CZ274896A3 - Process for preparing immunoglobulin preparation with a high titer - Google Patents

Process for preparing immunoglobulin preparation with a high titer Download PDF

Info

Publication number
CZ274896A3
CZ274896A3 CZ962748A CZ274896A CZ274896A3 CZ 274896 A3 CZ274896 A3 CZ 274896A3 CZ 962748 A CZ962748 A CZ 962748A CZ 274896 A CZ274896 A CZ 274896A CZ 274896 A3 CZ274896 A3 CZ 274896A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
virus
solution
plasma
precipitate
ligands
Prior art date
Application number
CZ962748A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ286885B6 (en
Inventor
Hanspeter Amstutz
Peter Lerch
Jean Jacques Morgenthaler
Original Assignee
Rotkreuzstiftung Zentrallab
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Rotkreuzstiftung Zentrallab filed Critical Rotkreuzstiftung Zentrallab
Publication of CZ274896A3 publication Critical patent/CZ274896A3/cs
Publication of CZ286885B6 publication Critical patent/CZ286885B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/16Extraction; Separation; Purification by chromatography
    • C07K1/22Affinity chromatography or related techniques based upon selective absorption processes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/08Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from viruses
    • C07K16/081Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from viruses from DNA viruses
    • C07K16/082Hepadnaviridae, e.g. hepatitis B virus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/06Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies from serum
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/06Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies from serum
    • C07K16/065Purification, fragmentation
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/12Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria
    • C07K16/1267Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-positive bacteria
    • C07K16/1282Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-positive bacteria from Clostridium (G)

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Treatment Of Liquids With Adsorbents In General (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Description

