DE2044161A1 - Alkalische Protease und diese ent haltende Wasch und Reinigungsmittel - Google Patents

Alkalische Protease und diese ent haltende Wasch und Reinigungsmittel

Info

Publication number
DE2044161A1
DE2044161A1 DE19702044161 DE2044161A DE2044161A1 DE 2044161 A1 DE2044161 A1 DE 2044161A1 DE 19702044161 DE19702044161 DE 19702044161 DE 2044161 A DE2044161 A DE 2044161A DE 2044161 A1 DE2044161 A1 DE 2044161A1
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
protease
enzyme
detergents
bacillus licheniformis
sodium
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
DE19702044161
Other languages
English (en)
Inventor
John Peter Jamaica NY Viccaro (V St A)
Original Assignee
Unilever N V , Rotterdam (Niederlan de)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Unilever N V , Rotterdam (Niederlan de) filed Critical Unilever N V , Rotterdam (Niederlan de)
Publication of DE2044161A1 publication Critical patent/DE2044161A1/de
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • C12N9/50Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
    • C12N9/52Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from bacteria or Archaea
    • C12N9/54Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from bacteria or Archaea bacteria being Bacillus
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C11ANIMAL OR VEGETABLE OILS, FATS, FATTY SUBSTANCES OR WAXES; FATTY ACIDS THEREFROM; DETERGENTS; CANDLES
    • C11DDETERGENT COMPOSITIONS; USE OF SINGLE SUBSTANCES AS DETERGENTS; SOAP OR SOAP-MAKING; RESIN SOAPS; RECOVERY OF GLYCEROL
    • C11D3/00Other compounding ingredients of detergent compositions covered in group C11D1/00
    • C11D3/16Organic compounds
    • C11D3/38Products with no well-defined composition, e.g. natural products
    • C11D3/386Preparations containing enzymes, e.g. protease or amylase
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/814Enzyme separation or purification
    • Y10S435/816Enzyme separation or purification by solubility
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/832Bacillus
    • Y10S435/836Bacillus licheniformis
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/832Bacillus
    • Y10S435/839Bacillus subtilis

