DE1768426A1 - Verfahren zur Reinigung von Stoffen mit Thyrocalcitoninaktivitaet - Google Patents
Verfahren zur Reinigung von Stoffen mit ThyrocalcitoninaktivitaetInfo
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Description
Yerfahren zur Reinigung ¥on Stoffen mit ThyroealaitoninaktiYität
Stoffe mit Thyrocalcitoninalctivitat werden durch Extraktion9
Säulenchromatografie oder Gegenstroniverteilungsverfahren unter
Verwendung eines Lösungamittelsysteras gereinigt, das aus n~\Buta~
nol, Wasser und Bisessig besteht« Bei manchen Modifikationen
werden Mehrphasensysteme durch Zusatz von organischen flüssigen Medien, ZoBo Kohlenwasserstoffen, oder von Wasser zu dem Butanol,
Wasser und Eisessig erzeugt»
Das Material wird in hoher Reinheit, nämlich mehr als 90 $
erhalten« Seine Aminosäurestruktur läßt sich wie folgt darstellen s
Cys» Sern/sn. LeU0 Ser, Thr-, GySo VaIo Leu» Ser-. AIa , Tyr ο Try oArgo Asn ,>
Lew-1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 i3 14 15 16
17 18 19 20 21 22 33 24 25 . 26 .'2? 28 29 30 31 32
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Die Formel bezieht sich auf das gereinigte Material und gibt
nicht notwendigerweise das Protein wieder, wie es im Säugetiergewebe vorkommt oder wie es im Körper umgewandelt wird*
wenn es als Medikament verwendet wird. Die Aktivität dieses Protein liegt in der Größenordnung von 60 000 Rattenainheiten
pro Milligramm,- wenn es mit optimalen Mengen an inertem Trä~
gerp^otein geprüft wird*
Thyrocaltionin39die Hormone vom Polypeptidtyp sind, kommen
in den Schilddrüsen von Säugetieren, z.B,Schweinen, und in
menschlichen Schilddrüsen vor, und wirken als Mittel zur
Senkung des Plasmacalciums durch Inhibierung der Knochenresorption. Das Molekulargewicht der Thyrooaloitonine wurde bisher nicht bestimmt, es scheint jedoch mehrere mit -verschiedenen
Molekulargewichten zu geben.
Stoffe mit Thyroealcitoninaktivität wurden bisher durch
Fällungsverfahren und anschließende Säulenfraktionierungsrer™
fahren gereinigt und konzentriert. Zwei typische Verfahren sind in den früheren Anmeldungen beschrieben, auf die oben
feingewiesen wurde ο Eine beträchtliche Zunahme der Reinheit
und der Aktivität pro Gewischtseinheit wird dabei erhielt,
die Wirksamkeit des Verfahrens und die Endrei&heit und damit
die Aktivität lassen jedoah nach zu wünschen übrig*
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Gegenstand der Erfindung ei,nü sowohl Verfahren zur Reinigung
τοπ Thyroealeitonin. "bis zu einem hohen Reinheitsgrad, als
auch, das Produkt selbst, v/ie es dusroh seine
gekennzeichnet ist, die in Figur 1 <2er "beigefügten
nungen - darg38^!!* is*» Bas erfiädungsgeiaäße Verfahren "beruht darauf, daß vorzugsweise einphasige Lösungsmittel aus
Mischungen niederer Alkenole, niederer Alkyl-ester von niederes;
Alkensäuren, Ketonen und niederen Alkansäuren und Wasser in ^
einer Reihe von Verfahrenp darunter in Kolonnen angewandt
werden»- Zu den Alkanolen gehören beispielsweise Methanol-Äthanols
n-Propanol und n-Butanol*. Das letztgenannte Alka---ncvl
xtfir beTorsugt, Beispiele fur die Ester sind ÄthyXaoetat
und für die Ketone Methyläthy!keton* Die "bevorzugte nieder«? ■
Alkansäure ist Eisessig? jedoch kann man andere Säurens ssim
Beispiel 2-Propionsäure und Buttersäure verwenden,, Das "bevorzugte !.ösungsmittelsystem enthält etwa 5 Teile n-Butanol,-3
Teile V/asser und 2 Teile Eisessig„. Me Verhältnisse können
abgeändert werden $ solange e5,n einphasiges LösungsmitteloysteE!
erhalten wird. Mit einigen der organischen Bestandteile» sum-Beispiel
Methanol und Äthanol „ die in- Vfesser in allan Verhältnissen löslich sind, können nur einphasige Systeme erseugt
werden*
Die Ausgangsstoffe für die erfindungsgeisäßen Zweske könne« mit
Aceton entfetteteu^d dann gepulverte Säiigetiersehildilrlisen
zum Beispiel Sckweiii^eohilddrüsen ode:« p^yHeIl ge;?ü:Ur>gt«
Mate'riali-en sein. So v/ir<3 bei *?pi 3? s\-;e" a~ ('au
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material mit heißer Säure«, beispielsweise verdünnter Salzsäure
oder verdünnter Essigsäure, extrahiert, die die Thyro**
calcitonine löst«. Nach Filtrieren stellt man das Filtrat auf
etwa pH 3 ein, adsorbiert die Thyrooalfliitonine an Oxycellulose und eluiert dann mit verdünnter Salzsäure. Das Eluat
kann dann mit Ionenaustauscherharze^ die /.cetationen gegen
Ohlorlonen auszutauschen vermögenP falls Salaeäure als Eluier-mittel
verwendet wurde, auf pH 3 eingestellt werden«. Durch Lyophllisieren wird dann ein festes Produkt erhaltenο
formen Bei den Terschiedenen Ausführungs/ der Erfindung wird
das entfettete Thyroidmaterial mit heißer Essigsäure? zum
Beispiel 40 #~iger Essigsäure, gelöst und dann wird Butanol
umgesetztρ um eine Endmischung aus Butanol, Wasser und Eisessig im Verhältnis von etwa 5 : 3 s 2 zu erhalten. Man
wendet vorzugsweise eine Temperatur von etwa 40 - 600C anF
und wenn die Auflösung vollständig ist, enthält der Extrakt das thyrocalcitoniaakliTe Material;, während ein beträchtlicher
weiterer Anteil an inaktiven protainartigen Verunreinigungen
zurückbleibt» Man kann die Extraktion mit dem unlöslichen Material wiederholen und das schließlich erhaltene feste
Material verwerfen« {
Der Extrakt kann dann auf verschiedene Weine weiter verarbeitet werden- Mau Irann ihn direkt auf eine Celluloseeäule
-ÄÄ Λ BADOPHGfNAL
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aufgeben ©der mit einem organischen Lösuwgsmittelo sum Baispiel HeptanP versetzen, wodurch eine Abscheidung der wässrigen Phase5 die das thyrooalcitoninsktive Material enthält»
reranlaßt wird* Man kann andere Kohlenwasserstofflösungsmittel
verwenden9 die gegenseitig® löslichkeit mit dem organischen
Bestandteils Alkohol,, Ester oder Kaitonβ und nur sehr geringe
LöalichkQiten in Wasser aufweisen« Typische Kohlenwasser«
stoffe außer Heptan sind Cyclohexane Benssol und Toluol-.
Es ist ferner möglieh» durch Zugabe eines WaeserUbe^sehussas
eine Trennung τοη organischer und Wassers chi ent ssu bewirken»
wenn das organische -Material nicht in allen Verhältnissen in
Wasser löslich ist» GewUnsohtenfalla kann man die organische
Phase nach Abtrennung von der wässrigen Phase mit Wasser waschen und die wässrigen Phasen ■?ereinigen« wodurch die Ausbeute an Thyrooaloltonin etwas erhöht wird ο Aus der wässrigen
Phase kann durch Lyophilisierung ei« partiell gereinigter feststoff erhalten werden,» Diese Arbeitsweise fuhrt dazu, d-aß
das zu verarbeitende Volumen ohne merkliche Aktivitäts-=
Verluste um etwa das 5«-fs ehe -vermindert wird-
Man kann partiell gereinigtes thyrocalciitnninaktinrea Material als Ausgangsstoff oder ,stattdessen Tergleichbare gerataigte
Produkte verwenden. Wenn ein partiell gereinigtes Material verwendet wird, wirö es yorzügswaisü in einer Mischung
der wäaerigsn Säure, zum Beispiel 40 ^iRer Essigsäure9 direkt
gelöst odar suspendiert. Dann wird der Alkohol» zum Beispiel
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nur in solcher; Menge »ugesetstj. daß sich eine Io
suiigSHiittelmischung bildet, in der ein reichlicher Uifüar
schlag entsteht. Me Zugabe wird abgebrochen bsm? eine rztarkliehe
Abscheidung von Shyreoaluitonin erfolgt. Falle sich eine
geringe untere Phase abscheidetρ wie es manchmal je nach den
in dem Auegangsmaterial enthaltenen Terunreinigungen vorkommt, wird diese zusammen mit <2sm Niederschlag verworfen* Die
leichtere Phase, die die Thyrocalsitoninaktivität enthält,, wirfl
dann durch Zusatz von Kohlenwasserstoff oder Überschüssigem Wasser in zwei Phasen übergeführt, die Phasen werden getrennt,
und die wässrige Phase wird lyophtlisiert.
