CZ131899A3 - Polypeptidy obsahující domény proteinu GAX, které se účastní represe transkripce, odpovídající nukleové kyseliny a jejich použití - Google Patents

Polypeptidy obsahující domény proteinu GAX, které se účastní represe transkripce, odpovídající nukleové kyseliny a jejich použití Download PDF

Info

Publication number
CZ131899A3
CZ131899A3 CZ991318A CZ131899A CZ131899A3 CZ 131899 A3 CZ131899 A3 CZ 131899A3 CZ 991318 A CZ991318 A CZ 991318A CZ 131899 A CZ131899 A CZ 131899A CZ 131899 A3 CZ131899 A3 CZ 131899A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
gax
protein
polypeptide
dna
activity
Prior art date
Application number
CZ991318A
Other languages
English (en)
Inventor
Didier Branellec
Alain Fournier
Abderrahim Mahfoudi
Christophe Marcireau
Original Assignee
Rhone-Poulenc Rorer S. A.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Rhone-Poulenc Rorer S. A. filed Critical Rhone-Poulenc Rorer S. A.
Publication of CZ131899A3 publication Critical patent/CZ131899A3/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/46Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates
    • C07K14/47Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals
    • C07K14/4701Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals not used
    • C07K14/4702Regulators; Modulating activity
    • C07K14/4703Inhibitors; Suppressors
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2319/00Fusion polypeptide
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2500/00Screening for compounds of potential therapeutic value
    • G01N2500/04Screening involving studying the effect of compounds C directly on molecule A (e.g. C are potential ligands for a receptor A, or potential substrates for an enzyme A)
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S977/00Nanotechnology
    • Y10S977/70Nanostructure
    • Y10S977/788Of specified organic or carbon-based composition
    • Y10S977/797Lipid particle
    • Y10S977/798Lipid particle having internalized material
    • Y10S977/799Containing biological material
    • Y10S977/80Nucleic acid, e.g. DNA or RNA
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S977/00Nanotechnology
    • Y10S977/902Specified use of nanostructure
    • Y10S977/904Specified use of nanostructure for medical, immunological, body treatment, or diagnosis
    • Y10S977/915Therapeutic or pharmaceutical composition

