JP2007525217A - レプチンプロモーター多型及びその使用 - Google Patents

Abstract

本発明は、レプチンプロモーターにおける一塩基多型（ＳＮＰ）と、循環レプチンレベル、飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値、及び屠体構成に連関した、これらのＳＮＰの特定のアレルを有する動物を同定する方法とに関する。本発明は、これらのＳＮＰを増幅及び／又は検出するためのプライマー及び／又はプローブとして使用できるオリゴヌクレオチドを提供し、動物、特にウシを遺伝子型に従って選抜し、集団に分ける方法を提供する。

Description

関連出願／特許及び参照による援用
この出願は、２００４年２月１９日出願の米国特許仮出願第６０／５４６４５６号に基づく優先権を主張し、これによりその内容を参照により明示的に本明細書に援用する。

本明細書で引用された出願及び特許のそれぞれ、並びにそれら出願及び特許のそれぞれで引用された文書及び参考文献のそれぞれ（係争中の交付された特許を含める；「出願引用文書」）、並びに、これらの出願及び特許のいずれにも対応し、且つ／或いはそれに基づく優先権を主張するＰＣＴ及び外国出願又は外国特許のそれぞれ、並びに出願引用文書のそれぞれで引用又は参照された文書のそれぞれを、これによって参照により明示的に本明細書に援用する。より一般的に言えば、文書又は参考文献は、本明細書中、すなわち、明細書末部の参考文献リスト又は明細書本文それ自体に引用されており、これらの文書又は参考文献（「本明細書に引用の参考文献」）、並びに、本明細書に引用の参考文献のそれぞれで引用された文書及び参考文献（製造業者の仕様書、説明書などのいかなるものも含まれる）のそれぞれを、これによって明示的に参照により本明細書に援用する。

本発明は、レプチン遺伝子すなわちｏｂ遺伝子における一塩基多型、並びに、これらのＳＮＰの、循環レプチンレベル（circulating leptin levels）、飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値（carcass merit）、及び／又は屠体構成（carcass composition）など、家畜種で経済的に重要な特定の形質との連関に関する。レプチン遺伝子プロモーターのプロモーターに位置する３つの新しいＳＮＰについて記述する。本発明は、これら新規のＳＮＰを検出するのに有用なプライマー及びプローブと、動物をそれらの遺伝子型に基づいて同定して、集団（population）に分ける方法とを提供する。

何年にもわたる、標準的な動物育種及び選抜技術の適用を介して、動物当たりの生産、動物効率、並びに屠体及び肉の品質がかなり改善されている。しかし、そのような古典的な動物育種法は、数年にわたる個々の動物及びそれらの類縁の実績記録の遺伝的評価を必要とし、したがって、極めて大きな費用を要する。生産性及び品質を改善するために、飼料添加物、動物ホルモンインプラント、及び化学療法剤の使用などの管理実践の適用を介した他の試みも行われている。しかし、そのような方法の導入及び使用には、政治上及び規制上のかなりの抵抗が存在する。また、そのような方法は、非遺伝的であるので、すべての生産システムで別途に適用する必要もある。

循環レプチンレベル、飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値、及び屠体構成の遺伝可能な形質に関する利点を有する家畜の、比較的簡単で、より効率的な選抜及び育種を可能にする方法が必要である。したがって、家畜における経済的に重要な特定の形質（特に、遺伝率の低い形質）に連関した遺伝子マーカーを、マーカー補助による選択を介して使用することの経済的重要性は、評価しすぎることがないほど大きなものである。

ｏｂ（obese）遺伝子のホルモン産物であるレプチンは、主として脂肪組織で合成及び発現されることが示されており（Zhang et al., 1994、Ji et al., 1998）、体重、エネルギー消費量、飼料摂取量、肥満症、生殖能力、及び免疫機能の調節において、強力な生理的シグナルとして機能する（Houseknecht et al., 1998、Load et al., 1998、Garcia et al., 2002）。レプチンは、表現型及び遺伝子型における、ウシの生産率及び効率の相違に寄与する主要な制御因子の１つであると提唱されている。

ウシレプチン遺伝子のコード領域における多型は、乳の生産率及び組成（Liefers et al., 2002）、飼料摂取量（Liefers et al., 2002；Lagonigro et al., 2003）、並びに体脂（Buchanan et al., 2002；Lagonigro et al., 2003）と連関している。しかし、レプチン遺伝子のプロモーター領域（すなわち、それに随伴するエンハンサー及びサイレンサーエレメントを介してレプチン発現のレベルを調節する該遺伝子の領域）に位置する多型の方が、これらの経済的に重要な形質の調節に、より強い効果を有するかもしれず、したがって、予測を行う上で、より大きな価値を有すると思われる。

例えば、ヒトにおける研究では、レプチンプロモーターのＣＣＡＡＴ／エンハンサー結合タンパク質（Ｃ／ＥＢＰ−α）領域における変異によって、Ｃ／ＥＢＰ−αによるプロモーターの誘導能が消失することが示されている（Miller et al., 1996）。Masonら(1998)は、Ｃ／ＥＢＰ−α及びＴＡＴＡモチーフにおける変異、そして、レプチンのコンセンサスＳｐ１部位における変異が、プロモーター活性をそれぞれ１０倍、１０倍、及び２．５倍低下させ、さらに、これらの因子の結合を消失させたことを示した。Masonら(1998)は、レプチン遺伝子発現の調節が、そのプロモーターにおけるＬＰ１モチーフに結合する新規の因子に部分的に関連していることも示した。脂肪細胞分化におけるペルオキシゾーム増殖因子活性化受容体γ（ＰＰＡＲ−γ）の役割も、レプチンプロモーター機能に関連している（De Vos et al., 1996）。いくつかの多型がウシレプチンプロモーター中で検出されている（Liefers et al., 2003）が、これらのうちいずれかを経済的に重要な、ウシのなんらかの形質と連関させることはほとんど何もなされていない。
米国特許仮出願第６０／５４６４５６号 Zhang et al., 1994 Ji et al., 1998 Houseknecht et al., 1998 Load et al., 1998 Garcia et al., 2002 Liefers et al., 2002 Lagonigro et al., 2003 Buchanan et al., 2002 Miller et al., 1996 Mason et al., 1998 De Vos et al., 1996 Liefers et al., 2003

本発明において、驚くべきことに、レプチン遺伝子のプロモーター領域における、以前には知られていなかった３つの一塩基多型（ＳＮＰ）と、レプチン遺伝子のエキソン２における、以前から知られていた１つのＳＮＰとが、これらの経済的に重要な、ウシの形質のうちのいくつかと密接に連関していることが示された。本発明者らが知る限りでは、本発明の遺伝子マーカーは、体重及び飼料摂取量との直接的な関係を示すことが同定された初めてのものである。

本発明は概ね、レプチン遺伝子すなわちｏｂ遺伝子（配列番号１）のプロモーターにおける、以前には知られていなかった３つの一塩基多型（ＳＮＰ）と、ｏｂ遺伝子（配列番号５）のエキソン２における、以前から知られていた１つのＳＮＰと、家畜種の循環レプチンレベル、飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値、及び／又は屠体構成など、家畜種において経済的にかなり重要な特定の形質とのこれらＳＮＰのそれぞれの連関とに関する。レプチン遺伝子プロモーターに位置する３つのＳＮＰは、ＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、及びＵＡＳＭＳ３と呼ばれる。これらの３つのＳＮＰは、ｏｂ遺伝子プロモーター配列のコンテクストにおいて、それぞれ、配列番号２、配列番号３、及び配列番号４に見ることができる。レプチン遺伝子のエキソン２に位置するＳＮＰはＥＸＯＮ２−ＦＢと呼ばれ、ｏｂ遺伝子のエキソン２のコンテクストにおいて、配列番号６に見ることができる。

一態様において、本発明は、遺伝子型に従って動物を集団に分ける方法を提供し、その際、各部分集団の動物は、レプチン遺伝子における類似の多型を有する。そのような方法は、レプチン遺伝子におけるＳＮＰの存在を判定することによって、部分集団に分けられる各動物の遺伝子型を判定するステップを含み、その際、上記ＳＮＰが、ＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、及びＥＸＯＮ２−ＦＢから成る群から選択され、また、個々の動物が部分集団に分けられ、１つの部分集団における各動物は、レプチン遺伝子における類似の多型を有する。好ましい一実施形態では、集団に分けられる動物がウシであり、上記レプチン遺伝子がウシレプチン遺伝子である。

別の実施形態では、本発明は、その種の動物の一般的集団と比較して、循環レプチンレベル、飼料摂取、成長速度、体重、屠体価値、及び屠体構成に関する望ましい形質を有する動物を同定する方法を提供する。そのような方法は、その動物のレプチン遺伝子におけるＳＮＰの存在を判定するステップを含み、上記多型が、ＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、及びＥＸＯＮ２−ＦＢから成る群から選択され、且つＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、又はＥＸＯＮ２−ＦＢのいずれかのＳＮＰの存在が、循環レプチンレベル、飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値、及び屠体構成に関する望ましい形質を示す。好ましい一実施形態では、集団に分けられる動物がウシであり、上記レプチン遺伝子がウシレプチン遺伝子である。

さらなる実施形態では、本発明は、ｏｂ遺伝子におけるＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、及びＥＸＯＮ２−ＦＢ ＳＮＰを検出するのに有用な単離されたオリゴヌクレオチドプローブを提供する。本発明は、各ＳＮＰについて２つの二者択一のアレルを検出するためのオリゴヌクレオチドプローブを提供するのが有利である。例えば、ＵＡＳＭＳ１多型は、ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置２０７におけるＣからＴへの置換を構成するが、この多型の場合、本発明は、Ｃ含有アレルとＴ含有アレルとを検出及び識別するのに使用できるオリゴヌクレオチドプローブを提供する。例えば、ＵＡＳＭＳ２多型は、ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置５２８におけるＣからＴへの置換を構成するが、この多型の場合、本発明は、Ｃ含有アレルとＴ含有アレルとを検出及び識別するのに使用できるオリゴヌクレオチドプローブを提供する。例えば、ＵＡＳＭＳ３多型は、ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置１７５９におけるＣからＧへの置換を構成するが、この多型の場合、本発明は、Ｃ含有アレルとＧ含有アレルとを検出及び識別するのに使用できるオリゴヌクレオチドプローブを提供する。同様に、ＥＸＯＮ２−ＦＢ多型は、ｏｂ遺伝子のエキソン２のヌクレオチド位置３０５におけるＣからＴへの置換を構成するが、この多型の場合、本発明は、Ｃ含有アレルとＴ含有アレルとを検出及び識別するのに使用できるオリゴヌクレオチドプローブを提供する。好ましい一実施形態では、本発明のオリゴヌクレオチドプローブが、例えば、ジゴキシゲニン−ｄＵＴＰ、ビオチン、蛍光部分、化学発光部分、電気化学発光部分、及び放射性部分など、検出可能な部分で標識される。

さらなる実施形態では、本発明は、ＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、及びＥＸＯＮ２−ＦＢ ＳＮＰにまたがるｏｂ遺伝子断片の増幅に有用な単離されたプライマー及びプライマー対を提供する。一実施形態では、そのようなプライマーを用いて増幅されたｏｂ遺伝子断片を、続いて、本発明のオリゴヌクレオチドプローブを用いて検出する。

本明細書に記載のオリゴヌクレオチドプローブ及びプライマーは、その種の動物の一般的集団と比較して、循環レプチンレベル、飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値、及び屠体構成に関する望ましい形質と連関のあるＳＮＰを有する動物を同定するのに有用である。これらのＳＮＰを所持する個々の動物がひとたび同定されれば、次に、遺伝子型に従ってそれらの動物を集団に分けることができ、その際、各部分集団の動物は、レプチン遺伝子における類似の多型を有する。本発明は、本明細書に記載のオリゴヌクレオチドプローブ及びプライマーを含む組成物及びキットも提供すると有利である。これらの実施形態、及び他の実施形態は、以下の「発明を実施するための最良の形態」に開示されているか、或いは、それから明らかであって、且つそれに包含される。

以下の詳細な説明及び実施例では、参照により本明細書に援用する添付の図面を参照する。

ｉ．定義
本明細書で使用される場合、下記の用語は、別段に特定されない限り、それらに付与されている意味を有する。この開示では、「含む（comprises）」、「含んでいる（comprising）」、「含有する（containing）」、「有する（having）」などは、米国特許法でそれらに付与されている意味を有し、「含む（includes）」、「含んでいる（including）」、及び同様のことを意味することができ、「本質的に〜から成る（consisting essentially of）」又は「本質的に成る（consists essentially）」も同様に、米国特許法で付与されている意味を有し、この用語は非制限的であって、列挙されたもの以外のものの存在によって、列挙されたものの基本的特徴又は新規の特徴が変化しない限り、列挙されたもの以外のものの存在も許容するが、従来技術の実施形態を除外する。

本明細書では、「動物」という用語を、ヒトを含めたすべての脊椎動物を含むものとして使用する。この用語は、胚及び胎児ステージを含めたすべての発生段階の個々の動物を含む。本明細書で使用される場合、「生産動物」という用語は、「家畜動物」と同義的に使用され、主として食用に育てられた動物を全般的に指す。例えば、そのような動物には、牛（ウシ）、羊（ヒツジ）、豚（ブタ）、家禽（トリ）などが含まれるが、これらに限定されない。本明細書で使用される場合、「雌ウシ」又は「ウシ」という用語は、任意の年齢のウシ起源の動物を指すのに一般的に使用される。同義的な用語には、「ウシ」、「子ウシ」、「去勢ウシ」、「雄ウシ」、「若雌ウシ」、「雌ウシ」などが含まれる。本明細書で使用される場合、「ブタ」という用語は、任意の年齢のブタ起源の動物を指すのに一般的に使用される。同義的な用語には、「子ブタ」、「雌ブタ」などが含まれる。

本明細書又は特許請求の範囲で用いる場合、「相補性」又は「相補的な」という用語によって、その配列中の相補的な塩基対のオリゴヌクレオチドの数が、増幅又は検出するべきｏｂ遺伝子多型の標的核酸配列と特異的に相互作用（ハイブリッド形成）するのに十分であることを意味する。当業者ならば知っているように、ハイブリダイゼーションに要する特異性及び感度には、１００％である必要はないが、非常に高度の相補性が必要である。したがって、例えば、本明細書に開示されたオリゴヌクレオチドに、ヌクレオチド配列が１塩基の変化又は置換を除いて同一であるオリゴヌクレオチドは、開示されたオリゴヌクレオチドと同等に機能しうる。「相補ＤＮＡ」すなわち「ｃＤＮＡ」遺伝子は、メッセンジャーＲＮＡ（「ｍＲＮＡ」）の逆転写過程によって合成された組換え遺伝子を含む。

「ポリメラーゼ媒介環状反応」は、その反応中に、鋳型分子又は鋳型分子の一群が定期的に繰り返してコピーされて、１種又は複数の相補的な鋳型分子が生成され、それによって、鋳型分子の数が経時的に増加する生化学反応を指す。

鋳型分子の「変性」は、鋳型を複製できるようにする、鋳型のアンフォールディング又はその構造の他の変化を指す。ＤＮＡの場合、「変性」は、二重らせんにおける２本の相補鎖が分離して、それによって、２つの相補的な一本鎖鋳型分子が生成することを意味する。「変性」は、熱によるもの、又は、塩基若しくは他の変成剤でＤＮＡを処理することによるものを含めた、様々な方法のうちの任意の方法で実現できる。

「検出可能な量の産物」は、標準的な実験器具を用いて検出できる、増幅された核酸の量を意味する。「検出可能なマーカー」は、視覚的方法又は他の方法を用いて検出が可能となるヌクレオチド類似体を指す。例えば、ポリメラーゼ媒介環状反応の１つ又は複数のステップで、蛍光標識されたヌクレオチドを核酸に組み込むことができ、それによって、例えば、蛍光顕微鏡又は他の蛍光検出器具用いた反応産物の検出が可能となる。

本明細書又は特許請求の範囲で用いる場合、「検出可能な部分」という用語によって、間接的又は直接的にオリゴヌクレオチドの中に組み込まれる標識分子（同位体又は非同位体）を意味し、この標識分子は、それが中に組み込まれているオリゴヌクレオチドの検出を、例えば、増幅されたｏｂ遺伝子多型配列にそのオリゴヌクレオチドがハイブリッド形成した際に容易にする。したがって、「検出可能な部分」は、「標識分子」と同じ意味で使用される。オリゴヌクレオチドの合成は、当業者に知られているいくつかの方法のうちのいずれか１つによって実現できる。検出に有用であることが当業者に知られている標識分子には、化学発光分子又は蛍光分子が含まれる。本発明の方法に用いる核酸を標識するために使用するのに適した様々な蛍光分子が当技術分野で知られている。そのような取込みのためのプロトコールは、使用する蛍光分子によって異なっている場合がある。そのようなプロトコールは、それぞれの蛍光分子について当技術分野で知られている。

「検出可能に標識された」によって、断片又はオリゴヌクレオチドが、放射性のヌクレオチド、又は、蛍光色素で置換されたヌクレオチド、又は、物理的若しくは化学的反応を誘発する他の分子種で置換されたヌクレオチドを含有していることを意味し、その際、その反応は、肉眼で、若しくは、限定されるものではないが、シンチレーションカウンター、比色計、ＵＶ分光光度計などの計器を用いて観測若しくは検出できるものである。本明細書で使用される場合、「標識」又は「タグ」は、例えば、限定されるものではないが、共有結合又はハイブリダイゼーションによって、別の分子、例えば、限定されるものではないが、ポリヌクレオチド又はポリヌクレオチド断片に付加された際に、もう一方の分子を検出する手段を提供又は強化する分子を指す。蛍光、又は蛍光標識若しくは蛍光タグは、特定の波長の検出可能な光を、それとは異なる波長で励起された場合に発する。放射性標識又は放射性タグは、限定されるものではないが、シンチレーションカウンターなどの測定器で検出可能な放射性粒子を放出する。他のシグナル発生検出法には、化学発光、電気化学ルミネセンス、ラマン、比色分析、ハイブリダイゼーション保護アッセイ、及び質量分析が含まれる。

本明細書で使用される場合、「ＤＮＡ増幅」は、核酸配列を酵素的に増幅することによって、特定のＤＮＡ配列のコピー数を増加させるいかなる方法も意味する。様々な方法が知られている。最も一般的に使用されている方法の１つがポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）であり、この方法を下記に続くセクションで定義し、説明する。米国特許第４６８３１９５号及び第４６８３２０２号に、MullisのＰＣＲ法が記載されている。ＰＣＲは、熱安定性ＤＮＡポリメラーゼ、プライマーとしての既知の配列、及び加熱サイクルを用い、これが、複製を行っているデオキシリボ核酸（ＤＮＡ）の鎖を分離し、対象の遺伝子を指数関数的に増幅する。定量的ＰＣＲ、ＲＴ−ＰＣＲ、ホットスタートＰＣＲ、ＬＡＰＣＲ、複合ＰＣＲ、タッチダウンＰＣＲなど、いかなるタイプのＰＣＲを用いてもよい。リアルタイムＰＣＲを用いると有利である。通常、ＰＣＲ増幅過程では、指数関数的な量の特定の核酸配列を調製するための酵素連鎖反応を行う。この反応は、連鎖反応を開始させるために、ある配列を少量必要とし、そして、その配列にハイブリッド形成するであろうオリゴヌクレオチドプライマーを必要とする。ＰＣＲでは、変性した核酸にプライマーがアニールし、それに続いて、誘導物質（酵素）及びヌクレオチドを用いた伸長が起こる。この結果、新規に合成された伸長産物がもたらされる。これらの新規に合成された配列は、プライマーの鋳型となるので、変性、プライマーアニーリング、及び伸長のサイクルを反復することによって、増幅された特定の配列の指数関数的蓄積がもたらされる。連鎖反応の伸長産物は、用いられた特定のプライマーの端に対応する末端を有する個別の核酸二本鎖分子であろう。

「ＤＮＡ」は、一本鎖形態にあるか、或いは二本鎖ヘリックスとして存在するデオキシリボヌクレオチド（アデニン、グアニン、チミン、又はシトシン）の重合体形態を指す。この用語は、分子の一次構造及び二次構造のみに言及し、いかなる特定の三次形態にも制限しない。したがってこの用語には、とりわけ、線状ＤＮＡ分子（例えば制限断片）、ウイルス、プラスミド、及び染色体中に存在する二本鎖ＤＮＡが含まれる。特定の二本鎖ＤＮＡ分子の構造について論じる場合、本明細書では、ＤＮＡの非転写鎖（すなわち、ｍＲＮＡに相同な配列を有する鎖）に沿って５’から３’方向の配列のみを示す通常の慣例に従って配列を記載することがある。

本明細書又は特許請求の範囲で用いる場合、「酵素的に増幅する」又は「増幅する」という用語によって、ＤＮＡ増幅、すなわち、それによって核酸配列がその数に関して増幅される過程を意味する。核酸配列を酵素的に増幅する方法がいくつかある。現在最も一般的に使用されている方法はポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）である。他の増幅法には、ＤＮＡリガーゼ、増幅されるべきＤＮＡ配列に相補的なＤＮＡセグメントの２つの半分から成るプローブ、酵素ＱＢレプリカーゼ、及び、相補性ＲＮＡの指数関数的な産生に用いるＤＮＡ鋳型を生成するのに用いられる、コピーされるべきＤＮＡに相補的なプローブに結合したリボ核酸（ＲＮＡ）配列の鋳型を利用するＬＣＲ（リガーゼ連鎖反応）；鎖置換増幅（ＳＤＡ）；Ｑβレプリカーゼ増幅（ＱβＲＡ）；自己持続型複製（３ＳＲ）；並びに、増幅されるべき核酸配列がＲＮＡでも、ＤＮＡでも行うことができるＮＡＳＢＡ（核酸配列ベース増幅）が含まれる。

