CS258132B2 - Method of l-phenylalanine and l-tryphtofan production - Google Patents

Method of l-phenylalanine and l-tryphtofan production Download PDF

Info

Publication number
CS258132B2
CS258132B2 CS857385A CS738585A CS258132B2 CS 258132 B2 CS258132 B2 CS 258132B2 CS 857385 A CS857385 A CS 857385A CS 738585 A CS738585 A CS 738585A CS 258132 B2 CS258132 B2 CS 258132B2
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
ester
phenylalanine
des
esters
amino acid
Prior art date
Application number
CS857385A
Other languages
English (en)
Other versions
CS738585A2 (en
Inventor
Reinhold Keller
Merten Schlingmann
Original Assignee
Hoechst Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Hoechst Ag filed Critical Hoechst Ag
Publication of CS738585A2 publication Critical patent/CS738585A2/cs
Publication of CS258132B2 publication Critical patent/CS258132B2/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids
    • C12P13/22Tryptophan; Tyrosine; Phenylalanine; 3,4-Dihydroxyphenylalanine
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P41/00Processes using enzymes or microorganisms to separate optical isomers from a racemic mixture
    • C12P41/003Processes using enzymes or microorganisms to separate optical isomers from a racemic mixture by ester formation, lactone formation or the inverse reactions
    • C12P41/005Processes using enzymes or microorganisms to separate optical isomers from a racemic mixture by ester formation, lactone formation or the inverse reactions by esterification of carboxylic acid groups in the enantiomers or the inverse reaction

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Transition And Organic Metals Composition Catalysts For Addition Polymerization (AREA)
  • Nitrogen Condensed Heterocyclic Rings (AREA)

