CZ297022B6 - Rekombinantní psí herpesvirus exprimující alesponjeden antigen, zejména antigen psinky, vztekliny,parvoviru a parainfluenzy typu 2, a vakcína na bázi tohoto viru - Google Patents

Rekombinantní psí herpesvirus exprimující alesponjeden antigen, zejména antigen psinky, vztekliny,parvoviru a parainfluenzy typu 2, a vakcína na bázi tohoto viru Download PDF

Info

Publication number
CZ297022B6
CZ297022B6 CZ0428198A CZ428198A CZ297022B6 CZ 297022 B6 CZ297022 B6 CZ 297022B6 CZ 0428198 A CZ0428198 A CZ 0428198A CZ 428198 A CZ428198 A CZ 428198A CZ 297022 B6 CZ297022 B6 CZ 297022B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
virus
canine
chv
heterologous nucleotide
plasmid
Prior art date
Application number
CZ0428198A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ428198A3 (cs
Inventor
Audonnet@Jean-Christophe
Baudu@Philippe
Original Assignee
Merial
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Merial filed Critical Merial
Publication of CZ428198A3 publication Critical patent/CZ428198A3/cs
Publication of CZ297022B6 publication Critical patent/CZ297022B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • C12N15/86Viral vectors
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/295Polyvalent viral antigens; Mixtures of viral and bacterial antigens
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • A61P31/20Antivirals for DNA viruses
    • A61P31/22Antivirals for DNA viruses for herpes viruses
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • C07K14/01DNA viruses
    • C07K14/015Parvoviridae, e.g. feline panleukopenia virus, human parvovirus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/16011Herpesviridae
    • C12N2710/16711Varicellovirus, e.g. human herpesvirus 3, Varicella Zoster, pseudorabies
    • C12N2710/16722New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/16011Herpesviridae
    • C12N2710/16711Varicellovirus, e.g. human herpesvirus 3, Varicella Zoster, pseudorabies
    • C12N2710/16741Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2710/16743Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2760/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
    • C12N2760/00011Details
    • C12N2760/18011Paramyxoviridae
    • C12N2760/18411Morbillivirus, e.g. Measles virus, canine distemper
    • C12N2760/18422New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2760/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
    • C12N2760/00011Details
    • C12N2760/20011Rhabdoviridae
    • C12N2760/20111Lyssavirus, e.g. rabies virus
    • C12N2760/20122New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Resení se týká vakcín, výhodne pro psy, vyrábených z psích rekombinantních herpesviru. Konkrétne setýká rekombinantních psích herpesviru obsahujících expresní kazetu pro jeden nebo více cizorodých genu. Cizorodý gen pritom kóduje antigen vybraný zeskupiny sestávající z antigenu HA z viru psinky, F z viru psinky, G z viru vztekliny, VP2 z psího parvoviru, HA z viru psí parainfluenzy typu 2, F z viru psí parainfluenzy typu 2, OspA z Borrelia burgdorferi a OspB z Borrelia burgdorferi. Dále s týká vakcín, které obsahují alespon jeden herpesviruspodle resení.