タンパク質又は核酸などの分子の「断片」は、アミノ酸配列又はヌクレオチド遺伝子配列のうちの任意の部分を指すものとする。

本明細書で使用される場合、「ゲノム」という用語は、特定の生物の染色体の中にあるすべての遺伝物質を指す。その大きさは、通常、塩基対の総数で示す。ゲノムの中で、「遺伝子」という用語は、特定の機能的産物（例えばタンパク質又はＲＮＡ分子）をコードする、特定の染色体上の特定の位置に局在するヌクレオチドの順序付けられた配列を指す。例えば、レプチンタンパク質は、ｏｂ（obese）遺伝子によってコードされており、食欲、基礎代謝、及び脂肪沈着の調節に関与していると考えられることが知られている。一般に、ゲノムのヌクレオチド配列によって定義される動物の遺伝的特性は「遺伝子型」として知られ、動物の肉体的形質は「表現型」として記述される。

「ヘテロ接合」又は「ヘテロ接合多型」は、二倍体細胞又は二倍体生物における所与の遺伝子座の２つのアレルが異なっていること、すなわち、それらは、それらの配列の同じ場所にある同じヌクレオチドが、異なったヌクレオチドで置換されていることを意味する。

「ホモ接合」又は「ホモ接合多型」は、二倍体細胞又は二倍体生物における所与の遺伝子座の２つのアレルが同一であること、すなわち、それらは、それらの配列の同じ場所でのヌクレオチド置換に同じヌクレオチドを有することを意味する。

本明細書で使用される場合、「ハイブリダイゼーション」又は「ハイブリッド形成する」とは、ポリヌクレオチドのセグメントの断片のヌクレオチド配列と、オリゴヌクレオチドの相補的なヌクレオチド配列との間でのＡ−Ｔ塩基対及びＣ−Ｇ塩基対の形成を意味する。相補的は、断片の配列におけるＡ、Ｃ、Ｇ、又はＴ（又は、リボヌクレオチド中のＵ）のそれぞれの遺伝子座で、オリゴヌクレオチド配列がそれぞれＴ、Ｇ、Ｃ、又はＡを有することを意味する。ハイブリッド形成した断片／オリゴヌクレオチドを「二本鎖分子」と呼ぶ。

サンドイッチ法などにおける、「ハイブリダイゼーション複合体」は、少なくとも標的核酸及びセンサープローブを含む核酸分子の複合体を意味する。それにはアンカープローブも含まれることがある。

「固体支持体上に固定された」は、固定された断片、プライマー、又はオリゴヌクレオチドを含有する系がその位置から取り除かれることなく、それを洗浄又は他の物理的若しくは化学的操作に供することができるように、断片、プライマー、又はオリゴヌクレオチドが特定の位置で物質に結合していることを意味する。多数の固体支持体、及びヌクレオチドを含有する分子をそれらに固定する手段が当技術分野で知られており、本発明の方法では、これらの支持体及び手段のいずれを用いてもよい。

本明細書で使用される場合、「体重増加の増大」は、体重増加が所与の集団の平均を超えて生物学的に有意に増大していることを意味する。

本明細書で使用される場合、「遺伝子座」という用語は、染色体上の遺伝子の場所を指す。各親からは、各遺伝子座から単一のアレルが遺伝される。各動物にける特定のアレルの組合せを「遺伝子型」と呼ぶ。両方のアレルが同一である場合、その個体は、その対のアレルによって制御される形質に関してホモ接合であると言われ、それらのアレルが異なる場合には、その個体はその形質に関してヘテロ接合であると言われる。

「融解温度」は、ハイブリッド形成した二本鎖分子が、脱ハイブリッド形成して、それらの一本鎖状態に戻る温度を意味する。同様に、ハイブリダイゼーションは、結果として生じる二本鎖分子の融解温度を超えた温度では、２つのオリゴヌクレオチド間で、又は、この場合、オリゴヌクレオチドと断片との間で最初から起こらないであろう。現在のところ、本発明のオリゴヌクレオチド−断片二本鎖分子の融点温度の相違は、容易に検出可能となるように、約１℃から約１０℃までが有利である。

本明細書で使用される場合、「核酸分子」という用語は、ＤＮＡ分子（例えばｃＤＮＡ又はゲノムＤＮＡ）、ＲＮＡ分子（例えばｍＲＮＡ）、ヌクレオチド類似体、誘導体、断片、及びそれの相同体を用いて生成されたＤＮＡ又はＲＮＡの類似体を含むことが意図されている。核酸分子は、一本鎖でも、二本鎖でもよいが、二本鎖ＤＮＡであると有利である。「単離された」核酸分子は、その核酸の天然源に存在する他の核酸分子から分離された核酸分子である。「ヌクレオシド」は、糖が連結した塩基を指す。塩基はアデニン（Ａ）でも、グアニン（Ｇ）（又はその代用物イノシン（Ｉ））でも、シトシン（Ｃ）でも、チミン（Ｔ）（又はその代用物ウラシル（Ｕ））でもよい。糖は、リボース（ＲＮＡ中の天然ヌクレオチドの糖）でも、２−デオキシリボース（ＤＮＡ中の天然ヌクレオチドの糖）でもよい。「ヌクレオチド」は、単一のリン酸基に連結されたヌクレオシドを指す。

本明細書で使用される場合、「オリゴヌクレオチド」という用語は、一連の連結したヌクレオチド残基を指し、その際、オリゴヌクレオチドは、ＰＣＲ反応で使用するのに十分な数のヌクレオチド塩基を有する。短鎖オリゴヌクレオチド配列は、ゲノム配列又はｃＤＮＡ配列に基づいたものでも、それらから設計されたものでもよく、特定の細胞又は組織の中にある、同一、類似、又は、相補的なＤＮＡ又はＲＮＡを増幅するか、その存在を確認するか、又は明らかにするのに用いられる。オリゴヌクレオチドは、化学的に合成してもよく、また、プライマー又はプローブとして用いてもよい。オリゴヌクレオチドは、プローブ及びプライマーを含めた、標的核酸の検出又は同定を容易にするのに使用される長さが３塩基を超えるいかなるヌクレオチドも意味する。

「ポリメラーゼ連鎖反応」すなわち「ＰＣＲ」は、温度サイクル式のポリメラーゼ媒介ＤＮＡ増幅反応を指す。ＰＣＲは、通常、鋳型分子、鋳型分子の各鎖に相補的なオリゴヌクレオチドプライマー、熱安定性ＤＮＡポリメラーゼ、及びデオキシリボヌクレオチドを含有し、元の核酸の増幅を行うために複数回反復される３つの異なる過程を用いる。これら３つの過程（変性、ハイブリダイゼーション、及びプライマー伸長）は、しばしば異なった温度、及び異なった時間ステップで行われる。しかし、多くの実施形態で、ハイブリダイゼーション過程とプライマー伸長過程とを同時に行うことができる。分析されるヌクレオチド試料は、米国特許第６５６９６７２号、第６５６９６２７号、第６５６２２９８号、第６５５６９４０号、第６５６９６７２号、第６５６９６２７号、第６５６２２９８号、第６５５６９４０号、第６４８９１１２号、第６４８２６１５号、第６４７２１５６号、第６４１３７６６号、第６３８７６２１号、第６３００１２４号、第６２７０７２３号、第６２４５５１４号、第６２３２０７９号、第６２２８６３４号、第６２１８１９３号、第６２１０８８２号、第６１９７５２０号、第６１７４６７０号、第６１３２９９６号、第６１２６８９９号、第６１２４１３８号、第６０７４８６８号、第６０３６９２３号、第５９８５６５１号、第５９５８７６３号、第５９４２４３２号、第５９３５５２２号、第５８９７８４２号、第５８８２９１８号、第５８４０５７３号、第５７９５７８４号、第５７９５５４７号、第５７８５９２６号、第５７８３４３９号、第５７３６１０６号、第５７２０９２３号、第５７２０４０６号、第５６７５７００号、第５６１６３０１号、第５５７６２１８号、及び第５４５５１７５号に記載のラピッドサイクリング技法を用いて得られるＰＣＲ増幅産物でもよく、これらの開示を参照によりその全体において本明細書に援用する。他の増幅方法には、ＮＡＳＢＲ、ＳＤＡ、３ＳＲ、ＴＳＡ、及びローリングサークル複製が含まれるが、これらに限定されない。所与の修飾ヌクレオチドを含有するポリヌクレオチドを産生するための任意の方法で、１つ又はいくつかのポリメラーゼ又は増幅法が使用できることが理解されている。最適重合条件の選択は、適用に依存する。

「ポリメラーゼ」は、重合体鎖へのモノマー単位の逐次付加を触媒するか、或いは２つ以上のモノマー単位を連結して、重合体鎖を開始する酵素である。本発明の有利な実施形態では、「ポリメラーゼ」は、特定配列の鋳型分子によってその同一性が決定され、且つ特定配列の鋳型分子に相補的なモノマー単位を付加することによって機能するであろう。例えば、ＤＮＡ ｐｏｌ１及びＴａｑポリメラーゼなどのＤＮＡポリメラーゼは、鋳型依存的にデオキシリボヌクレオチドをポリヌクレオチド鎖の３’末端に付加し、それによって、鋳型分子に相補的な核酸を合成する。ポリメラーゼは、プライマーを一度又は反復的に伸長するのに、或いは、２つのプライマーを用いて２本の相補鎖に繰り返しプライミングすることによってポリヌクレオチドを増幅するのに使用できる。

「ポリヌクレオチド」は、あるヌクレオシドの３’水酸基と、第２のヌクレオシドの５’水酸基との間のホスホジエステル結合で連結されたヌクレオチドの線状鎖を指し、第２のヌクレオシドは、次に、３’水酸基を介して第３のヌクレオシドの５’水酸基に連結され、以下同様にして、ホスホジエステルバックボーンによって連結されたヌクレオシドから成る重合体を形成する。「修飾ポリヌクレオチド」は、１つ又は複数の天然のヌクレオチドが部分的又は実質的に修飾ヌクレオチドで置換されているポリヌクレオチドを指す。

「プライマー」は、その配列の少なくとも一部が、増幅又は複製されるべき鋳型ＤＮＡのセグメントに相補的なオリゴヌクレオチドである。通常、プライマーは、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を行う際に用いられる。プライマーは、鋳型ＤＮＡとハイブリッド形成（すなわち、それに「アニール」）し、ポリメラーゼ酵素による複製／増幅過程のための開始点として用いられる。「相補的」によって、プライマーのヌクレオチド配列が、そのプライマーが鋳型と安定した水素結合複合体を形成できるような配列であること、すなわち、連続した少なくとも１０塩基対の長さにわたって塩基対が形成することによって、そのプライマーが鋳型にハイブリッド形成、すなわちアニールすることができるような配列であることを意味する。

本発明において、プライマーは、特定の標的ＤＮＡ配列の異なった鎖に「実質的に」相補的であるように選択される。これは、それらのプライマーが、それらのそれぞれの鎖にハイブリッド形成するのに十分に相補的でなければならないことを意味する。したがって、プライマー配列は、鋳型の正確な配列を反映する必要はない。例えば、プライマーの５’末端に非相補的なヌクレオチド断片が連結され、プライマー配列の残りがその鎖に相補的であってもよい。或いは、プライマー配列が、それとハイブリッド形成する鎖の配列と十分な相補性を有し、それによって、伸長産物を合成するための鋳型を形成する場合に、複数の非相補的な塩基、又はさらに長い配列をプライマー中に点在させることもできる。

「プローブ」は、同一、類似、又は相補的核酸配列をハイブリダイゼーションによって検出する際に使用される長さが不定のオリゴヌクレオチド核酸配列を指す。検出プローブとして使用されるオリゴヌクレオチド配列を、検出可能な部分で標識してもよい。様々な標識部分が当技術分野で知られている。前記部分は、例えば、放射性化合物、検出可能な酵素（例えばホースラディッシュペルオキシダーゼ（ＨＲＰ））、又は、熱量、蛍光、化学発光、若しくは電気化学発光シグナルなどの検出可能なシグナルを生成できる任意の他の部分でよい。検出可能な部分は、既知の方法を用いて検出できる。

本明細書で使用される場合、「タンパク質」という用語は、特定の順序にある１つ又は複数のアミノ酸の鎖で構成された大きな分子を指す。この順序は、このタンパク質をコードする遺伝子のヌクレオチドの塩基配列によって決定される。タンパク質は、身体の細胞、組織、及び臓器の、構造、機能、及び調節に必要である。各タンパク質は、特有の機能を有する。

本明細書で使用される場合、「品質形質」、「形質」、又は「身体特性」という用語は、遺伝学の結果生じた、動物の有利な特性を指す。品質形質には、動物の、エネルギー代謝する遺伝能力、乳を産生する遺伝能力、筋肉内脂肪を増やす遺伝能力、産卵する遺伝能力、子孫を産む遺伝能力、肉又は乳の中に特定のタンパク質を産生する遺伝能力、又は乳中にタンパク質を保有する遺伝能力が含まれるが、これらに限定されない。身体特性には、霜降りの肉であるか、或いは赤身の肉であるかが含まれる。これらの用語は、同義的に使用される。

「制限酵素」は、ＤＮＡ上の認識部位に反応してＤＮＡを切断するエンドヌクレアーゼ（ポリヌクレオチド鎖のホスホジエステル結合を切断する酵素）を指す。認識部位（制限部位）は、通常、長さが４〜８ヌクレオチドの特定の配列のヌクレオチドから成る。

「一塩基多型」すなわち「ＳＮＰ」は、単一ヌクレオチド置換によって別のポリヌクレオチドから相違しているポリヌクレオチドを指す。例えば、限定されるものではないが、ポリヌクレオチドの全配列中で１残基のＡを１残基のＣ、Ｇ、又はＴに置換することによって、ＳＮＰが構成される。当然ながら、特定のポリヌクレオチドの中に複数のＳＮＰを有することも可能である。例えば、ポリヌクレオチドの中のある遺伝子座では、ＣをＴで置換することができ、別の遺伝子座では、ＧをＡで置換することができ、以下同様である。ＳＮＰについて言及する場合、ほとんどの場合で、ポリヌクレオチドがＤＮＡである。

本明細書で使用される場合、「鋳型」は、標的ポリヌクレオチド鎖を指し、例えば、限定されるものではないが、天然存在の鎖の相補鎖を重合させるために、成長中の鎖の中に、ポリメラーゼが次にどのヌクレオチドを組み込むべきか認識する手段として用いる天然存在の無修飾のＤＮＡ鎖を指す。そのようなＤＮＡ鎖は一本鎖であることも、二本鎖ＤＮＡ鋳型の一部であることもある。重合のサイクルを繰り返す必要のある本発明の適用、例えばポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）では、修飾ヌクレオチドの取込みによって鋳型鎖自体が修飾される場合もあるが、それでもなお、ポリメラーゼがさらにポリヌクレオチドを合成するための鋳型として働く。

「温度サイクル反応」は、反応の温度を変えることによって少なくとも２ステップが実行される多段階反応である。

「耐熱性ポリメラーゼ」は、１００℃に接近する温度など、非常に高い温度に対して耐性を有するＤＮＡ又はＲＮＡポリメラーゼ酵素を指す。耐熱性ポリメラーゼは、しばしば、サームスアクアチクス（Thermus aquaticus）など、極限温度下に生息する生物に由来する。耐熱性ポリメラーゼの例には、Taq、Tth、Pfu、Vent（登録商標）、Deep Vent（登録商標）、UlTma（登録商標）、並びにこれらの変種及び誘導体が含まれる。

「分散」は、関連したポリヌクレオチドの間にあるヌクレオチド配列の相違である。この相違は、関連したポリヌクレオチドの配列と比較したあるポリヌクレオチドの配列からの１つ又は複数のヌクレオチドの欠失でも、１つ又は複数のヌクレオチドの付加でも、或いはあるヌクレオチドから別のヌクレオチドへの置換でもよい。「変異」、「多型」、及び「分散」という用語は、本明細書で同義的に使用される。本明細書で使用される場合、単数形の「分散」という用語は、複数の分散、すなわち、同一のポリヌクレオチドにおける２つ以上のヌクレオチドの付加、欠失、及び／又は置換も含むと解釈されることになっている。「点突然変異」は、あるヌクレオチドから別のヌクレオチドへの単一の置換を指す。

別段の定義がない限り、本明細書で使用されるすべての技術用語及び科学用語は、分子生物学分野の当業者によって一般的に理解されているものと同じ意味を有する。本明細書に記載する方法及び物質に類似又は同等の方法及び物質を本発明の実施又は試行に用いることもできるが、適切な方法及び物質は本明細書に記載するものである。

さらに別の定義は、以下の文脈において提供する。別段の定義がない限り、本明細書で使用されるすべての技術用語及び科学用語は、分子生物学分野の当業者によって一般的に理解されているものと同じ意味を有する。本明細書に記載する方法及び物質に類似又は同等の方法及び物質を本発明の実施又は試行に用いることもできるが、適切な方法及び物質は本明細書に記載するものである。

ii．本発明の一般的態様
本発明は、ｏｂ（obese）遺伝子、すなわちレプチンタンパク質をコードする遺伝子の中のＳＮＰの存在に基づいて動物を同定及び選択する方法を提供する。レプチンは、食欲、基礎代謝、脂肪沈着、及び乳生産の調節に関与する１６ｋＤａの脂肪細胞特異的なポリペプチドである。ｏｂ遺伝子は、いくつかの異なった動物で特定の染色体上にマッピングされており、それによって、いくつかの異なった種で、遺伝子の配列決定が可能となった。ｏｂ ＤＮＡ及びレプチンポリペプチドが種相互で有意に保存されていることが見出された。本発明のものと同一又は類似の表現型効果を有するＳＮＰが多くの異なった動物種で存在する可能性がある。本発明の方法は、対象の種に由来する個々の動物が本明細書に記載のＳＮＰを保持しているかどうか判定するのに用いることができる。好ましい一実施形態では、ウシのｏｂ遺伝子を、本発明のＳＮＰの存在に関してスクリーニングする。

一態様において、本発明は、レプチンプロモーター中の一塩基多型（ＳＮＰ）の同定と、循環レプチンレベル、飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値、及び屠体構成、並びに乳生産量に関連した、これらのＳＮＰの特定のアレルを保持する動物を同定する方法とに関する。さらに別の態様では、本発明は、レプチン遺伝子のエキソン２における、以前に報告されているＳＮＰの循環レプチンレベル、飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値及び屠体構成、並びに乳生産量との連関に関する。本発明は、さらに、ｏｂ遺伝子の特定の核酸配列を増幅するプライマーとして使用できるオリゴヌクレオチドと、ｏｂ遺伝子の核酸配列を検出する際のプローブとして使用できるオリゴヌクレオチドとを提供する。

図１は、「野生型」のウシｏｂ遺伝子の５’フランキングプロモーター領域及びエキソン１のヌクレオチド配列を図示する。この「野生型」配列は、ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＢ０７０３６８を有し、本明細書では配列番号１と呼ばれる。

本発明において、驚くべきことに、ｏｂ遺伝子のプロモーター領域に位置する、以前には知られていなかった３つのＳＮＰ（すなわち、ＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、及びＵＡＳＭＳ３）と、この遺伝子のエキソン２における、以前から知られていた１つのＳＮＰとが、動物、特にウシ家畜における経済的に貴重な特定の形質と関連していることが示された。

ＵＡＳＭＳ１と呼ばれるＳＮＰは、ウシレプチン遺伝子プロモーターの位置２０７におけるシトシン（Ｃ）からチミン（Ｔ）への置換（Ｃ／Ｔ）を構成する。ＵＡＳＭＳ２と呼ばれるＳＮＰは、ウシレプチン遺伝子プロモーターの位置５２８におけるシトシン（Ｃ）からチミン（Ｔ）への置換（Ｃ／Ｔ置換）を構成する。ＵＡＳＭＳ３と呼ばれるＳＮＰは、ウシレプチン遺伝子プロモーターの位置１７５９におけるシトシン（Ｃ）からグアニン（Ｇ）への置換（Ｃ／Ｇ置換）を構成する。レプチンプロモーターのＳＮＰであるＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、及びＵＡＳＭＳ３を同定するのに本明細書で使用するヌクレオチド番号つけシステムは、「野生型」ウシレプチンプロモーター配列である配列番号１に使用されたものである。

ＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、及びＵＡＳＭＳ３多型は、レプチン遺伝子のコード領域ではなく、この遺伝子の５’調節配列に位置しており、したがって、レプチン遺伝子産物のいかなるアミノ酸置換も起こさない。

ＥＸＯＮ２−ＦＢと呼ばれる、本明細書に記載のＳＮＰは、以前にBuchananら(2002)によって同定されたものであり、「野生型」ウシレプチン遺伝子（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＹ１３８５８８、及び配列番号５）のコード領域のエキソン２の位置１７５９におけるシトシン（Ｃ）からチミン（Ｔ）へのミスセンス突然変異を構成する。ＥＸＯＮ２−ＦＢ ＳＮＰを同定するのに本明細書で使用するヌクレオチド番号つけシステムは、「野生型」ウシレプチンエキソン２配列である配列番号５に使用されたものである。

iii．組織及びＤＮＡ試料
本発明の方法に従って所与の動物の遺伝子型を決定するには、その動物からゲノムＤＮＡ試料を入手する必要がある。通常、そのゲノムＤＮＡ試料は、その動物から採取された組織又は細胞の試料から入手されるであろう。

組織試料又は細胞試料は、動物の寿命内ならいつでも、ただし屠体アイデンティティーが失われる前に動物から採取することができる。この組織試料は、髪（毛根を含む）、皮、骨、頬側スワブ検体、血液、唾液、乳、精液、胚、筋肉、又は任意の内臓を含みうる。本発明の方法では、組織試料の供給源は重要でなく、したがって試験核酸試料の供給源も重要でない。例えば、試験核酸は、その動物の体液中の細胞から、或いはその動物の体組織を構成する細胞から得ることができる。そこから細胞が得られる特定の体液も、本発明には重要でない。例えば、この体液は、血液、腹水、胸水、及び脊髄液から成る群から選択されるものでよい。さらに、そこから細胞が得られる特定の体組織も、本発明には重要でない。例えば、この体組織は、皮膚、子宮内膜、子宮組織、及び頚部組織から成る群から選択されたものでよい。正常組織及び腫よう組織の両方が使用できる。

