CZ86798A3 - Fertilní transgenní rostlina pšenice, způsob její přípravy, buňky a semena této rostliny - Google Patents

Fertilní transgenní rostlina pšenice, způsob její přípravy, buňky a semena této rostliny Download PDF

Info

Publication number
CZ86798A3
CZ86798A3 CZ98867A CZ86798A CZ86798A3 CZ 86798 A3 CZ86798 A3 CZ 86798A3 CZ 98867 A CZ98867 A CZ 98867A CZ 86798 A CZ86798 A CZ 86798A CZ 86798 A3 CZ86798 A3 CZ 86798A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
plant
gene
wheat
fertile
plants
Prior art date
Application number
CZ98867A
Other languages
English (en)
Inventor
Ming Cheng
Joyce E. Fry
Yuechun Wan
Original Assignee
Monsanto Company
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=24677185&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=CZ86798(A3) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Monsanto Company filed Critical Monsanto Company
Publication of CZ86798A3 publication Critical patent/CZ86798A3/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/82Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
    • C12N15/8201Methods for introducing genetic material into plant cells, e.g. DNA, RNA, stable or transient incorporation, tissue culture methods adapted for transformation
    • C12N15/8202Methods for introducing genetic material into plant cells, e.g. DNA, RNA, stable or transient incorporation, tissue culture methods adapted for transformation by biological means, e.g. cell mediated or natural vector
    • C12N15/8205Agrobacterium mediated transformation

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Grain Derivatives (AREA)
  • Soy Sauces And Products Related Thereto (AREA)
  • Seasonings (AREA)

