CS248719B2 - Production method of the clavine alcaloids - Google Patents
Production method of the clavine alcaloids Download PDFInfo
- Publication number
- CS248719B2 CS248719B2 CS846104A CS610484A CS248719B2 CS 248719 B2 CS248719 B2 CS 248719B2 CS 846104 A CS846104 A CS 846104A CS 610484 A CS610484 A CS 610484A CS 248719 B2 CS248719 B2 CS 248719B2
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- strain
- medium
- liter
- alkaloids
- claviceps
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
- C12N1/145—Fungal isolates
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/38—Chemical stimulation of growth or activity by addition of chemical compounds which are not essential growth factors; Stimulation of growth by removal of a chemical compound
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P17/00—Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms
- C12P17/18—Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms containing at least two hetero rings condensed among themselves or condensed with a common carbocyclic ring system, e.g. rifamycin
- C12P17/182—Heterocyclic compounds containing nitrogen atoms as the only ring heteroatoms in the condensed system
- C12P17/183—Heterocyclic compounds containing nitrogen atoms as the only ring heteroatoms in the condensed system containing an indolo[4,3-F,G]quinoleine nucleus, e.g. compound containing the lysergic acid nucleus as well as the dimeric ergot nucleus
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
- C12R2001/645—Fungi ; Processes using fungi
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Virology (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Mycology (AREA)
- Botany (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
(54) Způsob výroby klavínových alkaloidů
Je popsána výroba klavinových alkaloidů. Obecného vzorce I
R
(·) (R = methyl nebo hydroxymethyl) submersní ' kultivací kmene Clavlceps fusiformis 00211 při 20· až 20 °C a pH 4,2 až 6.
Vynález se týká nového mikrobiologického způsobu výroby klavinových alkaloidů obecného vzorce I
M
I v němž
R znamená methylovou nebo hydroxylmethylovou skupinu.
Ze zmíněných alkaloidů je velice zajímavý elymoklavin (R = hydroxymethylová skupina) představující léčivo s analeptickým a antiparkinsonickým účinkem a ínhlbující sekreci prolaktinu [B. Berde a O. Schild: Ergot alkaloide and related compounds; Handbook Exp. Pharm., 49, Springer Verlag, Berlín (1978)]. Elymoklavin je dále potenciální výchozí látkou syntézy lysergolu a meziproduktem pro Nicergolin.
Agroklavin (R = methylová skupina) je prokursorem elymoklavinu.
Je známo, že kmeny houby Claviceps jsou schopné biosyntézy námelových alkaloidů na žitu ve vztahu hostitel-parazit. O kmenech Claviceps produkujících klaviny je rovněž známo, že produkují uvedené alkaloidy i za saprofytlckých podmínek [M. Abe se spol.: J. Agric. Chem. Soc. (Japonsko) 25, 458 1(1952)]. Zatímco poslední způsob není využíván v provozním měřítku, poskytuje dobrý podklad při biosyntéze skeletu [L. C. Vining: Can. J. Mlcrobiol. 12, 915 (1966) a H. G. Floss: Tetrahedron 32, 873 (1976)].
Prvý způsob, využitý průmyslově, byl vypracován G. T. Banksem se spol. [J. Gen. Microbiol. 82, 345 (1974)]. Při tomto způsobu byl kmen Claviceps fusilormis izolován ze sklerocia Pennisetum typhoideum a potom byl opakovaně selektován za účelem získání ikmene poskytujícího vyšší výtěžky. Tento nový kmen produkoval agroklavin.
Potom Z. Řeháček se spol. připravili nové mutanty kmene Claviceps purpurea. Jedna mutanta produkovala především agroklavin, zatímco druhá produkovala převážně elymoklavin. V případech obou mutant produkujících elymoklavin hladina alkaloidů v živném prostředí činila jenom 300 až 600 ,ug/ml [J. Nat. Prod. 44, 225 (1981)]. SSSR patent, spis 735 010, případně Prikl. Bloch. Mikróbiol., 18, 569 (1980) popisuje přirozený kmen Claviceps fuslformis produkující šest různých alkaloidů s celkovou hladinou alkaloidů 1 220 ^g/ml, kde podíl elymoklavinu dosahuje 70 až 75 %.