Description

Patentanwälte Dr. Ing. A. van der Worth
Dr. F. Lederer
'^ 21 Hamburg SO ,4, Sep.1970
Wilstorfer Straöe 3a
UNILEVER N.7. Museumparlc 1, Hotterdam/Holland
Alkalische Protease und diese enthaltendeWasch- und Reinigung mittel.
Priorität: S.September 1969, USA. Nr. 856 182
Die Erfindung betrifft eine alkalische Protease, erhalten als ein Wachstumsprodukt des Mikroorganismus Bacillus licheniformis ATCC No. 21424 in einem Nährstoffmedium, ein Verfahren zur Gewinnung der alkalischen Protease und diese Protease enthaltende Wasch- und Reinigungsmittel.
Alkalische Protease ist ein Ausdruck,welcher verwendet wird, um ein proteolytisches Enzym zu bezeichnen, welches eine optimale Aktivität in einem alkalischen Medium entfaltet. Derartige proteolytische Enzyme sind brauchbar als aktiver Bestandteil in modernen enzymhaltigen Wasch-, Reinigungsund Einweichmitteln. Das Enzym wird angewendet wegen seines Vermögens, die üblichen Schmutzarten und Flecken anzugreifen uni aus der Wäsche zu entfernen, welche zu einem erheblichen Teil aus Protein bestehen, wie z.B. Blut- und Grasflecken.
Eine Anzahl von Quellen für alkalische Protease sind zur Zeit bekannt. Einige der jetzt technisch verwendeten wichtigeren Proteasen stammen aus der Gärung von Bacillus subtilis unci Bacillus licheniformis oder aus Schimmelpilzen, z.B. AaUpergilli.
1 0 9 R 1 G / 1 R 3 5
Ein Stamm von Bacillus licheniformis ATCC No.21424 wurde nun aufgefunden. Dieser Stamm liefert hohe Ausbeuten an alkalischer Protease, wenn der Organismus in Nährstoffmedien gezüchtet wird. Aussergewöhnliche Ergebnisse werden erhalten aus Medien*, bestimmter Eigenschaften. Das erfindungsgemäss gewonnene Enzym liefert eine Grundlage für die Beschaffung von Protease für Wasch- und Reinigungsmittelansätze für einen viel niedrigeren Preis pro Einheit Enzymaktivität, als es bisher der Fall war. Ausserdem hat das erfindungsgemässe Enzym ein höheres optimales pH für die proteolytische Aktivität; nämlich pH 9,0-11,0 gegenüber einem optimalen pH-Bereich von pH 8,5-9»5 für ein handelsübliches Enzym, hergestellt aus Bacillus subtilis. Weiterhin entfernt das erfindungsgemässe Enzym/mindestens ebenso gut und mitunter besser als die bisher marktgängigen Enzyme,und es hat eine grössere Lösungsstabilität im pH-Bereich von 9,5-11,0. In diesem pH-Bereich hat das erfindungsgemässe Enzym grössere caseinolytische Aktivität als das Enzym aus Bacillus subtilis. Beide Enzyme haben eine optimale Temperatur für caseinolytische Aktivität bei 55°C bei einem pH 7,0. In Gegenwart von Calciumionen verschiebt sich die optimale Temperatur auf 600C.
Auch die Inaktivierung durch Erwärmung wurde ebenfalls verglichen. Beide Enzyme wurden bei verschiedenen Temperaturen während 15 Minuten bebrütet und dann rasch in Eiswasser abgekühlt. Die restliche Aktivität wurde mit Casein bei pH 9,5 geprüft. Bei Bruttemperaturen unter 40 C waren beide Enzyme beständig. Bei 600C war das Enzym aus Bacillus subtilis vollständig inaktiviert, während das erfindungsgemässe Enzym 15$ seiner ursprünglichen Aktivität bewahrte. Unter den gleichen Bedingungen bei 600C aber bei zusätzli-
—4
eher Anwesenheit von 10 Calciumionen behielt das erfindungsgemässe Enzym 30# seiner proteolytischen Aktivität, während das Enzym aus Bacillus subtilis nur 20# bewahrte.
Die Ausbeute an eriindungsgemäee erhaltener alkalischer Protease ist mindestens doppelt so hoch, wie sie bisher
1 0 9 B 1 Π / 1 P 3 5
2ΤΠ7ΓΤ6Τ~
_ sr
aus einem Bacillus subtilis.-Stamm, der hohe Ausbeuten liefert, erhalten wird.
Der erfindungsgemässe Bacillus licheniformis ATCC Uo.21424 ist gekennzeichnet durch folgende Reaktionen:
Gelatinehydrolyse - positiv Stärkehydrolyse - positiv
Gärungsprüfungen:
Sukrose - Säureproduktion in 24 Stunden Xylose - Säureproduktion in 72 Stunden Arabinose - Säureproduktion in 72 Stunden Salicin τ Säureproduktion in 96 Stunden Laktose - negativ
Glukosenitrat-Schrägagar - überreichliches Wachstum Nitrite aus Nitraten - positiv
Sparangien - sehr geringes Quellen,
Die Zellen zeigten Beweglichkeit und Nichteinkapselung.
Alle diese Prüfungen sind typisch sowohl für Bacillus subtllis wie Bacillus licheniformis.Die folgenden zusätzlichen Prüfungen wurden ausgeführt, um die Klassifizierung als Bacillus licheniformis zu bestätigen
Wachstum auf verschiedenen Kohlenstoffquellen; Jeder der drei Organismen Bacillus subtilis ATCC No.15841, Bacillus licheniformis ATCC No.12759 und Bacillus licheniformis ATCC No.21424 wurden bebrütet unmittelbar aus der Schrägkultur in einem modifizierten Koser-Citratmedium während 10 Tagen bei 370C. Sie wurden auf Trypticose-Soy-Schrägagar (BBL Labs) bei 40C vor der Anwendung gehalten. Das Medium enthielt entweder 0,256 Natriumeitrat, Natriumacetat oder Natriumpripionat. Zusätzlich enthielt das Medium I56 NaCl, 0,156 (NH^)2HPO4, 0,0556 KH2PO4, 0,0256 MgSO4.7H2O, 1,556 Agar und 0,000856 x*±xa Phenof^Das Medium war auf ein pH 7,0 eingestellt. Am Ende der Brutperiode wurde das Wachstum durch Veränderungen in dem Farbindikator von gelb zu rot bewertet.
10 9 8 16/1835
Bacillus lichenii'ormis metabolisierte alle drei organischen Salze, während Bacillus subtilis nur das Citrat ausnutzte. Ausnutzung der Unionen durch die Organismen setzte Na+ in Freiheit, welches seinerseits das pH des Mediums steigerte und den Indikator von gelb zu rot veränderte. Daher ergab der Bacillus subtilis Rotfärbung auf der Citrat-Schrägkultur, aber keine Veränderung auf den Acetat- und Propionatmedien«, Die anderen zwei Organismen lieferten Rotfärbungen auf allen Schrägkulturen.
Wachstum unter Anaerobiosiss Jede der drei eben erwähnten Organismen wurde 3βκ3βζη±β± eingeimpft in rohrförmige Gefässe von Trypticase-Soy-Brühe mit einem Gehalt von 0,095$ Thioglykolat und 0,005$ Cystin. Zusätzlich wurden Stichku-1 türen aus jedem Organismus hergestellt unter Verwendung von anaerobischem Agar ohne Dextrose oder Eh. Indikator (BBL Labs). Dieses Agar enthielt 20 g Trypticase, ein Pepton, hergestellt aus Casein durch pankreatische Verdauung 5 g NaCl, 15g Agar, 2 g Natriumthioglykolat und 1 g Natriumformaldehydsulfoxylat pro Liter. Nach der Bebrütung während 10 Tagen bei 37°C wurden die Kulturen auf Wachstum beobachtet.
Unter diesen Bedingungen wuchs jeder Organismus in der Thioglykolatbrühe, Jedoch entfalteten die zwei Stämme Bacillus Licheniformis mehr Wachstum nach 7 Tagen Bebrütung als der Bacillus subtilis. Ähnliche Beobachtungen wurden bei den Stichkulturprüfungen festgestellt. Ferner wiesen die Stämme von Bacillus licheniformis die Fähigkeit auf, in dem Boden der Stichkultur zu wachsen, während Wachstum nur auftrat in dem oberen Teil der Stichkultur von Bacillus substllie. Dies zeigt an, dass die Bacillus licheniformis-Stämme fakultativ anaerobischer sind als der Bacillus subtilis.
Wachstum bei 56 C: Jeder der drei Mikroorganismen wurde geimpft aus Trypticase Soy-Schrägagar und bei 56°C während 18 Stunden bebrütet. Am Ende der Brutzeit wurden die Kulturen auf Wachstum beobachtet.
1 on 81 f> /1135
BAD ORIGINAL
Unter diesen Bedingungen entfalteten die zwei Stämme von Bacillus licheniformis ATCG No. 12759 und ATGG No.12424 übermässiges Wachstum, währencjkein Wachstum beobachtet wurde bei Bacillus subiilis.ATCC No.15841.