Das so erhaltene Produkt kann zur weiteren Reinigung in einer Cellulosekolonne). eingesetzt werden= Ih einem aolchen Fall knnn
der Zusatz τοη Kohlenwasserstoff und Wasser und die Lyophylisierung
unterbleiben, und die erhaltene organische Phase wird direkt zur Speisung äer Oellulosesäule eingesetzt» Zur
Verwendung in der Säule kann man Cellulose verschiedener Arten einsetzen, vorzugsweise faserigesWhatman-PulTer oder
ähnliche Produkte, die bei der Pilterpapierherstellung erhalten werden. Die Cellulose wird Tor der Verwendung in der Säule
durch Waschen mir mehreren Voluaenteilen eines Lösungsmittels
aus 5 : 3 : 2 ButanoX-o '«fusee? und Bisessig und anschließende
Luftrocknung behandelt. Thyroci-Ucitoninalrtlvee Material 9 das
nach den oben beschriebenen .Jtafen erhalten wird, wird in
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dem Lösungsmittel aus organischer PlUssigkeit, Wasser unfi
Säure, aum Beispiel eines lösungsmittel© aus 5 : 3 s 2 a-Butanol,
Wasser und Eisessig gelöst, und in das untere Ende einer
mit der vorbehandelten Cellulose trocken gefüllten Säule gepumpt» Die Säule wird mit weiterem 5 ι 5 i 2-üöetangemlttel
entwickelt, und Eluatfraktioaen aus dem oberen Ende der
Säule werden getrennt aufgefangen. Geeignete Aktivität enthaltende Fraktionen werden vereinigt. Dttrch Zusatz τοπ Heptan %
wird eine wässrige Phase erhalten und lyophysiliertj um
gereinigtes thyrocalöitoninaktivea Material zu gewinnen« Im allgemeinen enthält das erste Proteinhauptmaximum des Eluats
den Hauptteil der Aktivität. Die Säulenreiniguug ftthrt zu einer
etwa 10-faqhen Zunahme der spezifischen Aktivität gegenüber
dem Produkt, das durch Behandlung mit Oxycellulose erhalten
wird»
Das gereinigte ^rodukt aiis der Cellulosssäule kann hierauf ■ «
durch Molekulai-siebung in einer Kolonne weiter behände?·^
werden* die mit Epichlorhydrin Teynetgtes Dextran enthalt«
Ein besonders wirksames mit Epichlorhydrin vernetzten Dextran
ist unter der BezeichnungSepheäex G<»5o Im Handel erhältlich,
Die Säule wird im allgemsinen nach öer Arbeitsweise, die in
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der Patentanmeldung der Erfinder Paul, Bell und Coluoci be
schrieben ietp zubereitet, indem man zunächst das Gel Über
Nacht in Wasser bei Zimmertemperatur quellen und denn in Of1 a )
Essigsäure bei 4°C ins Gleichgewicht kommen läßte Die folgenden mit Hilfe run Säulen durchgeführten Arbeitsgänge werden
ebenfalls vorzugsweise bei der gleichen niederen Temperatur
durchgeführte Das tliyrocalcitoninaktire Material aus der
Cellulosesäule wird in 0,1 a. Essigsäure gelöst, in die
vorbereitete Säule eingeführt, und die Säule wird dann mit Op1 η Essigsäure entwickelt. Man überwacht das Eluat auf
/licht
■Protein mit Hilfe seiner Ultraviolettabsorption bei etwö
und fängt geeignete thyroaalcitoninaktive Fraktionen auf. Bei Verwendung von Sephadex G»50 werden die Fraktionen
mit einem R£~Wert «wischen 0,34 und 0P50 aufgefangen. Es sei
darauf hingewiesenP daß der oben angegebene R^-Wert eine
charakteristische Funktion des Molekulargewichts der eluierten
Substanz in einem Täeotimmten Gel darstellt«
Eine v/eitere Abänderung des Verfahrens umfaßt als zueilt 81 iohe
Stufe eine GegenstroniTertöilung» Das Auagangsmaterial kann
entweder auo Gelfiltratitmen oder au<3 der Celluloseohromatographie
oäev beiden Btammen. Eevorsugt wird die 2-Stufen-Methode
f die zu einer großem VeriulnderuKg des Geaamtproteini? dos
Material« mit ßcrlngeton rorlunten an Thyrooaloitoninaktivität
ih die ϊϊ<?ί7.«.πβ (>r vernobJudeuen proteinartigen
T-U'U.f ίτ μ'..·. (;f t fit'-,,,»; \-'..it*flcM ''--Tc-.!-.'/,'η «fisetfitn PUr dje
« :1 1* 1
<·(i β BAP ORIGINAL
SegenstromTerteilung ist ein 2-Phaaensytem erforderlich.Ein
bevorzugtes Sy tem besteht aus etwa 5 Seilen n-Butanole 4 Teilen Wasser und 1 Teil Essigsäure, Die Reinigung beruht auf
einem Unterschied in den Verteilungskoaffiaienten der thyroealcitoninaktiven
Stoffe und inerter Verunreinigungen.. Die Verteilungskoeffizienten K betragen fftir die calcltoninaktlven
Stoffe 0,25 bis 0,6 und fUr die proteinartigen Terunreinigungen
weniger ale 0*1.'RLe thyrocalßitotiinaktiven Stoffe
aind im Vergleich zu den meisten Verunreinigungen nach Qiner
bestimmten Anzahl "von Überführungen lascher transportiert
worden»
Bei Anwendung des ßegenstroaverteilungsverfahrens kann eine
Vor&erteilung in etwa 6 Kolben durchgeführt werden. Die oberen
Phasen einer Reihe von Vorverteilungen werden aus dem letzten
Kolben aufgefangen 9 vereinigt und mit Heptan oder Wasser τer
setzt, um die Aktivität in einer wässrigen Phase au konzentrleren,
die hierauf lyophylisiert wird, um ein Trockenpulver zu erzeugen« Das Produkt der ersten Gegenstromextraktion kann
dann in eine Verteilungeyorriohtung mit 250 Röhrchen oder
einer ähnlichen Vorrichtung mit alner Vielsianl von Röhrchen
eingeführt werden* In einem typischen Fall aind etwa 10 ml
beider Phasen des lÖsungBirilttelayatsBiö In -j»?lam feilte 11 is
rohr enthalten.. Die öegentitrofflextrakt-ioa, die yorzugsiireia-a bsi
niederen Temperaturen, aum Beispiel «tv/a 40O durchgeführt
ißt in mehreren d'agen beetiü^t, ße.s Ig-ns 1;a Pv-ak'iion»«-» dits <lurch
10983·//1669 BAD0RIS(NA1.
Bestimmung dee Proteinmaxisiuma und/Jder durch einen Ra
der nooh beschrieben wird, festgestellt werden? enthalten
Aktivitäten in der Größenordnung von etwa 40 hie 100 Haituneinhalten/mg. Die Ratteneinheit dor Thyrooaloitoninaktivität
lot folgendermaßen definiert:
Eine Ratteneinheit ist als diejranjflp Menge an Thyrocyloitoninnktivität definiert, die den Ooloiumgehalt im Serum von jungen
nüchternen Ratten in einer Stunde ura 10 # vermiiNle'H. JDqs
hormouhaltige Material wird In die Sohwanzvene der anästhe-Meierten Ratten injiziert. Eine Stunde später injiziert man
0,0^ ml Heparin in die Schwanzνene und entommt dann in etwa
IO Sekunden eine Blutprobe aus der oberen Augenvene. Man zentrifugiert die Blutprobe und bestimmt den Calciumgehalt
des Plasmas mit Hilfe einer Abänderung der Murexidmethode
die von William und Moser in Anal.Chenu, Bd. 25 (1936),
S. 1414-1417 beschrieben wurde. Diese Ratteneinheiten werden im folgenden abgekürzt als "Einheiten" bezeichnet.
Die zur Bestimmung der Strukturformel dee erflndungsgemäßen
Produkts verwendeten Methoden werden in Form eines zusätzlichen Beispiels bei der Beschreibung der bevorzugten AusfUhrungeformeη der Erfindung nooh genau erläutert. An dieser
Stelle fiel jedoch darauf hingewiesen, daß bei der Aufklärung
der Strukturformel der Verbindung, die in einem Balepiel als
Produkt heaohriehQP lot, keineswegs festgestellt wurde»
109837/1660 BAD
die genaue Strukturformel der von Thyrocalcitonin, wie es 3η
Säugetiergewebe vorkömmtp oder von ThyrocaXcitinon noch
dieser Erfindung entspricht, wenn dieses in einem Säuge«
tier fUr medizinische Zwecke verwendet wird. Es ist sehr unwahrscheinlich, daß die Formel des erfindungsgemüßen
Produkts mit der des Materials identisch iotP das in Säuge
tiergowebe vorliegt* Bas erfindungsgeiuäße Thyrocalci^onin
ist ein neues Produkt mit einer Reinheit, wie sie bisher niemals" erzielt wurde,*'und den Verfahren, durch die das hoch
gereinigte Produkt erzeugt wird und von denen eine vorteilhafte Verfahrensweise hierin erläutert wird, liegen chemische Vorgänge zugrunde, die leicht zu Veränderungen im Molekül, fuhren können. Ba das Molektil ferner einige Aminosäuren
enthält, die andere aktive Gruppen als die Carboxyl- und «-■
Aminogruppen, die an der Bildung der Feptidkette beteiligt
sind, aufweisen, ist es leicht mögliche daß das Thyrocylci
tonin im Säugetiergewebe vernetzt oder in anderer Weiss substituiert sein kann9 wobei die BlaAngen mit den anderen
reaktiven Gruppen bei der Herstellung des gereinigten Materials nach dieser Erfindung gespalten werden« Eo ist an
her eine solch» Vernetzung denkbar, daß in dem Säugetier
gewebe*, aum Beispiel etner Schweineschilddrüoe, die Thyrn
caicitoninaktivität von einem Polymeren ausgeht, wöbej d
Begriff in seinem allgemeinsten Sinn gebraucht wird \xnr ei
Vernetzung einschließt, die durch eine cl>
,!!''rcI« FzrhiUv
unter Abspaltung von V/nueer t'^f, W;-<ßR«r t?n<' h>.yff oj
< ι >.m
109837/1069
~ 12 ~
entstanden sein kann. Es 1st ferner denkbar* daß Thyrncalci
tonin in dem Säugetiergewebe aufgrund von Waeeeratoffbindungen und anderen Kräften ale größeres Molekül vorliegt. Jedenfalls
sseigt ei« Vergleich der Aktivität von rphem Schilddrüsengewebe mit der des gereinigten Produkte nach dieser Erfindung,
daß die Aktivität in dem Molekül liegt, das durch die hierin beschriebene Strukturformel wiedergegeben wird.
Soweit jedoch bisher bekannt ist, let das Molekül als ganzes
fUr die Thyrocycitoninaktivität erforderlich. Bei einer Zerlegung durch Enzymepaltung und dergleichen, die zur Bestimmung
der Strukturformel angewandt wurde, wurde bisher kein Fragment des Moleküle erhalten, das noch die Thyriocaioitonihaktivität
aufweistr
En sei darauf hingewiesen, daß die Bestimmung der Strukturformel mehr ale ein analytisches Routine^erfahren darstellt. Das
soll nicht heißen, daß bei der Bestimmung der Struktur nicht die Übliche saure Hydrolyse zur Bestimmung der Zahl von verschiedenen AmJnosäurß^eeten zu Beginn und weiterhin zur Prüfung '-on Fragmenten angewandt wird. Diese Arbeitsweise als
solche wird 'η der Profeinchemie routinemäßig durchgeführte
Sie wurde s?waj.· in den Fällen« in denen es nötig war, angewandt,
stellt ,1(.dool>. a1« bekannte Anolysenmethod© kein neues Merkmal
dar, ii'iu di»« Frfit'rtim/i vom Stnnd der Technik unterscheidet-
Witt IM 7/ Hl ■'!
1768A26
13 »
Bei der Anwendung der analytischen HydroIysemethod β wurden
die-UbILehen Vorsichtsmaßnahmen beobachtet. So wurde
beispielsweise Tryptophan, das durch saure Hydrolyne aura
Seil verstört wird, durch andere UbILohe Maßnahmen bestimmt,,
Ferner ermöglicht die saure Hydrolyse keine Unterscheidung
zwischen Asparaginsäure und Asparagin oder Glutaminsäure
und Glutamin ··« ^a in beiden Fällen Asparaginsäure bzwο Glutaminsäure
festgestellt v/Lrd» Bei der !«taten Zubereitung wur ^f
den andere Maßnahmen angewandt, wobei festgestellt wurde, daß
die 4 als Asparaginsäure festgestellten Aminosäuren in Wirklichkeit aus Asparagin bestehen und daß der Glutaminsäurerest
nicht in der Ami&furm vorliegt« Obgleich die saure
Hydrolyse routinemäßig durchgeführt wird und Üblich ist, wird
das Ergebnis» das die empirische Aminosäureformel des erfindungegemäßen
Produkts liefert, erneut angegeben. Wie es in der Analyse üblich ist, werden die tatsächlichen Mengen
durch das Molekulargewicht der jeweiligen Aminosäuren dividiert *
und die nächstliegende ganze Zahl wird für die Aminosäure
reete angegeben. Die Routineanalyse ergibt folgende empirische Aminosäureformel:
*r Thr2 Ser^ GIx Prog GIy5 Ala VaI Cys2 Met LeU5 Tyr
Hi» Arg
Das erflnduiigagemäße ^rodukt 1st awar HeVr^Jn9 -se ν/βίtifc ,)«
doch als Vertuti'elin'JLguugeii i'iuin« Mangel ■,>>
,'Min «ϋη.'.'Ί, niimU<!h
10 9 8 3 7/ 1669
u -
Leucin und Lyain auf. Wie no oh erläutert wird,
eine etwa8 stärker gereinigte Probe die beiden Verunreinigungen in verminderten Mengen auf. Sie bilden keinen Teil t
des Holeklila, da sie in Mengen vorliegen» die unter denjenigen
liegen, die einen Rest in der Formel selbst ansteigen v/Urden*
Bo aei darauf hingev/iesen 9 daß die erfindungsgemäße- Verbindung
in Gegenwart von VerdUnnungnmltteln verabreicht werden kann
und daß die Thyrocaloltoninaictlvität ron der Verbindung und nicht notwendigerweise von der Dosierung der Hedlein, die verwendet werden kann, abhängt.
Pig· 1 eelgt die Strukturformel dee ThyroctLoitoninprodukta
mit Fragmenten dea enzymatisohen und chemischen Abbaue und
FIg, 2 stellt ein Pließdiagranim des erflndungagemäQen Ver -W fahrens dar.
Bas erfindungagemäße Verfahren wird In Verbindung mit Pig.2
erläutertρ die ein Fließdiagramm darstellt, das alle Verfahrenavarianten zeigt.