Description

Předkládaný vynález se týká vakcín, výhodně vakcín pro psy, připravených ze psích rekombinantních herpesvirů (herpetických virů). Předkládaný vynález se konkrétně týká rekombinantních psích herpesvirů obsahujících expresní kazetu pro jeden nebo více cizorodých genů, a vakcín, které obsahují alespoň jeden herpesvirus podle vynálezu.
Dosavadní stav techniky
Psí herpesviróza je způsobena psím herpesvirem (CHV). Psí herpesvirus (CHV) je řazen do předčeledi Alphaherpesvirinae. Tento herpesvirus je hlavním patogenem pro novorozená štěňata. Psí herpesviróza se manifestuje hlavně hemoragickým onemocněním u štěňat a benigních onemocnění horní části respiračního traktu u dospělých psů. V současnosti neexistují žádné vakcíny pro štěňata na ochranu proti psí herpesviróze.
Kromě toho domácí psi trpí řadou jiných nemocí a vývoj vakcinačního vektoru schopného exprimovat různé antigeny psích patogenních agens by umožnil, že by se zjednodušily očkovací programy a zlepšila by se jejich účinnost. To je významné obzvláště pro štěňata v chovných stanicích. Z patogenních agens, která jsou pro psy nebezpečná, lze uvést virus psinky, virus Rubarthovy hepatitidy, virus vztekliny, virus psí parvovirózy, psí koronavirus, virus parainfluenzy typu 2, Bordetella bronchiseptica, Borrelia burgdorferi, Leptospira spp., Leishmania infantům.
Podstata vynálezu
O genomu viru CHV je toho dosud málo známo. Organizace genomu tohoto viru byla publikována teprve nedávno (Rémond M. et al., J. Gen. Virol., 1996, 77, 37^18) a byly popsány geny pro tři hlavní glykoproteiny gB, gC a gD, a také gen nazvaný CHV ORF2 (K. Limbách et al., J. Gen. Virol. 1994, 75, 2029-2039).
Na základě své práce na CHV byli původci úspěšní při určování několika úseků, které nejsou esenciální pro replikaci in vitro, což se ukázalo být použitelné pro konstrukci rekombinantních CHV virů. Původci jsou tudíž v pozici, kdy mohou poprvé navrhnout CHV virus jako vakcinační vektor, pro psa. Bylo zjištěno, že vakcinační vektory podle vynálezu byly obzvláště výhodné pro očkování psů. Ve skutečnosti je psí herpesvirus vysoce druhově specifický a má rozsáhlý genom obsahující několik potenciálních inzerčních míst a umožňujících současnou inzerci několika expresních kazet pro cizorodé geny. To poskytuje možnost očkování psů současně proti různým psím patogenním agens prostřednictvím jednoho rekombinantního viru.
Hlavním cílem vynálezu je poskytnout vakcinační vektor umožňující expresi imunogenů psích patogenů za účelem ochrany psů proti hlavním psím infekčním onemocněním.
Dalším cílem vynálezu je poskytnout takový vektoru umožňující očkování psů a obzvláště štěňat majících mateřské protilátky prostřednictvím způsobu podání přes sliznice, konkrétně perorální, nazální nebo konjuktivální cestou.
Ještě dalším cílem vynálezu je poskytnou takový vektor, který současně umožní očkování štěňat proti herpesviróze.
-1 CZ 297022 B6
Předmětem předkládaného vynálezu je tedy rekombinantní živá vakcína která používá jako vektor psí herpesvirus obsahující a exprimující alespoň jednu nukleotidovou sekvenci kódující polypeptid, tato sekvence je vložena do místa, které není esenciální pro replikaci in vitro.
Původci izolovali a analyzovali genomový fragment CHV viru, na kterém charakterizovali 5 otevřených čtecích rámců (ORF1 až ORF5, ožívaná zkratka OFR je z anglického „open reading frame“) a bylo prokázáno, že dva z nich (ORF3 a ORF5) nejsou esenciální pro replikaci in vitro. Kromě toho původci zjistili, že pro inzerci cizorodých genů mohou být také použity další úseky CHV genomu. Tato inzerční místa jsou: gen thymidinkinázy (ORF CHV TK) (Rémond M. et al., Virus Research, 1995, 39, 341-354). a sekvence umístěná mezi ORF CHV orfl9 (nebo ORF19) a ORF CHV orf22 (nebo ORF22) (Rémond M. et al., J. Gen. Virol. 1996, 76, 37-48). Tato místa jsou popsána přesněji v příkladech předkládaného vynálezu.
Výhodně vložená sekvence kóduje antigenní polypeptid a výhodněji antigenní polypeptid psího patogenního agens. Je také možné vložit sekvence kódující imunomodulační proteiny, jako jsou například cytokiny. Podle výhodné varianty je možné použít v kombinaci sekvenci kódující cytokin nebo analog, a sekvenci kódující antigen. Jestliže je zapotřebí, může být použito několik cytokinových sekvencí navzájem v kombinaci, volitelně v kombinaci s jednou nebo více sekvencí kódujících antigeny.
Inzerce do míst je prováděna jednoduchou inzercí (bez delece) nebo po parciální či totální deleci ORF použitých jako inzerční místa.
Jako výchozí virus pro konstrukci rekombinantních CHV virů je možné konkrétně použít kmen CHV F205, který byl izolován L. Carmichaelem (Proč. Soc. Exp. Biol. Med., 1965, 120, 644650).
Pro expresi cizorodých genů vložených do CHV podle předkládaného vynálezu genomu, bude výhodné použít silný eukaryotický promotor, jako je například nejvýhodněji brzký raný (IE) promotor cytomegaloviru (CMV). Rozumí se, že promotor CMV IE konkrétně znamená fragment, jaký je například uváděn v příkladu, a také jeho subfragmenty, které si udržely stejnou aktivitu promotoru. Promotor CMV IE může být lidský (HCMF IE) promotor nebo myší (MCMV IE) promotor nebo alternativně CMV IE promotor jiného původu, například CMV laboratorního potkana, morčete nebo prasečí CMV.
Do jednoho místa pod kontrolou různých promotorů mohou být vloženy alespoň dvě nukleotidové sekvence. Mohou to být konkrétně promotory CMV IE různého původu.
Podle výhodného provedení vynálezu se další promotor používá v kombinaci s CMV IE promotorem tak, že tyto dva promotory sousedí svými 5' konci a že se transkripce zahájená z těchto dvou promotorů uskutečňuje v opačných směrech. Toto konkrétní uspořádání umožňuje vložit dvě nukleotidové sekvence do stejného místa, jedna po kontrolu promotoru použitého s ním v kombinaci. Tato konstrukce je pozoruhodná faktem, že přítomnost promotoru CMV IE a obzvláště části jeho enhanceru, může aktivovat transkripci indukovanou promotorem použitým v kombinaci. Jako promotor použitý v kombinaci může být uveden například promotor CMV odlišných živočišných druhů od prvního promotoru. Je také možné si představit jiné promotory, jako je například promotor RNA1.8 viru Markovy nemoci (MDV) (G. Bradley et al., J. Virol., 1989, 63,2534-2542).
Nukleotidová sekvence vložená do vektoru CHV, aby byla exprimována, může být jakákoliv sekvence kódující antigenní polypeptid psího patogenního agens, která je schopná, když je exprimována za příznivých podmínek podle vynálezu, vyvolat imunizaci vedoucí k účinné ochraně očkovaného zvířete proti patogennímu agens. Nukleotidové sekvence kódující požadované antigeny pro dané onemocnění, konkrétně virové, bakteriální nebo parazitární nemoci uvedené výše, mohou tudíž být vloženy za podmínek popsaných předkládaným vynálezem.
-2CZ 297022 B6
Typickým provedením vynálezu je inzerce alespoň jedné nukleotidové sekvence kódující vhodné polypeptid viru psinky (canine distemper virus = CDV) a výhodně CDV polypeptid HA (Sidhu M. et al., Virology, 1993, 193, 66-72) nebo CDV polypeptid F (Barrett T. et al., Virus Research, 1987, 8, 373-386). Je také možné vložit oba tyto geny společně do vektoru CHV. Tímto je získána rekombinantní živá vakcína vyvolávající ochranu proti psince.
Dalším výhodným provedením vynálezu je inzerce nukleotidových sekvencí kódujících antigeny nebo fragmenty antigenů viru vztekliny, obzvláště genu G (patenty FR-A-2 515 685 a EP-A162 757), viru psí parvovirózy (VP2 gen) (Parrish C. et al., J. Virol., 1991, 65, 6544-6552) nebo virus parainfluenzy typu 2 (geny HA a/nebo F). Je také možné vložit sekvence Borrelia burgdorferi kódující antigeny, obzvláště geny kódující antigeny OspA a OspB (Bergstróm S. et al., Mol. Microbiol., 1989, 3, 479M86).
Typickým provedením vynálezu je vakcína obsahující nukleotidovou sekvenci kódující antigen viru psinky pod kontrolou CMVIE a nukleotidovou sekvenci kódující antigen dalšího psího virového onemocnění, obzvláště nemoci uvedených výše, pod kontrolu jiného promotoru.
Přirozeně, heterologní sekvence a jejich přidružené promotory mohou být vloženy obvyklejším způsobem na tandemu do místa inzerce, totiž podle stejného směru transkripce.
Exprese několika heterologních genů vložených do inzerčního místa může také být umožněna inzercí sekvence známé jako „IRES“ (vnitřní místo pro vstup ribozomu = místo vysoké afinity pro vazbu iniciačního komplexu) pocházející zejména z pikomaviru, jako je například virus verikulámí choroby prasat (swine vesicular disease virus, SVDS; B.-F. Chen et al., J. Virology, 1993, 67, 2142-2148), virus encefalomyokarditidy (EMCV; R. J. Kaufman et al., Nucleic Acids Research, 1991, 19, 4485-4490) nebo virus slintavky a kulhavky (FMDV; N. Luz a E. Beck, J. Virology, 1991, 65, 6486-6494) nebo eventuálně jiného původu. Obsah těchto tří článků je zahrnut formou odkazu. Kazeta pro expresi těchto dvou genů by tedy měla následující minimální strukturu: promotor - gen 1 - IRES - gen 2 - polyadenylační signál. Rekombinantní živá vakcína podle vynálezu může tedy obsahovat, vloženou do inzerčního místa, expresní kazetu obsahující postupně promotor, dva nebo více genů vždy vzájemně oddělených IRES a polyadenylační signál.
