DE19918088A1 - Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide (GIPC), Verfahren zu ihrer Herstellung sowie ihre Verwendung - Google Patents
Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide (GIPC), Verfahren zu ihrer Herstellung sowie ihre VerwendungInfo
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Abstract
Die vorliegende Erfindung stellt ein Verfahren zur Isolierung von Glycosyl-Inosit-Phopho-Ceramiden und ihre Verwendung als Immunmodulatoren zur Verfügung. Das erfindungsgemäße Verfahren weist die folgenden grundlegenden Schritte auf: DOLLAR A A) Herstellen eines Aufschlusses von Basidiomyceten; DOLLAR A B) Entfernen des Wassers aus dem Aufschluss; DOLLAR A C) Herstellen einer Suspension des getrockneten Aufschlusses in einem organischen Lösungsmittel; DOLLAR A D) Trennen der Suspension in einen Festanteil und einen Überstand; und DOLLAR A E) Isolieren der Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide aus dem Überstand mittels einer Säulenchromatographie. DOLLAR A Die Glycosyl-Inosit-Phopho-Ceramide weisen die Grundstruktur X-Manß-2Ins1-Phospho-Ceramid, wobei X ein glycosydischer Substituent ist.
Description
Die vorliegende Erfindung betrifft
Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide (GIPC), ihre Isolierung aus
Basidiomyceten und ihre Verwendung als Immunmodulatoren.
Als Immunmodulatoren bzw. Immunadjuvantien werden Stoffe
bezeichnet, welche die Immunantwort auf andere Stoffe bei der
Gabe in den Körper beeinflussen, im Falle der Adjuvantien
beispielsweise zu verstärken vermögen. Immunmodulatoren können
für die Effektivität von Impfstoffen von entscheidender Bedeu
tung sein. Immunmodulatoren sind im Idealfall keine eigenen
Antigene, so daß das Immunsystem keine gegen die Modulatoren
gerichteten Antikörper bildet. Eine weitere Anforderung an
Immunmodulatoren ist die Abwesenheit von unerwünschten
Nebenwirkungen, wie Pyrogenität, Endotoxin-Wirksamkeit oder
andere toxische Auswirkungen auf den mit ihnen behandelten
Organismus. Allerdings zeigen viele, gerade die besonders
wirksamen, Immunmodulatoren solche Nebenwirkungen und eine
eigene Antigenizität, die ihre Verwendung bei der
Immunisierung einschränken oder beispielsweise auf den Einsatz
bei Tieren beschränken, bei denen solche Nebenwirkungen
hinnehmbar sind. Darüberhinaus ist es bei aus biologischem
Material isolierten Substanzen wichtig, daß ihre chemische
Reinheit und ihre Unbedenklichkeit für den geplanten Einsatz
garantiert werden können. Auch dies ist nicht bei allen
derzeit am Markt befindlichen Immunmodulatoren gewährleistet.
Beispiele für bekannte Immunadjuvantien sind Mineralöle,
Aluminiumverbindungen und inaktivierte Mycobakterien.
Die oben geschilderten Nachteile bei der Anwendung der
bekannten Immunmodulatoren ließen den Wunsch nach
nebenwirkungsfreien Immunmodulatoren unbeantwortet. Der
vorliegenden Erfindung liegt daher die Aufgabe zugrunde, neue
Immunmodulatoren zur Verfügung zu stellen, welche eine gute
immunmodulatorische Wirkung aufweisen und die zugleich frei
von Nebenwirkungen sind.
Diese Aufgabe wird durch die Gegenstände der Patentansprüche
gelöst.
Glycolipide sind in die Plasmamembran eukaryontischer Zellen
eingefügte Verbindungen, bei denen Zuckerreste in
verschiedener Art und Weise an Lipide angeheftet sind. Bei
Bakterien und Pflanzen stammen fast alle Glycolipide von
Lipiden auf Glycerinbasis ab, während bei tierischen Zellen
fast immer Ceramid, ein Amid aus einer Fettsäure mit einem
1,3-Hydroxy-2-amino-alkan (Sphingoid), die Ausgangsverbindung
darstellt. Dieses Sphingoid kann weiter durch Doppelbindungen
und Hydroxy-Gruppen modifiziert sein. Die Zuckerreste
variieren nach Zahl, Typ und Bindung untereinander in starkem
Maße. Sie sind über die 1-Hydroxy-Gruppe des Sphingoids mit
dem Ceramid verbunden.
Der vorliegenden Erfindung liegen Untersuchungen an
Basidiomyceten zugrunde. Es wurde überraschenderweise
gefunden, daß eine aus Basidiomyceten isolierbare Stoffklasse
immunmodulatorische Eigenschaften aufweist. Diese konnte als
eine Gruppe von Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramiden
identifiziert und als Basidiolipide bezeichnet werden.
Demgemäß ist die vorliegende Erfindung gerichtet auf ein
Verfahren zur Isolierung von Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramiden
aus Basidiomyceten. Dieses Verfahren weist die folgenden
grundlegenden Schritte auf:
- A) Herstellen eines Aufschlusses von Basidiomyceten;
- B) Entfernen von Wassers aus dem Aufschluss;
- C) Herstellen einer Suspension des getrockneten Aufschlusses in einem organischen Lösungsmittel;
- D) Trennen der Suspension in einen Festanteil und einen Überstand; und
- E) Isolieren der Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide aus dem Überstand mittels Säulenchromatographie.