通常、組織試料は、その試料が採取された個々の動物にその試料を関係づける識別番号又は他の表示で印が付けられる。本発明の方法を通して試料のアイデンティティーを一定のまま残し、それによって、抽出及び分析の間に試料の整合性及び連続性を確実にするのが有利である。別法として、データ、またいかなる他の関連データも、そのデータが得られた動物に再び関連付けできることを確実にする規則的な方法でしるしを変えてもよい。

必要な試料の量／サイズは、当業者に知られている。理想的には、回収される組織試料のサイズ／容積は、その試料タイプ及びその動物種の中で可能な限り一貫しているべきである。例えば、ウシの場合、試料のサイズ／方法の非限定的な例には、脂肪質でない肉：０．０００２ｇから０．００１０ｇ；皮：０．０００４ｇから０．００１０ｇ；毛根：５本より多く、且つ２０本未満；頬側スワブ検体：１本のCytosoft（登録商標）細胞診断ブラシを用いて、ひかえめな圧力で外唇と歯ぐきとの間の領域を１５から２０秒間摩擦；骨：０．００２０ｇから０．００４０ｇ；及び、血液：３０から７０μＬが含まれる。

通常、組織試料は、その動物、例えばその動物の耳標に対応するコードを有する番号つけシステムを用いて標識された容器内に置かれる。したがって、特定の動物の遺伝子型はいつでも容易に確認できる。

本発明の一実施形態では、試料採取装置及び／又は容器が、農場経営者、屠殺場、又は小売業者に供給されることがある。試料採取装置は、個々の動物からの再現可能で一貫した試料採取を、同時にいかなる組織の交差汚染も回避しながら行うものが有利である。それによって、個々の動物から得られた試料組織の大きさ及び容積が一貫したものとなろう。

本発明によれば、ゲノムＤＮＡの試料を、対象の家畜動物の組織試料から取得する。いかなる供給源の細胞若しくは組織を使用する場合も、分析用に十分な量のＤＮＡを提供するのに十分な量の細胞を得なければならない。当業者ならば、この量を既に知っているか、或いは容易に決定できるであろう。

ＤＮＡは、当業者に既知の技法で組織／細胞から単離される（例えば、米国特許第６５４８２５６号及び第５９８９４３１号、Hirota et al., Jinrui Idengaku Zasshi. 1989 Sep;34(3):217-23、並びに、John et al., Nucleic Acids Res. 1991 Jan 25;19(2):408を参照；これらの開示を参照によりその全体において本明細書に援用する）。例えば、高分子量ＤＮＡは、細胞又は組織からプロテナーゼＫ抽出及びエタノール沈殿を用いて精製できる。ＤＮＡは、当技術分野で知られているいかなる他の適切な方法を用いて動物標本から抽出してもよい。

iv．対象の動物の遺伝子型の決定
本発明の目的は、循環レプチンレベル、飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値及び屠体構成、並びに乳生産量に関連した、本発明のＳＮＰにおける特定のアレルを保持する動物を同定するために、所与の対象の動物の遺伝子型を決定することである。

当技術分野には、動物の遺伝子型を決定するため、そして、所与のＤＮＡ試料が特定のＳＮＰを含有するかどうかを同定するための既知の方法が多数ある。本発明では、ｏｂ遺伝子型を決定するのに、いかなる遺伝子型決定法を用いることもできる。限定されるものではないが、そのような方法には、アンプリマーシーケンシング、ＤＮＡ配列決定、蛍光分光法、蛍光共鳴エネルギー移動（すなわち「ＦＲＥＴ」）ベースのハイブリダイゼーション分析、高スループットスクリーニング、質量分光分析法、核酸ハイブリダイゼーション、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）、ＲＦＬＰ分析、及びサイズクロマトグラフィー（例えば毛細管又はゲルクロマトグラフィー）が含まれ、これらはすべて当業者に周知の方法である。詳細には、米国特許第６５１４７００号、第６５０３７１０号、第６４６８７４２号、第６４４８４０７号、第６４１０２３１号、第６３８３７５６号、第６３５８６７９号、第６３２２９８０号、第６３１６２３０号、及び第６２８７７６６号に記載されており、また、Chen and Sullivan、Pharmacogenomics J 2003;3(2):77-96に、ヌクレオチド多型、特に一塩基多型を決定する方法が概説されており、これらの開示を参照によりその全体において本明細書に援用する。

ｖ．配列決定による遺伝子型の決定
一実施形態では、多型遺伝子座にまたがる、ゲノムＤＮＡ試料の領域を配列決定することによって、本発明のＳＮＰの存在又は不在を決定する。ゲノムＤＮＡの配列を決定する方法は当技術分野で多数知られており、そのようないかなる方法も用いることができる。例えば、Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual 2d ed. (1989)を参照のこと。例えば、下記の通り、ポリメラーゼ連鎖反応又は他のポリメラーゼ媒介環状増幅反応を用いて、対象のＳＮＰの位置にまたがるＤＮＡ断片を増幅することができる。増幅された領域のＤＮＡは、その後、当技術分野で知られている任意の方法を用いて配列決定することができる。この核酸配列決定は、自動化法（Meldrum, Genome Res. 2000 Sep;10(9):1288-303に概説されており、この開示を参照により全体として本明細書に援用する）、例えば、Beckman社製CEQ 8000 Genetic Analysis System（Beckman Coulter Instruments社）を用いた自動化法が有利である。限定されるものではないが、核酸を配列決定する方法には、自動化蛍光ＤＮＡシーケンシング（例えば、Watts and MacBeath, Methods Mol Biol. 2001;167:153-70、及び、MacBeath et al., Methods Mol Biol. 2001;167:119-52を参照）、毛細管電気泳動（例えば、Bosserhoff et al., Comb Chem High Throughput Screen. 2000 Dec;3(6):455-66を参照）、ＤＮＡシーケンシングチップス（例えば、Jain, Pharmacogenomics. 2000 Aug;1(3):289-307を参照）、質量分光分析法（例えば、Yates, Trends Genet. 2000 Jan;16(1):5-8を参照）、Pyrosequencing（商標）法（例えば、Ronaghi, Genome Res. 2001 Jan;11(1):3-11を参照）、及び超薄膜層ゲル電気泳動（例えば、Guttman and Ronai, Electrophoresis. 2000 Dec;21(18):3952-64を参照）が含まれ、これによってこれらの開示を参照によりその全体において本明細書に援用する。配列決定は、任意の営利会社によって行うこともできる。そのような会社の例には、the University of Georgia Molecular Genetics Instrumentation Facility (ジョージア州Athens)、又は、SeqWright DNA Technologies Services社(テキサス州Houston)が含まれるが、これらに限定されない。

vi．ポリメラーゼ媒介環状増幅を用いた遺伝子型決定
本発明の特定の実施形態では、所与のＳＮＰの検出を、ポリメラーゼ媒介環状増幅を用いて行うことができる。例えば、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）、リガーゼ連鎖反応（ＬＣＲ）（Barany, F., Proc. Natl. Acad. Sci. (U.S.A.) 88:189-193 (1991)）、鎖置換アッセイ（ＳＤＡ）、又はオリゴヌクレオチド結合アッセイ（「ＯＬＡ」）（Landegren, U. et al., Science 241:1077-1080 (1988)）など、当技術分野で既知のＤＮＡ増幅法のいずれか１つを用いてよい。Nickerson、D.A.らは、ＰＣＲの特性とＯＬＡの特性とを併せた核酸検出アッセイを記述した（Nickerson, D. A. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. (U.S.A.) 87:8923-8927 (1990)）。転写ベースの増幅システム（Malek, L.T. et al., 米国特許第５１３０２３８号；Davey、C. et al., 欧州特許出願第３２９８２２号；Schuster et al., 米国特許第５１６９７６６号；Miller, H. I. et al., ＰＣＴ出願第８９／０６７００号；Kwoh, D. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. (U.S.A.) 86:1173 (1989)；Gingeras、T.R. et al., ＰＣＴ出願第８８／１０３１５号）、又は等温増幅法（Walker, G. T. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. (U.S.A.) 89:392-396 (1992)）などの他の既知の核酸増幅操作法を用いてもよい。

本発明のＳＮＰを含有するＤＮＡ断片を増幅する最も有利な方法は、二本鎖形態で多型部位を限定又は挟み込む近位配列にハイブリッド形成できるプライマー対を用いたＰＣＲを利用したものである（例えば、米国特許第４９６５１８８号、第５０６６５８４号、第５３３８６７１号、第５３４８８５３号、第 ５３６４７９０号、第５３７４５５３号、第５４０３７０７号、第５４０５７７４号、第５４１８１４９号、第５４５１５１２号、第５４７０７２４号、第５４８７９９３号、第５５２３２２５号、第５５２７５１０号、第５５６７５８３号、第５５６７８０９号、第５５８７２８７号、第５５９７９１０号、第５６０２０１１号、第５６２２８２０号、第５６５８７６４号、第５６７４６７９号、第５６７４７３８号、第５６８１７４１号、第５７０２９０１号、第５７１０３８１号、第５７３３７５１号、第５７４１６４０号、第５７４１６７６号、第５７５３４６７号、第５７５６２８５号、第５７７６６８６号、第５８１１２９５号、第５８１７７９７号、第５８２７６５７号、第５８６９２４９号、第５９３５５２２号、第６００１６４５号、第６０１５５３４号、第６０１５６６６号、第６０３３８５４号、第６０４３０２８号、第６０７７６６４号、第６０９０５５３号、第６１６８９１８号、第６１７４６６８号、第６１７４６７０号、第６２００７４７号、第６２２５０９３号、第６２３２０７９号、第６２６１４３１号、第６２８７７６９号、第６３０６５９３号、第６４４０６６８号、第６４６８７４３号、第６４８５９０９号、第６５１１８０５号、第６５４４７８２号、第６５６６０６７号、第６５６９６２７号、第６６１３５６０号、第６６１３５６０号、及び第６６３２６４５号を参照のこと；これらの開示を参照によりその全体において本明細書に援用する）。

本発明に従ってポリメラーゼ媒介環状増幅反応を行うには、プライマーを標的ＤＮＡの反対の鎖にハイブリッド形成又はアニールさせ、その後、温度を上昇させ、その結果、熱安定性ＤＮＡポリメラーゼによるプライマーの伸長が可能となり、それによって、２つのプライマーの間の領域にまたがる特定のＤＮＡセグメントが複製される。その後、反応を温度循環させ、それによって、２つのプライマーの間にある配列を示すＤＮＡの量を各サイクルで２倍にし、その結果、ｏｂ遺伝子ＤＮＡ配列が存在する場合には、その特異的増幅が起こる。

本発明では、様々なポリメラーゼのいずれを用いることもできる。温度サイクル反応用には、そのポリメラーゼは、Taq、KlenTaq（登録商標）、ストッフェル断片、Deep Vent（登録商標）、Tth、Pfu、Vent（登録商標）、及びUlTma（登録商標）などの耐熱性ポリメラーゼであり、これらはそれぞれ販売会社から容易に購入できる。非温度サイクル反応用、及び特定の温度サイクル反応用には、多くの場合、ポリメラーゼは、ＤＮＡ ｐｏｌ１、クレノウ断片、Ｔ７ ＤＮＡポリメラーゼ、及びＴ４ ＤＮＡポリメラーゼなど、当技術分野で一般的に使用されており、且つ市販されている多くのポリメラーゼのうちの１つであろう。そのようなポリメラーゼを使用するための手びきは、製品書類及び分子生物学の一般的手びきに容易に見出すことができる。

通常、標的ＤＮＡ配列へのプライマーのアニーリングは、約３７〜５５℃で約２分間行われ、ポリメラーゼ酵素（Ｔａｑポリメラーゼなどの）によるヌクレオチド三リン酸存在下でのプライマー配列の伸長は、約７０〜７５℃で約３分間行われ、そして、伸長したプライマーを遊離させるための変性ステップは、約９０〜９５℃で約１分間行われる。しかし、これらのパラメータは変更可能であり、当業者ならば、望ましい結果を実現するために、どのように反応の温度及び時間パラメータを調整するか容易に知ることであろう。例えば、サイクルは１０、８、６、５、４．５、４、２、１、０．５分、又はそれ以下に短縮できる。

また、「２温度」技法を用いることもでき、その場合、アニーリングステップ及び伸長ステップを両方とも同じ温度、通常約６０℃から６５℃の間で行うことができ、それによって、それぞれの増幅サイクルの長さが短縮され、アッセイ時間がさらに短くなる。

通常は、本明細書に記載の反応を、検出可能な量の産物が生じるまで反復する。より多くの量、例えば、２００ｎｇ、５００ｎｇ、１ｍｇ、又はそれより多い量も、当然、検出できるが、しばしば、そのような検出可能な量の産物は、約１０ｎｇと約１００ｎｇとの間である。濃度に換算すれば、検出可能な産物の量は、約０．０１ｐｍｏｌ、０．１ｐｍｏｌ、１ｐｍｏｌ、１０ｐｍｏｌ、又はそれより高い濃度である。したがって、実施される反応のサイクル数を変更することができ、実施されるサイクルの数が多いほど、より多くの増幅産物が生成される。特定の実施形態では、反応が２、５、１０、１５、２０、３０、４０、５０、又はそれより多くのサイクルを含む。

例えば、ＰＣＲ反応は、約０．０１〜１．０ｎｇの鋳型増幅配列、それぞれ約１０〜１００ｐｍｏｌの汎用プライマー、約１．５単位のＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼ（Promega社製）、約０．２ｍＭ ｄＤＡＴＰ、約０．２ｍＭ ｄＣＴＰ、約０．２ｍＭ ｄＧＴＰ、約０．２ｍＭ ｄＴＴＰ、約１５ｍＭ ＭｇＣｌ_２、約１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ９．０）、約５０ｍＭ ＫＣｌ、約１μｇ／ｍｌゼラチン、及び約１０μｌ／ｍｌ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００（Saiki, 1988）を含有する約２５〜５０μｌの試料を用いて実施することができる。

当業者は、ポリメラーゼ媒介環状反応での使用に利用可能なヌクレオチドの種類を知っている。通常、それらのヌクレオチドは、少なくとも部分的にデオキシヌクレオチド三リン酸（ｄＮＴＰ）から成るであろう。ｄＮＴＰは容易に購入できる。ｄＮＴＰを最適に使用するためのパラメータも、当業者に知られており、さらに、文献にも記載されている。加えて、多くのヌクレオチド誘導体が、当業者に知られており、本発明の反応に使用できる。そのような誘導体には、蛍光標識されたヌクレオチドが含まれ、これは、以下に記述する通り、そのような標識されたヌクレオチドを含む産物の検出を可能にする。また、鎖終止ヌクレオチド、ジデオキシヌクレオチド、及びヌクレアーゼ抵抗性のホウ素化ヌクレオチドなど、そのようなヌクレオチドを含む核酸の配列決定を可能にするヌクレオチドも、このグループに含まれる。これらのＤＮＡ配列決定法で最も典型的に使用される試薬を含有する市販キットが販売されており、広く使用されている。他のヌクレオチド類似体には、ブロモ基、ヨード基、又は他の修飾基を有するヌクレオチドが含まれ、これらは、結果として得られる核酸の、免疫原性、複製可能性、融解温度、及び結合特性などを含めた多数の特性に影響を与える。加えて、特定のヌクレオチドは、スルフヒドリル基、アミノ基、Ｎ−ヒドロキシサクシニミジル基など、それらを含む核酸をさらに修飾するのを可能にする反応性の側鎖を含む。

本発明は、ＰＣＲ反応などのポリメラーゼ媒介環状増幅反応でｏｂ遺伝子の特定の核酸配列を増幅するためのプライマーとして使用できるオリゴヌクレオチドを提供する。これらのプライマーは、レプチンプロモーターにおけるＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、又はＵＡＳＭＳ３ ＳＮＰと、レプチン遺伝子のエキソン２におけるｅｘｏｎ２−ＦＢ ＳＮＰとを検出するのに有用である。特定の実施形態では、これらのプライマーがオリゴヌクレオチド断片から成る。そのような断片は、核酸試料への特異的なアニーリング又はハイブリダイゼーションを可能にするのに十分な長さのものであるべきである。これらの配列の長さは、通常、約８〜約４４ヌクレオチドであろうが、それより長くてもよい。特定の実施形態では、さらに長い配列、例えば、約１４〜約５０ヌクレオチドのものが有利である。

ＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、又はＵＡＳＭＳ３ ＳＮＰを含むＤＮＡの断片を増幅することが望ましい実施形態では、配列番号１（レプチンプロモーター配列）における約８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、又は２４ヌクレオチドのひと続きの連続した領域を有するプライマーが企図されている。ＥＸＯＮ２−ＦＢ ＳＮＰを含むＤＮＡの断片を増幅することが望ましい実施形態では、配列番号５（レプチン遺伝子のエキソン２）における約８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、又は２４ヌクレオチドのひと続きの連続した領域を有するプライマーが企図されている。

様々な異なった長さのプライマーが使用でき、また、プライマーを作製するのに使用される、レプチン遺伝子中の連続したひと続きのヌクレオチド領域の正確な位置は様々であり得るが、順方向プライマー及び逆方向プライマーがアニールする配列が、増幅されるＳＮＰで置換されている特定のヌクレオチド位置のいずれかの側に位置していることが重要である。例えば、ＵＡＳＭＳ１多型を増幅するためのプライマーを設計する場合、一方のプライマーは、レプチンプロモーター（配列番号１又は２）のヌクレオチド位置２０７（と重ならない）の上流に位置しなければならず、また、もう一方のプライマーは、レプチンプロモーター（配列番号１又は２）のヌクレオチド位置２０７（と重ならない）の下流に位置しなければならない。ＵＡＳＭＳ２多型を増幅するためのプライマーを設計する場合、一方のプライマーは、レプチンプロモーター（配列番号１又は３）のヌクレオチド位置５２８（と重ならない）の上流に位置しなければならず、また、もう一方のプライマーは、レプチンプロモーター（配列番号１又は３）のヌクレオチド位置５２８（と重ならない）の下流に位置しなければならない。同様に、ＵＡＳＭＳ３多型を増幅するためのプライマーを設計する場合、一方のプライマーは、レプチンプロモーター（配列番号１又は４）のヌクレオチド位置１７５９（と重ならない）の上流に位置しなければならず、また、もう一方のプライマーは、ヌクレオチド位置１７５９（と重ならない）の下流に位置しなければならない。最後に、ＥＸＯＮ２−ＦＢ多型を増幅するためのプライマーを設計する場合、一方のプライマーは、エキソン２（配列番号５）のヌクレオチド位置３０４（と重ならない）の上流に位置しなければならず、また、もう一方のプライマーは、エキソン２のヌクレオチド位置３０４（と重ならない）の下流に位置しなければならない。

好ましい実施形態では、ＵＡＳＭＳ１多型の位置にまたがり、且つこれを含有するＤＮＡ断片を、配列5'-GGCACAATCCTGTGTATTGGTAAGA-3'（配列番号７）を有する順方向プライマーと、配列5'-GTCCATGTACCATTGCCCAATTT-3'（配列番号８）を有する逆方向プライマーとを用いて核酸試料から増幅する。

同様に、好ましい一実施形態では、ＵＡＳＭＳ２多型の位置にまたがり、且つこれを含有するＤＮＡ断片を、配列5'-AGGTGCCCAGGGACTCA-3'（配列番号１１）を有する順方向プライマーと、配列5'-CAACAAAGGCCGTGTGACA-3' （配列番号１２）を有する逆方向プライマーとを用いて核酸試料から増幅する。

ＵＡＳＭＳ３多型の位置にまたがるＤＮＡ断片を増幅するには、配列5'-ATGTATATTTGGTGTGAGAGTGTGTGT-3'（配列番号１５）を有する順方向プライマーと、配列5'-AGCTGGAAAGAACGGATTATAAAATGGT-3' （配列番号１６）を有する逆方向プライマーとを用いるのが好ましい。

同様に、ＥＸＯＮ２−ＦＢ多型の位置にまたがるＤＮＡ断片を増幅するには、配列5'-GGCTTTGGCCCTATCTGTCTTAC-3'（配列番号１９）を有する順方向プライマーと、配列5'-CTTGATGAGGGTTTTGGTGTCA-3'（配列番号２０）を有する逆方向プライマーと用いるのが好ましい。

上述の方法は、ＳＮＰが位置するヌクレオチド位置を含むＤＮＡ断片を増幅するために、それぞれがＳＮＰのいずれかの側に位置し、且つこれと重なっていないプライマーを利用する。そのような方法は、多型部位における遺伝子型を決定するために、その断片を配列決定するステップ、又はアレル特異的なプローブをその断片にハイブリッド形成させるステップなど、追加のステップを必要とする。しかし、本発明の一部の実施形態では、例えば「アレル特異的ＰＣＲ」のように、増幅法がそれ自体、多型部位の遺伝子型を決定する方法である。アレル特異的ＰＣＲでは、増幅自体が対象の多型を含有する投入鋳型核酸に依存するようにプライマー対が選択される。そのような実施形態では、少なくとも１つのプライマーが、そのＳＮＰの実際のヌクレオチド位置にまたがって、それによって、アレル特異的なオリゴヌクレオチドプライマーとなるようにプライマー対が選択される。通常、それらのプライマーは、単一のアレル特異的なヌクレオチドを３’末端に含有し、対象の遺伝子に相補的な塩基がそれに先行する。ＰＣＲ反応条件は、ＤＮＡポリメラーゼによる増幅が、一致している３’プライマー末端からは進行するが、ミスマッチが存在する場合には進行しないように調整される。アレル特異的ＰＣＲは、それぞれが各アレルに特異的な２つの異なったアレル特異的プライマーの存在下で行うこともでき、その場合、各プライマーが異なった色素で標識され、例えば、一方のアレル特異的プライマーは緑色の色素（例えばフルオレセイン）で標識され、そして、もう一方のアレル特異的プライマーは赤色の色素（例えばスルホロダミン）で標識されることがある。増幅の後、緑色及び赤色の蛍光について産物を分析する。目標では、一方のホモ遺伝子型は緑色蛍光のみを生じ、もう一方のホモ接合遺伝子型は赤色蛍光のみを与え、そして、ヘテロ接合遺伝子型は赤色蛍光及び緑色蛍光の混合したものを与える。