Description

(57) Anotace:
Jsou popsány postupy pro produkci stabilně transformované fertilní pšenice systémem transformujícím pšenici pomocí Agrobacterium. Vynález umožňuje transformaci různých explantátů, Jako jsou čerstvě izolované nebo pre-kultivované nezralé zárodky, zárodečný kalus a suspenze buněk. Také Jsou popsány způsoby pro získání transgenních rostlin po transformaci během krátké doby, pokud jsou explantáty regenerovatelné v době transformace. Proto Je frekvence somaklonálních variací spojených s dlouhodobou kultivací in vitro významně snížena. Frekvence transformace při použití tohoto systému je srovnatelná nebo vyšší než u publikovaných způsobů využívajících jiných systémů, jako je ostřelování mikročásticemi.
(13) Druh dokumentu: A3 (51) Int. Cl6:
C 12 N 15/82 A01H 5/00 • ·
Fertilní transgenní rostlina pšenice, způsob její přípravy a semena této rostliny
Oblast techniky
Předkládaný vynález se týká oblasti molekulární biologie. Přesněji, týká se způsobů pro inkorporaci cizorodé DNA do genomu jednoděložných rostlin, a zejména pšenice. Jsou zde poskytnuty reprodukovatelné systémy pro genetickou transformaci pšenice, způsoby pro selekci stabilních genetických transformantů ze suspenze transformovaných buněk a způsoby pro produkci fertilních rostlin z transformovaných buněk. Příkladné způsoby obsahují použití Agrobacteriumzprostředkované transformace pro zavedení nukleových kyselin do buněk, a selektovatelného a/vyšetřitelného markerového systému, například genů, které udělují resistenci (například na antibiotika, herbicidy atd.) nebo které obsahují jiný fenotypicky pozorovatelný znak. V jiném aspektu se vynález týká produkce stabilně transformovaných a fertilních rostlin pšenice, gamet a potomstva těchto rostlin.
Dosavadní stav techniky
Celý text US patentové přihlášky (USSN) 08/329742 podané 26.10.1994 je zde uveden jako odkaz ve své úplnosti. V průběhu poslední dekády se stal přenos genů z široké škály organismů do plodin možný za použití rekombinantní DNA technologie. Tato výhoda poskytla nesmírné možnosti pro zlepšení resistence rostlin vůči škůdcům, nemocem a herbicidům, a možnosti pro zlepšení biosyntetických procesů • · • ♦ · ♦ · pro změnu kvality produktů rostlin (Knutson a kol., 1992; Piorer a kol., 1992; Vasil a kol., 1992). Nicméně, dostupnost účinných metod transformace pro zavedení cizorodé DNA byla významnou barierou pro většinu jednoděložných druhů, včetně kukuřice, rýže, ovsu, ječmene a zejména pšenice.
Dostupné metody pro transformaci jednoděložných rostlin
Bylo zkoušeno mnoho metod pro transformaci jednoděložných rostlin, ale pouze několik metod vedlo ke stabilní transformaci. Pro většinu transgenních studií u jednoděložných rostlin jsou v současnosti využívány dvě metody: přímý přenos DNA do izolovaných protoplastů a přenos DNA za použití mikroprojektilů (Shimamoto a kol., 1989; Fromm a kol., 1990). Nověji byly také vyvinuty další metody pro použití u jednoděložných rostlin. Následuje podrobný popis metod, které vedly ke stabilně transformovaným a fertilním jednoděložným rostlinám, které jsou schopny přenosu svých genů na potomstvo podle Mendelovské dědičnosti.
Biolistika
Biolistika je nejčastěji používanou transformační metodou pro jednoděložné rostliny. V biolistické metodě jsou mikroprojektilové částice potaženy DNA a akcelerovány s použitím mechanického zařízení na rychlost dostatečnou pro penetraci stěny rostlinné buňky a jádra (mezinárodní patentová přihláška publikační č. WO 91/02071). Cizorodá DNA se inkorporuje do hostitelské DNA, což vede ke vzniku transformované buňky. Existuje mnoho variací biolistické metody (Sanford, 1990; Fromm a kol., 1990; Christou a kol.,
1988); Sauterr a kol., 1991). Tato metoda byla úspěšně použita pro produkci stabilně transformovaných jednoděložných rostlin včetně rýže, kukuřice, pšenice, ječmene a ovsu (Christou a kol., 1991; Gordon-Kamm a kol., 1990; Vasil a kol., 1992, 1993; Wan a kol., 1993; Sommers a kol., 1992).
Mikroprojektilová metoda přenosu DNA může využívat jako cílové tkáně kalů odvozených od nezralého zárodku nebo nezralých zárodků. Transgenní rostliny byly získány metodou ostřelování mikroprojektily u rýže, ovsu, ječmene a pšenice (Gordon-Kamm a kol.. 1990); Sommers a kol·, 1992; Wan a kol., 1994; Vasil a kol.. 1992).
Metoda ostřelování mikročásticemi obyčejně vyžaduje až 15 měsíců pro získání transgenních rostlin (Gordon-Kamm a kol., 1990; Vasil a kol., 1992). I novější vylepšení transformačních metod za použití nezralých zárodků jako cílové tkáně stále vyžadují 4 až 6 měsíců pro získání transgenních rostlin (Weeks a kol., 1993; Vasil a kol., 1992; Becker a kol·, 1994). Frekvence transformace za použití těchto metod se pohybuje v rozsahu od jedné transformace na 100 až 1000 ostřelovaných zárodků.
Elektroporace
Protoplastové metody byly ve velkém rozsahu použity u rýže, kde byla DNA dopravena do protoplastů pomocí liposomů, PEG a elektroporace. Ačkoliv byl v několika labotatořích získán velký počet transgenních rostlin (Shimamoto a kol., 1989; Datta a kol., 1990), vyžaduje protoplastová metoda ustanovení dlouhodobých embryogenních • · suspenzních kultur. Některé regeneranty z protoplastů jsou infertilní a fenotypicky abnormální, což je způsobeno dlouhodobou suspenzní kultivací (Davey a kol., 1991; Rhodes a kol., 1988). Tyto postupy byly zejména užitečné pro rýži a některé obilniny.
Transformace elektroporací vyžaduje aplikaci krátkodobých, vysokonapěbových elektrických polí pro vytvoření pórů v buněčné membráně, kterými je DNA vychytávána. Tato metoda byla použita pro produkci stabilně transformovaných jednoděložných rostlin (Pasazkowski a kol., 1985; Shillito a kol., 1985; Fromm a kol., 1986), zejména u rýže (Shimamoto a kol., 1992; Datta a kol., 1990, 1992; Hayakawa a kol., 1992).
Chemické ošetření protoplastů
Polyethylenglykolová (PEG) metoda je jednoduše chemické ošetření za přítomnosti protoplastů a DNA (Shillito a kol., 1985; Rhodes a kol., 1988). PEG usnadňuje vychytávání DNA.
Další metody
Pro transformaci jednoděložných rostlin bylo popsáno mnoho dalších metod. Metody popsané pro produkci fertilních transgenních jednoděložných rostlin zahrnují metodu pylové láčky (mezinárodní patentová přihláška publ. č. WO 93/18168; Zahir , 1993, Luo a Wu, 1988) a makro injekci DNA do květních odnoží (Du a kol., 1989; Picard a kol., 1988; De la Pěna a kol., 1987) a tkáňovou inkubaci semen v roztocích
DNA (Tofer a kol., 1989). Přímá injekce exogenní DNA do endospermu fertilizovaného rostlinného vajíčka při nástupu embryogenese byla popsána v mezinárodní patentové přihlášce publ. č. WO 94/00583. Kromě protoplastové a biolistické metody transformace nejsou další metody reprodukovatelné nebo předpověditelné. Obvykle je zde důkaz exprese, ale zřídkakdy je DNA přenesena na potomstvo.
Nedostatky v dosavadního stavu
Jednou významnou oblasti, kde byl v oboru učiněn malý pokrok, je adaptace bakteriemi zprostředkovaných metod transformace na jednoděložné rostliny. Ačkoli je široce využíván u dvojděložných rostlin, byl Agrobacteriumzprostředkovaný genový přenos při adaptaci na jednoděložné rostliny zklamáním. V literatuře existuje několik zpráv nárokujících Agrobacterium-transformaci u jednoděložných rostlin, jak tomu je například v mezinárodní patentové přihlášce publ. č. WO 94/0077. Konkrétně jsou to metody, které popsal Gould a kol., 1991; Mooney a kol., 1991; a Raineri a kol., 1990, které nárokují Agrobacerium zprostředkovanou transformaci kukuřice, rýže a pšenice. Existují určité důkazy genového přenosu u těchto metod, ale postrádají přesvědčivé důkazy pro účinnost přenosu, reprodukovatelnost a potvrzení genového přenosu (Potrykus, 1990) a chybí jim přenos na potomstvo, pokud jsou rostliny produkovány. V práci Goulda, kde byl presentován důkaz transformovaných rostlin, nebyla Mendelovská dědičnost genů.
De LaFonteyne a kol., (mezinárodní patentová přihláška • · • · publ. č. WO 92/06205) popisuje proces pro transformaci buněk kukuřice za použití kmenů A. tumefaciens v kombinaci s transposonem-zprostředkovanou metodou integrace, ale úspěšnost takových metod u jiných druhů nebyla prokázána.
Mooney a kol. (1991) produkoval transformované buňky ze zárodků pšenice kultivovaných společně s A. tumefaciens, ale frekvence transformace byla velmi nízká a často nereprodukovatelná. Chán a kol., (1993), se následně pokusil o produkci rotlin transgenní rýže za použití A. tumefaciens, ale jeho metoda nebyla obecně přijata, vzhledem k nedostatku dostatečných molekulárních a genetických důkazů pro produkci transgennich rostlin.
Novější pokusy provedené Hiei a kol., (1994) naznačily, že rostliny transgenní rýže mohou být získány po transformaci A. tumefaciens, ale že určité použité bakteriální kmeny a volba bakteriálních vektorů mohou být kritické pro úspěšné získání transgenů. Nedávná zpráva od Ishida a kol., (1996), naznačuje, že vysoce účinná transformace kukuřice byla možná společnou kultivací nezralých zárodků a A. tumefaciens. V obou zprávách týkajících se jak transformace rýže, tak kukuřice, byl pro dosažení vysoce účinné transformace použit super binární vektor pTOK233 obsahující virB, vire a virG geny. Nedávná zpráva od Saito a kol. (mezinárodní patentová přihláška publ. č. WO 95/06722) popisuje metodu pro transformaci jednoděložných rostlin za použití štítku nediferencovaných nezralých zárodků a s použitím A. tumefaciens.
I přes skutečnost, že pšenice je nejrozšířenější • ·
• · užitkovou obilovinou na světě, neexistují na neštěstí žádné přesvědčivé zprávy o použití metod transformace za použití Agrobacterium v přípravě rostlin stabilní, fertilní transgenní pšenice. Obdobně, nebyly vyvinuty žádné metody využívající nezralých zárodečných tkání nebo tkání kalu pro stabilní, vysokofrekvenční transformaci pšenice. Proto, v dosavadním stavu techniky chybí Agrobacteriumzprostředkovaná metoda pro přípravu fertilní, transgenní pšenice.
Podstata vynálezu
Předkládaný vynález se snaží překonat tyto a jiné nedostatky dosavadního oboru tím, že poskytuje nové způsoby pro stabilní transformaci jednoděložných rostlin, zejména pšenice, za použití Agrobacterium-zprostředkovaných metod.
Proto zvláštní předmět tohoto vynálezu poskytuje techniky, které umožní přípravu transgenní, fertilní pšenice, která bude preferovaně diploidní a která bude stabilně transformovaná díky zavedení jednoho nebo více požadovaných genů do genomu těchto druhů.
Předkládaný vynález se proto obecně týká způsobů pro produkci rostlin transgenní pšenice. Jak je zde použit, znamená termín transgenní rostliny rostliny, které inkorporovaly exogenní geny nebo DNA sekvence, včetně, ale bez omezení, genů nebo DNA sekvencí, které nejsou normálně přítomné, genů, které nejsou normálně transkribované a translatované (expriyované) v daném typu buněk, nebo jakýchkoliv jiných genů nebo DNA sekvencí, které je žádoucí zavést do netransformovaných rostlin, jako jsou geny, které mohou být normálně přítomny v netransformované rostlině, ale u kterých je žádoucí alterovaná exprese.
Předkládaný vynález může být použit na jakékoliv rostlinné druhy. Zejména je použitelný pro jednoděložné druhy. Konkrétně, je užitečný pro rostlinné druhy, které nemohou po dlouhou dobu zůstávat ve stadiu kalu bez ztráty schopnosti regenerace. Jedním z hlavních druhů použitelných v předkládaném vynálezu je pšenice. Preferované druhy zahrnují pšenici Triticum aestivum, T. turgidum a T. monococum, kdy zejména preferována je T. aestivum. Předkládaný vynález má, při aplikaci na pšenici, tu výhodu, že je nezávislý na genotypu. To znamená, že může být použit na jakýkoliv typ pšenice, včetně ozimné a jarní pšenice. Může být použit pro produkci rostlin transgenní pšenice z jarních kultivarů, jako je například, Bobwhite a Marshall PAVOT1. UC702 a Panewawa, stejně jako z ozimých kultivarů, jako je například HY368, Neeley, FL302, RH91, R332, R1269 a R585.
Předkládaný vynález je použit pro zavedení cizorodé DNA do regenerovatelné rostlinné tkáně. Jakýkoliv typ cizorodé DNA může být insertován do rostlinných druhů za použití metody podle předkládaného vynálezu. Obecně, cizorodá DNA může být definována tak, aby zahrnovala jakýkoliv typ DNA, která je insertována do rostlinné buňky z vnějšku rostlinné buňky. Způsoby pro inserci klonované DNA do vhodných plasmidových konstruktů a manipulace se vhodnými přenosovými kmeny Agrobacterium jsou obecně dobře známy.
Typ DNA obsažené v cizorodé DNA může zahrnovat DNA, • · · · • · · · · • · · ·· ··
které je již přítomná v rostlinné buňce, DNA z jiné rostliny, DNA z odlišného organismu nebo DNA vyrobenou externě, jako je například DNA obsahující sekvenci antimediátorové zprávy rostlinného genu, DNA sekvence kódující syntetické verze genu, ve které byla modifikována sekvence nukleotidů.
Ve výhodném provedení je použit Agrobacterium tumefaciens C58, anopaliní kmen, pro zprostředkování přenosu DNA do buňky pšenice. Další výhodné kmeny pro použití při provedení vynálezu zahrnují oktopiní kmeny, LBA4404 nebo agropiní kmeny, například EHA101 nebo EHA105.
Ve výhodných provedeních obsahuje cizorodá DNA DNA sekvence, které mohou být funkční v regenerovatelné rostlinné tkáni jako prostředek selekce. Taková DNA může zahrnovat gen, který bude funkční v regenerovatelné rostlinné tkáni a povede k produkci sloučeniny, která bude udělovat rostlinné tkáni resistenci na jinak toxické sloučeniny. Tyto geny jsou v oboru dobře známé a mohou udělovat resistenci na sloučeniny jako jsou antibiotika podobná kanamycinu (Dekeyser a kol., 1989) a herbicidy podobné glyfosatu (Della-Cioppa a kol., 1987) a bialafosu (Vasil a kol., 1992). V rozsahu předkládaného vynálezu mohou být použity jiné prostředky pro selekci. Takové geny zahrnují geny pro CP4, BAR, hygromycin, fosfotransferasy (NPT) a dihydrofolat reduktasu (dhfr).
V jednom provedení je popsán způsob pro produkci transgenní pšenice. Způsob obsahuje, obecně, ustanovení kultury z rostliny pšenice, která má být transformována, transformaci kultury za pomoci přípravku z Agrobacterium obsahujícího DNA, který obsahuje genetickou složku, která má
být zavedena do genomu pšenice, identifikaci nebo selekci transformované buněčné linie a z ní regeneraci transgenní pšenice.
V jiném významném provedení poskytuje vynález způsob pro produkci fertilní transgenní pšenice. Proces vyžaduje ustanovení regenerovatelné kultury z rostlin pšenice, která má být transformována, zavedení DNA přípravku obsahujícího genetickou složku, která má být zavedena do genomu uvedené pšenice, za pomoci Agrobacterium transformace, identifikaci nebo selekci transformované buněčné linie; a regeneraci fertilní rostliny transgenní pšenice z transformované buněčné linie. DNA je přenesena úplným pohlavním cyklem z transgenní rostliny na její potomstvo a potomstvo obsahuje stabilní, chromosomálně integrovanou kopii selektovatelného nebo vyšetřitelného značkovacího genu, který byl do rodiče transformován pomocí Agrobacterium-transformace.
V těchto provedeních zahrnuje DNA přípravek plasmid, konkrétně rekombinantní plasmid jako je pMON18365, který obsahuje nptll gen. Jiné uvažované geny zahrnují selektovatelné nebo vyšetřitelné značkovací geny, jako je například kterýkoliv ze zde popsaných, včetně GUS, zeleného fluorescentního proteinu (GFP) luciferasy (LUC), CP4 a nptll genů. Příklady transposonů a asociovaných genů resistence na antibiotika zahrnují transposony Tns (bia), Tn5 (nptll), Tn7 (dhfr), peniciliny, kanamycin (a neomycin, G418, bleomycin); methotrexat (a trimetoprim); chloramfenikol; kanamycin a tetracyklin.
Charakteristiky užitečné pro selektovatelné markéry
v rostlinách byly uvedeny ve zprávě o použití mikroorganismů (Advisory Committee on Novel Foods and Processes, červenec 1994). Tyto obsahují: i) přísnou selekci s minimálním množstvím netransformované tkáně; ii) velký počet nezávislých transformací bez signifikantní interference s regenerací; iii) použitelnost na velkém množství druhů; a iv) dostupnost testu pro vyšetřování tkání na přítomnost markéru. Jak bylo uvedeno výše, několik markérů antibiotické resistence splňuje tato kriteria, včetně resistence na kanamycin (nptll), hygromycin B (aphIV) a gentamycin (aacC3 a aacC4). Úplnější popis a seznam je uveden v tabulce 1.
- 12 Tabulka 1
Typ
Aminoglykosidová antibiotika
Příklady
1) fosfotransferasové enzymy (APH)
2) adenyltransferasové enzymy (AAD)
3) acetyltransferasy (AAC)
