抗李斯特菌细菌素
本发明涉及清酒乳杆菌(Lactobacillus sake)(更具体的说是清酒乳杆菌2512)的细菌素、编码该细菌素的核苷酸序列、和该细菌素在食品制作中作为针对致病或非期望菌群的活性剂的工业用途。
乳酸菌被广泛用于食品发酵,不仅用于改进食品的味道和质地,而且尤其用于延长它们的保存期。事实上,许多乳酸菌能够抑制某些革兰氏阳性细菌(包括致病菌株,诸如单核细胞增生李斯特菌(Listeria monocytogenes))的生长,这要归功于拮抗分子(包括肽化合物)的分泌。这些肽化合物(称为细菌素)因而具有潜在价值,可用于保持发酵食品的品质和卫生。
作为这种细菌素的范例,特别要提到那些构成称为抗李斯特菌细菌素的多肽亚型的细菌素、IIa型细菌素(S.Ennahar等人,2000,FEMSMicrobiol.Rev.,24:85-106)和cystibiotic细菌素(R.Jack等人,1995,Microbiol.Rev.,59(2):171-200)。最近人们已经注意到了这些IIa型细菌素之一即divercin V41用于在熏鱼中防止单核细胞增生李斯特菌生长的潜在用途(F.Duffes等人,1999,J.FoodProt.,62(12):1394-1403)。
这些多肽的序列在N端部分显示强相似性,特别是存在二硫键。疏水C端部分的差异要大得多,但是这些细菌素中的某些即所谓的片球菌素型细菌素(片球菌素PA-1、肠菌素A和divercin V41)特征为残基数目超过40且C端存在第二个二硫键。
本发明的作者发现了由清酒李斯特菌特定菌株生成的新的IIa型细菌素,经证明对抑制李斯特菌(尤其是单核细胞增生李斯特菌)的生长特别有效。
与J.R.Tagg等人,1976,Bacteriol.Rev.,40:722-756一致,术语“细菌素”在本发明的范围内指由能够特异抑制其它细菌生长的微生物通过核糖体合成而生成的多肽。
本发明因而首先涉及由清酒乳杆菌2512菌株衍生的、具有细菌素活性的多肽。
清酒乳杆菌2512菌株已于2000年5月25日保藏于国家微生物培养物收藏中心(Collection Nationale des Cultures deMicroorganismes),保藏物编号I-2479。
已将本发明所涉及的细菌素命名为sakacin G。该多肽的分子量是3700-3900,优选大约3834Da(通过质谱测定)。它的细菌抑制谱与IIa型细菌素非常相似。因此,经证明它对除清酒乳杆菌2512以外的其它清酒乳杆菌、啤酒片球菌(Pediococcus cerevisiae)、全体李斯特菌、粪肠球菌(Enterococcus faecalis)和耐久肠球菌(Enterococcus durans)特别有效。相反,经证明它对乳杆菌的其它种诸如德氏乳杆菌(Lactobacillus delbrueckii)、植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)、短乳杆菌(Lactobacillus brevis)、干酪乳杆菌(Lactobacillus casei)和屎肠球菌(Enterococcusfaecium)的一种菌株无活性。
与片球菌素型抗李斯特菌细菌素一样,sakacin G在其肽结构中有利的具有两个二硫键。
关于几种IIa型细菌素的遗传决定因子的分析显示,参与其生成、转运和免疫的基因被组织成一个或多个操纵子型结构。这些操纵子通常位于质粒中,而且通常具有至少两种编码与ABC转运蛋白和辅助蛋白同源的蛋白质的基因,所述蛋白质可能参与细菌素转运。