したがって、ＵＡＳＭＳ１多型を検出するためのアレル特異的ＰＣＲを行うには、１つのプライマーが配列番号１又は配列番号２のヌクレオチド位置２０７と重なりあい、ヌクレオチド位置２０７がそのプライマーの３’末端となるようにしなければならない。同様に、ＵＡＳＭＳ２多型を検出するためのアレル特異的ＰＣＲを行うには、１つのプライマーが配列番号１又は配列番号３のヌクレオチド位置５２８と重なりあい、ヌクレオチド位置５２８がそのプライマーの３’末端となるようにしなければならない。ＵＡＳＭＳ３多型を検出するためのアレル特異的ＰＣＲを行うには、１つのプライマーが配列番号１又は配列番号４のヌクレオチド位置１７５９と重なりあい、ヌクレオチド位置１７５９がそのプライマーの３’末端となるようにしなければならない。最後に、ＥＸＯＮ２−ＦＢ多型を検出するためのアレル特異的プライマーを設計する場合には、１つのプライマーが配列番号５又は配列番号６のヌクレオチド位置３０４と重なりあい、ヌクレオチド位置３０４がそのプライマーの３’末端となるようにしなければならない。

アレル特異的ＰＣＲを行う方法は当技術分野で周知であり、そのような方法のいかなるものを用いてもよい。例えば、適切な方法は、Myakishev et al., Genome Research, vol 1, p163-169 (2001)、Alexander et al., Mol Biotechnol. vol 28(3), p171-174 (2004)、及び、Ruano et al., Nucleic Acids Res. vol 17(20), p8392 (1989)に教示されており、これらの内容を参照により本明細書に援用する。本発明の一部の実施形態では、増幅によって制限部位が生成し、それによって多型部位の同定が容易となるようにアレル特異的プライマーが選択される。アレル特異的ＰＣＲを行うには、アレル特異的プライマーが一方のアレルのみに結合し、もう一方のアレルには結合しないであろうように反応条件を慎重に調整しなければならず、例えば、一部の実施形態では、プライマー配列とＤＮＡとの間で１００％の一致がある場合にのみプライマーが結合し、１つでもヌクレオチドミスマッチがある場合には結合しないであろうように条件が調整される。

vii．）ハイブリダイゼーションベースの方法を用いた遺伝子型の決定
本発明の特定の実施形態では、所与のＳＮＰの検出を、そのＤＮＡに結合又はハイブリッド形成するオリゴヌクレオチドプローブを用いて行うことができる。本発明は、ウシレプチンプロモーターにおけるＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、又はＵＡＳＭＳ３ ＳＮＰ、又はウシレプチン遺伝子エキソン２におけるＥＸＯＮ２−ＦＢ ＳＮＰを検出するためのオリゴヌクレオチドプローブを提供する。

特定の実施形態では、これらのプローブがオリゴヌクレオチド断片から成る。そのような断片は、核酸試料に特異的にハイブリッド形成するのに十分な長さのものであるべきである。この配列は、通常、約８から５０ヌクレオチドであろうが、これより長くてもよい。配列番号１（野生型ウシレプチンプロモーター）、配列番号２（ＵＡＳＭＳ１多型を有するウシレプチンプロモーター）、配列番号３（ＵＡＳＭＳ２多型を有するウシレプチンプロモーター）、配列番号４（ＵＡＳＭＳ３多型を有するウシレプチンプロモーター）、配列番号５（野生型ウシレプチンエキソン２）、又は配列番号６（ＥＸＯＮ２−ＦＢ多型を有するレプチンエキソン２）から選択された配列における約８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、又は２４ヌクレオチドのひと続きの連続した領域を有する核酸プローブが企図されている。

異なった長さの様々なプローブが使用でき、また、プローブ配列が由来するレプチン遺伝子中の連続したひと続きのヌクレオチド領域の正確な位置は様々であり得るが、プローブ配列は、検出するべき特定のＳＮＰにおいて置換されている特定のヌクレオチド位置にまたがっていなければならない。例えば、ウシＵＡＳＭＳ１多型を検出するために設計されたプローブは、ウシレプチンプロモーター（配列番号２）のヌクレオチド位置２０７にまたがっていなければならない。ウシＵＡＳＭＳ２多型を検出するために設計されたプローブは、ウシレプチンプロモーター（配列番号３）のヌクレオチド位置５２８にまたがっていなければならない。同様に、ウシＵＡＳＭＳ３多型を検出するために設計されたプローブは、ウシレプチンプロモーター（配列番号４）のヌクレオチド位置１７５９にまたがっていなければならない。最後に、ウシｅｘｏｎ２−ＦＢ多型を検出するために設計されたプローブは、ウシレプチン遺伝子（配列番号６）のエキソン２のヌクレオチド位置３０４にまたがっていなければならない。

これらのプローブは、サザンブロット法、ノーザンブロット法、ハイブリダイゼーション破壊分析などの様々なハイブリダイゼーション実施形態で有用であろう。また、本発明のプローブは、上述したプライマーを用いて生成された増幅ＰＣＲ産物など、増幅された配列におけるＳＮＰを検出するのにも使用できる。例えば、一実施形態では、最初に、ＰＣＲ又は鎖置換増幅（ＳＤＡ）などによって標的核酸を増幅し、次に、増幅された二本鎖ＤＮＡ産物を変性させて、プローブとハイブリッド形成させる。

他の実施形態では、二本鎖ＤＮＡ（増幅されたものでも、そうでないものでもよい）を変性させ、本発明のプローブをハイブリッド形成させ、そして、ハイブリダイゼーション複合体を不安定化条件又は破壊条件にさらす。別のアレルと比較して、あるアレルでそのプローブの破壊エネルギーが異なっている場合、必要となる破壊エネルギーのレベルを測定することによって、多型遺伝子座における、遺伝子の遺伝子型を決定することができる。一例では、多型遺伝子座にシトシン残基を有するアレルでは、破壊エネルギー、例えば融解温度が低く、その多型遺伝子座にチミン残基を有するアレルでは、より高いエネルギーが必要である場合がある。これは、プローブが一方のアレルに対して１００％の相同性を有する（完全一致したプローブ）が、もう一方のアレルとは単一のミスマッチを有する場合に実現されうる。完全一致したプローブは、ミスマッチのあるプローブより標的ＤＮＡに強く結合するので、ハイブリッド形成したプローブの解離を引き起こすのに、より多くのエネルギーを必要とする。

一実施形態では、不安定化条件が温度の上昇を含む。温度が高いほど、不安定化の程度がより大きくなる。別の一実施形態では、不安定化条件が、ハイブリダイゼーション複合体を温度勾配にかけることを含み、それによって、温度が上昇するに従って不安定化の程度が増大する。別の実施形態では、不安定化条件が不安定化化合物での処理を含み、或いは、勾配がそのような化合物の量の増大を含む。適当な不安定化化合物には、塩及び尿素が含まれるが、これらに限定されない。ハイブリダイゼーション複合体を不安定化又は変性させる方法は当技術分野で周知であり、そのような方法のいかなるものも、本発明に従って使用できる。例えば、ハイブリダイゼーション複合体を不安定化又は変性させる方法は、Sambrook et al., Molecular Cloning; A Laboratory Manual 2d ed. (1989)によって教示されている。

一塩基対のミスマッチを最適に検出するには、一方のアレルに結合した際に、多型部位におけるもう一方のアレルに対して、プローブＤＮＡ複合体の融解温度が約１℃から約１０℃相違していることが好ましい。それによって、アレルの一方に対応するプローブ：ＤＮＡ２本鎖の融解温度を超えて温度を上昇させた場合、そのプローブが分離するであろう。

上述の方法の一実施形態では、第２の（「アンカー」）プローブを用いることができる。通常、アンカープローブは、いずれのアレルにも特異的ではなく、多型遺伝子座にどのヌクレオチドが存在するかにかかわらずにハイブリッド形成する。アンカープローブはハイブリダイゼーション複合体を分離するのに必要な破壊エネルギーに影響を与えないが、その代わりに、第１の（「センサー」）プローブと共に使用するため、例えば蛍光共鳴エネルギー移動、すなわち「ＦＲＥＴ」で使用するための相補的標識を含有する。ひとたび、標的ＤＮＡとアンカープローブ及びセンサープローブとの間のハイブリダイゼーションに適した条件になれば、センサープローブがアンカープローブからエネルギーを獲得する。ひとたびハイブリダイゼーションが起これば、アンカープローブはその蛍光エネルギーをセンサープローブに移動させ、センサープローブは、アンカープローブからエネルギーを獲得した後でのみ特定の波長で発光する。温度を所定の速度で上昇させた際にＳＮＰの検出が行われ、放出された蛍光から測定値が取得される。プローブと標的ＤＮＡと間に、代替の多型ヌクレオチドの存在によって引き起こされる一塩基のミスマッチ（すなわちＳＮＰ）が存在する場合、このゲノムＤＮＡとセンサープローブとの間の相同性は、ヌクレオチド変化すなわちＳＮＰをもたないゲノムＤＮＡのものより低いであろうから、センサープローブがより早く、すなわちより低い温度で解離するであろう。したがって、検出可能な蛍光の減失があるだろう。野生型配列に結合するようにプローブが設計されている場合、そのプローブがＳＮＰに結合する安定性は、野生型配列よりわずかに低いので、ＳＮＰが存在するならば、そのＤＮＡからのプローブの解離（すなわち「融解」）がより低い温度で起こるであろう。これは、明らかに、両方の染色体上で同時に起こり、したがって、ホモ接合体では、同一の融解温度の読みだしが２つ生じ、或いは、ヘテロ接合体では、２つの異なった融解温度の読みだしが生じる。例えば、ＵＡＳＭＳ１多型のＣ含有アレルの配列をもつようにプローブが設計されている場合、このプローブは、この多型のＴ含有アレルを２コピー有する個体からのＤＮＡ試料中で、２コピーのＣ含有アレルを有する個体のものより低い温度で解離又は融解するであろう。

他の実施形態では、１つのＳＮＰの分析に２つの異なった「アレル特異的プローブ」を用いることができ、その際、第１のアレル特異的プローブは一方のアレルの検出用であり、第２のアレル特異的プローブはもう一方のアレルの検出用である。例えば、一実施形態では、ＵＡＳＭＳ１ ｏｂ多型の異なったアレルを、２つの異なったアレル特異的プローブを用いて検出することができ、１つは、ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置２０７におけるＴ含有アレルの検出用であって、もう１つは、ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置２０７におけるＣ含有アレルの検出用である。好ましい一実施形態では、Ｔ含有アレルを検出するのに、配列5'-CTTTCACCTAGTATATCTAG-3'（配列番号９）を有するオリゴヌクレオチドプローブが使用され、Ｃ含有アレルを検出するのに、配列5'-TCTTTCACCTAGTATGTCTAG-3'（配列番号１０）を有するオリゴヌクレオチドプローブが使用される。

別の一実施形態では、ＵＡＳＭＳ２ ｏｂ多型の異なったアレルを、２つの異なったアレル特異的プローブを用いて検出することができ、１つは、ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置５２８におけるＴ含有アレルの検出用であって、もう１つは、ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置５２８におけるＣ含有アレルの検出用である。好ましい一実施形態では、Ｔ含有アレルを検出するのに、配列5'-AAGCTCTAGAGCCTATGT-3'（配列番号１３）を有するオリゴヌクレオチドプローブが使用され、Ｃ含有アレルを検出するのに、配列5'-CAAGCTCTAGAGCCTGTGT-3'（配列番号１４）を有するオリゴヌクレオチドプローブが使用される。

別の一実施形態では、ＵＡＳＭＳ３ ｏｂ多型の異なったアレルを、２つの異なったアレル特異的プローブを用いて検出することができ、１つは、ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置１７５９におけるＧ含有アレルの検出用であって、もう１つは、ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置１７５９におけるＣ含有アレルの検出用である。好ましい一実施形態では、Ｇ含有アレルを検出するのに、配列5'-CACACATTCCAATCAA-3'（配列番号１７）を有するオリゴヌクレオチドプローブが使用され、Ｃ含有アレルを検出するのに、配列5'-CACATTGCAATCAA-3'（配列番号１８）を有するオリゴヌクレオチドプローブが使用される。

さらに別の実施形態では、ＥＸＯＮ２−ＦＢ ｏｂ多型の異なったアレルを、２つの異なったアレル特異的プローブを用いて検出することができ、１つは、ｏｂ遺伝子エキソン２のヌクレオチド位置３０５におけるＴ含有アレルの検出用であって、もう１つは、ｏｂ遺伝子エキソン２のヌクレオチド位置３０５におけるＣ含有アレルの検出用である。好ましい一実施形態では、Ｔ含有アレルを検出するのに、配列5'-CCTTGCAGATGGG-3'（配列番号２１）を有するオリゴヌクレオチドプローブが使用され、Ｃ含有アレルを検出するのに、配列5'-CCTTGCGGATGGG-3'（配列番号２２）を有するオリゴヌクレオチドプローブが使用される。

いずれのプローブ配列及びハイブリダイゼーション法を使用する場合も、当業者ならば、温度や化学条件など、適当なハイブリダイゼーション条件を容易に決定することができる。そのようなハイブリダイゼーション法は当技術分野で周知である。例えば、高い選択性を必要とする適用には、通常、ハイブリダイゼーション反応に比較的厳密な条件を利用することが望まれるであろう。その場合、例えば、約０．０２Ｍから約０．１０ＭのＮａＣｌ、約５０℃から約７０℃までの温度によって得られる条件など、比較的低い塩濃度及び／又は高温の条件が選択されるであろう。そのような高ストリンジェンシー条件は、プローブと鋳型又は標的鎖との間に、もしあるとしても、ごくわずかなミスマッチしか許容せず、本発明に従って特定のＳＮＰを検出するのに特に適している。添加するホルムアミドの量を増加させることによって、条件をより高ストリンジェントにできると一般に理解されている。ハイブリダイゼーション反応条件の他のバリエーションは当技術分野で周知である（例えば、Sambrook et al., Molecular Cloning; A Laboratory Manual 2d ed. (1989)を参照）。

viii）他の適当なプライマー配列及びプローブ配列
上記のＳＮＰに加えて、ｏｂ遺伝子の他のＤＮＡ配列多型が集団内に存在する可能性があることは、当分野の技術者によって認められるであろう。このような自然の対立遺伝子変異は通常、その遺伝子のヌクレオチド配列の約１〜５％の差異をもたらす可能性がある。例えば、配列番号２は、ヌクレオチド位置２０７で多型を含む（すなわちＵＡＳＭＳ１ ＳＮＰ）ｏｂ遺伝子プロモーターのある領域の配列を提供する。この断片内に他の多型座位も存在する可能性がある。ヌクレオチド配列の自然に生じる対立遺伝子変異体に加えて、当分野の技術者であれば、本明細書に記載のヌクレオチド配列のうちのヌクレオチド配列中に突然変異により変化を導入できることをさらに理解するであろう。このようなあらゆる追加のヌクレオチド変異は、本発明の範囲内にあるものとする。したがって、例えば、本発明によるプローブを、ＵＡＳＭＳ１多型だけでなく、同じ領域内に生じる可能性がある他のＳＮＰを含むｏｂ遺伝子の配列に結合するように設計することができる。

さらに、本明細書で開示するプライマー及びプローブの配列と異なる核酸分子も本発明の範囲内にあるものとする。このような配列と相補的な核酸配列、又は標準的な、若しくはストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で本明細書に記載の配列とハイブリッド形成する核酸配列、並びに類似体及び誘導体も本発明の範囲内にあるものとする。有利には、このような変異は、本明細書に記載の配列と少数のヌクレオチド、例えば１、２、又は３ヌクレオチド異なる。

自然の対立遺伝子変異体に対応する核酸分子、本明細書に記載の配列の相同体（すなわち他の種に由来する核酸）、又は他の関連配列（例えばパラログ）は、本明細書で開示する核酸とのその相同性に基づいて、例えば、本発明の配列のすべて若しくは部分をプローブとして使用する標準的な、若しくはストリンジェントなハイブリダイゼーション反応を行うことによって単離することができる。このような核酸ハイブリダイゼーション及びクローニングの方法は当技術分野で周知である。

同様に、本発明の核酸分子は、記載する特異的な配列のある断片のみを含むことができる。本明細書で提供する断片を、核酸プライマー又はプローブの特異的なハイブリダイゼーションを可能にするのに十分な長さである少なくとも６つの（近接する）核酸の配列として定義し、最高でも完全長配列より短い一部分である。断片は、好ましい核酸配列の近接する部分に由来するものでよい。誘導体及び類似体は、下記の通り、修飾された核酸又はアミノ酸を含む場合、完全長であっても完全長以外であってもよい。

本発明の核酸の誘導体、類似体、相同体、及び変異体には、それだけには限らないが、本発明の核酸に実質的な相同な領域、すなわち、様々な実施形態では、同一のサイズの核酸配列に比べて、或いは当技術分野で既知のコンピュータ相同性プログラムによりアラインメントが行われるアラインメント配列と比較すると、少なくとも約７０％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、又はさらには９９％の同一性（有利には８０〜９９％の同一性）がある領域を含む分子が含まれる。

本発明の目的では、配列同一性又は相同性は、オーバーラップ及び同一性を最大化するが、配列ギャップを最少化するようにアラインメントを行うと、配列を比較することによって判定される。特に、配列同一性は、いくつかの任意の数学的アルゴリズムを使用して判定することができる。２つの配列を比較するのに使用する数学的アルゴリズムの非限定的な例は、Karlin & Altschul, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1993;90: 5873-5877の通り修正されたKarlin & Altschul, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1990;87: 2264-2268のアルゴリズムである。

配列を比較するのに使用される数学的アルゴリズムの別の例は、Myers & Miller, CABIOS 1988;4: 11-17のアルゴリズムである。このようなアルゴリズムは、ＧＣＧ配列アラインメントソフトウェアパッケージの一部であるＡＬＩＧＮプログラム（バージョン２．０）中に組み込まれる。アミノ酸配列を比較するためにＡＬＩＧＮプログラムを利用する場合、ＰＡＭ１２０ウェイト残基テーブル（weight residue table）、１２のギャップ長ペナルティ、及び４のギャップペナルティを使用することができる。しかし、ローカル配列類似性及びローカルアラインメントの領域を同定するのに有用な別のアルゴリズムは、Pearson & Lipman, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1988;85: 2444-2448に記載のＦＡＳＴＡアルゴリズムである。

ＷＵ−ＢＬＡＳＴ（ワシントン大学ＢＬＡＳＴ）バージョン２．０ソフトウェアは、本発明の使用に有利である。いくつかのＵＮＩＸ（登録商標）プラットフォーム用のＷＵ−ＢＬＡＳＴバージョン２．０実行可能プログラムは、ftp ://blast. wustl. edu/blast/executablesからダウンロードすることができる。このプログラムはＷＵ−ＢＬＡＳＴバージョン１．４に基づき、次にこれはパブリックドメインＮＣＢＩ−ＢＬＡＳＴバージョン１．４に基づく（そのすべてを参照により本明細書に援用するAltschul & Gish, 1996, Local alignment statistics, Doolittle ed., Methods in Enzymology 266: 460-480、Altschul et al., Journal of Molecular Biology 1990;215: 403-410、Gish & States, 1993;Nature Genetics 3: 266-272、Karlin & Altschul, 1993;Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90: 5873-5877）。

スイート中のすべての検索プログラムにおいて、ギャップ付きのアラインメントルーチンは、データベース検索自体に組み込まれている。所望の場合には、ギャップなしにすることができる。長さ１のギャップのデフォルトペナルティ（Ｑ）は、タンパク質及びＢＬＡＳＴＰではＱ＝９であり、ＢＬＡＳＴＮではＱ=１０であるが、任意の整数に変更してもよい。ギャップ延長の残基当たりデフォルトペナルティ（Ｒ）は、タンパク質及びＢＬＡＳＴＰではＲ＝２、ＢＬＡＳＴＮではＲ=１０であるが、任意の整数に変更してもよい。Ｑ及びＲの値の任意の組合せを使用して、オーバーラップ及び同一性を最大化するが、配列ギャップを最少化するように配列のアラインメントを行うことができる。デフォルトアミノ酸比較行列は、ＢＬＯＳＵＭ６２であるが、ＰＡＭなどの他のアミノ酸比較行列を利用することができる。