Bei der Gewinnung von alkalischer Protease aus Bacillus licheniformis ATCC No. 21424 besteht das Kulturmedium aus Protein, vorzugsweise 1-4$> einer Kohlenstoffquelle, vorzugsweise 1-12$ und solchen mineralischen Srgänzungsstoffen, wie sie notwendig sind, um richtiges Wachstum des Mikroorganismus zu sichern, Soyabohnenmehl ist ein bevorzugtes Proteinrohmaterial, aber auch andere Proteinsubstrate können benutzt werden, z.B. Casein, Pharmamedia, ein aus Baumwollsaat stammendes Proteinmaterial und Proflo, ein teilweise entfettetes Baumwollsaatmehl (beide?* geliefert von Traders Protein Div. of Traders Oil Mill Co.,Port Worth,Texas). Während Glukose als Kohlenstoffquelle bevorzuget wird, können auch Maismehl und Dextrin verwendet werden. Handelsübliche Produkte, z.B. Cerelose, eine Dextrose der Corn Products Company,mit einem hohen Glukosegehalt kann auch benutzt werden. Die Mineralsalze, welche als brauchbar bei den bevorzugten Kulturmedien gemäss der Erfindung gefunden wurden, schliessen MnCl2, MgCl2, CaCO5, CaCl3, NaH2PO4, Na2HPO4 und ZnCl2 ein.
Grösste Bnzymgewinnung wird erhalten, wenn das Medium von Anfang an auf pH 7,6 gepuffert ist. Die Ausbeuten wurden allmählich weniger, wenn sich das pH in irgendeiner Richtung von diesem Wert verschiebt,und bei pH-Werten unter 7 oder über 8 wird die Ausbeute in unannehmbarer Wfj.se niedrig.
Die Gärung des geimpften Kulturmediums wird voranschreiten gelassen, vorzugsweise während 48-96 Stunden bei einer Temperatur von 35-4O0O, vorzugsweise bei etwa 37°C. Das Enzym wird aus der Lösung nach irgendeinem der hierfür üblichen Verfahren gewonnen·
1 0 9 8 1 B / 1 Π 3 5
IU 4 4 i b I
Bei einem bevorzugten Verfahren für diese Gewinnung, welchei eine hohe Ausbeute liefert, wird ein Calciumsalz, z.B. Calciumacetat, zu dem Kulturmedium zugesetzt. Unlösliche Calciumphosphate bilden sich, welche ihrerseits ein gelartiges Material absorbieren und beide werden durch Zentrifugieren, vorzugsweise bei etwa 4 C, entfernt. Die klare überstehende Flüssigkeit kann 98 $ der gesamten Sx enzymatischen Aktivität in dem Kulturmedium enthalten.
Das Enzym kann aus der überstehenden Flüssigkeit durch Zusatz eines Drittel Volumens von Aceton bei 2 C zu dem klaren oben schwimmenden Bestandteil gewonnen werden. Der sich ergebende Niederschlag wird durch Zentrifugieren entfernt und verworfen. Weiteres Aceton wird zugesetzt, bis eine 75#ige Sättigung der Flüssigkeit erhalten ist. Die Suspension wird bei -200C gelagert, bis die Fällung nach etwa 3 Stunden vollständig ist. Der Niederschlag wird gesammelt und getrocknet, um ein Pulver zu ergeben.
Die erfindungsgemässe alkalische Protease wird verwendet als aktiver Bestandteil in enzymhaltigen Wasch- und Reinigungsmitteln. Das Enzym kann in pulveriger oder flüssiger Form sich befinden und mit anderen Bestandteilen verdünnt werden. Es ist üblich, Enzympulver zu verdünnen, wie sie durch Gewinnung aus Gärungsverfahren erhalten werden, und zwar mit einem verträglichen Verdünnungsmittel, z.B. Natriumsulfat, Die erfindungsgemässe alkalische Protease wird in einem enzymhaltigen Detergensmittel in einer Menge zwischen 0,02 "bis 0,1# des Pulvers angewendet. Wenn das Enzympulver auf etwa das fünffache mit Natriumsulfat verdünnt ist, hat es eine Aktivität von etwa 1300 proteolytischen Einheiten/mg.
Zusätzlich zu dem Enzym enthalten enzymhaltige Wasch- und Reinigung·mittel typischerweise aktive Detergentien· Versohlt dta« bekannte oberflächenaktiv· Agtntitn können als Ak-fclY&tttrgtntitn gemttas dtr Erfindung verwendet werden, •intchlieselich anionisch·*, nichtionischer, »vitttrioni-BchT.aapholytleohT DffctrEtnaTtrbindungtn und dtren Gemischt,
109816/1835
7ÜU161
Anionische Detergentien,welche in den erfindungsgemässen Mitteln "benutzt werden können, schliessen sowohl Seife wie nichtseifenartige Detergentien ein, Beispiele geeignete Seifen sind die Natrium-, Kalium-, Ammonium- und Alkylolammoniumsalze höherer Fettsäuren (C1Q-C20)« Die Natriumoder Kaliumsalze der Mischungen von Fettsäuren aus Kokosöl und Talg, das ist eine Natrium- oder Kalium-Talg-Kokosöl-Seife, sind brauchbar. Beispiele anionischer organischer Nichtseifedetergensverbindungen sind die wasserlöslichen Alkalisalze von organischen Schwefelsäurereaktioncprodukten, welche in ihrer Molekularstruktur ein Alkylradikal mit einem Gehalt von etwa 8 bis etwa 2 2 Kohlenstoffatomen und ein Radikal, ausgewählt aus der Gruppe,bestehend aus Sulfonsäure- und Schwefelsäureesterradikalen, aufweisen. Eingeschlossen in dem Ausdruck Alkyl ist der Alkylteil höherer Acylradikale. Beispiele von synthetischen Detergentien, welche einen Teil der erfindungsgemässen Mittel bilden, sind die Natrium- oder Kaliumalkylsulfate, insbesondere solche, welche durch SuIfatieren der höheren Alkohole ( Cq-0IO ^lens'to:i>i'a'tiOme)^ierßes"l'ell't durch Reduzierung der Glyceride von Talg/ oder Kokosöl, erhalten werden, Natrium- oder Kaliumalkylbenzolsulfonate, wie sie in den USA-Patenten 2 220 009 und 2 477 383 beschrieben werden, worin die Alkylgruppe von etwa 9 bis etwa 15 Kohlenstoffatome enthält« Andere Beispiele von Alkalialkylbenzolsulfonaten sind diejenigen, worin das Alkylradikal ein geradkettiges Alkylradikal mit etwa 10 bis etwa 20 Kohlenstoffatomen ist, z.B. 2-Phenyldodecansulfonat und 3-Phenyldodecansulfonat; Natriumalkylglyceryläthersulfonat, insbesondere solche Äther höherer Alkohole, abgeleitet aus Talg und Kokosöl; Natriumkokosölfettsäuremonoglyceridsulfate und -sulfonate; Natrium- oder Kaliumsalze von Schwefelsäureestern des Reaktionsprodukts von 1 Mol eines höheren Fettalkohols (z.B. Talg- oder Kokosölalkohole) und etwa 1 bis 6 Mol Äthylenoxyd; Natrium- oder Kaliumsalze von Alkylphenoläthylenoxydäthersulfat mit etwa 1 bis etwa 10 Einheiten Äthylenoxyd pro Molekül und worin die Alkyl-
1 0 9 8 1 B / 1 \) 3 5
radikale etwa 9 bis etwa 12 Kohlenstoffatome enthalten; das Reaktionsprodukt von Fettsäuren, verestert mit Isäthionsäure und neutralisiert mit Natriumhydroxyd, worin beisfSiels weise die Fettsäuren aus Kokosöl stammen; Natrium- oder Kaliumsalze von Fettsäureamid eines Methyltaurids, worin die Fettsäuren beispielsweise aus Kokosöl stammen; und andere in der Technik bekannte Verbindungen, von welchen eine Anzahl in den USA-Patentnchriften 2 486 921, 2 486 922 und 2 396 278 aufgezählt sind.
Nichtionische synthetische Detergentien können allgemein definiert werden als solche aliphatischen oder alkylaromatischen Verbindungen, welche in wässriger Lösung nicht ionisieren. Beispielsweise ist eine wohlbekannte Klasse synthetischer Monionics auf dem Markt unter dem Handelsnamen "Pluronic" erhältlich. Diese Verbindungen werden hergestellt durch Kondensieren von Äthylenoxyd mit einer hydrophoben Basis, welche selbst durch Kondensation von Propylenoxyd mit Propylenglykol erhalten wurde. Der hydrophobe Anteil des Moleküls, welcher naturgemäss wasserunlöslich ist, besitzt ein Molekulargewicht von etwa 1500 bis 1800. Die Addition von Polyoxyäthylenradikalen zu diesem hydrophoben Teil führt zu einer Steigerung der Yiasserlöslichkeit des Moleküls als ganzes, und die flüssige Beschaffenheit des Produkts wird bis zu dem Punkt erhalten, bei welchem der Polyoxyäthylengehalt etwa 50$ des Gesamtgewichts des Kondensationsproduktes beträgt.
Andere geeignete Nonionics schliessen ein:
1. Die Polyäthylenoxydkondensate von Alkylphenolen, das sind die Kondensationsprodukte von Alkylphenolen mit einer Alkylgruppe von etwa 6-12 Kohlenstoffatomen in entweder einer geraden oder verzweigten Kette und Äthylenoxyd, wobei das Äthylenoxyd in Mengen von etwa 10 bis 25 Molen Äthylenoxyd pro Mol Alkylphenol zugegen ist. Der Alkylsubstituent in solchen Verbindungen kann aus polymerisiertem Propylen, Diisobutylen, Octan oder Nonen beispielsweise abgeleitet scktt&x sein.
1 0 9 8 1 K / 1 Ϊ 3 5
ORIGINAL I
/ n ... u . 1 h