Oblast techn i ky
Vynález se týká způsobu získávání imunog1obu1 inů z kterých se při dnes běžné frakcionací plasmy k výrobě kl preparátů nepoužívá, nebo alespoň nepřipadají v úvahu při výrobě imunog1obu1 i nových preparátů.
Dosavadní stav techniky i Η ϋ 0 frakcí, ' i ni ckýcřr-3
CZ)
V lidské krevní plasmě se nachází je než stovka různých proteinů. Některých z nich je možno použít z terapeutických produktů po frakciovaném dárcovské plasmy jako vyčištění. Jsou známy následující příklady: Albumin se nasazuje k vyrovnání onkotického při hypovolemii (sníženém nebo Faktor srážlivosti krve VIII, deficitu při hypoproteinemii nebo zvýšeném množství bílkovin v krvi) případně IX se podává k profylaxi a terapii krvácení při hemofilii A, případně B. Při nemocech s nedostatečnými protilátkami se používají imunogiobuiíny k profylaxi a terapii infekcí i při idiopatické thrombocytové růži. Imunogiobu1 iny od vybraných dárců s vysokými titry specifických imunog1obu1 inů se nasazují jako hyper i munog i o bu 1 i no vé preparáty k profylaxi a k ošetřování specifických infekcí, jako je například hepatitis A nebo B.
Izolace terapeuticky použitelných plasmaproteinů může probíhat například podle známých metod ethanolové frakcionace (Cohn, Am. Chem. Soc., 68, str. 459, 1946, a Kistler P.
Vox Sang., 7, str. 414, 1962). Oběma způsoby je možno izolovat velká množství funkčních plasmaproteinů, jako jsou albumin nebo imunoglobu1 iny, které je možno s klinickým užitkem nasazovat ve vhodných prostředcích. Při zpracování podle těchto metod vznikají však sraženiny případně přebytky, kterých nelze při konvenčním zpracování použít. Složení těchto frakcí je velmi
E. G. a kol., J a Nitschmann H rozdílné.
Zatímco je například lidský apo1 op ipoprotein A-l (Apo A-l) při vysrážení krevní plasmy 19% ethanolem při hodnotě pH 5,8 v přibližně stejných dílech v přebytku a (asi 50 X ρ1asma-ApoA-1) a ve sraženině A (asi 40%), je stejný protein po následujících frakctonačních krocích podle Kistlera a Nitschmanna pak v těch frakcích, kterých nebylo dosud komerčně využito: straženina IV a sraženina B (po přibližně 40 %) (Lerch a kol., Protides of the Biological Fluids, 36, str. 409, 1989).
Podobný obraz rozdělení se jeví také u caeruloplasminu, který je transportním proteinem mědi. Po frakcionaci výchozího materiálu je 20 % ve sraženině IV a 40 % ve sraženině B.
Příkladem plasmového proteinu je transferin, který se při stejném postupu frakcionace hromadí až prakticky do 100 % ve sraženině IV, zatímco albumin lze nalézt až v 80 % ve dnes využívané sraženině C.
Imunog1obu1 iny je možno Kist1er-Nitschmannovou nebo Cohnovou frakcionaci získávat až z 50 až 60 % ve sraženině GG. Zbývajících 30 až 40 % se po těchto postupech rozdělí na sraženinu IV (5 %), sraženinu B (30 %) a filtrát GG (5 %) .
Uvedená procenta mají ilustrovat řádově rozdělení a nemají být považována za omezení; mění se podle použitých podmínek a podle metody.
Tyto příklady ukazují, že částečně značná množství terapeuticky využitelných proteinů se nacházejí ve frakcích sraženiny IV, sraženiny B, přebytku c a přebytku GG nebo v odpovídajících frakcích plasmové frakcionace podle Cohna (frakce OV-1, frakce II+III, přebytek V a přebytek 11-1,2). Z ethických důvodů, ale také vzhledem ke světovému nedostatku lidské krevní plasmy a určitých složek plasmy, je třeba se snažit o zlepšení dosud nepříliš velkého výtěžku imunog1 obu1 inů.
Imunog1obu1 iny mají v boji proti infekcím hlavní úlohu. Buď blokují pro viry specifické, neutralizující protilátky, které za- 3 braňují absorpci virů na buněčné receptory a zabraňují tak infekci, nebo pak opsonizují pro bakterie specifické protilátky, budiče a umožňují tak jejich eliminaci a odeznívání vlivem neutrofilů a makrofágů. Soubory plasmy od několika tisíc dárců obsahují imunoglobuliny velmi rozdílných specifik a imunoglobulinové preparáty z těchto souborů plasmy obsahují v důsledku také měřitelné titry imunog1obu1 inů, zaměřených proti epitopům na virech, bakteriích, toxinech, ale také proti autoanti genům. Jsou proto účinné proti mnoha infekcím a v dalších nejrůznějších pathologických stavech. Za určitých okolností je však nyní žádoucí používat imunoglobul i nový preparát s vysokými titry specifických protilátek, tak zvaný hyper imuong1obu1 inový preparát. Dosud se takové preparáty připravovaly velmi náročně a za cenu vysokých nákladů ze specifických souborů plasmy od dárců se zvýšenými titry specifických protilátek. To je z různých důvodů spojeno s obtížemi. Pokud existují uznávané způsoby očkování, jako v případě preparátu proti hepatitis B, musejí se dárci očkovat, vybrat a darovaná krev se musí odděleně zpracovávat. U mnoha jiných indikací nemůže však dojít k imunizaci dárců z ethických důvodů. Jen vzácně je možno náročným výběrem dárců (například po prodělání specifické nemoci) najít předanou krev s vysokými titry a jejím zpracováním získat příslušný preparát.
Je tedy úkolem vynálezu vyvinout způsob, kterým je možno zpřístupnit a izolovat cenné imunoglobulinové preparáty z uvedených, dosud sotva využitelných frakcí a sraženin vznikajících při průmyslových postupech frakcionace plasmy. Tyto preparáty, odpovídající hyper imuong1obu1 i novému preparátu, musejí být dále zpracovatelné na snášenlivý, zejména i.v. snášenlivý, proti virům bezpečný, tekutý nebo 1yofi 1 izovaný preparát.