Description

Vynález se týká způsobu výroby L-fenylalaninu a L-tryptofanu, enzymatickým štěpením racemátu nižších alkylesterů.
Z německého zveřejněného spisu 2 215 853 je známo převádět racemické fenylalaniny, které jsou v kruhu mono- a disubstituovány, na odpovídající L-aminokyseliny tím, že se racemát nejdříve esterifikuje alkanolem s až 4 atomy uhlíku, racemický ester se podrobí působení chymotrypsinu v kyselé oblasti pH, L-aminokyselina se izoluje vysrážením a popřípadě se ester D-aminokyseliny extrahuje z filtrátu a zmýdelní se. Jako enzym je výhodný α-chymotrypsin, jehož výhodná oblast pH při enzymatickém štěpení se pohybuje od 5 do 6. Kapalina, zbylá po oddělení L-aminokyseliny, se před extrakcí esteru D-aminokyseliny zalkalizuje.
Nyní bylo zjištěno, že L-fenylalanin a L-tryptofan se zvláště výhodně získávají tím, že se směs získaná při enzymatickém štěpení nejdříve zalkalizuje, potom se extrahuje ester D-aminokyseliny, popřípadě po vysušení extraktu se ester racemizuje a racemát se vrací zpět do procesu. Z alkalického zbytku po extrakci esteru D-aminokyseliny se potom po okyselení izoluje L-aminokyselina.
Předmětem předloženého vynálezu je způsob výroby L-fenylalaninu a L-tryptofanu enzymatickým štěpením racemátu alkylesterů s 1 až 4 atomy uhlíku v alkylové části, s výjimkou terč.butylesteru, pomocí a-chymotrypsinu v rozsahu pH 4,5 až 6,5 a extrakcí esteru D-formy, který spočívá v tom, že se reakční směs získaná při enzymatickém štěpení upraví na hodnotu pH v rozsahu od 7,5 do 8,5, z tohoto alkalického roztoku se extrahuje ester D-aminokyseliny organickým rozpouštědlem, které je málo mísitelné s vodou, jako například uhlovodíky, které jsou popřípadě chlorovány, nižšími dialkylethery, nižšími dialkylketony, jakož i nižšími alkylestery a racemizuje se, načež se racemát vrací zpět do procesu a extrahovaný alkalický roztok se slabé okyselí a potom se z něho izoluje L-aminokyselina.
Esterifikace racemických aminokyselin se může provádět podle údajů obsažených v německém zveřejněném spisu 2 215 853. Výhodné jsou nižší alkanoly s až 4 atomy uhlíku, s výjimkou terc.butylalkoholu, zvláště pak methanol, ethanol, n-propylalkohol, isopropylalkohol a n-butylalkohol.
rc-Chymotrypsin se používá výhodně ve fixované formě, přičemž výhodnými nosiči jsou anorganické nosiče. Tento fixovaný enzym se potom v pevném nebo tekutém loži uvádí ve styk s vodným roztokem substrátu.
Reakce se provádí účelně při teplotách od 20 do 45 °C, výhodně při teplotách 30 až 40 °C, a při pH v rozsahu od 4,5 do 6,5, výhodně při konstantní hodnotě pH v rozsahu od 5,0 do 6,0, vždy podle použitého esteru. Koncentrace substrátu není sama o sobě kritickou podmínkou, a činí účelně 5 až 15 % hmotnostních, zejména 10 až 15 % hmotnostních.
Vodný roztok L-aminokyseliny a esteru D-aminokyseliny získaný po enzymatickém štěpení se slabě zalkalizuje, výhodně na hodnotu pH v rozsahu od 7,5 do 8,5, výhodně na pH 8, a potom se — účelně při teplotách od 20 do 40 °C, zvláště při teplotě místnosti — extrahuje vhodným organickým rozpouštědlem.
Jako organické rozpouštědlo pro extrakci se volí účelně takové rozpouštědlo, které je s vodou málo mísitelné, protože pak se racemizace může provádět zvláště výhodně bez izolace esteru (přítomnost vody při racemizaci může podmiňovat vedlejší reakce, Jako hydrolýzu]. Výhodné je tudíž rozpouštědlo, které tvoří s vodou azeotropickou směs a tím umožňuje snadné sušení extraktu. Je však také možné ~ i když obecně nikoli výhodné — rozpouštědlo použité к extrakci zcela oddělit a ester pak racemizovat ve hmotě.
Vhodnými rozpouštědly pro extrakci jsou alifatické uhlovodíky, jako hexan, zejména aromatické uhlovodíky, jako toluen nebo xylen, ethery, zejména nižší dialkylethery jako diethylether, diisopropylether nebo di-n-butylether, ketony, zejména nižší dialkylketony, jako methylethylketon nebo methylisobutylketon, halogenované uhlovodíky, zejména chlorované nižší alifatické sloučeniny, jako methylenchlorid, chloroform nebo tetrachlormethan, jakož i estery, zejména nižší alkylestery nižších alifatických karboxylových kyselin, jako ethylacetát nebo butylacetát.
