüssigkeit wurde der pH des Mediums durch Zuführen von
wurde bei einem pH von 7,2 gehalten und in der Wärme gasförmigem Ammoniak auf 7,0 bis 7,5 gehalten. Die
sterilisiert 15 ml des gleichen Impfmaterials wie in Äthanol-Konzentration wurde gaschromatographisch
Beispiel 2 von Microbacterium ammoniaphilum AJ 3353 5 bestimmt und bei etwa 0,1 g/dl gehallen. Nach 48
(FERM-P 976) wurden in das Fermentationsgefäß Stunden hatten sich 0,22 g/dl Arginin in der Fermenta-
gegeben. Die Fermentation wurde unter Rühren bei tionsbrühe gebildet (Die Ausbeute an Arginin bezogen
1500 upm bei 300C und bei einer Luftzufuhr von auf zugegebenen Äthylalkohol betrug 2,0%.)
Claims (1)
1. Verfahren zur Herstellung von L-Arginin, dadurch gekennzeichnet, daß man Microbacterium
ammoniaphilum AJ 3353 (FERM-P 976) in einem wäßrigen Medium kultiviert und das angereicherte
L-Arginin aus der Kulturbrühe isoliert.
Z Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man ein wäßriges Medium verwendet,
das eine oder mehrere Kohlenstoffquellen, insbesondere Glucose, Saccharose, Essigsäure und/oder
Äthanol, enthält.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19722230046 DE2230046C3 (de) | 1972-06-20 | 1972-06-20 | Verfahren zum Herstellen von L-Arginin durch Fermentation |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19722230046 DE2230046C3 (de) | 1972-06-20 | 1972-06-20 | Verfahren zum Herstellen von L-Arginin durch Fermentation |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2230046A1 DE2230046A1 (de) | 1972-12-28 |
DE2230046B2 DE2230046B2 (de) | 1980-09-18 |
DE2230046C3 true DE2230046C3 (de) | 1981-08-06 |
Family
ID=5848223
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE19722230046 Expired DE2230046C3 (de) | 1972-06-20 | 1972-06-20 | Verfahren zum Herstellen von L-Arginin durch Fermentation |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
DE (1) | DE2230046C3 (de) |
-
1972
- 1972-06-20 DE DE19722230046 patent/DE2230046C3/de not_active Expired
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DE2230046B2 (de) | 1980-09-18 |
DE2230046A1 (de) | 1972-12-28 |
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