その代わりに、又はそれに加えて、例えば、ヌクレオチド配列又はアミノ酸配列に関する「相同性」又は「同一性」という用語は、２種の配列間の相同性の定量的測度を指すことができる。配列相同率（percent sequence homology）は、（Ｎ_ref−Ｎ_dif）×１００／Ｎ_refと計算することができ、式中、Ｎ_difは、アラインメント時の２種の配列中の同一でない残基の総数であり、Ｎ_refは、両配列のうちの一方の残基数である。したがって、ＤＮＡ配列AGTCAGTCは、配列AATCAATCと７５％の配列同一性を有する（Ｎ_ref＝８、Ｎ_dif＝２）。「相同性」又は「同一性」は、同一のヌクレオチド又はアミノ酸を有する位置の数を、２種の配列のうち短いほうの配列中のヌクレオチド数又はアミノ酸数で割って表すことができる。ここで、２種の配列のアラインメントをWilburとLipmanのアルゴリズム（参照により本明細書に援用するWilbur & Lipman, Proc Natl Acad Sci USA 1983;80:726）に従って、例えば、２０ヌクレオチドのウィンドウサイズ、４ヌクレオチドの語長、及び４のギャップペナルティを使用して決定することができ、好都合には、市販のプログラム（例えば、Intelligenetics（商標）スイート、Intelligenetics社製、カリフォルニア州）を使用して、アラインメントを含む配列データのコンピュータ支援の解析及び解釈を行うことができる。ＲＮＡ配列がＤＮＡ配列と類似するか、又はある程度配列同一性若しくは配列相同性を有すると言われる場合、ＤＮＡ配列中のチミジン（Ｔ）はＲＮＡ配列中のウラシル（Ｕ）に等しいとみなされる。したがって、ＲＮＡ配列は、本発明の範囲内にあるが、ＤＮＡ配列中のチミジン（Ｔ）をＲＮＡ配列中のウラシル（Ｕ）に等しいとみなすことによりＤＮＡ配列から導き出すことができる。当分野の技術者であれば過度の実験なしに、相同率を求めるための他の多数のプログラム又は参考文献を参考にすることができる。

ix）本発明のプライマー及びプローブの作製
本明細書に記載のプライマー及びプローブは、例えば、化学的手段により断片を直接合成することによって、或いは選択された配列を組換え産生用の組換えベクター中に導入することによって容易に調製することができる。ｉｎ ｖｉｖｏ又はｉｎ ｖｉｔｒｏのいずれかで断片を増幅するためのベクター又は組換え体又はプラスミドを作製する方法は、所望の任意の方法、例えば、以下で開示される方法、又は以下で引用される文献で開示される方法によるか、或いはそれと類似する一方法とすることができる：米国特許第４６０３１１２号；第４７６９３３０号；第４３９４４４８号；第４７２２８４８号；第４７４５０５１号；第４７６９３３１号；第４９４５０５０号；第５４９４８０７号；第５５１４３７５号；第５７４４１４０号；第５７４４１４１号；第５７５６１０３号；第５７６２９３８号；第５７６６５９９号；第５９９００９１号；第５１７４９９３号；第５５０５９４１号；第５３３８６８３号；第５４９４８０７号；第５５９１６３９号；第５５８９４６６号；第５６７７１７８号；第５５９１４３９号；第５５５２１４３号；第５５８０８５９号；第６１３００６６号；第６００４７７７号；第６１３００６６号；第６４９７８８３号；第６４６４９８４号；第６４５１７７０号；第６３９１３１４号；第６３８７３７６号；第６３７６４７３号；第６３６８６０３号；第６３４８１９６号；第６３０６４００号；第６２２８８４６号；第６２２１３６２号；第６２１７８８３号；第６２０７１６６号；第６２０７１６５号；第６１５９４７７号；第６１５３１９９号；第６０９０３９３号；第６０７４６４９号；第６０４５８０３号；第６０３３６７０号；第６４８５７２９号；第６１０３５２６号；第６２２４８８２号；第６３１２６８２号；第６３４８４５０号；第６３１２６８３号；１９８６年１０月１６日出願の米国特許出願公開第９２０１９７号；国際公開第９０／０１５４３号；国際公開第９１／１１５２５号；国際公開第９４／１６７１６号；国際公開第９６／３９４９１号；国際公開第９８／３３５１０号；ＥＰ２６５７８５；ＥＰ０３７０５７３；Andreansky et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1996;93:11313-11318；Ballay et al., EMBO J. 1993;4:3861-65；Felgner et al., J. Biol. Chem. 1994;269:2550-2561；Frolov et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1996;93:11371-11377；Graham, Tibtech 1990;8:85-87；Grunhaus et al., Sem. Virol. 1992;3:237-52；Ju et al., Diabetologia 1998;41:736-739；Kitson et al., J. Virol. 1991;65:3068-3075；McClements et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1996;93:11414-11420；Moss, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1996;93:11341-11348；Paoletti, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1996;93:11349-11353；Pennock et al., Mol. Cell. Biol. 1984;4:399-406；Richardson (Ed), Methods in Molecular Biology 1995;39, "Baculovirus Expression Protocols," Humana Press Inc.；Smith et al. (1983) Mol. Cell. Biol. 1983;3:2156-2165；Robertson et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1996;93:11334-11340；Robinson at al., Sem. Immunol. 1997;9:271；Roizman, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1996;93:11307-11312。

ｘ）本発明のプライマー及びプローブの標識及び検出
本発明によるプライマー又はプローブとして使用されるオリゴヌクレオチド配列は、検出可能な部分で標識することができる。本明細書では、「センサー」という用語は、検出可能な部分で標識されたこのようなプライマー又はプローブを指す。様々な標識部分が当技術分野で知られている。前記部分は、例えば、放射標識（例えば、^３Ｈ、^１２５Ｉ、^３５Ｓ、^１４Ｃ、^３２Ｐなど）；検出可能な酵素（例えば、ホースラディッシュペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）、アルカリホスファターゼなど）；蛍光色素（例えば、フルオレセインイソチオシアネート、テキサスレッド、ローダミン、Ｃｙ３、Ｃｙ５、Bodipy、Bodipy Far Red、ルシファーイエロー、Bodipy 630/650-X、Bodipy R6G-X、5-CR 6Gなど）；金コロイド、又は着色ガラス若しくはプラスチックなどの比色標識（例えば、ポリスチレン、ポリプロピレン、ラテックスなど）；ビーズ；比色シグナル、蛍光シグナル、化学発光シグナル又は電気化学発光（ＥＣＬ）シグナルなどの検出可能なシグナルを発生可能な他の任意の部分であってよい。

プライマー又はプローブは、検出可能な部分で直接若しくは間接標識するか、又は検出可能な部分を組み込むように合成してもよい。一実施形態では、検出可能な標識は、ポリメラーゼによって媒介される周期的な増幅反応の少なくとも１サイクルの間に核酸中に組み込まれる。例えば、ポリメラーゼを使用して、ポリメラーゼによって媒介される増幅反応の過程で蛍光ヌクレオチドを組み込む。或いは、核酸のプライマー又はプローブの合成の間に蛍光ヌクレオチドを組み込んでもよい。オリゴヌクレオチドを蛍光色素で標識するために、従来から知られている標識法のうちの１つを使用することができる（Nature Biotechnology, 14, 303-308, 1996、Applied and Environmental Microbiology, 63, 1143-1147, 1997、Nucleic Acids Research, 24, 4532-4535, 1996）。有利なプローブは、３’若しくは５’末端を蛍光色素で標識し、標識末端に塩基としてＧ又はＣを含むものである。５’末端を標識し、３’末端を標識しない場合、３’末端のリボース又はデオキシリボースの３’位にあるＣ原子のＯＨ基をリン酸基などで修飾してもよいが、この点において制限されることはない。

分光学的、光化学的、生化学的、免疫化学的、電気的、光学的、又は化学的手段を使用して、このような標識を検出することができる。検出装置及び検出方法には、それだけには限らないが、光学イメージング、エレクトロニックイメージング、ＣＣＤカメラ、を用いたイメージング、集積光学イメージング、及び質量分析法が含まれ得る。さらに、標的に結合した標識若しくは非標識プローブの量を定量してよい。このような定量には統計分析が含まれ得る。他の実施形態では、この検出は、調和部位と不調和部位との間の伝導率の差、消光、蛍光摂動分析、又はドナー分子とアクセプター分子との間の電子伝達によるものでもよい。

さらに別の実施形態では、検出は、蛍光エネルギー移動（ＦＥＴ）又は蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）によるなど、ＰＣＲ反応又はハイブリダイゼーション反応におけるハイブリダイゼーション複合体中の分子間のエネルギー移動によるものでもよい。ＦＥＴ法及びＦＲＥＴ法では、１種又は複数の核酸プローブを蛍光分子で標識することができ、そのうちの一方はエネルギードナーとして働くことができ、そのうちの他方はエネルギーアクセプター分子である。これらは、それぞれレポーター分子及びクエンチャー分子として知られることもある。ドナー分子は、特定の光波長で励起されるが、通常、その波長に対して蛍光発光波長を示す。アクセプター分子も、様々な距離依存性エネルギー移動機序によりドナー分子の発光エネルギーを受容することができるようなこの波長で励起される。通常、アクセプター分子は、近接している場合（例えば、同じ、若しくは隣接する分子）、ドナー分子の発光エネルギーを受容する。ＦＥＴ技術及びＦＲＥＴ技術は、当技術分野で周知であり、本発明のＳＮＰを検出するのに容易に使用することができる。例えば、それぞれを参照により本明細書に組み込む、米国特許第５６６８６４８号、第５７０７８０４号、第５７２８５２８号、第５８５３９９２号、及び第５８６９２５５号（ＦＲＥＴ色素についての記載）、Tyagi et al. Nature Biotech. vol. 14, p303-8 (1996)及びTyagi et al., Nature Biotech. vol 16, p49-53 (1998)（ＦＥＴ用の分子ビーコンについての記載）、並びにMergny et al. Nucleic Acid Res. vol 22, p920-928, (1994)及びWolf et al. PNAS vol 85, p8790-94 (1988)（ＦＥＴ及びＦＲＥＴの一般的記載及び方法）を参照されたい。

xi）本発明のＳＮＰ検出用の組成物及びキット
本発明のオリゴヌクレオチドプライマー及びプローブは、家畜標本においてＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、及びＥＸＯＮ２−ＦＢ ｏｂ遺伝子ＳＮＰを検出するための診断キットでの商用適用例がある。本発明による試験キットは、本発明による任意のオリゴヌクレオチドプライマー又はプローブを含むことができる。このような試験キットは、ＤＮＡポリメラーゼ、ヌクレオチド（ｄＮＴＰ）、緩衝液など、ポリメラーゼによって媒介される周期的な増幅反応に使用される１種又は複数の試薬を追加的に含むことができる。ＳＮＰ検出キットは、標本中に含まれる細胞を溶解するための溶解緩衝液を含むこともできる。

本発明による試験キットは、本発明による１対のオリゴヌクレオチドプライマーと、本発明によるオリゴヌクレオチドを含むプローブとを含むことができる。いくつかの実施形態では、このようなキットは、２種のアレル特異的オリゴヌクレオチドプローブを含む。有利には、このキットはさらに、本発明のプライマー及びプローブの結合を検出又は測定するための試薬などの追加の手段、並びに理想的には陽性及び陰性対照を含む。

本発明はさらに、そのすべてが本発明の範囲内である、紙、ナイロン若しくは他の種類のメンブレン、フィルター、チップ、ガラススライド、マイクロチップ、マイクロビーズ、又はそのような他の任意の基質など固体の、若しくは柔軟な支持体上に固定化される、本発明によるプローブを包含する。この形のプローブは現在、「ＤＮＡチップ」と呼ばれている。これらＤＮＡチップは、本発明のＳＮＰを分析するのに使用することができる。本発明はさらに、本明細書に記載の１種又は複数の配列に基づく核酸分子のアレイ又はマイクロアレイを包含する。本明細書では、「アレイ」又は「マイクロアレイ」は、紙、ナイロン若しくは他の種類のメンブレン、フィルター、チップ、ガラススライド、又は他の任意の適当な固体の支持体など固体の、若しくは柔軟な支持体上で合成される、ずらりと並んだ別個のポリヌクレオチド又はオリゴヌクレオチドを指す。一実施形態では、このマイクロアレイは、その開示全体を参照により本明細書に援用する、米国特許第５４４６６０３号；第５５４５５３１号；第５８０７５２２号；第５８３７８３２号；第５８７４２１９号；第６１１４１２２号；第６２３８９１０号；第６３６５４１８号；第６４１０２２９号；第６４２０１１４号；第６４３２６９６号；第６４７５８０８号；第６４８９１５９号、及びＰＣＴ国際公開第０１／４５８４３号Ａ２に記載の方法及び装置に従って調製及び使用される。

xii）ＳＮＰ遺伝子型による動物の分類及び選抜の方法
上で詳細に記載した通り、本発明は、個々の動物から得られたＤＮＡ試料においてＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、及びＥＸＯＮ２−ＦＢ ＳＮＰを検出するための試薬及び方法を提供する。例えば、本発明の方法を使用して、所与の動物が、多型ＵＡＳＭＳ１遺伝子座（ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置２０７に位置する）でシトシン又はチミンを有するかどうかを判定することができる。本発明の方法を使用して、多型ＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、及び／又はＥＸＯＮ２−ＦＢ遺伝子座のいずれかで対象の動物の遺伝子型を決定した後、この遺伝子型情報を利用して、その遺伝子型に従って動物を選抜し、且つ／又は集団に分けることは、本発明のさらなる一目的である。

実施例に記載する通り、ＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、及びＥＸＯＮ２−ＦＢ ＳＮＰのある種のアレルは、循環レプチンレベル、飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値及び屠体構成、並びに乳生産量など、経済的に重要なある種の形質と連関している。例えば、本発明は、ＵＡＳＭＳ２遺伝子座のＴアレルが、ＣＣ遺伝子型を有するホモ接合動物で最低であり、ＣＴ遺伝子型を有するヘテロ接合動物で中間であり、ホモ接合ＴＴ動物で最高である血清レプチン濃度に有意と連関していることを実証する。したがって、一実施形態では、循環レプチンレベル（例えば、食糧生産で使用するための、又は育種のための）に従って動物を集団に分けることが望ましい場合、多型遺伝子座ＵＡＳＭＳ１でその遺伝子型に従って動物を選抜し、且つ集団に分けることができる。多型ＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、及びＥＸＯＮ２−ＦＢ遺伝子座それぞれの遺伝子型と、他の経済的に重要な様々な形質との連関を実施例に記載する。したがって、こうした形質それぞれについて、遺伝子型に従って動物を集団に分けることができる。

図７、８、９、及び１０は、それぞれＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、及びＥＸＯＮ２−ＦＢ ＳＮＰについて動物をどのようにしてスクリーニングすることができるか流れ図を使用して示し、どのようにして遺伝子型情報を使用して、育種すべき動物を選抜し、且つ／又は食糧生産に使用することができるかを示す。こうした流れ図で概説する方法は、限定的なものとする意図はなく、当分野の技術者であれば、こうした方法の様々な態様を、全体の結果に影響を与えることなく変更できることを認識するであろう。図７〜１０は、各遺伝子型と連関している表現型の特徴の一部を示す。各遺伝子型とのあるレベルの相関を示す他の表現型を実施例の項で示す。

したがって、一実施形態では、本発明は、動物を集団に分ける方法、及び家畜生産を管理する方法を提供し、この方法は、ウシなどの家畜動物を、多型ＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、及び／又はＥＸＯＮ２−ＦＢ遺伝子座の遺伝子型に従って集団に分けることを含む。本発明の遺伝子選抜法及び集団に分ける方法は、体重、体のサイズ、育種形質など目に見える特徴により動物を集団に分けるなど、表現型によって集団に分ける従来からの他の方法と併用することができる。

本発明の方法は、改良された遺伝形質を有するウシの選抜を提供し、この方法を使用して、育種、飼料消費、屠体／肉の品質、乳生産など、区域での家畜の群れの生産を最適化することができる。本発明は、身体状態と相関があるｏｂ遺伝子における多型の有無を同定することにより、所望の身体状態を発達させる可能性がより高いものを決定するように家畜をスクリーニングする方法を提供する。

上記の通り、また実施例では、本発明のＳＮＰが連関している様々な表現形質がある。実施例に記載の方法を使用して、或いは当技術分野で知られている適当な任意の方法を使用して、各表現形質を試験することができる。本発明の方法を使用して、農場経営者又はフィードロット経営者などが、集団に分けるのに通常使用する現在の基準に加え、ＳＮＰ遺伝子型によって判定して、循環レプチンレベル、飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値及び屠体構成、並びに乳生産量などの所望の形質に関する、各動物の遺伝的特性に従って、ウシを集団に分けることができる。ウシを試験して、ｏｂ遺伝子のアレルＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、及びＥＸＯＮ２−ＦＢに関してホモ接合性かヘテロ接合性かを判定し、その結果、各畜舎が同じ遺伝子型を有するウシを含むように集団に分けることができる。

次いで、屠殺する前の食肉生産に理想的であるように、又は乳生産を最大限にするように、動物の各畜舎に飼料を与え、さもなければある方法でフィードロット経営者によって決められた時間維持する。したがって、農場経営者又はフィードロット経営者は、効率が相当高まる機会を提供される。現在、飼育者は、そのウシすべてに同じ飼料を与え、したがって各動物に対して同じ費用を負担し、優れた経営慣行では通常、おそらく４０％がＡＡＡの等級であり、嗜好等級に対して割増価格が付けられている（動物の年齢などいくつかの他の要素による、周知の通り、１７〜２４カ月齢のウシは、より若いその対応物に比べて脂肪交雑が増大している。およそ５５％のウシは１６カ月齢未満で屠殺され、４５％は１７カ月齢超で屠殺される）。もちろん、相当数が過剰の脂肪を有し、したがって歩留まり等級が低下する。ウシの残り、すなわち６０％はＡＡＡ未満の等級であり、したがって価格が低下するが、経営者が負担するフィードロットの経費は同じである。遺伝子型によってウシを集団に分け、飼料を与えることにより、農場経営者は増益する目的で各群を別々に取り扱うことが可能となる。

所与の任意の時点での肉の任意の特定の品質に払われる望ましさ及び割増にかかわらず、肉の予測可能な品質を有するより均一な群を経営者に提供すると、経営者に、現在利用可能なウシのより均一でない群に比べて割増を要求し受ける機会が提供されることが考えられる。

本発明の方法はまた、循環レプチンレベル、飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値及び屠体構成、並びに乳生産量など経済的に重要な様々な形質について望ましい表現型を有するこうした動物を育種計画において選抜するのに有用である。例えば、改良された屠体価値と連関している望ましい多型が少なくともヘテロ接合であり、有利にはホモ接合である家畜などの動物の連続的な選抜及び育種は、屠体価値が改良されたより多くの子孫を有する品種、系統、又は集団をもたらすはずである。したがって、農場経営者は、経済的に重要な形質と連関している、子ウシの特定のアレルの出現を増大させる本発明の方法を使用することにより、その子ウシの価値を増大させることができる。したがって、本発明のＳＮＰは、育種計画において選抜ツールとして使用することができる。

以下の実施例は、請求される本発明を説明及び例示するために提供するものであるが、それだけに限らない。当分野の技術者であれば、本質的に類似する結果が生じるように変更又は修正することができる重要でない様々なパラメータを容易に認識するであろう。

（実施例１）
動物及び表現型データの収集
Angus Charolais又はアルバータ大学の雑種雄ウシを種雄とする計１８０頭のウシ（去勢ウシ１３９頭、雄ウシ４１頭）を管理し、肥育場の条件下で成長及び飼料効率を試験した。飼料摂取量は、各動物について、GrowSafe（登録商標）自動飼料供給システム（GrowSafe（登録商標）、Systems社製、カナダ国アルバータ州Airdrie）を使用して測定した。

計１５０頭の動物の完全な生産及び効率データを入手することができた。試験２の雄ウシすべて（計２１頭）、それに加えて、死亡したか、健康及びその他の関連する問題のために試験から除外しなければならなかったその他の９頭は除外した。全動物の体重は毎週測定した。分析した生産データには、一日平均増体重（ＡＤＧ）、供試代謝体重中間値（ＭＷＴ）、飼料摂取残量（ＲＦＩ）、飼料要求率（ＦＣＲ）、平均１日当たり乾物摂取量（ＤＭＩ）、単位代謝体重当たりの代謝可能エネルギー摂取量（ＭＥＷＴ^０．７５）及び成長の部分効率（ＰＥＧ）がある。試験中の各動物のＡＤＧは、SAS（SAS Institute社製、ノースカロライナ州Cary、1999）の回帰手順を使用して、時間（日）に対する体重（ｋｇ）の線形回帰の係数として計算した。試験期間にわたる各動物のＭＷＴは、中間体重^０．７５として計算した。７０日間の試験期間にわたる各動物の総飼料摂取量を使用して、各動物の乾物摂取量（ＤＭＩ）を計算した。代謝可能エネルギーは、ＤＭＩと飼料エネルギー含量（１２．１４ ＭＪ ＭＥ／ｋｇ）との積を各動物の代謝体重で割ったものとして計算した。

飼料摂取残量は、各動物について、試験期間にわたる各動物の実際の飼料摂取量と、各動物の一日平均増体重及び代謝体重に基づいて予測した予想１日当たり飼料摂取量との差として計算した。各動物の飼料要求率は、試験における一日平均増体重に対する試験における平均摂取量の比として計算した。各動物の維持を上回る成長の部分効率（ＰＥＧ）は、平均飼料摂取量と維持のための飼料摂取量との間の差に対するＡＤＧの比として計算した。
（ａ）摂食行動データ：Growsafeシステムによる飼い葉桶での動物の検出は、摂食事象で開始し、同一の動物について最後の２回の記録の間の時間が３００秒を超えたときに終了する。３００秒以内の動物の検出は１つの連続した摂食事象と考えた。次いで、摂食事象データを使用して、平均終了時間から開始時間を引いた差である平均摂食継続時間（ＦＤ）を計算した。摂食継続時間には、把握、咀嚼、飼い葉桶から戻って咀嚼、社会化、ひっかき行動又は舐め行動に費やされる時間が含まれる。他方、摂食頭下げ時間（ＦＨＤには、食べることに使われる時間が主に含まれ、摂食事象時間、５．７秒のシステム検出時間の間の動物の平均検出数として決定した。
（ｂ）超音波データ：第１２／１３肋骨間の脂肪厚、最長筋領域及び脂肪交雑スコアは、１７ｃｍの３．５ＭＨｚの線形アレイトランスデューサーを有するAloka 500Vリアルタイム超音波で約２８日毎に超音波測定した。代謝調査の試験の終点前に除外した動物を除き、各動物について超音波測定を５回繰り返した。この場合、測定の近似値は、前回の測定からの特性における変化率から予測した。
（ｃ）一定体重５００ｋｇにおける超音波測定値の予測：カナダ牛屠体評点方式では、Canadian Maturity I又は若い動物（最高級の若い屠体）の屠殺に要求される体重はなかった。平均屠殺時重量は一般に、去勢ウシで５５０から６００ｋｇであり、屠殺直後の屠体重は約３５０から４００ｋｇになる。動物の最終体重は、５００ｋｇの最低産業屠殺時重量未満であった。しかし、産業屠殺時重量時の背脂肪厚、最長筋胸郭領域及び脂肪交雑スコアの最終超音波測定値を決定することが所望されていた。回帰手順を使用して、一定体重５００ｋｇにおける背脂肪厚、脂肪交雑スコア及び最長筋胸郭領域を予測した。

