DE1617923A1 - Verfahren zur Herstellung des neuen Antibiotikums Cremeomycin - Google Patents
Verfahren zur Herstellung des neuen Antibiotikums CremeomycinInfo
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Description
Dr. Walter Bei!
Alfred Eosppener
Dl Hs es Jeau im Wolff 16170-23
■Dr. KaDS Chr. BaÜ 15. Sep. 1967
•KecLlsai.wäite
Frankfurt a. M.-Höchst +
Adeionstraße 5S - TeL 31 26 49
Unsere Nr. 14' 087
The Up.john Company,. Kalamazoo. (Michigan, USA)
Verfahren'zur Herstellung des neuen Antibiotikums
Cremeomycin.
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung des neuen Antibiotikums Cremeomycin (U-23 643).
Erfindungsgemäss wird Cremeomycin hergestellt,
indem Cremeomycin produzierende Actinomyeeten in einem wässrigen Ufährmedium unter aeroben Bedingungen gezüchtet
werden und indem die so gewonnene Verbindung aus dem Züchtungsmedium isoliert wird. Cremeomycin ist eine
saure Verbindung, die das Wachstum grampositiver und gramnegativer Bakterien hemmt. Solche Bakterien siad zum Beispiel
Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis9 Bacillus
cereus, Sarcina lutea, Salmonella gallinarum, Proteus
vulgaris, Eseherichia coli, Salmonella sohottmuelleri und
Peeudomonas fluoreseens. Cremeomycin hat ausserdem fungizide
Wirkung gegenüber zahlreichen Pilzen, ZoB. Blastomyces derma-
*67
18 / 2 1 ? 9
titidis, Cryptococcus neoformans, Sricophyton rubrum,
Iricophyton violaceum, Tricophyton asteroides, Iricophyton
mentogrophytes, Nocardia asteroides, Ooceidioides immitis,.
Hormodendrum compactum, Microsporum canis, Tricophyton
interdigitale, Candida albicans, Sporotriehum schenckii,
und Geotriehum sp. Demzufolge kann Cremeomycin allein oder
in Kombination mit anderen Äntibiotica zur Verhinderung
des Wachstums oder zur Verringerung der Zahl von Bakterien
und Pilzen, wie oben beschrieben wurde, in verschiedenen Umgebungen verwendet werden. Beispielsweise kann es als
Infektionsmittel für verschiedene zahnmeäizinische und
medizinische Gegenstände, die mit Staphylococcus aureus verunreinigt sind, verwendet werden. Es ist ausserdem als
fungizides Mittel für industrielle Konservierungsmittel nützlich, beispielsweise ala fungizides SpüVlmittel für
gereinigte Kleider und zur Imprägnierung von Papieren und Geweben; ausserdem ist es zur Unterdrückung des Pilzwachstums
empfindlicher Organismen auf Plattenkulturen und anderen
biologischen Medien nützlich. Cremeomycin kann ausserdem als Putterzusatz zur Beschleunigung des Wachstums von
Tieren z.B. Säugetieren, Vögeln, Pischen und Reptilien, · verwendet werden. Cremeomycin ist äusserst lichtempfindlich.
Daher kann Cremeomycin in verschiedenen Umgebungen zur Hemmung des Wachstums empfindlicher Microorganismen verwendet
werden und anschliessend kann @8 zerstört werden,
- 2 109816/21 ?9
indem es einfach einer für die Zerstörung ausreichenden
Intensität an Licht ausgesetzt wird.
Kristallines Cremeomycin hat die folgenden chemischen und physikalischen Eigenschaften!
Farbe i Gelb
Elementar.analyse: 0,49,66; H, 3,42; O, 32,77}
Summenforme1:
Molekulargewicht s
Löslichkeit!
Schmelzpunkts
Methanol
0,01 η HCl in Methanols
- 3 -109816/71
193 (!Titration);
194 (Massenspektrometer) Löslich in Wasser, Methanol, Aceton, Butanol, Aethylacetat,
Methyläthylketon, Methylenchlorid; nicht löslich in Cyelohexan,
Petroläther oder Hexan. 142-143°C
Max. bei 209 m/u ( a = 131,36),
Max. bei 264 m/U ( a = 43,11),
Max. bei 286 m/u ( a = 34,43) und
Max. bei 412 uyu ( a = 36,23);
Max. bei 212 m>u ( a = 111,30),
Max. bei 262,5 nyu ( a = 48,55),
Max. bei 285 myu ( a =29,29) und Max. bei 412 nyu ( a « 29,42);
1817S23
0,01 η KOH in Wasser: Max. bei 20t myu (a = 36,71),
Max. bei 234 myu (a = 47,05),
Max. bei 255 m/a ( a= 34,18),
Max. bei 279 ayu (a = 29,96), Max. bei 320 m/a (a = 9.28),
Max. bei 415 nyu (a = 21.15).
Das Infrarotspefctrum von Cremeomycin in
Mineralöl ist in Figur 1 der Zeichnungen angegeben.