APH(3')II
APHIV
ADD(3'')
AAC(3)-I
AAC(3)-III
AAC(3)-IV
Chloramfenikol chloramfenikol acetyl transferasa (CAT) β-laktamová antibiotika β-laktamasa
TEM-1-β-laktamasa
2,4-diaminopteridon dihydrofolat reduktasa
Glykopeptidy
Pyridonkarboxylové kyseliny
DNA gyrasa
Rifamyciny resistentní RNA polymerasa Makrolidy methyláce 5OS podjednotky Tetracykliny vazba na S4 a S18 proteiny
70S podjednotky ribosomu
TN5-bleomycin resistence na kyselinu nalidixovou resistence na rifamycin resistence na erytromycin exkrece antibiotik z buňky
Pro rostliny byly vyvinuty alternativy k markérům
antibiotické resistence (Advisory Committee on Novel Foods and Processes, červenec 1994). Tyto zahrnují markéry tolerance kovů, kompletační systémy s auxotrofickými markéry, markéry katabolismu cukrů, markéry resistence na L-kanavanin a merkery pro resistenci na lysin a threonin a S-aminoethyl L-cystein. Příklady a další popis je uveden v tabulce 2.
Tabulka 2
Markér Příklad
Resistence na resistence na herbicidy může být použita
herbicidy jako selektovatelný markér u rostlin, např. tolerance na glyfosat a bromoynil
Tolerance kovů tolerance kovů, díky inserci savčího genu pro metalothionein
Resistence na lysin a threonin a na dva z enzymů biosyntetické dráhy aspartatové rodiny, která je regulována několika
s-aminoethyl L-cystein zpětnovazebnými smyčkami, byly vyvinuty jako selektovatělně markéry; aktivita aspartat-kinasy (AK) je inhibována milimolárními koncentracemi lysinu a threoninu (LT); aktivita dihydrodipikolin syntasy (DHPS) je inhibována lysinem a vede k sensitivitě na toxický analog lysinu, S-aminoethyl L-cystein (AEC); transgenní rostliny obsahující E.coli geny pro expresi AK a DHPS mohou být kultivovány na mediu obsahujícím LT a AEC.
Vyšetřovatělně markéry mohou být také použity u rostlin jako alternativy k markérům antibiotické resistence. Takové markéry jsou použity pro detekci přítomnosti nebo pro měření úrovně exprese přeneseného genu. Použití vyšetřovatelných markérů u rostlin pro identifikaci nebo sledování geneticky modifkovaných buněk dobře funguje pouze tehdy, pokud je účinnost modifikace buněk vysoká. Některé z často používaných vyšetřovatelných markérů zahrnují β-glukuronidasu (GUS), jejíž exprese je detekována modrým zabarvením při inkubaci tkáně s 5-brom-4-chlor-3-indolyl-l-glukuronidem; bakteriální luciferasu (LUX), jejíž exprese je detekována emisí světla; světluškovou luciferasu (LUC), jejíž exprese je detekována emisí světla po inkubaci s luciferinem; a β-galaktosidasu, jejíž exprese je detekována světle modrým zabarvením po barvení tkáně 5-brom-4-chlor-3-indolyl-β-D-galaktopyranosidem.
Preferované buňky pro provádění těchto metod zahrnují nezralé zárodky, tkáně kalu, nebo suspenze buněk, a preferovaným kmenem Agrobacterium pro transformaci je A. tumefaciens, kdy zejména jsou preferovány kmeny jako je C58 LBA4404 a EHA101.
Zárodky, které mají být transformovány, mohou být buď čerstvě izolovány z nezralých obilek, nebo mohou být izolovány z nezralých obilek a potom předošetřeny. Izolace nezralých zárodků z nezralých obilek může proběhnout ve stejný den jako inokulace, nebo alternativně, jeden, dva, pět nebo více dní před inokulací. Obdobně, tkáň kalu může být izolována z nezralého zárodku nebo z nezárodečných rostlinných buněk. Zárodek může být poškozen před transformací. Zárodek nebo obilka může být takový, který je 2 nebo více dní po vývoji od květních orgánů a pokud je použita suspenze buněk, pak to mohou být kultury individuálních buněk nebo, alternativně, shluků buněk.
DNA, která má být transformována, je výhodně rekombinantní plasmid, jak je zde popsáno, a může obsahovat jeden nebo více promotorů a/nebo 3' a/nebo 5' regionů operativně navázaných na jednotlivé genetické složky, které mají být transformovány. Zejména jsou preferovány promotory jako je CaMV 35 FMV, ubiquitin, rýžový aktin nebo zesílený CaMV 35S promotor.
Pokud je to žádoucí, může být rostlina odvozená ze transformace kultivována a může být získáno potomstvo. Toto potomstvo může být použito pro přípravu transgenních semen, nebo alternativně, může být kříženo s druhou rostlinou transgenní pšenice pro přípravu fertilní, transgenní pšenice, která obsahuje jeden nebo více požadovaných transgenů. Semena získaná z takového potomstva mohou být klíčena, kultivována a použita pro přípravu dalších generací transgenního potomstva, které budou obsahovat transgeny originálně transformované v rodičovské linii.
V jednom provedení předkládaného vynálezu je nezralý zárodek z rostliny použit jako výchozí materiál. Nezralé zárodky mohou být produkovány za použití známých metod popsaných v oboru. Například, produkce nezralých zárodků pšenice popsal Weeks a kol., (1993) a Vasil a kol., (1993).
• · • · « · · « · · • · · · · ·· • · ·.· ···· · • · · · · · ··· ·· ·· ··
V jiném výhodném provedení předkládaného vynálezu je regenerovatelnou rostlinou tkání kalus. Preferovaný kalus je embryogenní kalus. Embryogenní kalus je produkován z nezralého zárodku. Tento kalus může být produkován izolací a kultivací nezralého zárodku v živném mediu s uhlohydráty a regulátory rostlinného růstu. Ve výhodném provedení předkládaného vynálezu není při produkci embryogenního kalu z pšenice nezbytná eliminace osy zárodku, jak to popisuje Nehra a kol., (1994).
Medium produkující kalus je v oboru dobře známo a může být použito jakékoliv kultivační medium nebo způsob přípravy. Ve výhodném provedení, při přípravě pšeničného kalu, je nezralý zárodek pšenice kultivován po dobu 1 dne až 1 měsíce, výhodně po dobu 4 až 7 dní, v modifikovaném MS mediu obsahujícím okolo 40 g/1 maltosy a okolo 2 mg/1 2,4-D.
V jiném provedení může být 2,4-D nahrazen kombinací 0,5 mg/1
2,4-D a 2,2 mg/1 pichloramu (Chemservice). Medium je zahuštěno 2 g/1 GelriteR (Sigma Chemical, St. Louis, MO) nebo 4 g/1 agarosou s nízkou teplotou tání.
Po transformaci je regenerovatelná rostlinná tkáň umístěna do media, které je schopné produkovat výhonky z regenerovatělně rostlinné tkáně, kde medium dále obsahuje sloučeniny použité pro selekci regenerovatělně rostlinné tkáně obsahující selektovatelné DNA sekvence. Toto kontrastuje s předchozí praxí v oboru, kdy je regenerovatelná rostlinná tkáň obecně podrobena nejprve prodloužené době selekce před vystavením regenerovatelné tkáně mediu schopnému vyvolat tvorbu výhonků.
• · β> ·
- 17 Mediem použitým v tomto kroku může být jakékoliv medium, které umožňuje tvorbu výhonků z regenerovatelné tkáně. V jednom provedení je sloučenina tvořící výhonky přidána do media. Tyto sloučeniny tvořící výhonky jsou dobře známy v oboru (Mursahige a Skoog, 1962; Kasha a kol., 1990). Takové sloučeniny zahrnují slabé regulátory rostlinného růstu a patří sem IAA, IBA a BA v nízkých koncentracích (Becker a kol., 1994; Vasil a kol., 1992). V jiném provedení vynálezu může být pro indukci tvorby výhonků použito medium bez regulátorů rostlinného růstu (Weeks a kol., 1993).
Ve výhodném provedeni, když má být regenerován zárodečný kalus pšenice, obsahuje medium modifikované MS medium s 0,2 mg/1 2,4-D (Murashige a Skoog, 1962; Wan a Lemaux, 1994).
Regenerovatelná rostlinná tkáň je obyčejně umístěna do media podle předkládaného vynálezu po transformaci tak rychle, jak je to možné. Obecně může být tato doba v rozmezí od zhruba 1 dne asi do tří týdnů, ale výhodně je asi od 1 dne do asi 2 týdnů, lépe od asi dvou do přibližně tří týdnů.
Nejvýhodnější je přenesení tkáně do tohoto media za asi jeden až asi dva týdny po transformaci. Ve většině případů proběhne přenos mezi asi 5 a přibližně 11 dnem.
Sloučeninou použitou pro selekci regenerovatelné rostlinné tkáně obsahující selektovatelné DNA sekvence může být jakákoliv z mnoha známých selekčních sloučenin, jako jsou antibiotika a herbicidy. Mezi výhodné sloučeniny patří geneticin (G-418) (aminoglykosid) (Nehra a kol., 1994); glyfosat (Della-Cioppa a kol., 1987) a bialafos (Vasil
- 18 a kol., 1992; Weeks a kol., 1993).
Dostupnost alternativních selekčních činidel je významným požadavkem pro komerční aplikace zemědělské biotechnologie. Použití kanamycinu bylo méně úspěšné pro obilniny vzhledem k vysoké endogenní hladině tolerance (Dekeyser a kol., 1989). Bialafos byl hojně používán jako selekční činidlo při transformaci užitkových obilovin (Weeks a kol., 1993; Vasil a kol., 1993; Becker a kol., 1994; Nehra a kol., 1994; Wan a Lemaux, 1994). Nicméně, potenciálně může být výlučné používání genů kódujících resistenci na bialafos jako selektovatelných markérů ve všech studiích transformace katastrofální. Jsou potřeba jiné selektovatelné markéry a výsledky ukazují, že je zde popsán rychlý regenerační systém dobře fungující s různými selekčními činidly.
Po vytvoření výhonků jsou výhonky přeneseny do druhého media schopného vyvolat tvorbu kořenů z uvedených výhonků. Toto medium může dále obsahovat sloučeniny použité pro selekci regenerovatelné tkáně obsahující selektovatelné DNA sekvence. Přenos do tohoto media proběhne tehdy, když se vyvinou dostatečné výhonky, což je v oboru obecně známo. U pšenice toto proběhne během 25 až 40 dnů po transformaci.
Medium schopné vyvolat tvorbu kořenů může být jakékoliv medium produkující kořeny. Tato media jsou v oboru dobře známa (Weeks a kol., 1993; Vasil a kol., 1992). Jedním z výhodných medií produkujících kořeny je modifikované MS medium bez jakéhokoliv regulátoru rostlinného růstu (Murashige a Skoog, 1962; Zhou a kol., 1992).
···· · · · · · · · · ···· · · · · · ·· • ·· · · · · · · ···· · • « · · ··· 9 · · • · ·· ····· ·· · ·
- 19 Po vytvoření kořenů mohou být rostliny přeneseny do půdy a kultivovány pro produkci semen podle metod v oboru známých.
Předkládaný vynález popisuje reprodukovatelnou účinnou metodu používající Agrobacterium pro transformaci jednoděložných rostlin, zejména pšenice a kukuřice, za využití běžného binárního vektoru používaného pro transformaci dvouděložných rostlin. Vynález poskytuje rychlý a účinný transformační a regenerační systém využívající Agrobacterium, který je zejména použitelný pro transformaci pšenice a kukuřice. Rostliny regenerované z tohoto systému jsou fenotypově normální a plně fertilní. Transgeny jsou přeneseny do R1 potomstva podle Mendelovské dědičnosti.
Ve výhodném provedení poskytuje vynález rychlý a účinný transformační systém pro pšenici, který využívá čerstvě izolovaných nezralých zárodků, předem kultivovaných zárodků a proliferujících kalů z nezralých zárodků. Nový transformační systém vyžaduje pro získání transgenních rostlin dobu okolo 3 měsíců a frekvence transformace ve zde popsaných nových způsobech jsou reprodukovatělně 0,3 až 4,3%.
V obecném smyslu poskytuje předkládaný vynález způsob pro produkci transformovaných jednoděložných rostlin, které obsahují exogenní DNA. Takový způsob obecně vyžaduje izolaci regenerovatelné rostlinné tkáně z rostliny, přenos cizorodé DNA do regenerovatelné rostlinné tkáně 1- až 3-hodinovou inokulací regenerovatelné tkáně Agrobacteriem a společnou kultivaci rostlinné tkáně s Agrobacterium po dobu 2 až 3 dní. Typicky obsahuje cizorodá DNA, která má být insertována do • ·
- 20 rostlinného genomu, DNA sekvenci selektovatelného markéru, kde tato sekvence může působit v regenerovatelné tkáni jako prostředek selekce. Buňky jsou potom kultivovány po dobu asi 2 až přibližně 5 dní v medium pro kalus obsahujícím antibiotika pro usmrcení Agrobacterium a asi o 1 až 2 týdny později je regenerovatelná tkáň umístěna do media schopného vyvolat tvorbu výhonků ze tkáně. Toto medium dále obsahuje sloučeninu použitou pro selekci regenerovatelné tkáně obsahující selektovatelné DNA sekvence; a po vytvoření alespoň jednoho výhonku je výhonek obvykle přenesen do druhého media schopného vyvolat tvorbu kořenů u výhonku.
Exogenní geny
Jeden aspekt vynálezu se obecně týká transgenních rostlin, které exprivují jeden nebo více exogenních genů transformovaných pomocí A. tumefaciens. Jak je zde použit, označuje termín transgenní rostliny rostliny, které inkorporovaly DNA sekvence, včetně, ale bez omezení, genů, které pravděpodobně nejsou za normálního stavu přítomny, DNA sekvencí, které nejsou normálně transkribovány do RNA nebo translatovány na protein (exprivovány) nebo jakýchkoliv jiných genů nebo DNA sekvencí, které mají být zavedeny do netransformovaných rostlin, jako jsou geny, které mohou být normálně přítomny v netransformovaných rostlinách, ale které mají být geneticky zpracované nebo mají mít pozměněnou expresi. Předpokládá se, že v některých případech bude genom transgenních rostlin podle předkládaného vynálezu zvětšen díky stabilnímu vložení transgenu. Nicméně, v jiných případech bude vložený gen nahrazovat endogenní sekvenci.
« · • · * · • · · • · · ·
- 21 Příklady genů, které mohou být vloženy, zahrnují například DNA sekvence nebo geny z jiných druhů, nebo rovněž geny nebo sekvence, které pocházejí ze stejného druhu nebo jsou přítomny ve stejném druhu, ale jsou do přijímajících buněk vloženy metodami genetického inženýrství, a ne technikami klasické reprodukce nebo křížení. Nicméně, termín exogenní je také míněn tak, aby označoval geny, které nejsou normálně přítomné v buňkách, které mají být transformovány, nebo jednoduše asi nejsou přítomny ve formě, struktuře atd., ve které se nalézají ve transformujícím DNA segmentu nebo genu, nebo geny, které jsou stále normálně přítomny ve větším množství, než je žádoucí, např. které jsou nadměrně exprivovány. Proto termín exogenní gen nebo DNA označuje jakýkoliv gen nebo DNA segment, který je vložen do recipientní buňky, bez ohledu na to, že podobný gen může již být v takové buňce přítomen.
Počátečním krokem v produkci fertilních trnsgenních rostlin je získání DNA přípravku, např. vektorů, plasmidů, lineárních fragmentů DNA a podobně, jejichž složka má být přenesena do recipientních buněk jednoděložné rostliny. DNA segmenty pro použití při transformaci takových buněk budou, samozřejmě, obecně obsahovat gen nebo geny, které mají být vloženy do buněk. Tyto geny mohou dále obsahovat struktury jako jsou promotory, enhancery, polylinkery nebo i regulační geny, jak je to žádoucí.
Vektory, plasmidy, kosmidy, YAC (kvasinkové arteficiální chromosomy) a DNA segmenty pro použití při transformaci takových buněk budou, amozřejmě, obecně obsahovat cDNA, gen nebo genovou sekvenci, která má být • ·
transformována do jednoděložných rostlin. Tyto DNA konstrukty mohou dále obsahovat struktury jako jsou promotory, enhancery, polylinkery nebo i regulační geny, pokud je to žádoucí. DNA segment nebo gen může kodovat buď nativní nebo modifikovaný protein nebo polypeptid, který bude exprivován ve výsledných rekombinantních buňkách, a/nebo který bude způsobovat vylepšený fenotyp regenerované rostliny.
Pro zlepšení schopnosti identifikace transformantů může být žádoucí použití selektovatelného nebo vyšetřovatelného markerového genu spolu s požadovaným exprivovatelným genem. Markerové geny kódují fenotyp, který umožňuje odlišení buněk, které exprivují markerový gen od buněk, které nemají markér. Takové geny mohou kodovat bud’ selektovatelný nebo vyšetřitelný markér, v závislosti na tom, zda markér uděluje rys, který je možno selektovat chemickými prostředky, t.j. použitím selektivního činidla (například herbicidu, antibiotika a podobně). V oboru je známo mnoho příkladů vhodných markerových genů a mohou být využity při provádění předkládaného vynálezu.
Selektovatelné markéry, které mohou být použity v předkládaném vynálezu, zahrnuji, ale nejsou omezeny na, nptll gen; bar gen, který kóduje resistenci na bialafos; mutantní gen pro EPSP syntasu, který kóduje resistenci na glyfosat; gen pro nitrilasu, který udílí resistenci na bromoxynil; mutantní gen pro acetolaktat syntasu (ALS), který udílí resistenci na imidazolinon nebo na sulfonylmočovinu; nebo DHFR gen pro resistenci na methotrexat.
Příklady vyšetřovatelných markérů zahrnují β-glukoro- 23 -
nidasu nebo uidA gen (GUS), který kóduje enzym, pro který jsou známé různé chromogenní substráty; gen pro β-laktamasu, gen pro luciferasu, xylE gen, gen pro α-amylasu; gen pro tyrosinasu, α-galaktosidasu, nebo jakýkoliv jiný vhodný vyšetřovatelný markér, který je odborníkovi v oboru znám.