2o Derivate, stammend aus der Kondensation von Äthylenoxyd mit dem Produkt, welches sich aus der Reaktion von Propylenoxyd und Äthylendiamin ergibt. Beispielsweise Verbindungen mit einem Gehalt von etwa 40$ti bis etwa 80 Gew.$ Polyoxyäthylen und deren Durchschnittsmolekulargewicht zwischen etwa 5OOO und etwa 11000 liegt und sich aus der Reaktion von Äthylenoxydgruppen mit einer hydrophoben Basis ergeben, welche selbst aus dem Reaktionsprodukt von Äthylendiamin und überschüssigem Propylenoxyd stammt, wobei diese Basis ein Molekulargewicht in der Größenordnung von 2500 bis 3000 besitzt, sind zufriedenstellend.
3 β Das Kondensationsprodukt von aliphatischen Alkoholen mit 8-18 Kohlenstoffatomen, entweder in gerader oder verzweigter Kette, mit Äthylenoxyd, β.B. ein Kokosöl-
alohol-Athylenoxyd-Kondensat mit 10-30 Molen Äthylenoxyd pro Mol Kokosölalkohol, wobei die Kokosölalkoholfraktion 10-14 Kohlenstoffatome besitzt.
4. Langkettige tertiäre Aminoxyde entsprechendjnaf der folgenden allgemeinen Formel RjRpR^N—> 0, worin R^ ein Alkylradikal von etwa 8 bis 18 Kohlenstoffatomen und Rp und R, entweder Methyl- oder Äthylradikale sind. Der Pfeil in der Formel ist eine übliche Darstellung einer halbpolaren Bindung. Beispiele von für die Erfindung geeigneten Aminoxyden sind Dirnethyldodecylaminoxyd, DimethyI-octylaminoxyd, Dimethyldecylaminoxyd, Dimethy1tetradecylaminoxy d, Dimethylheiadecylaminoxyd.
5. Langkettige, tertiäre Phosphinoxyde entsprechend der folgenden Formel RR1R11P—> 0, worin R ein Alkyl-, Alkenyl- oder Monohydroxyalkylradikal ist mit einer Kettenlänge von 10 bis 18 Kohlenstoffatomen und R1 und R!· Alkyl- oder Monohydroxyalkylgruppen mit einem Gehalt von 1 bis 3 Kohlenstoffatomen sind. Der. Pfeil in der Formel ist eine übliche Darstellung einer halbpolaren Bindung. Beispiele geeigneter Phosphine sind:
10981 B/1835
INSPECTED
Dimethyldodecylphosphinoxyd, Dimethyltetradecylphosphinoxyd, Äthylmethyltetradecylphosphinoxyd, Octyldimethylphosphinoxyd, Dimethylstearylphosphinoxyd Cetyläthylpropylphosphinoxyd, Diäthyldodecylphosphinoxyd, Diäthyltetradecylphosphinoxyd, Bis(hydroxymethyl)dodecylphosphinoxyd, Bis(2-hydroxyäthyi)dode cylphosphinoxyd, 2-Hydroxypropylmethyltetradecylphosphinoxyd, Dimethyloleylphosphinoxyd und Dimethy1-2-hydroxydodecylphosphinoxyd.
6. Dialkylsulfoxyde entsprechenden der folgenden Formel EjR1S—^0, worin R ein Alkyl-, Alkenyl-, beta- oder gamma-Monohydroxyalkylradikal mit einem oder zwei anderen Sauerstoffatomen in der Kette ist und die R-Gruppen eine Kettenlänge von 10 bis 18 Kohlenstoffatomen besitzen, und worin R1 Methyl oder Äthyls ist. Beispiele geeigneter
en
SuIfoxydverbindung sind:
Dode oylme thylsulfoxyd, Te trade cylme thylsulfoxyd, 3-Hydroxytride oylme thylsulfoxyd, 2-Hydroxydodecylmethylsulfoxyd, 3-Hydroxy-4-de coxybutylme thylsulfoxyd, 3-Hydroxy-4-dodecoxybutylmethylsulfoxyd, 2-Hydroxy-3-decoxypropylmethylsulfoxyd, 2-Hydroxy-3-dodecoxypropylmethylsulfoxyd, Dodecyläthyleulfoxyd und 2-Hydroxydode cyläthylsulfoxyd.
Das 3-Hydroxy-4-decoxybutylmethylsulfoxyd wurde als ein ganz besondere wirksames Tensid gefunden. Ein hervorragendes Wasch- und Reinigungsmittel enthält diese Sulfoxydverbindung in Kombination mit dem Polymaleatgerüststoff der erfindungsgemässen Verbindung.
109816/ 1835
OHiGiNAL INSPECTED
Ampholytische synthetische Detergentien können allgemein "bezeichnet werden als Derivate aliphatischer sekundärer und tertiärer Amine, worin das aliphatische Radikal eine gerade oder verzweigte Kette sein kann, in welcher einer der aliphatischen Substituenten etwa 8 bis 18 Kohlenstoffatome und einer eine anionische wasserlöslichmachende Gruppe enthält. Beispiele von unter diese Definition fallen den Verbindungen sind Natrium-3-dedecylaminopropionat und Natrium-3-dodecylaminopropansulfonat.
Zwitterionische synthetische Detergentien können im allgemeinen bezeichnet werden als Derivate von aliphatischen quaternären Ammoniumverbindungen, worin das aliphatische Radikal geradekettig oder verzweigtkettig sein kann und einer der aliphatischen Substituenten von etwa O bis 18 Kohlenstoffatomen und einer eine anionische wasserlöslichmachende Gruppe enthält. Beispiele von unter diese Definition fallenden Verbindungen sind 3-(N,N-dimethyl-N-hexadecylammonio)-propan-1-sulfonat und 3-(N,lf-dimethyl-Ii-hexadecylammonio)-2~hydroxypropan-1-sulfonat, welche insbesondere wegen ihres ausgezeichneten ReinigungsVermögens in kaltem Wasser bevorzugt werden.
Die im vorstehenden erwähnten anionischen, nichtionischen, ampholytischen und zwitterionischen Tenside können einzeln oder in Kombination in der erfindungsgemässen Praxis angewendet werden. Die obigen Beispiele sind nur eine Erläuterung für die zahlreichen Tenside, welche innerhalb des Bereichs der Erfindung benutzt werden können.
Die erwähnten organischen Tenside können in eine beliebige der verschiedenen handelsüblichen erwünschten Formen für Wasch- und Reinigungsmittel eingebracht werden, z.B. in die Form von Granulaten, Flocken, Flüssigkeiten und Stücken.
Diese Mittel können auch wahlweise entweder organische oder anorganische Gerüststoffe enthalten, ±.B. Natriumtripolyphosphat, Tetranatriumpyrophospnat, Tetrakaliumpyrophoapkat, Kaliumtripolyphosphat, Natriumhexametaphospfae
10 9 8 16/1835
2 η A A1 β 1
Natriumnitrilotriacetat und das Natriumsalz von ethylendiamintetraessigsäure .
Es muss mit Sorgfalt darauf geachtet werden,sicherzustellen, dass die erfindungsgemässen Mittel keine Agentien enthalten, welche in ungünstiger Weise die Enzymkomposition beeinträchtigen oder von ihr beeinträchtigt werden. Beispielsweise dürfen keine Hypochloridbleichmittel verwendet werden, weil sie das Enzym vollständig inaktivieren. Auch die sogenannten Sauerstoffbleichmittel können eine ungünstige Wirkung entfalten. Ferner sollten im allgemeinen andere Proteine und proteinartige Stoffe zu den erfindungsgemässen Mitteln nicht zugesetzt werden, da sie durch die erfindungsgemässe alkalische Protease angegriffen werden können.
^ie Erfindung wird noch an den folgenden Beispielen erläutert«
Beispiel 1
Ein Medium aus 6°/> Glukose, 2$ Soyabohnenmehl, 0,04$ CaCl2, 0,0296 MgCl2 in 0,1 M Na2HPO4-NaH2PO4, gepuffert auf pH 7,6, wurde zubereitet» Die Glukose wurde als eine 50#ige, separat autoklavierte Lösung vorbereitet« Der Rest des Mediums wurde ebenfalls separat autoklaviert und die zwei Anteile wurden unter aseptischen Bedingungen vereinigt«
Ein Impfstoff wurde vorbereitet durch Zusatz von 5 ml sterilem destillierten Wasser zu einer 24 Stunden alten Trypticase Soy-Schrägkultur von Bacillus licheniformis, ATCC No.21424 (Trypticase Soy Agar (BBL) hat die folgende Zusammensetzung: Trypticase, ein Pepton, abgeleitet aus Casein durch pankreatische Verdauung, 15 g; Phyton, ein Papianverdauungaprodukt von ooyan;<;hl, 5 g; KaCl 5 g und Agar 15 g in 1 Liter Wasser) welche 24 Stunden bei 37°C bebrütet worden war. Eine Zellsuspension wurde hergestellt. Die Suspension wurde dann aseptisch eingeführt in einen 25O ml Erlenmeyer-Kolben, welcher 50 ml des oben beschriebenen autoklavieren Mediums enthielt. Der Kolben wurde dann auf einer hin- und hergehenden Schüttelmaschine mit 175 Umdrehungen pro Minute während 1Ö Stunden bei 370C
1 0 9 P
; 5
geschüttelt. Nach dieser Bebrütungszeit wurden 10$ Impfmaterial (5 ml) a.us dem Impf stoff medium vom Srlenmeyer-Kolben in jeden aus einer Reihe von Gärungskolben eingebracht, von welchen jeder 50 ml des oben beschriebenen autoklavierten Mediums enthielt.
Die Reihe der Gärungskolben wurde ras auf einer hin- und hergehenden Schüttelmaschine mit 175 Umdrehungen pro Minute bei 37°C geschüttelt. Die maximale Proteaseerzeugung darin trat nach 48-72 Stunden oder bei einem End-pH von 7,2-7,4 auf.