Das Aufschliessen der Zellen (Schritt A)) kann unter
zusätzlicher Zugabe von Wasser erfolgen, was den entstehenden
Brei geschmeidiger macht. Das eigentliche Aufschliessen
erfolgt üblicherweise mechanisch, d. h. durch Zerkleinern der
Zellen mit einem Homogenisator oder einem Pürierstab.
Schritt A) kann vorzugsweise folgende Teilschritte umfassen:
- 1. Homogenisieren von Basidiomyceten;
- 2. Zumischen von Wasser in einem Volumenverhältnis von 1 : 1 bis 4 : 1 Volumenteile Wasser zu Volumenteilen homogenisierter Basidiomyceten;
- 3. Rühren des Ansatzes für 1 Stunde bei 4°C.
Schritt B) umfasst vorzugsweise folgende Teilschritte:
- 1. Trennen des Aufschlusses in einen Festanteil und einen Überstand;
- 2. Trocknen des Überstandes.
Die Trennung in Schritt B1) kann beispielsweise durch
Zentrifugieren erfolgen, während das Trocknen in Schritt B2)
bevorzugt durch Rotationsvakuum-Trocknung erfolgen kann.
Zwischen den Teilschritten B1) und B2) werden vorzugsweise
folgende Teilschritte durchgeführt:
- 1. Einengen des Überstandes auf ein Volumen, das 1 bis 10% des Ausgangsvolumens an Überstand beträgt; und
- 2. Dialysieren des eingeengten Überstandes gegen Wasser.
Das Dialysieren kann dabei unter üblichen Bedingungen
durchgeführt werden, wobei jeweils ein größeres Volumen Wasser
verwendet und dieses über mehrere Tage mehrmals ausgetauscht
wird. Auch eine Druckdialyse ist möglich.
Alternativ zum obigen Vorgehen kann in Schritt B) der
Aufschluss auch einfach lyophilisiert werden, ohne daß vorher
im optionalen Schritt A2) Wasser zugesetzt wird. Dazu wird der
Zellbrei nach dem Homogenisieren (Schritt A1)) zunächst
eingefroren, beispielsweise bei -20°C.
Das für das erfindungsgemäße Verfahren verwendete organische
Lösungsmittel (Schritt C)) ist vorzugsweise eine Mischung von
Chloroform, Methanol und Wasser. Eine typische Zusammensetzung
enthält 30 Volumenteile Chloroform, 60 Teile Methanol und 8
Teile Wasser (im folgenden mit 30 : 60 : 8 bezeichnet). Alternativ
kann das Lösungsmittel auch eine Mischung von Propanol-2,
n-Hexan und Wasser sein, beispielsweise aus 55 Teilen
Propanol-2, 35 Teilen n-Hexan und 10 Teilen Wasser (55 : 35 : 10).
Dieses Lösungsmittel findet vorzugsweise Verwendung, wenn der
Zellaufschluß unmittelbar lyophilisiert worden war und danach
resuspendiert werden soll. Zur Lösung des lyophilisierten
Zellaufschlusses kann auch ein Lösungsmittel verwendet werden,
welches Methanol und/oder Ethanol enthält bzw. das aus einer
dieser Substanzen besteht. Selbstverständlich können auch
andere Lösungsmittel verwendet werden, wenn diese geeignet
sind, die erfindungsgemäßen Basidiolipide aus den Zellauf
schlüssen zu extrahieren.
Ein bevorzugtes Trennverfahren in Schritt D) ist
Zentrifugieren. Es sind jedoch auch andere Trennverfahren
möglich, wie beispielsweise Filtrieren der Suspension, sofern
gewährleistet ist, daß die zu isolierenden Basidiolipide im
Lösungsmittel verbleiben und eine möglichst vollständige
Trennung von anderen Bestandteilen erfolgt.
Nach dem Abtrennen von Überstand und Feststoffanteil kann der
Festanteil aus Schritt D) nochmals in einem organischen
Lösungsmittel suspendiert werden. Diese neuerliche
Resuspendierung dient der Verbesserung der Ausbeute und kann
mehrfach, typischerweise zweimal, durchgeführt werden. Die so
erhaltene Suspension wird wiederum in einen Feststoffanteil
und einen Überstand getrennt. Als Lösungsmittel können
wiederum die oben beschriebenen Mischungen oder organischen
Flüssigkeiten verwendet werden. Bevorzugt ist, insbesondere
bei einem vorherigen Aufschluß mit Chloroform/Methanol/Wasser,
die weitere Verwendung dieser Mischung, allerdings in einem
Verhältnis von 60 Volumenteilen Chloroform, 35 Teilen Methanol
und 8 Teilen Wasser, mithin mit einem höheren Anteil an
Chloroform.