Racemizace se může provádět o sobě známým způsobem za katalýzy ketosloučeninami nebo/a kyselinami. Jestliže tedy rozpouštědlem není keton, může se racemizace přidáním aldehydů nebo ketonů podstatně urychlit. Racemizace opticky aktivních esterů aminokyselin v ketonech, popřípadě za přídavku kyseliny, je známa ze zveřejněné japonské přihlášky vynálezu č. 109 912/1979. Při této známé racemizační reakci se může přidávat také rozpouštědlo, jako toluen, tetrachlormethan nebo methanol. Racemizace volných opticky aktivních aminokyselin aldehydy a kyselinami je známá ze zveřejněné evropské přihlášky vynálezu č. 57 092, jakož i z publikace S. Yamady a dalších, J. Org. Chem. 48 (1983) 843 až 846. Účelně se tyto ketosloučeniny používají v katalytických množstvích, výhodně v množství 0,001 až 0,1 mol na 1 mol esteru. Výhodnými jsou acetaldehyd a salicylaldehyd.
D-,L-směs vzniklá při racemizaci se potom snadno extrahuje z racemizační směsi okyselenou vodou, přičemž se ester převede na sůl. Tento vodný roztok se přidáním nového substrátu upraví na požadovanou koncentraci, výhodně na koncentraci 5 až 15 hmotnostních °/o, zejména na 10 až 15 % hmotnostních a vrací se zpět do procesu.
β
Ze slabě alkalického vodného zbytku, který obsahuje aminokyselinu, se izoluje tato aminokyselina okyselením. Vždy podle rozpustnosti kyseliny je možno tuto kyselinu krystalovat bezprostředně nebo po zahuštění. Kyselina se může izolovat také známým způsobem extrakcí vhodnými rozpouštědly. Čištění se provádí známým způsobem.
Postup podle vynálezu umožňuje získání aromaticky substituovaných L-aminokyselin ve výtěžcích nad 90 % a v optické čistotě nad 98 %. Kombinací enzymatického štěpení, extrakce D-esteru, jeho racemizace a opětovným vracením do procesu je dáno zvláště účelné spojení těchto pracovních stupňů, které dovoluje také kontinuální provádění postupu.
V následujících příkladech, se vynález blíže objasňuje. Údaje procent se vztahují na hmotnost, pokud není uvedeno jinak.
Příklad 1
Tmobilizace α-chymotrypsinu
Fixace enzymu se může provádět na křemičitanu hlinitém podle I-Ialwachse a dalších, Biotechnology and Bioengineering XIX (1977) 1 667 až 1 677. Zvláště výhodný je však následující pracovní postup:
138 g suchého silikagelu (velikost částic 0,1 áž 0,3 mm) se suspenduje v 1 litru 3,5% acetonického rozluku 3-aminopropyltricthoxysilanu a suspenze se míchá 2 hodiny při teplotě místnosti. Potom se aceton odpaří na rotační odparce a silikagel se vysuší ve vakuové sušárně během 8 hodin při teplotě 100 ~C. Produkt obsahuje 0,89 mmolu aminoskupin na 1 g silikagelu. Tento aminovaný silikagel se vyjme 400 ml 25% vodného roztoku glutardialdehydu a udržuje se po dobu 2 hodin při teplotě místnosti ve vakuu (asi 13Ό00 Pa). Potom se nosič odfiltruje a důkladně se promyje demineralizovanou vodou.
138 g takto aktivovaného silikagelu se vnese do roztoku 13,8 g a-chymotrypsinu (výrobek firmy Novo, 800 S Oral Grade) ve 300 ml 0,5 M fosfátového pufru (pH 7,5) a směs se míchá 4 hodiny při teplotě místnosti. Potom se katalyzátor odfiltruje a promyje se vždy 1 litrem demineralizované vody, nasyceným roztokem chloridu sodného a znovu 1 litrem demineralizované vody. Za účelem uchovávání se imobilizovaný a-chymotrypsin vyjme 500 ml 0,lM roztoku fosfátového pufru (pH 7,5, 0,1 mmolu azidu sodného).
Za účelem stanovení aktivity se přidá 1 g imobilizovaného α-chymotrypsinu к 50 ml 10% vodného roztoku hydrochloridu methylesteru D,L-fenylalaninu, hodnota pH se upraví na 6,0 a uchovává se v termostatu při teplotě 30 °C, načež se tento roztok míchá. Hodnota pH se udržuje na konstantní hodnotě přídavkem 0,lN roztoku hydroxidu sodného pomocí automatické byrety. Množství spotřebovaného hydroxidu sodného je měřenou veličinou a přímo proporcionálně odpovídá koncentraci L-fenylalaninu.
Aktivita: 338 U/g nosiče (suchého) = 3,35 g L-fenylalaninu/kg nosiče a h (U = mezinárodní jednotka pro aktivitu enzymu, 1 U =· 1 ^mol/min kouverse).
Příklad 2
Enzymatické štěpení racemátu
Do reakční nádoby, kterou lze termostaticky vyhřívat, a která je opatřena vnitřním míchadlem, elektrodou к měření pH a automatickou byretou, se předloží 100 g hydrochloridu methylesteru D,L-fenylalaninu (zbytkový obsah D,L-fenylalaninu pod 0,3 proč., mez průkaznosti pomocí vysoce účinné kapalinové chromatografie) a rozpustí se v 1 litru demineralizované vodě. Hodnota pH roztoku se upraví 5N roztokem hydroxidu sodného (9,5 ml) na 6,0. Roztok se termostatisuje na teplotu 30 °C a pomocí čerpadla se cirkuluje průtokovou rychlostí 5,0 litru/hodinu přes sloupec, který je naplněn 150 ml enzymu fixovaného podle příkladu 1 (průměr sloupce 5,0 cm, výška lože 8 cm).
Hodnota pH roztoku se udržuje po dobu reakce přidáváním 5N roztoku hydroxidu sodného (37,8 ml) na 6,0. Po 25minutové reakční době činí konverse podle vysoce účinné kapalinové chromatografie 49,2 %, vztaženo na methylester D,L-fenylalaninu. Potom se reakce přeruší a lože enzymu se promyje 300 ml demineralizované vody.
