DE10048214A1 - Pflanzen mit maskierter Fruchtbarkeit - Google Patents
Pflanzen mit maskierter FruchtbarkeitInfo
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Abstract
Die vorliegende Erfindung betrifft transgene Pflanzen mit maskierter Fruchtbarkeit, wobei die maskierte Fruchtbarkeit durch eine veränderte Expression der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO:2 oder deren Homolog oder durch die Veränderung der biologischen Aktivität des durch die Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO:2 oder deren Homolog kodierten Genprodukts hervorgerufen wird. Die vorliegende Erfindung betrifft ferner die regulatorische Nukleinsäuresequenz, die natürlicherweise in Arabidopsis thaliana die Expression des MYB26-Gens steuert. Ferner betrifft die vorliegende Erfindung Verfahren zur Herstellung der erfindungsgemäßen transgenen Pflanzen.
Description
Die vorliegende Erfindung betrifft transgene Pflanzen mit maskierter Fruchtbarkeit, wobei die
maskierte Fruchtbarkeit durch eine veränderte Expression der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ
ID NO: 2 oder deren Homolog, oder durch die Veränderung der biologischen Aktivität des durch
die Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren Homolog kodierten Genprodukts
hervorgerufen wird. Die vorliegende Erfindung betrifft ferner die regulatorische
Nukleinsäuresequenz, die natürlicherweise in Arabidopsis thaliana die Expression des MYB26-
Gens steuert. Ferner betrifft die vorliegende Erfindung Verfahren zur Herstellung der
erfindungsgemäßen transgenen Pflanzen.
Proteine vom MYB-Typus bilden eine Superfamilie von strukturell ähnlichen
Transkriptionsfaktoren. MYB-Proteine kommen sowohl in pflanzlichen als auch in tierischen
Organismen vor und beeinflussen eine Vielzahl unterschiedlicher Stoffwechselwege. Das
gemeinsame Strukturmotiv dieser Proteinfamilie ist die MYB-Domäne, die an eine spezifische
DNA-Sequenz binden kann. Die klassische MYB-Domäne besteht aus zwei oder drei
untereinander sehr ähnlichen Sequenzwiederholungen (Repeats: R1, R2, R3) von 50-53 AS
Länge. Die meisten pflanzlichen MYB-Proteine besitzen nur zwei Sequenz-Repeats (R2, R3). In
Arabidopsis wurden bereits 97 verschiedene Proteine vom R2R3-Typ nachgewiesen. Damit
bildet diese Gruppe die größte bislang in Pflanzen bekannte regulatorische Genfamilie. Von den
wenigen bislang funktionell charakterisierten MYB-Genen ist bekannt, daß sie u. a. den
Phenylpropanoid-Metabolismus regulieren, die Zellform- und Differenzierung beeinflussen, an
der Hormonantwort beteiligt sind oder im Laufe von pflanzlichen Abwehrreaktionen
eingeschaltet werden. Zusammenfassende Informationen zur MYB-Familie finden sich in u. a. in
Romero et al.: More than 80 R2R3-MYB regulatory genes in the genome of Arabidopsis
thaliana. Plant. J. 14, 273-284 (1998), Kranz et al. Towards functional characterisation of the
members of the R2R3-MYB gene family from Arabidopsis thaliana. Plant J. 16, 263-276 (1998)
sowie Martin und Paz-Ares: MYB transcription factors in plants. Trends in Genetics 13, 67-73
(1997).
Zur vorstehend beschriebenen MYB-Familie zählt das MYB26-Gen. Von diesem MYB26-Gen
ist ein cDNA-Klon aus Arabidopsis thaliana (Genbank Accession Nummer 175997 verfügbar,
jedoch war bislang nicht bekannt, in welche konkreten Stoffwechselwege dieses Gen eingreift
bzw. in welchen Geweben es exprimiert wird. Ein genomischer Klon (MDC16) ist unter der
Genbank Accession Nummer AB019229 registriert.
Populationen männlich steriler Pflanzen können durch unterschiedliche Verfahrensweisen
produziert werden. Im einfachsten Fall werden die männlichen Blütenorgane durch Eintüten vom
Rest der Pflanze isoliert oder kurzerhand abgeschnitten. Diese Prozeduren sind jedoch sehr zeit-,
personal- und kostenintensiv. Zudem finden sich bei einer großen Zahl der Nutzpflanzen
männliche und weibliche Organe innerhalb derselben Blüte, was diese Verfahren noch weiter
erschwert.
Auch mit Hilfe von pollenabtötenden oder die Pollenbildung blockierenden Chemikalien
(Gametoziden) lassen sich männlich sterile Pflanzen erzeugen. Der Vorteil dieser chemischen
Verfahren ist, daß nur eine vorübergehende Sterilität eintritt, die lediglich für die Dauer der
Behandlung bestehenbleibt. Allerdings zeigen die meisten dieser Gametozide zusätzliche
phytotoxische Eigenschaften. Des weiteren muß die Behandlung bei Pflanzen mit einer langen
Blühphase mehrfach wiederholt werden.
In jüngerer Zeit werden mehrere genetische Verfahren zur Hervorbringung männlich steriler
Pflanzen diskutiert und angewendet. In der Patentschrift US 5,955,653 wird eine spezifisch in
Tapetumzellen exprimierte beta-1,3-Glucanase zur Induzierung der Sterilität eingesetzt. US 5,962,769
erreicht dasselbe Ziel durch eine Erhöhung der endogenen Avidin-Konzentrationen.
WO 9008830 beschreibt die Expression von Proteininhibitorgenen oder von sogenannten
Killergenen in den männlichen Infloreszenzen, die das Absterben der Antheren und assoziierten
Gewebe bewirken sollen. In WO 90/08831 wird ein ähnlicher Effekt durch die Expression von
Disruptor-Genen angestrebt, die die mitochondriale Zellatmung verhindern. WO 89/10396
schlägt sehr allgemein vor, das pflanzliche Genom mit exogenen sogenannten "Male Sterility
DNAs" (z. B. kodierend für Rnasen, Dnasen, Proteasen, Lipasen etc.) zu transformieren, die bei
Expression in Zellen der Staubblätter den Metabolismus, die Funktion oder die Entwicklung
dieser Zelle stören. In EP 0329308 werden Antisense-DNAs zur Beeinflussung der
Pollenproduktion verwendet.
Die Grundversorgung der rasch anwachsenden Weltbevölkerung mit Nahrungsmitteln und
pflanzlichen Rohstoffen stellt hohe Anforderungen an die moderne Agrarwirtschaft.
Bemühungen zur Verbesserung des pflanzlichen Ertrages stoßen mittlerweile an die Grenzen der
traditionellen Züchtung und sind zudem sehr Zeit- und arbeitsintensiv. Einen Ausweg zeigt die
moderne Gentechnik auf. Diese erlaubt eine gezielte Modifikation bestimmter Stoffwechselwege
durch die Einführung neuer Gensequenzen oder Manipulation von bereits im Organismus
vorhandenen Genen. Da bei den gentechnologischen Verfahren die Veränderungen im Erbgut in
der Regel genau bekannt sind, lassen sich diese Methoden zudem meist auf weitere
Pflanzenarten übertragen. Für entsprechende übertragbare Techniken besteht demnach erhöhter
Bedarf, insbesondere wenn dadurch klassische Züchtungsverfahren sinnvoll ergänzt werden
können. So zeigt die Nachkommenschaft von Pflanzen, die mit Pollen genetisch divergenter
Varietäten derselben Spezies fremdbestäubt wurde, im Vergleich zur Nachkommenschaft von
selbstbestäubten Pflanzen oftmals verbesserte Eigenschaften. Die Hybride zeichnen sich häufig
durch Uniformität, verstärktes Wachstum, höheren Ertrag oder eine vermehrte Widerstandskraft
gegenüber Pathogenen aus. Dieser als Heterosis bekannte Effekt ist von hohem kommerziellen
Interesse für landwirtschaftliche Betriebe bzw. Pflanzenzüchter und verlangt gezielte
Kreuzungen. Männlich sterile Pflanzen erleichtern diese Kreuzungstechniken, da von Ihnen
leichter hybride Nachkommen zu erhalten sind. Bei entsprechenden Kreuzungen werden
männlich sterile und männlich fertile Pflanzen nebeneinander in einem Feld angepflanzt. Die
männlich sterilen Pflanzen können nur durch Pollen der männlich fertilen Pflanzen befruchtet
werden und bringen dementsprechend ausschließlich hybride Samen hervor. Besonders
vorteilhaft ist es, wenn die Sterilität nicht wie bei den meisten bekannten sterilen Mutanten
permanent, sondern reversibel ist, wodurch z. B. kontrollierte Selbstbefruchtungsversuche im
Rahmen späterer Selektions- und Charakterisierungsprozesse möglich werden.