Kromě inzerce do místa podle vynálezu je možné uskutečnit jednu nebo více dalších inzercí, jednu nebo více mutací nebo jednu nebo více delecí na jiném místě genomu. Ve všech případech inzerce do místa jiného než toho popsaného ve vynálezu umožní jiným genům, aby byly exprimovány.
Použití rekombinantních virů podle vynálezu umožní to, že psi budou chráněni proti jedné nebo více nemocí uvedených výše a současně proti psí herpesviróze.
Předmětem předkládaného vynálezu je také formulace polyvalentní vakcíny obsahující, smíchané nebo pro smíchání, alespoň dvě rekombinantní živé vakcíny, jako byly definovány výše, tyto vakcíny obsahují různé vložené izolované sekvence, obzvláště z různých patogenů. Tyto formulace vakcíny obsahují dávky a/nebo vehikula, která jsou vhodná pro způsob podání.
Předmětem předkládaného vynálezu jsou také viry CHV modifikované v alespoň jednom označeném místě.
Jeho předmětem je také vakcinační metoda, zejména psů, při které je podáváno účinné množství vakcíny, jak byla definována výše, prostřednictvím jakékoliv parenterální nebo slizniční cesty, ale výhodně slizniční cestou, konkrétně perorální a/nebo nazální cestou. Vakcinační dávka bude výhodně mezi 102 CCID50 a 107 CCID50 (CCID50 = 50% infekční dávka pro buněčné kultury). Výhodně, dávka pro parenterální způsob podání bude mezi 104 CCID50 a 107 CCID50 a pro
-3CZ 297022 B6 perorální a/nebo nazální cestu mezi 102 CCID50 a 105 CCID50. Jak bylo definováno, vakcína je obecně účinná po jednom podání perorální a/nebo nazální cestou. Nicméně může být nezbytné opakované podávání.
Předmětem předkládaného vynálezu jsou také fragmenty DNA obsahující celou nebo část sekvence definované polohami 1 až 6216 na. sekv. id. č. 1 (obrázek 1), zejména celé nebo část definovaného místa ORF3 a/nebo hraniční sekvence lokalizované v protisměru a po směru od tohoto místa, tyto fragmenty budou použitelné jako hraniční ramena pro techniky homologní rekombinace s genomem viru CHV zvoleného jako výchozí virus. Vynález se přirozeně také týká variant těchto fragmentů, které odpovídají ekvivalentním sekvencím jiných kmenů CHV. Odborník si zcela volně může vybrat úseky sloužící jako hraniční ramena v souvislosti se zvoleným typem inzerce (s delecí nebo bez ní) nebo delece (parciální nebo totální). Obecně řečeno, hraniční ramena mohou tak mít 100 až 800 párů bází, ale mohou být větší, pokud je to zapotřebí.
Dalším předmětem vynálezu je způsob přípravy vektorů a vakcín podle vynálezu, jak se ukáže z popisu vakcín, inzercí požadovaných genů na inzerční místo.
Popis obrázků
Vynález bude nyní být detailněji popsán neomezujícími příklady realizace, přičemž se odkazuje na obrázky, kde:
Obrázek 1: Sekvence úseku CHV (6216 párů bází) a translace různých otevřených čtecích rámců (ORF) přítomných v této sekvenci (ORF1 až ORF5).
Obrázek 2: Plazmid pPB200 (donorový plazmid pro inzerci expresních kazet do místa CHV ORF3).
Obrázek 3: Konstrukce plazmidu pP3202 (donorový plazmid pro inzerci expresních kazet do místa CHV ORF5).
Obrázek 4: Konstrukce plazmidu pPB204 (donorový plazmid pro inzerci expresních kazet do místa CHV TK).
Obrázek 5: Konstrukce plazmidu pPB206 (donorový plazmid pro inzerci expresních kazet do místa umístěného mezi geny CHV ORF 19 a CHV ORF22).
Obrázek 6: Konstrukce plazmidu pPB208 (expresní kazeta pro gen CDV HA).
Obrázek 7: Konstrukce plazmidu pPB210 (expresní kazeta pro gen CDV F).
Obrázek 8: Konstrukce plazmidu PPB213 (donorový plazmid pro inzerci kazety pro expresi genu CDV HA do místa CHV ORF3).
Obrázek 9: Konstrukce plazmidu pPB214 (donorový plazmid pro inzerci kazety po expresi genu CDV F do místa CHV ORF3).
Obrázek 10: Plazmid pPB200'.
Obrázek 11: Konstrukce plazmidu pPB212 (kazeta pro expresi genu G viru vztekliny).
Obrázek 12: Konstrukce plazmidu pPB125 (donorový plazmid pro inzerci kazety pro expresi genu G viru vztekliny do místa CHV ORF3).
Obrázek 13: Konstrukce plazmidu pPB216 (donorový plazmid pro inzerci kazety pro expresi genu CDV HA do místa CHV ORF5).
Obrázek 14: Konstrukce plazmidu pPB217 (donorový plazmid pro inzerci kazety pro expresi genu CDV HA do místa CHV TK).
Obrázek 15: Konstrukce plazmidu pPB218 (donorový plazmid pro inzerci kazety pro expresi genu CDV HA do místa umístěného mezi geny CHV ORF 19 a CHV ORF22).
-4CZ 297022 B6
Seznam sekvencí, které byly použity pro konstrukce v inzerčních místech vektoru CHV, a na které se v textu případně odkazuje:
sekv. id. č. 1 sekv. id. č. 2 sekv. id. č. 3 sekv. id. č. 4 sekv. id. č. 5 sekv. id. č. 6 sekv. id. č. 7 sekv. id. č. 8 sekv. id. č. 9 sekv. id. č. 10 sekv. id. č. 11 sekv. id. č. 12 sekv. id. č. 13 sekv. id. č. 14 sekv. id. č. 15 sekv. id. č. 16 sekv. id. č. 17 sekv. id. č. 18 sekv. id. č. 19 sekv. id. č. 20 sekv. id. č. 21 sekv. id. č. 22 sekv. id. č. 23 sekv. id. č. 24 sekv. id. č. 25 sekv. id. č. 26 sekv. id. č. 27 sekv. id. č. 28 sekv. id. č. 29 sekv. id. č. 30
Kompletní sekvence úseku CHV ORF 1 -> ORF5, v plné délce je uvedena na obrázku 1,
ORF1 aminokyselinová sekvence z obrázku 1,
ORF2 aminokyselinová sekvence z obrázku 1,
ORF3 aminokyselinová sekvence z obrázku 1,
ORF 4 aminokyselinová sekvence z obrázku 1, (Parciální) ORF5 aminokyselinová sekvence z obrázku 1,
Oligonukleotid JCA070,
Oligonukleotid JCA071,
Oligonukleotid JCA072,
Oligonukleotid JCA073,
Oligonukleotid JCA074,
Oligonukleotid JCA075,
Oligonukleotid JCA076,
Oligonukleotid JCA077,
Oligonukleotid JCA078,
Oligonukleotid JCA079,
Oligonukleotid JCA080,
Oligonukleotid JCA081,
Oligonukleotid JCA082,
Oligonukleotid JCA083,
Oligonukleotid JCA084,
Oligonukleotid JCA085,
Oligonukleotid JCA088,
Oligonukleotid PB089,
Oligonukleotid JCA086,
Oligonukleotid JCA087,
Oligonukleotid JCA088,
Oligonukleotid JCA089,
Oligonukleotid JCA090,
Oligonukleotid JCA091.
Příklady provedení vynálezu
Všechny konstrukce plazmidů byly prováděny s použitím standardních technik molekulární biologie popsaných autory Sambrook J. et al. (Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 2<nd > Edition. Cold Spring Harbor Laboratory. Cold Spring Harbor. N.Y. 1989). Všechny restrikční fragmenty použité pro předkládaný vynález byly izolovány pomocí soupravy „Geneclean“ (BIO 101 inc. La Jolla, Kalifornie).
Virus použitý jako výchozí virus je kmen F205 psího herpesviru (také známý jako Carmichaelův kmen). Tento kmen byl získán od Dr. L. Carmichaela (Comell University, NY), kdo izoloval a
-5CZ 297022 B6 popsal jeho biologické charakteristiky (Proč. Soc. Exp. Biol. Med., 1965, 120, 644-650). Podmínky kultivace tohoto viru jsou tyto: buňky MDCK (Madin-Darbyho buňky psích ledvin ATCC CCL34) pěstované v Eagleho minimálním esenciálním médiu (médium MEM) byly inokulovány kmenem F205 CHV tak, aby multiplicita infekce byla 1. Infikované buňky pak jsou inkubovány ve 37 °C po dobu přibližně 36 hodin, dokud není pozorován kompletní cytopatický účinek.
Příklad 1
Extrakce DNA psího herpesviru
Po kultivaci jsou supematant a lyžované buňky sklizeny a celá virová suspenze je centrifugována v 1000 g po dobu 10 minut v +4 °C, aby se odstranila buněčná debris. Virové částice jsou pak sklizeny ultracentrifugací ve 400 000 g po dobu 1 hodiny v +4 °C. Peleta je vybrána do minimálního objemu pufru (10 mM Tris, 1 mM EDTA). Tato virová koncentrovaná suspenze je ošetřena proteinázou K (konečná koncentrace 100 pg/ml) v přítomnosti dodecylsulfátu sodného (SDS) (konečná koncentrace 0,5%) po dobu 2 hodin ve 37 °C. Virová DNA je pak extrahována směsí fenolu/chloroformu a potom precipitována 2 objemy absolutního ethanolu. Po jedné noci v -20 °C po precipitované DNA stočena v 10 000 g po dobu 15 minut v +4 °C. DNA peleta je usušena a pak je nabrána do minimálního objemu sterilní ultračisté vody.
Příklad 2
Klonování a charakterizace úseku CHV ORF1-ORF5
Purifikovaná genomová DNA kmene F205 viru CHV byla štěpena restrikčními enzymy Scal a Xhol a fragment Scal-Xhol o velikosti přibližně 6200 bp byl klonován do vektoru pBlueScript SKII+ (Stratagene kat. č. 212205), předem štěpeného Scal a Xhol, za vzniku plazmidu pPB154.
Fragment Xhol-Scal klonovaný do plazmidu pPB 154 byl kompletně sekvencován na obou vláknech, což poskytlo sekvenci s 6216 bp z obrázku 1 (sekv. id. č. 1).
Na této sekvenci bylo identifikováno několik otevřených čtecích rámců větších než 65 aminokyselin (obrázek 1):
První čtecí rámec (ORF1) (polohy 1353-157) se vyskytuje na komplementárním vláknu a kóduje polypeptid z 398 aminokyselin (sek. id. č. 2).
Druhý čtecí rámec (ORF2) (polohy 1708-2970) kóduje polypeptid ze 420 aminokyselin (sekv. id. Č.3).
Třetí čtecí ráme (ORF3) (polohy 3040-4242) kóduje polypeptid ze 400 aminokyselin (sekv. id. č. 4)·
Čtvrtý čtecí rámec (ORF4) (polohy 4374-5753) kóduje polypeptid ze 459 aminokyselin (sekv. id. Č.5).
Pátý čtecí rámec (ORF5) (polohy 5872-6216) je neúplný a kóduje zkrácený protein ze 115 aminokyselin (sekv. id. č. 6).
Různé otevřené čtecí rámce jsou porovnány v tabulce uvedené níže:
-6CZ 297022 B6
Otevřený čtecí rámec Začátek-konec (polohy na obrázku 1) Velikost (počet aminokyselin)
ORF 1 (Sekv. id. č. 2) 1353 - 157 398 aa
ORF 2 (Sekv. id. č. 3) 1708 - 2970 420 aa