包含sakacin G基因的核苷酸片段的克隆揭示了存在三个完整的开放读码框即skgA1(SEQ ID NO:1)、skgA2(SEQ ID NO:3)和skgDc(SEQ ID NO:13)(包括截短的读码框skgD(SEQ ID NO:7))及一个截短的读码框即skgI(SEQ ID NO:5),图1显示了它们的示意图。核苷酸片段是双链的,SEQ ID NO:15显示了它的5’-3’单链。
基因skgA1和skgA2的产物(称为前细菌素)可经历成熟,在此过程中,在第18与19位残基之间切除各自的前导肽,从而释放有活性的sakacin G(第19-55位残基)。
SEQ ID NO:9显示了包含skgA1、skgA2、skgD和skgI的5’-3’单链核苷酸片段。
本发明因而还涉及对应于细菌素的分离多肽,特征为它包含SEQID NO:2和/或SEQ ID NO:4。成熟细菌素的序列对应于SEQ ID NO:12,且包含于SEQ ID NO:2和SEQ ID NO:4之中。
读码框skgI编码52个残基的蛋白质。该序列与数据库序列的比较显示SkgI与所谓的免疫蛋白之间存在强相似性。它可能编码可保护sakacin G生产细菌的免疫蛋白。
本发明还延伸至包含对应于读码框skgI的SEQ ID NO:6的分离多肽。
关于最后一个基因skgDc,它编码与ABC转运蛋白家族的蛋白质(更具体的说是片球菌素PA-1的转运蛋白)同源的蛋白质。基因skgDc可能编码对sakacin G特异的ABC转运蛋白。
本发明还延伸至包含对应于所谓skgD基因的SEQ ID NO:8的分离多肽,以及包含对应于所谓skgDc基因的SEQ ID NO:14的分离多肽。
应当理解,本发明还包括同源序列,定义如下:1)与序列SEQ ID NO:2、4、6、8、12或14至少70%相似的序列;或2)由下文定义的同源核酸序列编码的序列,即在严谨杂交条件下与序列SEQ ID NO:1、3、5、7、9、13或15或其互补序列发生杂交的核酸序列。
同样,术语“相似”指进行比较的同源序列氨基酸之间的完全类似性或同一性,还包括不完全类似性,称为相似性。多肽序列中的这种相似性搜索考虑到了保守替代,即相同类型氨基酸的替代,诸如侧链不带电荷的氨基酸(诸如天冬酰胺、谷氨酰胺、丝氨酸、苏氨酸和酪氨酸)、侧链碱性的氨基酸(诸如赖氨酸、精氨酸和组氨酸)、侧链酸性的氨基酸(诸如天冬氨酸和谷氨酸)、侧链非极性的氨基酸(诸如甘氨酸、丙氨酸、缬氨酸、亮氨酸、异亮氨酸、脯氨酸、苯丙氨酸、甲硫氨酸、色氨酸和半胱氨酸)之中的替代。
因此,更一般的说,“同源氨基酸序列”应理解为因一个氨基酸或少数氨基酸的替代、删除和/或插入(尤其是在这些修饰不会显著影响分离多肽(优选sakacin G)的生物学活性的位置中用非天然氨基酸或假氨基酸替代天然氨基酸)而与SEQ ID NO:2、4、6、8、12或14不同的任何氨基酸序列。
这种同源氨基酸序列优选与序列SEQ ID NO:2、4、6、8、12或14的至少85%相似,优选至少95%。
通常使用序列分析软件(例如威斯康星大学生物技术中心遗传学计算机小组的序列分析软件包,威斯康星州麦迪逊市大学路1710号,53705)来测定同源性。比对相似的氨基酸序列,以获得最大同源程度(即同一性或相似性,见上文定义)。为此目的,可能必需在序列中人工导入缺口。一旦完成最佳比对,如下计算同源程度:记录比较的两种序列中氨基酸相同的所有位置,并除以位置总数。
分离多肽(更具体的说是sakacin G)的生物学活性指其抑制致病和/或非期望细菌菌株(优选李斯特菌,更具体的说是单核细胞增生李斯特菌)生长的能力。
本发明还涉及编码上述多肽的分离核酸。
更准确的说,本发明涉及包含SEQ ID NO:1和/或SEQ ID NO:3的分离核酸。