Der vorliegenden Erfindung liegt somit die Aufgabe zugrunde, neuartige männlich sterile
Pflanzen sowie Verfahren zu ihrer Herstellung bereitzustellen.
Die Aufgabe wird durch den in den Patentansprüchen definierten Gegenstand gelöst.
Die Erfindung wird durch die folgenden Figuren erläutert.
Fig. 1 zeigt die Promotorregion des MYB26-Gens von Arabidopsis thaliana. Das Start-ATG ist
fett hervorgehoben.
Fig. 2 zeigt die genomische Nukleinsäuresequenz des MYB26-Gens von Arabidopsis thaliana.
Start-ATG und Stop-Codon sind fett hervorgehoben. Unterstrichene Regionen stellen Introns
dar. Die Numerierung setzt die Numerierung aus Fig. 1 fort.
Fig. 3 zeigt die aus dem offenen Leserahmen gemäß Fig. 1 abgeleitete Aminosäuresequenz
von MYB26.
Fig. 4 zeigt eine Southernanalyse von Individuen der Linie 7AAB12. DNA von 14 F2
Nachkommen von 7AAB12 [fünf Pflanzen, die kein mutantes Allel für and1 tragen (1-5), vier
heterozygote Pflanzen für and (6-9) und fünf sterile Pflanzen (10-14)] wurde mit EcoRI
gespalten, auf einem 0,8%igen Agarosegel aufgetrennt und auf eine Nylonmembran übertragen.
Das linke Foto zeigt die Hybridisierung mit dem linken Ende des Transposons. Jedes Individuum
zeigt 6-10 Banden, von denen jedoch nur eine mit einer Größe von 3,8 kb ausschließlich in
Pflanzen mit zumindest einem mutierten Allel von andl auftritt, wohingegen sie in den Pflanzen
fehlt, die homozygot das Wildtypallel dieses Locus tragen. Die entsprechende Bande ist mit
einem Pfeil gekennzeichnet. Das rechte Foto zeigt die Hybridisierung derselben Membran mit
einer MYB26-spezifischen Sonde (ohne MYB-Domäne). Die 3,8 kb Bande, die gekoppelt mit
der Mutation in andl auftritt, hybridisiert auch mit AtMYB26. Pflanzen, die homozygot das
and1-Wildtypallel tragen (1-5) zeigen hingegen eine Bande von 6,3 kb, die dem Wildtyplocus
von AtMYB26 entspricht. Beide Banden treten in and1-heterozygoten Pflanzen (6-9) mit etwa
gleicher Intensität auf. Ein schwaches Signal auf Höhe der Wildtyp-Bande in sterilen Pflanzen
kann durch das Herausspringen des Transposons in einigen Zellen der Pflanze (somatische
Sektoren) erklärt werden.
Fig. 5 zeigt die ursprüngliche Sequenz des N-Terminus des MYB26-Proteins im Vergleich zur
entsprechenden Sequenz einer stabilen Mutante. In der ersten Zeile ist der N-Terminus des
MYB26-Proteins dargestellr. Die ursprüngliche En-Insertionsselle ist gekennzeichnet. In der
zweiten Zeile ist der N-Terminus des MYB26-Proteins nach ungenauem Herausspringen des
Transposons gezeigt. Drei Aminosäuren wurden deletiert.
Fig. 6 zeigt eine mikroskopische Ansicht eines Querschnittes durch Antheren-Gewebe in
MYB26-Mutanten (links), und Wildtyp (rechts). Während im Wildtyp radiale Zellwand
verdickungen (Pfeil) zu sehen sind, fehlen diese in der MYB26-Mutante.
Fig. 7 zeigt eine männlich sterile Pflanze der Art Arabidopsis thaliana mit Gendefekt im
MYB26-Gen im Vergleich mit der Wildtyppflanze.
Der hier verwendete Ausdruck "maskierte Fruchtbarkeit" bezeichnet eine Nichtfreisetzung der
Pollen aus den Pollensäcken infolge einer morphologischen und zellulären Veränderung des
Pollensackgewebes, wodurch die betroffenen Pflanzen männlich steril sind.
Die hier verwendeten Ausdrücke "Homologe" oder "homologe Sequenzen" bezeichnen
Nukleinsäure- oder Aminosäuresequenzen mit signifikanter Ähnlichkeit zur Vergleichssequenz
oder Teilen davon. Als homologe Sequenzen gelten somit Nukleinsäuresequenzen, die mit den
Vergleichssequenzen oder Teilen dieser Sequenzen unter stringenten oder wenig stringenten
Bedingungen hybridisieren (zu stringenten und wenig stringenten Bedingungen siehe Sambrook
et al., Molecular Cloning, Cold Spring Harbour Laboratory (1989), ISBN 0-87969-309-6). Ein
Beispiel für stringente Hybridisierungsbedingungen ist: Hybridisierung in 4 × SSC bei 65°C
(alternativ in 50% Formamid und 4 × SSC bei 42°C), gefolgt von mehreren Waschschritten in
0,1 × SSC bei 65°C für insgesamt etwa eine Stunde. Ein Beispiel für wenig stringente
Hybridisierungsbedingungen ist Hybridisierung in 4 × SSC bei 37°C, gefolgt von mehreren
Waschritten in 1 × SSC bei Raumtemperatur. Als homologe Sequenzen sollen des weiteren
Nukleinsäure- oder Aminosäuresequenzen oder Teile davon gelten, die unter Zuhilfenahme des
Similaritätsalgorithmus BLAST (Basic Local Alignment Search Tool, Altschul et al., Journal of
Molecular Biology 215, 403-410 (1990) eine signifikante Ähnlichkeit mit Vergleichssequenzen
aufweisen. Als signifikant ähnlich werden, wie hier verwendet, Sequenzen bezeichnet, die z. B.
unter Verwendung von Standardparametern im BLAST-Service des NCBI ein Signifikanzniveau
(E-Value oder Probability) von P < 10-5 aufweisen, wenn sie mit den Vergleichssequenzen
verglichen werden.
Der hier verwendete Ausdruck "Derivate" bezeichnet Nukleinsäuresequenzen, die gegenüber der
Vergleichssequenz Modifikationen in Form von einer oder mehreren Deletionen, Substitutionen,
Additionen, Insertionen und/oder Inversionen aufweisen. Als Derivate sind auch Introns
beinhaltende genomische Äquivalente von EST- bzw. cDNA-Sequenzen anzusehen. Derivat
bedeutet ferner, daß eine Nukleinsäuresequenz zusammengesetzt ist aus einem oder mehreren
Nukleinsäurefragmenten eines Gens und einem oder mehreren Nukleinsäurefragmenten eines
oder mehrerer anderer Gene. Die einzelnen Domänen können dabei sowohl unmodifiziert als
auch modifiziert sein.
Der hier verwendete Ausdruck "Fragmente" bezeichnet Teile von Aminosäuresequenzen oder
deren Erbinformation in Form von Nukleinsäuren, sofern sie über zumindest einen funktionell
wichtigen Bereich (Domäne, Sequenz- oder Strukturmotiv) der Vergleichssequenz verfügen, wie
z. B. katalytische Zentren oder mit Proteinen wechselwirkende Motive, ferner Elemente der
DNA-Bindung wie z. B. eine MYB DNA-binding domain repeat signature 1 (Prosite Accession
Nummer PS00037) MYB_1 mit der Konsensussequenz W-[ST]-x(2)-E-[DE]-x(2)-[LIV] oder
eine MYB DNA-binding domain repeat signature 2 (Prosite Accession Nummer PS00334)
MYB_2 mit der Konsensussequenz W-x(2)-[LI]-[SAG]-x(4,5)-R-x(8)-[YW]-x(3)-[LIVM]. Die
entsprechenden Datenbankeinträge stammen aus der PROSITE-Datenbank (Hofmann et al.: The
PROSITE database, its status in 1999. Nucleic Acids Res. 27: 215-219 (1999)) und können online
unter http:/ /www.expasy.ch/prosite/ abgefragt werden.
Der hier verwendete Ausdruck "funktionell verbunden" bedeutet, daß eine regulatorische
Sequenz wie ein Promotor die Expression eines Gens oder einer anderen funktionellen
Nukleinsäure steuert oder das eine Nukleinsäuresequenz von dem Promotor ausgehend
exprimiert wird.
Der hier verwendete Ausdruck "funktionelle Nukleinsäure" oder "funktionelle
Nukleinsäuresequenz" bedeutet eine Nukleinsäuresequenz, die nicht ein natürlicherweise
vorkommendes Genprodukt kodiert, z. B. ein Ribozym, eine Antisense-DNA oder RNA oder eine
aus verschiedenen Exons zusammengesetzte Sequenz.