ORF 3 (Sekv. id. č. 4) 3040 - 4242 400 aa
ORF 4 (Sekv. id. č. 5) 4374 - 5753 459 aa
ORF 5 (Sekv. id. č. 6) 5872 - 6216 115 aa
Příklad 3
Konstrukce plazmidu pPB200 pro inzerci expresních kazet do místa CIV ORF3 (obrázek 2)
Plazmid pPB154 (9121 bp) (příklad 2) byl štěpen HindlII a Spěl, aby se izoloval fragment HindlD-Spel o velikosti 620 bp (fragment A). Plazmid pPB 154 byl štěpen EcoRI a Spěl, aby se izoloval fragment EcoRI-Spel o velikosti 659 bp (fragment B). Fragment A a B byly ligovány společně s vektorem pGEM4Z (promega kat. č. P2161), předem štěpeným EcoRI a HindlII, za vzniku plazmidu pPB199 (4096 bp). Plazmid pPB199 pak byl štěpen Spěl, ošetřen alkalickou fosfatázou, a pak ligován s vícečetným klonovacím místem získaným hybridizací následujících 2 oligonukleotidů:
JCA070 (33 mer) (sekv. id. č. 7)
5' CTAGTCCAGCAAGGTGGATCGATATCGGGCCCA 3'
JCA071 (33 mer) (sekv. id. č. 8)
5' CTAGTGGGCCCGATATCGATCCACCTTGCTGGA 3' za vzniku plazmidu pPB200 (4129 bp).
Příklad 4
Konstrukce plazmidu pPB202 pro inzerci expresních kazet do místa CHV ORF5 (obrázek 3)
Sekvence genu CHV ORF5 byla publikována nedávno (Limbách K. et al., J. Gen. Virol., 1994, 75, 2029-2039). Reakce PCR byla prováděna s genomovou DNA kmene F205 viru CHV (příklad 1) a s následujícími oligonukleotidy:
JCA072 (22 mer) (sekv. id. č. 9)
5' CAGCTTTATGTTTTTATTGTTC 3'
JCA073 (29 mer) (sekv. id. č. 10)
5’ AAAGAATTCTACAACTGTTTAATAAAGAC 3' za vzniku fragmentu PCR o velikosti 751 bp obsahujícího kompletní gen CHV ORF2. Tento fragment byl štěpen BG1II a EcoRI, aby se izoloval fragment BglII-EcoRI o velikosti 709 bp. Tento fragment byl ligován s vektorem pGEM4Z (Promega kat. č. P2161), předem štěpeným EcoRI a BamHI, za vzniku plazmidu pPB201 (3559 bp). Plazmid pPB201 pak byl štěpen Scal a PvuII a potom ligován s vícečetným klonovacím místem získaným hydridizací následujících 2 oligonukleotidů:
JCA074 (36 mer) (sekv. id. č. 11)
5' ACTCCAGCTACATGGGATATCGGGCCCATCGATCAG 3'
JCA075 (36 mer) (sekv. id. č. 12)
5' CTGATCGATGGGCCCGATATCCCATGTAGCTGGAGT 3’ za vzniku plazmidu pPB202 (3395 bp).
Příklad 5
Konstrukce plazmidu pPB204 pro inzerci expresních kazet do místa CHV TK (obrázek 4)
Sekvence genu thymidinkinázy CHV (TK) byla publikována nedávno (Rémond M. et al., Virus Research, 1995, 39, 341-354). Reakce PCR byla prováděna s genomovou DNA kmene F205 viru CHV (příklad 1) a s následujícími oligonukleotidy:
JCA076 (35 mer) (sekv. id. č. 13)
5' AGCGTTAACCTCAAAAGCCAAATTTACACTTCCCG 3'
JCA077 (38 mer) (sekv. id. č. 14)
5’ CCCAAGCTTTTCTAAAGCCCATTTATAAATAATAAATG 3’ za vzniku fragmentu PCR o velikosti 1030 bp, obsahujícího kináza thymidin (TK) gen. Tento fragment byl štěpen Hpal a HindlII, aby se izoloval 1019 o velikosti bp Phal-HindlII fragment. Tento fragment byl ligován s vektorem pSP73 (Promega kat. č. P2221), předem štěpen EcoRV a HindlII, za vzniku plazmidu pPB203 (3423 bp).
Plazmid pPB203 pak byl štěpen EcoRI a Styl a potom ligován s vícečetným klonovacím místem získaným hybridizací následujících 2 oligonukleotidů:
JCA078 (36 mer) (sekv. id. č. 15)
5’ AATTCCCAGCTACATGGGATATCGGGCCCATCGATC 3'
JCA079 (36 mer) (sekv. id. č. 16)
5' CAAGGATCGATGGGCCCGATATCCCATGTAGCTGGG 3' za vzniku plazmidu pP204 (3399 bp).
-8CZ 297022 B6
Příklad 6
Konstrukce plazmidu pPB206 pro inzerci expresních kazet do místa umístěného mezi geny CHV ORF19 a ORF22 (obrázek 5).
Sekvence intergenového úseku odpovídající přirozené deleci genů kódujících velkou podjednotku (gen „RR1“) a malou podjednotku (gen „RR2“) ribonukleotidreduktázy byla nedávno publikována (Rémond M. et al., J. Gen. Virol., 1996, 77, 37-48). Podle názvosloví použitého autory Rémond et al., delece těchto dvou genů nastává mezi otevřenými čtecími rámci nazvanými CHV „orfl9“ a CHV „orf22“ [v tomto textu označenými ORF19 a ORF22, v daném pořadí]. Reakce PCR byla prováděna s genomovou DNA kmene F205 viru CHV (příklad 1) a s následujícími oligonukleotidy:
JCA080 (36 mer) (sekv. id. č. 17)
5' GGAGATCTAGTAAATTAAATAGTAATTCATTTAATG 3'
JCA081 (33 mer) (sekv. id. č. 18)
5’ CAGTCGCGAAGATGAAAATAAAATCCATCGAAG 3’ za vzniku fragmentu PCR o velikosti 720 bp obsahujícího intergenový úsek odpovídající přirozené deleci genů CHV ORF19 a ORF22. Tento fragment byl štěpen Spěl a Nrul, aby se izoloval fragment Spel-Nrul o velikosti 709 bp. Tento fragment byl ligo ván s vektorem pGEM4Z (Promega kat. č. P2161), předem štěpeným Smál a Xbal, za vzniku plazmidu pPB205 (3572 bp). Plazmid pPB205 pak byl štěpen Mfel a potom částečně štěpen SspI, aby se izoloval fragment Mfel-SspI o velikosti 3512 bp. Tento fragment pak byl ligován s vícečetným klonovacím místem získaným hybridizací následujících 2 oligonukleotidů:
JCA082 (38 mer) (sekv. id. č. 19)
5’ AATTGGCAGCTACATGGGATATCGGGCCCATCGATAAT 3'
JCA083 (34 mer) (sekv. id. č. 20)
5' ATTATCGATGGGCCCGATATCGGATGTAGCTGGC 3’ za vzniku plazmidu pPB206 (3548 bp).
Příklad 7
Izolace genomové RNA z kmene CDV Onderstepoort a klonování komplementární DNA kódující geny HA a F
Kmen CDV Onderstepoort (Mitchell W, et al., J. Virol., Meth., 1987, 18, 121-131) byl pěstován na buňkách MDCK (Madin-Darbyho buňky psích ledvin) v médiu DMEM (Gibco). Po purifikaci viru byla izolována genomová virová RNA s použitím techniky extrakce směsí guanidinium thiokyanátu a fenol-chloroformu (Chomczynski P. a Sacchi N., Anal. Biochem., 1987, 162, 156— 159). Specifické oligonukleotidy (obsahující restrikční místa na svých 5' koncích pro usnadnění klonování amplifikovaných fragmentů) byly syntetizovány tak, aby zcela pokryly kódující úseky genů, které měly být amplifikovány (geny HA a F, v daném pořadí). Reakce reverzní transkripce (RT) a amplifíkace polymerázovou řetězovou reakcí (PCR) byly prováděny podle standardních technik (Sambrook J. et al., 1989). Každá RT-PCR reakce byla prováděna s párem specifických amplimerů a jako templát použila extrahovanou virovu genomovou RNA. Amplifikovaná kom
-9CZ 297022 B6 plementámí DNA byla extrahována směsí fenol/chloroform/izoamylalkohol (25:24:1) před štěpením restrikčními enzymy a klonováním do vhodného vdctoru.
7.1. Konstrukce expresní kazety CDV HA (pPB208) (obrázek 6)
Plazmid pCMVB (Clontech kat. č. 6177-1) byl štěpen EcoRI a Notl, aby se izoloval fragment EcoRI-Notl o velikosti 818 bp obsahující úsek promotoru brzkého raného genu lidského cytomegaloviru (fragment A).
Reakce RT-PCR byla prováděna s genomovou RNA viru CDV (kmen Onderstepoort) a s následujícími oligonukleotidy:
JCAC84 (32 mer) (sekv. id. č. 21)
5' TTGCGGCCGCATGCTCCCCTACCAAGACAAGG 3’
JCA085 (28 mer) (sekv. id. č. 22)
5' TTGGTACCTTAACGGTTACATGAGAATC 3’ za vzniku fragmentu PCR o velikosti 1837 bp obsahujícího gen CDV HA. Tento fragment byl štěpen Notl a KpnI, aby se izoloval fragment Notl-KpnI o velikosti 1826 bp (fragment B).
Fragmenty A a B byly ligovány společně s vektorem pGEM-7Zf+ (Promega kat. č. P2251), předem štěpeným EcoRI a KpnI, za vzniku plazmidu pPB207 (5634 bp).
Reakce PCR byla prováděna s plazmidem pCMVB a s následujícími oligonukleotidy:
PB088 (30 mer) (sekv. id. č. 23)
5' TTGGGTACCGCCTCGACTCTAGGCGGCCGC 3’
PB089 (32 mer) (sekv. id. č. 24)
5' TTGGGTACCGGATCCGAAAAAACCTCCCACAC 3' za vzniku fragmentu PCR o velikosti 244 bp obsahujícího polyadenylační signál časného genu viru SV40. Tento fragment byl štěpen KpnI, aby se izoloval fragment KpnI-KpnI o velikosti 233 bp. Tento fragment pak byl ligován z plazmidem pPB207, předem štěpeným KpnI, za vzniku plazmidu pPB208 (5867 bp).
7.2. Konstrukce expresní kazety CDV F (pPB210) (obrázek 7)
Plazmid PCMVB (Clontech kat. č. 6177-1) byl štěpen EcoRI a Notl, aby se izoloval fragment EcoRI-Notl o velkosti 818 bp obsahující úsek promotoru brzkého raného genu lidského cytomegaloviru (fragment A).
Reakce RT-PCR byla prováděna s genomovou RNA viru CDV (kmen Onderstepoort) a s následujícími oligonukleotidy:
-10CZ 297022 B6
JCA086 (34 mer) (sekv. id. č. 25)
5' TTGCGGCCGCATGCACAGGGGAATCCCCAAAAGC 3’
JCA087 (28 mer) (sekv. id. č. 26)
5' TTGGTACCTCAGAGTGATCTCACATAGG 3* za vzniku fragmentu PCR o velikosti 2011 bp obsahujícího gen F CDV. Tento fragment byl štěpen Notl a KpnI, aby se izoloval fragment Notl-KpnI o velikosti 2000 bp (fragment B). Fragmenty A a B byly ligovány společně s vektorem pGEM-7Zf+ (Promega kat. č. P2251), předem štěpeným EcoRI a KpnI, za vzniku plazmidů pPB209 (5808 bp).
Reakce PCR byla prováděna s plazmidem pCMVB a s následujícími oligonukleotidy:
PB088 (30 mer) (sekv. id. č. 23)
5' TTGGGTACCGCCTCGACTCTAGGCGGCCGC 3'
PB089 (32 mer) (sekv. id. č. 24)
5’ TTGGGTACCGGATCCGAAAAAACCTCCCACAC 3' za vzniku fragmentu PCR o velikosti 244 bp obsahujícího polyadenylační signál časného genu viru SV40. Tento fragment byl štěpen KpnI, aby se izoloval fragment KpnI-KpnI o velikosti 233 bp. Tento fragment pak byl ligován s plazmidem pPB209, předem štěpeným KpnI, za vzniku plazmidů pPB210 (6041 bp).
Příklad 8
Konstrukce donorového plazmidů pPB213 pro inzerci expresní kazety HA CDV do místa CHV ORF3 (obrázek 8)
Plazmid pPB208 (příklad 7.1). byl štěpen Apal a Clal, aby se izoloval fragment Apal-Clal o velikosti 2920 bp obsahující kazetu pro expresi genu HA viru CDV. Tento fragment pak byl ligován s plazmidem pPB200 (příklad 3), předem štěpeným Apal a Clal, za vzniku plazmidů pPB213 (7043 bp). Tento plazmid umožní inzerci kazety pro expresi genu HA CDV do místa CHV ORF3.