S. H. Ambiket se spol. [Phytochem. 9,
1953 — 1958 (1970)] shledali, že kmeny produkující klavinové alkaloidy typu Claviceps purpúreá obsahují cytochrom P-450 a jeho hladinu lze zvýšit přidáním fenobarbltalu, což vede současně ke vzrůstu hladiny alkaloidů produkovaných kmenem.
Naším cílem bylo získat kmen produkující klavinové alkaloidy, především elymoklavln, ve vysokém výtěžku spolu s alkaloidy, od nichž lze snadno elymoklavin separovat.
Modelové pokusy byly prováděny s kmenem typu Claviceps fusiformis na glycerinopeptonovém živném prostředí produkujícím agroklavin jako hlavní alkaloid a elymoklavin jako vedlejší alkaloid. [A. Tonolo a E. Udvardy-Nagy: Acta Microbiol. Acad. Sci. Hung., 15, 29 (1968)]. Tento kmen byl uložen 2. května 1977 v Národní sbírce mikroorganismů v maďarském Státním zdravotním stavu (Országos Kózegészségúgyi Intézet, Budapešť) pod číslem 00164.
Výzkumy ukázaly, že tento modelový kmen obsahoval alternující oxidázový enzym, zejména cytochrom P-450, a přidání barbiturátů stimulovalo obsah cytochromu P-450 i celkovou produkci alkaloidů.
Bylo shledáno, že byla-li kultura kmene 00164 kultivována v přítomnosti barbiturátů, byla morfologie i pigmentace kolonií podstatně odlišná ve srovnání s původními kmeny. Po opakované selekci se tyto nové znaky ustálily a staly se charakteristickými pro nově vyselektované kmeny, a to i v nepřítomnosti barbiturátů.
Biochemické vlastnosti nové varianty se liší od vlastností rodičovského kmene, tj. kmene č. 00164. Rychlost růstu a schopnost tvorby polysacharidů jsou menší, zatímco schopnost vytvářet alkaloidy a pigmenty je v případě nové varianty mohutnější. Co bylo opravdu překvapivé, byla skutečnost, že podíl elymoklavinu v hladině celkových alkaloidů převažoval, zatímco rodičovský kmen produkoval primárně agroklavin.
Tento nový kmen byl uložen 15. října 1981 v Maďarské Národní sbírce mikroorganismů ve Státním zdravotním ústavu (Országos Kózegészségúgyi Intézet, Budapešť) pod Číslem 00211.
Z výše uvedených poznatků vychází vynález nového mikrobiologického způsobu výroby klavinových alkaloidů obecného vzorce I
(0 .248719 kde
R znamená methylovou nebo hydroxylmethylovou skupinu, kultivací kmene Claviceps fusiformis v tekutém submerzním kultivačním prostředí obsahujícím zdroje uhlíku, dusíku, minerální soli a případně další přísady za aerobních podmínek. Podstata způsobu podle vynálezu spočívá v tom, že se používá varianty kmene Claviceps fusiformis uložené pod číslem 00211 jako kmene produkujícího alkaloidy, přičemž fermentace se provádí při teplotě 20 až 20 CC v rozsahu hodnoty pH 4,2 až 6,0 a získané alkaloidy se izolují.
Biologicky čistá kultura varianty organismu Claviceps fusiformis, kmen č. 00211, se může získat tak, že se kmen Claviceps Vusiformis č. 00211 kultivuje v pevném živném prostředí obsahujícím zdroje uhlíku, dusíku, minerální soli a agar, jakož i přísady zvyšující tvorbu cytochromu P-450, a následnou selektivní izolací uvedeného nového kmene č. 00211.
Přísady zvyšující tvorbu cytochromu P-450 jsou barbiturátového typu a používají se v množství 10 mmol/litr fermentačního prostředí. Kultura se inkubuje při teplotě 20 až 28 °C po dobu 7 až 21 dní, a fialově zbarvené ploché kolonie nového kmene, které lze snadno odlišit od rodičovského kmene, se selektují, selekce se případně opakuje v přítomnosti nebo v nepřítomnosti barbiturátů, a izoluje se nová varianta kmene produkující nejméně 85 % elymoklavinu.