Příklad 3
Extrakce methylesteru D-fenylalaninu a následující racemizace
Vodný roztok methylesteru D-fenylalaninu a L-fenylalaninu získaný podle příkladu 2 se za míchání upraví přidáním 5N roztoku hydroxidu sodného (36,5 ml) na pH 8,0 a poté se třikrát extrahuje vždy 300 ml methylisobutylketonu. Po třetí extrakci není již ve vodné fázi podle analýzy vysoce účinnou kapalinovou chromatografií obsažen žádný ester (mez průkaznosti: pod 0,2 %). Ke spojeným extraktům se přidá 14,0 g ledové kyseliny octové (0,5 molekvivalentu, vztaženo na D-ester) a voda obsažená v extraktu se azeotropicky oddestiluje přes Vigreuxovu kolonu. Vysušený extrakt se zahřívá další 2 hodiny za varu pod zpětným chladičem, přičemž se zjišťuje stupeň racemizace stanovením hodnoty optické rotace roztoku pomocí polarimetru. Roztok se po ochlazení na teplotu místnosti třikrát extrahuje vždy 300 ml 0,05N roztoku chlorovodíkové kyseliny. Ve spojených vodných fázích je podle analýzy vysoce účinnou kapalinovou chromatografií obsaženo 98,5 % použitého este258132 ru. Tento vodný roztok se upraví přidáním hydrochloridu methylesteru D,L-fenylalaninu na 10 % a používá se pro další enzymatické štěpení.
Použije-li se jako extrakční činidlo n-hexan, di-n-butylether, toluen nebo xylen, pak se к urychlení reakce přidává katalytické množství acetaldehydu, salicylaldehydu nebo benzaJdehydu.
Místo ledové kyseliny octové se může použít také chlorovodíkové kyseliny, benzoové kyseliny, citrónové kyseliny, p-toluensulfonové kyseliny nebo mravenčí kyseliny. Bez přítomnosti kyseliny probíhá racemizace mnohem pomaleji a vyžaduje více než 10 hodin. Koncentrace kyseliny nad 0,5 mol-ekvi* valentu nezpůsobuje žádné další zvýšení rychlosti.
Příklad 4
Zpracování a izolace L-fenylalaninu
Roztok získaný po extrakci methylisobutylketonem podle příkladu 3, který obsahuje asi 3,5 % L-fenylalaninu, se upraví přídavkem koncentrované chlorovodíkové kyseliny na pH 5,5 (isoelektrický bod fenylalaninu) a zahustí se na rotační odparce na obsah asi 10 % L-fenylalaninu. Vyloučený L-fenylalanin se rozpustí zahříváním na teplotu 90 °C a roztok se za horka zfiltruje. Čirý roztok se ponechá v klidu při teplotě místnosti, přičemž se ve formě velkých krystalů vysráží L-fenylalanin. Matečný louh se ponechá přes noc při teplotě +5 °C, přičemž se vyloučí bílé krystaly, které se odfiltrují a promyjí se malým množstvím studené vody. Krystaly se poté vysouší po dobu 3 hodin při teplotě 105 °C ve vakuové sušárně. Získá se 35,3 g L-fenylalaninu nebo 92% výtěžek, vztaženo na 50 g použitého hydrochloridu methylesteru L-fenylalaninu.
Optická čistota se pohybuje mezi 98,5 až 99,5 %.
Příklad 5
Enzymatické štěpení racemátu:
Ethylester D,L-fenylalaninu
Analogickým postupem jako v příkladu 2 se rozpustí 150 g hydrogensulfátu ethylesteru D,L-fenylalaninu v 1 litru demineralizované vody. Hodnota pH roztoku se upraví přidáním 5N roztoku hydroxidu sodného na 5,5. Roztok se pomocí termostatu udržuje na teplotě 40 CC a pomocí čerpadla se cirkuluje průtokovou rychlostí 60 litrů/hodinu přes sloupec, přičemž po celou dobu reakce se hodnota pH udržuje přidáváním 5N roztoku hydroxidu sodného na 5,5.
Další zpracování probíhá analogickým způsobem jako v příkladu 3 a 4.
Příklad 6
Enzymatické štěpení racemátu:
n-propylester D,L-fenylalaninu
Analogickým postupem jako je popsán v příkladu 5 se nechá reagovat hydrogensulfát n-propylesteru D,L-fenylalaninu, přičemž se však hodnota pH upraví na 5,3 a poté se udržuje na této hodnotě. Další zpracování se provádí analogicky jako v příkladu 3 a 4.
Se stejným úspěchem je možno použít také isopropylesteru nebo n-butylesteru D,L-fenylalaninu.
Příklad 7
L-tryptofan
Analogickým způsobem jako v příkladu 2 se rozpustí 50 g hydrochloridu methylesteru D,L-tryptofanu v 1 litru demineralizované vody a poté se shora popsaným způsobem provádí štěpení. Z takto získaného vodného roztoku se postupem popsaným v příkladu 3 extrahuje methylester D-tryptofanu a zbylý vodný roztok se analogicky podle příkladu 4 upraví přidáním koncentrované chlorovodíkové kyseliny na pH 5,9 (isoelektrický bod tryptofanu) a na rotační odparce se zahustí na obsah asi 5 % L-tryptofanu. Vyloučené krystaly se odfiltrují, promyjí se studenou vodou a vysuší se při teplotě 105 c Celsia během 3 hodin. Získá se 19,4 g (97 % výtěžku) vztaženo na 25 g použitého hydrochlpridu methylesteru L-tryptofanu. Optická čistota činí 98,7 %.