已经测定了参与sakacin G表达的区域的完整核苷酸序列(3055bp)。它是双链DNA,SEQ ID NO:15显示了它的5’-3’链。图2显示了它的3’-5’链。本发明还涉及包含这种序列的核酸。
如上所述,该序列具有三个完整的开放读码框即skgA1、skgA2和skgDc及一个截短的读码框即skgI。假设基因skgA1(SEQ ID NO:1)、skgA2(SEQ ID NO:3)和skgI(SEQ ID NO:5)在其中的取向与skgDc(SEQ ID NO:13)相反。
本发明的范围还要求包含SEQ ID NO:5的核酸、包含SEQ ID NO:13的核酸和包含SEQ ID NO:17的核酸。
应当理解,本发明还包括同源序列,定义如下:1)与序列SEQ ID NO:1、3、5、7、9、1 3或1 5至少70%相似的序列;2)在严谨杂交条件下与序列SEQ ID NO:1、3、5、7、9、13或15或其互补序列发生杂交的序列;或3)编码上述称为sakacin G的多肽的序列。
依照本发明的同源核苷酸序列优选与序列SEQ ID NO:1、3、5、7、9、13、或15至少75%相似,优选至少85%或至少90%相似。
这种同源核苷酸序列优选能够在严谨条件下与序列SEQ ID NO:1、3、5、7、9、13或15的互补序列发生特异杂交。定义严谨条件的参数取决于50%的配对链分开的温度(Tm)。
对于包含超过30个碱基的序列,Tm由如下方程定义(Sambrook等人,1989,纽约,冷泉港实验室):
Tm=81.5+0.41(%G+C)+16.6Log(阳离子浓度)
-0.63(%甲酰胺)-(600/碱基数目)
对于长度小于30个碱基的序列,Tm由如下方程定义:
Tm=4(G+C)+2(A+T)
在适当的严谨条件(在此条件下非特异序列不发生杂交)下,杂交温度可优选比Tm低5-10℃,而且所用杂交缓冲液优选高离子强度溶液,诸如6xSSC溶液。
上文所用表述“相似序列”指进行比较的核苷酸之间的完全类似性或同一性,还包括不完全类似性,称为相似性。核酸序列中的这种相似性搜索将区分例如嘌呤和嘧啶。
具有SEQ ID NO:1、3、5、7、9、13或15中所示开放读码框的同源核苷酸序列包括因一个或多个碱基的突变、插入、删除或替代或者遗传密码的简并性而与序列SEQ ID NO:1、3、5、7、9、13或15不同、但编码下文定义的具有sakacin G生物学活性的多肽的任何核苷酸序列。
这种同源序列包括编码sakacin G的、除乳杆菌以外的其它细菌的基因序列。
可以通过本领域技术人员知道的任何方法来合成本发明的多肽。可以通过例如化学合成技术(诸如Merrifield型合成)来合成本发明的多肽,就纯度、抗原特异性、不含非期望次级产物且易于生产而言,这种方法是有利的。
本发明还涉及用于生产重组多肽的方法,其中将包含依照本发明的核酸的载体转移至宿主细胞中,并将其在容许表达依照本发明的多肽或由依照本发明的核酸序列编码的多肽的条件下进行培养。
还可以通过如下方法来生产重组细菌素,其中:将载体转移至宿主细胞中,并将其在容许表达相应多肽的条件下进行培养,所述载体包含依照本发明的核苷酸序列(优选序列SEQ ID NO:1和/或SEQ ID NO:3或其同源序列)的核酸。然后可以回收并纯化生成的蛋白质。本领域技术人员知道所用的纯化方法。可以单独或联合使用诸如分级分离、层析法、使用特异单克隆或多克隆抗体的免疫亲和技术等方法,由裂解物和细胞提取物、培养物上清液开始,纯化生成的重组多肽。
可以将编码sakacin G的目的核酸序列插入表达载体,在其中以可操作方式连接容许调控其表达的元件,诸如(尤其是)启动子、激活子和/或转录终止子。根据所用宿主细胞来选择控制核苷酸序列表达的信号(启动子、激活子、这种序列、等)。为此目的,可以将依照本发明的核苷酸序列插入能够在所选宿主中自主复制的载体或可整合到所选宿主中的载体内。本领域技术人员可以通过常规使用的方法来制备这种载体,并通过标准方法(诸如电穿孔或磷酸钙沉淀)将由此生成的克隆导入合适的宿主。