Nyní se s překvapením zjistilo, že je možná výroba hyperimuong1obu1 i nových preparátů, popřípadě imuong1obu1 i nových preparátů s vysokými titry rozličnými cestami jedním z dosavadních postupů. Tento nový způsob používá imunog1obu1 inů z obecných sou4 borů plasmy, zlepšuje použitím odpadních” frakcí využití cenné suroviny krevní plasmy a umožňuje dokonce výrobu imuong1obu1 i no vých preparátů s daleko vyšší mi specifickými aktivitami, než jaké vykazují dosavadní preparáty. To znamená, že je možno malým vpraveným objemem a nepatrným množstvím vpravených proteinů, to je odpovídajícím nepatrnému zatížení příjemce, podávat v krátkém čase vysoké dávky specifických imunog1 obu1 inů. Umožňuje to způsob podle vynálezu podáváním specifických imunog1 obu1 inů absorpcína imobi 1 izované antigeny, tedy použitím odpadních frakcí zpracovaných afinitní chromatografii.
Podstata vynálezu
Způsob přípravy imunog1 obu1 i nového preparátu s vysokým, titrem spočívá podle vynálezu v tom, že se provádějí postupně následující operace:
a) frakcionuje se krevní plasma ze souboru plasmy, přičemž se oddělí alespoň jedna průmyslově zhodnotite1ná frakce obsahující v podstatě polyklonální imunoglobulin G, za získání alespoň jedné zbytková frakce,
b) připraví se proteinový roztok z proteinových složek získaných ze zbytkové frakce podle odstavce a) nebo z jejích podfrakcí,
c) výsledný roztok proteinů se podrobuje alespoň jednou afinitní chromatografii s imobi 1 izovanými ligandy alespoň jednoho ligandověho typu, přičemž se specifické proteiny plasmy vážou na ligandy a uvolňují se vázané proteiny plasmy, které se převádějí jako aktivní složky do imunog1 obu1 i nového preparátu s vysokým titrem.
Způsobem podle vynálezu se zpracuje napřed frakce získaná při postupu plasmové f rakc ionace, obzvláště odpadní frace tak, aby jí bylo možno použít v afinitní chromatografi i . Podle původu frakce může toto zpracování vypadat velmi rozdílně. Může se například zkoncentrovat přebytek GG, dialyzovat vůči vhodnému pufru a zfiítrovat. Sraženiny, nebo filtrační koláče (seznam příkladů takových výchozích materiálů obsahují tabulky I a II) musejí být naproti tomu suspendovány, to je například měněním iontové síly, hodnoty pH, teploty, přidáním detergencií a solí, tak, aby imunoglobuliny byly cíleně učiněny rozpustnými. Mohou se například přes noc míchat v rozmezí hodnot pH 3,0 až 9,0 při vodivosti 5 až 20 mS/cm při teplotě 4 ’C a vyčeřit následně odstředěním a/nebo filtrací. Jak supernatanty, tak suspense se mohou v tomto stupni podrobit postupu aktivizace virů systémem rozpouštěd1o/detergent Horowitzovým způsobem (Thrombosis and Haemostasis, 65, str. 1163, 1991), způsobem používajícím methylenovou modř (Mohr a kol. Infusionther. Infusi onsmed. 20, str. 19, 1993) nebo jiným způsobem. Imunog1obu1 iny je možno po suspendování podrobit také předběžnému čištění předběžnou adsorpcí na matrici sloupce nebo zpracováním vhodným pomocným filtračním prostředkem nebo adsorbentem, jako je hydroxid hlinitý, chromatografií přes protein A nebo 6 k obohacení nebo k několika vysrážením běžnými způsoby síranem amonným, polyethylenovému a/nebo ethalonovému vysrážení nebo jejich kombinaci k obohacení, koncentraci nebo ochuzení o rušivé složky.
Ta bu1ka I:
Příklady možných výchozích podle Kistlera a Nitschmanna které připadají v úvahu při plasmových produktů materiálů pocházejících z frakcionace nebo z dalších přípravných operací, výrobě i.v. snášenlivých stabilních
supernatant sraženiny a zbytky
supernatant c sraženina B
supernatant 66 sraženi na IV
zbytek po zpracování DEAE
zbytek po zpracování hydroxidem hlinitým
zbytky po vyčeřovacích filtracích I, II
Tabuika II:
Příklady možných výchozích materiálů pocházejících z · frakcíonace podle Cohna v úvahu při duktů nebo z dalších přípravných operací, která připadají výrobě i.v. snášenlivých stabilních plasmových prosupernatanty supernatant V supernatant 11-1,2 sraženiny nebo zbytky sraženina II+III sraženina I V-1 zbytek po zpracování DEAE zbytek po zpracování hydroxidem hlinitým zbytky po vyčeřovacích filtracích I, II a III
Následují cí seznam obsahuje možné 1 i gandy
chromatograf i i podle vynálezu.
Antigenové determinanty z
Haemophilus influenza b
Staphy1ococus aureus
Staphy1ococus e p i d e r m i s
Staphy1ococus aga 1ac t i ae
Staphy1ococus pneumon i ae
Staphylococus pyogenes
pro afinitní a další pathogenní bakteriální kmeny
Tetanus Toxin Staphy1ococus aureus a další pathogenní toxi ny toxický šokový toxin bakterie nebo jiné
Hepatitis Hepatitis Hepatitis virus Var i
A v i rus B virus C virus zella Coster
Cytomegalo virus respiračNÍ syncytial virus parvov i rus B 19
Herpes Simplex virus 1 Herpes Simplex virus 2 virus vztekliny a další pathogenní viry
CD2, CD3, CD4 CD5, CD28, CD4O, CD72 ICAM, LFA-1, LFA-3 DNA a další potenciální lidské autoanti geny.