Claims (5)

1. Způsob výroby L-fenylalaninu a L-tryptofaun enzymatickým štěpením racemátu alkylesímu s 1 až 4 atomy uhlíku v alkylové části, s výjimkou terc.butylesteru, pomocí a-chymotrypsinu v rozsahu pH 4,5 až 6,5 a extrakcí esteru D-formy, vyznačující se tím, že se reakční směs získaná při enzymatickém š:čpění upraví na hodnotu pH v rozsahu od 7,5 do 8,5, z tohoto alkalického roztoku se extrahuje ester D-aminokyseliny organickým rozpouštědlem, které je málo mísitelné s vodou, jako například uhlovodíky, které jsou popřípadě chlorovány, nižšími dialkylethery, nižšími dialkylketony, jakož i nižšími alkylestery a racemizuje se, načež se racemát vrací zpět do procesu a extraho váný alkalický roztok se slabě okyselí a poté se z něho izoluje L-aminokyselina.
2. Způsob podle bodu 1 vyznačující se tím, že se používá rozpouštědla, které tvoří s vodou azeotropickou směs, jako například methylisobutylketonu.
3. Způsob podle bodů 1 až 2 vyznačující se tím, že se racemizuje, popřípadě vysušený extrakt D-esteru.
4. Způsob podle bodů 1 až 3 vyznačující se tím, že se racemizovaný ester extrahuje za kyselých podmínek a po zahuštění se vrací zpět do prócesu.
5. Způsob podle bodů 1 až 4 vyznačující se tím, že se jako esteru používá methylesteru, ethylesteru, n-propylesteru, isopropyl· esteru ucho n-butylesteru fenylalaninu nebo tryptofanu.
CS857385A 1984-10-18 1985-10-16 Method of l-phenylalanine and l-tryphtofan production CS258132B2 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19843438189 DE3438189A1 (de) 1984-10-18 1984-10-18 Verfahren zur herstellung aromatisch substituierter l-aminosaeuren