Rodičovský kmen 00164 roste v prostředí ztuženém agarem.
Živné prostředí vhodné pro kultivaci rodičovského kmene má následující složení.
Živné prostředí „A“
sacharóza | 100' g |
1-asparagin | 10,0 g |
dusičnan vápenatý | 1,0 g |
dihydrogenfosforečnan draselný | 0,25 g |
síran horečnatý | 0,25 g |
chlorid draselný | 0,125 g |
síran železnatý | 0,033 g |
síran zinečnatý | 0,027 g |
L-cystein-hydrochlorid | 0,010 g |
kvasničný extrakt (Difco) | 0,100 g |
agar (Difco) | 30,0 g |
Hodnota pH roztoku výše uvedených složek se nastaví na 2,5 hydroxidem sodným, kapalina se zředí vodou na 1 000 ml a potom se sterilizuje při teplotě 110 °C po dobu 30 minut. Po ochlazení živné prostředí ztuhne.
Živné prostředí „B“
Ze 39 g bramboro-glukózového agaru (Difco) se za použití techniky popsané pro prostředí „A“ připraví 1000 ml živného prostředí.
Živné prostředí „C“ sacharóza kyselina jantarová dusičnan vápenatý dusičnan amonný dihydrogenfosforečnan draselný síran hořečnatý chlorid draselný síran železnatý síran zinečnatý agar (Difco)
100,0 g
10,0 g
1,0 g
1,0 g
0,25 g
0,25 g
0,125 g
0,009 g
0,003 g
30,0 g
Hodnota pH uvedené směsi se nastaví na
3,5 až 5,6 hydroxidem amonným a potom stejně, jako je uvedeno pro živné prostředí „A“, se připraví 1 litr živného prostředí.
Živné prostředí „D“ glycerol 100g pepton (Difco) 20g agar (Difco) 30g
Výše uvedené složky se ředí vodou na 1 000 ml, hodnota pH se nastavuje ná 6,5 až 6,8 a potom se roztok sterilizuje při teplotě 110 'C po dobu 30 minut.
Kultivace se provádí v kterémkoliv výše uvedeném živném prostředí za sterilních aerobních podmínek při teplotě 20 až 28 °C v přítomnosti přísad zvyšujících tvorbu cytochromu P-450, s výhodou v přítomnosti barbiturátů. Jako přísady barbiturátového typu přicházejí v úvahu N-fenylbarbituráty, například fenobarbital nebo methyřfenobarbital. Kultivace se provádí po dobu 7 až 21 dnů a potom se izolují kolonie nového kmene. Nový kmen lze udržovat na šikmém agaru nebo v lyofilizované formě.
Hlavní morfologické a biochemické znaky odlišující nový kmen od rodičovského jsou uvedeny v následující tabulce.
.2487 19
Kmen č. 00211
Morfologické a biochemické Kmen č. 00164 znaky béžově zbarvené, ostře ohraničené kolonie se svraštělým povrchem o průměru 10 až 15 mm béžově zbarvená, hustá viskózní kultura fialově zbarvené, ostře ohraničené, ploché kolonie se vzdušným myceliem o průměru 15 až 20 mm hnědo-fialová, tence vločkovitá kultura
Morfologie kolonií v živném prostředí „C“ 21. dne
Morfologie kolonií v živném prostředí „C
12. dne (v submerzní
a) makroskopické znaky
b) mikroskopické znaky Fenobarbitalová tolerance
a) na pevném (agarovém) prostředí
b) v kapalném prostředí
Hladina cytochromu P-450 (mmol/g suchého mycelia) v živném prostředí „C“, během 4. až 7. dne
Hladina polysacharidů (mg/ml) 7. dne v živném prostředí „C“
Celková produkce alkaloidů (iUg/ml/den) 4. až 7. dne v živném prostředí „C“ (připraveném bez agaru)
Obsah alkaloidů
a) v živném prostředí „C“ (připraveném bez agaru) agroklavin % elymoklavin %