Po vyrobení afinitních gelů imobi 1 izováηím modifikovaných nebo nemodifikovaných ligandů (příklady takových ligandů jsou v uvedeném seznamu) známými způsoby se na ně nanesou připravené supernatanty a suspenze v koncentrované nebo zředěné formě, popřípadě opakovaným průtokem. Popřípadě mohou být různé afinitní gely naplněny postupně stejnou suspensí. Gely se pak promyjí tak, že se v převážné nebo v postačující míře odstraní nespecificky vázající proteiny. K tomu může dojít například zvýšením koncentrace soli, přidáním detergentu a/nebo různou hodnotou pH vymývacího roztoku. Vázané proteiny se od ligandů uvolní, například elucí při nízké nebo vysoké hodnotě pH přidáním, chaotropních solných roztoků jako natriumthiokyanátu nebo chloridu hořečnatého, denaturujících činidel jako SDS a nebo močoviny, rozpouštědel jako ethylenglyko1u, změnou teploty nebo kombinací těchto opatření.
Za jistých okolností může být žádoucí modifikace ligandů, určených k imobilizaci mutagenesí nebo chemickými nebo fyzikálními způsoby tak, že se sice mohou ještě vázat imunog1obu1 iny na epitopy, avšak se sníženou afinitou, takže eluce může probíhat za mírnějších podmínek než s nezměněnými ligandy. Modifikací ligandů má také dojít k usnadnění a zlepšení jejich imobilizace a/nebo k presentaci jejich eitopu. Technické podrobnosti a podklady afinitní chromatografiě jsou všeobecně popsány v literatuře: Cuatrecasas, P. a Anfinsen, C.B.(1971) Ann.Rev.Biochem. 40, str. 259; Kuli, F.C. a Cuatrecasas, P. (1981) J.Immunol. 126, str. 1279; Liebing a kol. (1994) Vox Sang. 67, str. 117.
Specifické uvolněné imunog1obu1 iny se zpracovávají popřípadě dodatečnou filtrací k vyloučení virů na konečné produkty, kterých lze použít s výhodou i.v. a jsou prosté pyrogenů, s protivirovým zajištěním a s přísadou nebo bez přísady stabilizátorů, jako jsou albumin, aminokyseliny nebo uhlovodíky v tekutém nebo 1yofilizovaném stavu a které jsou stabilní. Použít se dá také prostředků, jež umožňují použití i.m. nebo topické použití.
Vynález blíže objasňují, nijak však neomezují, následující příklady praktického provedení.
Příklady provedení_vyná lezu
Přikladl
Připraví se HBsAg-sepharosa tím, že se 5 mg rekombinantního povrchového antigenů viru Hepatitis B (HBsAg, Abbott Diagnostics) imobilizuje kopulací primárních aminoskupin na 1 ml aktivované CH-sepharosy podle předpisu výrobce (Pharmacia Biotech, Uppsala, Švédsko). Připraví se sepharosa placebo tím, že se provede stejný kopulační postup s dalším gelovým alikvotem, avšak bez přidání HBsAg. Hotové gely se uskladní při teplotě 4 ’C v PBS s 0,02 % NaN3.
Přes noc se při teplotě 4 ’C suspenduje na přístroji RotaryMix 70 g sraženiny B z plasmové frakcionace podle Kist1er-Nitschmanna (NB šarže 4 030, 216) ve 210 ml 100mM kyseliny citrónové s hodnotou pH 4,0, 0,25 % Tritonu X-100, 10 mM N-ethylma1ei midu (NEM), 1 mM fenylmethylsu1fony 1f1uoridu (PMSF). Po oddělení nerozpustných složek odstředěním (5000 g, 4 ’C, 10 minut) a filtraci (velikost pórů 1,2 pm) se při neutrální hodnotě pH přidá podle Horowitze a kol. (Thrombosis and Haemostatís, 65, str. 1163, 1991) 1 % tri-n-buty1fosfátu (Merck, Darmstadt, Německo) a 1 % Tritonu X-100 a za stálého míchání se inkubuje 4 hodiny při teplotě 30 ’C. Nato se přes noc provede při teplotě 37 ’C oddělení fází, čirá spodní část se oddělí, zfiltruje se filtrem 0,45 pm a uskladní se při teplotě 4 * C.
130 ml takové NB-suspense se zředí 280 ml PBS (fosfátem pufrovaný solný roztok: 150 mM chloridu sodného, 10 mM natriumfosfátu, hodnota pH 7,1) a čerpá se při teplotě 4 ’C přes placebo a následně přes sloupec HBsAg-sepharosy tak, že po průtoku sloupcem se dostane zpět do zásobní nádrže. Průtočná rychlost je 8 ml/h po dobu 144 hodin. NB-suspense se pak celkově prožene oběma sloupci. Po 90 hodinách se zaplnění přeruší a sloupce se promývají jednotlivě napřed PBS a pak 200 mM chloridu sodného, 50 mM kyseliny tris-chrorovodíkové pH 7,4 až vykáže promývací roztok optickou hustotu při 280 nm (OD28O) menší než 0,01. Po ukončeném zaplnění se opět promyje PBS a 200 mM chl or i du. sodného, 50 mM Tris-HCI pH 7,4. Vázané proteiny se uvolní 5 ml systému 200 mM g1ycin-kyse1 i na chlorovodíková, pH 2,5, okamžitě se zneutra1 izuje a zpracuje. Výsledky jsou uvedeny v tabulce III.
Tabu 1ka 111
Afinitní chromatografie anti-HBsAg s NB-suspensí Gel HBsAg placebo
Ce1kové nap 1 není :
protein 1775 mg 1775 mg
1 gG 450 mg 4 50 mg
anti-HBs 1gG 4560 mlU 4560 mlU
Průběh: anti-HBs IgG
1140 mlU
1140 mi U
Ε1uát:
I gG anti-HBs 1gG
0,13 mg 5603 mlU
0,08 mg 114 mlU
Příklad 2
Při výchozí Cohnově frakci II+III (místo krevní plasmy jako výchozího materiálu) se provede frakcionace podle Kist1er-Nitschmanna. 70 g sraženiny B (NB šarže 4 044488) z této frakcionace podle Kist1er-Nitschmanna se suspenduje přes noc při teplotě 4 ’C ve 210 ml 100 mM citrónové kyseliny, pH 4,0, 0,25 % Tritonu X-100, 10 mM NEM, 1 mM PMSF v přítroji RotaryMix. Po vyčeření a částečné delipidaci u1traodstředěním (100 000 g, 3 h, 4 ’C, čirá fáze se odejme bočním zavedením trubičky kanylou) se suspense zfiltruje (0,45 um) a uskladní se při teplotě 4 *C.