まず、５つの連続した期間に記録した各動物の測定値（超音波測定背脂肪厚、脂肪交雑スコア又は最長筋領域）を各動物について、これら上記の日付に測定した体重に対して回帰させた。これにより、各動物の回帰方程式Ｙ＝ａ＋ｂ（ＷＴ）が得られ、ここで、Ｙは予測される特性値であり（背脂肪、脂肪交雑又は最長筋胸郭領域）、α＝回帰方程式の切片、ｂ＝回帰係数、ＷＴは動物の体重（この場合、一定の５００ｋｇに設定されている）である。したがって、この方程式を使用して、各動物について一定体重５００ｋｇで各特長の値を予測した。これは結果として、予測の脂肪交雑、背脂肪又はリブアイ領域の新たなデータセットを生成した。次いで、この新たなデータセットを分析して、異なるマーカーの異なる遺伝子型間の差異を決定した。
（ｄ）屠殺及び屠体データ：完全な生産データがある１５０頭の動物のうち、１９頭は屠殺に出さなかった雄ウシであった。さらに、ＲＦＩに対して極端な表現型を有する２０頭を代謝測定用に選抜し、これらの動物については屠体データを収集しなかった。屠体データが入手できたのは１０９頭のみであった。カナダ牛屠体評点方式に従って屠体の特性を評価した。このシステムで提供された標準の屠体データには、屠殺時重量（最終生体重）、屠体重、平均背脂肪厚、屠体の脂肪厚度、リブアイ領域、脂肪交雑品質又は品質等級、脂肪交雑レベル及び販売可能な肉の歩留まりがある。各動物の屠体重は、−４^ｏＣで２４時間冷凍後の屠体の左半分及び右半分の重量として判定した。屠体の脂肪厚度は、各屠体の第１２／１３肋骨で測定した。平均背脂肪厚は、第１２／１３肋骨間以外の、リブアイ筋肉に沿った異なる２箇所で測定した。屠体品質等級（Ａ、ＡＡ、ＡＡＡ又は極上＝それぞれ４、３、２、１）は、以下の基準に従って判定した：動物は生理学的に３０月齢未満でなければならない；肉は、明るい赤色で堅く、きめが細かくなければならない；筋肉成長は良好（欠陥なし）から優良の範囲でなければならない；脂肪厚度は堅くて白色（又は琥珀色）であり、測定部位（第１２／１３肋骨）で２ｍｍ以上でなければならない。

Ａ、ＡＡ、ＡＡＡ又は極上の評価は、脂肪交雑レベルに直接左右されない。これらの品質等級のそれぞれと連関しているのが脂肪交雑レベル（Ａ０、Ａ５０、ＡＡ１０、ＡＡＡ０、ＡＡＡ４０などの０から９０の範囲である）のスコアである。したがって、脂肪交雑の定量的な値を得るためには、各等級付けされた屠体の品質等級及び脂肪交雑レベルを合わせて、以下の方程式に従う脂肪交雑スコアの値を計算する：脂肪交雑スコア＝（ＱＧ＋ＭＬ）／１００、ここで、ＱＧは品質等級（Ａ、ＡＡ、ＡＡＡ及び極上に対してそれぞれ１００、２００、３００及び４００）であり、ＭＬは脂肪交雑レベルであり、１０単位で０から９０の範囲である。脂肪交雑スコアはリブアイ筋肉の筋肉内脂肪の測定値であり、１から＜２単位＝痕跡量の脂肪交雑（カナダＡ品質等級）；２から＜３単位＝わずかに脂肪交雑（カナダＡＡ品質等級）；３から＜４単位＝少しから中等度の脂肪交雑（カナダＡＡＡ品質等級）及び≧４単位＝わずかに豊富又はより豊富な脂肪交雑（カナダ極上）として分類できる。赤身肉の歩留まりは、販売可能な肉の見積りであり、以下の方程式に従って計算した：赤身肉の歩留まり％＝５７．９６＋（０．２０２×最長筋胸郭領域、ｃｍ^２）−（０．０２７×温屠体重、ｋｇ）−（０．７０３×平均背脂肪厚、ｍｍ）。屠体の赤身肉の歩留まりを使用して、Ｙ１＝≧５９％、Ｙ２＝５４から＜５９％及びＹ３＝＜５４％に従って、各動物に等級（歩留まり等級）を割り当てることができる。

（実施例２）
血液サンプリング、ＤＮＡ抽出及びＳＮＰ検出
血液サンプルを各動物から飼料摂取試験の開始時に採集し、そこから、飽和塩フェノール／クロロホルムの変形手順（Sambrook et al., 1989）を使用してゲノムＤＮＡを抽出した。ウシレプチンプロモーターの多型の同定には、配列番号１（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＢ０７０３６８、Taniguchi et al., 2002）を利用した。１６頭の動物のパネルからのゲノムＤＮＡを、ウシレプチンプロモーター領域全体をカバーするように設計された正プライマー及び逆プライマーを使用するポリメラーゼ連鎖反応で増幅した。各動物からのＰＣＲ産物をBeckman CEQ 8000 Genetic Analysis System（Beckman Coulter Instruments社製）で配列決定した。各動物の配列データを分析して、推定の一塩基多型を同定した。

この分析により、新たな一塩基多型（single nucleotide polymorphism：ＳＮＰ）、すなわち、それぞれ位置２０７（Ｃ／Ｔ置換）、５２８（Ｃ／Ｔ置換）及び１７５９（Ｃ／Ｇ置換）（番号は配列番号１、ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＢ０７０３６８）に位置するＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２及びＵＡＳＭＳ３を同定した。Buchanan et al.（2002）によって同定されたエキソン２ ＳＮＰは、位置３０５（Ｃ／Ｔミスセンス突然変異）（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＹ１３８５８８）に位置している。各レプチン遺伝子特異的多型の遺伝子型決定は、５’ヌクレアーゼ対立遺伝子識別アッセイを使用してABI PRISM（登録商標）7700配列検出器（Applied Biosystems社製）で実施した。正プライマー及び逆プライマー（表１）は、各動物からのゲノムＤＮＡを使用して各多型を増幅するように設計した。さらに、２つのABI TaqMan（登録商標）蛍光プローブ（各プローブは異なるレポーター色素を有する）は、各ＳＮＰの２つの対立遺伝子を標的にするように設計した（表１）。

^a位置は、配列番号１ ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＢ０７０３６８に従って構成している。
^b位置は、配列番号５（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＹ１３８５８８）に従って構成している。
^c太字のヌクレオチドは、ＳＮＰの特定の対立遺伝子を標的とする。

遺伝子型決定した動物のサブセットを各多型について配列決定し、配列結果を使用して、識別アッセイで得た遺伝子型を確認した。実験群に加えて、比較的無関係のウシの５種の市販系の計１６０頭（BeefBooster遺伝子選抜系Ｍ１、Ｍ２、Ｍ３、Ｍ４及びＴＸ）も遺伝子型決定し、ＳＮＰの対立遺伝子頻度をこれらの動物で決定した。Ｍ１の原種はAngus、Ｍ２の原種はHereford、Ｍ３の原種は種々の小品種、Ｍ４の原種はLimousin及びGelbvieh、及びＴＸの原種はCharolaisであった（Kress et al.、1996）。

カイ二乗検定を使用して、実験集団及び市販集団の両方のハーディ−ワインベルグ平衡からの逸脱について、各多型の遺伝子型頻度を検査した。市販群の種々の選抜系間の多型の対立遺伝子頻度の差異についても、SAS（SAS Institute社製、ノースカロライナ州Cary、1999）のカテゴリーモデル手順を使用してカイ二乗分析で試験した。次いで、シングルマーカー連関を実施して、各マーカーの異なるマーカー遺伝子型の関係を、血清レプチン濃度、成長速度、体重、飼料摂取量、飼料効率及び超音波特性について評価した。データは、SAS（SAS Institute社製、ノースカロライナ州Cary、1999）のPROC MIXEDを使用して分析した。使用した統計モデルとしては、ＳＮＰ遺伝子型の固定効果、試験群（１及び２）、動物の性別（雄ウシ及び去勢ウシ）及び動物の追加の変量効果がある。動物は、背景遺伝子を明らかにするために変量効果とした。供試動物の開始体重、種雌の年齢又は供試動物の年齢をモデルに線形共変動として含めた。屠体データを分析するのに使用したモデルは、生きている動物のデータのモデルと同様であったが、去勢ウシのみを屠殺に出したので、性別の固定効果は除外した。異なる多型と屠体品質等級との間の連関は、SAS（SAS Institute社製、ノースカロライナ州Cary、1999）のカテゴリーモデル手順を使用してカイ二乗分析で試験した。

異なるＳＮＰ遺伝子型を有する動物間で有意に異なる（Ｐ＜０．１０）特性について、追加の遺伝効果を推定した。２つのホモ接合体の遺伝子型の特性効果の推定値の解を引くことによって、有意な追加の遺伝（ａ）効果を計算した。本発明者らはまた、優性偏差（ｄ）を、ＴＴ遺伝子型値とＣＣ遺伝子型値との間の中間点からのＣＴ遺伝子型値の偏差として推定した。

（実施例３）
遺伝子型及び対立遺伝子頻度
表２及び３は、それぞれ実験集団及び市販集団の異なる多型についてのハーディ−ワインベルグ平衡の遺伝子型頻度及びカイ二乗検定を示す。遺伝子型を観察すると、ＵＡＳＭＳ１の遺伝子型ＣＣ、ＣＴ又はＴＴを有する動物はすべて、それぞれＵＡＳＭＳ３の遺伝子型ＣＣ、ＣＧ又はＧＧも有することを示していた。したがって、その２つの多型は完全な連鎖不平衡にあり、一緒にＵＡＳＭＳ１−３として構成した。ＵＡＳＭＳ１−３のＴ−Ｇ対立遺伝子はそれぞれ実験集団中５９％であり、ＵＡＳＭＳ２のＴ対立遺伝子は２１％であり、ＥＸＯＮ２−ＦＢは４４％であった。同様に市販集団では、ＵＡＳＭＳ１−３、ＵＡＳＭＳ２及びＥＸＯＮ２−ＦＢのＴ−Ｇ又はＴ対立遺伝子の頻度はそれぞれ、４８％、２０％及び５３％であった。観察した遺伝子型と予想した遺伝子型との間のカイ二乗分析により、３つの多型すべての遺伝子型すべての頻度は、両方の集団においてハーディ−ワインベルグの割合から有意に偏差していないことが示された（Ｐ＞０．１０）。

^z観察した遺伝子型頻度の予想値からの偏差度
^y有意なカイ二乗値の確率。

^z観察した遺伝子型頻度の予想値からの偏差度
^y有意なカイ二乗値の確率。
^x全集団数は１６２頭である。２つのサンプルはＵＡＳＭＳ１、２及び３の増幅に失敗し、１つのサンプルはＥＸＯＮ２−ＦＢの増幅に失敗した。

表４は、市販集団の異なる株における異なる多型の頻度を示す。ＵＡＳＭＳ１−３のＴ−Ｇ対立遺伝子の頻度は市販集団の異なる系間で異なり（Ｐ＜０．０５、χ^２＝９．１７）、Ｍ１系（Angus）は、ＴＸ（Charolais）（Ｐ＜０．００４、χ^２＝８．１０）、Ｍ２（Hereford）（Ｐ＜０．１０、χ^２＝２．８６）、Ｍ３（種々の小品種）（Ｐ＜０．０２ χ^２＝５．４８）及びＭ４（Gelbvieh及びLimousin）（Ｐ＜０．０４、χ^２＝４．１０）と比較して低かった。

^a,b,c異なる上付き文字が続く欄のＵＡＳＭＳ１−３（Ｐ＝０．０１、χ^２＝９．１７）、ＵＡＳＭＳ２（Ｐ＜０．０５、χ^２＝５．７１）及びＥＸＯＮ２−ＦＢ（Ｐ＜０．０４、χ^２＝９．９３）の対立遺伝子頻度は異なる。

ＵＡＳＭＳ２のＴ対立遺伝子の頻度は選抜系間で異なり（Ｐ＜０．０５、χ^２＝５．７１）、Ｍ１は、Ｍ２（Ｐ＜０．０５、χ^２＝４．１９）、Ｍ３（Ｐ＜０．１０、χ^２＝２．７１）及びＴＸ（Ｐ＜０．０５、χ^２＝３．７９）と比較して高かった。その他の株のＵＡＳＭＳ２の対立遺伝子頻度の差異は有意ではなかった（Ｐ＞０．１０）。市販集団の選抜系間にはＥＸＯＮ２−ＦＢの対立遺伝子頻度に差異があった（Ｐ＜０．０４１、χ^２＝９．９３）。Angusの選抜系（Ｍ１）は、Gelbvieh及びLimousinの系（Ｍ４）（χ^２＝５．４１、Ｐ＜０．０５）及びCharolais（ＴＸ）（χ^２＝Ｐ＜０．０１）と比較してＥＸＯＮ２−ＦＢのＴ対立遺伝子の頻度が高く、種々の小品種の系（Ｍ３）（χ^２＝３．８２、Ｐ＜０．１０）よりも高い傾向があるが、Hereford（Ｍ２）（Ｐ＞０．１０）よりは高くない。ＥＸＯＮ２−ＦＢの対立遺伝子頻度は、市販集団のその他の選抜系間で異なっていなかった（Ｐ＞０．１０）。

（実施例４）
ＵＡＳＭＳ１−３の種々の表現型特性との連関
表５は、実験集団の血清レプチン濃度、生産、飼料効率及び摂食行動の測定値に対するＵＡＳＭＳ１−３の異なる遺伝子型の効果を示す。代謝体重は、遺伝子型ＴＴ−ＧＧの動物の方がＣＣ−ＣＣよりも高かった（Ｐ＜０．０１）（追加作用、α＝−５．３５±１．６５ｋｇ^．７５）。一日平均増体重は、遺伝子型ＴＴ−ＧＧを有する動物の方が遺伝子型ＣＣ−ＣＣを有する動物よりも高い傾向があった（Ｐ＜０．１０）（追加作用、α＝−０．１２±０．０４ｋｇ ｄ^−１）。乾物摂取量は有意に高く（追加作用、α＝−０．８８±０．２４ｋｇ ｄ^−１）（Ｐ＝０．００１）、代謝体重当たりの代謝可能エネルギーは、ＵＡＳＭＳ１−３の異なる遺伝子型を有する動物間で異なる傾向があった（Ｐ＜０．１０）［追加作用、α＝−４９．０６±２３．６０ＫＪ（ｋｇ^．７５ｄ）^−１］。しかし、血清レプチン濃度、飼料要求率、飼料摂取残量及び成長の部分効率は、ＵＡＳＭＳ１−３の遺伝子型とはいかなる有意な連関も示さなかった（Ｐ＞０．１０）。摂食行動特性では、ＵＡＳＭＳ１−３の異なる遺伝子型を有する動物間で摂食継続時間は異なっていた（Ｐ＝０．０４）（追加作用、α＝−７．６６±２．５８分 ｄ^−１）。他方、摂食頻度は、遺伝子型ＴＴ−ＧＧを有する動物の方がＣＣ−ＣＣの動物よりも低い傾向があった（Ｐ＜０．１０）（追加作用、α＝３．３２±１．０７事象 ｄ^−１）。

^ｚ配列番号１（ＡＢ０７０３６８）に従うウシレプチンプロモーターでは、ＵＡＳＭＳ１−３は位置２０７（Ｃ／Ｔ置換）及び１７５９（Ｃ／Ｇ置換）に位置する
^ｙＰ値＝異なるマーカーの遺伝子型間の差異の確率。

表６は、異なるＵＡＳＭＳ１−３遺伝子型を有する動物の体重測定値、超音波測定値及び屠体測定値を示す。平均体重（追加作用、α＝−２９．７３±１０．４９ｋｇ）、最終生体重（追加作用、α＝−３３．３９±１１．８０）（Ｐ＜０．０１）、屠殺時重量（追加作用、α＝３７．０７±１３．７９ｋｇ）及び屠体重（追加作用、α＝−１８．４９±８．５９ｋｇ）（Ｐ＝０．０１）は、ＵＡＳＭＳ１−３のＴＴ−ＧＧ遺伝子型を有する動物の方がＣＣ−ＣＣ遺伝子型を有する動物よりも高かった。遺伝子型ＴＴ−ＧＧを有する動物の方がＣＣ−ＣＣを有する動物よりも高かった最終超音波測定背脂肪厚を除き（Ｐ＜０．０５）、異なる超音波測定値について遺伝子型間に差異はなかった（Ｐ＞０．１０）。さらに、屠体の脂肪厚度、背脂肪厚、最長筋領域、脂肪交雑スコア及び赤身肉の歩留まりは、異なるＵＡＳＭＳ１−３遺伝子型間で差異はなかった。ＵＡＳＭＳ１−３の遺伝子型間の屠体等級（Ａ、ＡＡ、ＡＡＡ）のカテゴリーデータを分析すると、品質等級と遺伝子型との間に有意な連関は示されなかった（χ^２＝１．３７、Ｐ＝０．５０）（表１１）。

^ｚ配列番号１（ＡＢ０７０３６８）に従うウシレプチンプロモーターでは、ＵＡＳＭＳ１−３多型は位置２０７（Ｃ／Ｔ置換）及び１７５９（Ｃ／Ｇ置換）に位置する
^ｙＰ値＝異なるマーカーの遺伝子型間の差異の確率。
^ｘ１月１０日と５月１日との間に約１カ月の間隔で測定した５回の平均

（実施例５）
ＵＡＳＭＳ２の種々の表現型特性との連関
血清レプチン濃度、生産、飼料効率及び超音波及び屠体価値の測定値に対するＵＡＳＭＳ２の異なる遺伝子型の作用を表７及び８に表す。ＵＡＳＭＳ２のＴ対立遺伝子は血清レプチン濃度と高度に有意に連関しており（Ｐ＜０．０００１）、遺伝子型ＴＴを有する動物の方がＣＣを有する動物よりも高かった（追加作用、α＝−１１．７９±２．７６ｎｇ ｍｌ^−１）。血清レプチンも、ＣＴ動物の方がＣＣ動物よりも高かった（Ｐ＝０．０４）（優性偏差、ｄ＝−３．３８±１．８１ ｎｇ ｍｌ^−１）。代謝体重は遺伝子型間で異なり（Ｐ＜０．０５）、遺伝子型ＴＴを有する動物の方がＣＣを有する動物よりも高かった（追加作用、α＝−６．０１±２．５０ｋｇ^．７５）。一日平均増体重は遺伝子型間で有意に異なり（Ｐ＜０．０１）、遺伝子型ＴＴを有する動物の方が遺伝子型ＣＣを有する動物よりも高かった（追加作用、α＝−０．１５±０．０４ｋｇ ｄ^−１）．

^ｚＵＡＳＭＳ２多型は、配列番号１（ＡＢ０７０３６８）に従うウシレプチンプロモーターの位置５２８に位置するＣ／Ｔ置換である
^ｙＰ値＝異なるマーカーの遺伝子型間の差異の確率。

^ｚＵＡＳＭＳ２多型は、配列番号１（ＡＢ０７０３６８）に従うウシレプチンプロモーターの位置５２８に位置するＣ／Ｔ置換である
^ｙＰ値＝異なるマーカーの遺伝子型間の差異の確率。
^ｘ１月１０日と５月１日との間に約１カ月の間隔で測定した５回の平均

乾物摂取量はＵＡＳＭＳ２の遺伝子型間で有意に異なり（Ｐ＝０．００１）、ＴＴを有する動物はＣＣと比較して（追加作用、α＝−０．４５±０．１９ｋｇ ｄ^−１）、ＣＴを有する動物はＣＣと比較して（優性効果、ｄ＝−０．６９±０．２６ｋｇ ｄ^−１）高かった。代謝体重当たりの代謝可能エネルギーもＵＡＳＭＳ２の遺伝子型間で異なり（Ｐ＝０．０４）、ＣＴの方がＴＴ又はＣＣと比較して高かった（優性偏差、ｄ＝−５６．１１±２５．２４ＫＪ（ｋｇ^．７５ ｄ）^−１ ＵＡＳＭＳ２。この調査で観察したＴ対立遺伝子を有する動物のより高いＤＭ摂取量は驚くべきものであった。なぜなら、体脂肪がより高く、血清レプチンが有意により高い動物は飼料消費が低下していると一般的に予想されるからである。この結果は、比較用に入手できる遺伝子型ＴＴを有する動物が非常にわずかしかいないという事実によるものといえよう（ＴＴ動物の特性値と連関した標準誤差が高いことから分かる通り）。しかし、この結果はまた、飼料摂取量がヘテロ接合体動物において、より高いことを示しており、ＵＡＳＭＳ２のＴ対立遺伝子が増大した飼料摂取量と実際に連関していることを示している。

乳用ウシからの最近のデータ（Liefers et al.、2003）は、乾物摂取量のより高いウシは有意に重く、血清レプチン濃度が有意に高いことを示している。さらに、これらの著者らはまた、負のエネルギーバランスを有するウシ（低体重及び低体調と強く連関している）が正のエネルギーバランスのウシと比較して血清レプチン濃度が有意に低いことを示した。現在のデータでは、血清レプチン濃度は飼料摂取量（ｒ＝０．２６）及び体重（ｒ＝０．２５）と正に連関しており、したがってLiefers et al.（2003）の知見を確認している。マウスにおいて、血清レプチンがより高い明らかに肥満のマウスは、より多く食べ続けたことが観察されている（Houseknecht et al.、1998）。文献の証拠によれば、レプチンの抑制フィードバック効果に対する応答は、よりやせた動物の方が感受性があり、脂肪蓄積が大きい動物（他の種の肥満を連想させる、より高い体脂肪量を一般に有するウシ）は、後者の群のレプチンの循環濃度が高いにもかかわらず、感受性が大きく減少することを示している（Houseknecht et al.、1998）。おそらく、この調査の知見は、ウシにおけるレプチン抵抗性の基礎を形成しているであろう。ある肥満個体におけるレプチン抵抗性の現象はまだ明確に理解されていないが、一部のレプチン受容体形態がレプチン抵抗性の発生に関わっているであろうことは示唆されている（Houseknecht et al.、1998）。