包含依照本发明的核苷酸序列的上述克隆和/或表达载体也构成本发明的一部分。
本发明还涉及经那些表达载体暂时或永久转化的宿主细胞。可以如下获得这些细胞:将插入上述载体的核苷酸序列导入宿主细胞(优选原核宿主细胞),然后在容许转移的核苷酸序列复制和/或表达的条件下培养所述细胞。
宿主细胞的范例具体包括诸如乳球菌属(Lactococcus)、乳杆菌属(Lactobacillus)、明串珠菌属(Leuconostoc)、链球菌属(Streptococcus)、片球菌属(Pediococcus)、埃希氏菌属(Escherichia)的细菌和酵母。
本发明的核苷酸序列可以是合成或天然来源的。它们可以是使用基于序列SEQ ID NO:1、3、5、7、9、13和/或15而生成的探针筛选序列文库而得到的DNA或RNA序列。可以通过本领域技术人员知道的常规分子生物学技术来制备这种文库。
还可以通过化学合成法或者通过混合法来制备依照本发明的核苷酸序列,所述混合法包括对通过筛选文库而得到的序列进行化学或酶促修饰。
本发明还涉及在可能是或不是食品环境且易于受到单核细胞增生李斯特菌污染的环境中抑制李斯特菌(尤其是单核细胞增生李斯特菌)生长的方法。
单核细胞增生李斯特菌是致病微生物,是人类和动物严重疾病的根源,尤其易于通过污染食品进行传播,更具体的说是通过肉类、肉制品、海产品、奶类及由其衍生的产品。本发明因而提出了在有可能包含单核细胞增生李斯特菌作为污染物的食品中抑制单核细胞增生李斯特菌生长的方法,所述方法包括以足以抑制单核细胞增生李斯特菌生长的数量在所述食品中添加依照本发明的多肽。
优选以每克食品1-100,000任意单位(AU)细菌素的数量将依照本发明的细菌素用于任何食品系统。
一个AU的细菌素定义为在琼脂培养基上,相对于革兰氏阳性细菌的对照菌株,5μl最高稀释度的培养物上清液导致确定的生长抑制圈。
虽然食品最受单核细胞增生李斯特菌污染的影响,但是兽医和医学产品也可能受到这类细菌的污染,化妆品或相似产品也一样。
依照本发明的细菌素(更具体的说是sakacin G)因而可用于在这些产品中抑制这类病原体的生长。
因此,本发明涉及依照本发明的细菌素在食品制作中作为针对致病或非期望菌群的活性剂的用途,更准确的说是在食品中抑制李斯特菌(更具体的说是单核细胞增生李斯特菌)的生长和繁殖。
可以如此将多肽掺入讨论的食品,或者可以在其中由清酒乳杆菌2512生成该多肽。
因此,本发明还涉及清酒乳杆菌2512菌株在食品中生成依照本发明的细菌素多肽的用途。
本发明还涉及细菌素组合物,特征为它包含至少一种依照本发明(即由清酒乳杆菌2512菌株衍生或包含序列SEQ ID NO:2、4、12或14)的多肽或清酒乳杆菌2512菌株。
本发明还延伸至清酒乳杆菌2512菌株意欲在食品中生成上文定义的多肽以用于抑制李斯特菌(更具体的说是单核细胞增生李斯特菌)的生长和繁殖的用途,及包含该菌株的组合物。
给出下文实施例和图作为范例,而非限制本发明的主题。
图
图1:参与sakacin G生成的基因座的示意图。
图2:对应于参与sakacin G表达的区域的完整核苷酸序列的3’-5’互补链,它的5’-3’链显示于SEQ ID NO:15。
材料和方法细菌菌株和培养基
在MRS培养基(DIFCO Laboratories)(于110℃灭菌12分钟)中于30℃培养清酒乳杆菌2512。在BHI培养基(脑心浸液;DIFCOLaboratories)中于37℃培养指示菌株。活性测试