Der hier verwendete Ausdruck "Vektor" bezeichnet natürlich vorkommende oder künstlich
erschaffene Konstrukte zur Aufnahme, Vermehrung, Expression oder Übertragung von
Nukleinsäuren, z. B. Plasmide, Phagemide, Cosmide, künstliche Chromosomen, Bakteriophagen,
Viren, Retroviren.
Der hier verwendete Ausdruck "transgene Pflanze" betrifft Pflanzen, die mittels rekombinanter
Gentechnik und/oder mikrobiologischen Verfahren und nicht mittels herkömmlicher
Züchtungsverfahren hergestellt wurden.
Der hier verwendete Ausdruck "Expressionssystem" bezeichnet jedwede Kombination von
Vektoren, Restriktionsenzymen, Transformationsmethoden, Zellextrakten, lebenden Zellen z. B.
prokaryontischen oder eukaryontischen Zellen oder Organismen mit dem Zweck der endogenen
oder exogenen Expression von Genen.
Es wurde anhand genetischer Veränderungen am Modellorganismus Arabidopsis thaliana
überraschenderweise gefunden, daß die Manipulation einer für einen MYB26-
Transkriptionsfaktor kodierenden endogenen Nukleinsäuresequenz zu einer strukturellen
Veränderung des pflanzlichen Pollensackgewebes führt. Aufgrund des Fehlens von funktionellen
Zellwandverdickungen kann der Pollensack den Pollen nicht mehr freisetzen, wodurch die
betroffenen Pflanzen in den männlichen Organen steril sind. Im engeren Sinne liegt keine echte
Sterilität, sondern lediglich eine Pseudosterilität bzw. eine maskierte Fruchtbarkeit vor. Diese
Pseudosterilität läßt sich jedoch durch manuelle Öffnung der Pollensäcke aufheben. Die
erfindungsgemäßen männlichen sterilen Pflanzen mit manipuliertem MYB26-Gen weisen eine
Strukturveränderung des Pollensackgewebes auf.
Die vorliegende Erfindung betrifft transgene Pflanzen mit maskierter Fruchtbarkeit, wobei die
maskierte Fruchtbarkeit durch eine gegenüber Wildtyppflanzen veränderte Expression der
Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren Homolog, oder durch die Veränderung
der biologischen Aktivität des durch die Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren
Homolog kodierten Genprodukts hervorgerufen wird. Ferner betrifft die vorliegende Erfindung
Verfahren zur Herstellung der erfindungsgemäßen transgenen Pflanzen.
Im Sinne der Erfindung bedeutet veränderte Expression hierbei, daß die Expression verstärkt,
verringert oder komplett ausgeschaltet sein kann.
Eine verstärkte Expression kann z. B. durch Kombination der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ
ID NO: 2 oder deren Homolog mit einem starken Promotor erreicht werden. Beispiele für
geeignete Promotoren, die zu einer verstärkten konstitutiven Expression des MYB26-Gens oder
dessen Homolog führen können, sind der CaMV 35S-Promotor aus dem Blumenkohl-Mosaik-
Virus sowie der Ubiquitin-Promotor aus Mais. Dazu kann entweder der endogene Promotor, der
die Expression der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren Homolog steuert,
durch den starken Promotor ersetzt werden, oder es kann eine zusätzliche Kopie der
Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren Homolog in das Genom integriert
werden, wobei die zusätzliche Kopie mit dem starken Promotor funktionell verbunden ist.
Eine verstärkte Expression kann ferner erreicht werden, indem mehr als eine zusätzliche Kopie
der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren Homolog, insbesondere zwei, drei,
vier, fünf oder mehr Kopien, in das Genom integriert werden. Diese Kopien können einzeln oder
zusammenhängend integriert werden. Ferner sind die Kopien mit einem Promotor funktionell
verbunden, der ein starker Promotor, ein endogener oder ein exogener, die Expression der
Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren Homolog steuernder, Promotor, oder ein
gewebespezifischer oder induzierbarer Promotor sein kann.
Konstrukte umfassend einen entsprechenden Promotor und eine mit diesem funktionell
verbundenen Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren Homolog können durch
übliche Methoden zur Transformation von Pflanzenzellen und nachfolgend zur Regeneration von
kompletten Pflanzen verwendet werden. Die Einbringung von Nukleinsäuresequenzen in
pflanzliche Organismen und Zellen ist Stand der Technik und, beispielsweise unter Verwendung
von T-DNA-Vektoren, leicht durchzuführen. Durch die verstärkte Expression der
Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren Homolog wird entsprechend ein
Vielfaches an durch diese Nukleinsäuresequenzen codierten Proteinen gebildet.
Eine verstärkte Genexpression der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren
Homolog kann ferner durch die Veränderung oder das Hinzufügen funktioneller Komponenten
des natürlicherweise die Expression des MYB26-Gens regulierenden Promotors erreicht werden.
Beispiele für entsprechende funktionelle Komponenten sind TATA-Box, CAAT-Box, GC-Box,
Enhancer oder Bindestellen für weitere Transkriptionsfaktoren. Geeignete Verfahren zur
Veränderung der Nukleinsäuresequenz des natürlicherweise die Expression des MYB26-Gens
regulierenden Promotors sind dem Fachmann bekannt. Bekannte Mutagenesetechniken sind
beispielsweise die Erzeugung von Deletionsmutanten oder die Einführung von Punktmutationen
durch "Site Directed Mutagenesis". Bevorzugte Verfahren zur Mutagenese bzw. zur
Veränderung der Expression sind weiterhin chimäre RNA/DNA-Oligonukleotide, homologe
Rekombination oder RNA-Interferenz (RNAi).
Transgene Pflanzen, die aufgrund einer verstärkten Genexpression oder durch zusätzliche
MYB26-Genkopien eine gegenüber dem Wildtyp gesteigerte Menge an MYB26-Transkripten
oder deren Homologen produzieren, besitzen eine schwer gestörte MYB26-Genbalance. Durch
den derart veränderten Gewebsstoffwechsel im Pollensack ist die Funktion der Antheren nicht
mehr sichergestellt, so daß es zu einer maskierten Fruchtbarkeit kommt.
Eine verringerte Expression der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren Homolog
kann durch die Veränderung oder das Entfernen wesentlicher funktioneller Komponenten des
natürlicherweise die Expression des MYB26-Gens regulierenden Promotors erreicht werden.
Beispiele für entsprechende Komponenten sind TATA-Box, CAAT-Box, GC-Box, Enhancer
oder Bindestellen für weitere Transkriptionsfaktoren. Geeignete Verfahren hierfür sind dem
Fachmann bekannt. Bekannte Mutagenesetechniken sind beispielsweise die Erzeugung von
Deletionsmutanten oder die Einführung von Punktmutationen durch "Site Directed
Mutagenesis". Bevorzugte Verfahren sind weiterhin chimäre RNA/DNA-Oligonukleotide,
homologe Rekombination oder RNA-Interferenz (RNAi). Transgene Pflanzen mit einer
verringerten MYB26-Genexpression produzieren nur noch geringe Mengen des für die Bildung
von sekundären Zellwandverdickungen in den Antheren notwendigen Transkripitonsfaktors.
Durch die Reduktion entsprechender Lignifizierungen können sich die Antheren nicht mehr
öffnen, so daß es zu einer maskierten Fruchtbarkeit kommt.
Eine vollständiges Ausschalten der Genexpression der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID
NO: 2 oder deren Homolog kann durch Einführen von neuen Start- oder Stop-Codons oder durch
Verschiebung des Leserasters erreicht werden. Infolge der veränderten Nukleinsäuresequenz
werden funktionell inaktive Proteine synthetisiert. Bevorzugte Verfahren für einen gezielten
Gen-Knockout des MYB26-Gens sind die Einführung von Punktmutationen durch "Site Directed
Mutagenesis". Bevorzugte Verfahren zur Mutagenese bzw. zur Veränderung der Expression
sind weiterhin chimäre RNA/DNA-Oligonukleotide, homologe Rekombination oder RNA-
Interferenz (RNAi). Transgene Pflanzen mit MYB26-Gen-Knockout besitzen Antheren ohne
Lignifizierungen der endothelialen Zellwand, wie sie für den Wildtyp charakteristisch sind. Nach
der Pollenreifung weichen die Antherenwände nicht zurück, so daß eine maskierte Fruchtbarkeit
die Folge ist.
Soll die Expression des MYB26-Gens verringert oder komplett ausgeschaltet werden, können
auch Antisense-Kopien der MYB26-Nukleinsäuresequenz sowie deren Fragmente, Homologe
oder Derivate stabil in das Genom integriert werden. Aufgrund der reversen Orientierung der
Antisense-Nukleinsäuresequenz relativ zum Promotor werden bei der Transkription Antisense-
RNA's gebildet, die mit den natürlicherweise gebildeten MYB26-mRNA's Duplexmoleküle
formen und somit die Translation verhindern. Die entsprechende Technik ist etabliert und z. B. in
Izant und Weintraub: Inhibition of thymidine kinase gene expression by antisense RNA: a
molecular approach to genetic Analysis. Cell 36, 1007-1015 (1984) nachzulesen. Dabei kann das
Antisense-Gen oder dessen Fragment, Homolog oder Derivat z. B. unter die Kontrolle eines
induzierbaren Promotors gestellt werden, wodurch die Produktion von Antisense-RNA reguliert
werden kann.