125 ml této NB-suspense se zředí 375 ml PBS, nastavené na hodnotu pH 7,1 0,1M NaOH, zfiltruje se a obdobně jako podle příkladu 1 se přečerpává rychlosti 14,5 ml/h napřed přes placebo a pak přes gely HBsAg-sepharosy, které byly připraveny obdobně jako podle příkladu 3. Nakonec se gely promyjí odděleně PBS a 200 mM chloridu sodného, 50 mM Tris-HCl s hodnotou pH 7,4. Vázané proteiny se uvolní 5 ml 200 mM systému gy1cin-kyse1 i na chlorovodíková s hodnotou pH 2,5. Výsledky jsou shrnuty v tabulce IV.
Tabulka IV
Afinitní chromatografie anti-HBsAg s NB-suspensř (Cohn II+III) Gel HBsAg placebo
Celkové naplnění:
protein 1400 mg 1400 mg
1 gG 6 19 mg 6 19 mg
ant i-HBs 1gG 10 1 U 10 1 U
1 U
P r ůbě h: anti-HBs IgG Ε1uát:
gG O,18 mg O,35 mg anti-HBs 1gG 3,3 1U 0,08 1U
Příklad 3
1 supernatantu GG (šarže č. X95.31.286.1) se diafiltruje v PBS a zkoncentruje se na 500 ml. Obdobným způsobem jako podle příkladu 1 se přečerpá koncentrát rychlostí 21 ml/h během H8 hodin přes placebo a přes sloupec HBsAg. Sloupce se promyjí a vázané proteiny se uvolní rovněž obdobně jako podle příkladu 1, provede se však přídavná promývací operace 500 mM NaCl, 50 mM Tris-HCl s hodnotou pH 7,4. Výsledky obsahuje tabulka V.
Tabul ka V ·.
Afinitni chromatografie anti-HBsAg se supernatantem GG koncentrátu
NG: průkazní mez
Gel HBsAg placebo
Ce 1 kové naplnění:
protein 8800 mg 8800 mg
1 gG 320 mg 320 mg
ant i-HBs 1 gG 5000 ml U 5000 mlU
Průběh:
ant i-HBs lgG <NG <NG
E1uát:
1 gG 0,05 mg 0,14 mg
ant i-HBs 1 gG 3035 ml U 7 mlU
Příklad 4
Suspenduje a zpracuje se 17,5 g filtračního koláče DEAE (šarže 4.422.006.0) v 52,5 ml suspensního pufru podle příkladu 1. 40 ml suspense se zředí 160 ml PBS a hodnota pH se nastaví na 7,1, načež se zfiltruje. Obdobným způsobem jako podle příkladu 3 se přečerpá suspense rychlostí 21 ml/h během 97 hodin přes pla12 cebo a přes sloupec HBsAg. Sloupce se promyjí a vázané proteiny se uvolní obdobně jako podle příkladu 1. Výsledky obsahuje tabulka VI .
Tabulka VI
Afinitní chromatografie anti-HBsAg se suspensí filtračního koláče DEAE
NG: průkazní mez
Ge 1 HBsAg placebo
Ce1kové naplnění:
protein 5 48 mg 5 48 mg
1 gG 2 80 mg 280 mg
ant i-HBs 1gG 400 mlU 400 mlU
Průběh:
ant i-HBs 1gG < NG <NG
E 1 uát:
1 gG 0,07 mg 0,11 mg
anti-HBs 1gG 331 mlU 14 ml U
Příklad 5
Připraví se Tetanus toxoid-C-separosa tím, že se 11,5 mg vyčištěného Tetanus toxoidu (TT) imobilizuje kopulací karboxyskupin na 1 ml EAH-sepharosy (Pharmacia Biotech, Uppsala, Švédsko) pomocí 0,1M systému N-ethy1-N'-(3-dimethy1aminopropy 1)karbod i i mid-kyselina chlorovodíková podle předpisu výrobce. Hotové gely se uskladní při teplotě 4 ’C v PBS
Obdobně jako podle příkladu supernatantu a použije se ho k afinitní chromátografi i TT-separosou obdobně jako podle příkladu 2. Naplnění se provede rychlostí 23,5 ml/h během 159 hodin při teplotě 4 eC. Výsledky jsou v tabu 1 ce VI I .
s 0,02 % NaN33 se připraví koncentrát z GG13
Tabulka VII
Afinitní chromatografie anti-tetanového toxoidu s supernatantem
GG-koncentrátu
Ge 1 Tetanus toxoid C
Celkové naplnění:
protein 15000 mg
lgG 3 20 mg
ant i-TT 1 gG 35 pg
Průběh:
anti-TT 1 gG 1 6 pg
Eluát:
1 gG 0,16 mg
ant i-TT 1 gG 76 pg
Příklad 6
Připraví se Tetanus toxoid-N-separosa tím, že se 11,5 mg vyčištěného Tetanus toxoidu (TT) imobilizuje kopulací primárních amínoskupin na 1 ml aktivované CH-sepharosy podle předpisu výrobce (Pharmacia Biotech, Uppsala, Švédsko). Připraví se placeboseparosa tím, že se stejný koputační postup provede s dalším gelovým alikvotem, avšak bez přísady TT. Hotové gely se uskladní při teplotě 4 ‘C v PBS s 0,02 % NaN3.
Obdobně jako podle příkladu 2 se suspenduje sraženina. Po filtraci (1,2 pm) se 115 ml této suspense zředí 200 ml PBS, hodnota pH se nastaví na 7,1 a rychlostí 3,5 ml/h se během 165 hodin přečerpá napřed přes ρ1acebo-separosu tak, že po okamžitě následujícím průtoku sloupcem TT-N-sepharosy se dostane zpět do zásobní nádrže. Sloupce se promývají jednotlivě napřed PBS a pak 0,5M chloridu sodného, 50 mM Tris-HCl pH 7,1 až vykáže promývací roztok optickou hustotu při 280 nm (OD2 80) menší než 0,01. Výsledky jsou v tabulce VIII.
T a b u 1 k a v 111
Afínitní chromatografie anti-teta nového toxoidu se suspensí NB
Ge 1 Tetanus toxoid N placebo
Celkové naplnění: protein 1334 mg 1334 mg
1 gG 333 mg 333 mg
anti-TT lgG 0, 509 mg 0,509 mg
Průběh: anti-TT 1gG 0,213 mg 0,213 mg
E1uát: lgG 0, 35 mg 0,004 mg
anti-TT lgG 0,09 1 mg 0, 003 mg
Příklad 7
Obdobně jako podle příkladu 2 se suspenduje sraženina B. Po filtraci (1,2 pm) se 115 ml této suspense zředí 200 ml PBS, hod5 ml/h se během 165 hodin tak, že po okamžitě náslese dostaňezpět do zásobní napřed PBS a pak O,5M až nota pH se nastaví na 7,1 a rychlostí přečerpá napřed přes p1acebo-separosu dujícím průtoku sloupcem TT-sepharosy nádrže. Sloupce se promývají jednotlivě chloridu sodného, 50 mM Tris-HCi pH 7,1 vykáže promývací roztok optickou hustotu při 280 nm (OD28O) menší než 0,01. Výsledky jsou v tabulce IX.
Tabulka IX
Afínitní chromatografie anti-HBsAg a anti-tetánového toxoidu se suspensí NB
HBs Ag
Ge 1
Celkové naplnění
Tetanus toxoid
protein 1 334 mg 133 4 mg
1 gG 333 mg 333 mg
ant i-HBsAg 945 ml U 945 m t U
anti-TT lgG 0,509 mg 0,509 mg
Průběh:
ant i-HBsAg 535 ml U 536 ml U
anti-TT 1 gG 0, 255 mg 0,265 mg
Eluát: 1 gG 0, 13 mg 0,25 mg
anti-HBsAg anti-TT lgG 1 152 ml U 0,18 mg
