DE1442222A1 - Verfahren zum Konvertieren staerkehaltiger Stoffe zu Dextrose - Google Patents

Description

COHff PBODUC.TS COMPANY

717 Mf th* Avenue, New York, N. Y., IJSA

Verfahren zum Konvertieren stärkehaltiger Stoffe zu Dextrose

Priorität: TJ.S. Patentanmeldung Nr. 331 276 vom 17- Dezember 1963

Die Erfindung betrifft ein verbessertes Verfahren, um auf enzymatischem Wege Stärke zu hohen Ausbeuten an Dextrose zu hydrolysieren, und die zum Erhalten dieser hohen Ausbeuten in wirtschaftlicher und wirksamer Weise verwendeten Enzymzubereitungen.

Verfahren zum Konvertieren von Stärke zu hohen Ausbeuten an Dextrose sind bekannt. Alle früheren Verfahren haben bestimmte Nachteile, welche entweder von den Verfahrensstufen oder den verwendeten Mitteln, um die Hydrolyse der Stärke zu katalysieren, herrühren.

Stärke kann zu Dextrose durch saure Katalysatoren hydrolysiert werden. Bei normaler technischer Arbeitsweise, beispielsweise wie in den US-Patentschriften 1 508 569 und 2 203 325 beschrieben, wird Stärke von etwa 20$ Trockensubstanz konvertiert und der höchste Konvertierungsgrad führt zu einer Zusammensetzung von 90-91 Dextroseäquivalent (D.E.), 85-87$ Dextrose auf Trockenbasis, und das Hydrolysat enthält wesentliche Mengen an Asche, Farbstoffen und Dextrose-Abbaupro-

20 dukten.

Stärke kann auch zu Dextrose konvertiert werden durch ein Verfahren, bei dem sich an eine Teilsäurehydrolyse eine enzymatische Hydrolyse anschließt. In einem "8Ö9808/044 1 - 2 -

solchen Verfahren ist es mÖglieh,'die'Stärke mit 30% Trockensubstanz oder in ehr zu konvertieren, aber die Dextroseausbeuten' sind-iuiner noeh^:beschränkt,"urffdas Hydrolysat enthält wesentliche Mengen- an '"an") r genischen Stoffen, v/le sie sich aus der bei der Vorhy'ärolyse benutzten Säure ergeben. Die folgenden'Worte' sind dabei erhalten worden: ' * ■■·■·-. -.---·■=:·-_

D.E.Wert nach D.E.Wert nach . Dextrosegehalt der Säurekon- der Enzymkon- nach der Enzyravertierung vertierung konvertierung

U.S.	2,305,168	48 .	88	81
U.S. U. S.	2,531,999 2,893,921 :	25 42 ■ ■ . 10-15.	92 87 91-93: -	90 - 84 ._ .. ■ 89-90
U.S.	3,042,584	16	.9.5-96	-92-94

Auch sind Verfahren bekannt, wobei Stärke zuerst auf enzymatischem Wege verflüssigt und dann auf enzymatischem Wege zu Dextrose verzuckert wird. In solchen Fällen war es üblich, eine Erizymzube.reitung, welche bakterieller oder cerealer Herkunft war, zur Verflüssigung der Stärke, wi^ eine Enzynazubereitung, welche pus Pilzen stammte,' für die Konvertierung der Verflüssigten Stärke zu Dextrose zu verwenden» .Anschließend folgen auf diese Welse erhaltene -Ergebnisse: ' "^:

- - ·	Stärkekonzentration $ Trockensubstanz	U.S.Patent 2,531.999	U.S.Patent 3,039.936
Quelle des verflüssigen- .den.Enzyms	OO ■ CM OJ	20
pH Wert während des ' Verflüssigens	Malzenzym-	,B.'Subttlis
Quelle des Verzuckerungs—" enzyms ■ ·■	5,5 . '6,5 ·
pH Wert während der■- Verzuckerung, ...	' Pilz ' - Pilz ·	Ehizopus
D.E. Wert des Hydrolysats	■ -5,0 :·
Dejxtro segehalt des Hydrolysates	98	98-99-
;;;95;; ;■