BAD ORIGINAL j «9a 37/ Hi B 9 ~~
- 15 -Beispiel 1
4,0 g ait Aceton entfettete und gepulverte Schweindesohild»
drüse wurden Bit einer Mischung aus 6 ml Eisessig und 9 ml
Wasser bei etwa 50°0 extrahiert. Eine gleiche Volumenmenge (15 ml) n-Butanol wurde sugesetzt, und nach 10 Hinuten "bei
etwa 500C wurde der BUokstand abgetrennt und in gleicher
Weise mit 25 ml des Systems aus 5:3:2 n-Butanol/Wasser
und Eisessig erneut extrahiert. Die überstehenden Flüssigkeiten aus dieser Extraktion wurden vereinigt und mit 50 ml
Wasser versetzt, so daß sich eine wässrige Phase abschied. Die organische Phase und eine kleine Menge Niederschlag (inagesamt weniger als 1000 Einheiten Thyrocalcitonlnaktivität)
wurden Terworfen. Die wässrige Phase lieferte nach Lyophilieierung 0,57 g trockenes Produkt, das etwa 20 000
Einheiten enthielt.
20 g rohes thyrocaloitoninaktiveo Material, das aus dem oben
beschriebenen Oxyoelluloseverfahren erhalten wurde, wurden
in 80 ml 40 jt-iger Essigsäure bei Zimmertemperatur gelöot.
Die hochviskose bräunlich gefärbte Lösung wurde mit 100 ml n-Butanol versetrfc. Nach kräftigem Schütteln trennten sich
ein- beträchtlicher niederschlag sowie eine wässrige PUase
~ 16 -
ab. Eine große Menge der mit dem Material verbundenen Farbe
war in der geringen wässrigen Phase angereichert,, Die Mi-βchung wurde bei 2500 U/ff 15 Minuten lang bei Zimmertemperatur
zentrifugiert, und die organische Phase wurde entfernt, Die wässrige Phase und der Niederschlag wurden in 15 ml des
5:3t 2-Systems suspendiert, und die nach dem Zentrifugieren
erhaltene überstehende Flüssigkeit wurde mit der ersten Überstehenden Flüssigkeit« die abgetrennt worden war« vereinigt.
Der Niederschlag und die wässrige Phase wurden lyophilisiert und zu Inforraationsewecken biologisch getestet. Aus dieser
Fraktion wurden 10,24 g Feststoff mit geringer biologischer Aktivität erhalten und verworfen.
Die vereinigten organischen Phasen (180 ml) wurden mit 400 ml Heptan versetzt. Die wässrige und die organische Phase, die
so erhalten wurden, wurden getrennt. Die organische Phase (Heptan, n~Butanol und etwas Essigsäure) wurde mit 70 ml
Wasser extrahiert. Der Wasserextrakt wurde mit der ersten wässrigen Phase vereinigt,'und die wässrigen Phasen (116 ml}
wurden lyophilisiert. Es wurden 10,3 g thyrooalcitonlnaktives
Materialβ das 2 500 000 Einheiten enthielt erhalten«
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3«37gpartiell gereinigtes Material mit Thyrocaloitoninakti
vität (417 000 Einheiten oder 220 Einheiten/mg) wurden in
einer Mischung aus 12 ml Eisessig und 18 ml Wasser gelöst.
dann etwa 10 Minuten lang stehen gelassene Nach dieser Zeit
wurde durch Zentrifugieren der Mischung eine obere organische M
wässrigen
. und der unteren/Phase getrennto Der Niederschlag und die
wässrige Phase wurden mit etwa 10 ml einerMischung aus 5 Teilen n~Butanol, 3 Teilen Wasser und 2 Teilen Eisessig
(5:3:2) gewaschen. Die bei der Waschbehandlung erhaltene · organische Phase wurde mit der vorher abgetrennten organischen
Phase vereinigt (Gesamtvolumen 34 ml). Der gewaschene Niederschlag und die untere wägerige Phase, die nahezu frei von
Thyrocylcitoninaktivität waren, wurden verworfen. J
Öle organischen Phasen wurden in das untere Ende einer Säule
(5oe Durchmesser und 80 cm Höhe) mit 575 g trocken eingeflillter Cellulose gepUMpt«, die wie oben beschrieben
vorbehandelt worden war. Die Säule wurde mit Cellulose trocken unter solchen Druok gefüllt, daß die gefüllte Säule eine
Cellulosedlohte aufwies, wie sie ungefähr bei Papiarehromatogwphiepapieren vorliegt. Denn wurde die organische Phase durch
..ρΐί". ίι 1JfJ^T1, .■ ; .
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Einpunpen eine· lösungsmittelβ (5:3:2) Mit einer Strömungsgeschwindigkeit yon etwa 52 ml/Stunde nach oben entwickelt.
Nachdem das obere Ende der Säule erneIcht war, wurden Eluatfraktion«η in Mengen von 13 bis 15 ml pro Traktion aufgefangen.
Die Fraktionen wurden mit Hilfe des Rattentests auf Thyrooaloitoninaktivität analysiert. Ferner wurde das Protein-Peptid-Profil duroh alkalische hydrolyse und Nlnhydrinentwicklung nach der Methode von Hire, Morre und Stein,wie sie
in J. Biol. Chem. 219 623 (1956) beschrieben ist, erhalten. Unter diesen Frlifbedingungen wurde festgestellt, daß die Thyrocaloi
toninaktivltät mit dem ersten Froteln-Faptid-Maximum verbunden
warf(dieees Maximum 1st nur etwas langsamer als die Löeungemittelfront). Die Fraktionen 8 bis 17t die die Bhyrocalcitonin
aktivität (entsprechend dem ersten.Frotelnmaxlmum) enthielten,
wurden vereinigt und lyophilisiert.
Bei diesem Versuch wurden 368 mg gereinigtes Material, das 410 000 Einheiten enthielt, aus 3370 mg eines alt Oxycellulose
behandelten Materials erhalten, das 417 000 Einheiten enthielt. Die Ausbeute betrug also mehr als 90 £ und die spezifischen Aktivität wurde von etwa 120 Einheiten/mg auf 1120 Einheiten/mg
erhöht.
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- 19 -Beispiel 4-
Un festzustellen, ob andere Lösungsmittel und organische Säuren
bei einer ähnlichen Arbeitsweise unter Verwendung der trocken gefüllten Cellulosesäule verwendet werden können, wurde eine
Reihe von Standardversuchen durchgeführt, wobei gleiche Säulen
nit CellulocefUllungen verwendet und die organische Säure und
das Lösungsmittel abgeändert wurden. In sämtlichen Fällen
wurde dae Verhältnis von organischem Lösungsmittel, Wasser und
Säure so eingestellt, das für die Entwicklung ein 1-Phasen«-System
verwendet wurde. Bei diesen Versuchen wurden jeweils 25 bis
30 ag eines in einem einzigen Ansatz mit Oxycellulose gereinigten
in Materials mit fhyrocylcitoninaktivität in Verbindung mit jedem/der
folgenden Tabelle I angegebenei Lösungsmittelsystem verwendet.
Für die FUllung, Beschickung und Entwicklung der Kurve wurde im
wesentlichen die Arbeitsweise von Beispiel 3 angewandt. Die Ergebnisse dieser Versuche sind in der folgenden Tabelle zug aminen
gefaßt:
109837Π669
Wasser | Säure |
als Feststoff
beim Aktiv!täte maximum gewonne nes Material |
|
Tabelle I | (3) | Essig~(2) | 3«8 mg. |
(2) | (2) | 0,8 mg. | |
LösungBiaittelejrotem (Volumenteile) | (3) | (2) | 18,0 mg. |
Organisches Lösungs«
mittel |
(3) | (2) | 5»4 mg. |
n=Butanol (5) | (3) | (2) | 3;6 mg. |
n-Butanol (5!) | (3) | (2) | 5,5 mg. |
Methanol (5) | (2) 2 | -Propion- (2) | 0,8 mg. |
Äthanol (5) | (2) | Essig- (2) | 0„1 mg. |
n-Propanol (5) | |||
Methyläthy!keton (5) | |||
n-ßutanol (5) | |||
Äthylacetat (5) |
BeJ ;)<■(*ein d«r oben bßuohrt ebenen Verouohe war die biologiache
Aktivität mit ei non! Mr: si mum -verbunden· Der relative Relnigungs
grad wird durnh (*.U!. mit dieser Aktivität verbundenen Gewichtsverminderung angc/,βΐ^ί, Bn kann angenommen werde η ^ daß eine
beträchtliche Ho-<ni(;ung mit all!en angegebenen Kombinationen außer
- 2ϊ ■
Beispiel 5
Die GegenetroBiVörsrer teilung mn thyrooaloifconinhalfcigBtn Mntei'ial
in Kolben wurde in einem Arbeltetag bei. Zimmerfceraparatür durch,;
geführt» Die Vorrichtung file1 dleäon Yersuah benfcuml aus eetohs
250 ml Kolben, Daa Lösungsral tfceloyufcfim basi;u id min ti Teilen
η-Bu ta no I» 4 Teilen Waaeer und i Teil ISiuooü.Lg« Juri «λ' Kolben
enthielt ursprünglich 100 inL eier unseren Phiiuu
<\>m buarAwlebinien
LöeungBrnitteleyatema,,
0/
4fl29g mit 3ephadex»5O gerelnlgtea thyromiiti.Uonnkfclsren HüterinL
4fl29g mit 3ephadex»5O gerelnlgtea thyromiiti.Uonnkfclsren HüterinL
wurden In 100 ml der iintei'sn Phon» üen nca^n-i Ko ^
100 ml der oberen Phase dun T.thjungoia.lfc hälay:ifeema v/urtliiii In
einem uegenstromextraktionoirerfahren flii' di. · 6 l'lniioh^ii verwendet.
Die 15 oberen Phasen, dl a ami dom lebut.m Kolben (Ni1,6)
abgetrennt wurden, wurden vereinigt und durch fiep tan·» κ Fraktion
aufgearbeitet. Ea wurden 0>262 g trockenen ^roduJci »rhnlfcfni,
Durch Analyse wurde fesögeute Il t, duß dloueu prnkttiich din ge
eamte Aktivität dee Auugun^diiui türiola tinlhf,;lt, |il;-it) L1Ir ^u Un I n.j
Btlramen mit den Auebeutebnrechntin^en outiituül um- / 'i'leHungn
knefflelenten Ubereln, die nun aminen OttgBuüt i-oiiif» .·*■>*} IJunßa ■
▼ereuohen erhalten wurden« i-atJ l'rodukk nun ili.enav KoΓ'ΐΛ^/',ίί^βπ
atromver teilung weist ain filuLmum nti Hmiiiit: ·, ι ·; ι <!ιυ μη um)
irnOglloht die Yetwendung oln«r \i.]\.t f(köii r t ;; ιΐίίαιη,ζ
<m aktivem Material in '/erhlr» Inni; ni Ir* -; ijj.· ί »; >
o!t ,? -{"littim; iii'
2$0 Rühren,
ßAD0RIG"«i.
- 22 Beispiel 6
Die Ln diesem Verßuch verwendete Vorrichtung enthielt
250 verbundene Extraktionaröhren (sa'nifcliche auo Glas), dlu
mit einem automatischen Antrieb versehen waren« Dieäe'VorrLchtung
Ißt ao konstruiert,, duß öle im "Kreiolaufba trieb",
wobei, dos Material , dan Ln da« letzte Rohx· (Nr. 250) gelang!;,
Ln daß »rate Rohr zurflolrgafUhrt wird, oder nltern.itlr itn
"Abnohmebe trieb11 verwendet werden kann, wobei aast Material
(lau Ln dfjfi letzte Rohr gelangt, abgenonunen und unnchLLeßencJ
mLfc fintieren ähnlichen Fraktionen vereinigt vilrd.