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Description

Pólypeptidy obsahující domény proteinu GAX, které se účastní represe transkripce, odpovídající nukleové kyseliny a jejich použití κΐ
Oblast techniky
Předkládaný vynález se týká oblasti týká nových terapeutických molekul a léčení kardiovaskulárních nemocíJ J léčiv. jej ich Konkrétně se použití pro
Dosavadní stav techniky
Post-angioplasticá restenóza je lokalizovaná
hyperproliferativní porucha, která se vyvíjí po
nechirurgickém zásahu na úrovni aterosklerotického plátu. Léčení aterosklerotických lézí angioplastickou metodou velmi často (až u 50% případů v některých studiích)' vede k restenóze jakožto následku mechanického poškození stěny artérie.
Proliferace buněk hladkého svalstva (SMC) v cévní stěně je klíčovou událostí ve vývoji aterosklerózy, restenózy v důsledku angioplastiky a také selhání koronárního bypassu.
SMC jsou normálně v cévní stěně ' v klidovém stavu, ale i jestliže dojde k lézi, která zničí cévní endotel, dostanou se svalové buňky do kontaktu s růstovými faktory v krvi.- Na rozdíl od srdečních, svalových buněk a buněk kosterního svalstva se SMC mohou pod vlivem různých růstových faktorů dediferenciovat a tak znovu iniciovat proliferatvní cyklus. tT ýt feno typové * módi f i kace. SMC j s ou -.důsledkem «výr a zných » zxěnw.··-».·»*·-* na úrovni exprese mnoha genů. Tak např^ ^exprese časných genů, účastnících se buněčné proliferace jako jsou c-fos nebo
1« ··· · · · * t ' * » · » · ο « «·· 9 · · · · · · ·
I ···· ♦ » a aaaa a »ae aaa * v a · · · ·' · aaa a » · *<
c-myc, je výrazně zvýšena, zatímco exprese jiných strukturních genů, jako je např. alfa-aktin specifický pro hladké svalstvo a .také některé isoformy myosinu, podléhá negativní regulaci.
Ačkoliv je zcela jasně známo, že terminální diferenciace buněk kosterního svalstva je regulována tzv. myogenními transkripčrtími faktory jáko je Myo-D, je -dosud známo jen velmi má-lo faktorů účastnících se reverzibilní diferenciace SMC. Studie z poslední doby odhalily existenci transkripčních faktorů, které mají homeobox v různých tkáních t
kardiovaskulárního systémů.1 Takové faktory rozpoznají právě prostřednictvím homeoboxu specifické’' sekvence v' promotorovém. useku jejích cílového . genu·.-a podílejí .se tak na 'regulaci buněčné diferenciace, proliferace a migrace. -· Jeden' z- těchto faktorů . „GAX (Growth-Arrest-Sp.ecifuč_.,h:^Hpmeóbpx.ljeexprimován v různých kardiovaskulárních ' tkáních ' včetně SMC cévní' stěny.' .Geh GAX byl původně identifikován 'v čDNA knihovně krysí aorty.,· Kóduje p-rote.in''<Xobsa-h&j ící-'/··. '101aminokyselin. Sekvence byla popsána a cDNA ’by 1,S'Klonována , (Gorski et al., Mol. Cell- Biol. 1993, 6,- 3722-3733} . .Také lidský ' gen byl identifikován, klonován a·, .sekvencován (David F. Le Page et al., Genomics 1994, 24, 535-540)1 Kóduje protein ze 302 aminokyselin. Gen .GAX má některé vlastnosti ‘ - i < ' ' podobné.genům gasa Gadd, neboť se zdá, že také řídí přechod fází Go/Gi .v buněčném cyklu. Hladina GAX mRNA je v krysích ‘VSMC snížena- lOx po. dvouhodinové'' expozici · PĎGF (Gorski et al., Mol. Cell Biol. 1993-, 6, 3722-3733)'. Takže exprese genu. GAX jě potlačena, v průběhu .mitogennl odpovědi VSMC. Další ·~ .^vlastností^gehu^GAX, j e spec i f i čr.o s t „ j eho„ exp r e s e ..^U* dospělých, ' krys je gen GAX v podstatě exprimován v kardiovaskulárním systému (aorta, srdce). Žádná GAX mRNA nebyla detekována »· »·· ·· * * | * · ·«· · · ♦ · • · · ·' t · · · *
4»e » i «. s ? ®9β # 9 í í « » · * * · · * * * »·« · ♦· · · · · · leží ' mezi Je- zajímavé, že. 'dosud se účastní řízení buněčné pomocí northernového přenosu- v-játrech,' mozku, žaludku a kosterním svalstvu. Avšak gen GAX -. patří do rodiny homeotických genů. Tyto gény kódují transkripční faktory, které obsahují konsensní' (souhlasné). sekvence. . (čili homeodomény), které rozpoznávají specifické úseky DNA (čili homeoboxy) ( viz přehled' Gehring et al., Cell '78, 21-223,
1994). Homeodoména krysího proteinu ' GAX aminokyselinami...· 185.,· a ' -245. identifikované- homeotické geny 'diferencicae/růstu v embryogenezi, což podporuje. terapeutický potenciál genu GAX (přehled viz Lawrence a Morata, Cell 78: 181-189,1994/ Krumlauf, Cell 78: 191-201, 1994)·.' '
Jednou -z vlastností GAX je také to·,, že je .pod vlivem negativní’' regulace,, jakmile SMC proli.ferují, a' to buď ;-''ůh .yiĚbog.Iv Odpověď'’.: na.....růstové’ faktor' nebo’ in vivo jako následek -lézí endotelu cévní stěny. Tato represe je reverzibilní,-.. proteze když SMC· jsou in vitro v klidovém stavu ydíky nedosťát-R-u/ '.sérá,' .-exprese GAX pokračuje'., Poslední výzkum v naší laboratoři' -. ukúzal, , že nadměrná exprese (overexprešsion) GAX v SMC navozená adenovirovým vektorem -blokuje jejich proliferaci (FR95/04234 . (ST 95022)).
Post-angio.plastická restenóza po mechanickém poškození představuje nejčastější ,(50% případů v některých studiích) faktor poškození. Přičemž proliferace SMC je klíčovým prvkem / v tomto jevu, a jelikož je . známa role GAX. v jeho regulaci,,, jeví se GAX. jako vhodný ' terapeutický gen pro preventivní ošetření cévní stěny po angioplastice- (FR95/04234 (ST95022)).
Avšak ' mechanismus působení- . GAX je dosud málo , dok uměn to ván .ιφ Je-wtřebaiií-ješběrt-identif ikovatw cílové** sekvence**·
DNA homeoboxu GAX. Také dosud nebyly provedeny studie funkce různých domén GAX. ' Identifikace funkčních partnerů- GAX £ « ·* · <Ί ♦'»·♦······ ··· »··♦···· • ·· e*.í ’ί.-ϊ-ί.ΪΛ*.··.? «ť:?w**r « *-»·*' * · «· · i · · · · * *
.... . . - 4 představuje’další důležitý aspekt, který umožní identifikovat molekulovou kaskádu, na které závisí GAX a jejíž je součás.tí. '
Důležitost předkládaného vynálezu 'spočívá' v tom, že poskytuje informace právě k'těmto bodům.
V průběhu našeho výzkumů byly použity různé analytické metody pro identifikaci molekul, které reagují s GAX, aby 'bylo možné identifikovat domény GAX nezbytné pro tyto interakce, a aby bylo možné zkoumat význam těchto domén pro.funkci GAX. Pro tento účel byl .použit dvojitýhybridní systém, aby -bylo možné charakterizovat proteiny z knihovny z-lidských plic intrágující s GAX. . '
Tento postup umožnil identifikovat * 1 různé ' molekuly, z nichž jedna, a sice ántigen Ki, je zvláště výhodná. -Ántigen Ki je protein velikosti přibližně 32 kDa.. Byl 'poprvé
--identifikován jako·· jaderný autoantigen ·rozpoznávaný sérem,’ které bylo získáno oď pacientů trpících lupus' erytheraatosus.· (Nikaido et al·., 1989, Clin. Exp. Immunol. 1990, 79, -209-214} . Nedávné výzkumy, ukázaly, že Ki je nadměrně exprimován .v proliferu-jících buňkách .nebo v buňkách transformovaných . onkogenem (Nikaido . et al., 1989, Exp. CEll Res . 182, 284289) . ' ' Pokusy s koimunopreeipitací '(T.akeushi et al., abstract 1995 Juntendo University,' Tokyo, Japan). ukázaly, že Ki se vyskytuje, ve formě- komplexu s PCNA, markérem prolifeřace (Almendrál et al.,. 1987, Proč.· Nati. Acad. S.ci. USA' 84, 15751579). ’ ' ' . . i
Funkce GAX byla také .zkoumána v pokusech s přechodnou
I 0 transfekcí savčích buněk, pomocí genu GAX fúzovaného i^s* heterologní*„DNA)e,vaz,ebnoui.doménou^a»*réportérovým-»sýstémem,wt.
což umožnilo získat informace o transkripční aktivitě GAX po deleci různých úseků molekuly. Ukázali jsme tak, že, GAX « v · • $ · ···· • · · * β í »9«9 • · ♦ • r a *· »· · · · « ·' · as9 a a · « · • e· působí v podstatě jako represor transkripce. Tato represorová aktivita je. spojena zvláště s prvními 32 aminokyselinami GAX. Dále jsme zjistili, že represorová 'doména je lokalizována v úseku GAX (1 až 222), který v kvasinkách vyžaduje interakci s-Ki. Možnosti využití represorového charakteru GAX a jeho interakce s Ki budou podrobněji popsány dále.
Podstata vynálezu ......
í . .
První aspekt předkládaného' vynálezu se týká fragmentů proteinu GAX, které mají biologické vlastnosti.·
Další aspekt vynálezu se týká domén GAX, které se., podílejí ha biologické'·' aktivitě -GAX. To mohou být- zvláště domény účastnící· se interakce GAX s'jinými molekulami nebo domény zodpovědné za biologickou -akt i Vitu,. - ·-,','
Vynález še také týká· chimérických molekul obsahujících·.
funkční doménu GAX (represi) exprese inhibují interakci
Týká se-také použití GAX pro potlačení, genů, a. také - použití, y sloučenin/.;'· které
GAX s určitými ’ buněčnými’ piartnéry' ;pr,ó * i modulaci aktivity GAX. Vynález se’- také y. týká způsobu f 1 · screeningu (vyhledávání). a/nebo identifikace buněčných’ i - - } i partnerů GAX. Jak' již·· bylo dříve uvedeno, gen GAX má zvláště .výhodné . '' , vlastnosti pro použití v genové terapii hyperproliferativních poruch; zvláště r.estenózy nebo jiných .poruch spojených s proliferací SMG.'· V patentové přihlášce FR95/04234 -.(ST95022) ' bylo ukázáno, .že přenos genu GAX in yivo umožňuje významně snížit p-roliferaci SMC a tím inhibovat redukci luminálního «p r úměr u. ^V* při h 1 á š c.ew FR 9 5 ý 12 8 ;71 (Ξ.Τ 9 5 0 5 7.) by 1 o „ t a k é u k ázáno, že .gen GAX, exprimovaný v nádo-rových buňkách, umožňuje blokovat procesy buněčné transformace. Tyto různé údaje 'ů * 4» 4 »1 44 • 444 «»«4 ♦ 4 4 4 -> «44« »444 44 9 9444 4 49« 444
4 4 4 4 4 €4 4 4 4 ·· ukazují na značný potenciál genu GAX pro'· terapeutické využití.
Přihláška předkládaného vynálezu popisuje identifikaci funkčních domén GAX, konstrukci derivátů GAX vykazujících biologickou aktivitu, .identifikaci partnerů proteinu GAX a vývoj metod, které umožňují testovat jiné partnery a identifikovat sloučeniny schopné interakce s aktivitou těchto.partnerů. Přesněji řečeno, původce ukázal, ze protein GAX ’ projevuje aktivitu jako represor transkripce. Také' ukázal, že aktivita je nesena určitými úseky proteinu GAX, zvláštěpak N-koncovým úsekem. Kromě- toho- výsledky uvedené v příkladech ukazují', že funkční domény GAX se také účastní interakce GAX s buněčným proteinem Ki. Je známo . z literatury, že Ki reaguje s PČNA (Takeushi et al.,' abstract ' 1995· Juntendo ' .Universitýp·4'· Tok-yo,.· Japan)r‘-a že 'PCNA· je nezbytný kofaktor .pro
DNA- polymerázu pro replikaci DNA (Fukuda eť al., .1995, J.
. 3iol. -Jihem·... 270.;· .22527-22534} .' V příkladech bylo také.
ukáz'án.d, 'Jžě-'-GAX réáguje'· s-PCNA, takže je možné· předpokládat, že’ GAX . by/.’také mohl' být součástí replikačního komplexu v buňce. ·,··.··
Prvním předmětem předkládaného vynálezu je .pol.ypepťid, který je buďto celý nebo částečně, fragmentem proteinu GAX, který má transkripční represořovou aktivitu a/nebo, pozitivně či negativně ovlivňuje replikaci DNA. ' .
Výhodnější polypeptid’ podle ’ předkládaného , vynálezu obsahujé přinejmenším.aminokyselinové zbytky ! až 32 lids.kého proteinu GAX. . '
Podle jiného provedení předkládaného vynálezu polypeptid rtob sáhuj e al espoň „aminokyselinové^, zbytky.* 10 4«, a ž»*· 2-30^ lidského, proteinu GAX. . ’ • -» ·» ft ·· *« »i · · k · · · · • « « · · · ♦ k · · · « <·09 « « 9 9··β A 999 999 · 4 · · · ·.
Ι<· « «* · · ♦ « ·
Jako specifi-cké 'příklady polypeptidů podle, předkládaného vynálezů je možné uvést polypeptidy -obsahuj,ící fragmenty zahrnující úseky aminokyselin 1 až 32/ 33 až 302 a 1' až 104 lidského proteinu GAX. Příklady uvedené v .další 'částí ukazují, že takové polypeptidy jsou 'schopny inhibovat-'. transkripci genů a proto uchovávají transkripční represorové vlastnosti GAX.
výhodněji obsahuje uvedený polypeptid navíc, kromě' fragmentu proteinu GAX podle předkládaného vynálezu,, fragment jiného původu. Fragmentem jiného původu se rozumí., polypeptidový fragment,. , který nepochází z proteinu GAX. Může' ' to tedy být jak umělý,' syntetický fragment, tak i . fragment? prpt.e.inu .„apo,d:..„_.;T.ěň.t o_ ..fragment. „j.iného .._půvo du.... mů ž.é—mít-^rů zné.—' funkce.
Může. to být např; markér, který umožňuje -detekovat·' polypeptid' a případně ho sledovat ίη'νύνο. Takovým markérem může být např. epitop rozpoznávaný monoklonální protilátkou.i V odborné literatuře byly popsány mnohé značkovací. sekvence/ .t_zv..___t.argm.s.e,k.v.e.n..c.e.,.^k.t.e.r.é’ s.e__ob.v_y.kl.e použú-vaj-í---Lze—náp-ř— zmínit sekvenci tag-myč. '
Tento fragment může být také fragmentem, který má tu' vlastnost, že stabilizuje polypeptid. . Díky tomu pak celý protein nebo jeho' část má delší plazmatický poločas.: ,
Nakonec to. může.být i^cílový prvek, který'umožňuje, aby <
polypeptid' dosáhl 'rychleji a/nebo s-větší specifičností požadovaného buněčného kompartmentu. Výhodně.· tc. může být .
1 . 1 Ϊ jaderná -lokalizační sekvence (NLS), polypeptid vykazující . svou. aktivitu v-buněčném 'jádře: V odborné' literatuře byly * popsány různé signály NLS, např. signál T antigenu viru 'SV40, signál p53 apod. .
» * 9 • · » · • ι· ♦ · 0 « ···β « 0 • · « ··· · c· ·· ·· • · · * * • · · ' ♦
99» »»» • · # a- μ ·*
Fragment j inéhd ·původu může navíc udělovat polypeptidu· další biologickou ' funkci nebo může podporovat aktivitu represorové domény. Jako zvláště výhodný příklad je možné zmínit proteinovou . doménu schopnou vázat se na DNA specifickým způsobem. Takový, typ .chimérických molekul umožňuje vázat ' DNA ve specifických úsecích a ‘inhibovat transkripci genů· lokalizovaných v těchto úsecích. Jako příklad je možné uvést· DNA vazebnou'' .'doménu, kvasinkového proteinu GAL4. Takový konstrukt, je popsán v příkladech. Tyto konstrukty lze použít pro regulaci, exprese genů v kvasinkách nebo genů, které jsou řízeny expresními signály obsahujícími vazebné místo pro protein GAL 4. Jiné proteinové domény -pro ______vazbu DNA_ ~jsou např. Lex... A, .. DNA. „ .vazebná.,„doména..._.j!.ade.rn.ého.„.
receptoru jako je .např. estrocfe.nový-receptor ' nebo jakýkoliv jiný- člen této rodiny' -apod. -Může7’.· to' také'úbyť peptid, -který umožňuje na jedné straně sekreci celého nebo části GAX. a. na .druhé straně jeho'· cílení ' ..na . membránový j .récepto.r, který, umožňuje jeho' internalizaci a tím'*' zvyšuje .schopnost ' difúze a aktivitu domén GAX, což, se/ nazývá, _e.f.e.k.t.em__t.yp.u_ nezúčastněného'diváka('bystander effectJ . V tomto smyslu je možné použít .zvláště, celý transferin .nebo jeho · část nebofragmenty .molekul .extracelulární matrix,- které rozpoznávají integriny na povrchu SMC.
Polypeptidy podle předkládaného vynálezu jsou zvláště důležité z hledis-.ka . terapeutického využití a také z hlediska, .aplikovaného výzkumu. , .' ;
• Terapeutická aktivita polypeptidu podle .vynálezu je' spojena s jejich schopností potlačovat transkripci .nebo ^cvl i vňo vať~r ěp li kac r DNÁ7~aHalog icky*j alí^*^ ťe i^GAÍ?'“]'i* proto kapacitu regulovat expresi jiných proteinů.
* · « · « »··· • ·* » > · b · · * v · · · · I » * * • 4 <
«· «· ♦ * v ♦ · ·« «· «
** ·- 9 -
Vzhledem k tomu se předkládaný vynález týká také použiti proteinu GAX nebo jeho fragmentu podle vynálezu pro represi' genové transkripce a/nebo pozitivní neb negativní ovlivnění t replikace DNA.
Také vzhledem k analogii 's chováním proteinu GAX, mohou tyto fragmenty výhodně nahradit GAX ve funkci- represořu ' , 1 * I 'transkripceAvšak za předpokladu, že z proteinu'GAX obsahuji cel.ou. .nebo část domény,·' 'která se- podílí na represi transkripce,'. j e možné se domnívat, že budou méně citlivé -na různé změny, kterým je protein GAX vystaven. .· Tyto
-· polypeptidy,samy o sobě' nebo jejích deriváty, mohou projevovat, ve zvýšené míře transkrip-ční represní vlastnosti, ve 'srovnání s přirozeným proteinem GAX.
, . ' ' , Také- lze předpokládat jejich použití pro identifikaci· y'-.k .. -•-7<:’ribvý'chj':-p’a:rtn:eřů-r'prot'einůGAX.· Vz-hiedem' k-tomu je předmětem předkládaného vynálezu ' také způsob . screeningu a/nebo .-^identifikace· polypeptídů interagujících s„ proteinem GAX nebo:
..V-ty sjdoménami'.'GAX,'·'-spočívájící . v tom, že se používá polypeptid ' . podle vynálezu.' Výhodněji se polypeptid vybere z fragmentů obsahujících aminokyseliny 1 až 32 a, 33 až. 302 z proteinu GAX. ' ·. . . ,
Původce neočekávaně ukázal, že doména proteinu GAX může specificky reagovat s jiným buněčným proteinem, a sice proteinem Ki. Jak .již bylo vysvětleno dříve, Ki je autoantigen, který se- vyskytuje v průběhu auťo.imunitních onemocnění jako je lupus erythematosus. Byl popsán, jako jaderná .molekula, jejíž -exprese, se zvyšuje, - v průběhu proliferace. a také při transformaci fibroblastů o.nkogenem. ^^^^...Ukázal i. jsme ž e^.u^ kvas ine k-^j e ~ N- koncová «·» čá st—GAX · nezbytná pro interakci s Ki. Rekombinantní protein Ki • «' ·-· « ·» ·ί •« · «··* «·*.« « · · · » « · · « ·»»· · v · ···· · ··· ··· v « · · · • ν· · ·· , « · · ·· rozpoznává specificky GAX přenesený na nitrocelulózovou membránu z ďenaturačního'polyakrylamidového gelu.
Předkládaný vynález, se také' týká polypeptid, který je fragmentem proteinu GAX-.schopným reagovat s proteinem Ki., Ί Výhodněji je 'to fragment zahrnující aminokyseliny -1 až í
nebo 104 až 223 z proteinu GAX.
Velmi'překvapivě ukázal původce také, že doména proteinu
GAX může specificky interagovat s markérem proliferace PCNA (Proiiferating Cell Nuclear, Antigen) . Kromě toho bylo již popsáno v odborné literatuře, že Ki se vyskytuje, vě formě komplexu s PCNA. Ki proto zřejmě reaguje jak s GAX -tak s PCNA, a to tak, že vytváří přinejmenším bipartitní komplex _______s jedním z „těchtcg prpteinůc__á_výhodně.„třip.ar.t.i.t.iní „.komplex...___
Vytváření těchto komplexů hraje hlavní roli v. průběhu. - ; buněčného cyklu (aktivaci nebo-'inhibici) . - Takže • předkládaný · vynález se táké týká ' polypeptidu, který je fragmentem proteinu GAX schopným, interakce s Ki a/nebo ' PCNA,' - -/ ..:
a vytvářejícího alespoň bipartitní nebo alespoň tripartitní '·’ //' komplexy s těmito proteiny._ _„_
Další předmět předkládaného vynálezu se- týká 'jakékoliv nukleové kyseliny kódující polypeptid,.jak je definován výše.
• {
Může to být sekvence přirozeného nebo umělého původu, zvláště pak genomová DNA,' cDNA, mRNA, hybridní . sekvence nebo. ' .· syntetické Či sem-i syntetické sekvence. Nukleová kyselina může ' být· z člověka·., zvířete, rostliny, bakterie, viru atd. Lze- ji získat jakoukoliv technikou, známou odborníkovi,- zvláště screeningen knihoven, .chemickou' syntézou, případněkombinací f
různých metod, včetně chemické nebo enzymatické modifikace·
... s e k'y e nce*“ z i s kahě*scr e eh i n g em k*n i KovenT* Ť y t c·1' nu 1-:1 e o ve* kyTel'i n y mohou' být vloženy do vektorů, .jako jsou např. ' plazmidové vektory.· ’ ’ ♦ · ·· • ·· · ♦ · ·.
předkládaného « a ·«* · *
- ii - ;
Výhodně je nukleová kyselina podle vynálezu cDNA.
Nukleové kyseliny podle vynálezu se mohou využít pro přípravu sond nebo antisense molekul {s orientací proti směru normální 'transkripce) , které pak metodou hybridizace umožňují detekovat přítomnost nebo expresi -nukleových kyselin • kódujících polypeptidy obsahující represorové domény podle vynálezu, nebo inhibovat expresi takových polýpeptidů. Co se týká sond, ty výhodně obsahují více než 10 baží, výhodněji 10 až 300 baží; ' .
Nukleové .kyseliny 'podle vynálezu se mohou užít pro expresi a/nebo produkci polypeptidu in vitro, in vivo nebo ex vívo pro účely genové nebo buněčné terapie.
Proto se předkládaný vynález týká y-t-aké , expresní kazety, která obsahuje r.ukleoyóu '.kvseiiňu popsanou výše, která je řízen promotorem, který dovoluje její expresi. V rámci vynálezu je možné-.užit' různě'promotory. 'j soů to. sekvence,· které- umožňují' exprés-i-- nukleové '.kyseliny v savčí . buňce. · .
Promotor je' výhodně vybrán, z promotorů, které jsou funkční v lidských buňkách. Výhodněji je to takový promotor-,' který umožňuje ' expresi sekvence nukleové kyseliny v hyperproliferativní buňce (rakovinná buňka, restenóza apod.j. Mohou .se tedy použít různé promotory. Může to být jakýkoliv promotor, nebo z něho odvozená sekvence stimulující nebo reprimující (potlačující)·.' transkripci genu specificky nebo nespecificky, indukované nebo neindukované, silně nebo slabě. Lzé uvést zvláště promotorové sekvence eukaryotických nebo^virovýchw· genů -Tak**· nap řť*** to ”*mo ho u“ být** promotorové’ sekvence pocházející z genomu. cílových ' buněk. Mezi eukaryotickými promotory mohou být zmíněny zvláště všeobecně « « ** 4« fr · » • « * « v « ····»« * • · · «·« · ·♦ '· »· # • « · # · • * * » · · • · * * « «·· ··» • « · * »* ·· rozšířené promotory {jako např.. promotor genů HPRT, PGK, alfa-aktinu, tubůlinu, DHFR apod.), promotory intermediárních' filament (promotor GFAP,' desminu, fimentinu, promotor genů neurofilament a keratinu apod.), promotory terapeutických *genů (např. promotory genů MDR,. CFTR, faktoru VIII a Apol apod.), tkáňově specifické promotory (promotor genu pyruvátkinázy-, -villinu, střevního proteinu vázajícího' mastné kyseliny, nebo alfa-aktinu hladkého, svalstva apod.), buněčně specifické promotory dělících se buněk, jako jsou' např. rakovinné buňky, nebo promotory odpovídající na podnět (receptor steroidních' hormonů, -recéptor kyseliny retinové, glukokortikoidový receptor apod.) a nebo· tzv. inducibilní. promotory.. také to- -moho-u být -promotorové sekvence odvozené