9808/0441 ~ ³

BADOHIGINAL

, Somit ist bei den bisher bekannten Verfahren es nicht nur notwendig, Enzymzubpreitnngen aus verschiedener Herkunft zu verwenden, um das "Verflüssigen und Verzuckern zu bewerkstelligen, sondern es werden auch wesentliche Einstellungen der pH-Werte erfordert, was den Gehalt an anorganischen Stoffen in den Hydrolysaten erhöht. Diese anorganischen Stoffe behindern die Kristallisation der Dextrose und sind unerwünschte Verunreinigungen, wenn das Gesamthydroljrsat in fltissiger Form oder nach Verfestigung verwendet wird·

Ein Ziel der Erfindung ist, ein verbessertes Verfahren für das Verflüssigen der gelatinierten Stärke zu schaffen. Ein anderes Ziel ist, die Stärke in enzymatischer Weise bei einem niedrigeren pH-Wert zu verflüssigen, als bisher für möglich angesehen wurde. Ein noch weiteres Ziel ist, die Stärke in einer V/eise zu verflüssigen und zu verzuckern, welche niobt den Zusatz von Säure n^ch der Verflüssigung erfordert. Ein zusätzliches Ziel ist, die Stärke mit Enzymzubereitun— gen zu verflüssigen und zu verzuckern, welche aus Organismen einer einzigen P^;lz??rt stammen.

GemäP der Erfindung ist ein Verfahren zur Konvertierung stärkehaltigen Materials dadurch gekennzeichnet, daß es das enzymatische Verflüssigen des stärkehaltigen Materials auf ein pH im B-reich von etwa 3-5 und das enzymatische Konvertieren des verflüssigten stärkehaltigen Materials zu Dextrose bei einem pH im Bereich von etwp 3-5 umfp.ßt.

Diese Ziele werden erreicht durch die Verwendung von teraperaturbeständiren säur^widerstehenden stärkever-

^. flüssigenden iinzymzubereitungen, welche vor Stämmen

^^4- der Aspergil] us-Ki ger-GrupOe der Aspergillus-Art

"*■·>. stammen unri ferner durch die Verwendung von Enzymzu-

ο bereitungen, welche von derselben Gruppe von Organis- ^ men stammen, z\m. Verzuckern der Stärke auf hohe Dextro- ° seausbeuten.
co

Es wurde gefunden, daß Stämme der Aspergillus Niger- Gruppe, wenn in geeigneter V/ei pe gezüchtet, ein En— ergeben, welches äusserst wirksam im Ver—

BAD ORIGINAL

flüssigen von Stärke bei Temperaturen über der Gelatinierungstemperatur der Stärke ist und größte Aktivität in einem pH-Bereich besitzt, welcher auch für Glucamylasetätigkeit geeignet ist. Somit kann das gesamte Verflüssigen und Verzuckern bei einem verhältnismäßig konstanten pH unter Vermeidung der !Notwendigkeit mehrfacher Einstellungen der Azidität ausgeführt werden«

Geeignete Enzymzubereitungen, welche die gewünschte Art von Stärkeverflüssigender Aktivität enthalten, stammen von Stämmen der Aspergillus Niger-Gruppe ab. Diese Gruppe von Organismen ist beschrieben in Kapitel 17 von Thorn und Raper "A Manual of the Aspergilli", Williams & Wilkins Co., Baltimore (1945). Geeignete spezielle Kulturen sind Aspergillus Niger ATCC 13,496 ATCC 13,497, WREL 326, NRRL 330, NRRL 337, und NRRL 679 und Aspergillus Phoenicis ATCC 13,156 und ATCC 13,157. Die gewünschte Art von Enzymaktivität kann hervorgerufen werden durch submerses aerobes Wachsturn des Organismus auf einem Medium, welches aus 10 15$> gemahlenem Mais und 1-2$ Haisquellwasser zusammengesetzt ist. Ein anfänglicher pH-Wert zwischen 5-7 ist zufriedenstellend. Andere Kohlenhydrat- und Proteinquellen können anstelle von Mais und Maisquellwasser genommen werden, wobei die Auswahl dem Fachmann bekannt ist.