Alle Oegenatromverauche dieaer Vorrichtung mit 250 Rühren wurden
bei 4-0C durohgefUhrtp um Akti'/ltäfcaverluote auf ein ?ii ilmum zu b
enhi'Hnkeki«
IiUr clLßnen Verauch wurdö da» Synbfim aua 5 ' 4 s in Bn
Waßnnr/B'iHooeig verwendet- J«üaa Röhrr?hen dar Galann",, .
vLi;htung mit ?.r)0 Röhrchen uiißer d-;in Rühiuhen Nv. J inul 2
wu ,-ila mit .niariilah jvul.-m Wangen d iv unteren Phnue (i 1 ml )
büji;hlokt; , h\ ji.üh in dienern i»yu olmii ba lui Jteiian w« ;hiie !,kU» Herden
Hu t / laß« tn ' ijlLdiM, vnn'iJa üxa Lw Gleichgewicht; be ?.\i\ft\\ <;h*j
•M5.,uii;;-jin.l ;^.;! 1. iyufc !μ MitUO-fr} Tag;·: ι,'/ii· iitjgina Φ·.*ϋ ϊ)2·>-πιοΐυ her
««of;!.''! Lt. H ■ '/"<»; .· rn ι ή.,!Mil j,;r i'lir ?Ηβ /orrl i,hb.ing wurdfj wie
d i iiiif!^ :ν-;ι>: ';>>
° 1'.- -. ■ l ΐί-'/ϊο./^ i liirtO IrJ JOtliakt.
260 ng partielle gereinigtes thyrncalcitoninaktives Material,
das nach der Arbeltswelse vrin Beispiel 5 erhalten wurde, wurden
in 22 ml der unteren Phase des Lösungsmlttelsystems gelöst und
in die Röhrchen Nr. 1 und 2 der Vorrichtung eingefüllt. In die
RShrohen Tor den Röhrchen Nr. 1 und 2 wurden genügende Mengen Im Gleichgewicht befindlicher oberer und unterer Phase gegeben, um des Phasengleiohgewicht wieder herzustellen. Der mechanische Antrieb der Vorrichtung wurde auf 4 Überführungen/Stunde eingestellt. Mit der Vorrichtung wurde ein Fraktionssammler
verbunden, der die oberen Phasen aus Röhrchen Nr* 250 auf-»
nahm. Die Verteilung wurde nach 1175 Überführungen beendet und
alt den gesammelten Fraktionen sowie den in den Röhrchen der Vorrichtung verbleibenden Fraktionen wurden Test= auf biologische Aktivität und Protein durchgeführt. Die biologischen Testwerte ergaben eine hochaktive Fraktion in den aufgefangenen
Fraktionen mit einem Aktivitätszentrum bei Fraktion Nr. 750, d.h. er oberen Phase aus Röhrchen Nr. 250 bei 750-ten
Überführung. Dieses Aktivitätemaximum erstreckte sich von
Röhrchen Vr. 650 bis zu Röhrchen Nr. 850 und entsprach genau
einem Proteinmaximum, das nach der Methode der alkalischen Hydrolyse und Ninhydrinfarbentwlcklung festgelegt wurde. Die
berechnete Bandbreite entsprach der theoretischen Bandbreite. Der
NBttrlebsMvertellung8koeffisient wurde aufgrund dieser Werte
Mit 0,49 berechnet. Die Gewichtsaubeute bei diesem
betrug 17p1 mg (TCT-I). Weitere UnterBuchungen der in dem Gerät
verbleibenden Höhrohen ergaben ein zweites MaMimum biologischer
Aktivität, das eioh von dem Röhrchen Nr- 175 bis Nr« 250 erstreckte. Der berechnete Verteilungekoeffizient für das zweite
thyrocalcitoninaktive Material betrug O023. Die Gewichtsausbeute bei diesem Maximum betrug 11,1 mg.
Dieser GegenstromverteilungSTersuoh wurde mit einem im Gleichgewicht befindlichen System aus n-Butanol, Wasser und Eisessig
durchgeführt. Bei Verwendung von frisch hergestellten Systemen wurde die biologische Aktivität nech dem gleichen Muster
aufgetrennt, in diesen Fällen betrugen jedoch die Verteilungs
Koeffizienten 0,66 und 0Γ33« Bei diesen Versuchen konnte ferner
ein kleiner Anteil an Thyrocylciltoninaktivität mit einem Verteilungskoeffizienten von 0r14 nachgewiesen werden, der von konta
minierenden Proteinen und anderen Verunreinigungen nicht völlig
abgetrennt wurde»
Das oben beschriebene TOT-I Material wieo eine Aktivität von etwa
60 000 Ratteneinheiten/mg Protein auf, wenn es in einer optimalen Menge an inertem Iräßorprotein getestet wurde, und entsprach
der oben angegebenen empirischen Aminosäureformel sowie der
Strukturformel von Figo 1.
10 9 8 3 7/1669 BAD ORIGINAL
25 -Beispiel 7
■s -—ττίί τ ίιγτ -τγ- -,mn -!«man; ^nr— -r ■■ . fc*
Dieses Verfahren bildet zwar keinen Teil dar Erfindung, kann
jedoch zur Herstellung γοη partiell gereinigtem Rohmaterial für
das erfindungsgemäße Verfahren angewandt werden»
100 1 auf 750G erwärmte 2rt Essigsäure wurden unter Rühren mit
10 000 g Schweineechilddrlisen versetztj die mit Aceton entfettet
und gepulvert worden waren» Die Mischung wards 1 Stunde gerührt
(Temperaturabfall auf 600C)F nach dieser Zeit mit einem gleichen
Volumen kalten destillierten Weasers versetzt, gut gerührt und
dann 1 Stunde lang absitzen gelaasen» Man trennte die überstehen
de Flüssigkeit von den Feststoffen ab und wjjdsrhor'ce M*
Extraktion dreimal mit weiteren Mengen Wasser« Der Niederschlag
wurde verworfen« Die Überstehenden Flüssigkeiten (300 X) wurden
vereinigt und auf etwa 80O gekühlt.
8000 g (Trockengewicht) gepulverte oxydierte Cellulose; die
durch Waschen mit 0,2 η Salzsäure und zweimaliges Waschen
■it 10 Seiger Essigsäure vorbehandelt und filtriert wurde» wurden
su der gekühlten Flüssigkeit gegeben, und die Mischung wurde
12 Stunden lang gerührt und dann 5 Stunden laug absitzen gelansen.
Man verwirft die Überstehende Flüssigkeit und wäa>ht dbi
Oxycellulose absatzweise zweimal mit AbsltaKBl ttm voi\ i und
1/2 Stunde mit insgesamt 130 1 iO Ά -lg»! ρ faHiilgniiuro. 1)1«
1 0 9 8 -T/ / 1 Π 6 3
zum Waschen verwendete Essigsäure wird verworfen* Dann
wird die Oxycellulose in 0,2 η Salzsäure aufgeschlämmtΊ in
eine Säule gefüllt und dann mit etwa 50 1 0,2 η Salzsäure
eluiert, Bas Eluieren wird beendet, wenn die optische
Dichte des Abflusses auf O„.2O oder weniger absinkt. Der
Abfluß wird mit soviel Amberlite IRA-400 /cetat-Anionenaus
tauscherharz versetzt, daß sich ein pH-Wert von etwa 390
einstellt. Der Abfluß wird von den warz abgetrennt und lyoptiiliaiert, wodurch man 76,4 g gereinigtes Material mit Thyro
oylcitoninaktivität erhält.
DaB in Pig, 2 dargestellte Fließschema zeigt die verschiedenen
Abänderungen des erfindungsgemäßen Verfahrens, die in den vor.
stehenden Beispielen beschrieben sind. Wenn man das Verfahren in der vollständigen Form durchfuhrt, wird eine Ge samt reinigung
der Größenordnung von 250 000 erzielt«, Dieser Reinigungsgrad
1st erheblich höher als der nach bekannten Verfahren erzielbare Reinigungegrad.
Rohes thyrooaolitoninaktives Material wurde bei diesem Verteilung8chromatographieversuch unter Verwendung des 2-phaeigen
Lösungamittelsysteme n- Butanol, Wasser und Essigsäure im Verhältnis 5:4:1 eingesetzt. PUr den Versuch wurde ein Streifen
Whatman-Kapler Nr, 1 raLt den Abmessungen 15 om χ 96 cm (6"x22")
1 OUUlI/ 1663 BAD ORIGINAL
1768A26
verwendet. Das rohe Oxycellulosematerial wurde auf das Papier an 2 Stellen im Abstand von etwa 10 cm (4") vom oberen Ende des
Papierstreifens aufgetragen. FUr jeden Fleck wurden 2 mg des Materials in 0,1 ml Wasser gelöst verwendet. Nachdem die aufgetragene Lösung getrocknet war, wurde der ^'jpierstreifen in den
Chromatographierbehälter gehängt und mit den Dämpfen der wässrigen Phase des Systems 2 bis 3 Stunden ins Gleichgewicht gebrachtλ Dann
wurde die organisohe Phase des Lösungsmittelsystems zur Entwick M
lung des Steifens während einer Zeit von 18 Stunden verwendet« Die
Lösungemittelfront bewegte sich auf dem Papier über eine Strecke
von 45 cm (17 3/4") von der Auftragstelle nach unten« Ein Teil des Papierstreifen8, der eine der Auftragsatellen enthielt, wurde
mit Ninhydrin entwickelt, um die Aminosäuren und Proteine sichtbar zu machen. Diese Entwicklung wurde durch Aufsprühen einer
mit
0,5 #-igen Lösung in n-Butanol, das/OfO5 m Phosphatpuffer gesättigt war, pH 7 „und Enwicklung der Farbe durch Erwärmen des
feuchten Streifens in einem Ofen fUr chromatographische Zwecke M während 20 Minuten bei 850C erreicht. Der andere Streifen, der
nicht mit Ninhydrin entwickelt wurde, wurde in Teile zerschnitten und mit 0,1 η Ameisensäure eluiert. Mit den Eluate.i wurde
der bllogisohe Rattentest durchgeführt. Die Ihyronylnit>njn
aktivität befand eich in einem Gebiet im Abstand von 23-.( l'^B
30,2 cm (9»1 bis 11,5") von der Auftragsatelle- Der Ii1- Wert
der Thyrooaloitoninaktivjtat beträgt alno eiwa 0,59* Aus diesem
unerwartet hohen Rf-Wart ergib* sich, daß die Thyroxin oitonln
aktivität in der orßoniij*?f.'?n Phn«« den LÖHungnmi.ttelsystems
1 0 9 8 3 7 / 11? 6 9
gut löslich ist. Proteine und die meisten Peptide sind im allgemeinen in diesem Lösungsmittelsystem nicht in diesem Ausmaß löslieh.
Reinigung der Thycooalcitoninaktlvität durch Gegenstromextraktion unter Verwendung einer ganz aus Glas bestehenden Extraktionsvorrichtung
7Ur diesen Versuch wurde eine automatisch angetriebene Gegenetromextraktionevorricheung mit 200 Röhrchen verwendet, die mit 2 ml
unterer Phase betrieben wurde und bei der bei jeder überführung
2 ml obere Phase Übertragen wurden« Als Beschickung wurden 100 mg Thyrocalcitoninmaterial, das nach der Arbeitsweise von Beispiel 8
hergestellt wurde, verwendet. Dieses Auegangematerial enthielt
aufgrund der Analyse etwa 35 Gew.-^ Protein und etwa 250 Lederle-Einheiten Tyrocalcitoninaktivität pro mg. Protein. Ee wurde das
gleiche 2-PhasenlöBungsmittelsyetem wie für die Papierverteilungs-Orhomatographie von Beispiel θ verwendet. Das System bestand aus
n-Butanol, Wasser und Essigsäure im Volumenverhältnis 5:4*1
Die im Gleichgewicht befindliche wässrige Phase wurde als untere Phase in der Vorrichtung verwendet, und die Entwicklung wurde nit /
der organischen Phase durchgeführt. Dieser Verteilungsverauoh \
wurde bei 250C durchgeführt. Die xroteinbtSchickung wurde in (
4 ml der unteren Phoee gelöst und in die Röhrchen 1 und 2 4er Vorrichtung eingefüllt. Nach 154 Überführungen wurden Proben
109137/1669
und jedes t Unfte Rohr wurde mit Hilfe der optischen Dichte
bei 280 Btu und der biologiechen Aktivität auf Protein geprüft.