Cremeomycin zeigt Banden bei den folgenden Wellenlängen (Angaben in re&Lprolcen Zentimetern^
3100 (W) | 1587 (S) | 1188 (M) |
3050 (W) | 1535 (S) | 1167 (S) |
3025 (W) | 1490 (S) | 1145 (W) |
2950 (S) (OeI) | 1483 (S) | 1120 (W) |
2920 (S) (OeI) | 1465 (S) | 1100 (S) |
2850 (S) <0el) | 1448 (S) | 976 (W) |
2630 (W) | 1428 (S) | 965 (M) |
2420 (W) | 1420 (S) | 936 (M) |
2320 (W) | 1378 (W) (OeI) | 911 (W) |
2260 (W) | 1363 (W) | 820 (W) |
2185 (S) | 1335 (S) . | 784 (S) |
1820 (W) | 1308 (M) | 740 (W) |
1811 (W) | 1265 (M) | 721 (W) |
1718 (S) | 1260 (S) | 711 (W) |
1662 (M) | 1214 (S) «· 4 ·*· |
677 (W). |
In KBr zeigt Cremeomycin Banden "bei folgenden Wellenlängen (Angaben in reziproken Zentimetern):
3100 (W) 1535 (S)
3050 (W.) 1308 (M)
3025 (W) 1265 (M)
2950 (W) .1260 (S) .
2850 (W) 1214. (S)
2630 (W) 1188 (M)
2420 (W) · 1167 (S)
2320 (W) 1145 (W)
2260 (W) 1120 (W)
2185 (S) 1100 (S)
1820 (W) 976 (W)
1811 (W) 965 (M)
1718 (S) 936 (M)
1662 (M) 911 (ß)
1587 (S) 820 (W)
1535 (S) 7Q4.
H90. (S) 740
1483 (S) ·72ΐ (ψ)
1465 (S) 7U
1448 (S) " ' 677
1428 (S)
1420 (S)
1363 (W)
■ ■ - ■ r-5 -
10 9 8 1 6 / 21? 95
Die Bandenintensitäten sind als "S", "M",
bzw. "W" bezeichnet und werden im Verhältnis zur ITntergrundadsorption
in der Nähe der Banden angegeben. Eine "S"-Bande zeigt eine Intensität von der gleichen Grössenordnung wie
die kräftigste Bande im Spektrum; ttMw-Banden zeigen eine
Intensität zwischen einem und zwei Dritteln der kräftigsten Bande und 11W"-Banden zeigen eine Intensität von weniger als
einem Drittel der kräftigsten Bande. Diese Schätzungen wurden auf der Basis einer prozentualen Durchlässigkeitsskala gemacht.
Cremeomycin zeigt ein charakteristisches Papierchromatogramm, das in Figur 2 der Zeichnungen dargestellt
ist, wobei die folgenden Lösungsmittelsysteme verwendet wurden«
I. 1-Butanol, Wasser (84:16), 16 Ju
II. 1-Butanol, Wasser (84:16), plus 0,25 $>
p-Toluolsulfonsäure, 16 h.
III. 1-Butanol, Essigsäure, Wasser (2il:l), 16 h.
17. 2 ^ Piperidin (v/v) in 1-Butanol, Wasser
(84:16), 16 Ju
T. 1-Butanol, Wasser (4:96), 5 h.
VI. 1-Butanol, Wasser (4:96), plus 0,25 # P-
loluolsulfonsäure, 5 h.
109816/21*9
Der vorzugsweise verwendete Actinomyeet-«
stamm ist Aetinomyees cremeus, zu dessen Merkmalen die
Broduktion Cremeomycin gehört* line AblegerkuBär des
lebenden Organismus kann von der Sammlung der Northern
utilization and Research Division, Agricultural lesearch
Service, IT.S. Department of Agriculture, Beoria, Illinois,
U.S.A., "bezogen werden* Die Hinterlegungsnummer ist ITRRIi 3241· Die charakteristischen Merkmale von Actinomyces
cremeus, KBBL 3241, werden in den folgenden Tabellen angegeben:
- Aussehen auf Sktachrom
- Mikroskopische Eigenschaften
- Züchtungseigenschaften
- Wachstum auf Kohlenstoffverbindungen in
künstlichem Medium (*T. Bact, 36* 107 114,
1948).
Parbeigensehaften *· entsprechend dem
Color Harmony Manual, 5rd Idition, 1948
und der ISCC-HBS-Methöd of Designating
Colors and a Dictionary of Color Names, NBS Circular 555.
Tabelle I
Tabelle II
Tabelle III
Tabelle IV
Tabelle II
Tabelle III
Tabelle IV
fabelte. ...I Aussehen v.ott Actinotayceg, eremeus auf Jjktachrofli *
Agar-flaTirbOden | Ofeerfläehe | Rückseite - |
Bennett's | crefflerosa | gerb-brätm |
Czapek♦s Saccharos e | weisslich | farblos |
Malt ose-üfrypt on | - selir schwach weisslich |
gelb-braun |
feptcm-Eisen | k"ein Wachstum an der Luft |
gelb-braun |
0,1$ fyrosin | rötlich weiss | rot-braun |
Casein-Stärke | weiöslich | blas s gelbbraun |
*Diet2, A., "Ektachrome Transparencies as Aids in Actinomjrcete
Classification,11 Annals of the Few York Acadeaiy of Sciences,
6Oi 152-154, 1954.
Tabelle Il Mikroskotjisehe JSjgenschaften von Actinomvees ereaieus«
Mikroskop
Elektronenmifcros kop
Sporophoren gerade bis offenspiralförmig bis spiralförmig·
Durchstrahlutigsverfahrens Sporen
länglich f glatt»
Rückstrahlungsverfahreni Sporen gefurcht.
Rückstrahlungsverfahreni Sporen gefurcht.