Im allgemeinen ist es für die uewinnunt; der gewünschten Ar ο von stä..-keverflüpRigendeiii Enzym wesentlich, dfH das ^T']nd-pH Lev Kux curu/nssigkeit weniger als etwa 4,^ ist. Diese Abnahme iu. pH-wert tritt normalerweise als Folge der Bildung saurer Stoffe durch die Kultur ein. Nach vollendeter Fermentierung kann die K%iturflüssigkeit vom Transglukosidasegehalt durch Behandlung mit einem Tonmineral gemäß der Lehre der US-Patentschrift 3,042,584 befreit werden. Das KuIturfiltrat kann unmittelbar ben^utzt werden, oder die Enzymaktivität kann in bekannter ¥eise konzentriert werden, z.B. durch Eindampfen, Dialyse oder Ausfällung

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' BAD ORIGINAL

mit Salzen oder Lösungsmitteln.

Diese Apt von Enzymzubereitung ist, im Gegensatz zu den bisher zur Stärkeverflüssigung als Vorstufe für _;-die enzymatisch^ Konvertierung von Stärke zu Dextrose benutzten, unter den vereinten Bedingungen von relativ niedrigem pH und relativ hoher Temperatur wirksam. Im Gegensatz zu den üblichen Bakterien- und Pilz-Enzymzubereitungen sind diese verbesserten Enzymzubereitungen wirksamer im Verflüssigen der Stärkepasten, wenn die Verdünnungsreaktion bei pH 3,5 und 6O⁰O₁ als wenn die Verdünnungsreaktion bei pH 5,0 und 4O⁰C ausgeführt wird. Bisher benutzte Enzymzubereitungen sind andererseits wirksamer, wenn die Verdünnungsreaktion bei pH 5,0 und 40 C, als wenn die Verdünnungsreaktion bei pH 3,5 und 60⁰C ausgeführt wird.

Um diese Unterschiede zu zeigen, wurde eine 10$ige Suspension von Maisstärke in einen Brabender-Amylograph gebracht. Per Brei wurde auf 95°C zum Gelatinieren der Stärke erwärmt, dann entweder auf 6O⁰C " 20 oder 40 C abgekühlt. Zu der gekühlten Stärke wurden 15 ml eines 1,0 molaren Acetatpuffers und 5 ml der Enzymlösung zugesetzt. Nach 30 Minuten bei der vorige schrieb en en Temperatur wurde der Stärkebrei auf 50⁰C eingestellt. Ergebnisse für eine Aspergillus-Mger-Enzymzubereitung, verglichen mit Bae±llus-Subtilis- und Aspergillus-Oryzae-Enzymzubereitungen sind in Tabelle 1 angegeben. Die aus Bacillus Subtilie ι und Aspergillus Oryzae stammenden Enzymzubereitungen zeigten wesentlich grössere Aktivität in der Verflüssigungsstufe der Stärke bei pH 5,0 und 4O⁰C als bei pH 3,5 und 6O⁰C, während die Aspergillus-Niger-Zubereitungen wesentlich grössere Verdünnungsaktivität bei pH 3,5 und 6O⁰C als bei pH 5,0 und 4O⁰C zeigten.

BAD

8.09808/0441

T a b. e 1 1 e -1.