-----z-tvi-řového-'-genomu,· -jako jsoun“ápř.' promb tory genů ΈΪΑ.' ”a MLP ‘ adeňovirů,:yčasňý promotor . CMV ' nebo promotor LTR RSV apod. navíc- mohou být promotor úseky modifikovány připojením ,, aktivačních. nebo..-regulačních sekvencí dovolujících tkáňově spécifick&ú nebo-převládající expresi.
Předkládaný vynález- poskytuje . terapeutické agens, které —umd-ž-ňu-j-e——t-í-m-7-ž-e—má s'ch'opn'o's't potlačovat! transkripci, zasahovat při různých buněčných dysfunkcích. Nukleové kyseliny nebo expresní kazety podle 'vynálezu se mohou injikovat jako takové přímo do místa, které má být ošetřeno, .nebo .se mohou' inkubovat přímo s buňkami, které mají být· ošetřeny nebo zničeny.. Bylo. vskutku publikováno, ž,e nahá .(neobálená) DNA . může . proniknout do buňky bez zvláštního vektoru. Avšak podle předkládaného' vynálezu je výhodné pro podávání použit vektor, který- umožní (I) zvýšit účinnost .průniku do buňky, (II) zlepšit zacílení a (lili zvýšit extray.
a- intracelulární stabilitu.
·· »♦ ι ·. · ♦ · * • » ♦ « ♦·· ♦ * ♦!*·»· ·*· • » »·
I
Ve zvláště výhodném provedení předkládaného vynálezu je nukleová kyselina nebo kazeta vložena do expresního vektoru. Použitý vektor může být chemického původu (liposomy, nanočástice, pěptidové komplexy, lipidové nebo kationtové polymery apod.), virového původu .(retroviry, adenovirý, herpetické víry, AAV, virus vakcinie apod.) nebo.p.lazmidového původu. ... . -..
Použití virových vektorů je . založeno ňe přirozených transfekčních vlastnostech virů. Je možné - takto využít retroviry, adenovirý, herpetické viry a viry asociované s adenovirý. Takové vektory se ukázaly z hlediska transfekce. V tomto· směru je předkládaného 'vynálezu defektní rekombinántn-í retrovirus; iuj.eho.ž—..'genom- obsahu-je -nu-kieovoď 'kyselinu' 'podlé 'vynálezu? dalším· 'předmětem·· -vynalezu je defektní rekombinantní adenovirus, jehož genom,obsahuje nukleovou kyselinu popsanou výše.
Vektor podle předkládaného vynálezu může být také ag-ens jiné než virus, schopné podpořit přenos a. expresi nukleové _k.ys,elin-y—v— euka-rys-fe-i-ek-é—buňce-—-Chemické—rréb’0 KočKěmfckeT’
Ί syntetické nebo' přirozené vektory představují výhodnou alternativu . k přirozeným virům, zejména vzhledem >k jejich pohodlnému použití·, bezpečnosti a také vzhledem k tomu, že nemají žádný horní limit co se týká velikosti přenášené DNA. tyto syntetické vektory mají dvě· hlavní funkce, a sice j zhutnit . DNA, . která je přenášena, a. podpořit .její přichycení k buňce, á také podpořit její průnik do buňky přes plasmatickou membránu,, a pokud je ' to třeba, také přes zvláště účinné výhodným podle dvojitou jadernou membránu.
povaha nukleových polykátiontové náboje.
Aby se překonal polyaniontová' kyselin mají nevirové vektory • >*·· « · φ»« · ' ·· * • · • · · φ' Φ « Φ 1 • · · φ · · · •
• * ·.
φ · φ • »· · «« φ
- 14 - - i
Nukleové kyseliny nebo vektory' podle předkládaného vynálezu mohou · být formulovány 1 pro podávání topickou, perorální,' parenterální·, jntranazální, · intravenózní, intramuskulární, subkutánní, intraokulární'nebo transdermální cestou apod. Výhodně se nukleová kyselina nebo vektor podle1 . .
vynálezu· použijí v injikovátelné formě./ Mohou se proto smíchat .s jakýmkoliv,farmaceuticky přijatelným vehikulem-pro ' injekční' přípravek, zejména -pro 'přímou inj.ekci na., úrovni . ošetřovaného místa. To mohou být zejména izotonické.-sterilní , roztoky nebo suché, zejména lyofilizované, přípravky, které po přidání, v.· závislosti na případu,' sterilizované vody nebo fyziologického roztoku, umožňují přípravu roztoků pro injekce,. Dávky, nukleové kyseliny pou-žité--pro· injekci, · a· -také -•počet·—podá-v-án-í-r--mů-ž-e.—být—up ra ve no- - ~v—zú visTo 'Sťi^ŤnaJ' různých'“'' parametrech, a'- obzvláště' · v /Zúvisípst-i^· na.'-cgehu/' vektoru, způsobu, podáváni, příslušné patologie, ' nebo- -alternativně požadované délky léčby . , .. ‘;.··. ···
Vynález se také ' týká·' jakéhokoliv ./farmaceutického l1' přípravku obsahujícího'' alespoň jednu . nukleovou- kyselinu. -definovanou—výše-—--:—: ---“— :—
Vynález se také týká jakéhokoliv .- farmaceutického přípravku obsahujícího alespoň jeden.vektor definovaný;výše.
Vzhledem k jejich antiproliferativním ’ vlastnostem jsou. farmaceutické přípravky podle předkládaného vynálezu zvláště' vhodné léčeni hyperproliferativních poruch, jako jsou zvláště rakoviny a' reštenóza; Předkládaný vynález tak poskytuje zvláště. účinný způsob , destrukce . buněk., zvláště hyperproliferativních’.· buněk. Je proto využitelný pro • . , . t l destrukci nádorových buněk nebo buněk hladkého svalstva cévní
.....|l, I l|i 1111,IIII >11i***>*,(*Wmi*,í,^***‘*^mí 11 «II «WWMMWW»** stěny '{restenózy) .. Je zvláště vhodný pro' léčení rakoviny. Jako· příklady lze uvést střevní adenokarcicnomy, rakoviňu ·« « « ' ·« ·· * · · * · · • t « v ·« · • ·♦·* » »·♦ ·»· * · · . « * «« »·
1.5 štítné žlázy, plicní karcinomy, myeloidní leukémie, kolorekťální karcionomy, rakovinu prsu, plicní rakovinu, rakovinu žaludku, rakovinu jícnu, ' B-lymfomy, rakovinu vaječníků, rakovinu močového měchýře, glioblastomery, hepatokarcinom, rakovinu kostí , kožní rakoviny, rakovinu pankreatu, ledviny nebo prostaty; rakovinu hrtanu, rakoviny hlavy ‘ a krku, anogenitální rakoviny s HPV pozitivitou, EBV-pozitivní rakoviny nosohltanu'·apod.
Kromě toho se předkládaný vynález týká jakéhokoliv použití sloučenin inhibujícich aktivitu proteinu. Ki a/nebo PCNA pro inhibici proliferace buněk hladkého svalstva.
Předkládaný vynález se také týká použití sloučenin podle ' . vynálezu pro vytváření bi- a. . tripartitních . komplexů ____s „P.roteinenem....Ki. .a/nebo.....PCNA -p-ro - pozi-t-ivní -nebo· -negativní—' . ovlivnění, průběhu'’buněčného .cyklů.' .·
Předkládaný' vynález' je .dále podrobněji popsán pomocí příkladů.a obrázků, .které mají vynález ilustrovat a v žádném případě ho nijak- neomezujd.yv.Ů'-'<·.
Popis obrázků . .
Obr. 1.: Northernová analýza exprese proteinu Ki na mRNA extrahovaných z různých tkání. , . '
Obr.' 2.: Jaderná lokalizace KiHA v transfekovaných buňkách detekovaná imunoflůorescenční metodou.
Obr. 3.; Interakce in vitro mezi proteiny GAX aKi detekovaná ;|r .·........... jr.r|[·,.,..,. .... - ................ .. ................r.i.;iT-·-;-'..-Γ.'-·πΓ -.......‘ ~~ - a) obarvením pomocí Coomassie modři.
b) Far-westernovou analýzou. ' • * ·· > ' ·· ·· . > · · · · e a « «1 # a · a a · · < · « · /' a, ···« * a · »· · ««» aaa * a a a a a a aai a aa a «· a·
Obr. 4. :
A} Schéma konstrukce reportérového genu exprimujíčího bakteriální , chloramfenikolacetyltransferázu ' (CAT) pod kontrolou umělého promotoru.
B) Test enzymové aktivity CAT (CAT-assay) v.buněčných ·' '.extraktech po transfekci expesnimi vektory obsahujícími ER, ' ' 'GALVPlo a ER-GAL VP16. ' '
Obr. 5.: Porovnání konstruktů různých delečních mutantů GAX s celým proteinem GAX (aminokyseliny 1 až 302)
Obr. 6.:' Test enzymové aktivity CAT (CAT-assayj různých -''C-C ý)čhiměř”GAL-GÁX 1 . A) bez-aktivátoru ER . ,
B) s aktivátorem ER.
;','ÁObr.. 7.: Interakce'mezi GST-GAX a PCNA.
Příklady provedení vynálezu
Materiál a metody '
Zde uvádíme přehled materiálů ' .a metod použitých v následujících příkladech
A) Materiál '
1) Použitý kmen kvasinek:
, Jako nás troj „,.pro_te shovění, fú zní, kniho vnyw z „pl icn i tkáně« dvojitým hybridním' systémem byl ' použit kmen -YCM79
5. cerevisiae (MATa, ura3-52, his3-200, ade2-101, lys2-801,.
• » ·· · ··' ·· • < · · ·' · · · ,· ♦ a ť.· · · » ♦ · · . ·
1^···· · · · ···· · ·· ·*· • · · · · · · ««· · *· * ·· ·· trpl-901, leu2-3 112, canl, gal4-54, gal80-538, metl6:URA3Pgall IOIACz, HIS3::GAL7BLE) . '
Kmen se.pěstoval v následujících kultivačních médiích:
YPD kompletní médium: - kvasinkový extrakt (10g/l) (Difco)
- Bactopeptone (20g/l) (Difco)
- glukóza (20 g/1)' (Merck)'
Médium bylo zpevněno přidáním 20 g/1 agaru (Difco).
YNB minimální médium: - kvasinkový dusíkatý základ (bez amino-kyšelín) (6,7 g/1) (Difco)
- glukóza (20 g/1) (Merck)
Médium může -být zpevněno přidáním 20 g/1 agaru (Difco). .
Aby se na tomto ' médiu umožnil ýrůst auxotrofn.ích' kvasinek,·' 'je nezbytné k‘němu; přidat aminokyseliny- nebo·.' dusíkatou’ bázi7 kterou”'potřebují,“ v množství 50 m'g/ml .· '”· ......
2) Použité kmeny bakterií : ’
Jako· prostředek pro amplifikaci a izolaci použitých rekombinantních plazmidů byl použit-kmen TG1 E. coli' genotypu'' supE, hsdDS, thi; O(lac-proAB) , F' [tra D36 pro A+B+ laclq. . lačŽĎMTS]-: : ~ 1—;-'——;-—
Pro produkci rekombinantních proteinů se ' použily bakterie. E. coli ,BL-21s získané od firmy Pharmacia. Mají genotyp -F’ ompT hsdSD (rt-Kb'} 9&1 dcm (DE3) . '
BL-21' jé vhodný ' kmen pro tvorbu rekombinantních proteinů, protože nemá žádnou próteázu a jeho- membrána je fragilní a .ize ji snadno porušit pouhou sonikací.' E. coli BL-21· má systém pro , represi RNA polymerázy T7. Tato represe., může být zrušena IPTG, což umožňuje kontrolu genů umístěných downstream (po směru čtení·), od vazebného místa- pro RNA
I*’·· ....... .- '. OK. ............................... 11111^1*1 ................ ( I ..........................ι·ιιιιιιιιμ·>·ι<.ιι* .· ...........................
polymerázu T7. Bakterie'jsou pěstovány ve 2 ml LB média (NaCl 5 g/1, Trypton .10 g/1, kvasinkový extrakt· 5 g/1) ve třepačce .
• 9 * ♦ ·· · »· »· · ♦ « · « · · «·· · · · · · · '· s** ·-, ·»· · » · ♦····· ··· « 4 · · · · ««· · ·· · , *· , **
- 18 - · - · . ' při 37 °C přes noc. 1 ml této předběžné kultury se pěstuje opět v 50 ml' 2χ·- YT média (NaCl .5 g/1, Trypton 16 g/1, kvasinkový extrakt 10 g/1) ve 37 °C, dokud bakterie nedosáhnou optické denzity. (OD) 0, 4' při 600 nm (exponenciální růstová fáze) . Bakteriální kultura se zchladí na ledu a odstředí se ve 3300 rpm po dobu 20· minut. - ,.
Kompetentní .. bakterie ; ' coli ' .pro produkci rekombinantních proteinů jsou připraveny kalei-umchloridovou metodou. To se’ učiní tak, že bakterie se dají do 5. ml roztoku 0,1 M CaCl2 (1/10 tkáňové kultury), opět se stočí vé 33,00 rpm po dobu 10 minut. Pak se opět; dají do 1 ml roztoku 0,1 M CaClí obsahujícího· 17/5 % glycerol. Bakterie se rozdělí na poměrné části''a' uskladní při -8,0’-°C. ‘ '3) Použité plazmidy: ' .· - ' ’ ' ' ' .· ' '
Byly použity vektory' řad pGBT -a pAS (Clontech) , kyvadlové- (shuttle) plazmidy, , které/-maří kvasinkový a bakteriální počátek replikace, ·-.'‘který“Λ>~}ίιη *·umožňuje replikovat se v těchto dvou organisméch vyso-kým počtem·· kopií. Tyto plazmidy obsaEuj_í - mhohbcěŤňě Jclonovací místo- (polylinker) situované po směru čtení’ od sekvence' kódující DNA vazebnou doménu GAL4 a proti směru čtení, od’ terminátoru, pro vytvoření fúzního' proteinu·. Obsahují také gen TRPÍ ze 5/ cerevísiae, který umožňuje , geneticky kompléméntovat kvasinky genotypu trpí tak, aby bylo možné je selektovat na minimálním -médiu neobsahujícím tryptofan. Tyto vektory nesou gen pro ampicilinovou rezistenci, který umožňuje selektovatbakterie, který ho mají, na médiu obsahujícím ampicilin.
Vektory., řady, pGAD (Clontech) jsou vektory, které umožňují v kvasinkách expresi fúzních proteinů mezi třansaktivační doménou GAL4 a požadovaným proteinem nebo • 00 0 00 00 0 0 0 0 0 »- 0 0 '0 · · 0 0 · 0r · '0 ·
000· « 0 0 0000 · 000 ···
0 0 0 · * • ·· ·' ·* ··
- 19 proteinů kódovaných cDNA' získanou z plicní knihovny, vloženou na úrovni místa EcoRI-Xhol,
Vektory řady .pET29 (Novagen) jsou vektory, které
umožňují expresi rekombinantních proteinů v E. coli
fúzovaných se značkou.S (S tag).
Vektory řady pGEX (Pharmacia) .jsou. vektory, které
umožňují expresi rekombinantních proteinů v- E-. coli
fúzovaných s .glutathion-S-transferázou (GST) ..
.-Vektory 'řady Bluescript (Stratágene) a také vektory řady pI.C (J. Lawrence Marsh et al., Gene, 32, ' 481-485, 1984) a pMTL (Steve P'. Chambers et al., Gene, 68, 139-149, 1998)
- jsou vektory, .které umožňují provádět' klonování.
-plazmid pGEX-2T-hGAX je plazmid pou-žitý pro transformaci '“'bakterii-' El Včoií' *ΒΙ-2Ϊ1 Tento ' plazmid‘ byl“'získán Z plazmidu......- -......
pGEX?.2T' a-: byl-; -poskytnut '-Dr. K. ·-Walshem. z St. Elizabeth's Medical ’ Center v Bostonu·. Základní plazmid pGEX-2T (Pharmacia) umožňuje .produkovat protein GAX fúzovaný s gluťathlon-Srtrá-hsěráz'oú (GST) , protein, který má 'silno.u afinitu-pro’glutathion? Fúze GŠT-GAX usnadňuje purifi-kaci GAX afiňí'fbu k , agarózovým pěrlTckánr s: rn'a'vá'z'a'ným g!u'tathřonem~ —1——
Kromě toho existuje štěpné, místo pro trombin,'. které pak umožňuje štěpit chiméru mezi GST a GAX. Pod kontrolu hybridního promotoru tac a operátoru lac je vložena cDNA hGAX. Represor láci připojením.k operátoru lac zabraňuje RNA polymeráze v posunu: Tato represe je zrušena analogem, laktózy, íšopropyl-p-D-thiogalaktosidem (IPTG), který se . spojuje s láci. Komplex lacI-IPTG se. nemůže již dále vázat . k operátoru lac, tudíž není déle .překážka pro RNA polymerázu.
|W> .............. W I '1,1 ................................................... li mil ||Ι|<||<|Μ*000·Φ0ΙΊ||^ i 0 • ft · · · · ··· ··« · ♦ ♦ · • * · · ♦ · · · * · · ,·^ ·««· » · · ·«·«' · ··· ··· ··'«· · ·»» «' ·· * ·· ·· . . -. .- . . - . - 20 - ,
4) Protein Ki ,
Příprava a purifikace
Klonovali jsme gen pro protein Ki fúzovaný k epitopu myc v plazmidu pET-29 (Novagen) z plazmidu pGAD obsaženého ve kvasinkách. Plazmid' pET-29- .produkuje protein· fúzovaný k epitopu nazvaném značka S, který , umožňuje purifikaci KI áfin-itou k agarózovým kuličkám s navázaným proteinem S... <Chiméra SmycKI je pod kontrolou promotoru T7- a operátoru lac. BL-21s jsou transformovány plazmídem pET-29-mycKI,. Jako v případě proteinu GST-GAX jsou bakterie pěstovány dokud se. nezíská- OD 0,7 při 600 nm,'Pak je indukována exprese SmycKI 0,1 mM IPTG a RNA polymerázou T7 tvořenou' BL-21s. Bakterie jsou -Sonikovány.· Supernatant - se pak purifiku.je následující 'metodou’;------Purif ikace—SmycKI-. se --provádí- a-fini tni---metodou-
- s,'agarózovými perličkami ' s navázaným proteinem Ξ . Metoda je •stejná- jako pro. GST-GAX kromě toho, že pryskyřice se' promyje -v roztoku obsahujícím 20 mM Tris pH 7,5, 0,15 M.NaCl á 0,1% Triton- X-100. Eluce a dialýza jsou- stejné jako pro GST-GAX.
Bj~ Me t ody— ---—— -—o-—-—---——:—:-<Metody obvykle používané 'v molekulární biologii jsou odborníkům dobře známy a jsou hojně popsány .v literatuře (Maniatis'T. et al·., „Molecular Cloning, a Laboratory Manual,. Cold Spring Harbor Laboratory,' Cold Spring Harbor, N.Y., 1982, Ausubel,. F.M. et al., (ed.) , „Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, New York,' 1987).,
1) Systém dvojitého hybridu .
Tento systém je metoda klonování pomocí .interakcí in vivo v kvasinkách Saccharomyces cerevisiae, .jejíž princip je založen na modulární struktuře kvasinkového transkripčního• · · · Φ ·* · 9 9 9
9 9 9 9 9 9 *9 -. 9999 9 9 · ·»·» · • ·' · · 9
999 · «« 4·· ·· · 9 · • · · • « »« ··
- 21 faktoru GAL4 (7). Transkripční' aktivátor GAL4- má dvě nezávislé- domény, které „máji odlišné funkce. DNA vazebná.
'doména (GALDB pro vazbu GAL· DNA), umožňuje GAL4 navázat se- na specifickou, sekvenci DNA na úrovni promotorové oblasti genu.
GAL4 še poté sám nalézá stéricky blízko k transkripčnímu . .
mechanismu a pomocí své transaktivační 'domény (GALTA) zvyšuje rychlost, ve- které je iniciována transkripce,, na 'sousedním genu, pravděpodobně interakcemi s RNA polymerázou nebo _ přidruženými proteiny. Princip , dvoj itého .hybridního systému spočívá v' odděleném fúzování GALDB a GALTA. ke dvěma odlišným' . .
proteinům X a.Y, které tvoři, pokud navzájem reagují, aktivní transkripční komplex.
—2-}- -Tes tování- - kvasinek - -technikou.-- PGR: - (pol-ymerázcvá - řetě zová- -reakce) ' . . · ΆY-_. .ý—.
Testování se provádělo přímo na kvasinkách'Každá ’ . ' ' kvasinková kolonie se dala do. roztoku 10 μΐ vody obsahující.
* — · i-* z- -l
0,08% Tween.20. Tween je. neiontový de.tergent, který -umo-žřnijé.-j . — ·<ζΑ· zvýšit lyži .kvasinek během prvního stupně zahřátí na 95-.-°C.’ '.' —r’V^n-árs-l-edujl-cí-ch—stadi-í-ch—působí.—T-ween-—2-9—j-a-k-o—-př-í-p-ra-ve-k-y™—-+ . který chrání Taq DNA polýmerazu. Kvasinková suspenze se' doplní na konečný objem 20 μ1 obsahující následující konečné koncentrace nebo množství:' 10 pm primer 1, 1Ó pm primer 2, jednotka Taq DNA polymerázy, 75 mM Tris pH 9, 20 mM (NH4)2SO4, 0,01% Tween 20, 2,5 mM MgCl2 a 125 μΜ každého ze '4 deoxyribonukleotidů .·(dATP, dTTp, dGTP a dCTP) . Na- konci.'PCR se .část směsi analyzuje', na· agarózovém gelu. Takto je tedy možné zjistit, pro daný pár primerů a pro každý -kvasinkový kmen, zda je v kvasinkách obsažena již identifikovaná ( sekvence 'DNA.
«· ·· * · « <
'9 · 9 I
- 22 3) Příprava plazmidových DNA . Velká množství ‘ DNA se připraví .za použití rychlé preparační soupravy Promega.
' Malá množství DNA jsou připravena následujícím způsobem: bakterie obsahující plazmid se pěstují alespoň 4 hodiny ve 2 ml LB média v třepačce s mícháním. . · Poté se,stočí 2 minuty při 14 000 rpm' v mikrozkumavkách ' (Eppendorf), a pak je· pelet resuspendován ve 100 μΐ roztoku I- .(50. mM -glukóza, 25 -mM pufr Tris-HCl' pH 8,. 10 mM EDTA pH.8)’, lyžován s 200 μΐ roztoku II (0,2 mM NaOH, 1% SDS). Lyzpovací roztok se poté neutralizuje se 150 μΐ roztoku III (3M octan sodný, 11,5% (v'/v) ledová kyselina octová) . Po třepání zkumavek,· ' dokud se nezíská chomáčkovi;tý přecipitát, ·' se přidá směsi
150 μΐ fěhoíZčhl’dró‘form j{'50%' fenoíá ' 50_%' chloroform,' saturováno vodou) a vše se 30 s. -třepey '. Vodná ''fáze - obsahuj ící; DNA . se získá zpět stočením 2 minuty ve 14 000 rpm. Pak se precipituje . DNA přidáním 0,5 objemu- isopropanolu a pak se· stočí 5 minut ve 14 CCO tpm a-usuší. n'á' vzdůchu a''nakonec se rozpustí ve 20 μΐ TE RNAse (roztok ÍO-mM Trís-HOl a 1 mM EDTA s 50’ pg/ml RNAse) .
4) Syntéza' a enzymová amplifikace. DNA metodou PCR (polymerázová.řetězová reakce) '
Reakce PCR' .se provádějí v konečném objemu 100 μΐ v.přítomnosti templátové DNA, dNTP (0,2 mM). Pufru PCR (10 mM Tris-HCl pH 8,5, 1 mM MgCl2, 5 mM KCl, 0,01% želatina), 0,5 pg každého oligonukleotidu a ’ 2,5 IU AmpliTaq DNA polymeráty (Perkin Elmer) s formamidem. (5%) nebo bez něho.
..Směs____se_.převrství__ 2 kapkami _ parafinového oleje, aby se omezilo vypařování vzorku. Použitý přístroj byl „Crocodile II od firmy Appligene.· Pro templát jsme použili denatůrační • * «· ·· 44 *44 4 · * 4 4**4
4 * 4 4·· «444 *44« · · 4 ·*4· * *44 444 • · 4 4 4 4 4 »44 4 44 · ·'· ·4
- 23 teplotu .90 °C, teplotu pro hybridizaci oligonuklěotidů k templátu o 5 až 10 stupňů nižší než byla separační teplota oligonuklěotidů a teplotu pro extenzi enzymem 72 °C.
Fragmenty získané PCR,· které sloužily ' pro klonování, jsou systematicky opětně sekvencovány po klonování, aby se zkontrolovaly možné mutace objevující' se během ámplifikace.
Oligodeoxynukleótidy jsou chemicky' syntetizovány fo-sforamiditovou metodou za použití. β-kyanoetylóvých ochranných ' skupin -(Sinha, 1984}. Po· syntéze jsou ochranné skupiny odstraněny ošetřením s hydroxidem amonným a dvě precipitace' butanolem umožňují purifikovať a koncentrovat oligodeoxynukleotidy (Sawadogo, 1991), Koncentrace DNA se určí měřením optické denzity při. 260' nnt.'.5/· -Dt-gače· . - '
Všechny ligační reakce se provádějí v 14 °C přes noc .v- .konečném obj.emu. .10 μΐ, za přítomnosti 100 až 200 ng vektoru, 0,.5 .Jaž^Ž^hg. inzertu;· 40· IU enzymu T4 DNA ligázy (Biolabs) a ligačního' pufru (50 mM Tris-HCl 'pH 7,8, 10 mM MgCl2, 10 mM
DTT, , 1 mM-.ATP) . Negativní kontrola spočívá· v ligaci vektoru bez inzer.tu/
Doplnění přečnívajících 5'.-konců se provádí, kde je to třeba, před ligaci Klenowovým fragmentem DNA polymerázy I z E. coli (Biolabs) podle dodavatelových instrukcí·. Odstranění přečnívajících 3' konců se provádí v přítomnosti DNAr polymerázy fága T4 (Biblabs) použité podle- doporučení výrobce. . · ,6) ^Tr an s f ormáce^bakterií ,...... ...... , „.......... .......... ..... .