Daβ Protein verteilte sich auf die Röhrchen 5 bis 60
und die blologiache Aktivität auf die Röhcen 30 bis 60. Diese Aktivit äs verteilung ist breiter ale die theoretische Kurve für
eine einzelne Subetanz und legt nahe, daß mehr ale eine aktive
Komponente von der Hauptmenge des Proteine abgetrennt wurde. Die Betriebsverteilungskoeffizienten liegen im Bereich von 0,3 bis
0,5. Haoh 154 Überführungen wurde etwa die 3~fache Reinigung ersielt.
Die aktiven Röhrchen, nämlich ITr. 31 - 49c wurden einzeln aus
dSem Gerät entnommen und der verbleibende Inhalt der Vorrichtung wurde verworfen· Die aktiven Röhrchen wurden dann wieder in der
gleichen Reihenfolge in die Stellungen 33 bis 48 eingesetzt, und
die Übrigen Röhrchen wurden mit beiden Phasen in der entsprechenden
Menge versorgt. Dann wurde die Vorrichtung auf *reielaufbetrieb
umgeeohaltet und es wurden 846 weitere Überführungen durchge
fUhrt.
Die Wiederholung des Proteinteeta und dee biologischen Ratten
teste ergab, daß die Spitenaktivitäfcen bei den Röhrchen 50
und 155 logen und mit nur sehr kleinen Ment^n l'iOtaLn der An
fangsbeschickung verbunden wuren»
109837/1669 BAOoriginwl
1768Λ26
Diese Stellungen entsprechen den Röhrchen 250 und 355 in einer
größeren Vorrichtung und stimmen mit denjenigen Überein, die
sich aus dem nach 154 Überführungen berechneten Verteilungekoeffizientenbereioh ergeben9
Beispiel 10 .
Daβ Produkt des vorhergehenden Beispiels wurde mit Carboxymethylcellulose (CMC) nach einer Modifikation der Methode
Dedman6 M. L*, et al», Bioohem. J9 78, 348 (1961) weiter gereinigt. Etwa 30 g Cellex-Cm, (Bio-Rad Laboratories, Richmond,
California) mit einer Austauechkapazität von 0.69 m-Äquivolenten
wurden unter gelindem Rühren in etwa 200 ml 1 #-igem Pyridin aue
pendlert. Man ließ die Suspension etwa 20 Minuten lang absitzen
und dekantiert danach die Überstehende Flüssigkeit ab. Suspendieren in 1 £-lgem Pyridin und Abdekandieren wurde wiederholt,
Dann wurde die CMC-Paste ih. 100 ml 0,067 m Fyridinaoetat rom
pH 4,4 suspendiert, etwa 1 Stunde lang stehen gelaasen und dann filtriert. Der CMC-Kuchen wurde noch zweimal unter den gleichen
Bedingungen suspendiert, gewaschen und filtriert.
Bine enge Glaskolonne (0,6 cm Durchmesser) wird bis au einer
Höhe von etwa 60 cm mit einer Aufschlämmung des gewaschenei
CMC in 0,067 m Pyridiaaoetat in Abschnitten von etwa 10 cm ge
fULlt. 2,6 mg durch Gegenakromverteilung gereinigtes Material
109837/1669 BAD original
werden In 0,2 ml 0,067 m Fyridinaoetat mm ph 4,4 gelöst und
oben auf die CMC-Säule aufgegeben. Die Raule wird zunächst
durch langameee Perkolleren (6 ml pro Stunde) von etwa einer
SäulenfUllung Fyridinaoetat entwickelt. Unter diesen Bedingungen werden beatlmte proteinartige Verunreinigungen eluiert, während
das TCT-I in oberen Abschnitt der Säule zurückbleibt. Das TCT-1
wird aus der Säule durch Gradientenelutlon mit 0,06t ι Pyridinaoetat tob pH 4?4 und einem Puffer aus 15 #-igem Fyridin und 3,5
jC-lgem Eieeeeig (Volumen/Volumen) vom pH 5»7 ale Eluiernittel
gewonnen. Baisu wurde dae HiaohgefäB mit 200 ml 0,067 m Pyridinacetat rom pH 4,4 and das Torrategefäfi mit 200 ml 15 £-lgem
Pyridin und 3,5 Jt Eieeeaig (Volumen/Vblumen) rom pH 5»7 gefUllt. Die Gradientenelution begann mit 10° £~igem 0,067 m Pyrldinacetat und erreichte allmählich die Konsentration der Misohung aue 15 ?6-lgea Pyridin und 3,5 £-igem Eieesaig. Bas Auftreten des eluierten TCT-1 im Abfluß wurde sowohl biologisch
durch den Rattentest, als auch oolorimetriech durch die Methode
der alkalischen Hydrolyse und anschließende Entwicklung mit Hinhydrin festgestellt, wie sie von Hirs, Moore und Stein in J.
Biöl. Chem.«. 219, 623 (1956) beschrieben wurde. Es wurde festgestellt, daß reineβ TCT-I etwa beim Mittelwert des Gradienten
bei etwa pH 4 eluiert wurde. Die aufgefangenen Eluattraktionen,
die das reine Material enthielten, wurden vereinigt und lyophilleiert. Die Reinigung des als Auegangematerial verwendeten TCT-I0
de« durch Gegenetroererteilung erhalten wurde, bestand in der
109837/1669
Hit aliquoten Proben dee Produkte dieses Beispiele und von Beispiel 6 wurde eine Säurehydrolyse durchgeführt und die AminoeäureEUBüinmenseteung bestimmt, wobei die Tryptphanbestimmung
wie üblich getrennt durchgeführt wurde. Ee wurde die gleiche
empirische Aminoeäureformel erhalten» jeodch wurde eine gewisse
Busätzliche Reinigung erzielt,» wie sich daraus ergabm daß die als
Verunreinigungen nachgewiesenen Aminoeäurenm nämlich Isoleucin und
Lysin wie oben angegeben wurde, in kleineren Mengen auftraten* wobei der Ieoleucingehalt von 0,6 auf 0,1 Mol-jC und der lysingehalt von 0,7 auf 0p4 Mol-jS vermindert wurde. Dagegen war die
Strukturformel die gleiche wie die für TCT-1 von Beispiel 6„
Die MolekÜlstrukturformel wurde durch folgende Methoden bestimmt:
Zunächst wurde das Protein auf die endständige H-Oruppe untersucht, die in Figur 1 auf der linken Seite angegeben 1st, wie dies
bei der Angabe von Strukturformeln von Proteinen üblich ist« Es
wurde eine Kupplung mit 5-Dimethy3aminonapthalin 1-sulfonylohlorid
nach einem bekannten in Blechern.. J. 89« 59 (1963) beschriebenen
Verfahren durchgeführt r das gewöhnlich aLsDonsylierung beeeiohnet wird. Das dauayllerte TCT-1 wurde vollständig mit Säure hydra«
Iyeiert und dl*j froißRnetaie dnrinyl.ierte Aminosäure mit end-
N (»riipjn ν π.■"'!#» dor ■■ h JHiimncl)1 chtchroroatographie nach d
«ο» Vc.i.'T·.· «-M,f ViMM?, JHi^iiGirHinphye,, Aota 133, ?6i-37O
Kl Mil 37/ 1M
<i
BAD ORIGINAL
(1967) Identifiziert, die nachstehend beschrieben ist. Die
dansylierte Aminosäure mit endständiger N-Gruppe die ao erhalten
wurde, war mit dem Produkt Identisch, daa durch Säurehydtolyae
von Biadanayloyatin erhalten wird· Baraus kann geschlossen
werden, daß die Aminosäure von TCT-I mit endständiger H~Gruppe
Cystin ist,und daß die a-Aminogruppe dieses Cysteinrests
nicht substituiert ist·
Das intakte TCT-I und ein andstandigeβ Fragment T5P das im
folgenden beschrieben wird, wurden mit Carboxyρeptidase A
oder Carboxyρfptidase B behandelt. Diese Enzyme, die Prolin
oder C-endatändige Aminosäuren denen eine freie Carboxylgruppe fehlt, aus Feptiden und Protein nicht abspalten, waren nicht
wirksam, woraus sich ergibt, daß die carboxylendständlge Aminosäure entweder aus Prolin oder einer Aminosäure besteht, der eine
freie Carboxylgruppe fehlt. Biese Enzyme haben eine gewisse ohymotryotisohe Aktivität und deshalb geht bei längerer Einwirkung die Aktivität vom TCT-1 verloren, was mit den Ergebnissen Übereinstimmt, die nachstehend flir die durch Einwirkung
von Chymotryosin erzeugten fragaente angegeben sind.
1 mg TCT-I wurde in 0f1 bla 0,2 »1 Wasser oder 0,001 η
wässrige** SulstEiäure gelöst. T>nnn wurde Ammnnlumbto
puffer mit pH 8 bis zu einmal Volumen van otv.a 1 ml
Gereinigtee Hindertrypein wurde in einer Menge von etwa
de« Proteins zugegeben und bei 370C 4 Stunden iricubiert. Nach
Einwirkung dea Trypsin· wurde die Lösung lyophiliaiert. Diea*
Einwirkung apaltet daa Protein in eine Reihe von Fragmenten auf,
die in Fig. 1 durch daa Prefix Tc z.B. ΤΘ beseiohnot sind.
Die Spaltung mit gereinigtem Chymotrypain wurde in ähnlicher Weise wie oben beschrieben durchgeführt, ea wurde jedoch Über
Nacht anstelle von 4 Stunden einwirken gelassen. Dadurch wurde das Protein in Fragmente gespalten, die in Fig. 1 mit dem
Prefex C versehen alnd.
Die durch Spaltung alt Trypsin und Chymotrypsin erhaltenen
Fragmente überlappen sich,, da bekanntlich Trypein und Chymotrypsin ein Protein an den Carboxyfcindungen verschiedener Aminosäuren spalten.
Fragment T8 wurde dann mit Chymotrypsin gespalten, wodurch wie
in Fig. 1 angegeben, die Fragmente T8„ C1 und TB9 C4 erhalten
wurdenο ΤΘ wurde zur Unterscheidung zwischen Aapariginsäure
und Asparigln ferner mit L/P behandelt. Es zeigte »ich, daß alle
3 Aminosäuren in diesem Fragment, die als Asparaginsäure nnge
gegeben wurden, In Wirklichkeit aus Asparagin bestanden. Die
folgende Tabelle se igt die Amino&äurtpreste für jede Fraktion;
Tabelle II
Aninoaäurereate
Aninoaäure | T5 | T8 | 1 | T6 | 1 | T8,C1 T8.C4- | 1 | 1 | 1 | T8 |
Asparagineaure | 3 | 1 | 3 | 1 | ||||||
Asparagin | * | 1 | ||||||||
Threonin | 1 | 1 | 1 | |||||||
8erin | 1 | 1 | ||||||||
Olutanineäure | 1 | |||||||||
Prolin | 2 | 1 | ||||||||
Glycin | 3 | |||||||||
Alanin | ||||||||||
Methionin. | 1 | |||||||||
Leucin | 1 | |||||||||
Tyrosin | ||||||||||
Phenylalanin | ||||||||||
Histidin | ||||||||||
Arginin | ||||||||||
Tryptophan |
109837/10*9
tn
Die Speltung/ait IAP, die oben erwähnt wurdeο,wurden bei
pH 8,3, einer Temperatur von 3??0 und einer Zeit von 16 Stunden
■it gereinigtem Eneya durchgeführt. Das Verhältnis τοπ Enzym
BU Substrat betrug etwa 1 : 10.
Ee eei darauf hingewiesen» daß von diesen Fragmenten die
folgenden Beste nicht erfaßt werden? Asp, Thr» SCr2P VaI,
Leugp CyB2^ Die folgende Tabelle zeigt die Aminosäureverteilung
der Ohymotrypsinfragmentes.