在将添加10g/L琼脂的BHI培养基倒入培养皿之前,以1%接种量接种处于静止期的指示菌株预培养物。用打孔器在冷却后的琼脂中打孔,并加入50μl sakacin G。于37℃保温过夜后,细菌素通过孔周围出现的抑菌圈而显现其活性。蛋白质分析
使用配备了离子喷射电离源的Perkin-Elmer Sciex API 165设备通过质谱分析sakacin G。冻干后,用含0.1%甲酸的乙腈/水溶液(1∶1)溶解有活性的HPLC级分,然后以5μl/min的流速注入。
使用BCA试剂盒(Sigma),依照制造商的指示,通过二金鸡宁酸法测定蛋白质浓度。
使用可以由瑞士生物信息研究所(Swiss Institute ofBioinformatics)的ExPASy服务器获得的BLAST(1)程序进行蛋白质序列比较。分子克隆和转化
分别依照先前由Sambrook等人,1989,纽约,冷泉港实验室及Muriana和Klaenhammer,1987,Appl.Environ.Microbiol.,53:553-560描述的方法,由大肠杆菌和清酒乳杆菌2512提取和纯化质粒。
依照供应商(Gibco-BRL)的指示使用DNA限制酶和修饰酶。依照由Sambrook等人,1989,纽约,冷泉港实验室描述的方法,在Tris/硼酸/EDTA缓冲液(pH8.3)中进行分析性和制备性琼脂糖凝胶电泳。使用“制备基因”试剂盒(Bio-Rad)由琼脂糖凝胶纯化消化得到的DNA片段。依照供应商的建议在质粒pGEM-T(Promega)和pZERO2(Invitrogen)中进行克隆。依照Sambrook等人,1989,纽约,冷泉港实验室的方法,在尼龙膜(Hybond-N+,Amersham)上进行Southern型转移。转移后,使用借助“随机引物DNA标记系统”试剂盒(Gibco-BRL)通过32P标记得到的放射性探针进行杂交。依照Hanahan,1983,J.Mol.Biol.,166:557-580的方法,使大肠杆菌处于感受态和进行转化。
依照供应商的建议使用Taq聚合酶(Gibco-BRL)。使用“基因扩增9700”装置(Perkin-Elmer)进行编码sakacin G的DNA片段的扩增,条件如下:35个循环,变性94℃30sec、杂交45℃30sec、延伸72℃60sec;1个额外的延伸,72℃5min。
使用ABI Prism 310自动测序仪(Perkin-Elmer)和“大染料终止剂”测序试剂盒(Perkin-Elmer)及适当的核苷酸引物对携带sakacin G基因座的DNA片段进行测序。
实施例实施例1:sakacin G的分离和纯化
将100ml清酒乳杆菌2512的16小时培养物以6000g离心15分钟。然后将培养物上清液于70℃加热20分钟。用1倍体积的水稀释冷却后的上清液(稀释后溶液的pH必须低于6,如果需要就加入1M HCl),然后流过装有阳离子交换树脂(羧甲基纤维素;Cellufine C-200,Amicon)并经水平衡的层析柱(2.5×18cm)。先用100ml水、后用150ml 0.1M NaCl连续清洗后,用200ml 0.5M NaCl洗脱sakacin G。所有溶液的pH必须低于6。然后将活性级分在固相提取柱(Sep-pak+C18,Waters)(用水平衡)上沉积。用5ml含0、10、20和30%乙腈的20mM醋酸铵连续清洗后,用10ml含80%乙腈的20mM醋酸铵洗脱sakacin G。冻干后,将提取物溶于1ml 40%乙腈水溶液,然后注射到C8反相分析HPLC柱(Kromasil,5μm,100,4.6×250mm,A.I.T.)上。在包括Perkin-Elmer系列200LC泵且连接Perkin-Elmer 785A检测器的装置上进行HPLC。记录220nm的吸收色谱。以0.8ml/min流速进行分离,梯度如下:溶剂A=水/0.1%三氟乙酸;溶剂B=乙腈/水/0.07%三氟乙酸。用20%的溶剂B清洗5分钟后,以如下梯度进行洗脱:20-40%溶剂B 10min;40-55%溶剂B 20min。