b) v živném prostředí „D“ (připraveném bez agaru) agroklavin °/o elymoklavin % kultuře) dlouhé hyfy, průměru 3 až 5 nm často tvoří vlákna mmol/litr
Ď,6 mmol/litr
1,0 až 1,5
20,8 až 80 ,75 až 80 až 25 až 95 až 10 mmol/litr mmol/litr
2,5 až 3,0
3,8
200 až 250 až 15 až 95 až 10 až 95
Nový kmen č. 00211 uvedený výše je použitelný pro přípravu klavinových alkaloidů podle následujícího způsobu:
Při fermentačním způsobu se používá vhodného kapalného živného prostředí obsahujícího zdroje uhlíku a dusíku, minerální soli a případně další přísady. Pro fermentaci produkující alkaloidy lze kromě jiných použít následujících složení živných prostředí:
Živné prostředí „E“ manltol 40,0 g/litr kyselina jantarová 10,0 g/litr kukuřičný výluh :(corn steep liquor) 2,0 g/litr dihydrogenfos'forečnan draselný 1,0 g/litr síran hořečnatý 0,3 g/litr
Živné prostředí „F“ sacharóza 50,0 g/litr strouhané brambory 10,0 g/litr dusičnan amonný 1,0 g/litr dihydrogenfosforečnan draselný 0,25 g/litr síran hořečnatý 0,25 g/litr
Hodnota pH roztoku výše uvedených složek se nastaví na 5,2 až 5,3 hydroxidem amonným.
Hodnota pH roztoku výše uvedených složek se nastaví na 5,4 až 5,5 hydroxidem amonným.
Živné prostředí „G“ sorbitol 60,0 g/litr kyselina jantarová 36,0 g/litr dihydrogenfosforečnan draselný 0,25 g/litr síran hořečnatý 0,30 g/litr síran železnatý 0,009 g/litr síran zinečnatý 0,003 g/litr
Hodnota pH roztoku výše uvedených složek se nastaví na 5,4 až 5,5 hydroxidem amonným.
Kterákoliv směs složení uvedeného vpředu se rozpustí ve vodě při teplotě 50 až °C a sterilizuje se při teplotě 110 °C po dobu 30 minut.
Výše popsaná živná prostředí „E“, „F“ a „G“ nebo živná prostředí „C“ nebo ,,D“ připravená bez agaru jsou vhodná pro produkci alkaloidů. Fermentace se provádí za sterilních aerobních podmínek v submerzní kultuře při teplotě 20 až 28 °C po dobu 10 až 15 dní v rozsahu hodnot pH 4,2 až 6,0.
Vynález je podrobně vysvětlen na následujících příkladech, které jej však neomezují.
Příklady provedení
Příklad 1 dní staré kolonie varianty Claviceps fusiformis, kmen č. 0021, na živném prostředí „A“ byly odstraněny z povrchu agaru pomocí 5 ml fysiologického roztoku. Získaná suspenze byla homogenizováría a 1 ml inokula byl přenesen do 500 ml Erlenmeyerovy baňky obsahující 100 ml prostředí „G“ připraveného bez agaru. Kultura byla inkubována při teplotě 24 °C po dobu 7 dní na rotační třepačce (240 ot./min, výkyv 2 cm).
ml získané kultury byly přeneseny do 500 ml Erlenmeyerovy baňky obsahující 100 ml vysterilizovaného prostředí „C“. Kultura byla pěstována po dobu 12 dní za výše uvedených podmínek. Třetího a pátého dne byl k fermentačnímu prostředí přidán 1 ml 10% sterilního vodného· roztoku kvasničného extraktu (Difco).
Dvanáctého dne činil obsah suchých buněk mycelia v prostředí 18 g/litr. Béžovo-fialově zbarvená masa mycelia byla oddělena od prostředí, a celkový obsah alkaloidů ve filtrátu, stanovený pomocí van Urkova činidla za použití elymoklavinového standartu, byl 1 300 ^g/ml.