Transformace bakterií plazmidem .' se. provádí podle následujícího postupu: celý objem ligace. (10 μΐ) se použije • « ·· ·* • · φ * * * φ « · φ • · « · ·»-·' · · φ . · »·»φ φ Φ««·» 9 Β«· ·♦· • · Φ Φ · · · · «ΦΒ Φ ΦΦ · ΦΦ ·· k transformaci bakterií TG1, které jsou učiněny kompetentními metodou Chunga ét al., (PNAS, 86, 2172-2175, 1988),.
Bakterie TGl se pěstují v tekutém LB médiu po .několik hodin v inkubátoru s třepáním ve 37 ,°C, dokud se nedosáhne OD ;ίΐ
0,6 při 600 nm. Médium se .poté stočí v 6000 rpm 10’· minut.' „a ’ Bakterie se učiní kompetentními přenesením peletu bakterií do objemu TSB (LB médium ·.+ · 100 g/1 PEG 4000,' 5% DMSO, 10 mM MgCl2, 10· mM. MgSOJ odpovídajícímu' 1/10 objemu, počátečního kultivačního média. Po inkubaci ve 4 °C po dobu od 30 do,60 minut, se 200 μΐ bakterií přivede do kontaktu s ligačními produkty 15 minut na ledu. Po přidání 200 μΐ LB se bakterie inkubují 30 minut při 30 °C, a pak se vysejí na médium LB ' s ampicilinem.
7}' Separace' a extrakce DNA - .
Separace DNA se provádí podle velikosti elěktroforézou.
Aby. se tak učinilo, použijí se různé gely podle velikosti ' .' fragmentů, které-maji-být separovány: --1% agarózový- gel (Gibco BRL) v pufru TBE (90 mM Tris baze, ^9O hřiM-bbřAET- 2~ mM_ED TA)- proTe parac iv e~l_k ých- f ř agmerrt ú~BNA —-(větších než 500 bp) ' - -2% agarózový gel z agarózy NuSieve. (EMC Bioproducts) v pufru TBE pro separaci malých. fragmentů (menších než 500 bp) . '
Všechny migrace. na agařózovém' gelu nebo na polyákrylamidovém .gelu se - provádějí v pufru TBE a v přítomnosti standardu pro. určení- molekulové hmotnosti („žebříček· 'standardů 1 kb, Gibco BRL) . DNA se smísí s 1/10 objemu nanášecí modře (200 g/1 fikolu, 0,5 g/1 bromofenolové modři, 50 mM EDTA) před nanesením na gel. Po migraci ve .
• · ař » »·»···«»»· • · · · · · · ··«· rW,^. —·.,* *·»· | 4 «···«· »4* 44 · • V 4 · · · · «·« * 4* · 4« ··
-25.100 V a obarvení ethidiumbromidem (koncentrace 0,5 pg/ml gelu) se pásy vizualizujípod UV lampou.
Extrakce DNA z pásu v ágarózovém gelu se provádí elektroelucí následovně: kousek gelu obsahující fragment DNA je vyříznut skalpelem, a umístěn v dialyzační trubičce, uzavřené dvěma svorkami a -obsahující 100 až 500 μΐ TBE.' Vše se umístí do' nádržky pro elektrofořézu, která' se vyštaví . elektrickému poli 100' V.· DNA po opuštění gelu-se1 pur-ifikujedvěma extrakcemi fenol/chloroform, poté následují· dvě extrakce chloroformem, a pak se precipituje za přítomnosti· 0,3 M octanu sodného a 2,5 objemů absolutního etanolu. Po stočení (5 minut při 14 0Ó0 rpm) se pelet DNA usuší,· a poté 'se nasaje do' 20 μΐ vody.
8) Fluorescenční' sekvencování plazmi.dové- DŇA__· ;;/V<·' ·.
Sekvencováni se . provádí podle metody dle' Sangera- za použití 4 dideoxyribonukleotidů majících,-..., -'odlišný,., fluorescenční markér. Inkorporace .-jednoho·' . 'z/těchto· '· dideoxyribonukleotidů způsobí zastavení replikace
Taq polymerázou DNA, .která se sekvencuje. Tato reakce' dává fragmenty DNA různé velikosti, všechny konči na 3' jedním ze '4 dideoxyribonukleotidů.. · gg· p-lazmidu' a 4 pm příměru se přidají' k . 9, 5 μΐ . „předsměsi poskytnuté, firmou Applied· Biosystems ,pod jménem • Prism®. Konečný' objem by měl být 20. μΐ, aby se provedla . reakce- PCR s 25 cykly, které se, skládají z denaturačniho· kroku 30 sekund v 96 °C, nasedání primerů 15 sekund v 50· °C a extenze -4 minuty v 60 °C.
, Ί .. Fragmenty,...DNA^z.ískané^po _ amp 1 ifikaciser,purifikují_,. na ..
vylučovací koloně (Chromaspin-30 od firmy Clontech) a jsou poté usušeny ve vakuu v přístroji Speed Vac..-Vše se nasaje do • ♦ ·· φ a· ·····»*»·>
• · · ·**· · » > · — ·· λ- ·-«···«· ····· ««« 0«β • · β · · · *»♦ * ·· · ·· ··
Η
- 26 5 μΐ směsi sestávající z , 24 μΐ EDTA (50 mM) a 120 μΐ deionizovaného formamidu. Po denaturaci v 96 °C 3 minuty se 3'až 5 μΓ nanesou, na gel pro elektrofórézu. Různé fragmenty DNA se separují podle velikosti a postupně projdou- před laserovým čtecím zařízením sekvenátoru DNA typu 370 ,.(Applied Bio.systems) , kde.se detekují .různé typy fluorescence.
9) Příprava plazmidů z knihovny,plicní tkáně (Clontech®)
Fúzní knihovna cDNA plicní tkáně se prodává ve formě 1 ‘ bakterií.. Tato ’ knihovna pochází z klonování . na úrovni místa EcoRI-Xhol .plazmidů·· pGAĎ424 (viz 'Materiál) z cDNA odpovídající celkové RNA buněk lidských plic.
Po zkontrolování ' titru knihovny -se 2 μΐ bakterií z piícní fúznV knihoýny,f předtím přenesené do .8 ml LB, vyseje na pevné · médium .-ták,- '' aby .· ‘ nesplývaly, prd . udržení reprezentativnosti této- knihovny. Vyseli jsme 16- misek o ploše 77 0 cm2, které m obsahovaly. .LB médium s ampicilinem. Kolonie, kteréýse· Obj;evúly,?'?j-šou odebrány po jedné na misku.,, s 30 ml tekutého LB s ampicilinem. Získané suspenze jsou poté umístěny v Erlenmeyeřovych-baňkačh a ínkubovány v'třepačce ve 37 °C po 3 hodiny.· DNA.· se poté z těchto .kmenů extrahuje technikou maxipreparace (Maxiprep). Koncentrace DNA se určuje v- 2 60 nm. ' 10) Transformace.kvasinek píazmidem
Kvasinky, které se předem'pěstovaly1 ve 100' ml tekutéhomédia, se sklízí po- stočení v · 3000· rpm . 3 minuty a resuspendují v 1 mí sterilní vody.' Po stočení v 3000 rpm minuty-se buněčný.pelet resuspenduje' v 1 ml sterilní vody * I !»> I · II I···»·» ** .: ' ΙΙΙ··Μ>^ίΙ|^»·»·ι^|ι>«ιι>·«>»|·|Μι···^»^>|·>Μ>Ι UM apoté se opět stočí. Tento postup se opět opakuje, aby se odstranily všechny,stopy kultivačního média. Kvasinky se pak' 1 « « 4« 4 ·· ·· *·· « 4 * 4 · · 1 *44 4 ·*· 4···
4-4 4444 4 * * 4444 4 444 4·Ι
4 ♦ · 4 4 « «44 « ·.·' · *♦
- -27 nasají do 1 ml transformačního roztoku I (0,1 M LiAc, 10 M Tris-HCl pH 7,5, 1 mM EDTA) a' pak se stočí v 300Ό rpm 3 minuty. Buněčný pelet se opět nasaje do 1 ml transformačního- roztoku I. .Do 50 μΐ této kvasinkové suspenze se vnese 50 pg DNA z lososího spermatu a 1 až 5 pg plazmidové DNA.. Pak se přidá 300 μΐ transformačního roztoku II (0,1 M LiAc, 10 M Tris-HCl pH 7,5, 1 mM EDTA ve 40% PEG40oo) a-vše se inkubuje ve 28 °C 30 minut. Poté se na- transformační směs aplikuje tepelný šok ve vodní lázni ve 4 0 °C 15 minut, a 'pak se vše stočí.v 15 000 rpm L minutu, aby se sklidil'buněčný pelet. Tento pelet se přenése do 200 μΐ vody, a poté. se vyseje na minimální médium s agarern,. které neobsahuje· některé aminokyseliny v závislosti na markérech' . poskytnutých transformačním plazmidem.· Kvasinky ;se poté pěstují -72 hodin've .28- - °C. Ve specifickém případe transformace kvasinek plicní cDNA ;knihovnou..se .postup provádí následujícím způsobem:
-Použité-. kvasinky obsahují plazmid pGAL4DB-GAX. 'ěxprimující 'protein' GAX· ve formě ' fúzované k DNA vazebné “doméně-GAbd v—Pěstuj-í^se- ve^S-SO- mi- mini-má-irtí-h-o—média—Y-PG- -ve28. °C š'třepáním, dokud se nedosáhne denzity 107 buněk /ml. Buňky se poté sklidí,stočením v 3000 rpm-10 minut a přenesou do 250 ml . vody. Po .dalším stočení se buněčný pelet přenese do, 100 ml .vody a- opět stočí. Pelet se.poté přenese do. 10 ml transformačního roztoku I- a inkubuje 1 hodinu ve' 28 °G s třepáním. Po stočení jsou buňky opět přeneseny do 2,5 ml transformačního . roztoku I, 100 μΐ plicní cDNA knihovny a 20 ml transformačního roztoku II, a poté se inkubují 1 hodinuve -28 ' °C s třepáním. Na tuto transformační směs se aplikuje - tepelný šok' ve 42 °C po dobu 20 minut. Stočeni (3000 rpm 5 minut) se opakuje třikrát za· sebou, pokaždé se ·» · ·· « ·· ·· « « 4 · · · · ·«« · · · · »··· ; *-· «·♦· * ···.·♦ ·· ··· ··· · · » * 4 * «· · ·· ·♦ i ., · - ·· . . ---28- pelet přenese do 10 ml sterilní vody. Potřetí se pelet přenese do 2,5, ml PBS. Tak byl odstraněn PEG, který je toxický pro buňky. 2,4 ml této suspenze, se použije .k inokuiaci 250 ml minimálního média obsahující1 aminokyseliny His, Lys,. Met a baze, Ura a Ade, a pěstuje, se přes' noc na · .> třepačce ve 28 °C.· Zbývajících 100' μ·1 této suspenze slouží pro kontrolu·, .účinnosti transformace, což sé· provádí v ředěních této suspenze IQ’2,' 10.'3 a 10“4. Kultura rostoucí přes noc se stočí (3000' rpm 5 minut),' a promyje sterilní vodou dvakrát po sobě. Pelet se poté, přenese do 2-,.5 - ml vody.
2,4 ml,, které· se doplní na 10 ml sterilní vodou, se použijí
J· k inokuiaci 10 misek o ploše 435 cm2, které obsahují, médium YNB+Lys+Met+His+Ade,. a inkubúje se . po .3 dny. Zbývajících . .. . „ . 100-μΙ -.se-· -použije k provedení téhož·· postupu, jako· během -·-určení rychlosti, transformace, aby. -se - určila rychlost / amplifikáce· počtu kolonií během celonoční kultivace. / 1 . 11) Izolace kvasinkové (genomové a plazmidové) .DNA :. Množství kvasinkového klonu odebrané průměrnou očkovací : „—^.^g.rn.yě.líQTj—s-e^-um-í-s-t-í—do—2-0Ό-^μ-1—ro-z-to-k-u—-T-E-L-T- -(-2-%—-T-r-i-ton-^X-1-ΟΟτ,—
1% SDS, ' 100 mM NaCÍ,· 10 mM Tris pH 8, 1- mM-'EDTA) v přítomnosti 3 g skleněných perliček o průměru 450 μη *
. a .200 μΐ1 fenol/'chloroformu. Tato směs se vortexuje 15 minut, a poté. se stočí 2 minuty ve 14 000 rpm. Supernatant 'se sbírá ' ' bez odstranění proteinového koláče1 a DNA obsažená v této fází , .
se precipituje s 2,5 objemy absolutního etanolu·. Po stočení ‘ 2 minuty ve 14 000 rpm se DNA pelet usuší a přenese do 20 ,μΐ
TE-RNase. Tento roztok . DNA, který odpovídá směsi genomové , . a plazmidové DNA,/ slouží přímo k transformaci bakterií. Pouze '« .. f ...... )l 1' ........................ H|lll> I ΙΗ)»>«<Ι|Μ··<»·«»·*^Μ·ΙΙ»Ι|Ι·<»Ι|ιΜ*Μ<··Ι»·Ι^·ι!.......
• . plazmidové DNA je schopná replikace v bakteriích a může být analyzována technikou minipreparace.
/
- 29 • » · · ·· ·» •« « · · * · β · « • φ · ,♦ · · · · * . «··· · · V ···· « ·«· ·· ***** * ··· * ·· · ·* ·»
12} Test aktivity β-galaktosidázy i ·- '
Nitrocelulózová membrána je předem vložena do Petriho misky obsahující oddělené kvasinkové klony. Pomocí fenoménu.· adsorpce' se získá přesný obraz' pozice, klonů. Tato' membrána se poté-ponoří na 30 sekund do tekutého dusíku,aby se rozrušily kvasinky, a 'tím se uvolnila β-galaktosidázová. aktivita.
Po roztátí se nitrocelulózová membrána uloží, kolonieminavrch, do další Petriho. misky obsahující '-filtrační papír Whatman předem impregnovaný 1,5 ml roztoku PBS (60 mM Na2.HPO4·, '40 mM NaH2PO4, 10 mM KCl, 1 mM MgSO4, ’ pH 7) a 10 až 30 μί X-Gal (5-bromo-4-chloro-3-indo.lyl-p-D-galaktos'id) v 50 ' mg/ml ' v Ν,Ν-dimetylformamidu. Miska se poté. umístí do inkubátoru při 37 °c s .uzavřeným- víčkem, aby se -zabránilo' vyschnutí., »
-Doba-do objevení se modré-barvy může 'být-'vysoce variabilní, -od několika minut do- několika; hodin.'/'/'Té-nto/tesť by- měl být' vždy prováděn za přítomnosti pozitivní -kontroly,,, jejíž interakce je známa a rychle vytváří modré zbaryení.
13) Konstrukce expresních vektorů, a reportérového--genu ' -a-)—Ex-p-res-n-í—ve-k-feo-ry————— ---------——-- - ——=—cDNA' pro estrogenový receptór (ER) -se' získá, -reverzní transkripcí (RT) s pomocí komerční soupravy (First sťrand cDNA synthesis kit od firmy Pharmacia) z celkové . RNA extrahované z myšího u.ter.u, což je následováno amplifikací PCR. Použili jsme pár specifických příměrů hybridizujících na 5-'-konci s prvními 20 nukleotidy . z. ER a vnášejících místo ' EcoRI . hned v protisměru čtení od prvního kodonu.
(5'-gagcgaa11cATGACCATGACC Č T TCACAC, sekvence' id. č. 6,nukleotidy kurzívou představují místo EcoRI a podtržená velká
M lili lili Ulil. III iWWWWWWÍIIMf»· I —«|Ί 11 11 HH lim lilii ' písmena první kodon), na. 3'-konci zpětný primer - začíná ve stopovacím kodonu ER, 'a také vnáší , místo EcoRI ή, » · «« » v ♦ » w · * • · ' · ·» · (5'-gagcgaattcACTGATCGTGTTGGGGAAGC, sekvence id. ' č. 7, nukleotidy kurzívou představují místo EcoRI a podtržená velká písmena stopovací kodon). Získaný PCR fragment byl purifikován, štěpen s EcoRI a poté klonován v tomtéž místě do expresního vektoru pCDNA 3 (Invitrogen) . Tento vektor je nazván pCMV-ER: Různé, deleční- mutanty' GAX fúzovaného k DNA vazebné doméně GAL4 (p.CMV-GALDB/GAX,. viz příklad ,9j , byly také klonovány do-vektoru-pCDNA 3. . '
b) .Reportérový gen'
Reportérový gen byl sestrojen podle- strategie popsané ' Martinezem et al:. (Martinez et al., Mol. Cell-Biol., 11,
2937—2945,1991) kromě toho,· že použitý klonovací vektor je. .pGSCAT ’ (C lontech, v CAT _ ;=_ chlcramf enikolacetyltransfěráza) .
Syntetizovali yjsme.-t-'dvojvláknový oligoňukleotid (viz níže) obsahující dvě specifická místa (tučně),.' jedno rozpoznávané
DNA vazebnou doménou. GAL4 ;..(.Ga.l-1.7mer, Carey et al., J. Mol.
Biol., 209,,’ '423-432', .-~l’989l á druhé je souhlasná sekvence z „Estrogen Řesponsive- Element (ERE, Beato, M., Cell, 56, _ 33-5---3-4-4 z .. i-gg-Sju -která^váže eStrogencvý^re~čeptortTento“
... ' * adaptérový oligonu-kleotid má ha 5'-konci přečnívající místo Xhol, a na 3'-k’onci místo·.Xbal, která umožňují klonování na místa Xhol a Xbal z pGSCAT. Sekvence id. č. 8:
.tccjagAGGTCATATTGACCTaagcttCGGGTCGGAGTACTGTCCTCCGACTGCcatatgt , cTCCAGTATAACTGGAttcgaaGCCCAGCCTCATGACAGGAGGCTGACGgtatacacfatc '
Xhol ERE . , Gal~17mer . ‘ , Xbal ι»Μΐ·Μ.··|ΙΙ ll i I ΙΙΙ|Ι>»»<ί*>ΙΙ»·<|»><«Ι<ΜΜ·Ι>·ΙΙΙ' .......UK II 11 unii • * · 4 ·· *« v · * · »»·« ·« · · · · · · · · » a ·«·· · · « ···· * ··· ··· ♦ ’ a · · · · * ·«·' 1 · ♦ ·*» ,*
-'31 Princip tohoto reportérového genů (pEREG-lCAT, obr. 4, přiklad 11) je založen na faktu, že ER je. transkripční aktivátor, který -má, jak je tomu V případě myšího .ER, ' konstitutivní ,, , aktivitu, která , še zvyšuje jako odpověď na jeho přirozený ligand 17'p-estradiol. Tento systém. byl použit Martinezem et al. ke. studování synergie mezi ER a druhým transkripčním faktorem NF1, jehož transkripční aktivační · doména byla
- --.-fúzována . k DNA vazebné doméně kvasinkového proteinu GAL4
--(GALDB), Tento reportérový konstrukt tedy umožňuje, přičítat transkripční- rychlost pouze jednomu nebo druhému transkripčnímu faktoru- nebo 'jejich kooperaci,· bez interference způsobené, endogenními molekulami. Tento systém z
nám proto -umožňuje studovat transkripční aktivitu celého nebo _ ;;části proteinu GAX fúzovaného ke GALDB (obr. 5, . 6 a příklady vý/-: i .1-2, 13) . ' : Byl zkonstruován také plazmid exprimující luciferázový gen ..pod. kontrolou promotoru CMV (pCMV-Luc) . Tento konstrukt '.'.-'.'byl '-získán'' po klonování PCR fragmentu (ohraničeného - na
- 5'- a B^-konci místem -BamHI) ’ obsahujícím promotor CMV
-z--vektoru— pGDNA-3—(-Invi-trogenj—do-'m'rs'ta^“BgTrr’^v'e'ktoru_^pGL3~'”'^' ' . Basic (Promega). Tento plazmid sloužil jako vnitřní standard ’ί ' . ' ve všech přechodných- '.transfekčních .pokusech, které jsou v následujících příkladech.
14) Pokusy s přechodnou transfekcí
Všechňý studie jsme prováděli na myších' embryonálních f ibroblaste.ch . NIH-3T3 (ATCC) . Tyto buňky byly rutinně udržovány v-DMEM (Gibco) doplněném se 100' U/ml penicilinu (Gibco), 100 gg/ml streptomycinu (Gibco), 2 mM L-glutaminem
- - . ..:-,-1111.,1^.1 ......mm ............ ii .......1 lín 111»................ni........... ......................i·................................ ........................ ......................... ' lil.......................... . . (Gibco) a 10% fetálním telecím sérem (FCS, Gibco) . Toto
- médium bude označováno zkratkou DMEM-GPS/FCS.
• · ·· · ·· ·· « * » * ♦ É »»«« • ' » « · · · · · ·· · • ··«· · · · *··· · «·· ♦·· • · · · · ««« « «· « *· ··
Pro experimenty s přechodnou transfekcí jsou NIH-3T3 inokulovány v hustotě 100 000 buněk na jamku' na 24-jam.kové kultivační destičky (Falcon) v objemu 1 ml DMEM-GPS/FCS. 16 až 20 hodin později po' přichycení a rozšíření buněk, jsou buňky promyty 0,5 ml DMEM-GPS (bez FCS) , a poté,opět umístěny, do 0,5 ml DMEM-GPS. Na kultivační jamku se poté přidá 50 μΐ transfekční směsi. . Směs. se získá, jak 1 je. shrnuto t · v následující tabulce 3. , . ' .Tabulka 3
i* · 2* 3* 4*
PCMV-Luc 50 ng 50 ng 50 ng 5.0 ng-
PERÉG1CAT*' 650 ng 650 ng 650 ng j 650.. ή g -
PCMV-ER ' 150 ng 1-501'n.g V·-’'·'
PCMV-GALDB/GAX - - 150 ng 150 ng
PCDNA3.” 300 ng - -
Lipofektamin’*’ 8 pg 8 ůg . 8 μα 8 pg . - ... '
H2O'qs 50 pl 50 μΐ ;5 0.yl 50 μΐ
* Různé směsi, očíslované od 1 do 4, byly navrženy ke studiu bazální aktivity promotoru EREG1CAT, aktivity' ER nebo samotného GALDB/GAX a konečně simultánního účinku 'ER i
a GALDB/GAX, v příslušném pořadí.
** K.doplnění každé směsi na 10 pg. je použit pCDNA3. 1 ' *** Lipofektamin v koncentraci .2 pg/μΙ (Gibco) je použit v poměru 8/1 (lipofektamin/DNA).
Buňky jsou přivedeny do kontaktu s různými transfekčními směsmi na 4 hodiny ve 37 °C za standardních kultivačních
Μ · * · „Luciferase luminometru podmínek. DMEM-GPS, s transfekční směsí, je poté nahrazeno lml DMEM-GPS/FCS, a buňky jsou poté udržovány v kultuře 24 hodin. Každé transfekce se provádí minimálně ve 4 jamkách. Na konci 24hodinového období ' jsou buňky promyty 0,5 ml Dulbeccova PBS- (Gibco} a'poté jsou sklizeny do 0,5. ml. 0,2% roztoku trypsinu v PBS (Gibco) . ..T.rypsin je neutralizován s 1-0: μΐ FCS.'' . Tato buněčná suspenze se. . stočí 2 ' minuty v 10 000 g, supernatant' -se odsa.j-e a --pak' jsou buňky r.esuspendovány ve' 150 μΐ 0,25 M Tris-HCl v- pH 7,8. 50 μΐ ,této suspenze'se použije k testování luciferázové aktivity podleAssáy System .Kit (Promega) a s’ pomocí LUMAT - ÁB 9501 (EG&G Berthold). Cytosolové proteiny z buněk ve .zbývajících' 150 μΐ se, extrahují 5 cykly zmrazení/roztátí (tekutý dusík/37- °C) . Extrakty, relativně standardizované, k .luciferázové -_akt ivitě’,' j-sou -poté použity k testování CAT aktivity podle metody, dříve popsané Gormanem.
I et al. (Gorman et al·., Mol. Cell B.iol., 5-, 1044.-10.51, 1982) .
15) Interakce in vitro mezi 'proteiny Ki a-GÁX
- - — -T-a-feo—i-n-t-era-k-ee—me-z-i-p-rot-e-i-ný—K-i—a—GAX-<-i-n'^ví-t-ro· '-se—z-koumámetodou Far-westernového přenosu.'
Zatímco westernový . přenos spočívá .v elektroforeťické separaci proteinů, na denaturačním gelu následovaném elektrickým přenosem' proteinů na nitrocelulózovou .membránu a přímé či nepřímé imunodetekci, Far-westérnový přenos je westernový přenos,, ke kterému se přidal krok interakce protein-protein mezi cílovou molekulou zmobilizovanou . na nitrocelulózové .membráně a faktorem v roztoku.
WNMI tm»' ' ··♦· • ·**· ·
I * · ·
I » · · • » · ··*
- 34 a) Elektroforéza
Vzorky se zahřejí 10 minut v 95 °C v denaturačním pufru pro proteiny obsahujícím- 50 inM' Tris pH 6,8, 2% SDS (dodecyísulfát sodný), 10% glycerol, 300 mM β-merkaptoetanol a 0,1% bromofenolovou modř. . 10 ml 'vzorků se nanese na· Tris-glycinový 14% akrylamidóvý gel (Tris-Glycine ’Gels, Novex), Migrace trvá 1 hodinu při konstantním napětí .120 V v separačním pufru pro proteiny (35 mM SDS, 1,92 M glycin a‘ 85 mMTřis pH 8,3}.. Molekulová hmotnost proteinů se určuje paralelní migrací obarveného a .přenosného standardu, molekulové' hmotnosti (MultiMark™ Multi-Colored Standard, Novex). Tento gel se provádí v dvojím provedení, aby bylo možno- paralelně jeden z nich obarvit modří Coomasie ('30% . .metanol,, 60% voda> . 10%. kyselina. octová, 0,.l% modř Cbomasie)..
: Barvení-trvalo .1 -hodinu. Odbarvení se provádělo, několik hodin několikanásobnou výměnou odbarvovacího roztoku (30% metanol, 10% kyselina-octová, 60%. .voda) . Detekční limit této metody je 50- -ng ''-proteinů-;;- Takto' obarvený gel nám proto umožnil vizualizovat v.šečřiny nanesené proteiny. Další gel. je použit ___,p.r_o_ _,AF.ar-.w.e s_t.e.rnp_V-ý_-př.eno.s21.___^.________ > b) Polosuchý přenos na nitrocelulózovou membránu . Nitrocelulózová- membrána (Hybond C, Amersham) a gel se umístily mezi .3 vrstvy-.papíru Whatman předem ponořeného do přenosového, pufru (150 mM glycin, 25'mM Tris, ‘20% metanol,' voda ti, pH 8,3). Přenos trval' 40 minut při' 2,5 mA/cm2 gelu (Millíblot™ - Graphite Electroblotter II, Milíipore),.
i
c) Interakce protein-protein.
*-w-*^embTáTT*jT*Taru7ovária<*To*^ňuniTr*^T^ř1epTM',,^wpTTwt^pTot'e místnosti v PBS obsahujícím5%' (w/v) odtučněné'sušené mléko «ν »«* * ·· ·· • ♦ » ··*' * * » · • * » · · · · · · · · • -«··· « · · «··· * ·ν· *·· • · \ ♦ · t v. ·.
i·· « ·* · · ·· , ' - 35 (Gloria) a 0,2% (v/v) Tween 20. Pak je 1 hodinu ponořena za třepání při teplotě místnosti do 5 ml PBS obsahujícího 5%
- (w/v) odtučněné sušené · mléko (Gloria·), 0,2% (v/v) Tween 20 a 75 pg Ki. Jakmile je inkubace .kompletní, membrána' je 3x .promyta 10 minut v PBS obsahujícím 0,2% (v/v) Tweeh 20.· Aby se vizualizovala interakce mezi GST-GAX imobilizovaným na nitrocelulózové· membráně a mycKi, je tento detekován, stejně jako, GST-GAX, pomocí myší monoklonální protilátky namířené proti epitopu myc (Santa Cruz) a. králičí polyklonální protilátky spojené s peroxidázou namířené .proti myším IgG . (Nordic Immunology).