Eine Veränderung der biologischen Aktivität des durch die Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID
NO: 2 oder deren Homolog kodierten Genprodukts ist durch die Einführung von Modifikationen
in Genabschnitten, die für funktionelle Proteindomänen wie z. B. Rezeptorbindungsstellen,
Phosphorylierungsdomänen oder DNA-Bindestellen kodieren, zu erreichen. Insbesondere
Modifikationen in der MYB-DNA-Bindedomäne haben einen erheblichen Einfluß auf die
Eigenschaften des Proteins. Auf diese Weise können Proteine gebildet werden, die z. B. inaktiv
sind, eine veränderte Substratspezifität oder einen veränderten Km-Wert besitzen oder nicht
mehr den normalerweise in der Zelle vorliegenden Regulationsmechanismen über allosterische
Regulation oder kovalente Modifizierung unterliegen. Entsprechend veränderte MYB26-
Proteine sind nicht mehr in der Lage, die physiologischen Funktionen des MYB26-
Wildtypproteins auszuüben. Geeignete Verfahren zur Veränderung der Sequenz des MYB26-
Gens sind dem Fachmann bekannt. Bekannte Mutagenesetechniken sind beispielsweise die
Erzeugung von Deletionsmutanten oder die Einführung von Punktmutationen durch "Site
Directed Mutagenesis". Bevorzugte Verfahren zur Mutagenese bzw. zur Veränderung der
Expression sind weiterhin chimäre RNA/DNA-Oligonukleotide, homologe Rekombination oder
RNA-Interferenz (RNAi). Transgene Pflanzen mit derart modifizierten MYB26-Genen weisen
ein verändertes Pollensackgewebe auf, wodurch es zu einer maskierten Fruchtbarkeit kommt.
Bei den in das Genom eingeführten MYB26-Genen kann es sich um die Nukleinsäuresequenz
gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren Fragment oder Homolog oder Derivat handeln, beispielsweise
um jede beliebige MYB26-Sequenz aus anderen Pflanzen. Die verwendeten Nukleinsäuren
können natürlichen Ursprungs sein oder künstlich hergestellt worden sein. Die
Nukleinsäuresequenzen können sowohl in Sense- als auch in Antisense-Orientierung vorliegen.
Die mit der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren Fragment oder Homolog oder
Derivat funktional verbundene regulatorische DNA-Sequenz, z. B. ein Promotor, kann sowohl
die mit der Nukleinsäuresequenz endogen vorliegende regulatorische DNA-Sequenz gemäß SEQ
ID NO: 1 als auch jede andere regulatorische DNA-Sequenz sein. Die regulatorische DNA-
Sequenz kann sowohl ein endogener Promotor des zu transformierenden Organismus oder ein
exogener Promotor sein, der sich z. B. auf dem verwendeten Vektor befindet. Als Promotor ist
dabei grundsätzlich jede regulatorische Sequenz geeignet, die die Expression von Fremdgenen in
Organsimen, z. B. Pflanzen, steuern kann, z. B. der CaMV 35S-Promotor aus dem Blumenkohl-
Mosaik-Virus; vgl. Franck et al., Cell 21, 285-294 (1980) oder der Ubiquitin-Promotor aus Mais.
Die Expression der Nukleinsäuresequenzen kann auch durch einen chemisch induzierbaren
Promotor erreicht werden. Beispiele für chemisch induzierbare Promotoren sind der PRPI-
Promotor (Ward et al., Plant Molecular Biology 22, 361-366 (1993)), ein durch Salizylsäure
induzierbarer Promotor (WO 95/19443), ein durch Benzolsulfonamid induzierbarer Promotor
(EP-A 388186), ein durch Tetrazyklin induzierbarer Promotor (Gatz et al., Plant Journal 2, 397-404
(1992)), ein durch Abscisinsäure induzierbarer Promotor (EP-A 335528) oder ein durch
Ethanol oder Cyclohexanon induzierbarer Promotor (WO 93/21334). Es können auch
Promotoren verwendet werden, die z. B. in bestimmten Pflanzengeweben oder Pflanzenteilen
aktiv sind. Beispiele für entsprechende Promotoren sind der Phaseolin-Promotor (US 5504200),
der Isoflavon-Reduktase-Promotor (US 5750399), ein samenspezifischer Promotor, z. B. aus
Tabak (US 5824863) oder der ST-LSI Promotor aus Kartoffel (Stockhaus et al., (1989), EMBO J
8, 2445-2452).
Die verwendeten Nukleinsäuresequenzen können endogene oder exogene
Nukleinsäuresequenzen oder deren Fragmente oder Derivate oder Homologe sein. Endogen
bedeutet, daß die Nukleinsäuresequenz aus dem gleichen Organismus stammt, in den sie mit dem
erfindungsgemäßen Verfahren integriert wird, z. B. ein MYB26-Gen aus Arabidopsis thaliana
wird mit dem erfindungsgemäßen Verfahren in Arabidopsis thaliana integriert. Exogen bedeutet,
daß die Nukleinsäuresequenz aus einem anderen Organismus stammt, z. B. ein MYB26-Gen aus
Arabidopsis thaliana wird mit dem erfindungsgemäßen Verfahren in z. B. Weizen integriert.
Nach der stabilen Integration der transformierten Nukleinsäuresequenz liegen dann zwei oder
mehr MYB26-Gene im Genom vor, so daß eine gesteigerte Menge an entsprechenden
Genprodukten zu erwarten ist. In einer bevorzugten Ausführungsform weisen die
Nukleinsäuresequenzen gegenüber den natürlich vorkommenden Nukleinsäuresequenzen
Deletionen, Substitutionen, Additionen, Insertionen und/oder Inversionen auf.
Die vorliegende Erfindung betrifft ferner eine transformierte Zelle, insbesondere eine
transformierte Pflanzenzelle oder ein transformiertes Pflanzengewebe, in der eine regulatorische
Nukleinsäuresequenz, z. B. die erfindungsgemäße Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 1,
und die Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2, oder deren Fragmente oder Homologe oder
Derivate, stabil integriert sind. Ferner betrifft die vorliegende Erfindung eine mit der
regulatorischen Nukleinsäuresequenz, z. B. der erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenz gemäß
SEQ ID NO: 1, und der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2, oder deren Fragmenten oder
Homologen oder Derivaten, transformierte Pflanzenzelle oder ein transformiertes
Pflanzengewebe, die oder das zu einer samenproduzierenden Pflanze regenerierbar ist.
Insbesondere betrifft die vorliegende Erfindung eine Pflanze, die nach dem erfindungsgemäßen
Verfahren erhältlich ist. Ferner betrifft die vorliegende Erfindung Saatgut, das von Pflanzen
erhalten wird, die nach dem erfindungsgemäßen Verfahren erhalten werden. Die Erfindung
betrifft ferner die von den Pflanzen produzierten Früchte, Samen, Blätter, Sprosse und
Speicherorgane, z. B. Obst, Beeren, Trauben, Getreide und Kartoffeln.
In einer weiteren Ausführungsform wird eine Nukleinsäuresequenz verwendet, die aus
Nukleinsäurefragmenten verschiedener MYB26-Gene zusammengesetzt ist. Diese
zusammengesetzte Nukleinsäuresequenz kann ferner ebenfalls Modifikationen wie Deletionen,
Additionen oder Substitutionen enthalten. Die Verfahren zur Herstellung solcher
Nukleinsäuresequenzen sind Stand der Technik und vom Fachmann leicht durchzuführen.
Das vorliegende Erfindung läßt sich auf alle beliebigen pflanzlichen Organismen anwenden.
Insbesondere stellt die vorliegende Erfindung männliche sterile mono- und dikotyle Pflanzen
bereit. Besonders bevorzugte Pflanzen sind dabei Kulturpflanzen z. B. Soja, Baumwolle, Flachs,
Hanf, Sonnenblume, Kartoffel, Tabak, Tomate, Zucchini, Aubergine, Gurke, Sommerraps,
Winterraps, Alfalfa, Salat, Chicorée, Spargel, Schwarzwurzel, Erbse, Bohne, Linsen, Karotte,
Zwiebel, Lauch, Olive, Rettich, Radieschen, Rote Beete, Steckrübe, Kohlrabi, Zuckerrübe,
Futterrübe, Zuckerrohr, Spinat, Mangold, die verschiedenen Baum, Nuß- und Weinspezies, die
verschiedenen Kohlsorten wie Rosenkohl, Blumenkohl, Broccoli, Weißkohl, Rotkohl, Wirsing,
Chinakohl, ferner Getreide z. B. Gerste, Weizen, Roggen, Hafer, Mais, Reis, Futtergräser, ferner
Obstsorten z. B. Mango, Apfel, Birne, Pfirsich, Pflaume, Himbeere, Brombeere, Stachelbeere,
Erdbeere, Kirsche, Johannisbeere, Guave, Banane, Melone, Kürbis und Zitrusfrüchte z. B.