Ve světle tohoto zjištění bude odborníkovi v oboru zřejmé, že může být použito mnoha jiných možných selektovatelných a/nebo vyšetřitelných markerových genů. Proto je předešlá diskuse pouze ilustrativní a ne vyčerpávající. Ačkoliv je předkládané zjištění podrobně doložen v příkladech za použití nptll a GUS genů, spadají použitelné techniky pro tvorbu a použití jakýchkoliv jiných vyšetřitelných nebo selektovatelných markerových genů z hlediska předkládaného vynálezu do praxe v oboru známé.
Volba jednotlivých DNA segmentů, které mají být přeneseny do buněk příjemce, bude záviset na účelu transformace. Jedním z hlavních cílů transformace plodin je přidání nějakých komerčně žádoucích, agronomický významných rysů rostlině. Takové rysy zahrnují, ale nejsou omezeny na, resistenci na herbicidy, zvýšený výnos, resistenci vůči hmyzu a nemocem, fyzikální podobu, obsah a vzhled potravy, atd. Například, může být žádoucí inkorporace jednoho nebo více genů kódujících insekticidní geny, kde tyto geny zahrnují gen pro krystalický toxin Bacillus thuringiensis, který způsobuje resistenci na hmyz řádu Lepidopteran a Coleopteran. Takové geny jsou odborníkům v oboru dobře známé a předpokládá se, že budou užitečné v provádění způsobů transformace zde popsaných pro jednoděložné rostliny jako je pšenice.
• · · ·
* · • · • · · • · · · ·· · · · • · ·
Transgenní rostliny
Významným aspektem předkládaného vynálezu jsou přípravky obsahující rostliny fertilní kultivované transgenní pšenice. U těchto rostlin byl genom zvětšen vložením předem vybrané genetické složky do genomu, za vzniku transgenní rostliny. Transgen obyčejně obsahuje genetickou složku, která obsahuje jeden nebo více exogenních genů umístěných pod kontrolou jednoho nebo více předem vybraných genetických kontrolních elementů nebo promotorů. Takovou rostlinu je možné připravit za použití procesů zde , které
zahrnují přípravu DNA přípravku in vitro, kde tento přípravek obsahuje genetickou složku, která má být vložena do genomu pšenice a potom vložení DNA do buňky pšenice za použití transformace využívající Agrobacterium. Genetická složka obvykle obsahuje jeden nebo více selektovatelných nebo vyšetřitelných genů poslaných výše. Po transformaci jsou z buněk, které dostaly exogenní gen(y), regenerovány rostliny pšenice a mohou být získány vzniklé fertilní, transgenní rostliny, které mají zvětšené genomy díky stabilnímu vložení genetické složky.
V tomto procesu mohou být buňky, které jsou transformovány dediferencovány, nebo mohou být dále dediferencovány a kultivovány v dediferencovaném stavu až do doby, než proběhne diferenciace a dozrání rostlinek. Ve výhodných provedeních zahrnují tyto recipientově buňky nezralé zárodky embrya, tkáně kalu, nebo alternativně, suspenze buněk. Zárodky mohou být čerstvě izolovány z nezralých obilek nebo, alternativně, izolovány z nezralých obilek a potom ošetřena před inokulací. Nezralý zárodek může být izolován z nezralých • ·
- 25 obilek v den inokulace nebo, alternativně, jeden nebo dva, nebo 5 nebo 10 i více dní před inokulací. Zárodkem může být zárodek, který je 1 nebo 2 nebo více dní po vývoji z květních orgánů nebo, alternativně, obilka může být 1 nebo 2 nebo i více dní po vývoji z květních orgánů.
Pokud je tkáň kalu použita jako recipientově buňka, tak může být kalus izolován buď z nezralého zárodku, nebo z neembryonálních buněk. V jistých aspektech může být žádoucí poškození zárodku před transformací, což může navodit účinnost transformace.
Také jsou zde popsány rostliny fertilní, transgenní pšenice, jejíž genetická výbava byla pozměněna přidáním DNA přípravku obsahujícího předem vybraný funkční genetický element, který obsahuje transgen vybraný ze skupiny skládající se z nptll genu, bia genu, nptl, dhfr, aphIV, aacC3, aacC4 genu a GUS genu. Zejména výhodné jsou geny kódující resistenci na glyfosat nebo přijatelný markerový gen jako je nptll gen.
Recipientově buňky mohou být zároveň transformovány více než jedním exogenním genem a za takových okoloností mohou být exogenní geny umístěny na jediném DNA segmentu nebo, alternativně, na jednom nebo více plasmidech, každý pod kontrolou jiného kontrolního elementu.
Zejména výhodnými plasmidy jsou rekombinantní plasmidy jako je pMON18365, pMON32614, pMON30053, pMON25457, pMON30052 a pMON19450. Geny mohou být umístěny pod kontrolou promotoru jako je CaMV 35S, ubiquitin, rýžový aktin nebo
posílený CaMV 35S promotor. Pokud je to žádoucí, mohou DNA segmenty, které mají být transformovány, obsahovat další 5' a/nebo 3' regiony operativně navázané na geny.
Transgenní potomstvo, semena a odvozené buněčné linie
Další důležité aspekty vynálezu zahrnují potomstvo transgenních rostlin připravených popsanými metodami, stejně jako buňky připravené z takového potomstva a semena získaná z takového potomstva.
Popis obrázků na připojených výkresech
Obrázky tvoří část tohoto popisu a jsou zde uvedeny pro další demonstraci jistých aspektů předkládaného vynálezu. Vynález může být lépe pochopen odkazem na tyto obrázky spolu s podrobným popisem specifických provedení zde uvedeným.
Obrázek 1 znázorňuje strukturu pMON18365, který je příkladem plasmidu neseného v Agrobacterium, který byl použit v tomto vynálezu. V T-DNA regionu jsou GUS i nptll geny řízeny posíleným 35S promotorem a intronovým kukuřičným HSP70 intronem. GUS gen také obsahuje dva introny.
Obrázek 2 znázorňuje strukturu pMON18364, který byl použit při konstrukci pMON18365.
Obrázek 3 znázorňuje strukturu pMON18342, který byl použit při konstrukci pMON18365.
Obrázek 4 znázorňuje strukturu pMON19476, který byl • ·
použit při konstrukci pMON18365.
Obrázek 5 znázorňuje strukturu pMON18361, který byl použit při konstrukci pMON18365.
Obrázek 6 znázorňuje strukturu pMON32614.
Obrázek 7 znázorňuje strukturu pMON25457.
Obrázek 8 znázorňuje strukturu pMON30053.
Obrázek 9 znázorňuje strukturu pMON30052.
Obrázek 10 znázorňuje strukturu pMON19450.
Obrázek 11 znázorňuje obecný protokol pro transformaci nezralých zárodků za použití metod zde popsaných.
Na obrázku 11 i na dalších místech popisu d znamená den, t znamená týden.
Obrázek 12 znázorňuje obecný protokol pro transformaci suspenze buněk za použití metod zde popsaných.
Dále se popisují ilustrativní provedení vynálezu.
Některé výhody vynálezu
Odborník v oboru ocení mnoho výhod způsobů a přípravků poskytnutých v předkládaném vynálezu. Několik takových výhod může být shrnuto následovně:
• ··
- 28 Dosažení účinné transformace za použití běžného binárního vektoru
Běžný binární vektor pMON18365 byl použit ve všech pokusech v tomto vynálezu. Ve většině pokusů byla dosažena účinná transformace. Tato skutečnost naznačuje, že super binární vektor nemusí být nezbytný, ačkoliv bylo ukázáno, že je zásadní pro dosažení vysokého stupně transformace kukuřice (Ishida a kol., 1996).
Transformace za použití různých explantátů
Různé typy explantátů - nezralé zárodky, embryogenní kalus a suspenze buněk - byly použity jako explantáty pro infekci Agrobacterium v tomto vynálezu. Stabilní transformanty (kolonie ze suspenze buněk a rostliny z embryí a embryogenního kalu) byly generovány ze všech těchto explantátů, což činí tento vynález lepším než jsou jiné publikované transformační systémy využívající Agrobacterium, jako je systém pro kukuřici (Ishida a kol., 1996), ve kterém mohou být pro produkci transgenních rostlin použita pouze čerstvě izolované nezralé zárodky.
Účinná a rychlá produkce stabilních transformantů
Vysoce účinná exprese GUS genu byla pozorována u explantátů krátce po infekci Agrobacterium jak je ilustrováno v tabulkách 4 a 7. V případě, že byla inokulována suspenze buněk, mohlo být získáno přibližně 200 stabilních transformantů (kolonií) z 1 ml buněk po 40 až 60 dnech
• · ·
- 29 selekce na mediu obsahujících selektivní činidlo, jako je G418. Transformované rostlinky mohly být vyvinuty z nezralých zárodků a části kalu v mediu obsahujícím G-418 několik týdnů po inokulaci. Pouze 3 měsíce od infekce Agrobacterium byly nutné pro zasazení rostlin do půdy. V pokusech, které generovaly transgenní rostliny, byla účinnost stabilní transformace v rozmezí od 0,3 do 4,3 % (počet trangenních dějů/počet inokulovaných explantátů) (tabulka 5), což je srovnatelné nebo vyšší, než je účinnost publikovaná za použití jiných transfromačních systémů (Vasil a kol., 1992, 1993; Weeks a kol., 1993; Nehra a kol., 1994; Becker a kol., 1994; Zhou a kol., 1995). Transgenní rostliny měly normální morfologii a byly plně fertilní.
Mendelovská segregace transgenu v potomstvu
Exprese transgenu byla studována v potomstvu (R^ generaci) 4 primárné transformovaných rostlin ze 2 pokusů. GUS aktivita byla pozorována přibližně u 3/4 jedinců (semena a rostliny) R]_ generace (tabulka 6), což ukazuje, že gen byl přenesen na potomky podle Mendelovské dědičnosti. U rostlin nebyly pozorovány žádné abnormality.
Produkce regenerovatelných transgenních rostlin
Z 5 studií bylo identifikováno celkem 9 případů (7 různých ošetření) (tabulka 3). Na 5 rostlinách ze 3 dějů z ExpAG2 a AG13 byla provedena Southern analýza. Výsledky ukazují, že všech 5 rostlin mělo transgeny integrovány do genomu. Rostliny ze 6 dalších dějů (z ExpAG22, AG25 a AG30) byly identifikovány GUS histochemickým testem a jsou bud’
v půdě, nebo v Sundae nádobkách. Všechny měly vysokou až střední aktivitu GUS. Účinnosti transformace ze dvou studií byly 2,7 a 2,1 %.
Všechny případy byly generovány z inokulované embryogenní tkáně kalu nebo z předkultivovaných nezralých zárodků (IEs) (tabulka 4). Způsob inokulace a podmínky se mezi těmito studiemi lišily. Výsledky ukazují, že transformace pšenice zprostředkovaná Agrobacterium je opakovatelná a že embryogenní tkáň kalu a předkultivovaná IEs jsou vhodnými explantáty pro infekci Agrobacterium.
Segregace 3:1 aktivity GUS v R-^ potomstvu
Rj rostliny ze tří transgenních rostlin z ExpAG13 (tabulka 3) byly produkovány klíčením R^ nezralých embryí in vitro. Rostliny byly přeneseny do půdy a GUS aktivita byla měřena v R-^ potomstvu a nezralá semena s odstraněnými zárodky byla rozříznuta na dvě poloviny podélně a byla použita pro histochemický test na GUS. Tkáň štítku byla také odebrána na GUS test z některých klíčících zárodků. Mateřská tkáň, perikarp, každého semene byla GUS pozitivní, jak bylo očekáváno. Nicméně, aleuronová vrstva semen a tkáň štítku zárodků se segregovala na GUS pozitivní a GUS negativní. Poměr GUS-pozitivních a GUS-negativních rostlin se významně nelišil od 3:1 podle kappa2 testu (tabulka 2), což ukazuje, že transgen byl s největší pravděpodobností insertován do jediného lokusu.
- 31 Tabulka 3
Transgenní případy generované transformací zprostředkovanou
Agrobacterium
Pokusošetření Explantát počet kusů inokulace (%)2 č. děje (rostlina) TE 1
AG2-05 3-t kalus 73(velkých) 3h, vakuová infiltrace 2 (2) 2,7
AG13-03 2-t kalus 47(velkých) vakuová inokulace 1 (3) 2,1
AG22-05 10-d kalus 239(malých) 3h, namočení 1 NA
AG22-06 25-d kalus 308(malých) 3h, namočení 1 NA
AG25-24 6-d IEs 40 3h, namočení 1 NA
AG30-02 3-d IEs 98 3h, namočení 1 NA
AG30-05 3-d IEs 104 3h, namočení 2 NA
• ·
Tabulka 4
Aktivita GUS v aleuronové vrstvě nebo ve štítku v potomstvu ze semen RQ rostlin
Ro rostlina počet test, počet GUS počet GUS chi-square U Ί
R-j- semen pozitivních negativních hodnota semen semen
AG13-03-02-01 31 22 9 0,27
AG13-03-02-02 28 22 6 0,19
AG13-03-02-03 124 96 28 0,387
Ί *· Tato hodnota byla vypočítána na základě hypotesy segregace
Kritická hodnota při a = 0,05 a df = 1 byla 3,84, vyšší než jakákoliv z chi-square hodnot v tabulce. Proto, žádný ze segregačních poměrů nebyl signifikantně odlišný od hypoteticky předpovězeného poměru 3:1.
Metody obsahující selektovatelné markéry schválené EPA a FDA
Ačkoliv většina z popsaných metod pro příbuzné obilniny spočívá v použití hygromycin fosfotransferasy (HPT) jako selektovatelného markéru, překonává předkládaný vynález toto omezení využitím nptll jako selektovatelného markéru.
nptll gen (který kóduje neomycin fosfotransferasu) je nejčastěji akceptovaným selektovatelným markérem v oboru a byl schválen Enviromental Protection Agency jako pesticidně
inertní. Podobně, jeho schválení Food and Drug Administration jako nepřímý potravní doplněk činí tento markér lepším než jsou markéry jako je hygromycin, který nebyl podobné schválen těmito úřady.
Rozdíly od systémů vyvinutých pro rýži a pro kukuřici
Předkládaný vynález se významně liší od metod popsaných v poslední době pro jiné obilniny. Oproti dřívějším metodám použitým pro transformaci rýže, nevyžadují předkládané metody pro inokulaci ošetření ve vysoce osmotickém prostředí. Podobně, předkládaný vynález se liší od metod popsaných pro transformaci kukuřice v tom, že není omezen na použití pouze čerstvě izolovaných nezralých zárodků jako explantátů. Předkládaný vynález je také dobře účinný pro předkultivované nezralé zárodky nebo tkáň kalu a není omezen na čerstvě izolovanou zárodečnou tkáň.
Jiným významným rozdílem vůči dříve popsaným metodám je to, že metody podle předkládaného vynálezu jsou aplikovatelné za použití standartních binárních plasmidů, které jsou dobře známé v oboru, a není nutná konstrukce a použití super binárních plasmidů, jak je to popsáno ve dřívějších pracích. Binární plasmid je nejběžnějším typem používaným pro většinu metod pro transformaci dvojdéložných rostlin a odborníkovi v oboru jsou binární plasmidy snadno dostupné pro použití při metodách zde popsaných.
Následující příklady jsou zde uvedeny pro demonstraci výhodných provedení vynálezu. Odborníkovi v oboru by mělo být jasné, že techniky popsané v příkladech, které následují, představují techniky objevené původcem dobře fungující při provádění vynálezu, a proto mohou být považovány za výhodné způsoby pro jeho provádění. Nicméně ve světle podaného popisu by odborníkovi v oboru mělo být zřejmé, že může být provedeno mnoho změn ve specifických provedeních, která jsou popsána, a stále budou získány podobné výsledky bez odchýlení se od rozsahu a duchu vynálezu.
Příklady provedení vynálezu
Příklad 1 - Transformace za použití nezralých zárodků
1. Příprava explantátu
V této studii byla použita jarní pšenice Triticum aestivum kultivar Bobwhite. Zásobní rostliny byly kultivovány v růstové komůrce s kontrolovaným prostředím s 16-hodinovou fotoperiodou při 800 μιηο1.ιιΓ2.5-1 dodávaným vysoce intenzivním ozářením světlem (HID) Sylvania (GTE Products Corp., Manchester, NH). Denní/noční teplota byla 18/16 °C. Nezralé obilky byly z rostlin odebrány 14 dní po vývoji z květních orgánů. Nezralé zárodky (IEs) byly asepticky vyříznuty a byly kultivovány na následujícím pre-kultivačním mediu před inokulací:
1) semisolidní kalus-indukující medium CM4 nebo CM4C (tabulka 5) po dobu 1-6 dnů;
2) kapalné CM4C doplněném 0,25 M rafinosou a manitolem po dobu 1 dne;
3) kapalném CM4 mediu s 1/10 ředěním MS solí a doplněném 10 g/1 glukosou, 3,9 g/1 MES po dobu 1 až 3 hodin.
Všechny kultivace byly prováděny při teplotě 23 až 25 °C.
Tabulka 5
Doplňkové složky v základním mediu1
Složka CM4 CM4C MMS.2C MMS0C MS1WSM4 MS2WCM4
2,4-D (mg/1) 0,5 0,5 0,2 1,0 2,0
Pichloram (mg/1)2 2,2 2,2
Maltosa (g/1) 40 40 40 40
Sacharosa (g/1) 20 20
Glutamin (g/1) 0,5 0,5
Chlorid hořečnatý 0,75 0,75 0,75 0,75
(g/1)
Hydrolyzát kaseinu 0,1 0,1
(g/1)
MES (g/1) 1,95 1,95 1,95
Kyselina askorbová 100 100 100
(mg/1)2
I-asparagin (g/1) 0,15 0,15
Thiamin HCl (mg/1) 0,5 0,5
Želatinizuj ící 2(P) 2(P) 2(G) 2 (G) 2(P)
činidlo (g/1)3
Ί
Všechna media obsahovala základní soli (MS základní soli) a vitaminy (MS vitaminy) z Murashige a Skoog (1962) media, pokud není uvedeno jinak. pH každého media bylo upraveno na 5,8.
2 Sterilizované filtrem a přidané do media po autoklavování.
3 Phytagel™ (P) a GelriteR (G) 4 V mediu nebyly přítomné žádné MS vitaminy.
• ·
2. Kultura Agrobacterium
Oslabený kmen Agrobacterium tumefaciens C58 (ABI) nesoucí binární vektor pMON18365 (obrázek 1) byl použit ve • všech studiích. pMON18365 obsahuje GUS (uidA) gen s intronem a s nptll genem jako selektovatelným markérem v T-DNA • (přenosová DNA) regionu. Oba geny jsou pod kontrolou posíleného CaMV 35S promotoru. Kultury Agrobacterium byly iniciovány ze zásob v glycerolu a byly kultivovány přes noc při 25 až 26 °C na rotační třepačce (frekvence otáčení 150 za minutu) v kapalném LB mediu (Miller, 1972) obsahujícím 50 mg/1 kanamycinu, streptomycinu i spektinomycinu, 25 mg/1 chloramfenikolu a 200 μΜ acetosyringonu, do střední log fáze <OD660 = 1 - Χ'5)· Buňky Agrobacterium byly odebrány centrifugací a byly resuspendovány v inokulačním mediu, CM4 nebo CM4C (tabulka 9) s 1/10 ředěním MS solí a doplněném 10 g/1 glukosy a 200 μΜ acetosyringonu. Hustota buněk Agrobacterium byla upravena pro inokulaci na OD660 = 2.
