CN1943735A - 一种麦冬提取物的制备方法及其用途 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种麦冬提取物的制备方法及其用途。将麦冬加水煎煮回流提取一至三次,合并提取液,用陶瓷膜进行微滤,滤液浓缩成浸膏干燥,即得麦冬提取物。利用本发明方法提取到的麦冬提取物中多糖含量超过60%,经动物试验证明该提取物能够降低实验性2型糖尿病大鼠的血糖,能改善实验性2型糖尿病大鼠的糖耐量异常,能提高实验性2型糖尿病大鼠对外源胰岛素的敏感性,说明该提取物可以用于制备治疗糖尿病的药物。
Description
技术领域
本发明涉及一种麦冬提取物的制备方法及其在制备治疗糖尿病药物中的应用。
背景技术
长期以来,我国的制药工业尤其是中药制药企业一直停留在传统的生产工艺上,它存在着生产周期长、成本高、收率低等问题。在除杂、除菌等方面具有极大的不稳定性,严重影响制剂的品质,并且生产中消耗大量水、电、能源及有机溶剂,造成生产成本增加。中药水煎提取液的分离、纯化工艺是目前中药制剂中最常见、应用最多的工艺方法。中药水提取物剂量大、易吸潮、较不稳定,是中药制剂成型工艺中最难解决的问题。
膜分离技术是用筛分原理或溶解扩散对匀相或非匀相体系进行选择性分离的,一种先进的分离操作技术,具有工艺简单,有效成分损失小,节约能源,经清洗剂清洗后可再生,适合工业化生产等特点,可以提高产品品质和得率、简化生产工艺、降低生产成本等。与有机膜相比,无机陶瓷膜具有耐高温、耐化学腐蚀性好、抗微生物能力强、孔径分布窄、机械强度高等优点,已经在抗生素的分离提纯,中药药液的澄清、除杂、除菌等方面显示出广阔的应用前景。
发明内容
本发明目的在于将无机陶瓷膜微滤技术用于麦冬水提液的纯化并获得麦冬提取物,并将麦冬提取物用于制备治疗糖尿病药物。
上述本发明的方法以0.2μm孔径的无机陶瓷膜过滤麦冬水提液为例:
取一定量的麦冬药材加10倍量水,100℃水浴提取2h,经300目筛过滤,滤渣加6倍量水,100℃水浴提取2h,300目筛过滤。合并两次滤液,在室温、运行压力均为0.15Mpa的条件下用0.2μm孔径的无机陶瓷膜过滤,微滤液浓缩后干燥即得麦冬提取物。
经动物试验证明,本工艺制得麦冬提取物能够降低实验性2型糖尿病大鼠的血糖,且呈现一定的量效关系;能改善实验性2型糖尿病大鼠的糖耐量异常;能提高实验性2型糖尿病大鼠对外源胰岛素的敏感性。
具体实施方式
以下通过具体实施例和试验例对本发明作进一步说明。
实施例1:
取麦冬药材1千克,加水煎煮提取3次,每次加水10倍量,每次煎煮0.5小时,合并3次水煎煮提取液,以0.2μm的孔径的陶瓷滤膜滤过,滤液浓缩至流浸膏,减压干燥,得麦冬提取物305克,经分析该提取物多糖含量为63.7%。
实施例2:
取麦冬药材500克,加水煎煮提取2次,每次加水20倍量,每次煎煮10小时,合并2次水煎煮提取液,以0.8μm的孔径的陶瓷滤膜滤过,滤液浓缩至流浸膏,减压干燥,得麦冬提取物163克,经分析该提取物多糖含量为65.4%。
实施例3:
取麦冬药材500克,加水煎煮提取1次,每次加水30倍量,每次煎煮1小时,合并3次水煎煮提取液,以0.1μm的孔径的陶瓷滤膜滤过,滤液浓缩至流浸膏,减压干燥,得麦冬提取物305克,经分析该提取物多糖含量为61.6%。
实施例4:
取麦冬药材500克,加水煎煮提取3次,每次加水5倍量,每次煎煮2小时,合并3次水煎煮提取液,以0.2μm的孔径的陶瓷滤膜滤过,滤液浓缩至流浸膏,减压干燥,得麦冬提取物305克,经分析该提取物多糖含量为64.3%。
实施例5:
麦冬提取物对实验性1型糖尿病小鼠降糖作用实验
1)动物分组和给药
健康NIH小鼠(SPF级),雄性,体重18-20g(由广东省医学实验动物中心提供),自由饮水进食,随机分为正常对照组和造模组,造模组按如下方法建立模型,造模成功后再随机分为模型对照组,阳性药物格列齐特组,受试麦冬提取物高、低剂量组,灌胃给予相对应的药物,连续给药一周。
2)小鼠模型的制备
动物禁食不禁水24h后,除空白对照组10只腹腔注射生理盐水外,其余小鼠均腹腔注射200mg/kgBW的四氧嘧啶生理盐水溶液(临用前配制)。给药48h后,禁食不禁水12h,眼眶静脉丛取血,按照血糖测定试剂盒操作测定血糖值,空腹血糖值≥12mmol/L的为造模成功小鼠。
3)血糖的检测
在末次给药后,禁食不禁水12h,眼眶静脉丛取血,按照血糖测定试剂盒操作测定血糖值。采用SPSS11.0统计软件,分析并比较各组血糖值及给药前后血糖值的变化情况。
表1麦冬提取物对实验性1型糖尿病小鼠血糖的影响
组别 | 动物数(只) | 剂量(mg/kgBW) | 给药前血糖(mmol/L) | 给药后血糖(mmol/L) |