109816/2199
Nährboden (Wachstum an der (Vegetatives Andere
luft,) Oberfläche Wachstum>Rückseite
Pepton-Eisenagar
Caleiummalatagar
GlukQS e-Aspara
gin-Agar
Magermilch-A. gar
Tyrosin-Agar
Xanthin-Agar
Hefeextrakt-Malzextrakt-A gar
Casein-Stärke· Agar
Bennett's Agar
schwach grauweiss
schwäch grauweiss
cremeweiss
sehr schwach weissIich
creme
ziemlich creme
eträchtlich creme
iemlieh weiss
Einfache Gelati
eträchtlich crbme schwach cremeweiss
Czapek's Saccha rose-Agar
Maltose-Irypton- beträchtlich creme
Ä-gar
gelbbraun farblos
orangegelb gelbbraun
rotbraun gelb
orangegelb gelb
gelbbraun crime
:elbbraun
ae
Melanin ·
Kein Bigment Malat nicht
gölöst.
Braunes Pigment.
Gelbbraunes Pigment. Casein etwas gelöst.
rotbraun Tyrosin gelöst.
blassgelbes Pigment. Xanthin gelöst.
gelbbraunes !Pigment ♦
kein Pigment Stärke hydrous iert.
Kein Pigment. Kein Pigment
Kein Pigment,
Kein Pigment
Ί vfrr
issigt.
109816/2179
40 | Oberflächen | - | zu | Creme Luft-Wachs | Blaugrttner | zu | |
Tabelle III . | ring. Spuren— | Kein Pigment. 1/2 | Kein Pigment. Nitrat/ | tum auf Oberflächen | Oberflächen | Kein Pigment. Nitrat/ | |
(Fortsetzung) | verflüssigt. | Nitrit reduziert. | ring. | ring. | Nitrit reduziert. | ||
Nähr-Gelatine | |||||||
wachstum über | Tabelle 17 | Aeusseisfc geringes | |||||
all. | Anzeichen von Pepti- | ||||||
Synthetische Nitrat- Schwacher | sation. Keine Koagu | ||||||
Brühe | lation pH 7,0. | ||||||
Wachstum von Actinomyces cremeus auf Kohlenstoffverbindungen in | |||||||
synthetischen Nährlösungen. | |||||||
Nähr-Nitrat- | |||||||
Brühe | |||||||
Lackmus- | |||||||
milch | |||||||
Kontrolle
l.D-Xylose . (+)
2.L-Arabino8 e ; +
3.Rhamnose (-)
5.£-(Jalaktose . ■ +
6.D-Grlukose +
7.D-Mannose . -: +
S.Maltoae · . (+)
1817923
C-)
Gutes f aeiiöttia
Mittelmässiges Waöhstutn
Mittelmässiges Waöhstutn
Tabelle Y ■
Farbeigenschaften von Actinbmyoes cremeus
Farbeigenschaften von Actinbmyoes cremeus
Color Harmony Manual National Bureau of
3rd Ed., 1948 Standards Circular
553,1955 _
Bennett's Agar Oberfläche Rückseite Pigment
Czapek1s Saccharose-Agar
Oberfläche
Rückseite Pigment
Oberfläche
Rückseite Pigment 3ba(g)Perl-rMuschel-Tönung.
2ic(g) honiggold, hellgolden.
kein
2db(g) elfenbein
2db(g) elfenbein
Kein
2ca(m) hell elfenbein eierschalenfarbig
3pe(m) bernsteinfarbig Topas.
87 gm massig gelb,
89 gm blassgelb,
90 g graugelb.
89 gm blassgeIb,
90 g graugelb.
89 gm blassgelb.
72 m dunkelor-angegelb.
74 gm stark gelbbraun
- 12 -
1098 1 R/
Die neue erfindungsgemässe Verbindung wird produziert, wenn der sich entwickelnde Organismus
in einem wässrigen Nahrmedium unter submersen aeroben Bedingungen gezüchtet wird. Es versteht sich ausserdem,
dass für die Herstellung begrenzter Mengen Oberflächenkulturen in Flaschen angewendet werden können. Der
Organismus wird in einem Nährmedium gezüchtet, das eine Kohlenstoffquelle, z.B. ein assimilierbares Kohlenhydrat,
und eine Stickstoffquelle z.B. eine assimilierbare Stickstoffverbindung oder proteinartiges Material, enthält. -■·■'■
Bevorzugte Kohlenstoffquellen sind unter anderem Glukose,
Sandzucker, Saccharose, G-lyzerin, Stärke, Maisstärke, Lactose,
Dextrin, Melasse und ähnliche. Bevorzugte Stickstoffquellen
sind unter anderem Maisweichwasser, Hefe, autolysierte Brauhefe mit Milchfeststoffen, Soyabohnenmehl, Baumwollsamenmehl,
Maismehl, Milchfeststoffe, Pankreashydrolisat aus Casein, Schlempe, tierische Eiweissflüssigkeiten, Fleisch und
Knochenabfälle und ähnliche. Torteilhafterweise können Kombinationen dieser Kohlenstoff- und Stickstoffquellen
verwendet werden. Spurenmetalle, z.B. Zink, Magnesium, Mangan, Kobalt, Eisen und ähnliche, brauchen den Fermentationsmedien
zu
nicht zugesetzt/werden, da Leitungswasser und ungereinigte ·
nicht zugesetzt/werden, da Leitungswasser und ungereinigte ·
Ingredienzien ,als Komponenten der Medien verwendet werden.