Tabelle III
Aminosäurereste
Aminosäure | Cl | C2 |
Asparaginsäure | ||
Threonin | 1 | |
Serin | 1 | |
Glutaminsäure | 1 | |
Prolin | 2 | |
Glycin | 2 | 1 |
Alanin | ||
Methionin | 1 | |
Leucin | ||
Tyrosin | ||
Phenylalanin. | 1 | |
Histidin | ||
Arginin | 1 | |
Tryptophan |
C3
C5
C11
C13
1 1
η fi :r/ /1 π r <i
Di· Aminosäuren von Peptid CH 3 wurden durch vollständige Spaltung
■it LAF bee tieeat. Bei 03 wurde keine Spaltung mit LAp durchgeführt und deshalb wurde nioht beetimat, ob eeeioh bei der
Asparaginsäure um Asparaginsäure oder Asparagin handelt». Ba
eei ferner darauf hingewiesen, daS diese Asparaginsäurereste
in Wirklichkeit die gleichen Reste wie in T8 sind und aus
Asparagin bestehen.
Die Abtrennung und Isolierung von Peptidfragmenten» mit denen
die Werte in den vorstehenden Tabellen erhalten wurden» wurde durch sweidimensionaleAuftrennung jeder Komponente duroh Papier-Chromatographie in einer Dimension und anschließende Elektrophorese in einer Richtung von 90° au der Richtung der Chromatographie erreioht.
Btwa 1 mg der eu trennenden Peptidmiechung wurde in Wasser oder
verdünnter Essigsäure gelöst und als Fleck an einer Stelle «it dm Koordinaten 9*0 om, 9#5 cm (x»y), aufgetragen. Als
Harkieruhg wurde eine Mischung aus Leucin und Lysin an einer
Stelle mit den Koordinaten 2,0 cm und 9»5 cm aufgetragen·
Ate aufgetragenen Flecken wurden getrocknet. Das Blatt wurde
über "acht entlang der Y-Achse (der Schmalseite des Blatts)
absteigend chromatographiert entwickelt. Zur Entwicklung des
Chromatogranune wurde ein 1-Phasensytem aus 90 Teilen n-Butanol,
60 feilen Pyridin, 18 Teilen Bisessig und 72 Teilen Wasser (VoIu-■en/Volumen). verwendet. Mach den Entwickeln wurde das Blatt au,s
Ι0ΠΒ37/
der Chromatographiekammer entnommen und 30 Minuten bei Zimmertemperatur und dann weitere 30 Minuten In einen Ofen bei 75°C
getrocknet.
f ■ .
um die Leucin- und Lyainnmarkierung su entfernen. Eine zweite
Markierung aus Leucin und Lysin wurde für den Elektrophoreseabschnitt
des Versuche an der Stelle mit den Koordinaten 9p5 cm ,
8p0 cm aufgetragen (diese Koordinaten entsprechen dem ursprunglichen
Blatt). Bas trockene Papierblatt, das die chromatographierte
Mischung und die neue Markierung enthielt, wurde dann mit dem Pyridinacetat-Puffersystem besptetiht, das von
Katz ot al., J. Biol. Chem» 234 2897, (1959) beschrieben
wurde. Dann wurde die Elketrophorese entlang der !-Koordinate und zur Kathode (negative Elektrode) in den gleichen
Pyridinecetatpuffer und in einer Vorrichtung durchgeführt, wie
sie von Kate et al. beschrieben wurde.
Sie Elektrophorese wurde etwa 0105 Minuten mit einem Spannungsabfall
von 2000 bis 2500 Volt durchgeführt. Der Anfangetrom
durch daβ Papier während des Versuchs betrug 40 bis 90 nA. Die
Temperatur betrug su Beginn O0C und stieg während des Verlaufs
der Elektrophorese auf etwa 40C^
Nachdem die Elektrophorese beendet war, wurde das Papierblatt herausgenommen und gründlich getrocknet und sur Entfernung
1090 3 7/1669
τοπ Anaoniakepuren Mil; Py rid in beffprUht· Die Lage der Peptid
flecken und der Leucin- und Lysinmarklerungstn wurde durch
vorher mit 0,05 η Phosphatpuffer von pH 7 gesättigt worden war,
sichtbar gemacht. Sann wurde das feuchte Blatt in einem
getrocknet.
Die Lage der betreffenden Peptide wurde durch ihre relativen
Abstände su dem ^uoitt in dem Chromatographiesyeten und dem
Lysin in der Elektröphoreserlchtung gekennzeichnet. Die
relative Lage der verschiedenen Peptld£ragmente 1st in d er
folgenden Tabelle angegeben:
Peptidfragment |
Elektrophorese
(LVS=IOO) |
Chromatographie
(LeU=IOO) . |
T5 | 44 | 113 |
T8 | 74 | 72 |
T6 | 54 | 91 - |
Cl | 32 | iOO |
02 | 52 | 61 |
C3 | 69 | 49 |
05 | 95 | 71 |
011 | 33 | 62 |
01,2 | 45 | 83 |
1 ti ii η:? ν /
Die eineelnen Peptide wurden aue dem Peptidblatt duich Aueschneiden der ninhydrinpositiven Flecken, Entfernen dee Überschüssigen Ninhydrinreagenses durch Waschen mit wasserfreiem
,ceton und schließlich dursrh Eluieren des Peptide aus dem
Papier mit einem geeigneten Lösungsmittel isoliert. Die eluierten Peptide wurden dann in der Üblichen Weise auf ihren Amino-Säuregehalt durch die beschriebenen Routineverfahren analysiert.
Die Aminosäuresequensen der verschiedenen Fragmente wurden
durch stufenweiBen /bbau und Dansylierung bestimmt. Dieses
Verfahren ermöglicht . die Ermittlung der Seque:e, wobei in
jeder Stufe eine Aminosäure, beginnend von der N-endstandigen
Aminosäure eines Ieptids bestimmt wird. Zunächst wird die
etundige a«/rainogruppe eines Peptide dansyliert. Noch der Dansylierung wird das Fragment einer Üblichen vollständigen Säurehydrolyse unterworfen. Die dansylierte Aminosäure wird als
DNS-A abgekürzt. Die Hydrolyseprodukt werden als Fleck auf
Dünnschichtchromatographleblätteraaus Polyamid aufgetragen
und für eine gegebene Zelt entwickelt. Dann wird das Blatt luftgetrocknet, um 90° gedreht und in einem anderen System
während einer gegebenen Zeit welter entwickelt. Schließlich wird das Blatt getrocknet und mit kurzwelligem UV-Licht geprüft»
Die gekuppelte Aminosäure (DNS-A) erscheint als stark fluoreszierender gelber Fleok, und Ihre Lagp wird dann alt Literaturangaben verglichen, die die Lage verschiedener Aminosäuren, die
109837/ 1069
~ 41 -
unter identischen Bedingungen behandelt und chromatographiert wurden angegeben. Auf diese,7eise kann die Aminosäure A positiv
identifiziert werden.
Nachdem die N-endatändige .Aminosäure j» Identifiziert ist,
besteht die nächste Stufe darin', eine andere aliquote Probe des untersuchten Fragments zu verwenden und daraus die (nunmehr
identifizierte) N-endstandige Aminosäure A abzuspalten* was
durch Behandlung der Probe mit Phenylieothiocyanat geschieht» Die . aminosäure A wird nach der Behandlung rait PTH-A bezeichnete
Dann wird dine Hydrolyse mit Trifluroessigaäure durchgeführt, die
die Bindusag zwischen PTH-A und der nächsten Aminosäure des Peptide selektiv spaltet. Dann wird die Trifluoressigsäurs verdampft,
der RUokatand wird mit Säure behandelt und PTII-A wird mit
Benzol extrahiert und verworfen. Diese wässrige Phase enthält das verkürzte Peptid. Das Verfahren wird wiederholt, bis sämtliche
Aminosäuren der Sequenz identifiziert sind.
DieAminoeäurepequenz in dem Fragment TO, 04 in Flg. 1 wurde
folgendermaßen bestimmt! Die Probe, die etwa 0?2 «Mol Peptid
enthielt und durch Chymotrypsinspaltung eines Fragments erhalten wurde, das aus einer Trypeinapaltung isoliert wurde,
(für das vorher nachgewiesen wurde , daß es aus 5 Aminosäureeinheiten, nämlich 3 Mol /opnragin und jeweils 1 Mol Leucin
108837/1669
und Phenylalanin besteht), wurde in 500 al zweimal glasdestillierten Wassere gelöst. Eine 20 JUl Probe der lösung wurde
in eine 3 ml-AmpulIe gefüllt und mit 20 Hikroliter 0,1 η
Hatriumbioarbonat versetzt» um die Reaktionelösung auf pH 8,2
abzupuffern. Sine Vorratslüa ung von DNS-Cl wurde mit /ceton auf
eine Konzentration von etwa 3 ng DNS-Cl pro ml lösung verdünnt,
20 Mikroliter DNS-Cl-Reagens wurden der gepufferten Proben«
lösung in der Ampulle zugesetzt, und die Mischung wurde etwa 2 Stunden bei Zimmertemperatur belassen. Dann wurde die LÖBung
unter einem Strom aus reinem Stickstoffgas zur Trockne eingedampft. Um die Peptidbindungen zu hydrolysieren, wurde der
Klicket and mit 8 Tropfen 6n Salzsäure versetzt, und durch die Lö -sung wurde 5 Minuten lang Stioketoffgas geleitet. Die Ampulle
wurde in der Flamme zugeechmolzen und bei 1050C über Nacht9 gewöhnlich 12 bis 16 Stunden, erwärmt, (falls Glycin als N-end
ständige Aminosäure vermutet wird, wird w< gen der bekannten relativen Unbeständigkeit von DNS-GIyoiη stattdessen eine kürzere
Hydrolysedauer von 6 Stunden angewandt).
Nach beendeter Hydrolyse wird die Ampulle geöffnet, und die
Salzsäure wird unter vermindertem Druck über NatrAumhydroxyd-Plätzchen entfernt. Dan Rückstand löst man in 1 Tropfen einer
Mischung aus Aceton, Essigsäure und Wasser ( 1 t 1 t 1,Volumen/
Volumen) und trägt die gesamte Lösung auf eine Polyamidblatt-DUnneohLohfcohromutograrhie auf (Produkt der Qailard~3ohlQslnger
Chemical Mfg. Corp*, Onrle Plane, Long Island1, New York).
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See Chromatogramn wurde in einem geschlossenen Tank durch
einen aufsteigenden Lösungsmittelstrom in 2 Richtungen entwickelt:
Zuerst in der einen Richtung unter Verwendung eines Systems aus Wasser, und 90 '/ί-iger Ameisensäure (200 : 3P Volumen/Volumen) und nach Luftrocknen in einem Winkel von 90°
BU der ersten Richtung unter Verwendung einer Mischung aus Benzol
und Essigsäure (90 : 10 Volumen/Volumen}. Dae Chromatogramm
wird erneut an der Luft getrocknet und mit kurzwelliger Strahlung geprüft. Ein gelber fluoreszierender Fleck zeigt die
Lage der gekuppelten N-endständigen .Aminosäure an. Als Nebenprodukt
der Reaktion entstandenes Dansylsulfonamid und Daηsy1-sulfonsäure
fluoreszieren weiß bi.w. blau und dienen als R^-Mar-Iderungen
auf dem Chromatogramm. Die Lage des gelben fluoreszierenden
Flecke wird notiert und aufgrund der Angaben von Woods und Wang, Biochem. Biophye. Acta, 133 369 - 370 (1967) als
Asparaginsäure identifiziert. Baraus wurde geschlossen, daß die H-endständige Aminosäure des Peptide T8„C4 entweder aus
Asparaginsäure oder aus Asparagin besteht* Da Asaparagin unter
den Heaktionsbedingungen in Asparaginsäure Übergeht, wurde durch
andere Kriterien bestimmt, ob die N-endständige .Aminosäure aus
Asparaginsäure oder sparegin bestand.