Příklad 8
15 kg sraženiny B z frakcí podle Kistler-Nitschn
č. 5.043.303) se suspenduje přes noc při teplotě 4 *C vibračním mísičem ve 45 litrech 0,1 M kyseliny citrónové s hodnotou pH 4,0, s 0,25 % Tritonu X-100, 10 mM NEM, 1 mM PMSF. Po oddělení nerozpustných složek přidáním pomocných filtračních činidel a po filtraci (velikost pórů 1,2 pm) se přidá při neutrální hodnotě pH k delipidaci a k inaktivaci virů podle Horowitze 1 % tri-n-butylfosfátu a 1 % Tritonu X-100 a směs se inkubuje za míchání přes noc při teplotě 37 ’C. Nato se přes noc při teplotě 37 *C fáze oddělí, čirý podklad se odčerpá, zfiltruje se přes filtr 0,45 μιη a uskladní se při teplotě 4 ’ C.
Hodnota pH 40 litrů této NB suspense se upraví louhem sodným na 7,1 a při teplotě 4 ’C se přečerpá přes HBsAg a přes Affiprepsloupec Tetanus toxoidu tak, že po průtoku sloupci se suspense vrátí do zásobní nádrže. Affiprep-s1oupce (50x13 mm) se připraví kopulací 250 mg rekombinantních HBsAg případně Tetanus toxoidu na 250 ml Affiprep-ge! (BioRad Lab. Inc. Hercules CA 94547). Průtočná rychlost je 6 1/h po dobu 62 hodin. NS-suspense se tak celkově přečerpá třikrát přes sloupce. Po ukončeném zaplnění se sloupce promývají jednotlivě napřed PBS a pak 500 mM chloridu sodného, 50 mM Tris-HCl pH 7,4 až vykáže promývací roztok optickou hustotu při 280 nm (OD280) menší než 0,01. Vázané proteiny se uvolní systémem 200 mM giycin-kyse1 i na chlorovodíková, pH 2,5, a hodnota pH
Výsledky jsou uvedeny v tabulstabilní preparáty se provede frakcí se okamžitě nastaví na 5,2 ce X. Příprava imunog1 obuli nu na spojením frakcí Obsahujících lgG, diařiltrací a koncentrací se 20 mM chloridu sodného na roztoky 100 1U/ml, případně 2,5 mg antiTT-lgG/ml. Přidá se 10 % sacharosy a roztoky v jednotkách po 200 1 U, případně 5 mg anti-TT-lgG se lyofilizují.
P ř í k 1 a d 9
V 500 ml vody se suspenduje 50 g sraženiny IV z plasmové frakcionace podle Kist1er-Nitschmanna. Kyselinou citrónovou se upraví hodnota pH na 5,0 a vodivost se nastaví chloridem sodným na 13 mS. Po míchání přes noc při teplotě 4 ’C se dosáhne odstředěním během 30 minut při 30 000 g a 4 °C vyčeření a částečné delipidace. Zjistí se obsah rozpuštěných proteinů, lgM, lgA, lgG, transferinu a caeru1 op 1asminu v suspensi. Obsahy jsou v tabulce XI.
Tabulka X A f i n i t η í se
Ge l
Ce1kové nap lnění :
prote i n lgG ant i-HBs1gG anti-TT lgG P r ůbě h: ant i-HBs1gG anti-TT 1gG E1uá t:
gG ant i-HBslgG anti-TT lgG chromatograf i e suspensi
NB ant i-HBsAg a
HBsAg
448 g 204 g 1120 lU 3 17 mg
1 1 U
172 mg
39,8 mg 1368 1U anti-tetanového toxoidu
Tetanus toxoid
448 g 204 g 1120 1U 317 mg
1 1 U
2 mg
1 mg mg
Tabulka XI
Suspense ze sraženiny IV (všechny údaje v mg/ml)
Proteiny celkem lgM 1gA IgG Transferin Caeruloplasmin 5,5 0,063 0,628 0,488 2,582 0,09
Příklad 10 g sraženiny B z frakcí podle Ki st 1 er-Nitschmanna (šarže č. 4.030.204.0) se míchá přes noc ve 100 mM citrónové kyseliny při různých hodnotách pH při teplotě 4 *C, vyčeří se ultraodstředěním při 100 000 g a 4 eC v průběhu tří hodin a částečně se delipiduje. Čirá střední fáze se odebere a stanoví se její obsah rozpuštěných proteinů lgM, lgA, IgG, transferinu a caeruíoplasminu (tabulka XII).
Tabulka XII
Suspense ze sraženiny B (všechny údaje v mg/ml); <NG: pod mezí
průkaznost i
Proteiny 1 gM 1 gA 1 gG Transferi n Caeruloplasmin
celkem pH 4,0 4,9 1,2 1,3 1,9 <NG 0, 06
pH 5,0 6,1 1,2 1,0 2, 1 <NG <NG
Stanoví se titr 1gG vůč i určitým virovým (tabulka XIII) a
bakteriálním (tabulka XIV) antigenům a porovná se s titry výchozí
plasmy a existujících imunog1obu1 i nových preparátů.
Tabulka XIII
Prot i vi rové 1 gG v souborech plasmy, v SAGL a v NB-suspe ns í ch
p1asma p1asma SAGL NB NB
102 1 03 pH 4,0 pH 5 ,0
An t-HBs Ag 0,02 0, 05 0,01 0, 05 0,05 lU/mg IgG
Anti-CMV 0,28 0, 1 6 0,30 0, 52 0,34 PElE/mg IgG
Anti-VZV 0,08 0,09 n. b. 0,21 0, 10 lU/mg IgG
Ant i-spa1ničkyO,9 0,20
Anti-HSV1 1037 n.b.
O, 02 n. b
1 n *· t ' 'S
1 7
0,81 lU/mg IgG 749 AU/mg IgG
Plasma 102/103:plas mo vé soubory; SAGL:Sandog1obu1 i η; NB pH 4,0/ 5,0; suspense ze sraženiny B při pH 4,0, resp. 5,0; IU: mezinárodní jednotky; PEIE: jednotky institutu Paul Ehrlicha; AU; arbitrální jednotky; n.b.: nestanoveno
Tabulka XIV
Protibakteriá1 ní IgG v souborech p 1 a srna 103 p 1 asmy, SAGL v SAGL a v NB- s us pe ns í c h 0
plasma 102 NB 4A NB 14 pH 4,
anti-HIBOAg 162 286 436 100 283 úg/g 1 gG
anti-TT 1855 4 159 2740 2928 2923 pg/g 1 gG
anti-SEB 4 12 689 783 9 1 8 670 AU/g IgG
Plasma 102/103: plasmové soubory; SAGL: Sandog1obu1 inR; NB 4A suspense ze sraženiny B při pH 4,0; NB 14 pH 4,0: suspense ze sraženiny B při pH 4,0 s aktivizací viru; HIBOAg: o 1 igosacharidový antigen Haemophilius influenza Β; TT: Tetanus Toxoid SEB; Staphylococcus enterotoxin B; AU: arbitrální jednotky.
Průmyslová využitelnost
Způsob přípravy imunog1obu1 i nového preparátu s vysokým titrem z frakcí, kterých se při dnes běžné frakcionaci plasmy k výrobě klinických preparátů nepoužívá, nebo které alespoň nepřipadají v úvahu při výrobě imunog1obu1 i nových preparátů.
tr iyw-% 35 .IX L o 0153a i H G 0 5
Způsob přípravy imunog1obu1 i nového preparátu s vysokým tíť-ít t í m, že se provádějí postup-