Die Produktion der erfindungsgemässen Verbindung
kann bei jeder beliebigen Temperatur, die ein zu-
- 15 109816/21?9
friedenstellendes Wachstum des Mikroorganismus bewirkt, vorzugsweise zwischen zirka 18° und 400C, insbesondere
■ zwischen zirka 20° und 320C, durchgeführt werden. Für gewöhnlich
wird optimale Produktion der Verbindung in zirka 2 bis 10 Tagen erhalten. Normalerweise bleibt das Medium
während der Fermentation annähernd neutral oder schwach alkalisch. Der End-pH-Wert hängt teilweise von den
eventuell vorhandenen .Puffersubstanzen und teilweise von dem Anfangs-pH-Wert des Kulturmediums ab; letzteres wird
vor der Sterilisation vorteilhafterweise auf ungefähr 7,2 eingestellt.
Wenn die Züchtung in grossen Gefässen und
Tanks durchgeführt wird, ist es von Vorteil die vegetative Form des Mikroorganismus anstelle der Sporenform zur Beimpfung
zu verwenden, um eine erhebliche Verzögerung bei der Produktion der neuen Verbindung und die daraus folgende
ungenügende Ausnutzung der Apparatur zu verhüten. Demzufolge ist es wünschenswert ein vegetatives Inoculum in einer
Nährbrühenkultur herzustellen, indem die Brühenkultur mit einer aliquoten Menge einer Boden- oder Schrägkultur geimpft
wird. Wenn auf diese Weise ein junges, aktives, vegetatives Inoculum erhalten worden ist, wird es aseptisch
in grosse Gefässe oder Tanks überführt. Das Medium, in dem das vegetative Inoculum hergestellt wird, kann das gleiche
sein, das für die Herstellung der neuen Verbindung verwendet
- 14 -
109816/71
wird, oder es kann verschieden davon sein, so lange es nur so beschaffen ist, dass ein gutes Wachstum des Mikroorganismus
erhielt wird.
Die neue erfindungsgemäss erhältliche Verbindung
ist eine saure chemische "Verbindung, die die
Summenformel CgHgN2O4 hat. Sie ist in Wasser, Aethylacetat,
Amylacetat, Butylacetat und ähnlichen aliphatischen Estern, Aceton, Methylethylketon, Isopropylbutylketon und ähnlichen
niedrigen Alkanonen, Methanol, Butanol und ähnlichen niederen Alkanplen löslich. Sie ist in Cyclohexan, Petroläther und
Hexan verhältnismässig .unlöslich. Zur Isolierung und Reinigung
von Cremeomycin steht eine Vielzahl von Verfahren zur Verfügung, beispielsweise Solventextraktion, Silicagelchromatographie,
Flüssig-flüssig-Verteilung in einer Craigapparatur,
sowie Kristallisation -aus,lösungsmitteln. Solventextraktions
verfahren werden für gewerbliche Isolierung bevorzugt, da sie weniger Zeit brauchen und billiger sind.
Silicagelchromatographie ist ein bevorzugtes Reinigungsverfahren.
. Nach einem bevorzugten Gewinnungsprozess wird Cremeomycin durch Abtrennung des Myzels und ungelöster
Feststoffe mit herkömmlichen Mitteln, wie z.B. Filtration oder Zentrifugieren, aus dem Züchtungsmedium
gewonnen. Das Antibiotikum wird dann aus der filtrierten oder zentrifugieren Brühe durch Extraktion gewonnen. Für
109816/?1?9
die Extraktion des Cremeomycins aus der filtrierten Brühe
können die oben beschriebenen Lösungsmittel, in denen es löslich ist, verwendet werden. Methylenchlorid ist das
bevorzugte Extraktionslösungsmittel. Der durch Extraktion mit Methylenchlorid erhaltene Extrakt kann in Vakuum eingedampft
und gefriergetrocknet werden, wobei ein Rohpräparat des Antibiotikums erhalten wird. Dieses Präparat kann in
Umgebungen, in denen grössere Reinheit des Antibiotikums nicht erforderlich ist, verwendet werden.
Cremeomycin kann auch aus der filtrierten Fermentationsbrühe bei pH-Werten von ungefähr 4,0 oder
weniger extrahiert werden. Bei pH-Werten von zirka 6,0 oder höher wird Cremeomycin nicht merkbar in die obigen
Lösungsmittel, in denen es löslich ist, extrahiert. Unter Ausnutzung dieser Eigenschaft kann Cremeomycin bei einem
pH-Wert von weniger als 4,0 in eines der obigen Lösungsmittel, in denen es löslich ist, extrahiert werden. Es kann
dann bei einem pH-Wert, der grosser als 6,0 ist,in Wasser
rückextrahiert werden und kann dann bei einem pH-Wert»der
.niedriger als 4,0 ist in ein Lösungsmittel extrahiert werden, in dem es löslicher ist. Der Endextrakt kann dann zur
Trockene eingedampft werden, um ein Rohpräparat von Cremeomycin zu liefern.
Y/ahlweise kann Cremeomycin aus der Kulturnährlösung
durch Verwendung eines stark basischen Anionen-Austauschharzes
abgetrennt werden. Für diesen Zweck ge-
- 16 -
109816/?1?9
eignete Anionenaustäuschharze können durch Chlormethylierung
von Polystyrol nach dem auf den Seiten 88 und 97 von Kunin,
s Ion Exchange Besins, 2nd Ed., (1958), John Wiley and Sons,
Inc., angegebenen Verfahren erhalten werden; falls gewünscht kann das Polystyrol mit Divinylbenzol, hergestellt nach dem
auf Seite 84 von Kunin, vgl. oben, angegebenen Verfahren, vernetzt werden und mit Trimethylamin oder Dimethyläthanolamin
nach dem auf Seite 97 von Kunin, vgl. oben, angegebenen
Verfahren quaternisiert werden. Anionenaustauschharze dieses
Typs werden unter den Handelsnamen Dowex-1, Dowex-2, Dowex-3,
Amberlite IRA-400, Duolite A-102, und Permatit S-I vertrieben.