正常组模型组格列齐特组麦冬提取物高剂量组麦冬提取物低剂量组 | 99966 | 50300150 | 9.05±0.5335.99±2.0239.82±2.9935.28±3.0234.76±3.04 | 9.55±0.9334.19±1.3322.9±1.17*△21.18±3.70*△19.12±2.59*△ |
注:*p<0.05vs模型组 △p<0.05vs同组给药前
实施例6:
麦冬提取物对实验性2型糖尿病大鼠的作用
1)动物分组
健康Wistar大鼠(SPF级),雄性,体重180-220g(由南方医科大学实验动物中心提供),自由饮水进食,随机分为正常对照组和造模组,造模组按如下方法建立模型,造模成功后再将模型组动物随机分为模型对照组、阳性药物组、麦冬提取物高、中、低剂量组,连续给药1周。
2)大鼠模型制备
正常组大鼠每天灌胃普通饮用水,高脂组大鼠每天早晚灌胃自制脂肪乳(1ml/100gBW)。连续灌胃脂肪乳2周后,动物禁食不禁水24h,空白对照组10只尾静脉注射生理盐水,其余大鼠均尾静脉注射30mg/kgBW链脲佐菌素溶液(临用前配制)。给药48h后,禁食不禁水12h,每隔3小时眼眶静脉丛取血,按照血糖测定试剂盒操作测定空腹血糖值,连续测定3次,空腹血糖值≥16.7mmol/L的为造模成功大鼠。
3)血糖
末次给药后,动物禁食不禁水12h,眼眶静脉丛取血,按照试剂盒的方法分别测定血糖值。采用SPSS11.0统计软件,分析并比较各组血糖值及给药前后血糖值的变化情况。
4)毛细血管法测胰岛素敏感性
连续给药6天后,动物禁食4h,称重。将大鼠固定于鼠笼中,测定血糖值,腹腔注射胰岛素0.5U/kgBW。注射后每3min用血糖仪测定血糖值,共测6次。以时间为横坐标,血糖的自然对数为纵坐标,直线回归所得的回归系数r代表斜率,r乘以100即KITT值,KITT值越小说明机体对胰岛素越不敏感。
5)口服葡萄糖耐量实验
连续给药7天后,动物禁食不禁水12h,眼眶静脉丛取血测定血糖值。各组均ig.葡萄糖2.0g/kgBW,分别在给予葡萄糖后0.5h、1h、2h,从眼眶静脉丛采血,按血糖试剂盒的方法测定血糖值。
表2给药后血糖值比较
组别 | 动物数(只) | 给药前曲糖值 | 给药后血糖值 | |
正常对照组 | 10 | 5.28±0.21 | 5.27±0.44 | |
模型对照组 | 9 | 30.85±2.66 | 31.29±5.11 | |
阳性药物组 | 9 | 31.56±2.54 | 17.73±2.33**△△ | |
麦冬提取物 | 高剂量组 | 9 | 35.61±3.05 | 19.31±3.17**△△ |
中剂量组 | 10 | 32.98±2.20 | 18.10±3.30**△ | |
低剂量组 | 8 | 31.91±2.66 | 22.73±3.23 |
注:*p<0.05vs模型组 **p<0.01vs模型组
△p<0.05vs同组给药前 △△p<0.01vs同组给药前
表3口服糖耐量实验
组别 | 动物数(只) | 曲线下面积 | |
正常对照组 | 10 | 12.08±0.73 | |
模型对照组 | 9 | 50.09±2.47 | |
阳性药物组 | 9 | 41.37±2.62* | |
麦冬提取物 | 高剂量组 | 9 | 40.86±2.64* |
中剂量组 | 10 | 42.86±2.19 | |
低剂量组 | 8 | 50.78±3.18 |
注:*p<0.05vs模型组
表4胰岛素敏感性比较
组别 | 动物数(只) | KITT | |
正常对照组 | 10 | 78.07±7.52 | |
模型对照组 | 8 | 44.59±6.97 | |
阳性药物组 | 8 | 55.09±8.81 | |
麦冬提取物 | 高剂量组 | 9 | 77.71±6.99** |
中剂量组 | 9 | 71.60±8.64* | |
低剂量组 | 8 | 68.60±7.32* |
注:*p<0.05vs模型组 **p<0.01vs模型组
Claims (3)
1.一种制备麦冬提取物的制备方法,其特征在于该方法包含下列步骤:取麦冬药材,煎煮1~3次,每次加水5~30倍量,每次煎煮10分钟~2小时,过滤,合并水煎液;以孔径为0.1μm~0.8μm的陶瓷膜滤过,浓缩成浸膏后干燥,即得麦冬提取物。
2.根据权利要求1所述的一种制备麦冬提取物的方法,其特征在于:所制备得到的麦冬提取物中的多糖含量高于60%。
3.根据权利要求1所述的一种制备麦冬提取物的方法,其特征在于:所制备得到的麦冬提取物可用于制备治疗糖尿病药物。
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CN 200610122922 CN1943735A (zh) | 2006-10-20 | 2006-10-20 | 一种麦冬提取物的制备方法及其用途 |
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