JfieiexG/ewinnung des Enzyms wird nach Beendigung der Gärungszeit durch Zusatz einer 0,15 ^igen wässrigen lösung von Calciumacetat zu dem Kulturmedium bewirkt,Der Galciumsalz— zusatz verursachte die Bildung von unlöslichen Calciumphospha ten, welche ihrerseits eine gelartige Substanz in dem Medium absorbierten. Die unlöslichen Verbindungen wurden dann aus dem Medium durch Zentrifugieren bei 4°C entfernt. Die klare überschwemmende Flüssigkeit enthielt annähernd 98$ der gesamten in dem Kulturmedium vorhandenen Enzymaktivität·
Zusätzliche Reinigung wurde ausgeführt χ durch Zusatz von einem Drittel Volumen Aceton (25$ Sättigung) ±u der klaren überschwimmenden Flüssigkeit bei 2 C.Der sich bildende Niederschlag wurde dann durch Zentrifugieren entfernt und verworfen. Weiteres Aceton wurde zugesetzt, bis 75$ Sättigung erhalten war. Die anfallende Suspension wurde bei -20 C für annähernd drei Stunden gelagert, bis Fällung vollständig war. Der Niederschlag wurde gesammelt und anschliessend getrocknet entweder durch Acetontrocknung oder Gefriertrocknung Die Ausbeuten lagen im Bereich von 800 bis 1100 mg getrocknetes Enzympulver pro Liter klarer überschwimmender Flüssigkeit.
Die Stärke der Enzymzubereitungen wurde bestimmt durch die folgende auf der Verdauung von Casein beruhende Prüfung.
Prüfung.
1,9 ml von 0,05* Na-Borat - 1,0 N NaOH-PvSer (pH 9,5) werden zugesetzt zu 1,0 ml 2#iger Casein(Hamraersten)-lösung,
109816/1835
hergestellt mit dem gleichen Boratpuffer,und bei 37°C ins Gleichgewicht gebracht. Dann werden zugesetzt 0,1 ml des Enzymmusters in geeigneter Verdünnung zu dem Casein-PufferGemisch. Nach 10 Minuten Verdauung bei 37°C wurden 3,0 ml 10biger Trichloressigsäure zugegeben und die Bebrütung wurde bei 370C für weitere 30 Minuten fortgesetzt, um völlige Ausfällung des unverdauten Caseins zu sichern. Der Niederschlag wurde durch Filtrieren entfernt (Whatman-Papier Nr,2) und das Absorptionsvermögen xx± des klaren Filtrats wurde in einem Spektrophotometer bei 280 jii gegenüber einem Nullversuch abgelesen. Der Nullversuch wurde in ähnlicher Weise vorbereitet mit der Abänderung, dass 3,0 ml von 10#iger Trichloressigsäure zuerst zu dem Oasein-1,9 ml-Puffergemisch zugesetzt und das Enzymmuster (0,1 ml) anschliessend zugegeben wurde. Eine proteolytische Einheit, wie der Ausdruck hier und in den Ansprüchen verwendet wird, ist willkürlich definiert als die Menge an Enzym, welche eine Steigerung im Absorptionsvermögen (optische Dichte) von 1,0 bei 28O7U in 10 Minuten bei 37°C hervorruft. 888 proteolytische Einheiten gemäss der Erfindung entsprechen einer Anson-Einheit.
Beispiele II-l VII.
Die Mengen an Sojabohnenmehl und Glukose wurden verändert, wie in der folgenden Tabelle 1 angegeben, in einem sonst konstanten Medium, welches 0,0496 CaCl2 und 0,02$ MgCl2 in 0,1jfoeeDX Phosphatpuffer bei pH 7,6 enthielt. Die Versuche wurden in einem Schüttelkolben mit 175 Umdrehungen pro Minute bei 37°C durchgeführt. Die Gärungen wurden fortgesetzt, bis der Höchstgrad an Enzymerzeugung erreicht war. Die Ergebnisse dieser Untersuchung folgen in Tabelle 1.
ORIGINAL INSPECTED
109816/ 1835
2IJU161
- is
!Tabelle 1
Proteaseerzeugung mit verschiedenen Konzentrationen von
So.jabohnenmehl und Glukose
Beispiel Nr. II III IV V VI VII
Medien
jfSo jaTaohnenmehl
(56) 11112 4
Glukose(^) 1 2 5 4 6 12
mg Stickstoff/
ml Medium
SOjabohnenmehl 0,65 0,65 0,65 0,65 1,30 2,60
Gesamte reduzierende Zucker AS
mg Glukose/ml
Medium
Sojabohnenmehl 0,27 0,27 0,27 0,27 0,54 1,08 Glukose 10 20 30 40 60 120
Kohlenstoff:
Stickstoff-Verhältnis 6,2 12,3 18,5 24,6 18,6 18,6
Proteolytische
Einheiten/ ml
Medium bei Höchstproduktion 18 22 27 27 80 60
Beispiel VIII
Ein Medium, umfassend 3$ Glukose, V/Ό Sojabohnenmehl, 0,04$ CaCl2, 0,2$ MgCl2 in 0,1 M Na2HPO4-NaH2PO4 Puffer mit pH 7,6 wurde zubereitet« Eine Impfung wurde ausgeführt wie in Beispiel 1 beschrieben aus einer 24 Stunden alten Trypticase Soy Agar Schrägkultur von Bacillus licheniformis ATTC Hr.21424 100 ml der Impfung wurden in einen Liter des oben beschriebenen Mediums eingeführt,und der Kolben wurde in einem hin- und hergehenden Schüttler mit 175 Umdrehungen pro Minute und bei 37 C geschüttelte Jeweilige Muster wurden aus dem Kolben nach 24, 48 und 72 Stunden genommen und die gesamte "bakteriell Zählung, die Sporenzählung und die Aktivität des Proteaseenzyms in dem Muster wurden bestimmt nach jedem dieser Zeitabläuft. Die Akti\.tat wurde bestimmt in Glycineinheiten(GU)
1 09 H Ui / 1 VAb
pro ml oder pro mg. Zu Vergleichszwecken mit den oben erwähnten proteolytischen Einheiten ist zu sagen, dass eine proteolytische Einheit 846 Glycineinheiten gleichkommt. Die Ergebnisse der Bestimmungen folgen in Tabelle 2„
labeile 2
Stammkulturen
Zeit Gesamte Bakterielle (Stunden) Zählung
Spurenzählung Aktivität(GU/ml)
58 χ 10-
25 x 10
8 S
54 x 101
■νβ
13.800 20.700 18.800
48 104 x 10® 37 χ 10s-
72 98 χ 10 49 χ
Die höchste Bakterienzahl wurde nach 48 Stunden erhalten,und es scheint eine 50$ige Sporulation nach 72 Stunden vorhanden zu sein. Die proteolytische Aktivität erreichte ein Maximum von 20.700 GU/ml nach 48 Stunden. Dies stellt eine ausgezeichnete Ausbeute dar. Ein eine hohe Ausbeute ergebender Stamm von Bacillus subtilis liefert ein Maximum von 13.000 GU/ml nach 40 Stunden unter Verwendung der gleichen Bedingungen
Das Enzym wurde isoliert aus dem Kulturmedium nach der angegebenen Bebrütungszeit durch Abkühlen der Flüssigkeit auf 5 C und Abschleudern bei 17.300 χ g-350 ml/Minute in einer gekühlten Sorvall-Zentrifuge RC 2 B, ausgerüstet mit einem Szent Gyorgiy kontinuierlichem Fließsystem. Das Medium wurde dann vermischt mit 2 Volumen Aceton (-200C),und nach einer Stunde wurde das Präzipitat zentrifugiert (6780 χ g - 350 ml/Minute). Das Präzipitat wurde wiederum in etwa 300 ml einer Wasser-Aceton-Mischung (1 Volumen/2 Volumen)suspendiert. Der Brei wurde auf e inem Büchner-Trichter filtriert und das Präzipitat durch Zusatz von mehr kaltem Aceton getrocknet.
Die Ergebnisse, erhalten während der Isolierung der Proteasen aus fünf von den 1 Liter Kolben, folgen in Tabelle 3.
1 0 9 H U; / 1 ! 3 5
Tabelle 3
Me diumvolumen(1)
Aktivität vor Aufarbeitung(GU/ml) Ernte (g)
Pulveraktivität(GU/ml)
17,300 104 675 82^6.
Ausbeute in $ der anfänglichen Aktivität
Die Verluste während der Aufarbeitung sind sehr gering. Die Ausbeute von 82$ ist vergleichsweise günstig gegenüber einer üblichen Ausbeute von 50$ bei den meisten Stämmen von Bacillus subtilis»
Beispiel 3 IX
Die Enzyrazubereitung, hergestellt gemäss Beispiel 1, wird als aktiver Bestandteil in Wasch- und Reinigungsmitteln folgender Zusammenstellung verwendet:
Natriumalkylarylsulfonat 8,2
Natriumfettalkoholsulfat . 8,2
C .^Fettsäure amid 1,5
Alkalische Protease; getrocknetes Enzympulver, hergestellt nach dem Verfahren von Beispiel 1, fünffach mit Natriumsulfat 0,2 verdünnt
Natriumtripolyphosphat 50
Natriumsilikat 4,8
Natriumsulfat 13,4
Parfüm 0,15
Verschiedenes 2,1
Wasser Rest
Beispiel X
Die Protease, zubereitet nach Beispiel VIII, wird als aktiver
Bestandteil in einem Detergensmittel gemäss nachstehender Zusammensetzung verwendet*
1 0 9 8 1 Π / 1 8 3 5
20U161
C12-1.Fettalkohol 10 ÄO Kondensat 2,7
Natriumalkylarylsulfonat 12,6
Natriumseife 1,4
Alkalische Protease; getrocknetes Enzym-
pulvwr, hergestellt nach dem Verfahren
von Beispiel VIII,fünffach mit Natrium- 0,5 sulfat verdünnt
Natriumtripolyphosphat 50,0
Natriumsilicat 4,5
Natriumsulfat 13,0
Wasser 13,5
Parfüm 0,1
Verschiedenes 1,7
109816/1835