OO O OO

cn
ο
co

Quelle der
Enzymzu- bereitung

Aspergillus

liger·

Bacillus Subtilis

Aspergillus
Oryzae· · .-*-·

Temperatur G .- ,-	. 40. . ;	6	»5	■·- "	.VJl	40 V	60	5...	0.40	■;,;sp
pH	. 5,0, .	3	,0	1		3,	O
Do si erung	5,0 --	1	,0 '	1,	1,0	■-·■ r,o

a>

>1000 940 700 530 410 320

720 480 350 260 205 165

1 50 120

930 XlQpO 670~^l >1000 515 :>1000 41.5 > 1000 345 >1000 300¹-> 1000

2ÖÖ'¹ >iOOO

1000

860 ■·■

. 660.

555 =

900 870

840

^:> 840

,840

Vislrosität

5 Mimiten
10 Minuten
15 Minuten
20 Minuten
25 Minuten
30 Minuten

eingestellt
auf 50⁰C

^a) Brabenderskala-Ablesung . .

Diese verbesserten aus Stämmen Gruppe stammenden Enzymzubereitungen können über einen vreiten Bereich von pH^Werten undv Temperaturen verwendet werden, obwohl ihre Wirksamkeit bei pH-Werten über 6,0 und Temperaturen über 80°C sich verringert.. Verflüssigung von Breien aus gelatini.sie.rter Stärke bei 60⁰C und 80⁰O bei verschiedenen pH-Werten ist naph-„ stehend gezeigt: . -

pH-Wert

Ve r dünnung s-■■
temperatur C

60
■ 80 .

Viskosität nach 30 Minuten, Brabender-

Einheiten

2,5 3,0. ,3,5 .. 4,0 4,3 4,7 ^ 5,,0 6,0

320 220

165 470

165
310

220
480

240
490-

6 tO 740

Da Glukamylase enthaltende Enzvmzubereitungen, deren Gewinnung in den üS-Patenten 2,893,921 und 3,012,944 beschrieben ist, einen optimalen pH von etwa 3,5-4,5 für die Konvertierung verflüssigter Stärke zu Dextrose haben, ist die hervorragende Brauchbarkeit der oben beschriebenen Aspefgillüs-Niger-Enzymzubereitungen ·

BAD ORIGINAL

für die Konvertierung von Stärke zu Dextrose mit einem Minimum an pH-linstellung leicht ersichtlich.

Zum Verflüssigen der Stärke ist es im allgemeinen erwünscht, eine Menge an Enzymzubereitung im Verhältnis zur Stärke mindestens äquivalent zu der Menge zu benutzen, welche den Verflüssigungsgrad bei pH 3,5 und 60 C bewirken wird, wie in Spalte 2 der Tabelle 1 gezeigt. Eine graphische Wiedergabe der Ergebnisse ist in !"ig. 1 gezeigt. Das Verfahren wird nachstehend beschrieben.

50 g handelsübliche Maisstärke (12$ Feuchtigkeit) wurden mit Wasser auf 500 ml in einer Messflasche verdünnt. Diese 500j# ml Stärkebrei wurden in den Becher eines Modells 318, Type A07 Brabander Amylograph gebracht. Der Brei wurde dann auf 95⁰C in etwa 25 Minuten erwärmt. 15 Minuten nach dem Erreichen der Spitzenviskosität wurde der Brei rasch auf 6O⁰C gekühlt. Nach etwa 5 Minuten bei 6O⁰C wurden 10 ml von 1,0 M, pH 3j5 Acetatpuffer zugegeben, gefolgt von 5 ml in geeigneter Weise verdünnter Enzynlö'sung. Der Brei wurde noch 30 Minuten nach dem Zusatz den Enzyms auf der Temperatur gehalten.