Nach einer weiteren Alternative kann
Cremeomycin aus der Kulturnährlösung oder dem organischen
Extrakt nach Adsorptionsmethoden isoliert werden, wobei Adsorbentien wie Kiesä-säure, Entfärbungskohle oder Entfärbungsharz
(ein geeignetes Entfärbungsharz ist Permutit DR, U.S. Patentschrift 2 702 263), Tonerde oder Florisil
(ein synthetisches Silikat des in U.S..Patentschrift 2 393 625
beschriebenen Typs, das von der Ploridin Co. verkauft wird) verwendet werden. Das adsorbierte Antibiotikum kann von dem
Adsorbens in verhältnismässig reiner Porm durch Elution
mit einem geeigneten organischen lösungsmittel, z.B. eines der oben erwähnten, in dem Cremeomycin löslich ist, isoliert
werden. Hochreines Cremeomycin kann erhalten werden, indem •in unreines, trockenes Präparat von Crtmeomyoin, wie oben
■ - 17 -
109816/2129
I I V f~ \J
■beschrieben, an Silikagel chromatographiert und kristallisiert
wird, wobei zur Entwicklung der Säule Lösungsmittel wie Methylenchlorid und Methanol verwendet werden. Die durch
•Chromatographie an Silicagel erhaltenen Fraktionen können zu kristallinem Cremeomycin eingedampft werden.
Salze von Cremeomycin können hergestellt werden, indem die freie Säure des Cremeomycins und eine
anorganische oder organische Base verwendet werden. Die Oremeomycin-salze können zum Beispiel hergestellt werden,
indem die freie Säure des Cremeomyeins in Wasser gelöst
wird, indem eine verdünnte Base zugegeben wirfy bis der pH-Wert der Lösung ungefähr 10,0 bis 11,0 ist und indem
die Lösung gefriergetrocknet wird, wobei ein trockener Rückstand des Cremeomycinsalzes erhalten wird. Cremeomycinsalze,
die hergestellt werden können, sind unter anderem die Natrium-, Kalium- und Kalziumsalze. Andere Salze des
Cremeomycins sind unter anderem solche mit organischen Basen wie z.B. primären, sekundären oder tertiären Monoaminen,
sowie mit Polyaminen, können ebenfalls unter Verwendung der oben beschriebenen oder anderer üblicherweise
verwendeten Verfahren hergestellt werden. Andere wertvolle Salze werden mit therapeutisch wirksamen Basen, die zusätzliche therapeutische Wirkungen liefern, hergestellt.
Solche Basen sind zum Beispiel die Purinbasen, wie z.B.
Theophyllin, Theobromin, Coffein oder Derivate dieser Purin-
- 18 -
"basen, Antihistaminbasen, die imstande sind mit schwachen
Säuren Salze zu "bilden,. Pyridinverbindungen, wie z.B. Nikotinsäureamid, Isonikotinsäurehydrazid und ähnliche,
Phenylalkylamine wie z.B. Adrenalin, Ephedrin und ähnliehe, Cholin und andere. Salze des Cremeomyeins können für dieselben
biologischen Zwecke verwendet werden wie die freie ■Säure. .
^Cremeomycin hat ein breites antibakterielles Spektrum, wie in Tabelle VI gezeigt wird. Das antibakterielle
Spektrum wurde unter Verwendung einer Agardiffusionsmethode
bestimmt, die im folgenden beschrieben ist: Es wurde eine Lösung von Cremeomycin (Konzentration 1 mg/ml) in einem
Phosphatpuffer (0,1 molar; pHrWert 6,0) unter Lichtschutz
hergestellt. Agarplatten wurden mit dem geeigneten Testorganismus beimpft und getestet, indem eine Pilterpapierscheibe
von 12,7 mm Durchmesser in die Testlösung getaucht wurde und auf die Oberfläche des Agars gebracht wurde.
Nach 18 Stunden Inkubationszeit 'bei einer Temperatur von
37 C wurden die Inhibierungszonen gemessen.
- 19 109816/7179
Antibakterielle Wirksamkeit von Cremeomycin Agar-Dif fusions-Test
Pseudomonas mildenbergii 39
Mycobacterium avium 25
Klebsiella pneumoniae 31
Bacillus subtilis 43
Sarcina lutea 48
Escherichia coli 36
Salmonella gallinarum 43
Salmonella schottmuelleri " 44
Staphylococcus aureus 42
Das antibakterielle Spektrum von
Cremeomycin würde auch unter Verwendung einer Rö'hrchen-Verdtinrmngs-Testmethode
bestimmt, wobei die Nährbrtihe BHI (Hirn-Herz-Infusiönsbrühe, Difco, Detroit, Michigan USA)ist.
Teströhrchen (13 mm χ 100 mm) wurden in der Üblichen bei
Snell, E. E., Vitamin Methods, Volume 1, Academic Press,
Inc., New York, 1950, Seite 327, beschriebenen Methode hergestellt. Testorganismen, die 18 Stunden lang bei 370C gezüchtet
waren, wurden zum Impfen des Testmediums verwendet. Das Ergebnis wurde nach 17 Stunden abgelesen.