Příklad 9
Konstrukce donorového plazmidů pPB214 pro inzerci expresní kazety F CDV do místa CHV ORF3 (obrázek 9)
Plazmid pPB210 (příklad 7.2) byl štěpen Apal a Clal, aby se izoloval fragment Apal-Clal o velikosti 3100 bp obsahující kazetu pro expresi genu F viru CDV. Tento fragment pak byl ligován s plazmidem pPB200 (příklad 3), předem štěpeným Apal a Clal, za vzniku plazmidů pPB214 (7217 bp). Tento plazmid umožní inzerci kazety pro expresi genu F CDV do místa CHV ORF3.
-11 CZ 297022 B6
Příklad 10
Konstrukce donorového plazmidu pPB215 pro inzerci kazety pro expresi genu G viru vztekliny do místa CHV ORF3 (obrázek 10, 11 a 12).
Plazmid pPB199 (příklad 3) byl štěpen Spěl, ošetřen alkalickou fosfatázou, a pak ligován s vícečetným klonovacím místem získaným hydridizací následujících 2 oligonukleotidů:
JCA088 (39 mer) (sekv. id. č. 27)
5' CTAGTCCAGCAAGGTGTCGACGGATCGATATCGGGCCCA 3'
JCA089 (39 mer) (sekv. id. č. 28)
5' CTAGTGGGCCCGATATCGATCCGTCGACACCTTGCTGGA 3' za vzniku plazmidu pPB200' (4135 bp) (obrázek 10). Plazmid pCMVB (Clontech kat. č. 6177-1) byl štěpen EcoRI a Notl, aby se izoloval fragment EcoRI-Notl o velikosti 818 bp obsahující úsek promotoru brzkého raného genu lidského cytomegaloviru (fragment A).
Podle technických postupů již popsaných pro virus CDV (příklad 7), RNA kmene ERA viru vztekliny byla extrahována a puntíkována z kultury Věro buněk infikovaných virem vztekliny. Pak byla prováděna reakce RT-PCR (viz příkladu 7) s genomovou RNA viru vztekliny (kmen ERA) a s následujícími oligonukleotidy:
JCA090 (31 mer) (sekv. id. č. 29)
5' TTGCGGCCGCATGGTTCCTCAGGCTCTCCTG 3ř
JCA091 (31 mer) (sekv. id. č. 30)
5’ TTGGTACCTCACAGTCTGGTCTCACCCCCAC 3' za vzniku fragmentu PCR o velikosti 1597 bp obsahujícího gen G viru vztekliny (patenty FR-A2 515 685 a EP-A-162 757). Tento fragment byl štěpen Notl a KpnI, aby se izoloval fragment Notl-Knpl o velikosti 1586 bp (fragment B). Fragmenty A a B byly ligovány společně s vektorem pSP73 (Promega kat. č. P2221), předem štěpeným EcoRI a KpnI, za vzniku plazmidu pPB211 (4852 bp).
Reakce PCR byla prováděna s plazmidem pCMVB a s následujícími oligonukleotidy:
PB088 (30 mer) (sekv. id. č. 23)
5' TTGGGTACCGCCTCGACTCTAGGCGGCCGC 3'
PB089 (32 mer) (sekv. id. č. 24)
5' TTGGGTACCGGATCCGAAAAAACCTCCCACAC 3' za vzniku fragmentu PCR o velikosti 244 bp obsahujícího polyadenylační signál časného genu viru SV40. Tento fragment byl štěpen KpnI, aby se izoloval fragment KpnI-KpnI o velikosti 233 bp. Tento fragment pak byl ligován s plazmidem pPB211, předem štěpeným KpnI, za vzniku plazmidu pPB212 (5085) bp (obrázek 11). Plazmid pPB212 byl štěpen EcoRV a Sáli, aby se izoloval fragment EcoRV-SalI o velikosti 2664 bp obsahující kazetu pro expresi genu G viru
-12CZ 297022 B6 vztekliny. Tento fragment pak byl ligován s plazmidem pPB200' (viz výše), předem štěpeným EcoRV a Sáli, za vzniku plazmidu pPB215 (6790 bp) (obrázek 12).
Příklad 11
Konstrukce donorového plazmidu pPB216 pro inzerci expresní kazety HA CDV do místa CHV ORF5 (obrázek 13)
Plazmid pPB208 (příklad 7.1.) byl štěpen Smál a Apal, aby se izoloval fragment Smal-Apal o velikosti 2909 bp obsahující kazetu pro expresi genu HA CDV. Tento fragment pak byl ligován s plazmidem pPB202 (příklad 4), předem štěpeným EcoRV a Apal, za vzniku plazmidu pPB216 (6291 bp). Tento plazmid umožní inzerci kazety pro expresi genu HA CDV do místa CHV ORF5.
Příklad 12
Konstrukce donorového plazmidu pPB217 pro inzerci expresní kazety EA CDV do místa CHV TK (obrázek 14)
Plazmid pPB208 (příklad 7.1.) byl štěpen Apal a Clal, aby se izoloval fragment o velikosti 2920 bp obsahující kazetu pro expresi genu HA CDV. Tento fragment byl ligován s plazmidem pPB204 (příklad 5), předem štěpeným Apal a Clal, za vzniku plazmidu pPB217 (6316 bp). Tento plazmid umožní inzerci kazety pro expresi CDV HA gen do místa CHV TK.
Příklad 13
Konstrukce donorového plazmidu pPB218 pro inzerci expresní kazety HA CDV do místa umístěného mezi geny CHV ORF19 a CHV ORF22 (obrázek 15).
Plazmid pPB208 (příklad 7.1) byl štěpen Apal a Clal, aby se izoloval fragment o velikosti 2920 bp obsahující kazetu pro expresi genu HA CDV. Tento fragment byl ligován s plazmidem pPB206 (příklad 6), předem štěpeným Apal a Clal, za vzniku plazmidu pPB218 (6462 bp). Tento plazmid umožní inzerci kazety pro expresi CDV HA gen do místa umístěného mezi geny CHV ORF19aCHV ORF22.
Příklad 14
Izolace rekombinantního viru vCHVOl obsahujícího kazetu pro expresi genu HA CDV v místě CHV ORF3.
Plazmid pPB213 (viz příklad 8) byl linearizován štěpením HindlII, extrahován směsí fenolu a chloroformu, precipitován absolutním ethanolem a pak nabrán do sterilní vody.
Buňky MDCK, které vytvořily ustálený buněčný porost na Petriho misce (Coming, průměr 4,5 cm), pak byly transfekovány následující směsí: 1 pg linearizovaného plazmidu pPB213 + 5 pg virové DNA z CHV ve 300 pl média MEM a 100 pg LipofescAMINE (Gibco-BRL, kat. č. 18324-012) naředěného ve 300 pl média (konečný objem směsi = 600 pl). Těchto 600 pl pak bylo naředěno ve 3 ml (konečný objem) média MEM a rozprostřeno přes 3.106 buněk MDCK. Směs byla ponechána v kontaktu s buňkami po dobu 5 hodin, pak odstraněna a nahrazena 5 ml kultivačního média. Buňky pak byly ponechány v kultuře po dobu 24 hodin ve +37 °C. Po 24 až 48 hodinách kultivace byl sklizen 1 ml tkáňového supematantu a několik ředění tohoto supema
- 13CZ 297022 B6 tantu bylo použito k infekci dalších buněk MDCK (pěstovaných na Petriho miskách (Coming, průměr 4,5 cm)) tak, aby vznikly izolované plaky, každá miska byla infikována 1 ml ředění výchozího supematantu. Po době kontaktu 1 hodina ve 37 °C, bylo infekční médium odstraněno a nahrazeno 5 ml média MEM obsahujícího 1% agarózu, které bylo udržováno ve 42 °C. Když agaróza ztuhla, misky byly inkubovány, pokud nebyly pozorovány plaky. Agarózová vrstva pak byla odstraněna a virové plaky byly přeneseny na sterilní nitrocelulózovou membránu stejného průměru, jaký má Petriho miska použitá pro kultivaci. Tato membrána byla sama přenesena na další nitrocelulózovou membránu tak, aby se získala invertovaná „kopie“ prvního přenosu. Plaky přenesené na tuto druhou kopii pak byly hybridizovány podle standardních technik odborníkům známých s Notl-Notl fragmentem genu HA CDV o velikosti 1842 bp, získaným štěpením plazmidu pPB208 (příklad 7.1), který byl značený digoxigeninem (souprava DNA Labelling kit, Boehringer Mannheim, kat. č. 1175033). Po hybridizaci, promytí a kontaktu s vizualizačním substrátem byla nitrocelulózová membrána exponována na autoradiograflcký film. Snímky pozitivní hybridizace na této membráně indikovaly, které plaky byly konkrétní plaky obsahující rekombinantní viry CHV s vloženou kazetou HA CDV. Plaky obsahující těmto pozitivních plakům byly vyřezány ze sterilních podmínek z první nitrocelulózové membrány, vloženy do mikrozkumavky typu Eppendorf obsahující 0,05 ml média MEM a sonikovány, aby se z membrány uvolnily viriony. Médium obsažené v mikrozkumavce typu Eppendorf pak bylo naředěno médiu MEM a tak získaná ředění byla použita pro infekci dalších kultur buněk MDCK. 100% čistý rekombinantní virus obsahující kazetu HCMV-IE/CDV HA/polyA vloženou do místa ORF3 byl tudíž izolován po 3 cyklech purifikace a byl nazván vCHVOl. Homologie rekombinace byla ověřena PCR s použitím oligonukleotidů umístěných na každé straně inzerčního místa. Nepřítomnost reogranizace na genomu rekombinantního viru vCHVOl, jiné než v úseku rekombinace, byla ověřena technikou Southemova blotu.
Příklad 15
Izolace rekombinantních virů CHV exprimující různé cizorodé geny
Podle postupu popsaného v příkladu 14 byla prováděna konstrukce různých rekombinantních virů CHV s použitím donorových plazmidů popsaných v příkladech 9 až 3.
Příklad 16
Příprava vakcín
Aby se připravila vakcína, byly rekombinantní viry získané v příkladech 14 a 15 pěstovány na buňkách MDCK. Sklízení rekombinantních virů se provádělo, když byl cytopatický účinek kompletní. Lyžované buňky a tkáňový supematant byly sklizeny. Po pročištění buněčného lyzátu, aby se odstranila buněčná debris, byl virový roztok titrován. Virový roztok pak byl naředěn stabilizačním roztokem pro lyofilizaci, distribuován do lahviček v množství jedné vakcinační dávky (102 CCID50 až 107 CCID50) a na závěr lyofilizován. Pokud je to zapotřebí, virový roztok pak může být zmražen.
Příklad 17
Způsoby očkování
Podle výhodného způsobu očkování je vakcína získaná podle vynálezu opět rozpuštěna nebo rozmražena, a pak podávána parenterální nebo slizniční cestou, ale výhodně slizniční cestou, konkrétně perorální a/nebo nazální cestou. Vakcinační dávka výhodně bude mezi 102 CCID50 a 107 CCID50. Výhodně bude dávka pro parenterální cestu mezi 104 CCID50 a 107 CCED50 a pro
-14CZ 297022 B6 perorální a/nebo nazální cestu mezi 102 CCID50 a 105 CCID50. Jak bylo výše popsáno, vakcína je obecně účinná po jednom podání prostřednictvím perorální a/nebo nazální cesty. Nicméně může být nezbytné opakované podávání.
PATENTOVÉ NÁROKY