Es wird erfindungsgemäß bevorzugt, daß Schritt E), der den
eigentlichen Isolierungsschritte darstellt, folgende
Teilschritte umfasst:
- 1. Trocknen des in Schritt D) erhaltenen Überstandes oder der Überstände;
- 2. Suspendieren des Trocknungsrückstandes in einem organischen Lösungmittel;
- 3. Beschicken einer Ionenaustauschersäule mit der in Schritt E2) erhaltenen Suspension;
- 4. Auswaschen unerwünschter Substanzen mit dem organischen Lösungsmittel; und
- 5. Elution der Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide mit einem organischen Lösungmittel, dem Anionen zu gegeben sind.
Die hierbei verwendeten Lösungsmittel können die gleichen sein
wie bereits oben beschrieben. Zudem kann zur Elution der GIPC
grundsätzlich das gleiche Lösungsmittel wie zur Suspendierung
und zur Elution unerwünschter Substanzen verwendet werden.
Maßgeblich für die erfolgreiche Elution ist, daß dem ver
wendeten Lösungsmittel Anionen, beispielsweise in Form von
Kaliumacetat oder Natriumchlorid, zugegeben worden ist. Eine
geeignete Konzentration an Anionen ergibt sich beispielsweise
durch die Verwendung einer 0,08 M Kaliumacetat-Lösung.
Alternativ können verschiedene Lösungsmittel für die Schritte
verwendet werden. Beispielsweise kann die Resuspension in
Schritt E2 und das Waschen (Eluieren unerwünschter Substanzen)
mit Chloroform/Methanol/Wasser im Verhältnis 60 : 35 : 8 erfolgen
und das anschließende Eluieren der GIPC mit 0.08 M Kalium
acetat in Methanol.
Die Ionenaustauschersäule (Anionenaustauschersäule) wird
hierbei vorzugsweise mit DEAE Sephadex A-25 (Fa. Pharmacia,
Upsala) beschickt, das mit dem zur Suspendierung der GIPC
verwendeten Lösungsmittel equilibriert wird.
Hierbei kann zwischen den Teilschritten E2 und E3 folgender
Teilschritt durchgeführt werden:
- 1. Dialysieren der Suspension gegen Wasser.
Die zusätzliche Dialyse dient der Reinigung der die GIPC
enthaltenden Lösung und führt zudem zu einer Entsalzung.
Das oben beschriebene, erfindungsgemäße Verfahren führt zu
einer Lösung der erfindungsgemäßen GIPC in dem zur Elution
verwendeten Lösungsmittel von hoher Reinheit. Für bestimmte
Anwendungen und weitergehende Untersuchungen kann es
darüberhinaus auch gewünscht sein, die verschiedenen, in der
Lösung enthaltenen GIPC voneinander zu trennen. Dies kann
erfindungsgemäß dadurch geschehen, daß das Verfahren den
weiteren Schritt umfasst:
- A) Auftrennen der verschiedenen, in Schritt E) isolierten Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide mittels einer Silicagel-Trennsäule und einem Stufen gradienten von organischem Lösungsmittel.
Hierbei kann beispielsweise Silicagel Si60 LiChroprep Material
(Fa. Merck, Darmstadt) verwendet werden, das in eine geeignete
Säule gefüllt wird und mit Chloroform/Methanol im Verhältnis
von 8 : 2 Volumenteilen gewaschen wird. Die Elution der
verschiedenen GIPC erfolgt mittels eines Stufengradienten von
Chloroform/Methanol/Wasser von 65 : 25 : 4 und 65 : 27 : 5
Volumenteilen.
Der verwendete Zellaufschluß wird vorzugsweise nur aus den
Hüten von Basidiomyceten hergestellt. Die Basidiomyceten
können beispielsweise zu den Species Agarius campestris oder
Agaricus bisporus gehören, die sich beide als besonders
geeignet zur Isolierung der erfindungsgemäßen Verbindungen
herausgestellt haben und zudem leicht verfügbar sind.
Die vorliegende Erfindung ist weiterhin auf die Verwendung von
Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramiden als Immunmodulatoren
gerichtet. Vorzugsweise werden dabei die
Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide als Immunadjuvantien
verwendet, sollen also einer Verstärkung der Immunantwort auf
die Gabe von Antigenen dienen.
Die Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide, die erfindungsgemäß
verwendet werden können, sind beispielsweise erhältlich nach
dem oben geschilderten Verfahren. Die zur erfindungegemäßen
Verwendung geeigneten Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide können
dabei aus Basidiomyceten gewonnen werden. Es sind jedoch auch
andere Quellen für diese Ceramid-haltigen
Glykoinositphospholipide möglich, beispielsweise Pflanzen oder
Tiere, oder auch andere Familien von Pilzen. Die Verwendung
gemäß der vorliegenden Erfindung ist daher nicht beschränkt
auf solche Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide, die aus
Basidiomyceten isolierbar sind, sofern sie nur die
gewünschten, immunmodulatorischen Eigenschaften aufweisen, die
sie für die vorliegende Verwendung geeignet machen.