Obsah elymoklavinu a agroklavinu v prostředí byl stanoven následujícím způsobem:
ml homogenizované kultury bylo extrahováno 40 ml směsi chloroform-isopropylalkohol (4:1) při hodnotě pH 9. 10 ml organické vrstvy bylo odpařeno do sucha za sníženého tlaku. Odparek byl rozpuštěn ve směsi chloroform — methanol (1:1). 20 μΐ tohoto roztoku bylo podrobeno tenkovrstevné chromatografii za použití DC Alufolií Kieselgel 6OF254 (Merek, výrobek 5554) jako adsorbentu a směsi chloroform-ethanol (4:1) jako· vyvíjecího činidla. Skvrny byly detegovány pomocí ultrafialového záření při 254 nm. Elymoklavin (Rf 0,20) a agroklavin (Rf 0,30) byly stanoveny spektrofotometricky při 283 nm ve směsi methanol-kyselina vinná (1:1). Obsah elymoklavinu byl 1150 ^g/ml, obsah agroklavinu činil 55 ^g/ml.
Příklad 2
Lyofilizované kolonie varianty Claviceps fusiformis, kmen č. 0021, byly suspendovány do· 2 ml fysiologického roztoku, Homogenizovaná suspenze byla přenesena do 500 ml Erlenmeyerovy baňky obsahující 100 ml vysterilizovaného média „E“. Kultura byla pěstována po dobu 7 dní za podmínek popsaných v příkladu 1.
x 2 ml získoiné kultury byty přeneseny do 500 ml Erlenmeyerových baněk obsahujících 100 ml prostředí ,,G“. Kultury byly pěstovány při teplotě 24 °C za třepání po dobu 3 dní. Získaná inokula byla přenesena do desetilitrového skleněného fermentoru, obsahujícího 5 litrů sterilního živného prostředí ,,G“. Kultury byly pěstovány při teplotě 24 ClC za vzdušnění (0.5 1/1/inirn) a za míchání (430 ot/min) po> dobu 12 dní. V případě potřeby bylo přidáno· 0,5 ml/1 sterilního protipěnivého prostředku Struktolu SB 2020.
Na konci fermentace obsahovalo prostředí 16 g suchých buněk mycelia v litru a osah všech alkaloidů stanovený podle příkladu 1 byl 1 550 jíg/ml, přičemž množství elymoklavinu dosáhlo až 1 435 ^g/ml a agrokyavinu až 90 <g/ml.
Příklad· 3
Lyofilizované kolonie varianty Claviceps fusiformis, kmen č. 00211, byly suspendovány ve 2 ml fysiologického roztoku a homogenizovaná suspenze byla naočkována na prostředí ,,B“. Kultura byla inkubována při teplotě 24 °C ve tmě po dobu 14 dní. Takto získaná očkovací kultura byla sebrána z povrchu a homogenizována s 5 ml fysiologického roztoku. 2 x 2 ml homogenizované kultury byly přeneseny do 500 ml Erlenmeyerových baněk obsahujících po 100 ml prostředí „F“. Kultura byla potřepávána při teplotě 24 °C po· dobu 5 dní a potom přenesena do desetilitrového skleněného fermentoru obsahujícího 5 litrů sterilního· živného prostředí ,,C“.
Kultura se nechala růst při teplotě 24 °C za podmínek vzdušnění (0.,51/1/min) a míchání (430 ot/min) po dobu dvou dní. Takto získané inokulum bylo přeneseno do 1601itrového· nerezového fermentoru obsahujícího 110 litrů sterilního média C, ke kterému bylo doplněno^ 20 g/1 chloridu sodného.
Kultura se nechala růst při teplotě 24 °C za vzdušnění (0,4 1/11min) a míchání 200 ot/min) po dobu 12 dní. Během fermentačního procesu bylo přidáno protipěnivé činidlo, sterilní Struktol SB 2020, v celkovém množství asi 220 ml.