Příklad 1
- - Konstrukce vektoru umožňujícího expresi'fúzního proteinu mezi
GAX.a DNA vazebnou doménou GAL4 ·
·.. . 'Screening knihovny za .použití dvojitého hybridního . : systému vyžaduje', aby protein GAX byl fúzován k DNA vazebné domény transaktivačního proteinu GAL4 . Exprese tohoto ^fúzní.ho_ proteinu se provádí za použití vektoru pGBTIO (viz Materiál' • a metody), -do kterého jsme vložili, a to do téhož čtecího rámce jako je sekvence odpovídající DNA vazebné doméně GAL4' (GAL4DB)', fragment kódující celý protein GAX nebo jeho část.
' < i .Konkrétní fragment zahrnuje fragment EcoRI-SalI pocházející, z pHGAX·, který je vložen na úrovni místa EcoRI-SalI' z pGBTIO, takže vznikl plázmid pCM199. '
Konstrukt se sekvencoval, což umožňovalo zkontrolovat, že protein- GAX je -vskutku v tomtéž _ otevřeném čtecím rámci, »---- j a ko- protein* f ragmen tu- odpoví dá j' ící* GAL4DB.' ' . ' ý ' 1 Γ'Ι,Ί • φ ·V · ···· »·· « · ·' ···« • « ♦ · · · · ···« • ·««· · · * ···· 4 ·»4 »♦· ♦ « · · · « · • · · V r « · . ·· » ·
- 36 Příklad 2
Screening fúzní knihovny plicní tkáně
Testování fúzní knihovny umožňuje identifikovat klony produkující proteiny fúzované k transaktivační doméně GAL4, schopné interagovat s proteinem GAX nebo jěho'doménami. Tato interakce .umožňuje rekonstituovat transaktivátor, který bude , poté schopný vyvolat .expresi reportérových genů URA3, - BLE a iacZ u kmene YCM79.
Pro tento screening jsme vybrali ’ fúzní knihovnu vytvořenou z cDNA .získané z lidských plic. Protože nám byla. poskytnuta tato knihovna 've formě bakterií, nejdříve se, z knihovny purifikovala plazmidová DNA.
. 2.1)· Izolace plazmidové DNA z fúzní knihovny y ' y .y“.···' ' .?.
Plazmidová DNA z knihovny cDNA plicní · tkáně ’ se· extrahovala podle protokolu. Clontech® (viz Materiál a,metody,. - odstavec 10). Během této izolace- bylo důležité:vžáchdváfe.
> reprezentativnost knihovny, což znamená· zachovat počet'· ---—ne-zá-vi-s-i-ýeh—pi-a-zmidů-,-“které“'ýitvoří^._j“ičhž““j“e _7xÍC|57“”^”~^’'” .Abychom se uchránili ztráty plazmidů z knihovny během' ř 1 5 této izolace, byla dávka -plazmidové DNA,' kterou jsme vytvořili, získána .z.velkého počtu izolovaných 'bakteriálních kolonií odpovídajícímu více než třikrát, reprezentativnosti knihovny, což je 25xlOe kolonií. ' ,
2.2) Transformace knihovnou- plicní tkáně a selekce pomocí testu na β-galaktosidázbvou aktivitu ' '
Během testování je nutné zachovat pravděpodobnost.....že.
je . přítomný každý nezávislý plazmid z fúzní' knihovny v alespoň ' jedné kvasince ve stejnou dobu . jako plazmid « ·
• · » · · · * t · · · · • « · « · · · * »»·· · · · *··· • · * · • · * · • Φ ···
·♦···. • 41 · i k ·. - - 37 - . ...... _ Ϊ • » « · · ·
GAL4DB-GAX. Aby se tato pravděpodobnost zachovala > je
důležité mít dobrou účinnost transformace kvasinek. Proto
.jsme vybrali protokol pro transformaci kvasinek dávající účinnost 105 transformovaných buněk na μ5 DNA. Dále, protože společná' transformace (kotransformace). kvasinek se dvěma .odlišnými- plazmidy snižuje tuto účinnost, preferovali ‘ .jsme použiti kvasinek předem, 'transformovaných -plazmidem pGAL4DB-GAX. ' Tento kmen. kvasinek.’byl transformován se 100 plazmidové DNA z fúzní knihovnyToto množství DNA nám umožnilo získat, ' po vyhodnocení (viz Materiál- a metody) , 4,2xl07 transformovaných' buněk, což odpovídá číslu většímu než byl počet nezávislých plazmidů, které tvoří knihovnu. . Podle tohoto výsledku se může zdát·, ' že prakticky všechny, 'plazmidy z knihovny sloužily k transformaci 'kvasinek. Selekce transformovaných ',buriěk,-y,schopných-. ·. rekonstituovat' funkční*' transaktivátor GAL4, -se · prováděla- -na. médiu YNB+Lys+Met+His+Adei Na konci-, této selekce- se získalo 190 klonů s feno typem-Ur a* á'PGal^ vv ; . ' ' ' .Př.íkl.ad_.3_._-----.------------— r
Identifikace inzertů vybraných plazmidů: demonstrace interakce s Ki
Plazmidy jsou extrahovány z kvasinek,- zavedeny do bakteriía poté izolovány, jak je popsáno v části Materiál a metody. Sékvencování. se provádělo pomocí - oligonukleotidu CTATTCGATGATGAAGATACCCC (sekvence id. č. 1) komplementárního k oblasti . GAL4TA v sousedství místa inzerce cDNA plicní knihovny, 52 bp od místa EcoRI'.
„............. , ............ .. ........................ ..............................ihimi—ii ................... ,! ' I j' ......V»·-..........
Srovnání sekvencí . se sekvencemi obsaženými v databankách GEenBank a EMBL (European-Molécular Biology Lab « ·* -*· · · · • x · * · · • »·»· * 4 * • * · · »♦· · ·· • » · * · • · · ι « · · ·· * *· · ·«« · · · • · · «· »·
- 3 8τ Evropská laboratoř molekulární biologie) ukázalo, Že jeden z plazmidu takto identifikovaných obsahuje cDNA identickou s faktorem Ki identifikovaným jako autoantigen. u pacientů trpících lupus. Tento plazmid byl nazván pCM282, Tento plazmid, když je, transformován do kvasinek společně s pCM199,. je· 'zcela schopný aktivovat své reportérové geny, jak je ukázáno v'tabulce. 1 . níže. Tato tabulka navíc ukazuje, že .aktivace ' je specifická, což indikuje, že Ki je schopný specifické interakce s GAX. .
• Tabulka 1
1 Vektory Aktivita β-Gal
.pCM199 + pGAD424 : . 0
' pCM199'.+ pCM282 .+
pGBTIO. + pCM282 0 '
-pGBTjO + pGAD424 0
Kříklacbb^ ·” . ’. ,
Konstrukce .vektorů umožňujících expresi fúzního proteinu mezi různými, delečními mutanty GAX a DNA. vazebné' domény GAL4 V kvasinkách
Tento příklad popisuje konstrukci vektorů kódujících různé varianty proteinu../GAX, které mohou být použity pro určení závislosti funkce na' struktuře tohoto, proteinu a zejména pro demonstraci aktivních domén a-domén odpovědných za interakci s proteinem Ki.____________ .... ..........- ‘ .....----:.1.......·ί--.ιν-,τ--ν.
Delece aminokyselin C-.koncové, části -153- se získá štěpením plazmidu pCM199 s Eagl-Sall, poté se odstraní malý
0 0.·· 0 · ·
0.00 0 000 0 0·
0000 00 0 000· 0 ·00 ·· 0 · 0.00 · • 000 · 0 ·, ···· ' - · .-39fragment, konce se zaplní (zatupí) ošetřením Klenowovým enzymem a degradují. Plazmid takto získaný se nazval pČM238. Kóduje protein obsahující aminokyselinové'zbytky 1-104 z GAX.'
Kompletní· štěpení pCM199 s BglII a Sáli a poté degradace ' vektoru po ošetření Klenowovým enzymem umožňuje zachovat prvních 32 aminokyselin z GAX. Plazmid takto, získaný se nazval pCM244. Kóduje protein obsahující aminokyselinové zbytky 1-32 z GAX. . · .. ' .
Kompletní štěpení pCM199 s BglII a Sáli umožňuje izolovat fragment přibližně 270 bp a 572 bp. První fragment 1 se klonuje do pGBTll v místě BamHI-SalI za vzniku plazmidu pCM245, který umožňuje fúzi 79 aminokyselin Č-koncové. části s GAL4DB. Druhý fragment se klonuje do pGBTIO v místě BamHI za vzniku plazmidu... pCM246, který umožňuje- fúzi aminokyselin·' 33 až.222- s GAL 4 DB.. ' ’ .: ' ’’ '1'
Plazmid pCM280 se získal . štěpením. pCM2'46 s' DraliΓ ' a Pstl. Po ošetřeníΈ T4 polymerázou se plazmid liguje sám se sebou. Kóduje protein obsahují.cí .aminokyselinové' zbytky 33-63:z GAX.
. __ _ - Pla.zmid. _.pCML9.9^—j-e—š-těpen- -s-Nde I— - -a—Pst I~— -Inzer sb” klonuje do plazmidu pASI za vzniku plazmidu pCM301. 'Tento plazmid umožňuje expresi proteinu GAX zkráceného o těchto prvních 32 aminokyselin fúzovaných ke GAL4DB. Kóduje protein' zahrnující aminokyselinové zbytky 33-302 z GAX.'
Struktura fúzních proteinů exprimoyaných těmito; různými vektory je ukázána ná obrázku 1. ·. ' '
4 • 4 · • 4 · «··* ·
• 44 4
V
4· · · 4· 44 • 4 4 4 4 4 4
4*4 4 4 4 44 4 • 4 4444 « 44« 444
4' 4 4 4
4 44 4·
Příklad 5
Lokalizace zóny interakce GAX s KI
Kvasinkový kmen yCM79 byl. transformován různými vektory / popsanými v příkladech 1 a- 4 současně: jako pCM282 nebo. jako pGAD424. · β-Gal aktivitase. detekovala,' 'jak je popsáno v Materiálu a .metodách. Získané výsledky jsou .ukázány· v následující tabulce 2.
Tyto výsledky umožňují definovat ' oblast GAX, .která interaguje. s faktorem' Ki (tabulka 2).' Vskutku,' oblasti způsobující ztrátu aktivity tím,, že' chyběj'!, umožňuji učinit závěr, že· jsou nezbytné .' pro interakci, ale nejsou dostačující. Tedy, ..oblasti' aminokyselin 1 až 32 a'104 až 223 se zdají být důležité pro interakci . s Ki, Fakt, že pCM238 .nedává pozitivní signál pro β-Galý 'svěděl.;prd'to, , že'existuje C-koncová oblast 104-302 GÁX, 'kt‘éřá 'je. nezbytná pro. interakci v kvasinkách. ' .
Tabulka 2
Vektory : β-Gal.. aktivita
pCM199 + pGAD424 ,· 0
pCM199 + pCM282 .+
pCM238 + pGAD42 4 0 '. '
pCM238 +' pCM2 82 ''. 0
pCM244 + pGAD424. 0
PČM244 + pCM282 o
PCM245 + pGAD424' 0
pCM2 45 + pCM2.8'2 ;.......o .......................
ι:
* · ·» Φ φφ φφ φ* · φφφ · · φ · · φ· φφφφ t · φ ·
Φ φ·φ· · φ φ φφ·φ · ·φφ φφ* φ · φ φ » « φ
Φ·· . φ φ· Φ φφ φ·
-- 41 Tabulka 2 - pokračování
Vektory β-Gal aktivita
pCM246 + pGAD424 0 '
pCM246 + pCM282 0
pCM280 + pGAD424 +
pCM28 0 .+' pCM282 +
pGBTIO + pCM282 0
' pCM301 + pCM282 0 '
Příklad 6.- ' ' .
Profil exprese mRNA v různých tkáních a jaderná lokalizace . přechodně, exprincváného. proteinu
- -- ý .Pro-;-ridentifi.kácí'· partnerů ' GAX byl dvojitě hybridní *· · i 7 kvasinkový kmen, .jíž obsahující plazmid umožňující expresi fúze GAL-GAX/^(1-302) . ..jako'-nástrahy, transformován plicní. knihovnou . ODŇA''-fúzovanou ke., GAL4TA, dostupnou v laboratoři (příklad .2), Přeď amplifikací jsme byli schopni získat více než -41 milionů nezávislých klonů a 'pouze 190 klonů, ve kterých jsou expr-imovány tři . selektovatelné geny (tjď gen URA3, gen LacZ a géh BLE)·. Mezi těmito 190 klony bylo možno identifikovat 9- cDNA kódujících různé proteiny. Zejména nás zajímala taý která kóduje Ki antigen.
Gen Ki se .zdá být všudypřítomný, jak naznačuje analýza jeho- exprese northernovým přenosem (obrázek 1) za' použití. mRNA extrahovaných .z různých tkání (membrány s přenesenou z . ' mRNA, lidských tkání.Multipie Tissue Northern Blots od· firmy . 1 1Clontech)., ^.která^dete kovala» mRNAwpř zbli žně w-vellkos ti*—31l,*'kbr*wl
4
4*44 ·
4
444 4
4 4'9
4· 44« « 4 4 4 4 4 4
444444 44*
4 4 4 4
4 44 44
Může ' být zmíněn výskyt formy mRNA v srdci a kosterních svalech podstupující odlišnou maturaci' (1,4 kb) r
Konstrukce- vektoru umožňujícího expresi proteinu Ki fúzovaného se značkou HA v savčích buňkách se prováděla následujícím způsobem: fragment Ncol-Xhol -z plazmidu pCM282 je vložen do plazmídu pASl na úrovni míst Ncol-Xhol za vzniku plazmidu .pCM322. Dále je fragment EcoRI-Dral z plazmídu pCM322 vložen .do expresního'· vektoru' pCDNA3 na úrovni míst EcoRI-EcoRV. Získaný plazmid pCM323 umožňuje expresi proteinu Ki fúzovaného se značkou HA v savčích buňkách.
Nepřímou imunofluorescencí je ukázáno, že KiHA je lokalizován v jádře, v buňkách transfekovaných touto chimérou' (viz obrázek· 2) . . : rříkl.ad 7 . . ,
Exprese a purifikace proteinu Ki fúzovaného se -7; ;7-.>.'značkou Sa zhačkou myc
.. Následující oligonukleotiďy byly spolu hybridizovány, fosforylovány a pak ligovány s' pET29B předem naštěpeným Ncol.
CATCAAGCTTATGGAGCAGAAGCTGATCTCCGAGGAGGACCTGCAGCTTC (sekvence id. -č. 2) ' a ' '
CATGGATCCACGŤGCAGGTCCTCQTCGGAGATCAGCTTCTGCTCCATAAGCTT (sekvence id. č. 3) . . . '
Získaný plazmid,'byl nazván p'CM320. Gen kódující protein'Ki je amplifikován pomocí PCR s oligonukleótidovými primery „CGCGGATGCGATGGCGTCG-TTGCTGw-w^ (s e kvence-^**^! dť***-^ ěr**^**4 )* a GTAGAGCTCGAGTCAGTACAGAGŤCTČTGC (sekvence id. č. 5) . Získaný • 4 ·· · *· ·· • * · · · φ ···· · ·. · ' 4 4 * · * · 4 • ·»·» · 4 4 ·♦·· 4 ···' ··· · · 4 4 · »ι • 4 « * ·· 4 ···· i
¢..
fragment·se štěpí s-BamHI-XhoI a pak se po ligaci vloží do míst BamHI-XhoI' plazmidu pBCks za vzniku plazmidu pCM305.
Druhý uvedený je poté ' naštépen BamHI-XhoI. Tím uvolněný 1 inzert je ligován do místa BamHI a Xhol pCM320 za vzniku plazmidu . pCM321. Exprese á purifikace rekombinantního proteinu se provádějí podle dodavatelových (Novageh) instrukcí za použití pČM321.·
Příklad 8
I
Exprese a purifikace proteinu GAX -fúzovaného s GST . - .
.. Kolonie BL-2'1 transformované plazmidem pGEX-2T-h-GAX jsou předpěstovány ve 30 ml ,LB s ampicilinem (50 μς/ια!') ‘ ve , 37- °C-· přes noc. 5 ml této předkultury se kultivuje opět .v 500 ml LB ' s'ampicilínem ve 37 °C, dokud se nedosáhne optickét--denzity 0,7 v- 600 nm. Exprese -GST-GAX je indukována 0,lmM
IPTG 2 hodiny ve 30 °C. Kultura se stočí v'6000 rpm 10-.minut. Bakteriální .'pelety. se resuspenďují v 10 ml chladného . ?3,S· a poté ' se rozdělí do 10. zkumavek Eppendorf. Bakteriální
-^pr-ote-iny—sé—-extrahuj 1--sonikaci- ' lO'mihut s'cyk'ly'’ •‘12”*’ s a pauzami 24 s,' což je následováno stočením v 15'000 rpm po 15 minut. Supernatantý se spojí a vytvoří rozpustnou frakci, která bude použita pro puřifikaci. Zbývající pelety ' představují nerozpustnou frakci. .
Purifikace GAX se provádí GST afinitní- metodou s agarózovými perličkami spojeným s glutathionem.. - '
Supernatant získaný, po sonikaci bakterií se inkubuje s pryskyřicí jednu hodinu na rotační třepačce při. teplotě , místnosti. Dále se pryskyřice, ke které je navázán protein,
,.r ... i γι .ii -. m 11 ~ τψ—i.r γΊι......---,11-:-1-1--71----------- ........... λιπ.** stočí v 1000 rpm 10 minut. Jakmile je odstraněn supernatant, pryskyřice se 3x promyje s 50 ml PBS obsahujícím 1% • 9
9*9
999*
999 999
- 44 -Triton X-100 20 minut, na rotační třepačce. GST-GAX 'může být eluován z pryskyřice. guanidiniumthiokyanátem. Eluce se provádí l,5x objemem pryskyřice 2M guanidiniumthiokyanátem, 20 mM Tris pH 7,5, 0,15 M NaCl a 0,1% Tritonem X-100 na rotační třepačce 30 minut. Eluát se dialyzuje proti. PBS přes noc, aby se 'Odstranil guanidiňiumthiokyanát. Protein se uskladní v PBS ve. 4 ŮG. k proteinovému preparátu· se přidá 1/200 --směsi -inhibitorů proteáz v rovnoměrném množství (Leupeptin 1 mg/ml, Pepstatin. 1 mg/ml, Aprotinin. 1 mg/ml, Benzamidín 500 mM)
Příklad 9 - * .
Interakce in vitró mezi proteiny Ki a GAX.
. Proý'· studiům^: interakce ' ‘mezi 'GAX, a Ki, in· .vítr o jsme vytvořili dva -chimérické rékombinantní proteiny v Escher.ichia coli. GST-GAX, .yse1 --purifikoval na , pryskyřici spojené s glutathionemý pomocd/dcatalýtičkého' místa glutathion-S-transferázy (GST), SmycKi--nesoucí epitop myc a epitop S umožňující puríf-ikae-i—na-p-ryskyři-cr-spO j-ené's' proteinem''S .
Příslušná· množství bovinního albuminu,. proteinu GST nebo GST-GAX ' po štěpení trombinem (místo vytvořené mezi GST a. GAX), a také stoupající množství GST-GAX, byla separována na denaturačnim polyakrylamidovém gelu, a poté- obarvena modří Coomasie (obrázek 3 A).
Proteiny byly přeneseny na nitrocelulózovou membránu z gelu.totožného s gelem v oddíle A. Membrána se inkubovala postupně v'přítomnosti SmycKi., v roztoku obsahujícím myší monoklonální protilátku namířenou, proti- epitopu mýc (Santa
... _ff—f- I» lil ''n 'I!»1'»· ....... 1111,1
Cruz) a nakonec'v.roztoku pro detekci protilátek .anti-myc.
♦ * ·· ♦ #· ·» ·· · ··* a · * « • ♦ » «··« «··· • ···· a · ♦ ♦ ··· · ··· «·« • · · · · « · ··· v »· * ·· «·
- - 45 Naše výsledky jasně ukazují, že Ki specificky rozpoznává GST-GAX způsobem . závislým , na dávce, zatímco u bovinního albuminu'nebo· GST není pozorována žádná reakce. Mělo by být zaznamenáno, že po štěpení trombinem Ki stále interaguje s GAX (obrázek 3 B). .
Příklad 10 .... .
Konstrukce vektorů umožňujících expresi fúzního proteinu mezi' různými delečními mutanty GAX· a DNA vazebné domény' GAL4 v savčích buňkách
10*1) Konstrukce plazmidových vektorů
Plazmidy p.CM199 a pCM30.1 jsou štěpeny s HindlII'.· Inzerty . ..se klonují· ve správné- orientaci ' -der pCDNA3 (Invitrogen)'..
v místě '.HindlII za vzniku .plazmidů pCM291 a ,pCM327, umožňující expresi, fúzí v savčích buňkách.
' ·- (Plazmidy ' pCM238, pCM244, pCM301,. pCM246 ' a pCM280, jsou , štěpený s HindlII a Nael. Inzerty sé klonují ve správné orientaci—do..-pCDNA3--. (Inv-i-trogenj-- v místě- -HindiII-EčbRV :zá' • v.zniku plazmidů pCM292, pČM326, pCM327, pCM294· a pCM295, t
•umožňující expresi fúzí v savčích buňkách.
10.2) Konstrukce virových vektorů
Jeden·, 'aspekt vynálezu spočívá v konstrukci a použití· virových vektorů umožňujících přenos a expresi in vivo nukleových kyselin, jakjsou definovány výše.
Co se- týče konkrétně adenovirů, byly charakterizovány různé sérotypy, jejichž struktura a vlastnosti se poněkud liší. Mezi těmito sérotypy .je podle předkládaného vynálezu výhodné použití typu 2 nebo 5 lidského adenovirů (Ad2 nebo *« 4
4« *· • · · * ···· » * «4»· ··«» ···· · · · ···* · «·« 4·4 ··
- 46 »· ··
Ad5) nebo adenovirů zvířecího původu (viz patentová přihláška WO94/26914) . Mezi adenoviry zvířecího původu, .které mohou být použity v rámci předkládaného vynálezu, mohou být zmíněny adenoviry původu psího, bovinního,' myšího (příklad: MAVI, Beard et al., Virology, 75, 8L, 1990), ovčího, prasečího, ptačího nebo alternativně opičího- (příklad:· SAV) . Výhodně je adenovirus zvířecího původu adenovirus psí, výhodněji adenovirus CAV [například kmen. Manhattan nebo A2 6/51 . (ATCC VR-800)]. Výhodně, jsou podle předkládaného vynálezu použity adenoviry lidského - nebo psího nebo smíšeného původu.
Neúplné adenoviry podle vynálezu výhodně zahrnují IT.R, sekvenci umožňující ’ enkapsidaci (zabalení) .a nukleovou kyselinu podle' vynálezu. Ještě výhodněji je v genomu adenovirů vynálezu, alespoň .oblast El nefunkční. Uvažovaný virový..gen může být učiněn nefunkčním· každou technikou·' zňáirÍQ.ů odborníkům, zejména úplnou supresí·, substitucí, Částečnou.' delecí nebo· adicí jedné nebo více baží v uvažovaných, genech. Takové modifikace mohou být získány in vitno (na -izolovaně, y DNA) ' nebo in šitu, například prostřednictvím technik'.', genetického.,inženýrství.,'. .-..nebo- -'--alternativně- v- -ošetřením mutagenními přípravky. Další' oblasti mohou' · být 'také modifikovány, a to zejména oblast E3 (viz WO95/02697), E2 ' (WO94/28938), E4 (WO94/28152, WO94/12649, WO95/02697) a L5 (WO95/02697),. Podle1 výhodného provedení zahrnuje adenovirus podle vynálezu .-deleci v oblastech El a E4. Podle dalšího, výhodného provedení zahrnuje deleci v oblasti El na úrovni, do které jsou vloženy' oblast E4 a nukleotiodová sekvence podle předkládaného vynálezu (viz FR94/13355). Ve virech podle vynálezu delece v oblasti El výhodně zaujímá úsek *· nukleotidů 455 až 3329 na adenovirové sekvenci Ad5.
• » *♦ * 44 44
4 4 · 4 4 · 4 4 • •4 4 4 4 4 4 4 4 4 · 4444 4 4 4 4444 4 4·4 444
4 4 4 4 '4 4
444' 4 44 4 - 4« 44 ' - 47. - -.- .
' 1
Neúplné rekombinantní adenoviry podle vynálezu mohou být připraveny jakoukoliv technikou odborníkům známou (Levrero et al., Gene 101, 195, 1991, EP 185 573, Graham EMBO J. 3, 2917, 1984). Mohou být zejména připraveny homologní rekombinací mezí adenovirem a plazmidem nesoucím inter alia nukleovou . sekvenci nebo kombinaci nukleových- sekvencí vynalezu. Homologní. rekombinace 'nastává po společné transfek.ci uvedenýmadenovirem a plazmidem do příslušné, buněčné., linie. Použitá buněčná linie by měla být výhodně (i)' transformovatelná uvedenými prvky a (ii) ’ zahrnovat .sekvence schopné doplnit neúplnou část adenovirového genomu, výhodně, v integrované formě, aby se zabránilo riziku rekombinace. Jako příkladbuněčné - linie může být zmíněna linie /lidských embryonálních ledvin 2-93 (Graham et al., J. Gen. 'Virol.,· 36, 59, 1977),která obsahuje konkrétně7,··'- lěváu-ý.čášt -genomu- -adenoviru Ad5 (12 .%) integrovanou do’ svého genomu .nebo linie : schopné. , ' doplnit funkce Έ1 a E4, jak' ‘jsou .konkrétně popsány, v přihláškách č. WO94/26914 á' WC'95/O2'697 nebo;' v- Yeh et al.
(J.. , Virol., 7, -559, 1996)·. Dále,”’adenoviry, které se pomno.žil.yj.so.u .. zís-káný-- -zpět - a- pu-rifíkovány-·; -obvyklými ' technikami molekulární biologie./”
Co se týče virů přidružených k adenovirům (AAV), jsou to DNA víry relativně malé velikosti, které se integrují do genomu buněk, které infikovaly, stabilním a místně ' specifickým -způsobem.- Jsou schopné infikovat široké spektrum buněk bez vyvolání jakéhokoliv, vlivu- na buněčný růst, morfologií nebo diferenciaci. Kromě, toho.se zdá, že nejsou zapojeny do patologických procesů u člověka. Genom AAV byl klonován, sekvencován a charakterizován. Zahrnuje přibližně
...............’,..... ........- ............... — - ........... , J'i! ,. π............
tf ^-^Ι4»ι44Μ4»»*4Ι*<ΜΙΙΜ|<ΜΜ4>44Μ···4Ι»······4Φ·4··^^^^^^^ ' · 4700 baží a na každém- konci obsahuje invertovanou koncovou repetici (inverted terminál repeat - ITR) o přibližně 145’ * · • · · • ·♦·· *