3. Inokulace a současná kultivace
IEs přechodně uchovávané v kapalném pre-kultivačním mediu 3 byly přeneseny do suspenze buněk Agrobacterium » v Petriho miskách (25 x 100 mm). Poměr mezi Agrobacterium a IEs byl přibližně 30 ml: 200 IEs. Do inokulačního media byl • přidán surfaktant, SilwetR (Monsanto, St. Louis, MO), v koncentraci 0,01 až 0,75 %. Inokulace byla prováděna při až 25 °C po dobu 3 hodin ve tmě. Po inokulaci byla Agrobacteria odstraněna vakuem nebo použitím přenosové pipety a IEs byly umístěny do media pro současnou kultivaci, CM4 nebo CM4/C s 1/10 ředěním MS solí a 1,5 mg/1 extra 2,4-D a doplněném 10 g/1 glukosou a 200 μΜ acetosyringonu. Zárodky byly umístěny stranou štítku nahoru a byly současné kultivovány s Agrobacterium po dobu 2 až 3 dnů při 25 °C ve tmě. Pre-kultivované nezralé zárodky (kultivované na mediu po dobu 1 až 6 dnů) byly inokulovány Agrobacteriem podle jednoho z následujících způsobů: 1) ponořením do suspenze buněk Agrobacterium na dobu 1 až 3 hodin. 2) IEs byly ponořeny do suspenze buněk Agrobacterium v Petriho miskách nebo v klastrech pro buněčné kultury, které byly potom umístěny v sušící nádobě a byly vakuovány po dobu 3 hodin za použití vakuového systému. V některých studiích byl do inokulačního media přidán SilwetR v koncentraci 0,01 %. Po inokulaci byly nezralé zárodky naneseny na sterilní papírové filtry a potom byly přeneseny do jednoho z následujících medií pro současnou kultivaci: 1) semisolidního CM4 nebo CM4C media (tabulka 5) doplněného 10 g/1 glukosy a 200 μΜ acetosyringonu; 2) kapalného nebo semisolidního CM4C media s 1/10 ředěním MS solí a doplněného 10 g/1 glukosy a 200 μΜ acetosyringonu. Filtrační papír (Whatman č. 1) byl v některých studiích položen na medium; 3) kapalného CM4 nebo CM4C s 1/10 ředěním MS solí a 3,9 g/1 MES a doplněného 10 g/1 glukosy a 200 μΜ acetosyringonu. Nezralé zárodky byly umístěny na medium nebo na filtrační papír stranou štítku nahoru. Pro kultivaci zárodků v kapalném mediu byla každá kultivační plotna připravena přidáním 8 ml kapalného media do Petriho misky (15 mm x 100 mm) obsahující 6 kusů filtračního papíru Whatman č·1 (8,5 cm). Explantáty byly současně kultivovány s Agrobacterium při 24 °C ve tmě po dobu 2 až 3 dnů. Po současné kultivaci byly nezralé zárodky vypláchnuty kapalným CM4 nebo CM4C mediem doplněným 500 mg/1 karbencilinu • · • β ·· ··· · ♦ ·· • ·· ·· ·· · · ···· ···· · · · ·· ·· ·· ····· · · · *
- 38 (zpožďující medium). Infikované nezralé zárodky byly kultivovány v solidním zpožďujícím mediu po dobu 2 až 5 dnů. Obecný protokol pro tuto transformaci je uveden na obrázku 6.
Účinnost přenosu T-DNA
Účinnost přenosu T-DNA byla měřena testem přechodné exprese GUS s 2 až 3 denním odstupem od selekce. Ve většině studií byly pozorovány vysoké hladiny přechodné GUS exprese, což naznačuje, že přenos T-DNA byl velmi účinný. Účinek Silwet na přenos T-DNA byl intenzivně studován na různých explantátech. Jak ukazuje tabulka 6, SilwetR v koncentraci 0,05 - 0,1 % signifikantně zvyšoval přechodnou GUS expresi v čerstvě izolovaných IEs. Podobné výsledky byly také pozorovány pro pre-kultivované IEs a zárodečný kalus jako explantáty pro inokulaci. Pro nezralé zárodky pre-kultivované po dobu 1 až 2 dnů byly GUS skvrny lokalizovány nejvíce podél okraje štítku, ze kterého se vyvíjí menší množstí zárodečného kalusu. GUS skvrny byly, nicméně, nacházeny v kalus tvořících oblastech zárodků pre-kultivovaných 3 dny nebo déle.
• · · · · t· ·· · · • ·· · · · · · · · · · • · · · ··· · · · · • · · · · ·· · · · · · · · ···· ··· ··· ·· ·· ····· · · ··
- 39 Tabulka 6
Účinek surfaktantu na expresi GUS, pokud je přítomen v inokulačnim mediu·1· 5
Silwet (%) GUS pozitivní skvrny/explantát Počet explantátů t/GUS pozitivní skvrny/celkový počet explantátů (%
0,00 7,8 11/34 (32)
0,01 17,6 15/19 (79)
0,05 149 13/13 (100)
0,1 111 8/8 (100)
0,5 1 1/1 (100)
1 Explantáty byly IEs izolované několik hodin před inokulací.
5. Selekce a regenerace rostlin
Po 2 až 5 dnech ve zpožďovacím mediu byly Agrobacteriem infikované nezralé zárodky přeneseny do kalus-indukčního media, CM4 nebo CM4C (tabulka 5) media s 25 mg/1 G418 a 25 mg/1 karbencilinu. Nezralé zárodky byly kultivovány po dobu 2 až 3 týdnů pro indukci kalu před tím, než byly přeneseny do prvního regeneračního media, MMS.2C (tabulka 5) s 25 mg/1 G418 a 250 mg/1 karbencilinu. Při přenosu do regeneračního media byl každý kus kalu rozdělen na několik menších kousků (« 2 mm). Po dvou týdnech kultivace na prvním regeneračním mediu byly mladé výhonky a živá tkáň kalu přeneseny do druhého regeneračního media, MMSOC (tabulka 5) se stejnými koncentracemi G418 a karbencilinu. Rostlinky, • · ··· · • · · · · · · • · · ♦· · • · · ·· · ·
u kterých bylo později potvrzeno, že jsou správnými transformanty, rostly v tomto mediu rychle a tvořily silné kořenové systémy. Nicméně, v tomto stadiu zde byly některé rostlinky vykazující určitou resistenci na G418. Mohly růst dobře a mohly tvořit jeden nebo více kořenů, ačkoliv nerostly tak rychle jako řádné transformanty. Když byly rostlinky 3 cm nebo vyšší, byly přeneseny do Sundae nádobek (Sweetheart Cup Company, Chicago, IL) obsahujících druhé regenerační medium jak bylo uvedeno výše pro další kultivaci a selekci.
Z některých rostlin byly v tomto stadiu odebrány vzorky listů pro histochemický test na GUS. Nicméně, rostlinky, které byly resistentní a nevykazovaly GUS aktivitu v tomto stadiu nebyly eliminovány. Během růstu v nádobkách většina s non-transformantů uhynula nebo vykazovala známky citlivosti na G418. Rostliny vysoce resistentní na G418 (mohutně rostoucí se silným kořenovým systémem) byly přeneseny do půdy před tím, než dosáhly vrcholu nádobek. Všechny rostliny pocházející ze stejného zárodku byly považovány za potomstvo ze stejného děje.
6. Potvrzení transgenního charakteru rostlin
Rostliny byly kultivovány v kultivační komůrce s kontrolovaným prostředím za stejných růstových podmínek, jaké jsou popsány výše. Vzhledem k tomu, že od inokulace do přenosu většiny rostlin do půdy uběhly pouze asi 3 měsíce, nebyly u těchto rostlin pozorovány žádné viditelné abnormality, které jsou obvykle asociovány s rostlinami dlouhodobě kultivovanými in vitro. Rostliny byly zcela fertilní. Každá rostlina byla vyšetřována alespoň jednou z následujících metod:
···· ···· ···· ···· ··· · · · · • ·· ·· · · · · · · · · · ···· · · · · · ·
1) Histochemický test na GUS (Jefferson, 1987) za použití různých částí rostlin.
2) Biologický test (test blednutí listů). Před hlavatěním byly vzorky listů (délky asi 5 až 7 mm) odebrány z nejmladších plně rozvinutých listů a byly umístěny do jamek 24-jamkové buněčné kultivační plotny (Costar Corporation, Cambridge, MA) · Každá jamka byla naplněna 0,5 ml vodného roztoku složeného z 300 mg/1 paromomycinu (Sigma) a 100 mg/1 Benlatu (fungicid vyráběný DuPont) nebo 100 mg/1 Benlatu samotného. Tři vzorky listů ze stejného listu každé rostliny byly umístěny ve dvou jamkách obsahujících paromomycin a Benlat a v jedné jamce obsahující Benlat samotný. Vzorky listů z netransformovaných rostlin Bobwhite byly použity jako negativní kontroly. Vzorky byly vakuově infiltrovány v sušící nádobě za použití vakuového systému po dobu 5 minut a potom byla plotna důkladně potažena ParafilmR před umístěním na světlo (140 μπιοί. m-2.s-1). Výsledky byly určeny o 60 hodin později. Vzorky listů, které byly vysoce resistentní na paromomycin zůstávaly na většině plochy zelené s výjimkou dvou okrajů (šířky <1 mm), což ukazuje, že rostliny měly funkční nptll gen. Vzorky listů od rostlin bez genu nebo s nefunkčním genem zcela vybledly působením paromomycinu stejně jako negativní kontroly, nebo měly pouze malé zelené plošky.
3) Analýza Southern hybridizací (Southern, 1975). Genomová DNA byla izolována ze tkáně listů rostlin podle metody, kterou popsal Shure a kol., (1983). 15 μg genomové DNA bylo tráveno restrikční endonukleasou BamHI a bylo • ·
frakcionováno na 0,8% agarosovém gelu. DNA byla přenesena do Hybond N membrán (Amersham, Arlington Heights, IL) podle standartních postupů (Sambrook a kol., 1989). Sonda pro detekci nptll genu byla připravena gelovým přečištěním 977 bp Ncol fragmentu z plasmidů pMON18365 (obrázek 1). Fragment byl značen 32P dCTP kitu pro náhodné značení primerů (Prime-It II od Stratagene , La Jolla, CA), na specifickou aktivitu
2,6 x 109 cpm/^g. Membrána byla hybridizována po dobu 14 hodin při 42 °C v roztoku obsahujícím 50% formamid, 5x SSC, 5x Denhart, 0,5% SDS, 100 p.g/ml tRNA. Podmínky pro konečné promytí byly 0,1% SSC a 0,1% SDS při 60 °C po dobu 15 minut.
7. Účinnost stabilní transformace
Počet transgenních dějů v každé studii byl určen po testování rostlin jak bylo popsáno výše. Účinnost transformace (počet dějů/počet nezralých zárodků) se lišila mezi jednotlivými studiemi a podle různých podmínek ošetření, které generovalo transgenní rostliny (tabulka 7). Nicméně, účinnost byla srovnatelná nebo vyšší, než jsou jakékoliv publikované účinnosti transformace pšenice (Vasil a kol., 1992, 1993; Weeks a kol., 1993; Nehra a kol., 1994; Becker a kol., 1994; Zhou a kol., 1995).
Tabulka 7
Účinosti stabilní transformace při produkci transgenní pšenice
Pokusošetření
Explantát
Počet IEs Počet Účinnost nebo kusů transgenních (B/A%) kalu (A) dějů (B)1
AG2-05 21-d kalus, intaktní 73 2 2,7
AG13 14-d kalus, intaktní 47 1 2,1
AG22-05 10-d kalus, asi 2 mm 239 1 0,4
AG22-06 25-d kalus, asi 2 mm 308 1 0,3
AG22-11 10-d kalus, asi 2 mm 232 1 0,4
AG25-24 6-d IEs 40 1 2,5
AG27-15 1-d IEs 23 1 4,3
AG29-04 5-d IEs 97 1 1,0
AG30-02 3-d IEs 98 1 1,0
AG30-05 3-d IEs 104 2 1,9
AG30-08 3-d IEs 36 1 2,8
9528 0-d IEs 160 1 0,6
9531 17-d kalus, intaktní 50 1 2,0
9602 0-d IEs 250 3 1,2
9604 0-d IEs 700 1 0,14
9608 0-d IEs 124 1 0,8
9609 0-d IEs 140 2 1,4
9614 0-d IEs 38 1 2,6
9620 15-d kalus, intaktní 100 3 2,7
Každý transgenní děj proběhl u jedné nebo více rostlin • ·
8. Analýza potomstva transgenních rostlin
Nezralé obilky byly získány z primárních transgenních rostlin (Ro generace) s nptll i GUS aktivitou přibližně 20 dní po vývoji z květních orgánů. Nezralé zárodky byly izolovány a kultivovány na MMSOC mediu (tabulka 5) pro klíčení rostlin (asi jeden týden v Petriho miskách a další týden v Sundae nádobkách se stejným mediem). Každá z nezralých obilek s odstraněnými zárodky byla rozříznuta na dvě poloviny podélně a byla přenesena do 96-jamkových kultivačních ploten (Costar Corp. Cambridge, MA) pro histochemický test na GUS jak byl popsán výše. Obé poloviny obilek byly vyšetřovány pod mikroskopem pro určení GUS aktivity v různých oblastech. Část tkáně štítku byla také odebrána z každého klíčícího zárodku pro test na GUS. Po přenesení rostlin (R-^ generace) do půdy přibližně 2 týdny po klíčení byla GUS aktivita v rostlinách určována histochemickým testem na GUS za použití tkáně listů a květů.
Jak bylo očekáváno, mateřská tkáň, perikarp, každé nezralé obilky, vykazovala aktivitu GUS. Nicméně, aleuronová vrstva většiny obilek vykazovala GUS aktivitu, ostatní nikoliv. Poměr obilek s GUS pozitivní aleuronovou vrstvou k obilkám s GUS negativní aleuronovou vrstvou se signifikantně nelišil od 3:1 podle chi square testu (tabulka 8). Data GUS testu provedeného na oblíkách dobře odpovídala datům testu provedeného na tkáni štítku a dalším GUS testům provedeným na tkáních listu a květu, ačkoliv GUS aktivita v aleuronové vrstvě a štítku byla mnohem silnější než ve tkáních listu a květu.
Tabulka 8
Segregace GUS aktivity v R-j_ semenech a rostlinách
Ro rostliny Počet Rtestovaných semen (rostlin) Počet GUS pozitivních Počet GUS negativních chi-square hodnota1
16612 31 22 9 0,27
16613 28 22 6 0,19
16614 124 96 28 0,387
16953 128 103 25 2,04
Ί
Tato hodnota byla vypočítána na základě předpokladu segregace 3:1. Kritická hodnota při a = 0,05 a df = 1 byla 3,84, vyšší než jakákoliv z chi-square hodnot v tabulce. Proto žádný ze segregačních poměrů nebyl signifikantně odlišný od hypoteticky předpovězeného poměru 3:1.
Příklad 2 - Transformace za použití zárodečného kalu
1. Příprava explantátů
Nezralé zárodky pšenice (Triticum aestivum L.) kultivar Bobwhite byly izolovány z nezralé obilky 14 dní po vývoji z květních orgánů a byly kultivovány v mediu indukujícím kalus CM4 nebo CM4C (tabulka 9) stranou štítku • ·
nahoru. Po 10 dnech nebo déle se nezralé zárodky vyvíjely do zárodečného kalu. Každý kalus byl velikosti přibližně 5 mm nebo větší. Kaly byly inokulovány Agrobacterium bez narušení (intaktní), nebo byly vybrány řezy pouze většiny zárodečných kalů a byly rozděleny na malé kousky (asi 2 mm) za použití jemných kleštiček pro inokulaci.
2. Inokulace a současná kultivace
Kousky kalu byly inokulovány buněčnou suspenzí Agrobacterium připravenou jak je popsáno výše, za použití jedné z následujících metod.
1) Ponoření kousků kalu do buněčné suspenze Agrobacterium na dobu 3 hodin.
2) Ponoření kousků kalu do buněčné suspenze Agrobacterium s vakuovou infiltrací po dobu 3 hodin.
3) Intaktní kousky kalu byly umístěny na kousek sterilního filtračního papíru nasycený kapalným inokulačním mediem. Kousky kalu byly inokulovány v intaktním stavu, nebo byly před inokulaci stlačeny za použití sterilní špachtle do koláčů. Každý kousek filtračního papíru nesoucí kousek kalu byl přenesen do 150-ml filtračního systému (Corning, lne., Corning, NY) spojeného s vakuovým systémem, nebo do Buchnerovy nálevky spojené s vakuovým systémem přes filtrační baňku. Ve vakuovém systému byla buněčná suspenze Agrobacterium pomalu nakapána na kousky kalu (>1 ml na 6 kousků kalu). Po nakapání buněčné suspenze Agrobacterium bylo po dobu dalších 10 minut aplikováno vakuum. Kousky kalu inokulované jakoukoliv z těchto metod byly přeneseny do Petriho misek (100 x 15 mm), které každá obsahovaly 6 kusů Whatmanova filtračního papíru (č. 1, 8,5 cm) nasyceného 8 ml media pro současnou kultivaci (CM4 nebo CM4C s 1/10 ředěním MS solí a doplněném 10 g/1 glukosy a 200 μΜ acetosyringonu). Plotny byly důkladně potaženy ParafilmemR. Po současné kultivaci s Agrobacterium po dobu 3 dnů byly kousky kalu promyty v kapalném zpožďovacím mediu (CM4 nebo CM4C doplněné 500 mg/1 karbencilinu) a byly naneseny na kousky sterilního filtračního papíru pro odstranění nadbytku kapaliny. Kousky kalu byly kultivovány v semisolidním zpožďovacím mediu po dobu 3 dnů před přenosem do selektivního kalus-indukujícího media.
3. Účinnost přenosu T-DNA
Po současné kultivaci s Agrobacterium nebo po stadiu zpoždění byly náhodně odebrány vzorky kalu pro histochemický test na GUS (Jefferson, 1987). Jak je ukázáno v tabulce 11, většina testovaných kousků kalu měla GUS pozitivní skvrny. V některých studiích (jako je pokus AG13) měly všechny testované kousky kalu GUS pozitivní skvrny. Počet GUS pozitivních skvrn v každém kousku kalu se lišil od několika do asi 100. V pokusu AG13 byl proveden další histochemický test na GUS dva týdny po inokulaci. Všech 16 testovaných kousků kalu mělo nějaké GUS pozitivní skvrny a z nich 7 kousků (44%) mělo rostoucí GUS pozitivní sektory, což naznačuje, že transformované buňky byly proliferující.
• ·
- 48 Tabulka 9
Účinnost přenosu T-DNA jako je ukázána histochemickým testem na GUS na kouscích kalu po současné kultivaci
Pokusošetření
Explantát
Počet IE t/
GS požit, skvrny (celkový počet z testovaných IEs)
Počet skvrn na každém GUS-pozit. IE
AG2-5 21-d kalus, intaktní 1/19 1-5
AG13 14-d kalus, intaktní 25/25 několik - ~ 50
AG22-5 10-d kalus, asi 2 mm 6/15 několik
AG22-6 25-d kalus, asi 2 mm 7/10 málo - ~ 100
AG22-11 10-d kalus, asi 2 mm 12/20 málo - 12
4. Selekce a regenerace rostlin
Kousky kalu, které byly intaktní během inokulace, byly kultivovány na selektivním kalus indukujícím mediu (CM4C doplněné 25 mg/1 G418 a 250 mg/1 karbencilinu) v intaktním stavu, nebo byly rozděleny na několik malých kousků (« 2 mm) při přenosu do media. Inokulované malé kousky kalu zůstaly intaktiní a byly kultivovány v mediu. Po 2 až 3 týdnech byly kousky kalu přeneseny do regeneračního media. Postup regenerace byl stejný jak je popsán v příkladu 1.
5. Účinnost transformace
Regenerované rostliny nevykazovaly žádné viditelné abnormality a byly zcela fertilní. Všechny rostliny byly testovány v biologickém testu, histochemickém testu na GUS a/nebo v testu Southern hybridizace, jak jsou popsány v přikladu 1. Bylo generováno celkem 10 transgennich dějů ze 7 experimentálních ošetření za použití zárodečného kalu různého stáří (tabulka 9). Účinnost transformace (počet dějů/počet kousků kalu) byla v rozmezí od 0,3 do 2,7 %.