Po- ukončení fermentace obsahovalo prostředí 15 g suchého buněčného mycelia v litru a 1815 pg veškerých alkaloidů/ml, z (3:2) acetonitrilu a 0,01M vodného roztoku uhličitanu amonného; detekce ultrafialovým zářením při 280 nm]. Elymoklavin měl dobu retence 8,7 minuty, agroklavin 32,0 minut. i toho až 1 630 ^g/ml elymoklavinu a až 240 jug/ml agroklavinu. Prostředí bylo zfiltrováno a pomocí vysokotlaké kapalinové chromatografie (HLPC) byl stanoven ve filtrátu elymoklavin a agroklavin [adsoribent: Nucleosil 10 C 18; eluční činidlo: směs
Claims (1)
- PŘEDMĚT VYNÁLEZUZpůsob výroby klavinových alkaloidů obecného vzorce I kde !R znamená methylovou nebo hydroxymethylovou skupinu, kultivací kmene Claviceps fusiformis v tekutém submerzním kultivačním prostředí obsahujícím zdroje uhlíku, dusíku, minerální soli a případně další přísady za aerobních podmínek, vyznačující se tím, že se používá varianty kmene Claviceps fusiformis uložené pod číslem 00 211 jako kmene produkujícího alkaloidy, přičemž fermentace se provádí při teplotě 20 až 28 °C v rozsahu hodnoty pH 4,2 až 6,0 a získané alkaloidy se izolují.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
HU832817A HU190141B (en) | 1983-08-10 | 1983-08-10 | New process for production of clavin-type rye-smut alcaloids |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS248719B2 true CS248719B2 (en) | 1987-02-12 |
Family
ID=10961237
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS846104A CS248719B2 (en) | 1983-08-10 | 1984-08-10 | Production method of the clavine alcaloids |
Country Status (13)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4618581A (cs) |
JP (2) | JPS60120997A (cs) |
AT (1) | AT383828B (cs) |
BE (1) | BE900294A (cs) |
CH (1) | CH664758A5 (cs) |
CS (1) | CS248719B2 (cs) |
DE (1) | DE3429573A1 (cs) |
ES (1) | ES8604306A1 (cs) |
FR (1) | FR2550549B1 (cs) |
GB (1) | GB2148278B (cs) |
HU (1) | HU190141B (cs) |
NL (1) | NL8402466A (cs) |
PT (1) | PT79051B (cs) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH02250747A (ja) * | 1989-03-24 | 1990-10-08 | Seiro Japan:Kk | Cncタッピング・ドリリング・ミィリングマシン |
CA2093422C (en) * | 1990-10-05 | 2001-04-03 | DETERGENT COMPOSITIONS CONTAINING LOW CBH I CONTENT CELLULASE COMPOSITIONS | |
WO2003080059A1 (en) * | 2002-03-25 | 2003-10-02 | Council Of Scientific And Industrial Research | Antibiotic pharmaceutical composition with lysergol as bio-enhancer and method of treatment |
Family Cites Families (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE975919C (de) * | 1951-11-02 | 1963-03-21 | Takeda Pharmaceutical Ind | Verfahren zur Gewinnung eines Mutterkornalkaloidgemisches |
CH444175A (de) * | 1964-05-27 | 1967-09-30 | Sandoz Ag | Verfahren zur Isolierung von Ergolen-Carbonsäuren |
HU164957B (cs) * | 1971-02-19 | 1974-05-28 | ||
US3884762A (en) * | 1972-04-21 | 1975-05-20 | Richger Gedeon Vegyeszeti Gyar | Fermentation process for the preparation of ergot alkaloids |
GB1584464A (en) * | 1977-04-19 | 1981-02-11 | Farmaceutici Italia | Ergot alkaloids |
JPS6234061U (cs) * | 1985-08-15 | 1987-02-28 | ||
JPS6263775A (ja) * | 1985-09-12 | 1987-03-20 | 清水建設株式会社 | 免震ダンパ− |
-
1983
- 1983-08-10 HU HU832817A patent/HU190141B/hu not_active IP Right Cessation
-
1984
- 1984-08-03 BE BE1/11066A patent/BE900294A/fr not_active IP Right Cessation
- 1984-08-03 US US06/637,524 patent/US4618581A/en not_active Expired - Fee Related
- 1984-08-03 CH CH3745/84A patent/CH664758A5/de not_active IP Right Cessation
- 1984-08-09 NL NL8402466A patent/NL8402466A/nl not_active Application Discontinuation