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS738585A2 CS738585A2 (en) 1987-12-17
CS258132B2 true CS258132B2 (en) 1988-07-15

Family

ID=6248201

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS857385A CS258132B2 (en) 1984-10-18 1985-10-16 Method of l-phenylalanine and l-tryphtofan production

Country Status (15)

Country Link
EP (1) EP0178553B1 (cs)
JP (1) JPS61108398A (cs)
AT (1) ATE56472T1 (cs)
CA (1) CA1265083A (cs)
CS (1) CS258132B2 (cs)
DE (2) DE3438189A1 (cs)
DK (1) DK475585A (cs)
ES (1) ES8609186A1 (cs)
FI (1) FI854025A7 (cs)
GR (1) GR852491B (cs)
HU (1) HUT39414A (cs)
IL (1) IL76740A0 (cs)
NO (1) NO854127L (cs)
PT (1) PT81320B (cs)
ZA (1) ZA857971B (cs)

Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE3618465A1 (de) * 1986-06-02 1987-12-03 Hoechst Ag Durchfuehrung von biokatalysatorreaktionen in einem wirbelbettreaktor mit fluessigem 2-phasen-system
DE3622662A1 (de) * 1986-07-05 1988-01-14 Hoechst Ag Verfahren zur kontinuierlichen biokatalytischen umsetzung von substraten, die in waessrigen loesungen schwer loeslich sind
US5002871A (en) * 1986-08-18 1991-03-26 The Coca-Cola Company Enzymatic membrane method for the synthesis and separation of peptides
DE3839379A1 (de) * 1988-11-22 1990-05-23 Hoechst Ag Verfahren zur herstellung von tripeptiden
US5025325A (en) * 1989-10-13 1991-06-18 Hewlett-Packard Company Graphics scaling method for high resolution printers
DE19546532C2 (de) * 1995-12-13 2000-04-20 Degussa Verfahren zur Gewinnung von optisch aktiven L-alpha-Aminocarbonsäuren aus entsprechenden racemischen D,L-alpha-Aminocarbonsäuren
FR2778671B1 (fr) 1998-05-14 2002-07-05 Rhone Poulenc Agrochimie Nouveau procede de preparation d'intermediaires de synthese
HU228360B1 (en) 2001-09-25 2013-03-28 Hoffmann La Roche Enzymatic process for the preparation of substituted 2-amino-3-(2-amino-phenylsulfanyl)-propionic acid
JP5028672B2 (ja) * 2007-05-23 2012-09-19 ボイス パテント ゲーエムベーハー 古紙裁断用ロータ
JP4934881B2 (ja) * 2007-05-23 2012-05-23 ボイス パテント ゲーエムベーハー 古紙裁断用ロータ