平均背脂肪厚（追加作用、α＝−２．２９±０．５０ｍｍ）；最終背脂肪厚（追加作用、α＝−４．３１±０．９５ｍｍ）；及び超音波測定背脂肪厚は、ＵＡＳＭＳ２のＴ対立遺伝子を有する動物の方がＣ対立遺伝子を有する動物よりも有意に高かった（Ｐ＜０．００１）。同様に、ＵＡＳＭＳ２のＴ対立遺伝子は、Ｃ対立遺伝子と比較して、より高い（Ｐ＜０．０１）平均超音波測定脂肪交雑スコア（追加作用、α＝−０．６１±０．２１）及び最終脂肪交雑スコア（追加作用、α＝−０．８９±０．２５、Ｐ＜０．０１）と有意に連関していた。これらの結果は当然である。なぜなら、このデータセットにおける超音波測定脂肪交雑と背脂肪厚との間の相関も高かったからである（ｒ＝０．５４）（データ示さず）。線形回帰予測により動物の一定体重を５００ｋｇとすると、ＵＡＳＭＳ２のＴＴ遺伝子型を有する動物はＣＣ遺伝子型を有する動物と比較して、有意により高い超音波測定背脂肪厚（Ｐ＜０．００１）及び脂肪交雑スコア（Ｐ＜０．０１）を有していた。ＵＡＳＭＳ２のＴ対立遺伝子を有する動物の体脂肪の有意な増大は、最終（追加作用、α＝５．６０±２．５０ｃｍ^２）及び平均（追加作用、α＝４．０３±１．５８ｃｍ^２）最長筋胸郭領域のわずかな減少と連関していた。屠体重及び体脂肪の測定値は、Ｃ対立遺伝子と比較してＴ対立遺伝子を有する動物では一般により高い。しかし、比較用の屠体データを有するＴＴ遺伝子型の動物はわずかのみであり、したがって、これらの屠体特性におけるＵＡＳＭＳ２の遺伝子型間に統計的な差異はなかった。赤身肉の歩留まり及び最長筋領域の屠体測定値については、その反対のことがいえる。ＵＡＳＭＳ２の遺伝子型間の屠体等級（Ａ、ＡＡ及びＡＡＡ）のカテゴリーデータ分析は、品質等級と遺伝子型との間に有意な連関を示さなかった（χ^２＝１．１４、Ｐ＝０．５６）（表１１）。

飼料摂取残量はＵＡＳＭＳ２遺伝子型間で異なる傾向があり（Ｐ＜０．１０）、ＣＴの方がホモ接合体よりも低かった（優性効果、ｄ＝０．４２±０．２１ｋｇ ｄ^−１）。飼料要求率及び成長の部分効率は、ＵＡＳＭＳ２の遺伝子型間で差異はなかった（Ｐ＞０．３０）。このデータはまた、異なるＵＡＳＭＳ２遺伝子型を有する動物間で最終重量、平均体重、屠殺時重量及び屠体重に統計的有意性を示さなかった（明らかに、比較用に入手可能な、遺伝子型平均の高い標準誤差と連関したＴＴ動物が非常に少ないため）。しかし、Ｔ対立遺伝子はより高い体重と一般に連関しており、ＴＴ動物とＣＣ動物との間の差異は、平均体重、最終重量及び屠殺時重量でそれぞれ３０．３４ｋｇ、４２．０２ｋｇ及び３６．３７ｋｇである。摂食継続時間（優性効果、ｄ＝５．０７±２．６１分 ｄ^−１）及び摂食頭下げ時間（優性効果、ｄ＝５．１２±２．５１分 ｄ^−１）は遺伝子型間で異なり、ＵＡＳＭＳ２のヘテロ接合体の方がホモ接合体よりも高い（Ｐ＜０．０５）。摂食頻度はＵＡＳＭＳ２の遺伝子型間で異なる傾向があり（Ｐ＜０．１０）、ＣＣ動物の方がＴＴ動物よりも高い（追加作用、α＝４．４７±２．８６事象 ｄ^−１）。

（実施例６）
ＥＸＯＮ２−ＦＢの種々の表現型特性との連関
血清レプチン濃度、生産、飼料効率、摂食行動及び超音波及び屠体価値の測定値に対するＥＸＯＮ２−ＦＢの異なる遺伝子型の作用を表９及び１０に表す。代謝中間重量は、遺伝子型ＴＴを有する動物の方がＣＣよりも低かった（Ｐ＜０．０５）（追加作用、α＝４．１６±１．６１ｋｇ^．７５）。一日平均増体重は遺伝子型間で異なる傾向があり（Ｐ＜０．１０）、ＴＴ動物はＣＣ動物と比較して低かった（追加作用、α＝０．１２±０．０５ｋｇ ｄ^−１）。平均背脂肪厚（追加作用、α＝−０．５６±０．１９ｍｍ）及び最終超音波測定背脂肪厚（追加作用、α＝−１．０７±０．１７ｍｍ）は、遺伝子型ＣＣを有する動物の方がＴＴよりも低かった（Ｐ＜０．０５）（Buchanan et al.、2002）。摂食継続時間は、ＥＸＯＮ２−ＦＢの遺伝子型間で異なる傾向があり（Ｐ＝０．０８）、ＣＣ動物の方がＣＴ動物よりも高かった（優性偏差、α＝−２．７１±１．６３事象 ｄ^−１）。摂食頻度は、ＥＸＯＮ２−ＦＢの遺伝子型間で異なり（Ｐ＝０．０１）、ＴＴ動物の方がＣＴ動物（優性偏差、α＝−２．６６±１．１１事象 ｄ^−１）又はＣＣ動物（追加作用、α＝−３．３０±１．５１事象 ｄ^−１）よりも高かった。

^ｚＥＸＯＮ２−ＦＢ多型は、配列番号５（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＹ１３８５８８−Buchanan et al.、2002）に従うウシレプチン遺伝子のエキソン２の位置３０５に位置するＣ／Ｔ置換である。
^ｙＰ値＝異なるマーカーの遺伝子型間の差異の確率。

^ｚＥＸＯＮ２−ＦＢ多型は、配列番号５（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＹ１３８５８８−Buchanan et al.、2002も参照）に従うウシレプチン遺伝子のエキソン２の位置３０５に位置するＣ／Ｔ置換である。
^ｙＰ値＝異なるマーカーの遺伝子型間の差異の確率。
^ｘ１月１０日と５月１日との間に約１カ月の間隔で測定した５回の平均

最終体重（追加作用、α＝３０．３２±９．９ｋｇ）及び屠体重（追加作用、α＝１９．８２±５．７８ｋｇ）、Ｐ＝０．０１）は、ＥＸＯＮ２−ＦＢのＴＴ動物の方がＣＣ動物と比較して低かった（Ｐ＜０．０５）。ＥＸＯＮ２−ＦＢと、調査したその他の特性との間に有意な連関は検出されなかった。ＥＸＯＮ２−ＦＢのＴＴ動物はＣＣ動物と比較して屠体脂肪の測定値は一般に高く、屠体赤身肉の歩留まり及び最長筋領域の測定値は低いが、統計的有意性は検出されなかった。ＥＸＯＮ２−ＦＢの遺伝子型間の屠体等級（Ａ、ＡＡ及びＡＡＡ）をカイ二乗分析すると、品質等級と遺伝子型との間に有意な連関は示されなかった（χ^２＝０．９５、Ｐ＝０．６２）（表１１）。

ウシレプチンプロモーターの３つの多型は、成長速度、体重、飼料摂取量、摂食行動及び超音波測定価値と連関している。屠体脂肪に多少の差異が検出されたが、統計的には有意でなく、それは、おそらく一部の代謝調査のために飼料摂取残量に基づいて一部の極端な動物を排除したためである（ＲＦＩと背脂肪との間の相関は、約ｒ＝０．２５である）。さらに、マーカーの１つ、ＵＡＳＭＳ２はウシの血清レプチンレベルと連関している。このＳＮＰの頻度は、調査したウシの実験集団及び５つの市販系の両方において非常に低かった。

ＵＡＳＭＳ１多型とＵＡＳＭＳ３多型とは異なり、ＵＡＳＭＳ２多型とＵＡＳＭＳ３多型は連鎖していない。これは、ＵＡＳＭＳ２多型とＵＡＳＭＳ３多型との間の連鎖不平衡を例示する表１２から分かる。

本発明を以下の番号付き段落によってさらに説明する。

１．遺伝子型に従って動物を部分集団に分ける方法であって、各部分集団の動物がレプチン遺伝子において類似する多型を有しており、
（ａ）レプチン遺伝子における一塩基多型の存在を判定することにより、部分集団に分けるべき各動物の遺伝子型を決定するステップであって、前記多型が、ＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、及びＥＸＯＮ２−ＦＢから成る群から選択されるステップと、
（ｂ）部分集団中の個々の動物を分離するステップであって、部分集団中の各動物がレプチン遺伝子において類似する多型を有するステップと
を含む方法。

２．前記動物がウシである、段落番号１に記載の方法。

３．前記レプチン遺伝子がウシレプチン遺伝子である、段落番号２に記載の方法。

４．遺伝子型に従って動物を部分集団に分ける方法であって、各部分集団の動物がレプチン遺伝子において類似する遺伝子型を有しており、
（ａ）レプチン遺伝子におけるＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、又はＥＸＯＮ２−ＦＢ一塩基多型の存在を判定することにより、部分集団に分けるべき各動物の遺伝子型を決定するステップと、
（ｂ）個々の動物が、レプチン遺伝子においてＵＡＳＭＳ１一塩基多型、ＵＡＳＭＳ２、及び／又はＵＡＳＭＳ３を有するかどうかによって前記動物を部分集団に分離するステップと
を含む方法。

５．前記動物がウシである、段落番号４に記載の方法。

６．前記レプチン遺伝子がウシレプチン遺伝子である、段落番号５に記載の方法。

７．遺伝子型に従って動物を部分集団に分ける方法であって、各部分集団の動物がレプチン遺伝子のプロモーター領域において類似する遺伝子型を有しており、
（ａ）レプチン遺伝子のプロモーター領域におけるＵＡＳＭＳ１一塩基多型の存在を判定することにより、部分集団に分けるべき各動物の遺伝子型を決定するステップと、
（ｂ）個々の動物が、レプチン遺伝子のプロモーター領域においてＵＡＳＭＳ１一塩基多型を有するかどうかによって前記動物を部分集団に分離するステップと
を含む方法。

８．前記動物がウシである、段落番号７に記載の方法。

９．前記レプチン遺伝子がウシレプチン遺伝子である、段落番号８に記載の方法。

１０．遺伝子型に従って動物を部分集団に分ける方法であって、各部分集団の動物がレプチン遺伝子のプロモーター領域において類似する遺伝子型を有しており、
（ａ）レプチン遺伝子のプロモーター領域におけるＵＡＳＭＳ２一塩基多型の存在を判定することにより、部分集団に分けるべき各動物の遺伝子型を決定するステップと、
（ｂ）個々の動物が、レプチン遺伝子のプロモーター領域においてＵＡＳＭＳ２一塩基多型を有するかどうかによって前記動物を部分集団に分離するステップと
を含む方法。

１１．前記動物がウシである、段落番号１０に記載の方法。

１２．前記レプチン遺伝子がウシレプチン遺伝子である、段落番号１１に記載の方法。

１３．遺伝子型に従って動物を部分集団に分ける方法であって、各部分集団の動物がレプチン遺伝子のプロモーター領域において類似する遺伝子型を有しており、
（ａ）レプチン遺伝子のプロモーター領域におけるＵＡＳＭＳ３一塩基多型の存在を判定することにより、部分集団に分けるべき各動物の遺伝子型を決定するステップと、
（ｂ）個々の動物が、レプチン遺伝子のプロモーター領域においてＵＡＳＭＳ３一塩基多型を有するかどうかによって前記動物を部分集団に分離するステップと
を含む方法。

１４．前記動物がウシである、段落番号１３に記載の方法。

１５．前記レプチン遺伝子がウシレプチン遺伝子である、段落番号１４に記載の方法。

１６．遺伝子型に従って動物を部分集団に分ける方法であって、各部分集団の動物がレプチン遺伝子のエキソン２において類似する遺伝子型を有しており、
（ａ）レプチン遺伝子のエキソン２におけるＥＸＯＮ２−ＦＢ一塩基多型の存在を判定することにより、部分集団に分けるべき各動物の遺伝子型を決定するステップと、
（ｂ）個々の動物が、レプチン遺伝子のプロモーター領域においてＥＸＯＮ２−ＦＢ一塩基多型を有するかどうかによって前記動物を部分集団に分離するステップと
を含む方法。

１７．前記動物がウシである、段落番号１６に記載の方法。

１８．前記レプチン遺伝子がウシレプチン遺伝子である、段落番号１７に記載の方法。

１９．その種の動物の一般的集団と比較して、飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値及び屠体構成、並びに乳生産量に関する望ましい表現型を有する動物を同定する方法であって、前記動物のレプチン遺伝子における一塩基多型の存在を判定するステップであって、前記多型が、ＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、及びＥＸＯＮ２−ＦＢから成る群から選択され、且つ前記ＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、又はＥＸＯＮ２−ＦＢ一塩基多型のいずれかの存在が、ある種の飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値及び屠体構成、並びに乳生産量に関する望ましい表現型を示すステップを含む方法。

２０．前記動物がウシである、段落番号１に記載の方法。

２１．前記レプチン遺伝子がウシレプチン遺伝子である、段落番号２に記載の方法。

２２．その種の動物の一般的集団と比較して、ある種の飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値及び屠体構成、並びに乳生産量に関する望ましい表現型を有する動物を同定する方法であって、前記動物のレプチン遺伝子のプロモーター領域におけるＵＡＳＭＳ１一塩基多型の存在を判定するステップであって、前記ＵＡＳＭＳ１一塩基多型の存在が、ある種の飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値及び屠体構成、並びに乳生産量に関する望ましい表現型を示すステップを含む方法。

２３．前記動物がウシである、段落番号２２に記載の方法。

２４．前記レプチン遺伝子がウシレプチン遺伝子である、段落番号２に記載の方法。

２５．その種の動物の一般的集団と比較して、ある種の飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値及び屠体構成、並びに乳生産量に関する望ましい表現型を有する動物を同定する方法であって、前記動物のレプチン遺伝子のプロモーター領域におけるＵＡＳＭＳ２一塩基多型の存在を判定するステップであって、前記ＵＡＳＭＳ２一塩基多型の存在が、ある種の飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値及び屠体構成、並びに乳生産量に関する望ましい表現型を示すステップを含む方法。

２６．前記動物がウシである、段落番号２５に記載の方法。

２７．前記レプチン遺伝子がウシレプチン遺伝子である、段落番号２６に記載の方法。

２８．その種の動物の一般的集団と比較して、ある種の飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値及び屠体構成、並びに乳生産量に関する望ましい表現型を有する動物を同定する方法であって、前記動物のレプチン遺伝子のプロモーター領域におけるＵＡＳＭＳ３一塩基多型の存在を判定するステップであって、前記ＵＡＳＭＳ３一塩基多型の存在が、ある種の飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値及び屠体構成、並びに乳生産量に関する望ましい表現型を示すステップを含む方法。

２９．前記動物がウシである、段落番号２８に記載の方法。

３０．前記レプチン遺伝子がウシレプチン遺伝子である、段落番号２９に記載の方法。

３１．その種の動物の一般的集団と比較して、ある種の飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値及び屠体構成、並びに乳生産量に関する望ましい表現型を有する動物を同定する方法であって、前記動物のレプチン遺伝子におけるＥＸＯＮ２−ＦＢ一塩基多型の存在を判定するステップであって、前記ＥＸＯＮ２−ＦＢ一塩基多型の存在が、ある種の飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値及び屠体構成、並びに乳生産量に関する望ましい表現型を示すステップを含む方法。

３２．前記動物がウシである、段落番号３１に記載の方法。

３３．前記レプチン遺伝子がウシレプチン遺伝子である、段落番号３２に記載の方法。

３４．ｏｂ遺伝子多型ＵＡＳＭＳ１を同定するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号２のうちの少なくとも１０の隣接するヌクレオチドを含み、且つ前記１０の隣接するヌクレオチドが、配列番号２のヌクレオチド位置２０７にまたがるオリゴヌクレオチドプローブ。

３５．ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置２０７でＴ含有アレルを検出するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号２のうちの少なくとも１０の隣接するヌクレオチドを含み、且つ前記１０の隣接するヌクレオチドが、配列番号２の位置２０７にあるＴヌクレオチドにまたがるオリゴヌクレオチドプローブ。

３６．ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置２０７でＣ含有アレルを検出するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号１のうちの少なくとも１０の隣接するヌクレオチドを含み、且つ前記１０の隣接するヌクレオチドが、配列番号１の位置２０７にあるＣヌクレオチドにまたがるオリゴヌクレオチドプローブ。

３７．ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置２０７でＴ含有アレルを検出するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号９の配列を有するオリゴヌクレオチドプローブ。

３８．ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置２０７でＣ含有アレルを検出するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号１０の配列を有するオリゴヌクレオチドプローブ。

３９．ｏｂ遺伝子多型ＵＡＳＭＳ２を同定するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号３のうちの少なくとも１０の隣接するヌクレオチドを含み、且つ前記１０の隣接するヌクレオチドが、配列番号２のヌクレオチド位置５２８にまたがるオリゴヌクレオチドプローブ。

４０．ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置５２８でＴ含有アレルを検出するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号３のうちの少なくとも１０の隣接するヌクレオチドを含み、且つ前記１０の隣接するヌクレオチドが、配列番号３の位置５２８にあるＴヌクレオチドにまたがるオリゴヌクレオチドプローブ。

４１．ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置５２８でＣ含有アレルを検出するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号１のうちの少なくとも１０の隣接するヌクレオチドを含み、且つ前記１０の隣接するヌクレオチドが、配列番号１の位置５２８にあるＣヌクレオチドにまたがるオリゴヌクレオチドプローブ。

４２．ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置５２８でＴ含有アレルを検出するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号１４の配列を有するオリゴヌクレオチドプローブ。

４３．ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置５２８でＣ含有アレルを検出するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号１３の配列を有するオリゴヌクレオチドプローブ。

４４．ｏｂ遺伝子多型ＵＡＳＭＳ３を同定するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号４のうちの少なくとも１０の隣接するヌクレオチドを含み、且つ前記１０の隣接するヌクレオチドが、配列番号４のヌクレオチド位置１７５９にまたがるオリゴヌクレオチドプローブ。

４５．ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置１７５９でＧ含有アレルを検出するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号４のうちの少なくとも１０の隣接するヌクレオチドを含み、且つ前記１０の隣接するヌクレオチドが、配列番号４の位置１７５９にあるＧヌクレオチドにまたがるオリゴヌクレオチドプローブ。

４６．ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置１７５９でＣ含有アレルを検出するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号１のうちの少なくとも１０の隣接するヌクレオチドを含み、且つ前記１０の隣接するヌクレオチドが、配列番号１の位置１７５９にあるＣヌクレオチドにまたがるオリゴヌクレオチドプローブ。

４７．ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置１７５９でＧ含有アレルを検出するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号１７の配列を有するオリゴヌクレオチドプローブ。

４８．ｏｂ遺伝子プロモーターのヌクレオチド位置１７５９でＣ含有アレルを検出するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号１８の配列を有するオリゴヌクレオチドプローブ。

４９．ｏｂ遺伝子多型ＥＸＯＮ２−ＦＢを同定するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号６のうちの少なくとも１０の隣接するヌクレオチドを含み、且つ前記１０の隣接するヌクレオチドが、配列番号６のヌクレオチド位置３０５にまたがるオリゴヌクレオチドプローブ。

５０．ｏｂ遺伝子のエキソン２のヌクレオチド位置３０５でＣ含有アレルを検出するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号５のうちの少なくとも１０の隣接するヌクレオチドを含み、且つ前記１０の隣接するヌクレオチドが、配列番号５の位置３０５にあるＣヌクレオチドにまたがるオリゴヌクレオチドプローブ。

５１．ｏｂ遺伝子のエキソン２のヌクレオチド位置３０５でＴ含有アレルを検出するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号６のうちの少なくとも１０の隣接するヌクレオチドを含み、且つ前記１０の隣接するヌクレオチドが、配列番号６の位置３０５にあるＴヌクレオチドにまたがるオリゴヌクレオチドプローブ。

５２．ｏｂ遺伝子のエキソン２のヌクレオチド位置３０５でＣ含有アレルを検出するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号２２の配列を有するオリゴヌクレオチドプローブ。

５３．ｏｂ遺伝子のエキソン２のヌクレオチド位置３０５でＴ含有アレルを検出するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、配列番号２１の配列を有するオリゴヌクレオチドプローブ。

５４．ｏｂ遺伝子多型を検出するための組成物であって、段落番号３４から５３のいずれか１段落に記載の少なくとも１種のオリゴヌクレオチドプローブを含む組成物。

５５．前記オリゴヌクレオチドが検出可能な部分で標識されている、段落番号３４から５３のいずれか１段落に記載の単離されたオリゴヌクレオチドプローブ。

５６．ｏｂ遺伝子多型を検出するための組成物であって、段落番号５５に記載の少なくとも１種のオリゴヌクレオチドプローブを含む組成物。

５７．前記検出可能な部分が、放射標識（^３Ｈ、^１２５Ｉ、^３５Ｓ、^１４Ｃ、^３２Ｐ）、検出可能な酵素（ホースラディッシュペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）、アルカリホスファターゼ）、蛍光色素（フルオレセインイソチオシアネート、テキサスレッド、ローダミン、Ｃｙ３、Ｃｙ５、Bodipy、Bodipy Far Red、ルシファーイエロー、Bodipy 630/650-X、Bodipy R6G-X、5-CR 6G）、及び比色標識（金コロイド、ジゴキシゲニン−ｄＵＴＰ、又はビオチン）から成る群から選択される、段落番号５５に記載の単離されたオリゴヌクレオチドプローブ。