6. Analýza potomstva transgennich rostlin
R-L rostliny byly analyzovány stejně jako v příkladu 1.
Příklad 3 - Transformace buněčné suspenze
1. Příprava explantátu
Suspenze buněk pšenice v. Mustang byly kultivovány v kapalném MS1WSM (tabulka 9) při 28 °C ve tmě na rotační třepačce (frekvence otáčení 250 za minutu). Buňky sklízené po 3 dnech subkultivace byly použity pro inokulaci Agrobacteriem. Obecný protokol pro transformaci buněčné suspenze je uveden na obrázku 7.
2. Kultura Agrobacterium a přenos T-DNA
Metoda pro kultivaci Agrobacterium je v podstatě stejné, jako je metoda popsaná v příkladu 1. Hustota Agrobacterium buněk v inokulačním mediu (CM4 medium s 1/10 ředěním MS solí a 3,9 g/1 MES a doplněné 10 g/1 glukosy • ·
- 50 a 200 μΜ acetosyringonu) byla upravena na Οϋθ6θ 0,5 až 1. Kapalné medium bylo odstraněno ze suspenze kultury pšenice vakuem. Každý ml buněk pšenice byl smisen se 3 ml buněčné suspenze Agrobacterium v Petriho misce (100 x 25 mm). Inokulace byla prováděna při 23 až 25 °C po dobu 30 minut až 4 hodin. Po inokulaci byly Agrobacteriem infikované buňky pšenice umístěny na kousku sterilního Whatmanova filtračního papíru v Petriho misce (100 x 15 mm). Filtrační papír byl zvlhčen kapalným mediem jak bylo popsáno výše. Plotny pro současnou kultivaci byly umístěny ve tmě při 23 až 25 °C po dobu 2 až 3 dnů.
3. Získání transformovaných kolonií
Po současné kultivaci byly inokulované buňky přeneseny do kapalného MS2WCM (tabulka 9) s 500 mg/1 karbencilinu a byly kultivovány v nádobkách po dobu 1 dne za mírného třepání a potom byly umístěny na kousku filtračního papíru na solidním MS2WCM mediu doplněném bud’ 25 mg/1 G418, nebo 50 mg/1 paromomycinu a 250 mg/1 karbencilinu pro selekci. Resistentní kolonie mohly být získány po 40 až 60 dnech selekce. Transformace byla vysoce účinná podle počtu získaných transformovaných kolonií. Rutině bylo získáváno asi 200 nezávisle transformovaných kolonií z 1 ml inokulovaných buněk.
4. Faktory ovlivňující účinnost transformace
Bylo zjištěno, že tři faktory účastnící se procesů inokulace a současné kultivace, mají signifikantní vliv na účinnost transformace suspenze buněk. Těmito faktory byla • · • ·
teplota inokulace a současné kultivace, doba inokulace a současné kultivace a hustota buněk Agrobacterium pro inokulaci. Jak ukazuje tabulka 10, nej lepší teplota pro inokulaci a současnou kultivaci je 23 až 25 °C a účinnost transformace je signifikantně redukována při teplotě 19 °C nebo 28 °C. Nej lepší doba inokulace je 30 minut (tabulka 11) a nejvyšší účinnost transformace může být dosažena při 2nebo 3-denní současné kultivaci. Doba současné kultivace 1 den nebo kratší signifikantně redukuje účinnost transformace. Nej lepší hustota buněk Agrobacterium pro inokulaci je OD660 0,5 (tabulka 12). Hustota Agrobacterium vyšší nebo nižší než je tato hodnota redukuje účinnost transformace.
Tabulka 10
Účinek teploty v průběhu inokulace a současné kultivace na stabilní transformaci suspenze buněk
Teplota (°C)
Počet GUS-pozitivních kolonií/ml inokulovaných buněk
19 52,5 + 19,36
23 290 + 70,83
25 273 + 65,43
28 132,5 + 22,6
• ·
- 52 Tabulka 11
Účinek doby inokulace a současné kultivace na transformaci suspenze buněk
Stadium Doba (h) Počet GUS-pozitivních kolonií/ml inokulovaných buněk
Inokulace 0,5 351,25 + 29,23
1 178,5 + 23,1
2 186,75 + 23,10
3 202 + 51,37
4 152,25 + 29,68
14 4 + 0,82
Současná 24 53 4,24
kultivace 48 232,5 + 26,29
72 258,5 + 15,26
• · ·· · ·· · · · · • · · « ···· * · · · ···· · · · · · · · • · « ·· c · ·· ··· · · ···· ··· Λ · · ·« ·· ····· ·· · ·
- 53 Tabulka 12
Účinek hustoty buněk Agrobacterium na transformaci suspenze buněk
Hustota buněk Počet GUS-pozitivních kolonií/ml
Agrobacterium (OD660) inokulovaných buněk
0,10 79 + 4,97
0,25 174 + 53,67
0,50 260,25 + 45,33
1,00 172 + 51,04
2,00 159 + 70,06
5. Potvrzení transformovaných kolonií
Transformace byla potvrzena histochemickým testem na GUS jak byl popsán. Vzorky z 51 G418 resistentních kolonií byly testovány na aktivitu GUS. 49 z 51 kolonií vykazovalo GUS pozitivitu. Z těchto bylo 15 podrobeno Southern blot analýze. Všechny vzorky vykazovaly silný hybridizační signál s nptll sondou. Tyto výsledky naznačují, že frekvence společné exprese se blížila 100%.
Příklad 4 - Transformace suspenze buněk
1. Agrobacterium konstrukty • ·
Pro použití u pšenice byly konstruovány rostlinné transformační vektory podobné těm, které jsou odvozeny od Ti plasmidu Agrobacterium tumefaciens, například jsko jsou ty, které popsal Herrera - Estrella a kol·, (1983), Bevan a kol., (1983), Klee a kol., (1985) a EPO přihláška 120 516 (Schilperoort a kol. ). Agrobacterium binární vektor pro pšenici, pMON18364 (obrázek 2) byl konstruován odstraněním P-nos/nptII/nos 3' z pMON18342 (obrázek 3), trávením pMON18342 Notl a HindlII restrikčními enzymy pro tvorbu a izolaci fragmentu o 5,7 kb. Tento výsledný 5,7kb skeletový fragment vektoru obsahuje ori-322 zdroj replikace pro replikaci v E. coli a ori-V region pro replikaci v Agrobacterium, markéry bakteriální resistence pro spektinomycinovou a streptomycinovou selekci. P-e35S/hsp70 intron/kan/nos 3' chimérický fragment byl izolován z pMON19476 (obrázek 4) trávením Notl a HindlII restrikčními enzymy až do dokončení a izolací vzniklého 2,7kb insertu na gelu. Binární vektor pMON18364 byl konstruován ligací 2,7kb Notl, HindlII P-e35S/hsp70 intron/kan/nos 3' fragmentu a Notl, HindlII 5,7kb fragmentu vektorového skeletu za použití T4 DNA ligasy. Produkty ligace byly transformovány do Novablue buněk a byly selektovány na resistenci na spektinomycin. Transformované kolonie z tohoto nepřímého klonování byly kultivovány v kapalné kultuře a DNA byla analyzována na přítomnost P-e35S/kan/nos 3' chimérického genu restrikčním trávením HindlII a EcoRV. Pro reportérové genové konstrukty byl Agrobacterium binární vektor obsahující gen pro β-glukuronidasu (GUS) konstruován trávením pMON18361 (obrázek 5) HindlII a izolací 3,8kb fragmentu obsahujícího p-e35S/hsp70 intron/GUS/nos 3' chimérický fragment a ligací tohoto fragmentu do pMON18364 tráveného HindlII. Analýza
4 · · 4 ·· ·· · · «444 · · · 44*4 • « · · · · · 44 ····· • · 4 · · 4 4444
44 44444 44«4 výsledných transformovaných kolonií byla provedena HindlII a orientace byla potvrzena trávením BglII a Xbal. Výsledný konstrukt je pMON18365 (obrázek 6): RB > P/e35S/hsp70 intron/GUS:ST-LSl intron/nos 3'; P-e35S/HSP70 intron/nptll/nos > LB, kde LB a RB jsou levá a pravá hranice přenosu Ti plasmidu Agrobacteria, v příslušném pořadí.
Do pšenice mohou být vloženy další geny: například, obalový protein viru mozaiky pšenice (WSMV) a replikasa z Barley Yellow Dwarf Viru (BYVD) udělující resistenci na rostlinné viry. Vhodným rostlinným expresním vektorem je pMON18365 nebo deriváty podobných binárních vektorů. Gen kódující obalový protein (CP) z WSMV může být podobně insertován do pMON18364 nebo do pMON18365 za použití standartních technik. Rekombinantní vektor obsahující WSMV CP gen by měl po přenosu do pšenice metodou Agrobacteriem zprostředkované transformace způsobovat resistenci rostlin pšenice na infekci WSMV. Podobně, gen kódující kompletní replikasu BYVD může být vložen do stejných nebo do podobných Agrobacterium vektorových kazet. Rekombinantní vektor obsahující kompletní gen pro BYVD replikasu by měl po přenosu do pšenice metodou Agrobacteriem zprostředkované transformace způsobovat resistenci pšenice na infekci BYDV.
Geny kódující resistenci vůči houbám mohou být také vloženy do Agrobacterium binárních vektorů jako je pMON18364 a pMON32614 (obrázek 6). Geny pro antimykotické proteiny jako jsou ty, které kódují Alfalfa nebo Alyssum antimykotické proteiny insertované do pMON18364 nebo do pMON18365, jak byly popsány výše, umožní zapracování resistence na houby do pšenice transformací zprostředkovanou Agrobacteriem za • · · · 9 · * ··· · • · · · ···· · · · · • · · · · · · ···· v ·· · * · · · · ··· ·· ···· · · · · · · • 4 · · ··· · · · ·· · produkce transgenních rostlin. Vzniklé rostliny by měly být resistentní na Fusarium nebo na jiné houbové nebo bakteriální patogeny.
Geny, které ovlivňují kvalitu dějů ovlivňujících kvantitu a složení uhlohydrátů v zrnu jako je ADP glukosopyrofosforylasa (ADPGPP) exprivovaná pod kontrolou jaderného silného promotoru nebo silných promotorů jiných tkání mohou být insertovány do binárního vektoru jako je pMON18365 nebo jeho deriváty. Agrobacteriem zprostředkovaná transformace tohoto genu do rostlin pšenice by měla změnit množství nebo kvalitu uhlohydrátů v zrnu nebo v jiných tkáních za vzniku změn složení hmoty.
Je také možné vložit geny ovlivňující takové rysy pšenice, jako je tolerance na herbicidy pro vyvolání resistence na herbicidy, tolerance na sucho a vysokou salinitu a tolerance na chladový a tepelný stres. Geny zvyšující výnos pšenice, geny použité pro samčí sterilitu pro produkci hybridní pšenice a geny ovlivňující klíčení mohou být také vloženy do binárních rostlinných transformačních vektorů pro Agrobacteriem zprostředkovanou transformaci produkující rostliny pšenice vykazující rysy požadovaného fenotypu. Příklady plasmidů použitelných pro inserci genů zahrnují pMON25457 (obrázek 7), pMON30053 (obrázek 8), PMON30052 (obrázek 9) a pMON19450 (obrázek 10).
• · • ·
Literární odkazy
Literární odkazy vyjmenované dále a všechny odkazy zde citované jsou zde uvedeny jako odkaz v rozsahu, ve kterém doplňují, vysvětlují, objasňují podklady pro vynález nebo uvádějí metody, techniky a/nebo přípravky zde použité.
US patent č. 5 179 022.
Mezinárodní patentová přihláška publ. č. WO 91/02071.
Mezinárodní patentová přihláška publ. č. WO 92/06205.
Mezinárodní patentová přihláška publ. č. WO 93/18168.
Mezinárodní patentová přihláška publ. č. WO 94/0077.
Mezinárodní patentová přihláška publ. č. WO 94/00583.
Mezinárodní patentová přihláška publ. č. WO 95/06722.
Barcelo a kol., Plant J., 5, 583-592, 1994.
Becker a kol., Plant,!., 5, 299-307, 1994.
Bevan a kol., Nátuře, 303, 209, 1983.
Chán a kol., Plant Cell Physiol., 33(5), 577-583, 1992.
Chán a kol., Plant Mol. Biol., 22(3), 491-506, 1993.
Chán a kol., Plant Physiol., (Rockville) 108 (2 Suppl.) 115, Abstr. Annu. Meet. Amer. Soc. Plant Physiol., Charlotte, NC, 1995.
Chen and Dále, Transgenic Res., 1(2), 93-100, 1992.
Chilton, Proč. Nati. Acad. Scí. USA, 90(8), 3119-3120, 1993.
Christou a kol., Plant Physiol., 87, 671-674, 1988.
Christou a kol., Bio/Technology, 9, 957-962, 1991.
Conger a kol., Plant Cell Rep., 6, 345-347, 1987.
Conner and Dommisse, Int. J. Plant Scí., 153. 550-555, 1992.
Creissen a kol., Plant Cell Rep., 8(11), 680-683, 1990. Datta a kol., Bio/Technology, 8, 736-740, 1990.
Davey a kol., J. Exp. Bot., 42, 1129-1169, 1991.
- 58 De la Pěna a kol., Nátuře, 325, 274-276, 1987.
Dekeyser a kol., Plant Physiol., 90, 217-223, 1989. Delbreil a kol., Plant Cell Rep., 12(3), 129-132, 1993. Della-Cioppa a kol., Bio/Technology, 5, 579-584, 1987. Deng a kol., Sci. China Ser B Chem. Life Sci. Earth Sci., 33(1) . 27-34, 1990.
Du a kol., Genet. Manip. Plants, 5, 8-12, 1989.
Fromm a kol. , Proč. Nati. Acad. Sci. USA, 82, 5824-5828
1985.
Fromm a kol. , Nátuře, 319, 791-793, 1986.
Fromm a kol., Bio/Technology, 8, 833 -839, 1990.
Godwin and Chikwamba, xiii-174, Plenům Press, New York, NY. Gordon-Kamm a kol., Plant Cell, 2, 603-618, 1990.
Gould a kol., Plant Physiol., 95(2), 426-434, 1991.
Graves and Goldman, Plant Mol Biol., 7(1), 43-50, 1986. Grimsley a kol., Nátuře, 325, 177-179, 1987.
Hayakawa a kol., Proč. Nati. Acad. Sci. USA, 89, 9865-9869, 1992.
Herrera-Estrella a kol., Nátuře, 303, 209, 1983.
Hess a kol., Plant Sci., 72(2), 233-244, 1990.
Hiei Y., Plant. J., 6(2), 271-282, 1994.
Hood a kol., Plant Physiol., 105(1 Suppl.), 114, 1994.
Ishida a kol., Plant Physiol., (Rockville) 108 (2 Suppl.) 114, Abstr. Annu. Meet. Amer. Soc. Plant Physiol., Charlotte, NC, 1995.
Ishida Y., a kol., Nátuře Biotech., 745-750, 1996.
Jaehne a kol., Euphytica, £5, 1-3, 35-44, 1995.
Jefferson, Plant Mol. Biol. Rep., 5, 387-405, 1987.
Jefferson a kól., EMBO J., 6, 3901-3907, 1987.
Kasha a kol., Gene Manip. Plant Improv. II, 213-239, 1990. Klee a kol., Bio/Technology, 2, 637, 1985.
• ·
Knutson a kol., Proč. Nati. Acad. Sci. USA, 89, 2624-2628, 1992.
Kornienko a kol., Pushchino, 20-22, noyabrya, Tezisy dokladov, 20., 21, 128-129, 1991.
Langridge a kol., Plant J., 2(4), 631-638, 1992.
Li a kol., Sci. China Ser B Chem. Life Sci. Earth Sci., 34(1) , 54-63, 1991.
Liu a kol., Plant Mol. Biol., 20(6), 1071-1087, 1992.
Luo a Wu, Plant Mol. Biol. Rep., 6, 165-174, 1988.
Mahalakshmi a Khurana, J. Plant Biochem. Biotech., 4(2), 55-59, 1995.
May a kol., Bio/Technology, 13, 486-452, 1995.
McElroy a kol., Mol. Gen. Genet., 231, 150-160, 1991.
Miljus-Djukic a kol., Plant Cell Tissue Organ Culture, 29(2), 106-108, 1992.
Miller, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY, 1972.
Mooney a Doodwin, Plant Cell Tissue Organ Culture,
25, 209-218, 1991.
Mursahige a Skoog, Physiol. Plant, 15, 473-497, 1962.
Nehra a kol., Plant J., 5, 285-297, 1994.
Paszkowski a kol., EMBO J., 3, 2717-2722, 1984.
Paszkowski a kol., Plant Mol. Biol., 6, 303-312, 1986.
Picard a kol., Vllth International Wheat Genetics Symposium, University of Cambridge, 779:781, 1988.
Piorer a kol., Science, 256, 520-523, 1992.
Potrykus I., Bio/Technology, 8, 535-543, 1990.
Raineri a kol., Bio/Technology, 8., 33, 1990.
Raineri a kol., Proč. Nati. Acad. Sci. USA, 90(8), 3549-3553, 1993 .
Report on the Use of Antibiotic Resistance Markers in
Genetically Modified Food Organisme, Advisory Committee on Novel Foods and Processes, červenec 1994.
Rhodes a kol., Science, 240, 204-207, 1988.
Ritchie a kol., Transgenic Res., 2(5), 252-265, 1993.
Sambrook a kol., Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY.
Sanford, Trends Biotechnology, 6, 299-302, 1988.
Sanford J. C., Physiologia Plantarium, 79, 206-209, 1990.
Sautter a kol., Bio/Technology, 9, 1080-1085, 1991.
Schlappi a Hohn, Plant Cell, 4(1), 7-16, 1992.
Schledzewski a Mendel, Transgenetic Research, 249-255, 1992.
Schrott M., v Gene Transfer in Plants, Springer, Verlay, New York, 1995, str. 325-331.
Seiichi a kol. , Plant Physiol., 100, 1503-1507, 1992.
Shen and Hohn, Plant. J., 2(1), 35-42, 1992.
Shen a kol., Proč. Nati. Acad. Sci. USA, 90.(4), 1488-1492, 1993 .
Shen a kol., Meth. Mol. Biol., 44, Xiv-417, 1995.
Shillito a kol., Bio/Technology, 3.# 1099-1103, 1985.
Shimamoto a kol., Nátuře, 338, 274-276, 1989.
Shure a kol., Cell, 35, 225-233, 1983.
Smith a kol., v In Vitro Cell. Develop. Biol., 30A (3 Part 2), 1994.
Smith a Hood, Crop Sci., 35, 301-309, 1995.
Somers a kol., Bio/Technology, 10, 1589-1594, 1992.
Southern, J. Mol. Biol., 98, 503-517, 1975.
Topfer a kol., Plant Cell, 1, 133-139, 1989.
Vasil a kol., Bio/Technology, 10, 667-674, 1992.
Vasil a kol., Bio/Technology, 11, 1 153-1158, 1993.
Vijayachandra a kol., Plant Mol. Biol., 29(1), 125-133, 1995.
• ·
Wan a Lemaux, Plant Physiol., 104, 37-48, 1994.
Weeks a kol., Plant Physiol., 102, 1077-1084, 1993. Wilmink a kol., Plant Cell Rep., 11, 76-80, 1992. Xu a kol., Chin J. Bot., 2(2), 81-87, 1990.
Zaghmout and Trolinder, Nucl. Acids Res., 21(4), 1048, 1993. Zaghmout, Theoret. Appl. Genet. , 89.(5), 577-582, 1994.
Zhou a Konzak, Crop Sci., 29, 817-821, 1989.
Zhou a kol., Plant Cell Tissue Organ Culture, 30., 78-83, 1992.
Zhou a kol., Plant Cell Rep., 15, 159-163, 1995. Ziauddin a kol., Plant Cell Rep., 11, 489-493, 1992.
Všechny přípravky a způsoby zde popsané a nárokované mohou vyrobeny a prováděny bez zbytečného experimetování podle předkládaného vynálezu. Ačkoliv byly přípravky a způsoby podle tohoto vynálezu popsány ve smyslu jeho výhodných provedení, bude odborníkovi v oboru jasné, že mohou být použity variace přípravků, způsobů a a variace v krocích a sekvencích kroků způsobů zde popsaných bez odchýlení se od konceptu, duchu a rozsahu vynálezu. Přesněji, je jasné, že určitá činidla, která jsou chemicky nebo fyziologicky příbuzná, mohou nahradit činidla zde popsaná za dosažení stejných nebo podobných výsledků. Všechny takové podobné náhrady a modifikace, které jsou odborníkovi v oboru jasné, spadají do ducha, rozsahu a koncepce vynálezu, jak je definován v připojených patentových nárocích.