Μ ·*
- 48 bazích, sloužící pro virus jako' .počátek replikace. Zbytek genomu je rozdělen do dvou esenciálních oblastí., nesoucích funkce pro enkapsidaci: levá část genomu, která obsahuje gen rep zapojený do virové replikace a exprese virových genů, pravá část genomu, která i obsahuje gen cap kódující proteiny virové.kápsidy.
Použití vektorů pocházejících z AAV pro přenos genů in vitro a in vivo byl v odborné literatuře již popsán (viz zejména WO91-/18088, WO93/09239, US 4 797 368,' US 5 139 941, EP.-488 528). Tyto uvedené, přihlášky popisují různé konstruktyderivované z AAV, ve kterých jsou odstraněny geny rep a/nebo cap .a jsou nahrazeny požadovanými geny, a jejich použití k přenosu těchto genů in vitro (na buňky ve’tkáňové kultuře) ' nebo .in vivo (přímo doorganismu). Neúplné rekombinanty.AAV .podlé vynálezu-.mohou .být., připraveny.,,spo,léčnou . transfekcí do buněčné ’ linie - infikované lidským pomocným virem’ (helper virus) .(to může býtrnapř. adenovirus)., píazmidem obsahujícím .nuJc-reovaiiiy^-še-kv.enGi·' -..nebo kombinaci nukleových sekvencí vynálezu /ohraničenou;· -dvěma AAV invertovanými terminálními repeticemi (ITR), á píazmidem;. nesoucím. AAV ..enkapsidační ..geny. .(geny rep a cap) .. Buněčná linie, která'může být- použita, je například’ linie 293. Další 'způsoby přípravy jsou popsány například v přihláškách WO95/14771, WO95/13365, WÓ95/13392nebo WO95/O6743i Vytvořené rekombinantní AAV jsou poté puri-fikovány obvyklými technikami.
, Co se ’ týče . herpesvirů a . retrovirů,- ' konstrukce rekombiňantních .vektorů byly široce popsány v literatuřevizzejména Břeakfield et . al., New Bioiogist, 3, 203, '1991, EP 453242,. EP 178220, Bernstein et al., Gěnet; Eng., 7, 235, —ígasruicCormick, jBioŤechnology, 3, 689, 1985, apod. Retroviry jsou konkrétně integrativní viry, které selektivně infikují ·· ·
- 49 i dělící se buňky. Proto tvoří vektory zajímavé pro použití v případě rakovinných onemocnění. Genom retrovirů obsahuje esenciálně dvě LTR, enkapsidační sekvenci a tři kódující oblasti (gag,' pol a- env). V rekombinantních· vektorech pocházejících, z retrovirů jsou' obecně geny gag, pol a env Odstraněny, kompletně, nebo částečně, a- jsou nahrazeny požadovanou heterologní . sekvencí, nukleové kyseliny. Tyto vektory 'mohou být' tvořeny z různých typů .retrovirů, jako zejména MoMuLV („Moloney murineL leukemia virus - virus Moloneyho myši. leukemie, také nazýván 'MoMLV), MSV („murine Moloney sarcoma virus ' - virus myšího Moloneyóvy sarkomu), HaSV („Harvěy sarcoma virus - virus Harveyova sarkomu), SNV („spleen necrosis virus - nekrotický virus sleziny), RSV („Rous sarcoma virus - virus Rousova sarkomu)· nebo Friendův ''virus. ·. Pro konstrukci rekombinantních retrovirů· podle vynálezu, které obsahují nukleovou sekvenci nebo .kombinaci nukléových sekvencí' podle vynálezu, . se vytvoří plazmid
..obsahující zejména LTR, enkapsidační sekvenci a uvedenou nukleovou · sekvenci,. a pak je použit pro transfekči' takzvané enkapsidační-..buněčné,--linie schopné, poskytnout- v plazmidu neúplné retrovirové' funkce působící v trans. Obecně jsou enkapsidační linie tudíž schopné exprimovat geny·' gag, pol a env. Takové enkapsidační linie byly popsány·· v předchozím stavu techniky,, zejména' linie PA317 (US 4 861 719), linie'
PsiCRIP. (WO9Q/02806) á linieGP+envAm-12 ' (WO89/07150) . Kromě toho mohou rekombinantní retroviry obsahovat modifikace . na úrovni· LTR, aby potlačovaly · transkripční aktivitu, a 'také rozšířené enkapsidační sekvence ' obsahující část genu gag (Bender et al., J, Virol’., 61, 1639', 1987). Vytvořené rekombinantní retroviry jdou poté purifikovány obvyklými technikami'·.
• « *9» * · · · « · · ··· · · · *
9··· » · · ···· · ··· ··· » · * · · ·
».· « ·* · *· **
- 50 - . .
10.3) Chemické vektory
Nukleové kyseliny ' nebo, popsané plazmidové ' expresní vektory v předchozích příkladech ' mohou být podávány jako· takové in vivo nebo ex vivo. Skutečně bylo ukázáno, že'.prosté nukleové kyseliny mohou transformovat buňky. Ale aby se Zvýšila účinnost přenosu, je výhodné použít v rámci vynálezu, přenosový vektor.· Může to být viróvý vektor' (příklad /9.2),. nebo, syntetický transfekční prostředek. .. '
Ze všech vyvinutých syntetických vektorů je výhodné použít v'rámci, vynálezu kationtové polymery polylysinového typu, (LKLK)n, (LKKL)n, (PCT/FR/00098), polyetylenimin' (WO96/Q2655)· a dextran-DEAE, nebo - alternativně kationtové lipidy nebo· lipofektanty. Mají tu Vlastnost, že; ..kondenzují DNA a podporuj í j-ej-í · spojení.· s· buněčnou'-membránou·./ '-'Jako· -příklad za všechny mohou, být zmíněny lipopóíyaminý (Íipofektamin, transfektam apod.)., různé kationtové. nebo neutrální 'lipidy (DOTMA, DOGS, DOPE apod.), a- také-, peptidy jaderného,-původu.
Navíc ' byla vyvinuta· koncepce 'cílené ..'fřánsfekče, zprostředkované ..recepťor.em, - která - využívá /princip .kondenzace DNA na základě kationtového polymeru, za'směrování připojení komplexu k membráně' následkem, chemické vazby mezi kationtóvým polymerem a ligandem ' membránové receptoru přítomného na povrchu buněčného typu, který se má ;transfekovat. Tak bylo popsáno testovaní receptoru pro transferin, pro inzulín nebo receptoru pro asialoglykoproteiny hepatocytů. Příprava', prostředku podle vynálezu za použití takového chemického vektoru se provádí podle technik odborníkovi známých, obecně jednoduše tak, že se různé složky přivedou do. kontaktu.
.... -...................—------— I II Wťl limu.......I www·
» » ♦ · «ί · · · · · ···· » · · *··* *
- ·51
Příklad 11
Vývoj metody umožňující 'studovat transkripční aktivitu GAX
Pro studování transkripční aktivity specifické pro fúze
GALDB-GAX, a' také pro -jejich účinek, na. transkripční aktivátory, jako je estrógendvý .receptor (ER) nebo kyselá aktivační doména proteinu VP16 viru Herpes simplex fúzovaná k GALDB, jsme použili přechodný transfekční systém. Aby se kvantifikovala, .t-raňskripční ' aktivita každého faktoru nebo kombinace několika faktorů, 'vytvořili jsme cílový (reportérový) .gen exprimující bakteriální chloramfenikolacetyltransferázu (CAT) pod kontrolou1 umělého, promotoru.
Tento promotor .obsahuje TATA ' box, pocházející z genu E1B . adénoviru Ad2 (E1B TATA), v protisměru od místa' počátku ' , t transkrigbb':genu_ CAT (obrázek 4A) . · Protein TBP komplexu TFIID ‘rozpozná--TATAbox a umístí preíniciační komplex (TFÍID + TFII
A,B,E,F), -který rekrutuje. RNA polymerázu typu II '(Polil), která iniciuje·..transkripci . ..genu CAT. V protisměru tohoto bazálního .promotbru ' j-smel·vložili-GALDB vazebné místo (17mer), které je rozeznáváno, chimérami GALDB-GAX nebo ,GALDB-VP16. Také. jsme klonovali' v protisměru od 17meru estr.ogenový responzivní element *(ERE), , ke kterému se váže ER, aby se aktivovala, transkripce. Tento reportérový konstrukt nám umožni studovat' ,různé kombinace, přičemž aktivace nebo represe transkripce má za následek modifikace množství CAT v buňce.. Pro hodnocení transkripčního'účinků se používá test enzymatické- aktivity CAT v buněčných extraktech .. po transfekcí.' ' , . ' .
ER a GAL4-VP16 jsou velmi silné transkripční aktivátory.Ak t i vi t a^CAT** j s*·* ER* z výš eňa1** více^^něž*** 10 Ó x ’ a ' GAL’4- VP fó' přibližně 85x. Společná exprese ER-a GAL4-VP16 má za následek ·· * φ · * «»·· e> ··· *·· • * * · aktivitu CAT, která j.e 300x větší než aktivitaneaktivovaného reportérového genu a. větší než součet aktivity dvou aktivátorů exprimovaných jednotlivě. To svědčí proto, že ER a' GAL4-VP16 navzdory .stérickým překážkám, mohou- obsadit a aktivovat stejný promotor .(obrázek 4B) ...
Příklad 12 Studie transkripční aktivity fúzí GALDB-GAX a' identifikace transkripční represorové domény'
Gen- GAX člověka kóduje protein ósložený ze 302 aminokyselin. Primární struktura tohoto proteinu odhaluje různé domény, .jejíchž funkce zůstává neznámá. GAX patří do 'rodiny takzvaných homeobox genů. Homeobox je nezbytný pro replikaci a'pro vazbu těchto proteinů na. specifické ' sekvence-·.. 'DNA přítomné v promotoru cílových genů, jejichž expresi kontrolují. Do současností nebyla identifikována' žádná DNA' ‘sekvence rozpoznávaná GAX'. GAX' má oblast bohatou na histidinové (HIS) zbytky na své N-koncové ’ části, ' jejichž funkce zůstává neznámá, _ ''...... ' .......
Pro porozumění funkce GAX byly odstraněny různé oblasti lidského genu GAX tak, aby se vytvořily zkrácené proteiny jak na jejich N-koncové, tak. na jejich C-koncové části· (obr. .5) . Čísla, indikuj i 'pozici první a poslední aminokyseliny každé deleční mutanty relativně k celému proteinu GAX zahrnujícímu aminokyseliny 1-302 . (obr. 5). Neznajíce DNA sekvenci, která je přirozeně rozpoznávána -GAX, tvořili jsme chiméry mezi· různými delečními' mutantami a heterologní DNA vazebnou ' doménou (fúzovanou k jejich N-koncové části) pocházející·· z^kvásinkóvého^třanŠkripcního faktoru GAL4 (GALDB). Pro
• * • · 4 · * • 4 4 4 · 4 • a 4 1 « · 9 4 4 4 4 ·
4 - 4
♦ 4 4 • 4 4 4 4
přechodnou expresi různých chimér v kultivovaných savčích buňkách byly konstruovány expresní vektory.;
Různé chiméry GAL-GAX byly exprimovány .samotné nebo • v přítomnosti ER, aby se mohl studovat jejich účinek .na'.
bazální transkripci a na transkripční aktivitu ER.
Celý GAX, v kontextu fúze GAL-GAX1-302 snižuje· více než 8x aktivitu CAT relativně k neaktivovanému reportérovému genu. Tato., represe je slabě ovlivněna, když chybí 36 aminokyselin na N-koncové části GAX (GAL-GAX33-302}, ale je kompletně zvýšena,' když další delece potlačí C-koncovou část t ' ' I
GAX (GAL-GAX33-222}. Tyto 32 aminokyseliny dostačují v kontext GAL-GAX1-32 snížit aktivitu CAT (obrázek 6A}.·
Společná exprese GAL-GAX1-302 a'.EŘ má. za, následek aktivitu · CAT více než 25x nižší než jaká se . získá při samotném .ER. Tato.. represe, .jako v případě A, je způsbběňát.,.; prvními 32 aminokyselinami’ GAX (srovnej GAL-GAX 1-30 2,-'GÁL-. GAX33-302 a GAL-GAX33-222). Těchto'32 aminokyselin N-koncové části (GAL-GAX1-32) snižuje aktivitu .ER . pouze dvakrát (srovnej GAL-GAX1-32, GAL-GÁX1-104) ..a pro maximální -aktivitu vyžaduje alespoň přítomnost, aminokyselinových zbytků 3.3 .až 222 (obrázek 6B)
Tímto 'způsobem jsou hledány sekvence způsobující svou nepřítomností ztrátu aktivity, což umožňuje usuzovat,' že jsou . nutné pro interakci, ale nejsou dostačující.
Předkládané výsledky ' ukazují, ) že , GAX potlačuje transkripci použitého reportérového genu. Tato represe je esenciálně, způsobená peptidem N-koncové části (aminokyseliny 1 až 32), jehož .optimální aktivita vyžaduje přítomnost useku aminokyselin 33 až 222 GAX, a výhodně přítomnost oblasti aminokyselin 33 až 104 GAX.
>. « ' * 9 · • · · ♦ » · ·♦ * · ·«« · ·* · « β * « «· «· • ♦
Za použití různých delecí GAX fúzovaných k DNA vazebné doméně GAL4 jsme byli schopni ve kvasinkách identifikovat (dvojitým hybridním systémem, viz příklad. 5) oblasti GAX, které jsoudůležité pro interakce- s Ki. Je to N-koncová část až ke zbytku 222. Tato oblast obsahuje, jak, jsme již ukázali výše, represórovou doménu GAX. ·.
Příklad 13
Interakce -in vatro mezi GAX a PCNA
13.1) Klonování cDNA lidského '.„jaderného antigenu proliferujicí.· buňky' (PCNÁ, . Proliferating .Cell Nuclear Antigen) a vytvoření rekómbinantního proteinu
Klonování cDNA . PCNA.·-'se?<'přováděíóx.irě.veřzní. ;transkripcí, a následnou. PCR. První - křo-k- reverzní ’-'traňskripče (RT) se provádí s použitím soupravy.„First. Strand cDNA synthesis od firmy Pharamcia. Celková RNA ...se ;extrah.úýe.z:--primární kul tury buněk lidského hladkého svalstva' (Cloňetics) · podle metody popsané .autory..P. Ghromczynski a--,N. Sacchi (Anal. Biochem.,' 162, 156-159, 1987), 10. pg této: ’ celkové RNA -se přenese do μΐ vody, zahřeje se 10 minut' v 65 .°C, ochladí na ledu a pak se smísí s 11 μΐ reakční směsi „Bulk First Strand ze1 soupravy RT (Cioned, FPLCpure®, myší reverzní .transkriptáza, i I
RNase/Dnase-Free BSA, dATP, dCTP, dGTP a dTTP) , 1 μΐ DTT a μΐ primerů pD(N)6. Reakce RT se inkůbuje 1 hodinu ve 37 °C, zastaví se zahřátím 5 minut v 90 °C, a poté se ochladí , na ledu..· Druhý krok spočívá v. amplifikaci cDNA PCNA pomocí PCR. Použité oligonukleotidové' primery pro reakci PCR jsou
....................... WIIHIÍ následující: . '
,.. ,, · ·. »»
t.. · , , · · * · · , . *»·· e a » β * *··· · · ,···· · *·* ··· • . · · · · · · ··· * ,· · ·· ··
- 55. 1: 5'-CGČGgaattcTGTTCGAGGCGCGCCTGGŤCCAGG-3' FE.ARLVQG : 5 ' -GGT.CgaattcTAAGATCCTTCTTCATCCTCGATC'-3 *SGEEDEIK
Tyto dva primeřy vnášejí místo EcoRI '(malá podtržená s
písmena) , .Aminokyseliny PCNA obsažené v primerech jsou představované jejich' kódem (velká písmena) pod odpovídajícími kodony. * představuje stopovací kodon.
- 8 μΐ reakce RT popsané výše se upraví na konečný objem50 μΐ obsahující následující konečná množství ‘ nebo, koncentrace: 50 pm primeru 1, 50 pm primeru 2, .jedna, jednotka Ta.q DNA polymerázy ' (Perkin .Elmer) , 5 μΐ MgCl2 (25 mM) , 2 μΐ :.2QfcmM/'směsi. 4 deoxynukleotidů (dATP, dTTP, dGTP- a dCTP) »a ,5-μ1 -lOx koncentrovaného pufru pro PCR (Perkin Elmer). Amplifikace PCR. s.e- provádí ve zkumavkách Micoamp™ (Perkin Elmer) .'s/pórnočí;'.te'rmocykl'ovače. PTC-100™ (MJ Research, lne.). Tato amplifikace '7spočívá z‘denaturačního kroku 2 miputy. v 95; °C. následovaného 30 cykly,. které obsahují denaturaci15 sekund v ,· 95 °C, nasedání primeru 30 sekund v 55 °C a extenzi 1 minutu v 72 °C. Těchto 30 cyklů je následováno dalšími- 5-minutami extenze, a poté se reakce PCR uchováváji. v 10 °C..
Vlastní klonování. PCNA do vektoru PČRII (Invitrogen) -.se provádí ‘s „Originál ’ TA. Cloning® Kit '(Invitrogen). 3 μΐ produktu PCR, 1 μΐ - lOx ligačního pufru, 2 μΐ vektoru pCRII (25 .ng/μΐ), 3 μΐ vody a 1 μΐ T4 DNA ligázy se inkubují hodin v 16 °G. 2 μΐ této ligační reakce -se’ použijí k transformaci kompetentních bakterií TG1, jak bylo již popsáno výše. Bakterie se poté pěstují 16 hodin v 37 °C na v · • · ·· « · · · » • * · · · • ······ « • * · · ·· · ·· • ♦ * · · • · ij á > β «·«· * ··· ··· • ♦ · « · · ··
- 56 pevném LB-médiu obsahujícím 1,5% agar, 100 gg/ml ampicilinu, v přítomnosti X-gal pro modrobílou selekci rekombínantních klonů (alfa komplementace β-galaktosidázy).'
I '
Rekombinantní klony (bílé kolonie) se' přenesou do 10 μΐ vody a ověří se pomocí PCR za stejných podmínek jako. PCR po reakci RT popsané výše,·' kromě, toho, že se' k reakci přidá 1 Triton Χ-10Ό v konečné-koncentraci 0,01% v/v.
Několik pozitivních klonů se použije pro' minipreparace . '
DNA, a ty, ve kterých, je 5'-koncová část, inzertu PCNA umístěna . po· 'směru čtení od místa' EcoRV- z pCRII, jsou šekvencovány a'uschovány pro následující klonování.
Klonování PCNA do plazmiďu pET29 se provádí' následujícím způsobem:, PCNA . fragment EcoRV-HindlII pocházející- ž PCRITPCNA je.' vložen na- úrovni místa EcoRV-HindlII pET-29’. Tento •plazmid · ·'· se · -poté .'použije -pro produkci · chimérického- y\ , rekombinantního proteinu S-PCNA., Kroky transformace, produkce a purifikace S-PCNA jsou totožné s kroky použitými pro .produkci' antigenu Ki fúzovaného s-epitopem myc. 13.2) Studie interakce GAX sPCNA in .vitro ...
Tato' studie_ se prováděla podle' stejně metody použité v příkladu , 9 pro studování interakce mezi rekombinantními proteiny GST-GAX a SmycKi. Stoupající množství .rekombinantního.' GST a chiméry GST-GAX '(50, 250, 500 a 750 ng) se separovaly'. ria 14% denaturačním polyakrylamidovém' gelu (Novex).. Proteiny jso.u přenesené z·, gelu na nitrocelulózovou membránu, tato membrána je pak inkubována v roztoku' obsahujícím ' rekombinantní protein S-PCNA, pak .následuje imunologické značení PCNA pomocí morioklonální protilátky anti-PCNA (Santa Cruz) . ·' » F ♦· ·
I fr · · · · · * t · · » ««O Q • ···«·* »····♦ • · ♦ · · «»« · ·· ·
- 57 I l
Obrázek 7 ukazuje slabou interakci mezi GST a PCNA pouze ve vysokých dávkách GST (500 a 750 ng) . Afinita GST-GAX ,k PCNA je podstatně větší než afinita GST.
Tato specifická interakce mezi GAX a PCNA svědčí pro to, že antiproliferační aktivita GAX je zprostředkována sekvestrací (maskováním) PCNA. Fakt, že Ki může interagovat .jak s GAX tak s PCNA, je ve prospěch tvorby dvoj- nebo trojdílných komplexů, které mohou hrát hlavni, roli (aktivaci nebo inhibici) v buněčném cyklu.
V1
4.4 · · 4
4 4 4 * ♦··♦ 4 · • 4 » · ·
44 4 · 4 · • 9 * • ·· 9 · a 9 o •·♦ 4«·
4
4 4·
SEZNAM SEKVENCÍ (2) INFORMACE PRO SEKVENCI S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 1:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
{A} DÉLKA:. 23 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina . ' (C) TYP VLÁKNA: jednoduché (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) TYP MOLEKULY: 'CDNA ' '(i i i) HYPOTETICKÁ:'ne . , .
(iv) OPAČNÁ ORIENTACE: ne (xi). POPIS SEKVENCE:'SEKVENCE S' IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 1:
CTATTCGATG ATGAAGATÁC CCC 23 (2)' INFORMACE-PRÍ>;OEKyEŇOí/S -IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 2: .
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE: ' .(A) DÉLKA: 50 párů ba.zí ' (B) TYP: ..nukleová kyselina ;(C). TYP VLÁKNA: jednoduché (D) TOPOLOGIE: lineární ' (ii) TYP MOLEKULY: cDNA (iii) HYPOTETICKÁ: ne ' ' (iv) OPAČNÁ ORIENTACE: ne (xi) POPIS SEKVENCE: SEKVENCE S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 2:
GATCAAGCTT ATGGAGCAGA AGCTGATCTC CGAGGAGGAC CTGCAGCTTC 50 « · · v v
U · * Φ *' « · O Q 9 6 * • ···· · · · ·♦· • · · · · ··· · ·· * *« ·*
- 59 (2) INFORMACE PRO: SEKVENCI S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 3:
. (i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 53 párů baží (B) ' TYP: nukleová kyselina (C) TYP -VLÁKNA: jednoduché (D) TOPOLOGIE: lineární (ii)'TYP MOLEKULY: cDNA . . (iii) HYPOTETICKÁ: ne (iv) OPAČNÁ ORIENTACE: ne (xi) POPIS SEKVENCE:· SEKVENCE S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 3:
CATGGATCCA CGTGCAGGTC CTCCTCGGAG ATCAGCTTCT GCTCCATAAG
CTT .53
..(2)- INFORMACE PRO SEKVENCI S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 4:
(Ϊ)-CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 25 párů baží (B) TYP:, nukleová kyselina (C) TYP VLÁKNA:' jednoduché (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) T.YP MOLEKULY: cDNA ' (iii) HYPOTETICKÁ: ne (iv) OPAČNÁ ORIENTACE: ne ' (xi)- POPIS -SEKVENCE: SEKVENCE Ξ IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 4:·
CGCGGATCCC ATGGCCTCGT TGCTG / - 25
1 - 60 - « • b • • * • b b • ·» b b b b >9 Q 9 b >····* « b e b b b · · ’
4 2) INFORMACE PRO SEKVENCI S IDENTIFIKAČNÍM (i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE: ČÍSLEM 5:
(A) DÉLKA: 30 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) TYP VLÁKNA: jednoduché 1 (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) TYP MOLEKULY: cDNA (iii) HYPOTETICKÁ:· ne ' -
(iv) OPAČNÁ ORIENTACE: ne _ (xi) POPIS.SEKVENCE: SEKVENCE S'IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 5:
GTAGAGCTCG AGTCAGTACA GAGTCTCTGC 30 (2) INFORMACE PRO SEKVENCI Ξ IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM/6 V '2''· ' : (i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE: · · .
(A) DÉLKA: 3.0 párů baží . ' z - (B) TYP: nukleová kyselina i ' · ' · ' (C) TYP VLÁKNA: jednoduché - - (D) TOPOLOGIE; lineární · ' (íi) TYP MOLEKULY: cDNA . ' -v (iii) HYPOTETICKÁ: ne í · (iv) ' OPAČNÁ ORIENTACE: .ne .
(xi) POPIS SEKVENCE: SEKVENCE S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 6:
GAGCGAATTC ATGACCATGA CCCTTCACAC
W * - iii « *
4
4 4 • 4 ··* • 4 β 9 ·
*. *···
- 61 (2) INFORMACE PRO SEKVENCI S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 7:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 30 párů baží .
(B) TYP: nukleová kyselina (C) TYP VLÁKNA: jednoduché · (D) TOPOLOGIE: lineární .
(ii) TYP MOLEKULY:' cDNA ' (iii) HYPOTETICKÁ: ne ' (iv) OPAČNÁ ORIENTACE: ne . . ...
(xi) POPIS SEKVENCE:. SEKVENCE S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 7:
GAGCGAATTC ACTGATCGTG TTGGGGAAGC (2) INFORMACE PRO SEKVENCE 5 IDENTIFIKAČNÍM. ČÍSLEM 8:
(i) CHARAKTER!STJKA'-SEKVENCE·':' · (A) DÉLKA: 60 párů baží · (B) TYP: nukleová kyselina (O- TYP VLÁKNA: dvojité^'/ ··-' ). ..... ' (D). TOPOLOGIE: lineární .
(ii) TYP MOLEKULY: cDNA ;
(iii) HYPOTETICKÁ: ne. ’ ' ’ (iv) OPAČNÁ ORIENTACE: ne - ;
(xi) POPIS SEKVENCE: SEKVENCE.S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 8:
TCGAGAGGTC ATATTGACCT-AAGCTTCGGG TCGGAGTACT GTCCTCCGAC TGCCATATGT /
CTCCAG TAŤAACTGGA' TŤCGAAGCCC AGCCTCATGA CAGGAGGCTG.ACGGTATACAGATC