Die Erfindung ist weiterhin gerichtet auf eine Gruppe von
Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramiden mit immunoadjuvanter bzw.
immunmodulatorischer Wirkung der allgemeinen Formel:
X-Manosylβ-2Ins1-Phospho-Ceramid,
wobei X ausgewählt ist aus -OH, [Fucα,2)-Galβ-,
Galα-6[Fucα,2]-Galβ-, Galα-6Galα-6[Fucα,2]-Galβ- und
Galα-6Galα-6Galα-6[Fucα,2]-Galβ- usw.; und wobei das Ceramid
von einem Sphingoid und einer langkettigen Fettsäure,
vorzugsweise einer C-22 Fettsäure oder einer C-24 Fettsäure,
abgeleitet ist. Ins- bedeutet Inosit, Fuc- bedeutet Fucosyl,
Gal- bedeutet Galactosyl. Die Definition von X läßt sich
beliebig anhand der obigen Kette fortsetzen. Diese konkret
genannten Verbindungen stellen nur bevorzugte Vertreter der
Gruppe der Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide dar, die eine
immunadjuvante Wirkung aufweisen.
Vorzugsweise sind die Ceramidfettsäurebestandteile 2-
Hydroxycarbonsäuren. Bevorzugt ist die C-22 Fettsäure
2-Hydroxy-Docosansäure, während die C-24 Fettsäure
vorzugsweise 2-Hydroxy-Tetracosansäure oder 2-Methoxy-Tri
cosansäure ist.
Bei dem in den erfindungsgemäßen Verbindungen vorhandenem
Sphingoid handelt es sich bevorzugt um Phytosphingosin mit der
Formel 1,3, 4-Trihydroxy-2-Amino-Octadecan.
Die Anwesenheit von Phosphat (PO4 (-)) in den erfindungsgemäßen
Verbindungen wurde durch NMR-Spektroskopie sowie durch
colorimetrische Bestimmung mit Ammoniumheptamolybdat
nachgewiesen.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen waren bei Anwendung im
Kaninchen frei von pyrogener Wirkung. Bei Anwendung des dem
Fachmann bekannten Limulus-Tests konnte kein Endotoxin
bestimmt werden. Ebenfalls konnte keine hämolysierende Wirkung
auf Schafserythrozyten nachgewiesen werden. Insgesamt
erscheinen die erfindungsgemäßen Verbindungen mithin als nicht
toxisch und frei von störenden Nebenwirkungen.
Die erfindungsgemäßen GIPC und ihre Verwendung weisen somit
eine Reihe von Vorteilen auf. Sie werden aus einem biologisch
einheitlichen und unbedenklichen Material gewonnen, die
Methode ihrer Isolierung und Reindarstellung garantiert ihre
chemische und biologische Reinheit, sie stellen
Einzelkomponenten mit definierter Struktur dar, sie weisen
sich im Tierversuch als starke Immunadjuvantien aus, sind
selbst nur marginal immunogen und zeigen bei intraperitonealer
und subkutaner Applikation beim Tier keinerlei Toxizität.
Diese Eigenschaften prädestinieren die erfindungsgemäßen
Verbindungen als immunadjuvante Zusätze bei der Herstellung
von Impfstoffen oder weiteren Immunmodulatorischen Ver
wendungen. Beispielsweise können die erfindungsgemäßen
Verbindungen als Immunmodulatoren als Ersatz für Mistellektine
in der Tumortherapie verwendet werden.
Weitere bevorzugte Anwendungen der erfindungsgemäßen
Verbindungen beruhen auf ihrer antibakteriellen,
antiparasitären, antifungalen, antiviralen und/oder
antidiabetischen Wirkung.
Im folgenden soll die vorliegende Erfindung anhand von
Beispielen erläutert werden, wobei auf die beigefügten
Zeichnungen Bezug genommen wird, in denen folgendes
dargestellt ist:
Fig. 1 ist ein Graph, der die immunadjuvante Wirkung der
erfindungsgemäßen Verbindungen zeigt
Fig. 2 ist ein Graph, der die Dosisabhängigkeit der
immunadjuvanten Wirkung der erfindungsgemäßen
Verbindungen zeigt
Fig. 3 ist ein Graph, der den zeitlichen Verlauf der
immunadjuvanten Wirkung der erfindungsgemäßen
Verbindungen zeigt
Fig. 4 ist ein Graph, der die immunadjuvante Wirkung der
erfindungsgemäßen Verbindungen bei Immunisierung mit
verschiedenen Antigenen zeigt.
Zur Isolierung stehen verschiedene, oben beschriebene
Verfahrensmodifikationen zur Verfügung, die man allgemein in
wässerige und organische Isolierungen unterteilen kann. Bei
den Isolierverfahren mit organischem Lösungmittel wird dabei
unmittelbar im Anschluß an das Herstellen eines
Zellaufschlusses in Schritt A) der Aufschluß lyophilisiert und
danach in dem organischen Lösungsmittel resuspendiert.
Demgegenüber wird der Zellaufschluß beim wässerigen
Isolierverfahren vor seiner Trocknung in Schritt B noch
verschiedenen Zwischenschritten unterworfen.
Von geeigneten Basidiomyceten werden die Stiele entfernt. 2 kg
der Hüte werden unter Verwendung eines Pürierstabes zu einem
Brei zerkleinert, mit mindestens 4 l Wasser versetzt und für
eine Stunde bei 4°C stehengelassen, wobei optional permanent
oder intermittierend der Zellaufschluß gerührt werden kann.