Zitrone, Apfelsine, Pampelmuse oder Mandarine. Die mit der Nukleinsäuresequenz
transformierten Pflanzen können unmodifizierte Wildtyppflanzen oder durch Züchtung erhaltene
Pflanzen oder modifizierte Pflanzen z. B. transgene Pflanzen sein. Das erfindungsgemäße
Verfahren kann ferner auch in Pflanzengeweben und in Pflanzenzellen, z. B. in einer Zellkultur
oder in Expressionssystemen, zur Veränderung der Expressionsmuster von MYB26-Genen oder
Fragmenten oder Derivaten oder Homologen dieser Gene verwendet werden.
Außerdem ist das erfindungsgemäße Verfahren zur temporären Sterilisation geeignet, indem der
MYB26-spezifische Promotor gegen einen induzierbaren Promotor ausgetauscht wird. Durch
eine gezielte Induktion der Fertilität kann z. B. auf besondere Umweltbedingungen reagiert
werden.
Die vorliegende Erfindung betrifft ferner Vektoren, umfassend eine Nukleinsäuresequenz gemäß
SEQ ID NO: 2, oder deren Fragment oder Derivat oder Homolog und eine regulatorische DNA-
Sequenz.
Geeignete Vektoren zur Aufnahme und Überführung der Nukleinsäuresequenzen können die
Vermehrung und/oder die Expression der aufgenommenen Nukleinsäuren in Einzellern wie z. B.
Escherichia coli oder Agrobacterium tumefaciens oder in Pflanzenzellen, Pflanzengeweben oder
Pflanzen gewährleisten. Entsprechende Vektoren können natürlich vorkommen oder aber
künstlich hergestellt sein. Die Vektoren können Selektionsmarker, Terminatorsequenzen,
Polylinker, Promotorelemente, Enhancer, Polyadenylierungsstellen und andere genetische
Elemente umfassen. Zur Klonierung geeignete Vektoren sind z. B. Plasmide der pBluescript-
Serie, Plasmide der pUC-Serie, Plasmide der pGEM-Reihe oder auf dem Bakteriophagen λ
basierende Vektoren. Ein zur Verwendung in Agrobacterium benutzter Plasmidvektor ist z. B.
pBin19; vgl. Bevan et al., (1984), Nucleic Acids Research 12, 8711-8721. Zur Transformation
und Expression in Pflanzen stellen auf dem Ti-Plasmid von Agrobacterium-Arten oder auf
Pflanzenviren aufbauende Konstrukte verwendungsfähige Vektoren dar und sind dem Fachmann
bekannt. Des weiteren werden bei bestimmten Transformationsmethoden wie z. B.
Mikroinjektion, Protoplasten-Transformation und Einschießen (microprojectile bombardment)
anstelle von Ti-Plasmiden auch obengenannte Klonierungsvektoren oder linearisierte DNA
eingesetzt. Eine zusammenfassende Beschreibung bislang benutzter Vektoren findet sich in
Guerineau und Mullineaux, Plant Transformation and Expression Vectors, in: Plant Molecular
Biology Labfax, herausgegeben von Croy, Oxford, BIOS Scientific Publishers, 121-148 (1993).
Einige der in handelsüblichen Transformations- und Expressionssystemen angewendeten
Transformationsmethoden zur Übertragung von Fremdgenen (Transformation) in das Genom
von Pflanzen werden im folgenden vorgestellt. Die Wahl der Methode zur Einbringung der
erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenz und der mit ihr funktional verbundenen für ein
Genprodukt kodierenden Nukleinsäuresequenzen in pflanzliche Zellen ist jedoch nicht auf diese
Liste beschränkt. Bislang eingesetzte Transformationsverfahren bei Pflanzen sind z. B. der
Gentransfer mittels Agrobacterium tumefaciens (z. B. durch Baden von Samen, Infloreszenzen
oder Blattstückchen in einer Agrobakterienlösung), mittels pflanzlicher Viren, durch
Elektroporation, durch Einschießen (microprojectile bombardment) oder Einspritzen
(Mikroinjektion) sowie die Inkubation von trockenen Embryonen in DNA-haltigen Flüssigkeiten
und die Transformation von Protoplasten unter Zuhilfenahme von Polyethylenglykol. Genauere
Beschreibungen der angesprochenen Verfahren finden sich z. B. in Jens et al., Techniques for
Gene Transfer, in: Transgenic Plants, Vol. 1, Engineering and Utilization, herausgegeben von
Kung und Wu, Academic Press 128-143 (1993).
Ein weiterer Aspekt der vorliegenden Erfindung betrifft die regulatorische Nukleinsäuresequenz
(im folgenden auch als Promotor bezeichnet), die natürlicherweise in Arabidopsis thaliana die
Expression des MYB26-Gens steuert. Diese erfindungsgemäße Nukleinsäuresequenz ist in SEQ
ID NO: 1 aufgeführt. Ferner betrifft die Erfindung Fragmente oder Homologe oder Derivate der
Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 1, die die biologische Funktion eines Promotors
besitzen, vorzugsweise eines in den männlichen Blütenorganen aktiven Promotors. Ferner
betrifft die Erfindung Nukleinsäuresequenzen, die mit der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID
NO: 1 hybridisieren und die biologische Form eines Promotors besitzen, vorzugsweise eines in
den männlichen Blütenorganen aktiven Promotors. Bevorzugt sind Nukleinsäuresequenzen, die
unter stringenten Bedingungen mit der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 1 hybridisieren
und die biologische Form eines Promotors besitzen, vorzugsweise eines in den männlichen
Blütenorganen aktiven Promotors.
Die erfindungsgemäße regulatorische Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 1 oder deren
Fragment oder Homolog oder Derivat eignet sich z. B. zur Identifizierung und Isolierung von
zum MYB26-Gen homologen Genen in anderen Organismen und/oder von zur SEQ ID NO: 1
verwandten regulatorischen Sequenzen in z. B. Arabidopsis thaliana oder anderen Organismen
mit Hilfe spezieller Hybridisierungs- oder Screening-Verfahren, z. B. als Sonde für das Screening
in DNA-Bibliotheken mit Hilfe der Hybridisierung an einzelsträngige Nukleinsäuren ähnlicher
Basenabfolge.
Die erfindungsgemäße regulatorische Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 1 oder deren
Fragment oder Homolog oder Derivat eignet sich ferner zur spezifischen Steuerung der
Expression von Genen oder anderen funktionellen Nukleinsäuren in Organismen oder Zellen,
infolge Ihrer Gewebespezifität bevorzugt zur spezifischen Steuerung von Genen in den
männlichen Blütenorganen. Nach der stabilen Integration der transformierten
Nukleinsäuresequenz liegen dann zwei oder mehr MYB26-Promotoren im Genom vor, so daß
die nachgeschalteten Nukleinsäuresequenzen eine diesen Promotoren entsprechende
Expressionsregulation aufweisen.
Die mit der erfindungsgemäßen regulatorischen Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 1 oder
deren Fragment oder Homolog oder Derivat funktionell verbundenen Gene oder andere
funktionellen Nukleinsäuren können endogene, exogene genomische DNA-Abschnitte oder
cDNAs oder deren Fragmente oder Derivate oder synthetische oder semisynthetische
Nukleinsäuren sein. Endogen bedeutet dabei, daß die Nukleinsäuresequenz aus dem gleichen
Organismus stammt, in den sie mit dem erfindungsgemäßen Verfahren integriert wird, z. B. eine
Nukleinsäuresequenz aus Arabidopsis thaliana wird mit dem erfindungsgemäßen Verfahren in
Arabidopsis thaliana integriert. Exogen bedeutet, daß die Nukleinsäuresequenz aus einem
anderen Organismus stammt, z. B. eine Nukleinsäuresequenz aus Arabidopsis thaliana wird mit
dem erfindungsgemäßen Verfahren in z. B. Weizen integriert. Die funktionell verbundenen Gene
oder andere funktionellen Nukleinsäuresequenzen können gegenüber den natürlich
vorkommenden Nukleinsäuresequenzen Deletionen, Substitutionen, Additionen, Insertionen
und/oder Inversionen aufweisen.