Claims (5)

  1. PATENTOVÉ - .NÁROKY
    1. Polypeptid, který je fragmentem lidského proteinu GAX obsahujícím alespoň aminokyselinové zbytky 1 až 32 proteinu GAX, a který projevuje transkripční represorovou 'aktivitu a/nebo pozitivně či -negativně, ovlivňuje replikaci DNA.
  2. 2. Polypeptid podle nároku 1, který obsahuje dále alespoň aminokyselinové zbytky 140;až 230 lidského proteinu GAX.
  3. 3. Polypeptid, který obsahuje alespoň jeden-fragment vybraný z fragmentů zahrnujících úseky aminokyselin 1 až 32, 33 až
    302 a 1 až 104 lidského, proteinu GAX, a-.který projevujetranskripční represorovou aktivitu a/nebo pozitivně' ‘'či negativně ovlivňuje replikaci DNA.’4-. Polypeptid, k.terý obsahuje alespoň jeden .fragment vybraný ’· z fragmentů zahrnuj ících úseky aminokyselin 1 až, 32 . a 104 až , 22.3,- proteinu.. GAX, a který je, schopen interakce s proteinem Ki.
    5. Polypeptid podle, kteréhokoliv z nároků. 1 až 3, který je schopen interakce s' PCNA. ‘ .6. Polypeptid podle kteréhokoliv z nároků 1 až 3,- který'je schopen- .interakce s Ki a/nebo PCNA, a který tvoří s těmito ' proteiny alespoň bipartitní nebo alespoň tripartitní komplex.
    « « ·· · 9« ** • · · «·· · · · · • « · 4··« ♦ · · ♦ » »ai« · ♦ * ···· * ··· ··· • · » i « · · **« · ·· · · ··
    7·. Polypeptid, který obsahuje kromě frágmentu proteinu GAX, který projevuje transkripční represorovou' aktivitu, také alespoň jeden fragment jiného původu,
    8 . „Polypeptid podle nároku 7-, kde fragment j iného ’ původu má biologickou.aktivitu nebo má funkci značky - (markér) nebo je to prvek umožňující' zacílení. .:.-9, Nuklěová kyselina,' -která kóduje polypeptid podle ·. kteréhokoliv ž nároků 1 až 7.
    10. -Nuklěová kyselina podle nároku 9, která je DNA.
    11. ; Expresní kazeta, která' obsahuje nukleovou kyselinu podle ,y/·· nároku 9 ^nebo 10 řízenou promotorem.
    12. Expresní, vektor, který obsahuje nukleovou kyselinu podle '•-'A·. 'náróku ?9· nebo 10 nebo expresní kazetu podle nároku 11.· , ' 1 I
    -13.-Vektor podle nároku 12, který je virový vektor.
    1 f '14. Vektor podle nároku 13, který je adenovirus.
    15. Vektor, podle nároku 13, který je re.trovirus.
    16. Použiti polypeptidu podle kteréhokoliv z nároků 1 až 7 pro potlačení (represi) transkripce 'genů a/nebo pro pozitivní či, negativní ovlivnění- replikace DNA. .
    Ij MMIiMU* <111 • 9
  4. 4« ·
    4 · 4
    B ···♦ «
    9' ·
    44« 4 • »
    4 · · » ··· 4 • ·
    9« ♦ · • - · · 9 • «4 ·
    9 ·4· «9«
    9 « * - .
    • · - 64 17. Použití sloučeniny inhibující aktivitu proteinu Ki a/nebo , PCNA pro získání léčiva určeného pro inhibici proliferace buněk hladké svalové tkáně.
    18. Použití pólypeptidu podle kteréhokoliv z nároků 1. až 7 -. pro vytvoření bipartitního· nebo tripartitního komplexu'', s proteinem Ki a/nebo PCNA a, pro pozitivní či negativní,
    . ..ovlivnění průběhu buněčného . cyklu. ,
    19/ Farmaceutický přípravek 'Vyznačující- se t i m, že obsahuje alespoň jeden polypeptid podle kteréhokoliv z nároků 1 až 7 nebo vektor podle kteréhokoliv z nároků 12 až 15. i
    . -· . /Způsob vyhledávání a/nebo identifikace polypept-iďu reagujícího s proteinem GAX- nebo doménou proteinu GAX, . : ,.' /<-.· .ý y-.z^.n ;a dující, se tím, že se použije
  5. 7?r’-ý'poíypěptiď:podle kteréhokoliv z nároků 1 až 7.
    21. < Způsob podle- 'nároku 20 vyznačující'·' se ť í m, že se polypeptid vybere z fragmentů zahrnujících .aminokyselinové zbytky 1 až 32 a- 33 až 302 proteinu GAX.
CZ991318A 1996-10-18 1997-10-16 Polypeptidy obsahující domény proteinu GAX, které se účastní represe transkripce, odpovídající nukleové kyseliny a jejich použití CZ131899A3 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR9612730A FR2754822B1 (fr) 1996-10-18 1996-10-18 Polypeptides comprenant des domaines de la proteine gax, impliques dans la repression de transcription et/ou interagissant avec d'autres proteines, acides nucleiques correspondants et leurs utilisations