Nach Zentrifugation des Ansatzes (4000 l/min. 20 min. 4°C) wird
der wässerige Überstand im Rotationsvakuum bei
Zimmertemperatur auf ein Volumen von 100-200 ml eingeengt.
Alternativ kann die Einengung auch bis zur völligen Trocknung
erfolgen. Im Anschluß an die Einengung erfolgt eine ausgiebige
Dialyse gegen destilliertes bzw. demineralisiertes Wasser für
mehrere Tage.
Das Dialysat wurde wiederum eingedampft, beispielsweise durch
eine erneute Rotationsevakuierung.
Der Rückstand wird in 500 ml Chloroform/Methanol/Wasser
(30 : 60 : 8 Volumenteile) resuspendiert. Die Suspension wird
erneut zentrifugiert (4000 l/min. 20 min. 4°C oder 4000 l/min.
10 min. bei Raumtemperatur) und der Überstand weiterverwendet.
Optional kann der Rückstand nochmals in
Chloroform/Methanol/Wasser (diesmal 60 : 35 : 8 Volumenteile),
resuspendiert und erneut unter gleichen Bedingungen
zentrifugiert werden. Dies kann zwei- oder mehrmals
durchgeführt werden, um sicherzustellen, daß alle
erfindungsgemäßen GIPC aus dem Zellaufschluß gelöst werden.
Die Überstände werden vereinigt und wieder durch
Rotationsvakuum eingedampft. Der zurückbleibende Rückstand
wird in einem geeigneten Volumen eines organischen
Lösungsmittels resuspendiert, beispielsweise wieder in
Chloroform/Methanol/Wasser (60 : 35 : 8). Eine 250 ml Glassäule
wird mit DEAE-Sephadex A-25 befüllt und mit dem gleichen
Lösungsmittel equilibriert. Die Suspension wird auf die Säule
gegeben, die daraufhin mit 1 l Chloroform/Methanol/Wasser
(60 : 35 : 8) und danach mit 1 l Methanol gewaschen wird, um
unerwünschte Verunreinigungen zu entfernen.
Im Anschluß werden die erfindungsgemäßen Ceramide mit einer
0.08 M Kaliumacetat-Lösung in Methanol eluiert, beispielsweise
mit 1 l Methanol. Das Eluat wird wiederum eingedampft und nach
Resupension in Wasser für mehrere Tage gegen Wasser
dialysiert, wobei das Wasser häufig gewechselt wird. Das die
erfindungsgemäßen GIPC enthaltende Dialysat kann
weiterverwendet oder lyophilisiert werden.
Von geeigneten Basidiomyceten werden die Stiele entfernt. 2 kg
der Hüte werden unter Verwendung eines Pürierstabes zu einem
Brei zerkleinert und nach Einfrieren bei -20°C lyophilisiert.
Das Lyophilisat wird in 20 ml pro g des Lyophilisats eines
organischen Lösungmittels, beispielsweise Propanol-2/n-Hexan/
Wasser (55 : 35 : 10 Volumenteile), resuspendiert und die
Suspension für 1 Std. bei 50°C inkubiert. Die Suspension wird
erneut zentrifugiert (4000 l/min. 20 min. 4°C oder 4000 l/min.
10 min. bei Raumtemperatur) und der Überstand weiterverwendet.
Optional kann der Rückstand nochmals in
Propanol-2/n-Hexan/Wasser (55 : 35 : 10) resuspendiert und erneut
unter gleichen Bedingungen zentrifugiert werden. Dies kann
zwei- oder mehrmals durchgeführt werden, um sicherzustellen,
daß alle erfindungsgemäßen GIPC aus dem Zellaufschluß gelöst
werden.
Die Überstände werden vereinigt und wieder durch
Rotationsvakuum eingedampft. Der zurückbleibende Rückstand
wird in einem geeigneten Volumen eines organischen
Lösungsmittels resuspendiert, beispielsweise in
Chloroform/Methanol/Wasser (60 : 35 : 8). Eine 250 ml Glassäule
wird mit DEAE Sephadex A-25 befüllt und mit dem gleichen
Lösungsmittel equilibriert. Die Suspension wird auf die Säule
gegeben, die daraufhin mit 1 l Chloroform/Methanol/Wasser
(60 : 35 : 8) und danach mit 1 l Methanol gewaschen wird, um
unerwünschte Verunreinigungen zu entfernen.
Im Anschluß werden die erfindungsgemäßen GIPC mit einer 0.08 M
Kaliumacetat-Lösung in Methanol eluiert, beispielsweise mit
1 l Methanol. Das Eluat wird wiederum eingedampft und nach
Resupension in Wasser für mehrere Tage gegen Wasser
dialysiert, wobei das Wasser häufig gewechselt wird. Das die
erfindungsgemäßen Ceramide enthaltende Dialysat kann
weiterverwendet oder lyophilisiert werden.
Eine 250 ml Glassäule wird mit Silicagel Si60 LiChroprep
befüllt und mit 500 ml Chloroform/Methanol (8 : 2 Volumenteile)
equilibriert. Ein die GIPC von 2 kg Ausgangsmaterial
enthaltendes Lyophilisat wird in 100 ml Chloroform/Methanol
(8 : 2 Volumenteile) resuspendiert und auf die Säule gegeben.