- 20 -
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Antibakterielle Wirksamkeit von Cremeomycin Röhrohen-Verdiinnungstest
Tesfr-Organismus Geringste Inhibierungs-
konzentration in mg/ml.
Salmonella gallinarum 7,8
Salmonella typhosa 7,8
Salmonella paratyphi 15,6
Klebsiella pneumoniae 31,2
Escherichia coli 15,6
Proteus vulgaris 15,6.
Pseudomonas aeruginosa 62,5
Pseudomonas fluorescens 7,8
Streptococcus hemolyticus 31,2
Streptococcus faecalis 62,5
Staphylococcus aureus · 15,6
Cremeomycin hatlfungizide Wirksamkeit wie
in Tabelle Till gezeigt wird. Das fungizide Spektrum wurde
nach der Agar-Platten-Verdilnnungsmethode bestimmt.
- 21 -
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VL
Tabelle VIII-Fungizide Wirksamkeit von Cremeomycin
Nocardia asteroidea Blast omyces dermatitidis
Ooccidioides imraitis Geotrichum sp.
Homiodendrum compactum Cryptococcus neoformans
Histoplasma capsulatum Sporotrichum schenckii
Monosporium apiospermum Trichophyton rubrum Microsporum canis Trichophyton interdigitale
Candida albicans Trichophyton.violaceum Trichophyton asteroides Trichophyton metagrophytes
Geringste Inhibierungskonzentration in mg/ml
100
100
1000
1000
100
100
iooo
1000 1000 1000 1000 1000 1000
100 1000
100
Bemerkung?
Da Cremeomycin äusserst lichtempfindlich ist, ist es wichtig,
dass der- Test unter Lichtschutz ausgeführt wird.
- 22 -
109816/?1?9
Cremeomycin, die neue erfindungsgemäss
erhältliche Verbindung, ist gegenüber Bacillus subtilis wirksam und kann zur Verringerung oder Verhinderung von Geruch
von Fischen und von Fisehkisten, der durch diesen Organismus
verursacht wird, verwendet werden. Sie kann auch zur Behandlung der Brutplätze der Seidenraupe verwendet werden, um
Infektionen,die durch diesen Organismus verursacht werden, ■zu verhindern oder zu verringern. Ba Cremeomycin auch gegenüber
Cryptococcus neoformans wirksam ist, kann es zur Behandlung
von Tauben-Ställen zur Bekämpfung dieses Pilzes ,_der in
Taubenmist gefunden wurde, verwendet werden. (Journal of the American Medical Association, Volume 191» No. 4, January 25,
1965, Seiten 269-274). Die neue erfindungsgemäss erhältliche Verbindung kann auch als fungizides Mittel zur Behandlung
von Schuhoberleder verwendet werden, wie in der US-Patentschrift 3 130 505 beschrieben wurde. Darüber hinaus kann das
neue erfindungsgemäss erhältliche Antibiotikum zum Reinigen von Laboratoriumstischen und -geräten in mikrobiologischen
Laboratorien verwendet werden. In den folgenden Beispielen werden bevorzugte Ausführungsformen des erfindungsgemässen
Verfahrens besehrieben. Alle Prozentangaben sind Gewichtsprozente und alle Verhältnisangaben bei Lösungsmittelgemischen
sind Volumenangaben, wenn nicht anders angegeben.
- 23 -
109816/71^9
If
Ein aus dem Boden gewonnener Stamm von
Actinomyces cremeus, NEEL 3241» wurde dazu verwendet, eine
Eeihe von 500-ml-Erlenmeyerkolben zu beimpfen; jeder dieser
Kolben enthielt 100 ml Nährmedium der folgenden Zusammensetzung:
G-lukos emonohydrat 25 g
Pharmamedia * 25 g
Leitungswasser q..s. ad 1 Liter
Der pH-Wert vor der Sterilisation wird mit wässriger Natronlauge
auf 7,2 eingestellt.
*Pharmamedia ist ein technisch reines Baumwollsamenmehl der Firma Trader's Oil Mill Company, Fort Worth, Texas, USA.
Die Kolben wurden 47 Stunden bei 280C
auf einer Gump-Schattelmaschine bei 260 Upm bebrütet.
Ein Schüttelkolben der oben beschriebenen
Vorkeimung (100 ml) wurde dazu verwendet einen 30-Liter-Keimungs-Tank
mit 20 1 steriler Nährlösung zu beimpfen; die Nährlösung enthielt folgende Bestandteiles
Glukosemonohydrat 10 g
Maisweichwasser 10 g
Pharmamedia '2g
Wilson's Peptonflüssigkeit No. 159* 10 g
Leitungswasser q.s. ad 1 Liter
- 24 -
*Wilson's Peptonflüssigkeit Nr. 159 ist ein Präparat aus
hydroltfsierten Proteinen tierischen Ursprungs.
Der pH-Wert vor der Sterilisierung wird mit wässriger Natronlauge auf 7,2 eingestellt.
Der Keimtank wurde 47 Stunden bei einer
Temperatur von 28°C bebrütet, wobei die Belüftung mit einer
Geschwindigkeit von 10 Normallitern pro Miute erfolgte und mit 400 Upm. gerührt wurde.