Die verbleibenden 480 al der Peptidlösung wurden in einen
10 ml Erlenneyerkolben gegeben und tilt 500 Ail 50 ^-igem
und mit 500^1 2,4i6-Trimethylpyrj.din(2l4f6--
109837/1669
BA ORIGINAL
versetzt und vermischt. Diese Lösung wurde mit 60 ill
Phenylisothiocyanatreagens versetzt* Der Kolben wurde mit Sticket off ga β gespult und verschlossen. Die Lösung wurde auf einer
Dubnoff-Schüttelvorrichtung 1 Stunde bei 40pC inkubiertο Nach
dieser Zeit wurde die Lösung in ein kleines Reagensglas umgefüllt
und viermal, mit jeweils 2 ml Benzol extrahiert. Das Benzol wurde nach jeder Extraktion abgezogen und verworfen. Restliches
Benzol in der wässrigen Schicht wurde in einem Rinco-Rotationsverdampfer entfernt. Die wässrige Schicht wurde Über Nacht
im Hochvakuum Über Fhosphorpentoxyd gefriergetrocknet. Am
nächsten Morgen wurde das Reagensglas mit Stickstoffgas gespUlt, mit 0,2 ml waeeerfreier Trifluoreselgsäure versetzt,
erneut gespUlt, verschlossen und in einem Wasserbad 20 Hinuten auf 400C erwärmt. Dann wurde üie Trifluoressigsaure in einem
Strom aus Stickstoffgas verdampft. Der Rückstand wurde in 1
Tropfen Benzol gelöst, und die Lösung wurde im Stickstoffstrom
eingedampft. Der RUckstend wurde mit 500/υ1 von zweimal in
einer Gießvorrichtung destilliertem Wasser versetzt und zweimal mit je 1 ml Benzol extrahiert. Die Benzolextrakte wurden verworfen, und Benzolepuren in der Probenlöoung wurden in dem
Rinco-Rotatlonsverdampfer verdampft.
Mit 20 All der Probe wurde die oben beschriebene Danayl-Kupplungsreftktlon durchgeführt, um dl« N-endstandige Aminosäure des
verkürzten Peptldfragmends, nämlich Leucin, nachzuweisen.
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Mit dem verbleibenden Teil der Probe wurde der eben beschriebene
stufenweise Abbau weitergeführt.
Beide Verfahren wurden abwechselnd fortgesetzt, bis alle Aminosäuren in dem Fragment identifiziert waren»
Die Ergebnisse dieses besonderen Verfahrens für eine Reihe der in Pig, 1 angegebenen Peptldfragmente sind in der folgenden
Tabelle dargestellt:
St- .
109837/1669 '
ORIGINAL INSPECTED
Reihenfolde de? | O | Aminoaäureaeauenz | TB9 04 | der | Tabelle | V | Fragment | T8 | ? | C2 | 016,A9Tl | i | |
Subtraktiver- Abbau |
m O» 1 |
Verfahren | Apa oder | einzelnen | Aap oder Aen | GIy | VaI | I | |||||
^a 2 | Identifi zierung der H-endatändi- gen Aminosäure |
Leu | Peptidfräumente | Leu | Pro? | Leu | |||||||
1 | Ape oder | Aan | T6 | Aap oder Aen | SIu f\A AM |
||||||||
S 3
4 |
2 | Ser | T5 | GIn | CD CO |
||||||||
5 | 3 | Aap oder Phe |
Aan | AIa | Phe | od-Asp od. Aan | Ihr Pro? |
CD | |||||
6 | Tyr | Ser | |||||||||||
U | 7 | 5 | Aen | GIy | |||||||||
ί | a 9 |
6 | |||||||||||
te- ί* |
10 | 7 | Met GIy |
oder | |||||||||
β | Phe | ||||||||||||
9
10 |
GIy | ||||||||||||
"f. | 11 | Pm | |||||||||||
r | GIu GIn Thr |
||||||||||||
Es eel darauf hingewiesen, daß die Zahlen der angegebenen Amino-■äurepoeitiontn eich auf jedes frage»nt und nicht auf das ganee
Molekül beeiehen. Eb ist ferner bu bemerken, daß bei dieser
besonderen Methode keine LAP-Spaltung durchgeführt wurde und
daß deshalb keine Unterscheidung zwischen Asparaginsäure und Asparagin erfolgt, obgleloh diese in einigen vorhergehenden
Tabellen gemacht wurde.
Mit Hilfe der Werte der Tabellen II, IXI und Y in Verbindung
alt der bekannten ensymatischen Spesifleität von Trypsin und
Chymotrypsin ist es möglich, fUr jedes Peptidfragment folgende
Partialetrukturen aneugebent
T5 H«Fhe,Ser«Gly.Het.aiy.Phe.Gly.Fro.01z.ThroFro.
t8 H.Aen.Leu.Aen.Aanr(Phe,Hie).Arg.OH
T6 H.Ser.Ala.Tyr.Try.Arg.OH
T8f04 H
01 H. (Ser<,OlypMet,Oly)cPhe.0H
02 H. aiy«, Pro. QIx. Thr. Pro r
03 H.(ArgcA8p,Leu(Ä8p).0R
05 H.(HlscArg).Phe,OH
011 H.Asp.Phe.OK
013 H.(Ser.Ala.Tyr)Try.OH od H.(8er.Ale.Try)Tyr.OH.
109837/1669
Die Reihenfolge der in Klammern angegebenen Aminosäuren
kann aus den Werten der Tabelle II, III und V nicht abgeleitet
werden. Um diese Unsicherheit zu beseitigen und zu der in Fig. 1 angegebenen Reihenfolge zu gelangen, ist es notwendig,,
das Problem nie ganzes zu betrachten und bestimmte weitere
Versuche durchzuführen«.
Jedes durch Trypsinspaltung erhaltene Peptid, das kein Arginin
enthält, sollte das C-endständige Peptid des GesamtmolekUls sein«
Ferner sollte die Zahl der durch Trypsinepaltung erhaltenen
Peptide um 1 mehr als die Zahl der Argininreste im Molekül, in
diesem Fall 3« betragen. Dieser Vorhersage entsprechend sind
3 Peptide, nämlich T5« ΤΘ und T6 angegeben. Von diesen werden
nicht sämtliche Aminosäuren des Moleküls oder das H endständige Cystein erfaßt. Daraus kann man ableiten, daß sich das fehlende
Peptid Im K- endständigen Teil des Moleküle befindet. Die fehlenden
Aminosäuren sind Ser2P Thr, LeU2C Cysgr Aep, Vai'«Dae fehlende
Peptid enthält keine basische Aminosäure und kann daher aus den oben vorgebrachten Gründen als R-endständiger Anteil in Frage
kommen. Man ist zu dem Schluß gezwungen, daß das fehlende Peptid durch Unterabbau infolge von Chymotrypsinspuren in dem
Trypsinenzyir enetanden ist. Eine Betrachtung der Ausbeuten" der
betreffenden Peptide legt nahen daß TG das C- endatündige Ende
den fehlenden Trypainnpaltprodukts (TX nach Fig. 1) 1st und aus
das einem solchen Chymotrypsin- Uuternbbau stammt. Itaß/fehbnde Peptid
bei dfin pypi «rnhiMi . ι (ißraplrt nohon Untersuchimgen nJohl erkannt
1 0 9 0 3 7 / 1 G Γ 9
werden konnte, let dadurch bedingt, daS das H-endständige Cystein
mit dam Ninhydrlnreagens eine verhältnismäßig schwache Farbe
bildet.
Das fehlende Trypsinpeptid wurde mit TX bezeichnet. Aufgrund der
Speziflaität τηη Trypsin ist es nunmehr möglich, die Reihenfolge
der TrypainpeptLde γ»η der Arainogruppe bis zur Carboxylgruppe mit
TXnT8ol!5 oder T(X»6).T6,T8.T5 anzugeben»
Wie erwähnt, zeigte der N-endstand ige Heat des gesamten Moleküls
nur eine geringe oder keine Parbblldung mit ßsagentten für frei?
Aminogruppen, zum Beispiel Ninhydrln» Dies weist darauf hin,
daß dna fehlende Peptid (T(X-6)) tatsächlich der Reut dau
gesamten Moleküls ist. Um dieses fehlende Peptid auf dem Papier mit Nlnhydrin nachzuweisen, wurden Amlnoäthylgruppen
(-CH2CH2HN1,) chemisch an die oulfhydrylgruppesi (SII) na
CyateLnen nach der Methode von Raftery und Cole, J. BloL.Chem
2C1p 3457, (1966) gebunden. Das erhaltene Peptid, das S-B-Amlnoäthyloystein (AJBCya) enthält, ist nunmehr infolge der e Inge führ f.» η
Aminogruppen deutlich ninhydrlnpoaitlv und wurde aus der Renk
tionemiachung durch Paplerelektrophoreae beL pH I1H luoiiert. Una
neue mit GI6,A bezeichnete Peptid ergab bei der Üäurnhyürol/ue
die in PaböLle 71 mit C16A btreeLchnete Amlnosäufaasusainmnrui ii;7.urig
und entiprioht T(X-6),
109837/1669
Die Anwesenheit dee AECy8 in Peptid 016A macht dieses
nunmehr fllr eine spezifische Trypsinspaltung empfindlich. Eine
solche Spaltung ftlhrt zu den Paptiden 016»A« Tl und C169A,'f2.
Die Amlnnsäureanalysen dieser Peptide sind In Tabelle VI ange
geben. Die Werte, die die Sequenz von 016,A«, Tl festlegen, sind in
Tabelle V oben angegeben.
Q Um die Klammern bei (Phe,His) vom Peptid T8 zu beseitigen, sind
folgende Überlegungen erforderlicht
(a) Das TCT 1 Molekül enthält nur einen Histidinrest,
(b) Dieser Histidinrest tritt in den Peptiden ΤΘ und 05 auf.
(o) Die C-endstandigen Aminosäuren dieser Peptide haben wegen
der Spezifizität der zu ihrer Herstellung Terwendeten
Enzyme die angegebene Stellung.
fe Diesen Tatsachen genügt nur die einzige Reihenfolge, die in
Pig. I fur die Aminosäuren in Stellungen 19? 2O9 21 und 22 angegeben Ist. Das Phenylalanin in Stellung 22 überlappt mit
P;ptld T5"
DLe Analyaenwerte und Pnrtlalstrukturwerte für die Peptid«
0Π; C5i Uli; iJ5i CL,2; 01 und 02 stimmen TOIlLg mit der
Sequenz UburaLn, dia Ln Pig. I fUr die Stellungen 10 bis 32
Eingegeben IaIn Durch Dl und 02 zusammen mit dem UberLnppenden
Phenylalanin von 05 wird die gesamte Zustnmeneetzung iron T5 erfuUt. C2 enthäLt Prolin, das nicht mit der Carboiypeptidatie A und
10 9 8 3 7/1669 BAD ORIGINAL
Τ.Γ*■'..'■ *'"J/vC*
Intakte Molekül übereinstimmt* Wenn CT der C-end stand ige
wäre, w*re TCT-1
Beet in TCT-1/durch die Carboxypeptidase angegriffen worden«
Deshalb befindet eich C1 linke ron 02«, Diese Tataachen stimmen
mit den Werten fUr Peptid T5 in Tabelle Y Uberein.
Von den Feptiden C3 und 011 werden die 3 in TB vorhandenen
Aaparaginaäurereete sowie das Leucin und das Phenylalanin erfaßt. Der Chymotrypsinahbau von TB liefert die beiden Peptide
T8„ C4 und T8, C1 und bestätigt ferner die abgeleiteten Überlappungen zwischen T8 und den Feptiden C3P 011 und C5.
T6 enthält den verbleibenden Argininreat und keine der Aminosäuren, die in dem Peptid T8 vorkommen; das Arginin von T6 ist daher
von dem Arginin von T8 verschieden und bildet das N- endständige
Arginin von C3.