Claims (14)

  1. PATENTOVE rem, vyznačující se ně následující operace:
    a) frakcionuje se krevní plasma ze souboru plasmy, přičemž se oddělí alespoň jedna průmyslově zhodnotite1ná frakce obsahující v podstatě polyklonální imunog1obulin G, za získání alespoň jedné zbytková frakce,
    b) připraví se proteinový roztok z proteinových složek získaných ze zbytkové frakce podle odstavce a) nebo z jejích podfrakcí,
    c) výsledný roztok proteinů se podrobuje alespoň jednou afinitní s imobi 1 izovanými ligandy alespoň jednoho lipřičemž se specifické proteiny plasmy vážou na ligandy a uvolňují se vázané proteiny plasmy, které se převádějí jako aktivní složky do imunog1 obu1 i nového preparátu s vysokým titrem.
    chromatograf i i gandového typu,
  2. 2. Způsob podle nároku 1, v y z n a č u j í c í se tím, že se frakcionace krevní plasmy provádí v průmyslovém měřítku, přičemž je zbytková frakce frakcí odpadní.
  3. 3. Způsob podle nároku 1 nebo 2, vyznačující se t í m , že zbytkovou frakcí podle stupně a) je sraženina nebo filtrační koláč a proteinové složky se uvádějí do roztoku, přičemž se sraženina nebo filtrační koláč zpracovává vodným pufrovým roztokem s iontovou silou <5M a s hodnotou pH 3,0 až 9,0 za vytváření roztoku nebo suspense.
  4. 4. Způsob podle nároku 3, v y z n a č u j í c í se tím, že pufrovým roztokem je fosfátový pufr, pufr Tris-HCl nebo citrátový pufr.
  5. 5. Způsob podle nároku 3 nebo 4, v y z n a č u j í c í se t í m, že pufrový roztok obsahuje detergent, alespoň jeden pro20 teázový zpomalovač a/nebo sůl.
  6. 6. Způsob podle nároku 3 až 5, v y z n a č u j í c í se t í m, že roztok nebo suspense se filtruje nebo předběžně zpracovává adsorbentem jako je hydroxid hlinitý nebo adsorbentem, který obsahuje skupiny DEAE.
  7. 7. Způsob podle nároku 3 až 5, vyznačující se t í m , že roztok nebo suspense se za vytváření sraženiny směšuje se síranem amonným, po 1yethy1eng1yko1em nebo ethanolem a kapalina nebo sraženina se dále zpracovává.
  8. 8. Způsob podle nároku 1 nebo 2, vyznačující se t í m, že zbytkovou frakcí podle odstavce a) je kapalina a roztok proteinů se vyrábí filtrací a koncentrací, například diafiltrací.
  9. 9. Způsob podle nároku 8, v y z n a č u j í c í se tím, že se kapalina předem filtruje nebo se předem zpracovává adsorbentem, jako je hydroxid hlinitý nebo s adsorbentem, který obsahuje skupiny DEAE.
  10. 10. Způsob podle nároku 1 až 9, v y z n a č u j í c í se t í m , že imobi 1 izovanými ligandy jsou přírodní nebo rekombinantní virové, bakteriové nebo buněčné antigeny.
  11. 11. Způsob podle nároku 10, vyznačující se t í m, že ligandy jsou voleny ze souboru antigenových determinantů Haemophilus influenza b, Staphylococus aureus, Staphylococus epidermis, Staphy1ococus agalactiae, Staphylococus pneumoniae, Staphy1ococus pyogenes, Tetanus toxinu, Staphylococus aureus toxický šokový toxin. Hepatitis A virus. Hepatitis B virus, Hepatitis C virus, virus Varizella Zoster, Cytomegalo virus, respiračni virus syncytial, Parvovirus B 19, Herpes Simplex virus 1, Herpes Simplex virus 2, virus vztekliny, CD2, CD3, CD4, CD5, CD28, CD40, CD72, ICAM, LFA-1, LFA-3, DNA a fosfolipidů.
  12. 12. Způso-b podle nároku 10 nebo 11, vyznačující se t í m , že ligandy se modifikují mutagenesí nebo chemickými nebo fyzikálními způsoby.
    13 . Způsob podle nároku 1 12, vyznačují c í s e t í m , že získaný vysokotitrový preparát imunog1obu1 i nu sestává pouze z imunog1obu1 inů třídy G nebo A nebo M nebo z jejich libovolné kombinace. 14. Způsob podle nároku 1 13, vyznačuj í c í se
    t í m, že se získaný vysokotitrový preparát imunoglobu1 i nu podrobuje virové aktivaci a popřípadě se stabilizuje, přičemž se přidává stabilizátor jako albumin, aminokyseliny nebo uhlohydráty a/ nebo se produkt lyofilizuje.
  13. 15. Způsob podle nároku 1 až 13, vyznačující· se t í m, že se získaný vysokotitrový preparát imunog1 obu1 i nu převádí na farmaceuticky přijatelný produkt, například na preparát podávaný například i.v., i.m. nebo topicky.
  14. 16. Způsob výroby imunoglobu1 i nového preparátu s vysokým titrem, vyznačující se t í m, že se provádějí postupně následující operace:
    a) připravuje se proteinový roztok z proteinových složek zbytkové frakce po frakcionaci krevní plasmy nebo jejích podfrakcí,
    b) výsledný roztok proteinů se podrobuje alespoň jednou afinitní chromatografi i s imobilizovanými ligandy alespoň jednoho ligandového typu, přičemž se specifické proteiny plasmy vážou na ligandy a vázané proteiny plasmy se převádějí jako aktivní složky do imunog1obu1 i nového preparátu s vysokým titrem.
CZ19962748A 1995-09-22 1996-09-18 Process for preparing immunoglobulin preparation with high titer CZ286885B6 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP95810596A EP0764658B1 (de) 1995-09-22 1995-09-22 Verfahren zur Gewinnung von Immunglobulinen aus Fraktionen, die bei der Fraktionierung von menschlichem Blutplasma entstehen