Beispielsweise kann die erfindungsgemäße Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 1 oder
deren Fragment oder Homolog oder Derivat für die Regulation der Expression des
natürlicherweise mit ihr verbundenen MYB26-Gens verwendet werden, so daß Pflanzen mit
gesteigerter, reduzierter oder vollkommen fehlender MYB26-Expression vorliegen, was zu einer
Beeinflussung des MYB26-Stoffwechselweges und demzufolge zu einer Strukturveränderung
des Pollensackgewebes sowie einer damit verbundenen maskierten Fruchtbarkeit führt.
Ferner eignet sich die erfindungsgemäße regulatorische Nukleinsäuresequenz auch für die
Regulation der Expression anderer Gensequenzen. Dabei kann der Promotor in Kombination mit
beliebigen Genen vorliegen, sowohl in einem Vektor als auch in transgenen Organismen.
Insbesondere ist der Promotor für die Regulation der Expression von Genen in den
Blütenorganen verwendbar, in besonderem Maße für die Regulation der Expression von Genen
in den Antheren, speziell im Pollensackgewebe. Dabei können prinzipiell Gene aus sämtlichen
pflanzlichen Stoffwechselwegen vom Promotor reguliert werden, z. B. Gene, kodierend für
Komponenten des Fettstoffwechsels (z. B. Acyl-CoA-Synthase, Acetyl-CoA-Carboxylase etc.),
Kohlenhydratstoffwechsels (z. B. Phosphofructokinase, Fructose-1,6-bisphosphatase, Glucose-6-
Phosphat-Dehydrogenase etc.), Aminosäurestoffwechsels (z. B. Aminotransferasen, Desaminasen
etc.), Hormonstoffwechsels (z. B. Gene für die Synthese von Auxinen, Gibberellinen,
Abscisinsäure etc.), Photosynthese (z. B. Rieske-Protein, psaE etc.), Zellarchitektur (z. B.
Tubulin, Aktin etc), Atmung (z. B. Cytochrom C, Cytochrom C-Oxidase etc.), Pathogenabwehr
(Flavonoide, Terpene etc.) usw.. Besonders geeignete zu regulierende Gene beeinflussen z. B.
Struktur, Größe oder Stoffwechsel des Pollensacks, so daß transgene Pflanzen mit veränderten
männlichen Blütenorganen, z. B. größeren, stabileren oder formveränderten Pollensäcken,
entstehen können. So können entsprechende Gene unter anderem am Aufbau von
Pollensackstrukturen beteiligt sein, z. B. an der Synthese oder dem Einbau von Lignin oder
Cellulose für sekundäre Zellwandverdickungen. Ein Beispiel für ein entsprechendes
antherenspezifisches Gen ist das vermutlich an der Ligninsynthese beteiligte CHSLK-Gen
(Genbank Accession Nummer Y14506), kodierend für eine putative Chalcon-Synthase. Auch
Gene für die Zellwandstrukturen modifizierende oder abbauende Enzyme sind hier zu nennen,
z. B. A6, ein Gen für eine antherenspezifische β-1,3-Glucanase (Genbank Accession Nummer
X62716). Weitere Beispiele für antherenspezifische Gene mit teilweise noch unbekannter
Funktion sind sf2 (Genbank Accession Nummer X62716), RA8 (Genbank Accession Nummer
AF042275) ATA20 (Genbank Accession Nummer AF037362) und MZm3-3 (Genbank
Accession Nummer AJ224355). Weiterhin besonders zur Regulation mit Hilfe des Promotors
geeignet sind Gene, die bei spezifischer Expression in den männlichen Blütenorganen ebenfalls
männliche Sterilität in Pflanzen erzeugen, z. B. infolge des Absterbens der betroffenen Zellen.
Für diesen Zweck können verschiedenste Proteine exprimiert werden, die den normalen
Stoffwechsel der Zelle erheblich stören. Besonders geeignet sind hierfür katabolische Enzyme
wie Nucleasen, Proteasen, Lipasen oder Glucanasen.
Die erfindungsgemäßen regulatorischen Nukleinsäuresequenzen gemäß SEQ ID NO: 1 oder
deren Fragmente oder Homologe oder Derivate können natürlichen Ursprungs sein oder
künstlich hergestellt worden sein. Die funktionell verbundenen Gene oder die anderen
funktionellen Nukleinsäuresequenzen können sowohl in Sense- als auch in Antisense-
Orientierung vorliegen.
Die erfindungsgemäße regulatorische Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 1 oder deren
Fragmente oder Homologe oder Derivate können in Vektoren, Expressionssystemen oder
Pflanzen, Pflanzengeweben oder Pflanzenzellen oder tierischen Zellen oder Mikroorganismen
zur Veränderung der Expressionsmuster verschiedenster Genprodukte verwendet werden. Die
Expression der Genprodukte kann dabei gegenüber Ihrer natürlichen Expression sowohl
verstärkt als auch verringert sein.
Die vorliegende Erfindung betrifft demzufolge ferner Vektoren, umfassend eine regulatorische
Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 1 oder deren Fragment oder Derivat oder Homolog.
Geeignete Vektoren zur Aufnahme und Überführung der Nukleinsäuresequenzen können die
Vermehrung und/oder die Expression der aufgenommenen Nukleinsäuren in Einzellern wie z. B.
Escherichia coli oder Agrobacterium tumefaciens oder in Pflanzenzellen, Pflanzengeweben oder
Pflanzen gewährleisten. Entsprechende Vektoren können natürlich vorkommen oder aber
künstlich hergestellt sein. Die Vektoren können Selektionsmarker, Terminatorsequenzen,
Polylinker, Promotorelemente, Enhancer, Polyadenylierungsstellen und andere genetische
Elemente umfassen. Zur Klonierung geeignete Vektoren sind z. B. Plasmide der pBluescript-
Serie, Plasmide der pUC-Serie, Plasmide der pGEM-Reihe oder auf dem Bakteriophagen λ
basierende Vektoren. Ein zur Verwendung in Agrobacterium benutzter Plasmidvektor ist z. B.
pBin19; vgl. Bevan et al., (1984), Nucleic Acids Research 12, 8711-8721. Zur Transformation
und Expression in Pflanzen stellen auf dem Ti-Plasmid von Agrobacterium-Arten oder auf
Pflanzenviren aufbauende Konstrukte verwendungsfähige Vektoren dar und sind dem Fachmann
bekannt. Des weiteren werden bei bestimmten Transformationsmethoden wie z. B.
Mikroinjektion, Protoplasten-Transformation und Einschießen (microprojectile bombardment)
anstelle von Ti-Plasmiden auch obengenannte Klonierungsvektoren oder linearisierte DNA
eingesetzt. Eine zusammenfassende Beschreibung bislang benutzter Vektoren findet sich in
Guerineau und Mullineaux, Plant Transformation and Expression Vectors, in: Plant Molecular
Biology Labfax, herausgegeben von Croy, Oxford, BIOS Scientific Publishers, 121-148 (1993).
Einige der in handelsüblichen Transformations- und Expressionssystemen angewendeten
Transformationsmethoden zur Übertragung von Fremdgenen (Transformation) in das Genom
von Pflanzen werden im folgenden vorgestellt. Die Wahl der Methode zur Einbringung der
erfindungsgemäßen Nukleinsäuresequenz und der mit ihr funktional verbundenen für ein
Genprodukt kodierenden Nukleinsäuresequenzen in pflanzliche Zellen ist jedoch nicht auf diese
Liste beschränkt. Bislang eingesetzte Transformationsverfahren bei Pflanzen sind z. B. der
Gentransfer mittels Agrobacterium tumefaciens (z. B. durch Baden von Samen, Infloreszenzen
oder Blattstückchen in einer Agrobakterienlösung), mittels pflanzlicher Viren, durch
Elektroporation, durch Einschießen (microprojectile bombardment) oder Einspritzen
(Mikroinjektion) sowie die Inkubation von trockenen Embryonen in DNA-haltigen Flüssigkeiten
und die Transformation von Protoplasten unter Zuhilfenahme von Polyethylenglykol. Genauere
Beschreibungen der angesprochenen Verfahren finden sich z. B. in Jens et al., Techniques for
Gene Transfer, in: Transgenic Plants, Vol. 1, Engineering and Utilization, herausgegeben von
Kung und Wu, Academic Press 128-143 (1993).
Die Erfindung betrifft ferner transgene Pflanzen mit einer stabil in das Genom integrierten
regulatorischen Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 1, oder deren Fragment oder Derivat
oder Homolog mit der biologischen Funktion eines Promotors, vorzugsweise eines in den
männlichen Blütenorganen aktiven Promotors, und einer mit dieser Nukleinsäuresequenz
funktionell verbundenen für ein Genprodukt codierenden oder einer anderen funktionellen
Nukleinsäuresequenz entsprechend den vorstehend aufgeführten und beschriebenen Beispielen
für solche codierenden oder anderen funktionellen Nukleinsäuresequenzen.