Claims (20)

  1. Patentové nároky
    1. Rostlina fertilní, transgenní pšenice, jejíž genom byl pozměněn vložením předem vybrané genetické složky do genomu, kde uvedená složka obsahuje exogenní gen umístěný pod kontrolou jednoho nebo více předem vybraných genetických kontrolních elementů, kde tato rostlina je připravítelná způsobem zahrnujícím:
    (a) přípravu DNA přípravku in vitro, kde tento přípravek obsahuje genetickou složku, která má být vložena do genomu pšenice;
    (b) vložení uvedeného DNA přípravku do buněk pšenice transformací zprostředkovanou Agrobacteriem;
    (c) regeneraci rostlin pšenice z uvedených buněk, které dostaly uvedenou genetickou složku; a (d) identifikaci rostliny fertilní, transgenní pšenice, jejíž genom byl pozměněn stabilním vložením uvedené genetické složky.
  2. 2. Rostlina fertilní, transgenní pšenice podle nároku 1, kde genetická složka kroku (a) obsahuje selektovatelný nebo vyšetřitelný gen.
  3. 3. Rostlina fertilní, transgenní pšenice podle nároku
    1, kde uvedené buňky pšenice zahrnují nezralý zárodek, tkáň • · · • ·· ·· ·· · · ··· · · ···· ··· ··· • · ·· ····· ·· · · kalu nebo suspenzi buněk.
  4. 4. Rostlina fertilní, transgenní pšenice podle nároku
    3, kde uvedený zárodek je izolován z nezralé obilky nebo je izolován z nezralé obilky a potom pre-kultivován před inokulací.
  5. 5. Rostlina fertilní, transgenní pšenice podle nároku
    4, kde je uvedený nezralý zárodek izolován z uvedené nezralé obilky během asi 24 hodin až přibližně 10 nebo více dnů před inokulací.
  6. 6. Rostlina fertilní, transgenní pšenice podle nároku 3, kde je uvedená tkáň kalu izolována z nezralého zárodku nebo je vyvíjena ze zárodečných buněk.
  7. 7. Rostlina fertilní, transgenní pšenice podle nároku 3, kde uvedený nezralý zárodek zahrnuje zárodek 2 nebo více dní po vývoji z květních orgánů nebo uvedená nezralá obilka zahrnuje obilku 2 nebo více dnů po vývoji z květních orgánů.
  8. 8. Rostlina fertilní, transgenní pšenice, jejíž genetická výbava byla změněna přidáním DNA přípravku obsahujícího předem vybraný funkční genetický element, který obsahuje transgeny vybrané ze skupiny skládající se z nptll genu, bia genu, nptl genu, dhfr genu, aphIV genu, aacC3 genu, aacC4 genu a GUS genu, kde uvedený funkční genetický element způsobuje u uvedené rostliny pšenice fenotypový rys, který se nenachází na rodičích uvedené rostliny.
  9. 9. Rostlina fertilní, transgenní pšenice podle nároku • ·
    4 4·· · · · ·· • 4 4 4 4 ·· · · 4 4 4 4 • · · · 4 · · · ·
    4 4 · 4 4 · · ♦ · · ·
    - 64 1 nebo podle nároku 8, kde uvedený gen zahrnuje nptll gen.
  10. 10. Transgenní pšenice podle nároku 1 nebo 8, kde jsou alespoň dva exogenní geny umístěny na stejném DNA segmentu a kde jsou uvedené buňky transformovány uvedeným segmentem.
  11. 11. Potomstvo rostlin podle nároku 1 nebo 8.
  12. 12. Buňky získané z rostlin podle nároku 1 nebo 8.
  13. 13. Semena získaná z rostlin podle nároku 11.
  14. 14. Způsob pro produkci rostliny fertilní, transgenní pšenice, vyznačující se tím, že obsahuje kroky:
    (a) ustanovení regenerovatelné kultury z rostliny pšenice, která má být transformována;
    (b) zavedení DNA přípravku obsahujícího genetickou složku, která má být vložena do genomu uvedené rostliny pšenice, transformací zprostředkovanou Agrobacteriem;
    (c) identifikaci a selekci transformované buněčné linie a (d) regeneraci rostliny fertilní transgenní pšenice z této linie, kde uvedená DNA je přenesena úplným pohlavním cyklem uvedené transgenní rostliny na její potomstvo, kde uvedené potomstvo obsahuje selektovatelný nebo vyšetřitelný markerový gen a kde je uvedený markerový gen chromosomálně integrován.
  15. 15. Způsob podle nároku 14 vyznačující se tím, že alespoň dva exogenní geny jsou umístěny na stejném DNA segmentu a že uvedená regenerovatelné kultura je transformována uvedeným segmentem.
  16. 16. Způsob podle nároku 14 vyznačující se tím, že Agrobacterium je A. tumefaciens C58.
  17. 17. Způsob podle nároku 14 vyznačující se tím, že uvedená kultura obsahuje nezralý zárodek, tkáň kalu nebo suspenzi buněk.
  18. 18. Způsob pro produkci transgenní pšenice vyznačující se tím, že obsahuje kroky:
    (a) ustanovení kultury z pšenice, která má být transformována ;
    (b) transformování uvedené kultury Agrobacteriem obsahujícím DNA přípravek obsahující genetickou složku, která má být vložena do genomu uvedené pšenice;
    (c) identifikaci nebo selekci transformované buněčné linie a (d) regeneraci rostliny fertilní transgenní pšenice z této linie.
  19. 19. Způsob podle nároku 14 nebo 18 vyznačuj í cí se tím, že uvedená DNA obsahuje nptll gen.
  20. 20. Způsob podle nároku 18 vyznačující se tím, že Agrobacterium je A. tumefaciens C58.
CZ98867A 1996-06-21 1997-06-20 Fertilní transgenní rostlina pšenice, způsob její přípravy, buňky a semena této rostliny CZ86798A3 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US66718896A 1996-06-21 1996-06-21