Claims (5)

1. Rekombinantní psí herpesvirus (CHV), který obsahuje a exprimuje alespoň jednu heterologní nukleotidovou sekvenci kódující antigen vybraný ze skupiny sestávající z antigenu HA z viru psinky, F z viru psinky, G z viru vztekliny, PV2 z psího parvoviru, HA z viru psí parainfluenzy typu 2, F z viru psí parainfluenzy typu 2, OspA z Borrelia burgdorferi a OspB z Borrelia burgdorferi, přičemž heterologní nukleotidové sekvence jsou vloženy alespoň do jednoho místa inzerce vybraného ze skupiny sestávající z ORF5 odpovídajícího sekvence id. č. 6 a genu hymidinkinázy.
2. Rekombinantní psí herpersvirus (CHV), který obsahuje a exprimuje alespoň jednu heterologní nukleotidovou sekvenci, která je vložena do ORF3 odpovídajícího sekvenci id. č. 4.
3. Virus podle nároku 2, který obsahuje alespoň jednu heterologní nukleotidovou sekvenci kódující antigen vybraný ze skupiny sestávající z antigenu HA z viru psinky, F z viru psinky, G z viru vztekliny, VP2 z psího parvoviru, HA z viru psí parainfluenzy typu 2, F z viru psí parainfluenzy typu 2, OspA z Borrelia burgdorferi a OspB z Borrelia burgdorferi.
4. Virus podle kteréhokoli z nároků 1 až 3, kde heterologní nukleotidová sekvence je vložena jen inzercí nebo po úplné nebo částečné deleci inzerčního úseku.
5. Virus podle kteréhokoliv z nároků 1 až 4, který obsahuje brzký raný promotor CMV.
6. Virus podle nároku 5, kde brzký raný promotor CMV je brzký raný promotor myšího nebo humánního CMV.
7. Virus podle kteréhokoliv z nároků 1 až 6, kde alespoň dvě heterologní nukleotidové sekvence jsou vloženy do stejného inzerčního úseku pod kontrolou různých promotorů.
8. Virus podle nároku 7, kde promotory jsou různé brzké rané promotory CMV.
9. Virus podle nároku 7 nebo 8, který obsahuje první heterologní nukleotidovou sekvenci spojenou s brzkým raným promotorem CMV a druhou heterologní nukleotidovou sekvenci spojenou s jiným promotorem, přičemž promotory navzájem sousedí svými 5 konci.
10. Virus podle kteréhokoliv z nároků 1 až 9, který kromě alespoň jedné heterologní nukleotidové sekvence dále obsahuje heterologní nukleotidovou sekvenci kódující imunomodulační polypeptid.
11. Virus podle nároku 10, kde imunomodulační polypeptid je cytokin.
12. Virus podle kteréhokoliv z nároků 1 až 11, který obsahuje expresní kazetu vloženou do inzerčního úseku, přičemž kazeta obsahuje, v uvedeném sledu, promotor, dvě nebo více heterologních nukleotidových sekvencí oddělených vzájemně IRES, a polyadenylační signál.
- 15 CZ 297022 B6
13. Živá rekombinantní vakcína, vyznačující se tím, že obsahuje alespoň jeden rekombinantní psí herpesvirus (CHV) podle kteréhokoliv z nároků 1 až 12.
5 14. Formulace polyvalentní vakcíny, vyznačující se tím, že obsahuje, smíchané nebo pro smíchání, alespoň dva psí herpesviry (CHV) podle kteréhokoliv z nároků 1 až 12, přičemž psí herpesviry obsahují odlišné heterologní nukleotidové sekvence.
CZ0428198A 1996-06-27 1997-06-23 Rekombinantní psí herpesvirus exprimující alesponjeden antigen, zejména antigen psinky, vztekliny,parvoviru a parainfluenzy typu 2, a vakcína na bázi tohoto viru CZ297022B6 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR9608242A FR2750865B1 (fr) 1996-06-27 1996-06-27 Vaccin vivant recombinant a base d'herpesvirus canin, notamment contre la maladie de carre, la rage ou le virus parainfluenza de type 2