FUr die Strukturuntersuchungen von Peptid C16 wurden das
reine Peptid, das in Form seines ü B AminoäthylCeriTate C16yA
isoliert wurde, und seine beiden Trypsinepaltprodukte O16,A?T1
und C16eA,T2 (siehe oben) eingesetzt. Die bei der Spaltung von
Feptiden mit Carboxypeptidaae A oder B freigesetzten Aminosäuren können Angaben über die Π endetändige Sequenz liefern.
nicht
wenn eine solche Zeit gewählt wird, in der die Spaltung/voll
■tändig ist. Peptid C16,A wurde 3 6 Stunden mit Carboxypeptidaee
B gespalten, und die f 'eißGectttan ^mJnnufinrereete wurden bo
109837/1 R 69
stimmt. Die Ergebnisse dieser Versuohe sind in Tabelle YI angegeben.
C16-Peptld
Aminosäuren | durch Säurehydrolyse erhaltene | C16,APT1 C16„A,T2 | 1 oder 2 | durch 16 stlindige |
Stoeamtsahl an Einheiten | 1 1 | 1 |
Spaltung mit COB
freigesetzte Reste C16PA |
|
Ci6fA | 1 | 2 | 2 | |
Leuοin | 2 | 1 | 1 | |
Yalin | 1 | 1 | ||
AE-Oystein | 2 | Spuren | ||
Threonin | 1 | Spuren | ||
Serin | 2 | |||
Asparaginsäure | 1 |
T1 Durch die Werte von Tabelle Y wird fur peptid Ci6PA/dle
T2 Carboxylgruppe (ines der AE-Cyateine von Peptid C16,A/gebunden«
Die Ergebnisse der Spaltung von Peptid C16rA alt Oarboxypeptidase
B etimmen mit dieser Ableitung überein Durch die Speelfizität
von Trypain wird Ae Cystein als 0 endständiger Rest von P ptld
T2
C16,A/festgelegt (Stellung 7 in Pig. 1). Bel weniger vollständiger Spaltung von Peptid 016,A nit (tarboxypeptldase B (0
ag En r j m/mg Peptid, Spaltung nur 16 Stunden be j 37' C) werdet]
nur ein AK-Cystein-liest, das gesamte YaIIn, mehr als tin Leuuln*
'109837/1R69
BAD
rest und etwas Threonin und Serin no;He a hu Haine v
rarwandten Peptiden fifeigaaatsfc, Dies) Peptide lacnea
aich leicht durch sswa id iraamii anale PnpierChromatographLa,
wie sie oben beschrieben wurde, abtrannsn, Die Warte der
iihroüiaiogrophiachüti unA ArainonUureiiniilyasn für tile Peptide
sind in Tabelle VII angegaben«
A9BI
A9 B2
A9 B2
A,B4
Peptide, aus der Spaltung von
mit
Peptide Elektrophorese (l)
76 73 67
42
Chromatographie11- Aminoeäureresba
(Leu=100)
10 54 39
42
AE-Oys, Ser, Asx
AE-UyS9 Ser, Aax, Leu
/SE Oya, 3er2? Aax, Leu
Ser, Thr
n-Butanol,
109837/1669
Die Werte von Tabelle VII fordern die verhältnismäßig spazifl·
eohe Aminosäurereihenfolge H. AE Cy8*(Ser?Asx)oLeu<.Ser.Thr.
für die Stellung 1 bia 6 in FIgn 1. Die Freisetzung den zweiten
Leuoinrests, die in Tabelle VI angegeben ist, »rglbb sich
aus einer Chymotryosinspaltung dar Peptldblndung 4 5» die ein»
frühzeitige Freisetzung des Leucine in Stellung 4 ermöglicht,
Dieser Unkerabbau fllhrt zu einem Peptid mit Serin als H- end
ständigem Best, das bei Abbau mit Carboxypeptidaae B das Peptid
A,B4 liefert.
Der stufenweise Abbau von Peptid A,Bi bestätigt AK-Cystein
als !»endständigen Rest und Serin in Stellung 2. Nach der zweiten Spaltstufe zur Entfernung des PTH-Rests von Serin
wird die Lösung einer Danaylerung unterworfen« und das Dansylderivat von Asparagin wird durch BUnneohichtechromatographie
identifiziert. Die Anwesenheit von freiem Asparagin wird durch 2 dimensionalβ ^apierohromatographie bestätigt. Die positiv«
Identifizierung von Serin in Stellung 2 von Peptid A»B1 und die Anwesenheit von Asparagin vervollständig die Struktur
bestimmung dieses Peptide.
Ue festzustellen, ob in Stellung 50 Glutaminsäure oder
Glutamin vorliegt, wurde TCT-1 am C-andetand Igen Ende von
Methionin duroh Bromoyan ge spalten» (B» Gross and B. Wltkop,,
J. Biol*Chem. 237, 1856 (1962). Ein mit ONBr-1 bezeichnetes
109837/1669 badoriginal
Peptid wurde durch CMC-Chromatographie nafih der bereite beschriebenen Arbeisweise isoliert. Hit diesem ^eptidCNBr 1
wurde eine LAP Spaltung durchgeführt. Die Analyse der erhaltenen Spaltungamiechung zeigte, daß Glutaminsäure alB freie
Säure und licht als freies Amid freigesetzt wurde.
Es wurde festgestellt, daß das C-endständige Prolin
(Stellung 32) in der Amidform vorliegt, indem Peptid
CHBr-I einem schrittweisen subtraktiven Abbau unterworfen wurde, bis die C endaätndige Aminosäure (oder das Aminosäureamid)
freigesetzt wurde. Eine Probe der schließlich erhaltenen Mischung wurde wie oben beschrieben daneyüert und das erhaltene
Produkt chromatographiert. Bei der Chromatographie wurde ein fleck erhalten, der sich als identisch mit einer authentischen
probe von daneyllertem Prolinamid erwies. Hit einer weiteren
Prob« der schließlich erhaltenen Mischung wurde eine Papierelektrophorese bei pH 1,8 und eine Chromatographie in n-Butanol-Wasser-EßBigsäure (5:4:1) durchgeführt. Nach Entwicklung
ait Hinhydrin wurde ein Fleck erhaltenf der Prolinamid entsprach. Es wurde kein freies Prolin nachgewiesen. Daraus wurde
geschlossen, daß TCT-I in Stellung 32 Prolinamid und nicht
Prolin enthält.
TCT-1 reagiert bei pH 4,6 nicht mit dem spezifischen
Mercaptoreogena ρ -Mercuribenannt (PMB) nach der Boyer Methode
109837/1669
die ausführlich τοπ Beneeoh und Beneeohf Methode of Biochemical
Analysis, Bdn 10t Π» 58 beschrieben wurde. Mach Reduktion zur
Meroaptoform mit 2-Nercaptoäthanol reagiert dieser Schwefel
leicht mit Äthylenimin. Aue diesen Ergebnissen muß geschlossen
werden« daß die Sobwefelvolenzen der Cysteine von TOT-1
in Form von Sieulf ldbrtiokeh vorliegen.
Es sei darauf hingewiesen, daß das erfindungsgemäße Produkt.,
wie 6ß durch die oben beschriebenen Verfahren (Beispiele 1 -10) isoliert und gereinigt wird, der Strukturformel von Flg.
entspricht. Es 1st ferner zu beachten, daß das Hörmnη in modifizierten Formen vorliegen kannp von denen eine oder mehrere
oder sämtliche ebenfalls Thyrocalcitoninaktivittit aufweisen können. Zu solchen modifizierten Formen können beispielsweise
Formen des grundlegenden Polypeptide mit 32 Aminoeäureeinheiten gehOren, die aber verschledne Subetituenten an den funktio
nellen Gruppenf dob. der N-endetändigen und C-endständigen
Gruppe und den funktionellen Gruppen der inneren basischen
Buuren Amlnosüurereste aufweisen. So kann beiepielsweiso die
R-endständlge Clyntelnamlnogruppe acyliert Bein, oder die
Cysteine kUnnen In einem anderen Oxyäatione&uetand vorliegen
oder der GlutamlnsilurereBt knnn stattdessen dl· Glutamlnform
haben und dergleichen« Solche modifleierten Formen können In
chlrri·. d«n>
Hormon «ntsprecheu( wie es In iiüugetlergevorJicgt oder wie eo im Körper bei Verwendung ale Medi
kament wap ν wände3 t worden kann, Soüohe modifleierten Formen
o5»ih fernvr t\le 1*0]ge andern) lon]ίorunßfl- odor Heini
BAO ORIGINAL 109837/16C9
glngsferfahren ergeben. Alls diase Porman den sugrundsi legen
den Hormtuia können in aLlgemlnar Form wls foJ.gb
wardens
■ f' ί
. Gya„8er„ Asje* Ium,Ser„Thr n öya , VuI -. Tm)U«Sa ρ, ΑΙ α,
9 iO i
12 i5 »4 15 16 17 18 19 20 21 22
Ser.QIy.Met.GIy.Phe.GIy,Pro^iküu Ihr.Pro,
23 24 25 26 27 28 29 30 31 32
rerw endet werden, werden sie natUrLLch Ln Porm der UbI.Lohen
•etsungen» die ProfceinaohutKkollolda enfehnLten können, einge-
die sefcat. Die Zubereitungen »nthnlten ferner
109837/1669
Claims (1)
- P .A1-JlJLiI-JLIl-HLgL„EL-g U -SlA-JIThyroouLoLtonlriaktlve Profcolnverblrulungen, gekennzalrshne δ durch die iiminnoäureBtiuikturforniel«Aax.Leu.Ser.Thr~Cyβ, YnULeu.,Ser»aLanI 2 3 4 5 6 7 β 9101112 15 U 15 16 17 J8 19 20 21 22üar.GIy.Met, aiyoPhe*GIy, Pro ,UlTtη rhr, Pro» 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32und ein« Aktivität iron etwa 60 000 Ratteneinheiten/mg bei Prüfung mit optimalen Mengen inerten Trägerproteins, und deren physiologisch annehmbare Salze.2 Verbindung nach Anspruch I, gekennzeichnet durch die Amino· säureformelBAD ORIGINAL 109837/1669 -S-S1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16Αβη.ΑβΠοPhe.Hie,Arg.Phe.Ser»Sly.MetoGlyοPheoGly.PrOoG:U18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32Verfahren ssur Gewinnung einer ^roteinverbindung nach Anepruoh 2,-dadurch gekennzeichnet, daß mana« ein Material mit Thyrocolcitoninaktivität mit einem eine einzige Phase bildenden Lösungsmittel aus einer organischen Flüssigkeit der Gruppe der niederen Alkenole, niederen Alkyl -ester yon niederen Alkansäuren und niederen acyclischen gesättigten Ketone« Wasser und einer niederen Alkonsäure behandelt^br, ungelöstes Material verwirft und aus dem Piitrat konaentriertes thyrucalcltonlnaktlTes Material gewinnt*Verfahren nach Anspruch 3« dadurch gekennzeichnet, daß nan die Lösung durch Zusatz von Kohlenv/asserstoffen und Wasser Jn ein 2-Phaeensytem umwandelt, die Phasen trennt und reinigt und ans der wässrigen Phase thyrocalcitoninoktives Moterin]109837/1069BAD ORIGINAL5* Verfahren nach Anspruch 3 oder 4, dadurch gekennzeichnet, daß man bei der Gewinnung dee thyrocalcitonlnaktiven Materialü eine Säulenchromatographiestufe anwendet ο6» Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß man bei der Gewinnung von thyrocalcitonaktirem Material eine Molekularsiebungeatufe anwendet.7* Vex fahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß Ban bei der Gewinnung von thyrocalcltoninaktlvem Material eine Gegenstromvertellung zwischen organischen und wässrigen Flüssigkeiten durchfuhrt.8, Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß man als thyrocalcitoninaktives Ausgangsmaterial ein partiell gereinigtes Produkt verwendet, bei dessen Herstellung eine ßäulenchromatographiestuie angewandt wurde ο.9· Verfahren nach Anspruch 3f dadurch gekennzeichnet, daß nan thyrocalcitoninaktires Auegangsmaterial verwendet, bei dessen Herstellung eine Molekularslebungsstufe angewandt wurde«109837/1669Leerseite
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