Die Säule wird mit 1 l dieses Lösungsmittels und im Anschluß
mit 1 l Chloroform/Methanol/Wasser (65 : 25 : 4) gewaschen. Die
Elution der erfindungsgemäßen GIPC erfolgt mittels eines
Stufengradienten von Chloroform/Methanol/Wasser von 65 : 25 : 4
und 65 : 27 : 5 Volumenteilen in 100 ml Aliquots, die im Anschluß
auf ihren Ceramid-Gehalt untersucht werden können. Bei
Verwendung von Basidiomyceten finden sich u. a. die oben
konkret genannten GIPC:
Manβ-2Ins1-Phospho-Ceramid,
[Fucα,2]-Galβ-6Manβ-2Ins1-Phospho-Ceramid,
Galα-6[Fucα,2]-Galβ-6Manβ-2Ins1-Phospho-Ceramid,
Galα-6Galα-6[Fucα,2]-Galβ-6Manβ-2Ins1-Phospho-Ceramid, und
Galα-6Galα-6Galα-6[Fucα,2]-Galβ-6Manβ-2Ins1-Phospho-Cer amid
[Fucα,2]-Galβ-6Manβ-2Ins1-Phospho-Ceramid,
Galα-6[Fucα,2]-Galβ-6Manβ-2Ins1-Phospho-Ceramid,
Galα-6Galα-6[Fucα,2]-Galβ-6Manβ-2Ins1-Phospho-Ceramid, und
Galα-6Galα-6Galα-6[Fucα,2]-Galβ-6Manβ-2Ins1-Phospho-Cer amid
Um eine immunadjuvante Wirkung nachweisen zu können, werden
sechs Wochen alte Balb/c Mäuse mit bovinem Serum-Albumin (BSA)
als Antigen immunisiert, dem die verschiedenen
erfindungsgemäßen GIPC als potentielle Immunadjuvantien zu
gegeben werden. Als Kontrolle wird einer Gruppe von Mäusen nur
BSA verabreicht. Eine weitere Kontrollgruppe erhält BSA
zusammen mit Monophosphoryllipid-A (MPL-A), das ein bekanntes
Immunadjuvans darstellt.
Es werden dann jeweils 5 µg BSA intraperitoneal in Woche 0, 1
und 3 injiziert, wobei 4 Mäuse pro Ansatz verwendet werden.
Immunseren werden eine Woche nach der letzten Immunisierung
entnommen und ihr Gehalt an anti-BSA Antikörpern mittels eines
ELISA-Tests unter üblichen Bedingungen nachgewiesen.
Fig. 1 zeigt die Ergebnisse einer "Optische Dichte Messung"
der ELISA-Tests für verschiedene Antikörper, IgG-1, IgG-2a,
IgG-2b und IgG-3.
Teil 1 von Fig. 1 zeigt hierbei die Ergebnisse bei Immunisierung nur mit BSA,
Teil 2 von Fig. 1 mit BSA + 20 µg Manβ-2Inosit1-Phospho-Ceramid,
Teil 3 von Fig. 1 mit BSA + 20 µg Gal-α-6[Fuc-α, 2]-Galβ-6Manβ-2Inosit1-Phospho-Ceramid,
Teil 4 von Fig. 1 mit BSA + 20 µg Gal-α-6Gal-α-6[Fuc-α,2]-Galβ-6Manβ-2Inosit1-Phospho-Ceramid,
Teil 5 von Fig. 1 mit BSA + 20 µg Gal-α-6Gal-a-6Gal-α-6[Fuc-α,2]-Galβ-6Manβ-2Inosit1- Phospho-Ceramid, und
Teil 6 von Fig. 1 mit 8 µg Monophosphoryllipid-A (MPL-A), einem vorbekannten Immunadjuvans, als Kontrolle.
Teil 1 von Fig. 1 zeigt hierbei die Ergebnisse bei Immunisierung nur mit BSA,
Teil 2 von Fig. 1 mit BSA + 20 µg Manβ-2Inosit1-Phospho-Ceramid,
Teil 3 von Fig. 1 mit BSA + 20 µg Gal-α-6[Fuc-α, 2]-Galβ-6Manβ-2Inosit1-Phospho-Ceramid,
Teil 4 von Fig. 1 mit BSA + 20 µg Gal-α-6Gal-α-6[Fuc-α,2]-Galβ-6Manβ-2Inosit1-Phospho-Ceramid,
Teil 5 von Fig. 1 mit BSA + 20 µg Gal-α-6Gal-a-6Gal-α-6[Fuc-α,2]-Galβ-6Manβ-2Inosit1- Phospho-Ceramid, und
Teil 6 von Fig. 1 mit 8 µg Monophosphoryllipid-A (MPL-A), einem vorbekannten Immunadjuvans, als Kontrolle.
Es zeigt sich, daß bei Injektion von BSA ohne Zusatzstoffe nur
eine marginale Immunantwort bei den Mäusen erfolgt, während
sie mit einem der erfindungsgemäßen GIPC oder mit MPL-A
drastisch verstärkt wird. Hierbei zeigten sich bei allen
untersuchten erfindungsgemäßen GIPC deutlich immunadjuvante
Wirkungen, wenn auch mit individuellen Unterschieden der
Komponenten. Bei den verschiedenen, untersuchten Antikörperty
pen dominierte ganz klar IgG-1.