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ428198A3 CZ428198A3 (cs) 1999-04-14
CZ297022B6 true CZ297022B6 (cs) 2006-08-16

Family

ID=9493648

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ0428198A CZ297022B6 (cs) 1996-06-27 1997-06-23 Rekombinantní psí herpesvirus exprimující alesponjeden antigen, zejména antigen psinky, vztekliny,parvoviru a parainfluenzy typu 2, a vakcína na bázi tohoto viru

Country Status (13)

Country Link
US (2) US6159477A (cs)
EP (1) EP0910657B1 (cs)
JP (1) JP2000512264A (cs)
KR (1) KR20000022213A (cs)
AU (1) AU737583B2 (cs)
BR (1) BR9710012B1 (cs)
CA (1) CA2258735C (cs)
CZ (1) CZ297022B6 (cs)
FR (1) FR2750865B1 (cs)
NZ (1) NZ333546A (cs)
PL (2) PL196247B1 (cs)
WO (1) WO1997049825A1 (cs)
ZA (1) ZA975619B (cs)

Families Citing this family (48)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2750865B1 (fr) * 1996-06-27 1998-12-04 Rhone Merieux Vaccin vivant recombinant a base d'herpesvirus canin, notamment contre la maladie de carre, la rage ou le virus parainfluenza de type 2
FR2775601B1 (fr) * 1998-03-03 2001-09-21 Merial Sas Vaccins vivants recombines et adjuves
US7906311B2 (en) 2002-03-20 2011-03-15 Merial Limited Cotton rat lung cells for virus culture
JP2006516883A (ja) 2002-09-19 2006-07-13 アメリカ合衆国 P.アリアシポリペプチド、ユウガイサシチョウバエポリペプチド、および使用法
US7485306B2 (en) 2002-10-29 2009-02-03 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Department Of Health And Human Services Lutzomyia longipalpis polypeptides and methods of use
WO2004056390A1 (en) * 2002-12-19 2004-07-08 Akzo Nobel Patent Department Trivalent vaccine with maternal antibody transfer via the milk
EP1606419A1 (en) 2003-03-18 2005-12-21 Quantum Genetics Ireland Limited Systems and methods for improving protein and milk production of dairy herds
US7468273B2 (en) 2003-05-01 2008-12-23 Meial Limited Canine GHRH gene, polypeptides and methods of use
WO2005021713A2 (en) 2003-06-20 2005-03-10 Protein Sciences Corporation Vectors expressing sars immunogens, compositions containing such vectors or expression products thereof, methods and assays for making and using
US20050214316A1 (en) 2003-11-13 2005-09-29 Brown Thomas P Methods of characterizing infectious bursal disease virus
JP2007525217A (ja) 2004-02-19 2007-09-06 ザ ガバナーズ オブ ザ ユニバーシティー オブ アルバータ レプチンプロモーター多型及びその使用
CN101208104B (zh) 2005-04-25 2012-10-31 梅瑞尔有限公司 Nipah病毒疫苗
US20080241184A1 (en) 2005-08-25 2008-10-02 Jules Maarten Minke Canine influenza vaccines
US8784843B2 (en) * 2005-09-16 2014-07-22 Merial Limited Stabilizers for freeze-dried vaccines
US7771995B2 (en) 2005-11-14 2010-08-10 Merial Limited Plasmid encoding human BMP-7
EP3536704B1 (en) 2005-11-14 2021-08-25 Boehringer Ingelheim Animal Health USA Inc. Gene therapy for renal failure
US7682619B2 (en) 2006-04-06 2010-03-23 Cornell Research Foundation, Inc. Canine influenza virus
US7862821B2 (en) 2006-06-01 2011-01-04 Merial Limited Recombinant vaccine against bluetongue virus
ES2760004T3 (es) 2008-05-08 2020-05-12 Boehringer Ingelheim Animal Health Usa Inc Vacuna contra Leishmania utilizando un inmunnógeno salival de mosca de la arena
CN103585643A (zh) 2009-04-03 2014-02-19 梅里亚有限公司 运载新城疫病毒的禽疫苗
US20130197612A1 (en) * 2010-02-26 2013-08-01 Jack W. Lasersohn Electromagnetic Radiation Therapy
ES2609847T3 (es) 2010-08-31 2017-04-24 Merial, Inc. Vacunas de herpesvirus basadas en vectores del virus de la enfermedad de Newcastle
WO2012090073A2 (en) 2010-12-30 2012-07-05 The Netherlands Cancer Institute Methods and compositions for predicting chemotherapy sensitivity
US20140296248A1 (en) 2011-04-04 2014-10-02 Stichting het Nederlands Kanker Instiuut-Antoni van Leeuwenhoek ziekenhuis Methods and compositions for predicting resistance to anticancer treatment
WO2012138789A2 (en) 2011-04-04 2012-10-11 Netherlands Cancer Institute Methods and compositions for predicting resistance to anticancer treatment
WO2012145577A1 (en) 2011-04-20 2012-10-26 Merial Limited Adjuvanted rabies vaccine with improved viscosity profile
US10081658B2 (en) 2011-04-25 2018-09-25 Advanced Bioscience Laboratories, Inc. Truncated HIV envelope proteins (ENV), methods and compositions related thereto
ES2674439T3 (es) 2011-06-01 2018-06-29 Merial, Inc. Administración sin aguja de vacunas contra el VSRRP
HUE035774T2 (en) 2011-08-12 2018-05-28 Merial Inc Biological substances, in particular vaccines, preserved by vacuum
WO2013093629A2 (en) 2011-12-20 2013-06-27 Netherlands Cancer Institute Modular vaccines, methods and compositions related thereto
WO2013138776A1 (en) 2012-03-16 2013-09-19 Merial Limited Novel methods for providing long-term protective immunity against rabies in animals, based upon administration of replication-deficient flavivirus expressing rabies g
US9556419B2 (en) 2013-03-12 2017-01-31 Merial Inc. Reverse genetics Schmallenberg virus vaccine compositions, and methods of use thereof
WO2015077717A1 (en) 2013-11-25 2015-05-28 The Broad Institute Inc. Compositions and methods for diagnosing, evaluating and treating cancer by means of the dna methylation status
WO2015085147A1 (en) 2013-12-05 2015-06-11 The Broad Institute Inc. Polymorphic gene typing and somatic change detection using sequencing data
AU2014368898B2 (en) 2013-12-20 2020-06-11 Dana-Farber Cancer Institute, Inc. Combination therapy with neoantigen vaccine
CA2966191A1 (en) 2014-11-03 2016-05-12 Merial, Inc. Methods of using microneedle vaccine formulations to elicit in animals protective immunity against rabies virus
EP3234193B1 (en) 2014-12-19 2020-07-15 Massachusetts Institute of Technology Molecular biomarkers for cancer immunotherapy
WO2016100977A1 (en) 2014-12-19 2016-06-23 The Broad Institute Inc. Methods for profiling the t-cel- receptor repertoire
CR20200476A (es) 2015-05-20 2020-12-02 Dana Farber Cancer Inst Inc ANTÍGENOS COMPARTIDOS (Divisional 2017-0584)
TWI750122B (zh) 2015-06-09 2021-12-21 美商博德研究所有限公司 用於贅瘤疫苗之調配物及其製備方法
NZ738957A (en) 2015-06-23 2019-09-27 Boehringer Ingelheim Animal Health Usa Inc Prrsv minor protein-containing recombinant viral vectors and methods of making and use thereof
US20190346442A1 (en) 2016-04-18 2019-11-14 The Broad Institute, Inc. Improved hla epitope prediction
CN109310087A (zh) * 2016-06-30 2019-02-05 贴近科学Ip控股私人有限公司 抗微生物的组合物和应用该组合物的方法
EP3574116A1 (en) 2017-01-24 2019-12-04 The Broad Institute, Inc. Compositions and methods for detecting a mutant variant of a polynucleotide
US20210382068A1 (en) 2018-10-02 2021-12-09 Dana-Farber Cancer Institute, Inc. Hla single allele lines
WO2020131586A2 (en) 2018-12-17 2020-06-25 The Broad Institute, Inc. Methods for identifying neoantigens
CN110302374B (zh) * 2019-08-09 2023-04-14 黑龙江八一农垦大学 犬用疫苗及其制备方法和应用
CN114790229B (zh) * 2022-04-12 2024-07-12 北京慧德易科技有限责任公司 一种重组蛋白及其制备方法和应用