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ131899A3 true CZ131899A3 (cs) 1999-07-14

Family

ID=9496803

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ991318A CZ131899A3 (cs) 1996-10-18 1997-10-16 Polypeptidy obsahující domény proteinu GAX, které se účastní represe transkripce, odpovídající nukleové kyseliny a jejich použití

Country Status (22)

Country Link
US (1) US6121005A (cs)
EP (1) EP0941243A1 (cs)
JP (1) JP2001503615A (cs)
KR (1) KR20000049249A (cs)
CN (1) CN1237980A (cs)
AP (1) AP9901510A0 (cs)
AU (1) AU741586B2 (cs)
BG (1) BG63548B1 (cs)
BR (1) BR9711947A (cs)
CA (1) CA2268045A1 (cs)
CZ (1) CZ131899A3 (cs)
EA (1) EA003694B1 (cs)
FR (1) FR2754822B1 (cs)
HU (1) HUP9903956A3 (cs)
IL (1) IL129478A0 (cs)
NO (1) NO991830L (cs)
NZ (1) NZ335283A (cs)
OA (1) OA11034A (cs)
PL (1) PL332874A1 (cs)
SK (1) SK51199A3 (cs)
WO (1) WO1998017686A1 (cs)
ZA (1) ZA979390B (cs)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU2001289652A1 (en) * 2000-06-28 2002-01-08 Aventis Pharma S.A. Compositions and methods for regulating the cell cycle using a ki gene or polypeptide
US8124598B2 (en) 2006-09-14 2012-02-28 Sharon Sageman 7-keto DHEA for psychiatric use
US20100160274A1 (en) * 2007-09-07 2010-06-24 Sharon Sageman 7-KETO DHEA for Psychiatric Use
JP2013522169A (ja) * 2010-02-24 2013-06-13 アンスティチュ ナショナル ドゥ ラ サンテ エ ドゥ ラ ルシェルシュ メディカル 炎症および好中球減少症の処置のための化合物

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5856121A (en) * 1994-02-24 1999-01-05 Case Western Reserve University Growth arrest homebox gene
US5554181A (en) * 1994-05-04 1996-09-10 Regents Of The University Of Minnesota Stent
GB9422175D0 (en) * 1994-11-03 1994-12-21 Univ Dundee Indentification of the p21 waf1-pcna interaction site and therapeutic applications thereof
FR2732357B1 (fr) * 1995-03-31 1997-04-30 Rhone Poulenc Rorer Sa Vecteurs viraux et utilisation pour le traitement des desordres hyperproliferatifs, notamment de la restenose
FR2740344B1 (fr) * 1995-10-31 1997-11-21 Rhone Poulenc Rorer Sa Application de la proteine gax au traitement de cancers

Also Published As

Publication number Publication date
BG103342A (en) 2000-05-31
FR2754822B1 (fr) 1998-11-27
EP0941243A1 (fr) 1999-09-15
EA199900387A1 (ru) 1999-10-28
JP2001503615A (ja) 2001-03-21
NO991830D0 (no) 1999-04-16
FR2754822A1 (fr) 1998-04-24
KR20000049249A (ko) 2000-07-25
US6121005A (en) 2000-09-19
AP9901510A0 (en) 1999-06-30
BR9711947A (pt) 1999-08-24
CA2268045A1 (fr) 1998-04-30
HUP9903956A3 (en) 2002-01-28
OA11034A (fr) 2003-03-06
AU4871397A (en) 1998-05-15
SK51199A3 (en) 2000-04-10
PL332874A1 (en) 1999-10-25
HUP9903956A2 (hu) 2000-03-28
IL129478A0 (en) 2000-02-29
CN1237980A (zh) 1999-12-08
AU741586B2 (en) 2001-12-06
NZ335283A (en) 2001-02-23
EA003694B1 (ru) 2003-08-28
NO991830L (no) 1999-06-16
BG63548B1 (bg) 2002-04-30
ZA979390B (en) 1998-05-12
WO1998017686A1 (fr) 1998-04-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US6090618A (en) DNA constructs and viral vectors comprising a smooth muscle promoter
KR100304033B1 (ko) 세포증식질환치료용약제학적조성물
AU749467B2 (en) Compositions and methods for inducing gene expression
Gupta et al. Transcription enhancer factor 1 interacts with a basic helix-loop-helix zipper protein, Max, for positive regulation of cardiac α-myosin heavy-chain gene expression
RU2214280C2 (ru) Способы и компоненты индукции опухоль-специфической цитотоксичности
US7772367B2 (en) C-terminal p53 palindromic peptide that induces apoptosis of cells with aberrant p53 and uses thereof
CA2216878A1 (en) Viral vectors and their use for treating hyperproliferative disorders, in particular restenosis
KR20220044811A (ko) Crispr/cas13을 사용하는 표적화된 트랜스-이어맞추기
JPH11503011A (ja) 条件発現系
CZ131899A3 (cs) Polypeptidy obsahující domény proteinu GAX, které se účastní represe transkripce, odpovídající nukleové kyseliny a jejich použití
US5786171A (en) Aortic preferentially expressed gene and uses thereof
JP2000512491A (ja) 細胞の腫瘍抑制因子の状態を決定するための方法および構成物
EP0846761A1 (en) A novel transcription factor expressed in cycling cells, nucleic acid molecules encoding said transcription factor and its promoter region and uses thereof
JPH09510343A (ja) 新規な腫瘍抑制遺伝子
US6544948B1 (en) ΔP62, variants thereof, amino acid sequences coding therefor and their uses in gene therapy for cancer
US5861307A (en) Human s-myc-like polypeptide and a gene coding for said polypeptide
MXPA99003470A (en) Polypeptides comprising gax protein domains, involved in repressing transcription and/or interacting with other proteins, corresponding nucleic acids and their use
JP2002509433A (ja) 心筋および骨格筋に特異的な核酸、ならびにその製造方法および使用
AU3981899A (en) A single gene encoding aortic-specific and striated-specific muscle cell isoforms, its regulatory sequences and uses thereof
WO2000060083A1 (en) Novel protein associated with cell stress response
MXPA97008877A (en) P62, its variants, the nucleic acid sequences that code them, and its use in anti-cancer gene therapy
CA2268457A1 (en) Mammalian rad1 genes, polypeptides and methods of use

Legal Events

Date Code Title Description
PD00 Pending as of 2000-06-30 in czech republic