Die Verfahren zum enzymatisehen Verflüssigen von Stärke sind bekannt. Stärkebreie.können bei hohen Temperatüren gelatiniert und dann auf unter 90⁰C für die Enzymverdünnung gekühlt werden. Ein Stärkebrei mit zugesetztem Enzym· kann auf einen Punkt oberhalb des Gelatinierungspunktes der Stärke erwärmt werden, oder ein Stärkebrei mit zugesetztem Enzym kann stetig in ^r ein Gefäß gelassen werden, welches über der Gelati_o nierungetenperr>tnr der Stärke geholten wird. Die ^* Menf:e an erforderlicher Enzymzubereitung, um ange- ° mespenes Verflüssigen der Stärke zn erhalten, wird σ» von der Aktivität der Enzyn-zubereitung, der Zeit, oo der Temperatur und der Stärkekonzentration abhängen.

Weil die oben beschriebenen Enzymzubereitungen in pH-Bereichen von 3-5 wirksam sind, besteht keine Notwendigkeit win Ar¹F^UeT¹I vor d&r Verzuckerung, obwohl ~p-

- 8 - _BAD

ringere Einstellungen erwünscht sein können. Die verflüssigte Stärke kann zu Dextrose mittels von Stämmen der Aspergillus-Niger-Gruppe stammenden Enzymzuberei— tungen konvertiert werden. Solche Zubereitungen und wirksame Bedingungen für ihre Anwendung sind beschrieben in US-Patenten 2,893,921, 3,012,944 und 3,042,584. Für höchste Ausbeuten an Dextrose wird vorgezogen, daß die Glukamylasezubereitungen einen niedrigen Gehalt an Transglukosidaseaktivitat aufweisen. Mittel, um an TransgluTro sidaseaktivi tat niedrige Aspergillus-Niger-Enzymzubereitungen zu erhalten, sind "beschrieben in den US-Pr; tent en 3,012, -944, 3,042,584, 3,067,108 und 3,108,928.

Glukamylaseaktivität wird wie folgt bestimmt; Das Substrat ist ein 15-18 D.E. sprühgetrocknetes Säur ehydroly sat von Mai fs stärke. Dieses Material wird in Wasser gelöst und auf 4,0 g Trockensubstanz für 100 ml Lösung verdünnt. Genau 50 ml der Lösung werden in einen 100 ml-Meßkolben abpipettiert. Zu dem Kolben werden 5,0 ml von pH 4,3, 1,0 molarer Eatr-iumacetat-Esrigsäurepuffer gefügt. Der Kolben wird in ein Wasserbad von 6O⁰C gebracht und nach 10 Minuten die geeignete Menge an Enzymzubereitung zugegeben. Genau 120 Minuten nach dem Zusatz ßer Enzymzubereitung wird die Lösung auf einen Phenolphthalein-Endpunkt mit einer Normal-Hatriumhydroxydlösung eingestellt. Die Lösung· wird dann auf Raum temp era. ttir gekühlt und auf das Volumen verdünnt. Der Wert pn reduzierenden Zuckern, berecnnet als Dextrose, wird dann an dem verdünnten Muster und einer Kontrollprobe ohne Enzymzusatz bestimmt. Die Glukamylaseaktivität wird berechnet wie fol/rt:

° ' 2 χ Ε

_o worin bedeuten:

σ? "'¹A = Glukamyl psea'-rtivität, in Einheiten pro ml oder

oo pro f jinzymzubereitung

S= reduzierende Zu er er in de-u en zj-τη Vonvertiert en -- Huster, g pro 100 ml BAD ORIGINAL

B = reduzierende Zucker im Kontrollmuster, g pro 100 ml E = verwendete Menge an Enzymzubereitung in ml oder g.

Die Konzentration an reduzierenden Zuckern in dem Enzyra-konvertierten Muster sollte nicht mehr als 1,0 g pro 100 ml sein.