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4213965A (en) * 1979-01-23 1980-07-22 Cornell Research Foundation, Inc. Small-plaque variant canine herpesvirus vaccine
EP0447303A1 (fr) * 1990-03-12 1991-09-18 Rhone Merieux S.A. Virus herpès recombinants notamment pour la réalisation de vaccins, leur procédé de préparation, les plasmides réalisés au cours de ce procédé et les vaccins obtenus
WO1995026751A1 (en) * 1994-03-30 1995-10-12 Virogenetics Corporation NUCLEOTIDE AND AMINO ACID SEQUENCES OF CANINE HERPESVIRUS gB, gC and gD AND USES THEREFOR
CN1117081A (zh) * 1995-03-16 1996-02-21 高云 犬瘟热狂犬病细小病毒三联活疫苗、毒种及制造方法

Family Cites Families (21)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5777095A (en) * 1988-10-24 1998-07-07 Symbicom Aktiebolag Osp A and B Sequence of Borrelia burgdonferi strains ACA1 and IP90
AU1423792A (en) * 1991-02-12 1992-09-07 Colorado State University Research Foundation Reagents and methods for identification of vaccines
US5795768A (en) * 1991-02-12 1998-08-18 Heska Corporation Filariid nematode cysteine protease proteins, nucleic acid molecules and uses thereof
US5639876A (en) * 1991-02-12 1997-06-17 Heska Corporation Nucleic acid molecules encoding novel parasitic helminth proteins
US5843456A (en) * 1991-03-07 1998-12-01 Virogenetics Corporation Alvac poxvirus-rabies compositions and combination compositions and uses
US5418137A (en) * 1991-09-26 1995-05-23 Paravax, Inc. Flea membrane binding site proteins as screening tools
AU675214B2 (en) * 1991-11-12 1997-01-30 Colorado State University Research Foundation Protease vaccine against heartworm
US5356622A (en) * 1991-12-13 1994-10-18 Paravax, Inc. Flea midgut-supernatant vaccines
US5399485A (en) * 1992-01-17 1995-03-21 United States Of America Methods and compositions for diagnosing cat scratch disease and bacillary angiomatosis caused by Rochalimaea henselae
US5492695A (en) * 1992-05-14 1996-02-20 Colorado State University Research Foundation Vaccinating cats against Dirofilaria immitis with an L4 homogenate
US5541075A (en) * 1993-02-05 1996-07-30 Heska Corporation Carbohydrate-based vaccine and diagnostic reagent for trichinosis
US5707817A (en) * 1993-02-05 1998-01-13 Colorado State University Research Foundation Carbohydrate-based vaccine and diagnostic reagent for trichinosis
AU6172194A (en) * 1993-02-08 1994-08-29 Paravax, Inc. Defective sindbis virus vectors that express (toxoplasma gondii) p30 antigens
US5569603A (en) * 1994-03-08 1996-10-29 Heska Corporation Dirofilaria immitis GP29 proteins, nucleic acid molecules and uses thereof
WO1995032988A1 (en) * 1994-05-26 1995-12-07 Heska Corporation Novel parasite protease genes and proteins
AU703794B2 (en) * 1994-10-07 1999-04-01 Heska Corporation Novel ectoparasite saliva proteins and apparatus to collect such proteins
NZ296424A (en) * 1994-10-18 1999-01-28 Heska Corp Flea serine protease and protease inhibitors and their use in protecting animals from infestation
US5789194A (en) * 1995-05-23 1998-08-04 Heska Corporation Parasitic helminth venom allergen antigen 5-like genes and proteins
US5681724A (en) * 1995-11-16 1997-10-28 Heska Corporation Parasitic helminth macrophage inhibitory factor nucleic acid molecules and uses thereof
US5753235A (en) * 1996-02-15 1998-05-19 Heska Corporation Recombinant canine herpesviruses
FR2750865B1 (fr) * 1996-06-27 1998-12-04 Rhone Merieux Vaccin vivant recombinant a base d'herpesvirus canin, notamment contre la maladie de carre, la rage ou le virus parainfluenza de type 2

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4213965A (en) * 1979-01-23 1980-07-22 Cornell Research Foundation, Inc. Small-plaque variant canine herpesvirus vaccine
EP0447303A1 (fr) * 1990-03-12 1991-09-18 Rhone Merieux S.A. Virus herpès recombinants notamment pour la réalisation de vaccins, leur procédé de préparation, les plasmides réalisés au cours de ce procédé et les vaccins obtenus
WO1995026751A1 (en) * 1994-03-30 1995-10-12 Virogenetics Corporation NUCLEOTIDE AND AMINO ACID SEQUENCES OF CANINE HERPESVIRUS gB, gC and gD AND USES THEREFOR
CN1117081A (zh) * 1995-03-16 1996-02-21 高云 犬瘟热狂犬病细小病毒三联活疫苗、毒种及制造方法

Also Published As

Publication number Publication date
KR20000022213A (ko) 2000-04-25
US6159477A (en) 2000-12-12
CZ428198A3 (cs) 1999-04-14
FR2750865B1 (fr) 1998-12-04
PL196247B1 (pl) 2007-12-31
EP0910657B1 (fr) 2013-02-27
NZ333546A (en) 2001-06-29
PL330879A1 (en) 1999-06-07
ZA975619B (en) 1998-12-28
EP0910657A1 (fr) 1999-04-28
AU3447497A (en) 1998-01-14
JP2000512264A (ja) 2000-09-19
US20060024329A1 (en) 2006-02-02
FR2750865A1 (fr) 1998-01-16
BR9710012A (pt) 1999-08-10
BR9710012B1 (pt) 2011-10-18
AU737583B2 (en) 2001-08-23
CA2258735C (en) 2011-06-21
WO1997049825A1 (fr) 1997-12-31
CA2258735A1 (en) 1997-12-31
PL196530B1 (pl) 2008-01-31

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CZ297022B6 (cs) Rekombinantní psí herpesvirus exprimující alesponjeden antigen, zejména antigen psinky, vztekliny,parvoviru a parainfluenzy typu 2, a vakcína na bázi tohoto viru
ES2320938T3 (es) Vacuna viva recombinate a base de virus herpes felino de tipo 1, particularmente contra la peritonitis infeccion felina.
ES2258970T3 (es) Vectores y vacunas viricas a base de adenovirus porcinos recombinados.
AU739374B2 (en) Avian recombinant live vaccine using, as vector, the avian infectious laryngotracheitis virus
KR100620302B1 (ko) 개 질병, 특히 호흡기 및 소화성 질병 치료용폴리뉴클레오티드 백신 제제
AU734085B2 (en) Recombinant live avian vaccine, using as vector the avian infectious laryngotracheitis virus.
KR970011149B1 (ko) 재조합 아비폭스 바이러스
ES2278382T3 (es) Herpesvirus recombinante de pavos y sus usos.
AU735265B2 (en) Avian recombinant live vaccine using, as vector, the avian infectious laryngotracheitis virus
Fischer et al. Vaccination of puppies born to immune dams with a canine adenovirus-based vaccine protects against a canine distemper virus challenge
JP2006348044A (ja) 鳥類ヘルペスウイルスをベースとした組換型鳥類用生ワクチン、特にガンボロ病用ワクチン
CZ301365B6 (cs) Imunogenní kompozice pro vyvolání u savce celedi konovitých imunologické odezvy proti viru rinopneumonitidy, použití této kompozice pro výrobu léciva a souprava obsahující tuto kompozici
JP4440347B2 (ja) 組換えキメラウイルスとその使用
AU732885B2 (en) Canine parvovirus DNA vaccines
US20020081316A1 (en) Novel avian herpes virus and uses thereof
EP0720654A1 (en) Novel proteins/polypeptides and cotransfection plasmids and live recombinant carriers therefor
CA2626498C (en) Recombinant chimeric virus
Kleid Vaccine Synthesis by Recombinant DNA Technology

Legal Events

Date Code Title Description
PD00 Pending as of 2000-06-30 in czech republic
MK4A Patent expired

Effective date: 20170623