Ferner betrifft die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Herstellung einer Pflanze mit
veränderter Genexpression, umfassend das stabile Integrieren einer regulatorischen Sequenz
gemäß SEQ ID NO: 1 oder deren Fragment oder Homolog oder Derivat mit der biologischen
Funktion eines Promotors, vorzugsweise eines in den männlichen Blütenorganen aktiven
Promotors, und einer mit dieser Sequenz funktionell verbundenen für ein Genprodukt
codierenden oder einer anderen funktionellen Nukleinsäuresequenz in das Genom von
Pflanzenzellen oder Pflanzengeweben sowie Regeneration der erhaltenen Pflanzenzellen oder
Pflanzengeweben zu Pflanzen.
Das erfindungsgemäße Verfahren läßt sich auf alle beliebigen pflanzlichen Organismen
anwenden. Insbesondere ist das erfindungsgemäße Verfahren zur Veränderung der
Genexpression von mono- und dikotylen Pflanzen einsetzbar. Besonders bevorzugte Pflanzen
sind dabei Kulturpflanzen z. B. Soja, Baumwolle, Flachs, Hanf, Sonnenblume, Kartoffel, Tabak,
Tomate, Zucchini, Aubergine, Gurke, Sommerraps, Winterraps, Alfalfa, Salat, Chicoree,
Spargel, Schwarzwurzel, Erbse, Bohne, Linsen, Karotte, Zwiebel, Lauch, Olive, Rettich,
Radieschen, Rote Beete, Steckrübe, Kohlrabi, Zuckerrübe, Futterrübe, Zuckerrohr, Spinat,
Mangold, die verschiedenen Baum, Nuß- und Weinspezies, die verschiedenen Kohlsorten wie
Rosenkohl, Blumenkohl, Broccoli, Weißkohl, Rotkohl, Wirsing, Chinakohl, ferner Getreide z. B.
Gerste, Weizen, Roggen, Hafer, Mais, Reis, Futtergräser, ferner Obstsorten z. B. Mango, Apfel,
Birne, Pfirsich, Pflaume, Himbeere, Brombeere, Stachelbeere, Erdbeere, Kirsche, Johannisbeere,
Guave, Banane, Melone, Kürbis und Zitrusfrüchte z. B. Zitrone, Apfelsine, Pampelmuse oder
Mandarine. Die mit der Nukleinsäuresequenz transformierten Pflanzen können unmodifizierte
Wildtyppflanzen oder durch Züchtung erhaltene Pflanzen oder modifizierte Pflanzen z. B.
transgene Pflanzen sein. Das erfindungsgemäße Verfahren kann ferner auch in Pflanzengeweben
und in Pflanzenzellen, z. B. in einer Zellkultur oder in Expressionssystemen, zur Veränderung der
Expressionsmuster von MYB26-Genen oder Fragmenten oder Derivaten oder Homologen dieser
Gene verwendet werden.
Die Erfindung wird durch die nun folgenden Beispiele erläutert, ist aber nicht auf diese
beschränkt:
Die Erfindung wird durch die nun folgenden Beispiele erläutert, ist aber nicht auf diese
beschränkt:
Die im Rahmen der vorliegenden Erfindung durchgeführten Klonierungsschritte wie z. B.
Restriktionsspaltungen, Agarose-Gelelektrophorese, Reinigung von Nukleinsäurefragmenten,
Transfer von Nukleinsäuren auf Filtermaterialien, Transformation und Anzucht von
Bakterienzellen u. s. w. wurden wie bei Sambrook et al., Molecular Cloning, Cold Spring Harbour
Laboratory (1989), ISBN 0-87969-309-6, durchgeführt.
Die vorliegende Erfindung wurde durch das Screening einer mit dem Transposon En-1/Spm
(Pereira et al. EMBO Journal S. 835-841 (1986)) mutagenisierten Knockout-Population von
Pflanzen der Spezies Arabidopsis thaliana Ecotyp Columbia erhalten. Die Integration der
transposablen Elemente in Gene der Mutterpflanze führt häufig zum Ausfall der entsprechenden
Genfunktion und in vielen Fällen zu einem vom Wildtyp unterscheidbaren Erscheinungsbild der
betroffenen Pflanze. Zum Aufbau der Knockout-Population wurde das autonome En-1 Element
aus Zea mays mittels Agrobacterium tumefaciens in Arabidopsis übertragen. Das entsprechende
Transposon tagging System ist in Cardon et al., Plant Molecular Biology 23, 157-178 (1993)
beschrieben. Das verwendete Ti-Plasmid, pGV3850HPT::pkEn2, beinhaltete das komplette En-1
Element als Integrat. Zur Selektion von Hygromycin resistenten Transformanten trägt dieser
Vektor das HPT-Gen unter der Kontrolle des viralen CaMV 35S Promotors. Samen einer
Transformante mit einer einzelnen T-DNA-Insertion wurden auf Hygromycin-haltigem Medium
ausgesät. Samen der so entstandenen, gegen Hygromycin resistenten Pflanzen (T2-Generation)
wurden anschließend auf Kanamycin-haltigem Medium ausgesät. Bei den auf diese Weise
selektionierten Pflanzen (T3-Generation) war das En1-Element aus der T-DNA heraus
transponiert. Mittels PCR wurde diejenigen Pflanzen der T4-Generation identifiziert, die ein oder
mehrere transponierte En-1 Elemente, jedoch keine En-1 Elemente mehr in der T-DNA trugen.
Diese Pflanzen beeinhalteten jedoch noch die T-DNAs ohne integrierte En-1 Elemente. Zur
Erzeugung von En-1 positiven, T-DNA negativen Pflanzen wurde die T4-Generation mit dem
Wildtyp Arabidopis thaliana Ecotyp Columbia gekreuzt und En-1 positive, T-DNA negative
Pflanzen (S0-Generation) durch PCR identifiziert. Samen jeder dieser Pflanzen wurden über 6-12
Generationen (bis zur S6- bzw. S12-Generation) hinweg vermehrt, bis insgesamt 3000 Linien mit
insgesamt 15 000 unabhängigen En-1 Insertionen zur Verfügung standen (Wisman et al., Plant
Molecular Biology 37, 989-999 (1998), Baumann et al., Theoretical and Applied Genetics 97,
729-734 (1998)).
Zur Identifizierung von phänotypisch auffälligen Mutanten der entstandenen En-1 Population
wurden Familien der S7-Generation (mit jeweils 18 Individuen) per Auge nach Auffälligkeiten
durchmustert. Dabei konnte eine Linie (7AAB12) identifiziert werden, die für kleine, leere
Schoten segregierte. Mikroskopische Analysen der Blüte steriler Individuen ergaben, daß sich in
Mutanten die Pollensäcke nicht öffnen, wohingegen die Pollen normal erscheinen. Die Mutation
wurde daher mit andl (anther non dehiscence) bezeichnet. Bei allen sterilen Pflanzen traten
vereinzelt normale Schoten mit keimungsfähigen Samen auf. Diese stellen vermutlich
somatische Reversionsereignisse dar, was auf die Integration eines intakten Transposons als
Mutationsursache hindeutet.
Zur Klonierung des mutierten Gens wurde zunächst bestimmt, ob der mutante Phänotyp mit dem
homozygoten Zustand einer bestimmten Integration der Transposons gekoppelt ist. Für diesen
Zweck wurden 18 Schwesterpflanzen der En-Linie 7AAB12 analysiert. Sechs dieser Pflanzen
wiesen Sterilität auf, was auf eine rezessive Mutation hindeutet. Phänotypische Analyse von je
18 Nachkommen der fertilen Individuen ergab, daß sieben der 18 Ausgangspflanzen auch sterile
Nachkommen produzierten und somit heterozygot für and1 waren, wohingegen fünf Pflanzen
keine sterilen Nachkommen zeigten und somit homozygot für das Wildtypallel waren. Mittels
Southern Blot Analysen konnten in allen 18 Pflanzen durch Hybridisierung mit einer En-Sonde
mehrere Kopien des Transposons nachgewiesen werden, wobei sich eine Kopie in allen sterilen
Pflanzen sowie in den sieben für die Mutation heterozygoten fertilen Pflanzen fand nicht jedoch
in den übrigen fünf Pflanzen, die homozygot für das Wildtypallel waren. Fig. 4 zeigt eine
Southern Blot Analyse mit EcoRI gespaltener DNA von je einem Nachkommen von 14 der
ursprünglich 18 analysierten Pflanzen. Als Sonde diente das 5'-Ende des Transposons. In den
das Fehlen einer Integration in den Pflanzen, die homozygot das Wildtypallel tragen, ist deutlich
sichtbar.