Claims (1)

  1. 2OAA161
    Pqtentans prüche
    1. Verfahren zur Gewinnung alkalischer Protease durch Impfung eines Kulturmediums mit Bacillus licheniformis, Gärung und Gewinnung der alkalischen Protease, dadurch gekennzeichnet, dass als Bacillus der Bacillus licheniformis ATCC No,21424 verwendet wird.
    2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass das Kulturmedium ein pH von 7-8 besitzt und üe Protein, eine Kohlenstoffquelle'und ein Mineralsalz umfasst.
    3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, dguss das Medium 1-4$ Protein und 1-12$ Kohlenstoffquelle umfasst, wobei die Prozentsätze auf das Gewicht des Mediums bezogen sind.
    4.Verfahren nach Anspruch 2 oder 3, dadurch gekennzeichnet, dass das Protein Sojabohnenmehl ist.
    5· Verfahren nach Anspruch 2 oder 4» dadurch gekennzeichnet, dass die Kohlenstoffquelle Glukose, Maismehl oder Dextrin ist.
    6. Verfahren nach einem der Ansprüche 2-5, dadurch gekennzeichnet, dass das Mineralsalz ein Chlorid von Mangan, Magnesium, Zink und/oder Calcium ist.
    7. Verfahren nach einem der Ansprüche 2-6, dadurch gekennzeichnet, dass das Kulturmedium kse ein pH von 7>6 besitzt.
    8. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die Gärung des geimpften Kulturmediums während 48-96 Stunden bei 35-4O0C durchgeführt wird.
    i—-e
    ein Aktivdetergens, dadurch gekennzßiehcrret7 dass die Protease aus~^aj?illus licheniformJLe-^JCCNo.21424 erhaltei
    ist· J^XCT^
    10. Wasch- und^EeinXgungsinittel nacTr-Ansjsruch 9, dadurch geke^naeichnet, dass die Protease in einer Monge~~TF«ii_O,O2-)j4- $ vffl"
    Protee
    1 0 9 8 1 G / 1 κ 3 5
    Dr. In^ A. v::.a cv^r ^arth
    Γ λ T-. *.Α?ϊ3Τ
    Hamburg 90
    Wilstorfer Straßa 32
    16. Okt. 1970
    Unilever N.V.
    Neue Patentansprüche 9 u. 10
    9c Verwendung der nach den vorhergehenden Ansprüchen hergestellten Protease aus Bacillus licheniformis als Bestandteil von Wasch- und Reinigungsmittelne
    10. Verwendung der nach den vorhergehenden Ansprüchen hergestellten Protease aus Bacillus licheniformis als Bestandteil von Wasch- und Reinigungsmitteln in einer Menge von 0,02-0,1 i* vom Gewicht des MittelSe
    10 9m > 1 1 ··· ] 5
    20U161
    (ill Alkalische Protease, dadurch, gekennzeichnet, dass sie aus Bacillus Iiicheniformis ATCG No,21424 hergestellt ist.
    109816/1835
DE19702044161 1969-09-08 1970-09-05 Alkalische Protease und diese ent haltende Wasch und Reinigungsmittel Pending DE2044161A1 (de)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US85618269A 1969-09-08 1969-09-08