Die Erfindung wird noch weiter durch die folgenden Beispiele erläutert. Sie dienen nur zur Erläuterung und nicht zur Beschränkung der Erfindung. Alle zum Verflüssigen von Stärke verwendeten Enzyinzubereitungen stammen von Gliedern der Aspergillus-Niger-Gruppe der Asporgillus-Art ab. Alle diese Enzymzubereitungen, wenn gemäß dem zur Erlangung der Werte von Tabelle I verwendeten Verfahren geprüft, waren wirksamer zum Verflüssigen von Stärke bei pH 3,5 und 60⁰C, als bei pH 5,0 und 40⁰C. Die angegebenen Mengen sind relativ zu der erforderlichen Menge, um den in Pig. 1 gezeigten Verflüssigungsgrad zu bewirken, wenn bei pH 3,5 und 60⁰G gemäß dem beschriebenen Verfahren geprüft.

Beispiel 1:

Zu einem Brei aus Maisstärke von 18⁰Be, pH 4,5 wurde eine Enzymzubereitung zugesetzt, welche aus einer submersen Züchtung von Aspergillus Niger ATCC 13,496 in einem Mais- Maisquellwasser-Medium stammte. Um das Verflüssigen einer 10^igen Stärkepaste bei pH 3,5 und 60°C äquivalent zu dem in Fig. 1 gezeigten Verdünnungsgrad zu bewirken, war eine Enzymzubereitungsmenge j äquivalent 2,8 ml Kulturfiltrat pro 10^u g Stärke erforderlich. Die tatsächlich zu der 18°Be-Stärke zu- T- gesetzte Menge war äquivalent 6,7 ml Kulturfiltrat pro ^ 100 g Stärke oder das 2,4-fache der Menge, die erfor- ° derlich ist, um dae Verdünnen einer 1Obigen Stärkepaste bei pH 3,5 und 60⁰C äquivalent zu dem in Fig. 1 ge-J3O zeigten Verdünnungsgrad zu bewirken. Der Stärke-Enzym-Brei wurde stetig in ein auf 80⁰C gehaltenes Gefäß ge- <o lassen und gerührt. Die Zulaufzeit war 30. Minuten. Der Brei wurde auf 80⁰C während weiterer 60 Minuten gehalten und dann auf 6O⁰C gekühlt. Einstellung des pH-Wertes war unnötig. Zu der verdünnten Stärke wurde

*.■. - 10 -

eine Menge von einer Enzymzubereitung, welche aus Aspergillus Niger ATGO 13,496 stammte, äquivalent 15-(flukamylase-Einheiten pro Ί00 g Stärke zugesetzt.. Die Verzuckerung wurde während 72 Stunden,durchgeführt« Die Mengen an durch Filtration entfernten Festen Stoffen war 2,1% der gesamten anwesenden Trockensubstanz. Die Filtratzusammensetzung war 98,8 D.E., 97,8^ Dextrose auf Trockenbasis. . -.-..--, _;;

Beispiel 2; ^^F -- '·

.Beispiel 1 wurde -wiederholt unter Anwendung der gleichen Bedingungen, außer daß die Temperatur während des Zusatzes des Stärkeenzymbreis 73 C und die Temperatur für die zusätzlichen 60 Minuten 8O⁰C war. Die Filtratzusammensetzung war 99,4 D.E., 98,4$> Dextrose auf Trockenbasis. Die Menge au durch Filtration entfernueii festen Stoffen w^r 2,0/o von a^j. gesamten anwesenden Trockensubstanz.

Beispiel 5:

Beispiel 2 wurde wiederholt unter Ersatz der Maisstärke durch Stärken aus verschiedenen Quellen. Es folgen die Ergebnisse mit den verschiedenen Stärken:

Stärkequelle

Feste Stoffe entfernt durch Filtration, fi

Zusammensetzung des gefilterten Hydrolysate

D.E. Dextrose $>

Trockenbasis

Gelber Mais	1,9
Tapioka	0,8
Wachsmilo	1,1
Reguläres MiIo	1,2
Reis	1,7
Weizen	2,7
Irische Kartoffel	3,5
Weiße süße Kartoffel	3,8