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ274896A3 true CZ274896A3 (en) 1997-04-16
CZ286885B6 CZ286885B6 (en) 2000-07-12

Family

ID=8221797

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ19962748A CZ286885B6 (en) 1995-09-22 1996-09-18 Process for preparing immunoglobulin preparation with high titer

Country Status (21)

Country Link
EP (1) EP0764658B1 (cs)
JP (1) JP2952572B2 (cs)
KR (1) KR100236762B1 (cs)
CN (1) CN1089609C (cs)
AT (1) ATE211486T1 (cs)
AU (1) AU715427B2 (cs)
BR (1) BR9603826A (cs)
CA (1) CA2185617A1 (cs)
CZ (1) CZ286885B6 (cs)
DE (1) DE59509979D1 (cs)
DK (1) DK0764658T3 (cs)
ES (1) ES2170788T3 (cs)
FI (1) FI963719A (cs)
HU (1) HUP9602570A3 (cs)
MX (1) MX9604256A (cs)
NO (1) NO963952L (cs)
NZ (1) NZ299394A (cs)
PL (1) PL316126A1 (cs)
PT (1) PT764658E (cs)
RO (1) RO117921B1 (cs)
RU (1) RU2157240C2 (cs)

Families Citing this family (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IT1293119B1 (it) * 1997-06-12 1999-02-11 Mini Ricerca Scient Tecnolog Processo per la separazione di immunoglobuline specifiche da plasma standard e loro utilizzo per trattamenti terapeutici
PT911037E (pt) * 1997-10-23 2002-12-31 Mitsubishi Pharma Corp Preparacao de imunoglobulina armazenavel a temperatura ambiente para injeccao intravenosa
MX2007002085A (es) * 2004-08-20 2007-07-19 Prometic Biosciences Ltd Esquemas de aislamiento y purificacion consecutivos de proteinas mediante cromatografia de afinidad.
EP2233499A1 (en) * 2009-03-26 2010-09-29 CSL Behring AG Antibody composition with altered Fab sialylation
WO2010148117A1 (en) * 2009-06-17 2010-12-23 Scantibodies Laboratory, Inc. Therapeutic and diagnostic affinity purified specific polyclonal antibodies
ITRM20090558A1 (it) * 2009-11-03 2011-05-04 Michele Pitaro Procedimento per la produzione di immunoglobuline estratte da plasma umano ad uso terapeutico neutralizzanti il virus di epstein barr e farmaco contenente dette immunoglobuline
GB201006753D0 (en) 2010-04-22 2010-06-09 Biotest Ag Process for preparing an immunolobulin composition
EA201390156A1 (ru) * 2010-07-23 2014-01-30 Бакстер Интернэшнл Инк. ПРОИЗВОДСТВО ИНТЕР-АЛЬФА-ИНГИБИТОРНЫХ БЕЛКОВ (IaIp) ИЗ ПЛАЗМЫ
ES2531459B1 (es) * 2013-06-10 2015-12-28 Antonio VILA SANJURJO Método para la separación física de "traductomas" convolucionados
FR3018450B1 (fr) * 2014-03-11 2016-04-15 Lab Francais Du Fractionnement Procede de preparation de proteines plasmatiques humaines
KR20150115639A (ko) * 2014-04-04 2015-10-14 전숙영 치료용 면역글로불린 제제 제조에 사용되는 산성 완충액, 이를 이용한 치료용 면역글로불린 제제 제조방법 및 이 제조방법으로 제조된 치료용 면역글로불린 제제
GB201413227D0 (en) * 2014-07-25 2014-09-10 Bioproducts Lab Ltd Process

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4232004A (en) * 1977-09-21 1980-11-04 American National Red Cross Antibody-specific solid phase immunoadsorbent, preparation thereof, and antibody purification therewith
DE3516119A1 (de) * 1985-05-04 1986-11-06 Biotest Pharma GmbH, 6000 Frankfurt Polyvalentes hyperimmunglobulin-praeparat
IL90281A (en) * 1988-06-06 1994-10-07 Miles Inc Preparations containing MGI antibodies

Also Published As

Publication number Publication date
ES2170788T3 (es) 2002-08-16
JP2952572B2 (ja) 1999-09-27
BR9603826A (pt) 1998-06-02
RO117921B1 (ro) 2002-09-30
HU9602570D0 (en) 1996-11-28
NO963952L (no) 1997-03-24
AU6572596A (en) 1997-04-10
KR100236762B1 (ko) 2000-01-15
HUP9602570A2 (en) 1997-08-28
DE59509979D1 (de) 2002-02-07
KR970015745A (ko) 1997-04-28
AU715427B2 (en) 2000-02-03
EP0764658B1 (de) 2002-01-02
JPH09124508A (ja) 1997-05-13
PL316126A1 (en) 1997-04-01
FI963719A0 (fi) 1996-09-19
CN1089609C (zh) 2002-08-28
NO963952D0 (no) 1996-09-20
CZ286885B6 (en) 2000-07-12
HUP9602570A3 (en) 1998-01-28
RU2157240C2 (ru) 2000-10-10
FI963719A (fi) 1997-03-23
NZ299394A (en) 1997-12-19
CN1153063A (zh) 1997-07-02
MX9604256A (es) 1998-04-30
CA2185617A1 (en) 1997-03-23
ATE211486T1 (de) 2002-01-15
EP0764658A1 (de) 1997-03-26
DK0764658T3 (da) 2002-04-22
PT764658E (pt) 2002-06-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5886154A (en) Chromatographic method for high yield purification and viral inactivation of antibodies
KR100501263B1 (ko) 정맥 주사용 면역글로불린의 제조 방법 및 그 외의 면역글로불린 제품
US7186410B2 (en) Method for preparing human immunoglobulin concentrates for therapeutic use
CZ287186B6 (en) Process for preparing concentrate free of aggregation of immunoglobulins G
KR20070009995A (ko) 바이러스 안전성 면역글로불린을 제조하는 방법
KR101917197B1 (ko) 면역글로불린의 정제방법
EP2822965B1 (en) Process for enriching iga
KR102382662B1 (ko) 방법
TWI579301B (zh) 多價免疫球蛋白之濃縮物之製造方法
KR20230136582A (ko) 개선된 면역글로불린의 정제방법
CZ274896A3 (en) Process for preparing immunoglobulin preparation with a high titer
JPH07206708A (ja) 抗d−免疫グロブリンgの濃縮物の製造方法、それを含む製薬的調剤
CN107849086B (zh) 用于制备源自血浆的乙型肝炎免疫球蛋白的方法
MXPA96004256A (en) Method of recovery of immunoglobulin from fractions produced during the fractionation of plasma sanguineo hum
US7041798B1 (en) Method for the chromatographic fractionation of plasma or serum, preparations, so obtained, and their use
TW388763B (en) Method of producing a hyper immunoglobulin preparation from fractions produced druing fractionation of human blood plasma

Legal Events

Date Code Title Description
IF00 In force as of 2000-06-30 in czech republic
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20040918