Publications (1)

Publication Number Publication Date
DE2044161A1 true DE2044161A1 (de) 1971-04-15

Family

ID=25323016

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE19702044161 Pending DE2044161A1 (de) 1969-09-08 1970-09-05 Alkalische Protease und diese ent haltende Wasch und Reinigungsmittel

Country Status (9)

Country Link
US (1) US3748233A (de)
AU (1) AU1957170A (de)
BE (1) BE755886A (de)
CH (1) CH542279A (de)
DE (1) DE2044161A1 (de)
FR (1) FR2061067A5 (de)
GB (1) GB1306867A (de)
NL (1) NL7013286A (de)
ZA (1) ZA706071B (de)

Cited By (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5846798A (en) * 1993-09-01 1998-12-08 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien Multi-enzyme granules
US5904736A (en) * 1995-04-28 1999-05-18 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien Cellulase-containing washing agents
US5972668A (en) 1994-06-28 1999-10-26 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien Production of multi-enzyme granules
US6350728B1 (en) 1996-12-11 2002-02-26 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien (Kgaa) Coated enzyme preparation with an improved solubility
US6380140B1 (en) 1996-04-20 2002-04-30 Henkel Komm.Nditgesellschaft Auf Aktien Enzyme granules containing phosphated starch
US6979669B2 (en) 2001-08-30 2005-12-27 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien Encapsulated active ingredient preparation for use in particulate detergents and cleaning agents
US7098179B2 (en) 2001-10-22 2006-08-29 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien (Henkel Kgaa) Cotton active, dirt removing urethane-based polymers
US7316995B2 (en) 2003-02-10 2008-01-08 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien Detergents or cleaning agents comprising a water-soluble building block system and a cellulose derivative with dirt dissolving properties
US7375072B2 (en) 2003-02-10 2008-05-20 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien Bleach-containing laundry detergents or cleaning compositions comprising water-soluble builder system and soil release-capable cellulose derivative
US7431739B2 (en) 2005-06-08 2008-10-07 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien Boosting the cleaning performance of laundry detergents by polymer of styrene/methyl methacrylate/methyl polyethylene glycol
US7456143B2 (en) 2002-12-20 2008-11-25 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien (Henkel Kgaa) Bleach-containing washing or cleaning agents containing a sulfate/silicate coated percarbonate
US8034123B2 (en) 2005-06-08 2011-10-11 Henkel Ag & Co., Kgaa Boosting cleaning power of detergents by means of a polymer