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ86798A3 true CZ86798A3 (cs) 1999-03-17

Family

ID=24677185

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ98867A CZ86798A3 (cs) 1996-06-21 1997-06-20 Fertilní transgenní rostlina pšenice, způsob její přípravy, buňky a semena této rostliny

Country Status (11)

Country Link
US (1) US7026528B2 (cs)
EP (1) EP0856060A2 (cs)
CN (1) CN1208437A (cs)
AU (1) AU738153C (cs)
CA (1) CA2230216A1 (cs)
CZ (1) CZ86798A3 (cs)
EA (1) EA199800212A1 (cs)
HU (1) HUP9902123A3 (cs)
MX (1) MX9801421A (cs)
TR (1) TR199800294T1 (cs)
WO (1) WO1997048814A2 (cs)

Families Citing this family (111)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1997048814A2 (en) 1996-06-21 1997-12-24 Monsanto Company Methods for the production of stably-transformed, fertile wheat employing agrobacterium-mediated transformation and compositions derived therefrom
EP1121452A1 (en) * 1998-10-15 2001-08-08 Protein Research Trust Transformation process
DE69932082T2 (de) * 1998-12-11 2007-06-21 Monsanto Technology Llc Verfahren zur verbesserung der effizienz agrobakterium-vermittelter transformation von pflanzen
CA2352488A1 (en) * 1998-12-23 2000-06-29 The Samuel Roberts Noble Foundation, Inc. Plant transformation process
EP1144664B1 (en) * 1999-01-29 2011-04-13 The New Zealand Institute for Plant and Food Research Limited Transformation and regeneration of allium plants
CA2267014A1 (en) * 1999-03-26 2000-09-26 Brenda Rojas Monocot transformation using acrobacterium
WO2000063398A1 (en) * 1999-04-19 2000-10-26 Rhobio Plant transformation method
CN100425701C (zh) 1999-12-16 2008-10-15 孟山都技术有限公司 新型植物表达构建物
US7468475B2 (en) 2000-06-16 2008-12-23 Schmuelling Thomas Method for modifying plant morphology, biochemistry and physiology
US8212109B2 (en) 2001-07-19 2012-07-03 Monsanto Technology Llc Method for the production of transgenic plants
US7238862B2 (en) 2001-08-22 2007-07-03 Monsanto Technology Llc Efficiency Agrobacterium-mediated wheat transformation method
GB0130199D0 (en) 2001-12-17 2002-02-06 Syngenta Mogen Bv New nematode feeding assay
CN1515671B (zh) * 2003-01-06 2011-04-27 云南省农业科学院生物技术研究所 一种农杆菌介导的植物无选择基因转化方法
EP1616014A2 (en) 2003-04-11 2006-01-18 CropDesign N.V. Method to increase stress tolerance in plants
US7525013B2 (en) * 2003-06-30 2009-04-28 United Soybean Board Soybean selection system based on AEC-resistance
EP1502955A1 (en) * 2003-08-01 2005-02-02 Institut für Pflanzengenetik und Kulturpflanzenforschung Methods for the production of stably transformed, fertile gramineae employing agrobacterium-mediated transformation of isolated gramineae zygotes
US7560611B2 (en) 2003-08-05 2009-07-14 Monsanto Technology Llc Method and apparatus for substantially isolating plant tissues
WO2006013072A2 (en) 2004-08-02 2006-02-09 Basf Plant Science Gmbh Method for isolation of transcription termination sequences
UA90279C2 (ru) * 2004-08-03 2010-04-26 Грэйн Биотек Австралия Пти Лтд Стресс-толерантное трансгенное растение пшеницы
JP4788002B2 (ja) * 2004-10-01 2011-10-05 独立行政法人農業生物資源研究所 減圧処理/加圧処理の使用を含む、アグロバクテリウムを用いる細胞への核酸導入方法
US8088971B2 (en) 2005-03-08 2012-01-03 Basf Plant Science Gmbh Expression enhancing intron sequences
CA2626304C (en) 2005-10-20 2015-07-14 Commonwealth Scientific And Industrial Research Organisation Cereals with altered dormancy
RU2301519C1 (ru) * 2005-11-22 2007-06-27 Институт Физиологии растений им. К.А. Тимирязева Российской Академии Наук Способ получения трансгенных однодольных растений in vitro
EP1795611B1 (en) * 2005-12-08 2012-05-02 Entelechon Gmbh Selection marker system and method for screening a choline tolerant plant cell
AU2007272314B2 (en) 2006-07-12 2014-05-01 Commonwealth Scientific And Industrial Research Organisation Polynucleotides and methods for enhancing salinity tolerance in plants
WO2008021543A2 (en) 2006-08-17 2008-02-21 Monsanto Technology, Llc Transgenic plants with enhanced agronomic traits
CN101528932B (zh) 2006-08-31 2014-12-10 孟山都技术有限公司 植物无选择转化
PL2121935T3 (pl) 2006-09-25 2011-12-30 Schmuelling Thomas Transkrypcyjne represory szlaków sygnałowych cytokinin i ich zastosowanie
AU2008212127B2 (en) 2007-02-05 2013-03-28 National University Of Singapore Putative cytokinin receptor and methods for use thereof
EP2840142B1 (en) 2007-06-06 2018-12-26 Monsanto Technology LLC Genes and uses for plant enhancement
JP2010531640A (ja) 2007-06-29 2010-09-30 コモンウェルス サイエンティフィック アンド インダストリアル リサーチ オーガニゼイション 毒性化合物の分解方法
EP2175714A4 (en) 2007-07-10 2011-01-26 Monsanto Technology Llc TRANSGENIC PLANTS WITH IMPROVED AGRONOMIC CHARACTERISTICS
MX2010001734A (es) 2007-08-13 2010-08-04 Commw Scient Ind Res Org Cebada con bajos niveles de hordeinas.
US8097712B2 (en) 2007-11-07 2012-01-17 Beelogics Inc. Compositions for conferring tolerance to viral disease in social insects, and the use thereof
EP2537937A3 (en) 2008-04-29 2013-04-10 Monsanto Technology LLC Genes and uses for plant enhancement
EP2924118A1 (en) 2008-07-01 2015-09-30 Monsanto Technology LLC Recombinant DNA constructs and methods for modulating expression of a target gene
AU2009287411B2 (en) 2008-08-25 2013-11-07 Commonwealth Scientific And Industrial Research Organisation Resistance genes
CN113957105B (zh) 2008-11-18 2024-11-01 联邦科学技术研究组织 产生ω-3脂肪酸的酶和方法
WO2010075143A1 (en) 2008-12-22 2010-07-01 Monsanto Technology Llc Genes and uses for plant enhancement
US8404930B2 (en) * 2009-01-26 2013-03-26 Pioneer Hi-Bred International, Inc. Methods for improving monocot transformation
US20120277117A1 (en) 2009-02-27 2012-11-01 Adel Zayed Hydroponic apparatus and methods of use
US8962584B2 (en) 2009-10-14 2015-02-24 Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem, Ltd. Compositions for controlling Varroa mites in bees
NZ627060A (en) 2010-03-08 2016-01-29 Monsanto Technology Llc Polynucleotide molecules for gene regulation in plants
US8816153B2 (en) 2010-08-27 2014-08-26 Monsanto Technology Llc Recombinant DNA constructs employing site-specific recombination
GB201020737D0 (en) 2010-12-08 2011-01-19 Univ Leuven Kath Anti-oxidative stress agents
EP2734620A4 (en) 2011-07-20 2014-12-24 Commw Scient Ind Res Org ENZYMES FOR REMOVING ORGANOPHOSPHATES
AU2012308694B2 (en) 2011-09-13 2018-06-14 Monsanto Technology Llc Methods and compositions for weed control
BR112014005958A2 (pt) 2011-09-13 2020-10-13 Monsanto Technology Llc métodos e composições químicas agrícolas para controle de planta, método de redução de expressão de um gene accase em uma planta, cassete de expressão microbiana, método para fazer um polinucleotídeo, método de identificação de polinucleotídeos úteis na modulação de expressão do gene accase e composição herbicida
US9840715B1 (en) 2011-09-13 2017-12-12 Monsanto Technology Llc Methods and compositions for delaying senescence and improving disease tolerance and yield in plants
US10829828B2 (en) 2011-09-13 2020-11-10 Monsanto Technology Llc Methods and compositions for weed control
CN109997852A (zh) 2011-09-13 2019-07-12 孟山都技术公司 用于杂草控制的方法和组合物
CN107739737A (zh) 2011-09-13 2018-02-27 孟山都技术公司 用于杂草控制的方法和组合物
US10806146B2 (en) 2011-09-13 2020-10-20 Monsanto Technology Llc Methods and compositions for weed control
US10760086B2 (en) 2011-09-13 2020-09-01 Monsanto Technology Llc Methods and compositions for weed control
US9920326B1 (en) 2011-09-14 2018-03-20 Monsanto Technology Llc Methods and compositions for increasing invertase activity in plants
CN104271743B (zh) 2011-12-27 2019-11-05 联邦科学技术研究组织 产生脂质的方法
BR112014017196A2 (pt) 2012-01-11 2017-06-13 The Australian National University métodos para a modulação ou inibição da modulação da arquitetura da raiz de uma planta, planta, planta transgênica, peptídeo regulador de arquitetura de raiz isolado (rar), polinucleotídeo isolado, vetor recombinante, célula hospedeira transgênica e promotor de planta isolado
CN104619843B (zh) 2012-05-24 2020-03-06 A.B.种子有限公司 用于使基因表达沉默的组合物和方法
SG11201408362SA (en) 2012-06-15 2015-01-29 Commw Scient Ind Res Org Production of long chain polyunsaturated fatty acids in plant cells
MX364070B (es) 2012-10-18 2019-04-10 Monsanto Technology Llc Métodos y composiciones para el control de plagas vegetales.
US20150307894A1 (en) 2012-11-28 2015-10-29 Monsanto Technology Llc Transgenic Plants With Enhanced Traits
WO2014106837A2 (en) 2013-01-01 2014-07-10 A. B. Seeds Ltd. ISOLATED dsRNA MOLECULES AND METHODS OF USING SAME FOR SILENCING TARGET MOLECULES OF INTEREST
US10683505B2 (en) 2013-01-01 2020-06-16 Monsanto Technology Llc Methods of introducing dsRNA to plant seeds for modulating gene expression
US10000767B2 (en) 2013-01-28 2018-06-19 Monsanto Technology Llc Methods and compositions for plant pest control
WO2014164761A1 (en) 2013-03-13 2014-10-09 Monsanto Technology Llc Methods and compositions for weed control
CN105263329B (zh) 2013-03-13 2020-09-18 孟山都技术公司 用于杂草控制的方法和组合物
US20140283211A1 (en) 2013-03-14 2014-09-18 Monsanto Technology Llc Methods and Compositions for Plant Pest Control
US10568328B2 (en) 2013-03-15 2020-02-25 Monsanto Technology Llc Methods and compositions for weed control
CN103278502B (zh) * 2013-04-23 2015-12-23 北京大北农科技集团股份有限公司 启动子活性的检测方法
EP2801619A1 (en) 2013-05-10 2014-11-12 Fondazione Edmund Mach Method of enhancing photosynthesis using Curvature thylakoid 1 (CURT1) polypeptide
NZ631602A (en) 2013-06-13 2019-09-27 Grains Res & Dev Corp Barley with very low levels of hordeins
CN105980567B (zh) 2013-07-19 2021-04-16 孟山都技术有限公司 用于控制叶甲属的组合物和方法
US9850496B2 (en) 2013-07-19 2017-12-26 Monsanto Technology Llc Compositions and methods for controlling Leptinotarsa
WO2015024066A1 (en) 2013-08-21 2015-02-26 Commonwealth Scientific And Industrial Research Organisation Rust resistance gene
WO2015054106A1 (en) 2013-10-07 2015-04-16 Monsanto Technology Llc Transgenic plants with enhanced traits
US10428336B2 (en) 2013-10-16 2019-10-01 The Australian National University Method for modulating plant growth
CN105849266A (zh) 2013-11-04 2016-08-10 孟山都技术公司 控制节肢动物寄生物和害虫侵染的组合物和方法
UA119253C2 (uk) 2013-12-10 2019-05-27 Біолоджикс, Інк. Спосіб боротьби із вірусом у кліща varroa та у бджіл
NL2011980C2 (en) 2013-12-17 2015-06-18 Univ Leiden New effects of plant ahl proteins.
CN111154724B (zh) 2013-12-18 2024-02-06 联邦科学技术研究组织 包含二十二碳六烯酸的提取的植物脂质
MX368629B (es) 2014-01-15 2019-10-08 Monsanto Technology Llc Metodos y composiciones para el control de malezas utilizando polinucleotidos de 5-enolpiruvilshikimato-3-fosfato sintasa (epsps).
CN110506752B (zh) 2014-04-01 2022-02-18 孟山都技术公司 用于控制虫害的组合物和方法
AU2015280252A1 (en) 2014-06-23 2017-01-12 Monsanto Technology Llc Compositions and methods for regulating gene expression via RNA interference
US11807857B2 (en) 2014-06-25 2023-11-07 Monsanto Technology Llc Methods and compositions for delivering nucleic acids to plant cells and regulating gene expression
CA2953008C (en) 2014-06-27 2024-03-19 Nuseed Pty Ltd Lipid comprising docosapentaenoic acid
US10378012B2 (en) 2014-07-29 2019-08-13 Monsanto Technology Llc Compositions and methods for controlling insect pests
EP3234156A1 (en) 2014-12-19 2017-10-25 AgBiome, Inc. Methods and compositions for providing resistance to glufosinate
MX395326B (es) 2015-01-22 2025-03-25 Monsanto Technology Llc Composiciones y métodos para controlar leptinotarsa.
WO2016196738A1 (en) 2015-06-02 2016-12-08 Monsanto Technology Llc Compositions and methods for delivery of a polynucleotide into a plant
WO2016196782A1 (en) 2015-06-03 2016-12-08 Monsanto Technology Llc Methods and compositions for introducing nucleic acids into plants
CN105039391A (zh) * 2015-08-10 2015-11-11 东北农业大学 一种建立农杆菌介导东农冬麦1号成熟胚遗传转化的方法
ES2892627T3 (es) 2015-08-27 2022-02-04 Monsanto Technology Llc Proteínas inhibidoras de insectos novedosas
EP3337923B2 (en) 2015-09-21 2023-01-04 Modern Meadow, Inc. Fiber reinforced tissue composites
KR20170096093A (ko) 2016-02-15 2017-08-23 브렌던 패트릭 퍼셀 복합체 생제작된 물질
CA3008850A1 (en) 2017-06-29 2018-12-29 Modern Meadow, Inc. Yeast strains and methods for producing collagen
CN107860774B (zh) * 2017-11-10 2020-01-07 青岛市农业科学研究院 一种黄瓜根癌农杆菌敏感基因型的筛选方法
AU2018253595A1 (en) 2017-11-13 2019-05-30 Modern Meadow, Inc. Biofabricated leather articles having zonal properties
US10941428B2 (en) 2018-09-12 2021-03-09 Universidad Politécnica de Madrid Reagents and methods for the expression of an active NifB protein and uses thereof
CN109321594B (zh) * 2018-11-09 2023-11-03 湖南农业大学 一种以黄花蒿悬浮细胞系为受体的转iaaM基因提高黄花蒿中青蒿素含量的方法
CA3121853A1 (en) 2019-01-17 2020-07-23 Modern Meadow, Inc. Layered collagen materials and methods of making the same
KR20210149063A (ko) 2019-03-08 2021-12-08 커먼웰쓰 사이언티픽 앤 인더스트리알 리서치 오거니제이션 식물 세포에서 니트로게나제 폴리펩티드의 발현
WO2021019394A1 (en) 2019-07-26 2021-02-04 Oxford University Innovation Limited Modified plants
US12173293B2 (en) 2020-11-20 2024-12-24 AgBiome, Inc. Compositions and methods for incorporation of DNA into the genome of an organism
MX2023007427A (es) 2020-12-21 2023-07-03 Monsanto Technology Llc Proteinas inhibidoras de insectos novedosas.
UY39585A (es) 2020-12-23 2022-07-29 Monsanto Technology Llc Proteínas que exhiben actividad inhibidora de insectos frente a plagas con importancia agrícola de plantas de cultivo y semillas
WO2022146874A1 (en) 2020-12-31 2022-07-07 Monsanto Technology Llc Novel insect inhibitory proteins
WO2023041983A2 (en) 2021-09-17 2023-03-23 University Of Freiburg Proteins for regulation of symbiotic infection and associated regulatory elements
US20230143932A1 (en) 2021-09-20 2023-05-11 University Of Freiburg Pin6 proteins for the formation of nodule-like structures
WO2023223268A1 (en) 2022-05-19 2023-11-23 Cambridge Enterprise Limited Proteins for regulation of symbiotic nodule organ identity
US20250075226A1 (en) 2023-08-29 2025-03-06 University Of Freiburg Proteins for regulation of symbiotic infection and associated regulatory elements
WO2025052334A1 (en) 2023-09-08 2025-03-13 Cambridge Enterprise Limited Bundle sheath cell specific plant promoter

Family Cites Families (23)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA1341290C (en) 1985-05-13 2001-09-11 Thomas Hohn Method of genetically modifying plants
US6037526A (en) * 1986-05-05 2000-03-14 Ciba-Geigy Method of inserting viral DNA into plant material
US5187073A (en) * 1986-06-30 1993-02-16 The University Of Toledo Process for transforming gramineae and the products thereof
EP0267159A3 (de) 1986-11-07 1990-05-02 Ciba-Geigy Ag Verfahren zur genetischen Modifikation monokotyler Pflanzen
US5218104A (en) * 1986-12-19 1993-06-08 Agricultural Genetics Company Limited Bowman-Birk trypsin inhibitor isolated from Vigna unguiculata
EP0332581B1 (de) 1988-03-08 1996-12-11 Ciba-Geigy Ag Regeneration von fertilen Gramineen-Pflanzen aus der Unterfamilie Pooideae ausgehend von Protoplasten
WO1989012102A1 (en) * 1988-06-01 1989-12-14 The Texas A&M University System Method for transforming plants via the shoot apex
JPH05501352A (ja) 1989-08-09 1993-03-18 ディカルブ ジェネティクス コーポレイション 安定な形質転換稔性単子葉植物およびそれらの細胞を製造するための方法および組成物
US5550318A (en) * 1990-04-17 1996-08-27 Dekalb Genetics Corporation Methods and compositions for the production of stably transformed, fertile monocot plants and cells thereof
US5484956A (en) * 1990-01-22 1996-01-16 Dekalb Genetics Corporation Fertile transgenic Zea mays plant comprising heterologous DNA encoding Bacillus thuringiensis endotoxin
HU220773B1 (hu) * 1990-01-22 2002-05-28 Dekalb Genetics Corporation Eljárás termő transzgenikus kukoricanövények előállítására
US5225341A (en) * 1990-07-19 1993-07-06 The Regents Of The University Of California Biologically safe plant transformation system using a ds transposon
NL9002116A (nl) 1990-09-27 1992-04-16 Clovis Matton N V Werkwijze voor het genetisch manipuleren van plantecellen, recombinante plasmiden, recombinante bacterien, planten.
ES2299172T3 (es) 1991-02-07 2008-05-16 Bayer Bioscience N.V. Promotores especificos de estambres de maiz.
AU2515592A (en) 1991-08-23 1993-03-16 University Of Florida A novel method for the production of transgenic plants
US5610042A (en) 1991-10-07 1997-03-11 Ciba-Geigy Corporation Methods for stable transformation of wheat
IL101119A0 (en) 1992-03-03 1992-11-15 Univ Ramot Transgenic wheat
WO1994000583A1 (en) 1992-06-23 1994-01-06 South Dakota State University Transformation of plants by direct injection of dna
EP0604662B1 (en) 1992-07-07 2008-06-18 Japan Tobacco Inc. Method of transforming monocotyledon
AU4469793A (en) 1992-08-19 1994-02-24 Monsanto Company Method for transforming monocotyledonous plants
CA2148499C (en) 1993-09-03 2006-07-11 Hideaki Saito Method for transforming monocotyledons using scutella of immature embryos
US5631152A (en) * 1994-10-26 1997-05-20 Monsanto Company Rapid and efficient regeneration of transgenic plants
WO1997048814A2 (en) 1996-06-21 1997-12-24 Monsanto Company Methods for the production of stably-transformed, fertile wheat employing agrobacterium-mediated transformation and compositions derived therefrom

Also Published As

Publication number Publication date
EA199800212A1 (ru) 1998-10-29
HUP9902123A2 (hu) 1999-10-28
CA2230216A1 (en) 1997-12-24
AU738153C (en) 2004-07-01
CN1208437A (zh) 1999-02-17
US7026528B2 (en) 2006-04-11
US20030024014A1 (en) 2003-01-30
HUP9902123A3 (en) 2002-01-28
EP0856060A2 (en) 1998-08-05
MX9801421A (en) 1999-01-01
AU738153B2 (en) 2001-09-13
WO1997048814A2 (en) 1997-12-24
AU3402897A (en) 1998-01-07
WO1997048814A3 (en) 1998-03-19
TR199800294T1 (xx) 1999-10-21

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU738153C (en) Methods for the production of stably-transformed, fertile wheat employing agrobacterium-mediated transformation and compositions derived therefrom
CN109153988B (zh) 植物的基因组编辑方法
Tadesse et al. Optimisation of transformation conditions and production of transgenic sorghum (Sorghum bicolor) via microparticle bombardment
US20080229447A1 (en) Transformation of immature soybean seeds through organogenesis
CN116249780A (zh) 单子叶植物叶外植体的快速转化
CA2464147C (en) Promotion of somatic embryogenesis in plants by wuschel gene expression
Tyagi et al. Regeneration and Agrobacterium-mediated transformation of a popular indica rice variety, ADT39
US20090023212A1 (en) Method for transforming soybean (Glycine max)
AU2002342173A1 (en) Promotion of somatic embryogenesis in plants by wuschel gene expression
BG103883A (bg) Селекционен маркер
US20160138032A1 (en) Poaceae plant whose flowering time is controllable
Godwin et al. Transgenic grain sorghum (Sorghum bicolor) plants via Agrobacterium
AU7515500A (en) Modified ubiquitin regulatory system
El-Shemy et al. Reproducible transformation in two grain legumes-soybean and azuki bean-using different systems
WO2004016793A2 (en) Method of plastid transformation in asteraceae, vector for use therein and plants thus obtained
CN112867794A (zh) 用于植物的基因组编辑的dna构建物
AU2007201633B2 (en) Promotion of somatic embryogenesis in plants by wuschel gene expression
US20090023213A1 (en) Method to increase the rate of transgenic embryo formation after inoculation of immature cotyledons with agrobacterium
KR100363122B1 (ko) 유전자 조작을 통한 마늘 식물체의 형질전환 방법 및 형질전환 마늘
US6331663B1 (en) Modified full length promoters
EP4565055A1 (en) Efficient genotype-independent in planta transformation of cereals
DEEPAK MASTER OF SCIENCE (Agriculture)

Legal Events

Date Code Title Description
PD00 Pending as of 2000-06-30 in czech republic