99.1 98,1 99,9 99,6

98.2 96,9 · 9.8,4 97,0

97.3 95,6 98,3 97,t 97,8 96,1 98,1 96,7

OFtIGlNAL INSPECTED

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- 11 -

Beispiel 4t

Zu einem 18 Be Maisstärkebrei, pH 3,5, wurde das 2,3-fache der Menge einer Aspergillus-Niger-Enzymzube-■ reitung zugesetzt, wie sie erforderlich ist, um den Grad der Verflüssigung einer 10$igen Stärkepaste zu bewirken, verglichen mit dem in Fig. 1 gezeigten. Während 30 Minuten wurde der Stärkeenzymbrei in ein auf 73 C gehaltenes Gefäß gelassen und gerührt. Nach weiterem Halten auf 73°0 während. 2,5 Stunden wurde die Temperatur auf 8O⁰O gesteigert. Nach dem Halten bei 80 C während 30 Minuten wurde die verflüssigte Stärke dann bei 60⁰O gekühlt und eine Aspergillus-Niger-Glukamylasezubereitung äquivalent in der Menge von 15 Einheiten Glukamylase pro 100 g Stärke, zugesetzt. Nach 98 Stunden Verzuckerung wurde die Flüssigkeit filtriert. Der Filtrationsrückstand war 2,2 g Trockensubstanz pro 100 g Stärke. Analyse des Filtrats zeigte 98,7 D.E., 97,5$ Dextrose.

Beispiel 5:

Beispiel 4 wurde wiederholt unter Verwendung verschiedener pH-Werte während des Verflüssigens und Verzuckerns und verschiedener Temperaturen während des Verflüssigens. Die Ergebnisse folgen in Tabelle II.

- 12 -

809808/0441

Tabelle

Temperatur. während des Verdüimens

-während 'während * .de.e Te,r-,:fles, Verflüssizuk-

Stufe Stufe.- ' "g-ens .Verlust
bei der . -

Zusammensetzung des filtrierten

•Hydrolysat s Filtra-.. ,., -....-

. Dextrose y> D.E. . T-roelcenbasis

73

76

76 '

76 "

76

76

76 .:

Ί & ■:■:·-

76

80 ■öO ⁸P

80 80*

80 80^;

3,0

3...S. 4,6

3,0

■4,6" 4-,

3,0 7,5

3,0

5, 5^;

Λ>λ :■■■■

3,7

-98,β -

9ß,8...
■98,7.
58,9. _v

98,7 .-.
98,0

98,2
98,6

•4,-6 QS,

- 97,3· 97,7

.- .97,3, .96,4 97,3 97,3

-, 96,7,"

"■' 97,3' ■'■ Qfr,8"

•^: 9t,7 : 96^;,B.

809 808/0AA1 BAD ORIGINAL

*' 0 }J

Claims (5)

1. Patentansprüche

   Verfahren zum Konvertieren von stärkehaltigem Material zu Dextrose, gekennzei ohnet durch enz;matisohes Verflüssigen des stärkehaltigen Materials bei einem pH zwischen etwa 3-5 und enzymatisches Konvertieren des verdünnten stärkehaltigen Materials zu Dextrose bei einem pH zwischen etwa 3-5.
2. 2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das Verflüssigungsmittel eine Pilzenzymzubereitung und das Konver— tierungsmittel für das verdünnte stärkehaltige Material eine Pilzenzymzubereitung ist.
3. 3. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das Verflüssigungsmittel eine aus der Aspergillus-Niger-G-ruppe der Aspergil!us-Art stammende Enzymzubereitung ist·
4. 4. Verfahren nach Anspruch 1 oder 3, dadurch gekennzeichnet, daß das Konvertierungsmittel für die verflüssigte Stärke eine Pilzenzyazubereitung ist.
5. 5. Verfahren nach Anspruch 1, 3 oder 4, d a durch gekennzeichnet, daß das Konvertierungsraittel für die verflüssigte Stärke eine aus der Aspergillus-Niger-Gruppe der Aspergillus-Art stammende Enzymzubereitung ist.

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