Ein Teil der Keimung (12,5 Liter) wurde zur Beimpfung eines 300-Liter-Gärgefässes verwendet, der
250 1 der folgenden sterilen Nährlösung enthielt: Melasse 20 g
Pharmamedia 10 g
Kalziumkarbonat ' 5g
Specköl '5 ml
Leitungswasser q,.s. ad 1 Liter
Der pH-Wert vor der Sterilisation wurde mit wässriger Natronlauge auf 7,2 eingestellt.
Die Fermentation wurde 114 Stunden lang durchgeführtjwährend dieser Zeit wurde die Temperatur auf
250C eingestellt, filtrierte Luft wurde mit einer Geschwindigkeit
von 150 Normallitern pro Minute eingeleitet und mit einer Geschwindigkeit von 320 Upm« wurde gerührt. Nach 24
Stunden enthielt die Fermentationsbrühe 2,6 Bioeinheiten
Cremeomycin. _ ?5 -
Nach 114 Stunden enthielt die Fermentationsbrühe 34,8 Bioeinheiten
Cremeomycin. Die Bestimmungen wurden gegen den Mikroorganismus Proteus vulgaris auf dem Nähragar (Difeo) durchgeführt.
Das Nährmedium wurde mit dem Testorganismus im Verhältnis 2ml/l beimpft. Die Platten wurden 18 Stunden bei
320C bsbrütet. Alle Bestimmungen erfolgten unter Lichtschutζ.
Eine Bioeinheit ist die Menge Antibiotikum, die bei Auflösung in 0,08 ml der Test lösung und Aufbringung auf eine 12,7 mm-Scheibe
unter standardisierten mikrobiologischen Bedingungen eine Inhibierungszone von 20 ml ergibt.
B. Gewinnung
Die gesamte Brühe(2250 ml) einer der oben beschriebenen Cremeomycinfermentationen wurde mit Schwefelsäure
auf einen pH-Wert von zirka 4,0 eingestellt, und unter
Zugabe von 3 i° Kieselgur als Filterhilfe filtriert. Der Filterkuchen
wurde mit l/lO Volumen Wasser ausgewaschen. Das Filtrat (filtrierte Brühe und Waschwasser) wurde mit Schwefelsäure
auf einen pH-Wert von zirka 4,0 eingestellt und mit einem halben Volumen Skellysolve B (isomere Hexane) extrahiert.
Die Skellysolve-B-Extrakte wurden verworfen. Das extrahierte
Filtrat wurde dann mit Schwefelsäure auf einen pH-Wert von 4,0 eingestellt und mit einem halben Volumen Methylenchlorid
extrahiert. Die erschöpfte Brühe wurde verworfen. Der Methylenchloridextrakt
(1050 ml) wurde im Vakuum bei einer 300C nicht
übersteigenden Temperatur eingedampft und ergab 250 mg eines
- 26 -
1 0 9 8 1 6 / 7 1 ? 9
Präparats, dessen Cremeomyeingehalt nach dem Proteus-vulgaris-Test
31*0 './u/mg "betrug.
0, Reinigung - Silikagelchromatographie
Ein nach einem oben beschriebenen Yer-
fahren erhaltenes Methylenchloridkonzentrat wurde an einer
Silicagelchromatographiesäule gereinigt. Die Säule wurde wie
folgt hergestellt: Ein Gemisch von 217,6 g KH2PO4 und 2,16 g
Na2HPO. wurde in ungefähr 3,0 1 Wasser gelöst, und die Lösung
wurde mit 4,0kg Silicagel gemischt. Das Überschüssige Wasser
wurde verdampft, und das gepufferte Gel wurde bei einer Geltemperatur
von 120 bis 13O0C ungefähr 2 Stunden läng aktiviert
und dann auf Zimmertemperatur abgekühlt. Es wurde dann mit einer ausreichenden Menge an Skellysolve B verrührt, um eine
giessfähige Mischung zu erhalten, die dünnflüssig genug war, um eingeschlossene Luft entweichen zu lassen. Diese Mischung
wurde in ein Glasrohr von 10 cm innerem Durchmesser bis zu einer Schichthöhe von 104 cm gegossen. Wegen der Lichtempfindlichkeit
des Cremeomycins wurden alle Operationen mit diesem Antibiotikum unter Lichtschutz durchgeführt.
Ein nach einem oben in Teil B beschriebenen
Verfahren erhaltenen Methylenchloridkonzentrat von Cremeomycin
(6,0 1) wurde im Takuum auf ein Volumen von zirka 100 bis
200 ml eingedampft. Dieses Konzentrat wurde mit 120 g Silicagel,
das wie oben gepuffert und aktiviert worden war, vermischt. Das Lösungsmittel wurde verdampft, und das getrocknete Silikagel-Antibiotikum-Präparat
wurde gleichmässig in dem Skellysolve B
- 27 -
* 1
10981fi/?1?9
am Kopf der Säule verteilt. Das Niveau des Lösungsmittels wurde bis zur Oberfläche des Ausgangsmaterials abgesenkt.
Ein Lösungsmittelgemisch, bestehend aus Methylenchlorid und Methanol (98,5 : 1,5) wurde sorgfältig auf den Kopf der
Säule gegeben. Der Durchfluss wurde gestartet,, und 30 1 dieser
Mischung wurden durch die Säule fliessen gelassen und verworfen. Die Entwicklung der Säule wurde fortgesetzt, und EinLiter-Fraktionen
wurden abgenommen; aliquote Proben dieser Fraktionen wurden zur Trockene eingedampft und die Rückstände
wurden in Methanol wieder aufgenommen und durch Messung der UV-Adsorption analysiert. Das Cremeomycin wurde
durch sein charakteristisches UV-Spektrum in den Fraktionen erkannt und durch seine Adsorption bei einer Wellenlänge von
285 bis 288 /u quantitativ bestimmt.