５８．ｏｂ遺伝子多型を検出するための組成物であって、段落番号５７に記載の少なくとも１種のオリゴヌクレオチドプローブを含む組成物。

５９．前記検出可能な部分が、蛍光シグナルを発生する蛍光成分である、段落番号５５に記載の単離されたオリゴヌクレオチドプローブ。

６０．ｏｂ遺伝子多型を検出するための組成物であって、段落番号５９に記載の少なくとも１種のオリゴヌクレオチドプローブを含む組成物。

６１．前記オリゴヌクレオチドが固体の支持体上に固定化される、段落番号３４から５３のいずれか１段落に記載の単離されたオリゴヌクレオチド。

６２．多型ＵＡＳＭＳ１の位置にまたがった、ｏｂ遺伝子プロモーターの断片を酵素的に増幅するためのプライマー対であって、ｏｂ遺伝子プロモーターを相補し、これに特異的にアニールする１対のオリゴヌクレオチドを含み、前記プライマー対の第１のメンバーが、ヌクレオチド位置２０７の上流（５’）にある位置でｏｂ遺伝子プロモーターにアニールし、前記プライマー対の第２のメンバーが、ヌクレオチド位置２０７の下流（３’）にある位置でｏｂ遺伝子プロモーターにアニールするプライマー対。

６３．多型ＵＡＳＭＳ１の位置にまたがった、ｏｂ遺伝子プロモーターの断片を酵素的に増幅するためのプライマー対であって、配列番号７のうちの配列を有するフォワードプライマー、及び配列番号８のうちの配列を有するリバースプライマーを含むプライマー対。

６４．多型ＵＡＳＭＳ１の位置にまたがった、ｏｂ遺伝子プロモーターの断片を酵素的に増幅するのに有用な単離されたプライマーであって、配列番号７のうちの配列を有するプライマー。

６５．多型ＵＡＳＭＳ１の位置にまたがった、ｏｂ遺伝子プロモーターの断片を酵素的に増幅するのに有用な単離されたプライマーであって、配列番号８のうちの配列を有するプライマー。

６６．多型ＵＡＳＭＳ２の位置にまたがった、ｏｂ遺伝子プロモーターの断片を酵素的に増幅するためのプライマー対であって、ｏｂ遺伝子プロモーターを相補し、これに特異的にアニールする１対のオリゴヌクレオチドを含み、前記プライマー対の第１のメンバーが、ヌクレオチド位置５２８の上流（５’）にある位置でｏｂ遺伝子プロモーターにアニールし、前記プライマー対の第２のメンバーが、ヌクレオチド位置５２８の下流（３’）にある位置でｏｂ遺伝子プロモーターにアニールするプライマー対。

６７．多型ＵＡＳＭＳ２の位置にまたがった、ｏｂ遺伝子プロモーターの断片を酵素的に増幅するためのプライマー対であって、配列番号１１のうちの配列を有するフォワードプライマー、及び配列番号１２のうちの配列を有するリバースプライマーを含むプライマー対。

６８．多型ＵＡＳＭＳ２の位置にまたがった、ｏｂ遺伝子プロモーターの断片を酵素的に増幅するのに有用な単離されたプライマーであって、配列番号１１のうちの配列を有するプライマー。

６９．多型ＵＡＳＭＳ２の位置にまたがった、ｏｂ遺伝子プロモーターの断片を酵素的に増幅するのに有用な単離されたプライマーであって、配列番号１２のうちの配列を有するプライマー。

７０．多型ＵＡＳＭＳ３の位置にまたがった、ｏｂ遺伝子プロモーターの断片を酵素的に増幅するためのプライマー対であって、ｏｂ遺伝子プロモーターを相補し、これに特異的にアニールする１対のオリゴヌクレオチドを含み、前記プライマー対の第１のメンバーが、ヌクレオチド位置１７５９の上流（５’）にある位置でｏｂ遺伝子プロモーターにアニールし、前記プライマー対の第２のメンバーが、ヌクレオチド位置１７５９の下流（３’）にある位置でｏｂ遺伝子プロモーターにアニールするプライマー対。

７１．多型ＵＡＳＭＳ３の位置にまたがった、ｏｂ遺伝子プロモーターの断片を酵素的に増幅するためのプライマー対であって、配列番号１５のうちの配列を有するフォワードプライマー、及び配列番号１６のうちの配列を有するリバースプライマーを含むプライマー対。

７２．多型ＵＡＳＭＳ３の位置にまたがった、ｏｂ遺伝子プロモーターの断片を酵素的に増幅するのに有用な単離されたプライマーであって、配列番号１５のうちの配列を有するプライマー。

７３．多型ＵＡＳＭＳ３の位置にまたがった、ｏｂ遺伝子プロモーターの断片を酵素的に増幅するのに有用な単離されたプライマーであって、配列番号１６のうちの配列を有するプライマー。

７４．多型ＥＸＯＮ２−ＦＢの位置にまたがった、ｏｂ遺伝子プロモーターの断片を酵素的に増幅するためのプライマー対であって、ｏｂ遺伝子プロモーターを相補し、これに特異的にアニールする１対のオリゴヌクレオチドを含み、前記プライマー対の第１のメンバーが、エキソン２のヌクレオチド位置３０５の上流（５’）にある位置でｏｂ遺伝子にアニールし、前記プライマー対の第２のメンバーが、エキソン２のヌクレオチド位置３０５の下流（３’）にある位置でｏｂ遺伝子にアニールするプライマー対。

７５．多型ＥＸＯＮ２−ＦＢの位置にまたがった、ｏｂ遺伝子の断片を酵素的に増幅するためのプライマー対であって、配列番号１９のうちの配列を有するフォワードプライマー、及び配列番号２０のうちの配列を有するリバースプライマーを含むプライマー対。

７６．多型ＥＸＯＮ２−ＦＢの位置にまたがった、ｏｂ遺伝子の断片を酵素的に増幅するのに有用な単離されたプライマーであって、配列番号１９のうちの配列を有するプライマー。

７７．多型ＥＸＯＮ２−ＦＢの位置にまたがった、ｏｂ遺伝子の断片を酵素的に増幅するのに有用な単離されたプライマーであって、配列番号２０のうちの配列を有するプライマー。

７８．ｏｂ遺伝子の多型遺伝子座ＵＡＳＭＳ１で動物の遺伝子型を決定する方法であって、
ａ）動物からＤＮＡ試料を得るステップと、
ｂ）ＤＮＡ試料を配列番号７及び配列番号８のオリゴヌクレオチドプライマー対と、オリゴヌクレオチドプライマーがＤＮＡ試料とハイブリッド形成できるのに適した条件下で接触させるステップと、
ｃ）配列番号７及び配列番号８のプライマー対を使用して、ｏｂ遺伝子の特定の領域を酵素的に増幅し、それにより核酸増幅産物を生成させるステップと、
ｄ）ステップｃ）から得られる増幅産物を、標識可能な部分で標識された、配列番号９及び配列番号１０から成るアレル特異的な標識プローブと、アレル特異的な標識プローブが増幅産物とハイブリッド形成できるのに適した条件下で接触させるステップと、
ｅ）増幅産物とハイブリッド形成したアレル特異的な標識プローブの標識可能な部分を検出することにより、増幅産物の存在を検出するステップと
を含む方法。

７９．ｏｂ遺伝子の多型遺伝子座ＵＡＳＭＳ２で動物の遺伝子型を決定する方法であって、
ａ）動物からＤＮＡ試料を得るステップと、
ｂ）ＤＮＡ試料を配列番号１１及び配列番号１２のオリゴヌクレオチドプライマー対と、オリゴヌクレオチドプライマーがＤＮＡ試料とハイブリッド形成できるのに適した条件下で接触させるステップと、
ｃ）配列番号１１及び配列番号１２のプライマー対を使用して、ｏｂ遺伝子の特定の領域を酵素的に増幅し、それにより核酸増幅産物を生成させるステップと、
ｄ）ステップｃ）から得られる増幅産物を、標識可能な部分で標識された、配列番号１３及び配列番号１４から成るアレル特異的な標識プローブと、アレル特異的な標識プローブが増幅産物とハイブリッド形成できるのに適した条件下で接触させるステップと、
ｅ）増幅産物とハイブリッド形成したアレル特異的な標識プローブの標識可能な部分を検出することにより、増幅産物の存在を検出するステップと
を含む方法。

７８．ｏｂ遺伝子の多型遺伝子座ＵＡＳＭＳ３で動物の遺伝子型を決定する方法であって、
ａ）動物からＤＮＡ試料を得るステップと、
ｂ）ＤＮＡ試料を配列番号１５及び配列番号１６のオリゴヌクレオチドプライマー対と、オリゴヌクレオチドプライマーがＤＮＡ試料とハイブリッド形成できるのに適した条件下で接触させるステップと、
ｃ）配列番号１５及び配列番号１６のプライマー対を使用して、ｏｂ遺伝子の特定の領域を酵素的に増幅し、それにより核酸増幅産物を生成させるステップと、
ｄ）ステップｃ）から得られる増幅産物を、標識可能な部分で標識された、配列番号１７及び配列番号１８から成るアレル特異的な標識プローブと、アレル特異的な標識プローブが増幅産物とハイブリッド形成できるのに適した条件下で接触させるステップと、
ｅ）増幅産物とハイブリッド形成したアレル特異的な標識プローブの標識可能な部分を検出することにより、増幅産物の存在を検出するステップと
を含む方法。

７８．ｏｂ遺伝子の多型遺伝子座ＥＸＯＮ２−ＦＢで動物の遺伝子型を決定する方法であって、
ａ）動物からＤＮＡ試料を得るステップと、
ｂ）ＤＮＡ試料を配列番号１９及び配列番号２０のオリゴヌクレオチドプライマー対と、オリゴヌクレオチドプライマーがＤＮＡ試料とハイブリッド形成できるのに適した条件下で接触させるステップと、
ｃ）配列番号１９及び配列番号２０のプライマー対を使用して、ｏｂ遺伝子の特定の領域を酵素的に増幅し、それにより核酸増幅産物を生成させるステップと、
ｄ）ステップｃ）から得られる増幅産物を、標識可能な部分で標識された、配列番号２１及び配列番号２２から成るアレル特異的な標識プローブと、アレル特異的な標識プローブが増幅産物とハイブリッド形成できるのに適した条件下で接触させるステップと、
ｅ）増幅産物とハイブリッド形成したアレル特異的な標識プローブの標識可能な部分を検出することにより、増幅産物の存在を検出するステップと
を含む方法。

「野生型」ウシｏｂ遺伝子の５’フランキングプロモーター領域及びエキソン１のヌクレオチド配列を示す図である。この「野生型」配列は、ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＢ０７０３６８（Taniguchi et al. IUBMB Life Vol 53、p131-135 (2002)）を有し、本明細書で配列番号１と称する。 ウシｏｂ遺伝子プロモーターにおけるＵＡＳＭＳ１一塩基多型のヌクレオチド配列を示す図である（配列番号２）。この多型配列は、「野生型」ウシｏｂ遺伝子配列（配列番号１）のものと、ヌクレオチド位置２０７がシトシンからチミンに置換されているという点で異なる。 ウシｏｂ遺伝子のＵＡＳＭＳ２一塩基多型のヌクレオチド配列を示す図である（配列番号３）。この多型配列は、「野生型」ウシｏｂ遺伝子配列（配列番号１）のものと、ヌクレオチド位置５２８がシトシンからチミンに置換されているという点で異なる。 ウシｏｂ遺伝子のＵＡＳＭＳ３一塩基多型のヌクレオチド配列を示す図である（配列番号４）。この多型配列は、「野生型」ウシｏｂ遺伝子配列（配列番号１）のものと、ヌクレオチド位置１７５９がシトシンからグアニンに置換されているという点で異なる。 「野生型」ウシｏｂ遺伝子のエキソン２のヌクレオチド配列を示す図である（配列番号５）。この「野生型」エキソン２配列は、ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＹ１３８５８８を有する。 ウシｏｂ遺伝子のヌクレオチド配列、ＥＸＯＮ２−ＦＢ一塩基多型を示す図である（配列番号６）。この多型配列は、「野生型」ウシｏｂ遺伝子配列（配列番号５）のものと、ヌクレオチド位置３０５がシトシンからチミンに置換されているという点で異なる。 ＵＡＳＭＳ１ ＳＮＰについて動物をどのようにしてスクリーニングすることができるか、またどのようにして遺伝子型情報を使用して、育種すべき動物を選抜し、且つ／又は食糧生産に使用することができるか流れ図を使用して示す図である。 ＵＡＳＭＳ２ ＳＮＰについて動物をどのようにしてスクリーニングすることができるか、またどのようにして遺伝子型情報を使用して、育種すべき動物を選抜し、且つ／又は食糧生産に使用することができるか流れ図を使用して示す図である。 ＵＡＳＭＳ３ ＳＮＰについて動物をどのようにしてスクリーニングすることができるか、またどのようにして遺伝子型情報を使用して、育種すべき動物を選抜し、且つ／又は食糧生産に使用することができるか流れ図を使用して示す図である。 ＥＸＯＮ２−ＦＢ ＳＮＰについて動物をどのようにしてスクリーニングすることができるか、またどのようにして遺伝子型情報を使用して、育種すべき動物を選抜し、且つ／又は食糧生産に使用することができるか流れ図を使用して示す図である。

Claims (8)

1. ウシの一般的集団と比較して、飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値、又は屠体構成に関する望ましい表現型を有するウシを同定する方法であって、レプチン遺伝子における一塩基多型の存在を検出するステップを含み、前記一塩基多型が、ＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、及びＥＸＯＮ２−ＦＢから成る群から選択され、ＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、又はＥＸＯＮ２−ＦＢのいずれかの一塩基多型における特定の遺伝子型の存在が、循環レプチンレベル、飼料摂取量、成長速度、体重、屠体価値、及び／又は屠体構成に関する表現形質を示すことを特徴とする方法。
2. 一塩基多型がＵＡＳＭＳ１多型であり、且つ
   ａ）ＣＣ遺伝子型を有する動物は、ＣＴ又はＴＴ遺伝子型を有する動物と比較して、最終体重、平均体重、屠殺時体重、屠体重、及び／又は乾物摂取量がより低く、
   ｂ）ＴＴ遺伝子型を有する動物は、ＣＴ又はＣＣ遺伝子型を有する動物と比較して、最終体重、平均体重、屠殺時体重、屠体重、及び／又は乾物摂取量がより高く、且つ
   ｃ）ＣＴ遺伝子型を有する動物は、最終体重、平均体重、屠殺時体重、屠体重、及び乾物摂取量のレベルが、ＣＣ又はＴＴ遺伝子型を有する動物のレベルの中間である
   ことを特徴とする請求項１記載の方法。
3. 一塩基多型がＵＡＳＭＳ２多型であり、且つ
   ａ）ＣＣ遺伝子型を有する動物は、ＣＴ又はＴＴ遺伝子型を有する動物と比較して、血清レプチンレベル、一日平均増体重、乾物摂取量、脂肪交雑スコア、及び／又は超音波測定背脂肪厚がより低く、
   ｂ）ＴＴ遺伝子型を有する動物は、ＣＣ又はＴＴ遺伝子型を有する動物と比較して、血清レプチンレベル、脂肪交雑スコア、及び超音波測定背脂肪厚が中程度であり、且つＣＣ遺伝子型を有する動物と比較して、一日平均増体重及び乾物摂取量がより高く、且つ
   ｃ）ＣＴ遺伝子型を有する動物は、ＣＴ又はＣＣ遺伝子型を有する動物と比較して、血清レプチンレベル、脂肪交雑スコア、及び／又は超音波測定背脂肪厚がより高く、且つＣＣ遺伝子型を有する動物と比較して、一日平均増体重及び／又は乾物摂取量がより高い、
   ことを特徴とする請求項１記載の方法。
4. 一塩基多型がＵＡＳＭＳ３多型であり、且つ
   ａ）ＣＣ遺伝子型を有する動物は、ＣＧ又はＧＧ遺伝子型を有する動物と比較して、最終体重、平均体重、屠殺時体重、屠体重、及び／又は乾物摂取量がより低く、
   ｂ）ＧＧ遺伝子型を有する動物は、ＣＣ又はＣＧ遺伝子型を有する動物と比較して、最終体重、平均体重、屠殺時体重、屠体重、及び／又は乾物摂取量がより高く、且つ
   ｃ）ＣＧ遺伝子型を有する動物は、ＣＣ又はＧＧ遺伝子型を有する動物と比較して、最終体重、平均体重、屠殺時体重、屠体重、及び／又は乾物摂取量が中程度である、
   ことを特徴とする請求項１記載の方法。
5. 一塩基多型がＥＸＯＮ２−ＦＢ多型であり、且つ
   ａ）ＣＣ遺伝子型を有する動物は、ＣＴ又はＴＴ遺伝子型を有する動物と比較して、超音波測定背脂肪厚がより低く、且つ代謝体重中間値、最終体重、屠殺時体重、及び／又は屠体重がより高く、
   ｂ）ＴＴ遺伝子型を有する動物は、ＣＴ又はＣＣ遺伝子型を有する動物と比較して、超音波測定背脂肪厚がより高く、且つ代謝体重中間値、最終体重、及び／又は屠殺時体重がより低く、且つ
   ｃ）ＣＴ遺伝子型を有する動物は、ＣＣ又はＴＴ遺伝子型を有する動物と比較して、超音波測定背脂肪厚、代謝体重中間値、屠殺時体重、及び／又は屠体重が中程度である、
   ことを特徴とする請求項１記載の方法。
6. ＵＡＳＭＳ１多型及びＵＡＳＭＳ３多型が完全に連鎖しており、その結果、
   ａ）ＵＡＳＭＳ１遺伝子座にＣＣ遺伝子型を有する動物は、ＵＡＳＭＳ３遺伝子座にＣＣ遺伝子型を有し、
   ｂ）ＵＡＳＭＳ１遺伝子座にＣＴ遺伝子型を有する動物は、ＵＡＳＭＳ３遺伝子座にＣＧ遺伝子型を有し、且つ
   ｃ）ＵＡＳＭＳ１遺伝子座にＴＴ遺伝子型を有する動物は、ＵＡＳＭＳ３遺伝子座にＧＧ遺伝子型を有する、
   ことを特徴とする請求項１記載の方法。
7. ウシｏｂ遺伝子における一塩基多型を検出するための単離されたオリゴヌクレオチドプローブであって、単離されたオリゴヌクレオチドが、
   ａ）配列番号１のヌクレオチド位置２０７を含む、配列番号１のうちの１０以上の隣接するヌクレオチド、
   ｂ）配列番号２のヌクレオチド位置２０７を含む、配列番号２のうちの１０以上の隣接するヌクレオチド、
   ｃ）配列番号３のヌクレオチド位置５２８を含む、配列番号３のうちの１０以上の隣接するヌクレオチド、
   ｄ）配列番号４のヌクレオチド位置１７５９を含む、配列番号４のうちの１０以上の隣接するヌクレオチド、
   ｅ）配列番号５のヌクレオチド位置３０５を含む、配列番号５のうちの１０以上の隣接するヌクレオチド、
   ｆ）配列番号４のヌクレオチド位置３０５を含む、配列番号６のうちの１０以上の隣接するヌクレオチド、
   ｇ） 配列番号９、
   ｈ） 配列番号１０、
   ｉ） 配列番号１３、
   ｊ） 配列番号１４、
   ｋ） 配列番号１７、
   ｌ） 配列番号１８、
   ｍ） 配列番号２１、及び
   ｎ） 配列番号２２
   を含む群から選択されることを特徴とするオリゴヌクレオチドプローブ。
8. ＵＡＳＭＳ１、ＵＡＳＭＳ２、ＵＡＳＭＳ３、又はＥＸＯＮ２−ＦＢ一塩基多型の位置にまたがったウシｏｂ遺伝子の断片を増幅するのに有用な単離されたプライマー対であって、
   ａ） 配列番号１におけるヌクレオチド位置２０７の上流にある位置でｏｂ遺伝子プロモーターにアニールする第１のプライマー、及び配列番号１におけるヌクレオチド位置２０７の下流にある位置でｏｂ遺伝子プロモーターにアニールする第２のプライマー、
   ｂ） 配列番号１におけるヌクレオチド位置５２８の上流にある位置でｏｂ遺伝子プロモーターにアニールする第１のプライマー、及び配列番号１におけるヌクレオチド位置５２８の下流にある位置でｏｂ遺伝子プロモーターにアニールする第２のプライマー、
   ｃ） 配列番号１におけるヌクレオチド位置１７５９の上流にある位置でｏｂ遺伝子プロモーターにアニールする第１のプライマー、及び配列番号１におけるヌクレオチド位置１７５９の下流にある位置でｏｂ遺伝子プロモーターにアニールする第２のプライマー、
   ｄ） 配列番号５におけるヌクレオチド位置３０５の上流にある位置でｏｂ遺伝子のエキソン２にアニールする第１のプライマー、及び配列番号５におけるヌクレオチド位置３０５の下流にある位置でｏｂ遺伝子のエキソン２にアニールする第２のプライマー、
   ｅ） 配列番号７の配列を有する第１のプライマー、及び配列番号８の配列を有する第２のプライマー、
   ｆ） 配列番号１１の配列を有する第１のプライマー、及び配列番号１２の配列を有する第２のプライマー、
   ｇ） 配列番号１５の配列を有する第１のプライマー、及び配列番号１６の配列を有する第２のプライマー、並びに
   ｈ） 配列番号１９の配列を有する第１のプライマー、及び配列番号２０の配列を有する第２のプライマー
   を含む群から選択されることを特徴とするプライマー対。

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