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5345395B2 (de) * 1972-03-18 1978-12-06
CA1142105A (en) * 1978-07-04 1983-03-01 Peter Tang Protease product of reduced allergenicity
DK386586D0 (da) * 1986-08-14 1986-08-14 Novo Industri As Protease, fremgangsmaade til fremstilling deraf og anvendelse deraf
US4865983A (en) * 1987-12-04 1989-09-12 W. R. Grace & Co.-Conn. Cleaning compositions containing protease produced by vibrio and method of use
DE502004001801D1 (de) * 2003-02-10 2006-11-30 Henkel Kgaa Bleichmittelhaltiges waschmittel mit baumwollaktivem schmutzablösevermögendem cellulosederivat
DE10351321A1 (de) * 2003-02-10 2004-08-26 Henkel Kgaa Verstärkung der Reinigungsleistung von Waschmitteln durch eine Kombination von Cellulosderivaten
EP1592764B1 (de) * 2003-02-10 2007-01-03 Henkel Kommanditgesellschaft auf Aktien Erhöhung der wasseraufnahmefähigkeit von textilien
JP2006517244A (ja) * 2003-02-10 2006-07-20 ヘンケル・コマンディットゲゼルシャフト・アウフ・アクチエン セルロース誘導体および吸湿性ポリマーによる洗濯洗剤の洗浄性能の向上
EP1592768A2 (de) * 2003-02-10 2005-11-09 Henkel Kommanditgesellschaft auf Aktien Verwendung von cellulosederivaten als schaumregulatoren

Cited By (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5846798A (en) * 1993-09-01 1998-12-08 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien Multi-enzyme granules
US5972668A (en) 1994-06-28 1999-10-26 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien Production of multi-enzyme granules
US5904736A (en) * 1995-04-28 1999-05-18 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien Cellulase-containing washing agents
US6380140B1 (en) 1996-04-20 2002-04-30 Henkel Komm.Nditgesellschaft Auf Aktien Enzyme granules containing phosphated starch
US6350728B1 (en) 1996-12-11 2002-02-26 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien (Kgaa) Coated enzyme preparation with an improved solubility
US6979669B2 (en) 2001-08-30 2005-12-27 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien Encapsulated active ingredient preparation for use in particulate detergents and cleaning agents
US7098179B2 (en) 2001-10-22 2006-08-29 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien (Henkel Kgaa) Cotton active, dirt removing urethane-based polymers
US7456143B2 (en) 2002-12-20 2008-11-25 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien (Henkel Kgaa) Bleach-containing washing or cleaning agents containing a sulfate/silicate coated percarbonate
US7316995B2 (en) 2003-02-10 2008-01-08 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien Detergents or cleaning agents comprising a water-soluble building block system and a cellulose derivative with dirt dissolving properties
US7375072B2 (en) 2003-02-10 2008-05-20 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien Bleach-containing laundry detergents or cleaning compositions comprising water-soluble builder system and soil release-capable cellulose derivative
US7431739B2 (en) 2005-06-08 2008-10-07 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien Boosting the cleaning performance of laundry detergents by polymer of styrene/methyl methacrylate/methyl polyethylene glycol
US8034123B2 (en) 2005-06-08 2011-10-11 Henkel Ag & Co., Kgaa Boosting cleaning power of detergents by means of a polymer

Also Published As

Publication number Publication date
US3748233A (en) 1973-07-24
ZA706071B (en) 1972-04-26
BE755886A (fr) 1971-03-08
NL7013286A (de) 1971-03-10
AU1957170A (en) 1972-03-09
CH542279A (de) 1973-09-30
GB1306867A (en) 1973-02-14
FR2061067A5 (de) 1971-06-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE2044161A1 (de) Alkalische Protease und diese ent haltende Wasch und Reinigungsmittel
DE69333902T2 (de) Neuartige proteasen
DE1800508C3 (de) Verfahren zur Herstellung von proteolytischen Enzymaufbereitungen und ihre Verwendung
DE69433032T2 (de) VERFLÜSSIGENDE -[alpha]-AMYLASE, VERFAHREN ZU IHRER HERSTELLUNG, UND SIE ENTHALTENDE WASCHMITTELZUSAMMENSETZUNG
JPH0631414B2 (ja) 酵素洗剤添加物
DE2415461A1 (de) Verfahren zum erzeugen von algenzellen
DE2551742A1 (de) Protease, verfahren zu ihrer herstellung und waschmittel
DE2224777A1 (de) Neues alkalisches proteolytisches enzym, seine herstellung und verwendung
CH620471A5 (de)
DE2334463C3 (de) Verfahren zur Gewinnung von proteolytischen Enzymen, die so hergestellten proteolytischen Enzyme und diese enthaltende Detergenzzubereitung
DE1932981B2 (de) Verfahren zur biotechnischen herstellung eines enzyms lipase
DE1906001C3 (de) Alkaliproteasen und sie enthaltende Waschmittel
DE2167078B1 (de) Verfahren zur Herstellung einer Amylase und deren Verwendung zur Gewinnung von Maltose aus Staerke
DE2402217C3 (de) Verfahren zur Herstellung von Proteinmaterial
US3574120A (en) Highly alkaline detergent composition containing an enzyme derived from thermophilic streptomyces rectus var. proteolyticus
DE1948177A1 (de) Loesliche Polymer-Enzymprodukte enthaltendes Waschmittel
DE2925427C2 (de) Verfahren zur Herstellung von Protease
DE2359501A1 (de) Verfahren zur herstellung von mikroorganismen-lysaten
EP0145798A1 (de) Bacillus subtilis DSM 2704 und Verfahren zur Herstellung von Alpha-Amylase
DE2044984A1 (de) Mikrobielle Amylase und deren Her stellung
DE2164018B2 (de) Verfahren zur biotechnischen herstellung von uricase
DE1293704B (de) Verfahren zur Steigerung der Extrazellularenzymbildung bei der Zuechtung von Mikroorganismen mit Extrazellularenzymbildungsfaehigkeit
DE1952012C3 (de) Biotechnisches Verfahren zur Herstellung alkalischer Protease
KR100258740B1 (ko) 세탁 세제용 단백질 분해 효소의 생산 균주 및 그 효소의 제조방법
DE2108760B2 (de) Verfahren zur mikrobiologischen herstellung von jodinin