Fraktionen 1 bis 7 enthielten die Hauptmenge der Cremeomycinaktivität, sie wurden daher vereinigt
und bei einer Temperatur von weniger als 4O0C im Vakuum
bis auf ein Volumen von ungefähr 500 ml eingedampft. Das Konzentrat wurde durch Filtration geklärt und im Vakuum
auf ein Volumen von 320 ml eingedampft. Zu diesem Konzentrat wurden unter Rühren 1200 ml Cyclohexan gegeben und die Mischung
wurde über Nacht bei O0C aufbewahrt. Die Cremeomycinkristalle
wurden durch Filtration abgetrennt, mit 5,0 ml Cyclohexan gewaschen und bei Zimmertemperatur im Vakuum bis zu einem
konstanten Gewicht von 6,08 g getrocknet; bei der mikro-
- 28 10-9 816/2179
biologen Gehaltsbestimmung mit Proteus vulgaris wurde ein
Gehalt von 198 -yu/mg ermittelt. Ein Teil dieses kristallinen
Cremeomyoinpräparats wurde umkristallisiert, indem 2 g des
Präparats in 40 ml Methylenchlorid gelöst wurden, indem die
Lösung durch Filtration geklärt wurde und indem 160 ml Cyclohexan zugegeben wurden. Biese Mischung wurde über Wacht
bei O0C aufbewahrt. Die Cremeomycinkristalle wurden durch
Filtration abgetrennt und im"Vakuum bis zu einem konstanten
Gewicht von 2,0 g getrocknet; bei der mikrobiologischen Gehaltsbestimmung mit-Proteus vulgaris wurde ein Gehalt von
240 yu/mg ermittelt.
Beispiel 2
Kaliumsalz des Cremeomvcins
0,5 g wie in Beispiel 1 hergestelltes
Cremeomycin wurden in 5 ml absolutem Aethanol gelöst, und zu der Lösung wurden 260 mg in 2 ml Wasser gelöstes Kaliumbicarbonat
zugegeben. Das Reaktionsgefäss wurde gekühlt, woraufhin das Kaliumsalz des Cremeomycins auskristallisierte. Die
Kristalle wurden abfiltriert und im Vakuum getrocknet.
- 29 -
10981B/?1
Claims (8)
- Patentansprüche1t Pharmazeutisches Präparat, mindestens 2,6 Bioeinheiten Cremeomycin pro cm enthaltend, das das Wachstum verschiedner gram-negativer und gram-positiver Bakterien sowie Fungi hemmt und das dadurch gekennzeichnet ist, dass es in seiner im wesentlichen reinen kristallinen Form in Äthylacetat, Amylacetat, Wasser, Methanol, Aceton, Butanol, Methyläthylketon und Methylenchlorid löslich ist, folgende Blementalanalyse aufweist:C 49.66; H 3.42; N 15.19; 0 32.77ein massenspektrometrisch bestimmtes Molekulargewicht von 194 aufweist, ein charakteristisches Infrarotabsorptionsspektrum gemäss Figur 1 und ein charakteristisches Papferchromatogramm Figur 2 beiliegender Zeichnung besitzt.
- 2. Präparat nach Anspruch 1, in trockner Form, dadurch gekennzeichnet, dass es bei der Prüfung gegen Proteus vulgaris eine Wirkung von mindestens 31,0/ymg. aufweist.
- 3. Cremeomycin nach Anspruch 1, in seiner im wesentlichen reinen Form.
- 4. Cremeomycin nach Anspruch 1, in seiner im wesentlichen reinen kristallinen Form.
- 5. Cremeomycin nach Anspruch 1 und dessen Alkali-, Brdalkali- und Aminsalze.
- 6. Kaliumsalz des Präparats nach Anspruch 1.
- 7. Cremeomycin.109816/2129
- 8. Verfahren zur Herstellung von Cremeomycin, dadurch gekennzeichnet, dass man den Actinomyces cremeus NRRL 3241 in einem üblichen Nährmedium unter aeroben Bedingungen züchtet und das Cremeomycin aus der KuIturflüss.igkeit abtrennt.9-r Verfahren nach Anspruch 8, dadurch gekennzeichnet, dass die KuIturflUssigkeit filtriert, das Filtrat mit einem mit Wasser nicht mischbaren Lösungsmittel für Cremeomycin extrahiert und das Cremeomycin von dem Lösungsmittelextrakt abgetrennt wird.Für: The Upjohn CompanyRecht s anwalt816/2^9Leerseite
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---|---|---|---|
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---|---|---|---|
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---|---|---|---|---|
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US3097137A (en) * | 1960-05-19 | 1963-07-09 | Canadian Patents Dev | Vincaleukoblastine |
US3072531A (en) * | 1960-09-21 | 1963-01-08 | Leo Pharm Prod Ltd | Antibiotic and therapeutic compositions thereof |
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- 1967-09-15 SE SE12782/67A patent/SE346563B/xx unknown
- 1967-09-16 DE DE19671617923 patent/DE1617923A1/de active Pending
Also Published As
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US3350269A (en) | 1967-10-31 |
SE346563B (de) | 1972-07-10 |
CH489603A (de) | 1970-04-30 |
GB1185380A (en) | 1970-03-25 |
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