Wie in Beispiel 4 beschrieben, werden jetzt zwei Mäuse pro
Ansatz mit BSA immunisiert, wobei verschiedenene Mengen an
Galα-6Galα-6[Fucα,2]-Galβ-6Manβ-2Inosit1-Phospho-Ceramid
zugegeben werden. Fig. 2 zeigt, daß bereits bei Zugabe von 5
µg erfindungsgemäßem Ceramid eine stark immunadjuvante Wirkung
zu beobachten ist, die sich durch eine weitere Dosiserhöhung
nur noch begrenzt steigern läßt.
Wie in Beispiel 4 beschrieben, werden vier Mäuse pro Ansatz
mit 5 µg BSA immunisiert, wobei 20 µg Galα
6Galα-6[Fucα,2]-Galβ-6Manβ-2Inosit1-Phospho-Ceramid zugegeben
werden. Zu unterschiedlichen Zeiten nach der Immunisierung
werden Serumproben entnommen und mittels ELISA der Antikör
per-Titer bestimmt. Fig. 3 zeigt, daß bereits nach 3 Wochen
eine deutliche Zunahme der IgG feststellbar ist, sich deren
Titer jedoch in den darauffolgenden 2 Wochen stark erhöht.
Wie in Beispiel 4 werden Mäuse mit BSA und einem weiteren
Antigen, KLH-Gangliosid-Konjugat (keyhole-limpet
Hemocyanin-Gangliosid IV2Fuc,II3NeuAc-Gg4Cer-Konjugat),
immunisiert, wobei jeweils ohne und mit Immunadjuvans
(Galα-6Galα6[Fucα,2]-Galβ-6Manβ-2Inosit1-Phospho-Ceramid)
immunisiert wurde. Fig. 4 zeigt, daß bei Gabe von
erfindungsgemäßen GIPC (schraffierte Säulen) die Immunantwort
bei beiden Antigenen stark verbessert ist.
Claims (27)
1. Verfahren zur Isolierung von
Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramiden aus Basidiomyceten mit
folgenden Schritten:
- A) Herstellen eines Aufschlusses von Basidiomyceten;
- B) Entfernen von Wassers aus dem Aufschluss,
- C) Herstellen einer Suspension des getrockneten Aufschlusses in einem organischen Lösungsmittel,
- D) Trennen der Suspension in einen Festanteil und einen Überstand, und
- E) Isolieren der Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide aus dem Überstand mittels Säulenchromatogra phie.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
Schritt A) folgende Teilschritte umfasst:
- 1. Homogenisieren von Basidiomyceten;
- 2. Zumischen von Wasser in einem Volumenverhältnis von 1 : 1 bis 4 : 1 Volumenteile Wasser zu Volumenteilen homogenisierter Basidiomyceten zellen;
- 3. Rühren des Ansatzes für 1 Stunde bei 4°C.
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet,
daß Schritt B folgende Teilschritte umfasst:
- 1. Trennen des Aufschlusses in einen Festanteil und einen Überstand;
- 2. Trocknen des Überstandes
4. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß
das Trennen in Schritt B1) durch Zentrifugieren erfolgt.
5. Verfahren nach Anspruch 3 oder 4, dadurch gekennzeichnet,
daß das Trocknen durch Rotationsvakuum-Trocknung erfolgt.
6. Verfahren nach einem der Ansprüche 3 bis 5, dadurch
gekennzeichnet, daß zwischen den Teilschritten B1) und
B2) folgende Teilschritte durchgeführt werden:
- 1. Einengen des Überstandes auf ein Volumen, daß 1 bis 10% des Ausgangsvolumens an Überstand beträgt; und
- 2. Dialysieren des eingeengten Überstandes gegen Wasser.
7. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 oder 2, dadurch
gekennzeichnet, daß in Schritt B) der Aufschluss
lyophilisiert wird.
8. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 7, dadurch
gekennzeichnet, daß das Lösungsmittel eine Mischung von
Chloroform, Methanol und Wasser ist.
9. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 7, dadurch
gekennzeichnet, daß das Lösungsmittel eine Mischung von
Propanol-2, n-Hexan und Wasser ist.
10. Verfahren nach Anspruch einem der Ansprüche 1 bis 7,
dadurch gekennzeichnet, daß das Lösungsmittel Methanol
und/oder Ethanol enthält.
11. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 10, dadurch
gekennzeichnet, daß die Trennung in Schritt D) durch
Zentrifugieren erfolgt.
12. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 11, dadurch
gekennzeichnet, daß der Festanteil aus Schritt D)
nochmals in einem organischen Lösungsmittel suspendiert
wird und diese Suspension wiederum in einen Fest
stoffanteil und einen Überstand getrennt wird.
13. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 12, dadurch
gekennzeichnet, daß Schritt E folgende Teilschritte
umfasst:
- 1. Trocknen des in Schritt D) erhaltenen Überstandes oder der Überstände;
- 2. Suspendieren des Trocknungsrückstandes in einem organischen Lösungmittel
- 3. Beschicken einer Ionenaustauschersäule mit der in der in Schritt E2) erhaltenen Suspension;
- 4. Elution unerwünschter Substanzen mit dem organischen Lösungsmittel, und
- 5. Elution der Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide mit einem organischen Lösungmittel, dem Kaliumionen zugegeben sind.