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA947214A (en) * 1971-04-02 1974-05-14 Antoine D'iorio Resolution of racemates of ring-substituted phenylalanines
US3878043A (en) * 1973-01-02 1975-04-15 Univ Southern Illinois Method for preparing L-dopa and novels compounds useful therein

Also Published As

Publication number Publication date
DE3438189A1 (de) 1986-04-24
ATE56472T1 (de) 1990-09-15
ES8609186A1 (es) 1986-09-01
CA1265083A (en) 1990-01-30
PT81320A (de) 1985-11-01
ZA857971B (en) 1986-05-28
EP0178553A2 (de) 1986-04-23
DK475585D0 (da) 1985-10-17
DK475585A (da) 1986-04-19
FI854025A0 (fi) 1985-10-16
PT81320B (de) 1987-05-18
FI854025L (fi) 1986-04-19
IL76740A0 (en) 1986-02-28
FI854025A7 (fi) 1986-04-19
EP0178553A3 (en) 1987-04-29
NO854127L (no) 1986-04-21
DE3579663D1 (de) 1990-10-18
ES547901A0 (es) 1986-09-01
JPS61108398A (ja) 1986-05-27
EP0178553B1 (de) 1990-09-12
HUT39414A (en) 1986-09-29
CS738585A2 (en) 1987-12-17
GR852491B (cs) 1986-02-11

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5008192A (en) Enzymatic process for the preparation of optically active cyanohydrins
CS258132B2 (en) Method of l-phenylalanine and l-tryphtofan production
US3971700A (en) Process for the enzymatic resolution of DL-phenyl glycine amide into its optically active antipodes
JPH01309695A (ja) 光学活性2―アリールプロピオン酸の製造方法
RU1816287C (ru) Способ получени S(+) анантиомера 2-арилалкановой кислоты
FR2511036A1 (fr) Procede de preparation de derives d'insuline et produits obtenus
JPH1180149A (ja) (±)−クロマンカルボン酸の光学分割法
US5714356A (en) Enzymic process for preparing aliphatic S-cyanohydrins
EP0869961B1 (en) Process for the recovery of cephalexin
JPH0657158B2 (ja) 複合酵素系を使用するn‐アシルアミノ酸エステルのエナンチオ選択性加水分解
JP3704719B2 (ja) 光学活性3−アミノブタン酸の製造法及びそのエステル中間体
US4613691A (en) Preparation of amino acids from unsaturated hydantoins
US4259441A (en) Process for resolving D, L-leucine
JPH0739391A (ja) α−第3カルボン酸エステルの酵素的分解方法
JP3704731B2 (ja) 光学活性3−ヒドロキシヘキサン酸類の製造方法
Claesen et al. Preparation of the Enantiomers of 2‐Carbobenzyloxyaminoadipic Acid and Their 1‐Benzylesters
AU596158B2 (en) Process for the separation of L-leucine and L-isoleucine
JP3129776B2 (ja) 光学活性なα−ヒドロキシアルケン誘導体の製造方法
NO149779B (no) Fremgangsmaate for fremstilling av d-(-)-fenylgycinforbindelser ved enzymatisk hydantoinhydrolyse
JP3720435B2 (ja) 4−ハロゲノグルタミン酸のラセミ分割方法
JP3636733B2 (ja) 光学活性2−ヒドロキシ−3−ニトロプロピオン酸およびその対掌体エステルの製造法
JP3217301B2 (ja) 光学活性グリシド酸エステル及び光学活性グリセリン酸エステルの製造方法
US5120855A (en) Formation of hydroxyaromatic ketoacetal from a hydroxyaromatic methylketone and production of 5-(4'-hydroxyphenyl)hydantoin and Dp-hydroxyphenylglycine from 4-hydroxyacetophenone
US5916762A (en) Process for the recovery of ampicillin
JP2886576B2 (ja) シクロヘキサンカルボン酸誘導体の製法