Die flankierende DNA von acht verschiedenen En-Insertionen wurde durch "Transposon-
Insertion-Display" (TID), vgl. Yephremov und Saedler, The Plant Journal 21, 495-505, 2000,
gewonnen und in den pGemTeasy Vektor (Firma Promega) kloniert. Die Inserts der
resultierenden Plasmide wurden sequenziert. Sequenzvergleiche mit Sequenzdatenbanken
ergaben in fünf Fällen 100%ige Übereinstimmung mit genomischen Arabidopsis-Sequenzen. Die
anhand der Sequenz berechneten Längen von Restriktionsfragmenten wurden mit den in
Southern Blot Analysen erhaltenen Fragmenten verglichen. Eine Sequenz zeigt
Übereinstimmung der errechneten Fragmentlängen mit den experimentell bestimmten Längen
für die Bande, die gekoppelt mit der andl Mutation auftritt. Diese Sequenz des P1-Clons
MDC16 trägt im Bereich der Transposonintegrationsstelle ein offenes Leseraster, das 100%
Identität zur cDNA des putativen Transkriptionsfaktors AtMYB26 aufweist. Hybridisierungen
unter Verwendung der AtMYB26 cDNA (ohne MYB-Domäne) zeigten, daß alle sterilen
Pflanzen homozygot eine En-Insertion in AtMYB26 tragen, wohingegen alle Pflanzen, welche
die Mutation nicht tragen, auch keine Insertion in AtMYB26 aufweisen.
Um zu überprüfen, ob die Sterilität in den untersuchten Pflanzen tatsächlich durch die En-
Insertion in AtMYB26 hervorgerufen wird, wurden 12 Nachkommen einer sterilen Pflanze mit
fertilen Sektoren (7AAB-14-3) auf Verlust der En-Insertion in AtMYB26 untersucht. Alle 11
fertilen Nachkommen zeigten Verlust der En-Insertion in einer Kopie von AtMYB26,
wohingegen eine sterile Tochterpflanze noch immer homozygot die Insertion in AtMYB26
aufwies. Der Verlust der En-Insertion in mindestens einer Kopie von AtMYB26 führt somit zum
Verlust des mutanten Phänotyps.
Eine stabile Mutante wurde während Southern-Analysen von Nachkommen der Linie 7AAB12
gefunden. Einige Individuen zeigten trotz des Verlustes der Integration in AtMYB26 Sterilität.
In diesen Pflanzen ergab die Sequenzanalyse des PCR-amplifizerten 5'-Bereichs von MYB26,
daß drei Codons im Bereich der MYB-Domäne deletiert waren.
Die fünftälteste noch geschlossenen Knospe von Wildtyp und MYB26-Mutante wurde in 2%
Paraformaldehyd/0,25% Glutaraldehyd für 2 h fixiert und anschließend in Paraffin eingebettet.
Semidünnschnitte wurden mit Calcofluor White gefärbt, wie in Dawson et al., 1999 (New
Phytologist 144: 213-222) beschrieben.
Claims (21)
1. Transgene Pflanze mit maskierter Fruchtbarkeit, wobei die maskierte Fruchtbarkeit durch
eine veränderte Expression der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren
Homolog, oder durch die Veränderung der biologischen Aktivität des durch die
Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren Homolog kodierten Genprodukts
hervorgerufen wird.
2. Transgene Pflanze nach Anspruch 1, wobei die Expression verstärkt, verringert oder
komplett ausgeschaltet ist.
3. Transgene Pflanze nach einem der Ansprüche 1 oder 2 mit einer verstärkten Expression
der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren Homolog, umfassend eine zur
endogenen Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren Homolog zusätzlich
stabil in das Genom integrierten Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2, oder deren
Homolog, und einer mit dieser Nukleinsäuresequenz funktionell verbundenen
regulatorischen Nukleinsäuresequenz.
4. Transgene Pflanze nach Anspruch 3, umfassend mindestens zwei Kopien der
Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren Homolog.
5. Transgene Pflanze nach einem der Ansprüche 1 oder 2 mit einer verringerten oder
komplett ausgeschalteten Expression der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder
deren Homolog, umfassend die Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2, oder deren
Fragment oder Derivat oder Homolog, in Antisense-Orientierung.
6. Transgene Pflanze nach einem der Ansprüche 1 bis 5, wobei die regulatorische
Nukleinsäuresequenz ausgewählt ist aus der Gruppe der Promotoren CaMV 35S-Promotor,
Ubiquitin-Promotor, PRPI-Promotor, Phaseolin-Promotor, Isoflavon-Reduktase Promotor,
ST-LSI Promotor, durch Salizylsäure induzierbarer Promotor, durch Benzolsulfonamid
induzierbarer Promotor, durch Tetrazyklin induzierbarer Promotor, durch Abscisinsäure
induzierbarer Promotor, durch Ethanol oder Cyclohexanon induzierbarer Promotor,
Promotor nach einem der Ansprüche 8 bis 10, oder deren Fragment oder Derivat oder
Homolog mit der biologischen Funktion eines Promotors, oder ein samenspezifischer
Promotor aus Tabak.
7. Transgene Pflanze nach einem der Ansprüche 1 oder 2 mit einer komplett ausgeschalteten
Expression der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren Homolog,
umfassend Deletionen, Substitutionen, Additionen oder Inversionen.
8. Transgene Pflanze nach einem der Ansprüche 1 oder 2, wobei die Expression der
Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren Homolog durch Modifikation
funktioneller Komponenten der regulatorischen Nukleinsäuresequenz verändert wird.
9. Transgene Pflanze nach Anspruch 8 wobei die funktionellen Komponenten TATA-Box,
CAAT-Box, GC-Box, Enhancer oder Bindestellen für weitere Transkriptionsfaktoren
umfassen.
10. Transgene Pflanze nach Anspruch 1 mit veränderter biologischer Aktivität, umfassend
Modifikation der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 2 oder deren Homolog.
11. Transgene Pflanze nach Anspruch 10, wobei die Modifikationen Deletionen, Additionen
oder Substitutionen umfassen.
12. Nukleinsäuresequenz nach SEQ ID NO: 1.
13. Fragment oder Derivat der Nukleinsäuresequenz nach Anspruch 12 oder eine
Nukleinsäuresequenz, die mit der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 1 hybridisiert
und die biologische Aktivität eines für die männlichen Blütenorgane spezifischen
Promotors besitzt.
14. Nukleinsäuresequenz nach Anspruch 13, wobei die hybridisierende Nukleinsäuresequenz
unter stringenten Bedingungen mit der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 1
hybridisiert.
15. Transgene Pflanze mit einer stabil in das Genom integrierten regulatorischen
Nukleinsäuresequenz nach einem der Ansprüche 12 bis 14, und einer mit dieser
Nukleinsäuresequenz funktionell verbundenen für ein Genprodukt codierenden oder einer
anderen funktionellen Nukleinsäuresequenz.
16. Transgene Pflanze nach Anspruch 15, wobei für die für ein Genprodukt codierende oder
für die andere funktionelle Nukleinsäuresequenz eine endogene oder exogene
Nukleinsäuresequenz verwendet wird.
17. Verfahren zur Herstellung einer Pflanze nach einem der Ansprüche 1 bis 11, 15 oder 16,
umfassend das stabile Integrieren einer regulatorischen Nukleinsäuresequenz, insbesondere
einer Nukleinsäuresequenz nach einem der Ansprüche 12 bis 14, und einer mit dieser
Nukleinsäuresequenz funktionell verbundenen für ein Genprodukt codierenden oder einer
anderen funktionellen Nukleinsäuresequenz, insbesondere der Nukleinsäuresequenz gemäß
SEQ ID NO: 2, oder deren Fragment oder Derivat oder Homolog, in das Genom von
Pflanzenzellen oder Pflanzengeweben und Regeneration der erhaltenen Pflanzenzellen
oder Pflanzengeweben zu Pflanzen.
18. Transformierte Pflanzenzelle oder transformiertes Pflanzengewebe mit einer stabil in das
Genom integrierten regulatorischen Nukleinsäuresequenz, insbesondere einer
Nukleinsäuresequenz nach einem der Ansprüche 12 bis 14 und eine mit dieser
Nukleinsäuresequenz funktionell verbundenen für ein Genprodukt codierenden oder einer
anderen funktionellen Nukleinsäuresequenz, insbesondere der Nukleinsäuresequenz gemäß
SEQ ID NO: 2, oder deren Fragment oder Derivat oder Homolog.
19. Pflanzenzelle oder Pflanzengewebe nach Anspruch 18, regenerierbar zu einer
samenproduzierenden Pflanze.
20. Saatgut, erhalten von Pflanzen nach einem der Ansprüche 1 bis 11, 15 oder 16.
21. Vektor, umfassend eine Nukleinsäuresequenz nach einem der Ansprüche 12 bis 14.
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