14. Verfahren nach Anspruch 13, dadurch gekennzeichnet, daß
zwischen den Teilschritten E2) und E3) folgender
Teilschritt durchgeführt wird:
- 1. Dialysieren der Suspension gegen Wasser.
15. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 14, dadurch
gekennzeichnet, daß es den weiteren Schritt umfasst:
- A) Auftrennen der verschiedenen, in Schritt E) isolierten Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide mittels einer Silicagel-Trennsäule und einem Stufengradienten von organischem Lösungsmittel.
16. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 15, dadurch
gekennzeichnet, daß der Aufschluß aus Hüten von
Basidiomyceten hergestellt wird.
17. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 16, dadurch
gekennzeichnet, daß die Basidiomyceten zur Species
Agarius campestris gehören.
18. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 16, dadurch
gekennzeichnet, daß die Basidiomyceten zur Species
Agaricus bisporus gehören.
19. Verwendung von Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramiden als
Immunmodulatoren.
20. Verwendung nach Anspruch 19, dadurch gekennzeichnet, daß
die Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide als Immunadjuvantien
verwendet werden.
21. Verwendung nach Anspruch 19 oder 20, dadurch
gekennzeichnet, daß die Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide
nach dem Verfahren eines der Ansprüche 1 bis 18
erhältlich sind.
22. Verwendung nach Anspruch 19 oder 20, dadurch
gekennzeichnet, daß die Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide
aus Basdiomyceten gewonnen sind.
23. Verwendung nach einem der Ansprüche 19 bis 22, dadurch
gekennzeichnet, daß die Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide
die allgemeine Formel aufweisen:
X-Manβ-2Ins1-Phospho-Ceramid,
wobei X ausgewählt ist aus -OH, [Fucα,2]-Galβ-, Galα-6[Fucα,2]-Galβ-, Galα-6Galα-6[Fuc-,2]-Galβ- und Galα-6Galα-6Galα-6[Fucα,2]-Galβ-; und wobei das Ceramid von einem Sphingoid und einer langkettigen Fettsäure abgeleitet ist.
X-Manβ-2Ins1-Phospho-Ceramid,
wobei X ausgewählt ist aus -OH, [Fucα,2]-Galβ-, Galα-6[Fucα,2]-Galβ-, Galα-6Galα-6[Fuc-,2]-Galβ- und Galα-6Galα-6Galα-6[Fucα,2]-Galβ-; und wobei das Ceramid von einem Sphingoid und einer langkettigen Fettsäure abgeleitet ist.
24. Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramid mit der allgemeinen
Formel:
X-Manβ-2Ins1-Phospho-Ceramid,
wobei X ausgewählt ist aus -OH, [Fucα,2]-Galβ-, Galα-6[Fucα,2]-Galβ-, Galα-6Galα-6[Fuc-,2]-Galβ- und Galα-6Galα-6Galα-6[Fucα,2]-Galβ-; und wobei das Ceramid von einem Sphingoid und einer langkettigen Fettsäure abgeleitet ist.
X-Manβ-2Ins1-Phospho-Ceramid,
wobei X ausgewählt ist aus -OH, [Fucα,2]-Galβ-, Galα-6[Fucα,2]-Galβ-, Galα-6Galα-6[Fuc-,2]-Galβ- und Galα-6Galα-6Galα-6[Fucα,2]-Galβ-; und wobei das Ceramid von einem Sphingoid und einer langkettigen Fettsäure abgeleitet ist.
25. Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramid nach Anspruch 24, wobei
die langkettige Fettsäure eine C-22 Fettsäure oder C-24
Fettsäure ist.
26. Glyco-Inositol-Phospho-Ceramid nach Anspruch 24 oder 25,
wobei die C-22 Fettsäure 2-Hydroxy-Docosansäure bzw. die
C-24 Fettsäure 2-Hydroxy-Tetracosansäure ist.
27. Glyco-Inositol-Phospho-Ceramid nach einem der Ansprüche
24 bis 26, wobei das Sphingoid aus Phytosphingosin mit
der Formel 1,3,4-Trihydroxy-2-Amino-Octadecan besteht.
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---|---|---|---|
DE19918088A DE19918088A1 (de) | 1998-06-03 | 1999-04-21 | Glycosyl-Inosit-Phospho-Ceramide (GIPC), Verfahren zu ihrer Herstellung sowie ihre Verwendung |
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AU51527/99A AU5152799A (en) | 1998-06-03 | 1999-06-02 | Glycosyl-inosite-phospho-ceramide (gipc), method for the production and use thereof |
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Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN111249451A (zh) * | 2020-01-20 | 2020-06-09 | 成都医学院 | 一种糖脂类抗原注射液及其制备方法 |
-
1999
- 1999-04-21 DE DE19918088A patent/DE19918088A1/de not_active Withdrawn
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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CN111249451A (zh) * | 2020-01-20 | 2020-06-09 | 成都医学院 | 一种糖脂类抗原注射液及其制备方法 |
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