- 1984-08-09 FR FR8412593A patent/FR2550549B1/fr not_active Expired
- 1984-08-09 AT AT0258284A patent/AT383828B/de not_active IP Right Cessation
- 1984-08-09 PT PT79051A patent/PT79051B/pt not_active IP Right Cessation
- 1984-08-09 JP JP59165757A patent/JPS60120997A/ja active Granted
- 1984-08-10 DE DE19843429573 patent/DE3429573A1/de not_active Withdrawn
- 1984-08-10 ES ES535102A patent/ES8604306A1/es not_active Expired
- 1984-08-10 GB GB08420369A patent/GB2148278B/en not_active Expired
- 1984-08-10 CS CS846104A patent/CS248719B2/cs unknown
-
1988
- 1988-03-01 JP JP63045978A patent/JPS63313593A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
ES535102A0 (es) | 1986-01-16 |
AT383828B (de) | 1987-08-25 |
CH664758A5 (de) | 1988-03-31 |
HU190141B (en) | 1986-08-28 |
FR2550549B1 (fr) | 1988-03-18 |
PT79051B (en) | 1986-08-12 |
DE3429573A1 (de) | 1985-02-28 |
JPS63313593A (ja) | 1988-12-21 |
HUT35011A (en) | 1985-05-28 |
US4618581A (en) | 1986-10-21 |
JPS6357035B2 (cs) | 1988-11-10 |
JPH0159877B2 (cs) | 1989-12-20 |
ES8604306A1 (es) | 1986-01-16 |
GB2148278B (en) | 1986-11-26 |
BE900294A (fr) | 1985-02-04 |
ATA258284A (de) | 1987-01-15 |
FR2550549A1 (fr) | 1985-02-15 |
PT79051A (en) | 1984-09-01 |
JPS60120997A (ja) | 1985-06-28 |
NL8402466A (nl) | 1985-03-01 |
GB2148278A (en) | 1985-05-30 |
GB8420369D0 (en) | 1984-09-12 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP1751272B1 (en) | Production of tacrolimus (fk-506) using new streptomyces species | |
JPH06339390A (ja) | Bu−4164e−a及びb、プロリルエンドペプチダーゼインヒビター | |
WO2007136824A1 (en) | High-yield bacitracin-producing microorganism | |
US9365880B2 (en) | Fermentation process for the production of rapamycin | |
CA1338085C (en) | Antibiotics bu-3608d and bu-3608e from actinomadura | |
JPH08239385A (ja) | Fo−1289物質およびその製造法 | |
US20080318289A1 (en) | Fermentation Processes for the Preparation of Tacrolimus | |
CA1225053A (en) | Methods and compounds and compositions for treating protozoal infections with a novel antibiotic | |
FR2568892A1 (fr) | Nouvel antibiotique sandramycine, procede de preparation de celui-ci, culture biologiquement pure du micro-organisme nocardioides sp, atcc no 39419, et composition pharmaceutique contenant la sandramycine | |
KR870001987B1 (ko) | 엔듀라시딘의 제조방법 | |
CS248719B2 (en) | Production method of the clavine alcaloids | |
US3914158A (en) | Antibiotic production | |
US3884762A (en) | Fermentation process for the preparation of ergot alkaloids | |
KR100186758B1 (ko) | 프라바스타틴(pravastatin)전구체의제조방법 | |
US4369252A (en) | Fermentation process for the preparation of ergot alkaloids, primarily ergocornine and β-ergocryptine | |
HU176627B (en) | Process for producing 3a-alpha-h-4-alpha-bracket-3-comma above-propionic acid-bracket closed-7a-beta-methyl-hexahydro-1,5-indanedione by microbiologicaltransformation of sytosterine | |
EP3086794A1 (en) | Process for the conversion of colchicinoids to their 3-glycosylated derivatives via their respective 3-demethyl analogues | |
DE69839248T2 (de) | VERFAHREN FÜR DIE HERSTELLUNG VON INHIBITOREN DER HMG-CoA-REDUKTASE. | |
JPH0246294A (ja) | ストレプトミセス属微生物からのアングサイクリノンおよびその製造方法 | |
SU562205A3 (ru) | Способ получени алкалоидов спорыньи | |
US4939089A (en) | Process for the preparation of festuclavine | |
JPS5959198A (ja) | 抗生物質ネオビリドグリゼイン2の新規な製造方法 | |
JPH0660170B2 (ja) | 抗生物質調整の中間体デイフイコール | |
JPH0856688A (ja) | Fo−2546物質およびその製造法 | |
EP0257276A2 (en) | Process for producing antibiotic LL-42067Alpha |