对应于第23分钟峰的级分经证明对伊氏李斯特菌(Listeriaivanovii)BUG 496有活性,并通过“离子喷射”电离质谱进行分析。该分子表现为至少95%纯,且具有分子量3834.32±0.31Da。由此纯化的sakacin G的质量估计是100ml培养物得到120μg。纯化产量估计是所发现活性的55%。
通过微量测序测定了sakacin G的部分一级序列,并由该序列确定了两种简并寡核苷酸。实施例2:参与sakacin G生成的基因座的克隆
通过反求遗传学,选择两种简并寡核苷酸即SakG01(5’-AARTATTATGGNAAYGGNGT-3’)(SEQ ID NO:10)和SakG02S(5’-ACATGATGNCCNCCRTTNGC-3’)(SEQ ID NO:11),用于通过聚合酶链式反应(PCR)扩增对应于成熟sakacin G结构基因(SEQ ID NO:15)的DNA片段。将由此获得的、近似大小100bp的扩增产物克隆到质粒pGEM-T中,形成质粒pJMBYC01。在为了将结构基因在清酒乳杆菌2512基因组上定位而进行的Southern型转移过程中,将由pJMBYC01衍生的、包含插入片段的560bp PvuII限制性片段用作杂交探针。由经限制酶HindIII和EcoRI消化的清酒乳杆菌2512质粒提取物开始,探针分别揭示了近似大小2.1和9kb的片段。纯化2.1kb的HindIII片段,然后插入载体pZER02,生成质粒pJMBYC02。通过使用引物SakG01和SakG02的PCR扩增及插入pJMBYC02中的片段的核苷酸测序,证明了pJMBYC02中存在sakacin G的结构基因。将相似策略用于测定基因skgD的完整序列。用XbaI消化清酒乳杆菌2512的质粒提取物。将消化产物插入质粒pBluescript SK+。使用寡核苷酸SakG03(5’-CCTTGGTCAGGCTATCG-3’)(SEQ ID NO:16)和SakG04(5’-ATCACCTTTTTGAATTACCC-3’)(SEQID NO:17)在质粒pJMBYC02上通过PCR制备放射性探针,并将其用于揭示携带目的序列的克隆。
对该区域完整核苷酸序列(3051bp)的分析揭示了存在三个完整的开放读码框即skgA1、skgA2和skgDc及一个截短的读码框即skgI。假设基因skgA1、skgA2和skgI的取向与skgDc相反。
每个开放读码框的前面都有一个潜在的核糖体结合位点。基因skgA1和skgA2都编码具有55个氨基酸残基的蛋白质,它们的第19-55位序列完全相同。第19-52位序列对应于通过微量测序得到的sakacinG序列。值得注意的是第9、14和24位和C末端存在4个半胱氨酸。此外,该肽的计算分子量是3838.2Da,与测量分子量(3834.32Da)相差4Da,显示在sakacin G中存在两个二硫键,正如其它抗李斯特菌细菌素早就证明的。
蛋白质SkgA1和SkgA2的第1-18位序列只差3个残基,而且与II型细菌素的“前导”肽具有强同源性,所述前导肽参与那些肽通过特异ABC转运蛋白的转运。具体而言,末端GG单位是这些前导序列的特征,并构成这些细菌素的成熟位点。基因skgA1和skgA2的核苷酸序列比较还显示基因中编码成熟细菌素的部分的序列同一性超过95%。
称为skgI的不完整开放读码框编码52个残基的蛋白质。该序列与数据库序列的比较显示SkgI与所谓免疫蛋白LccI和MesI之间存在强同源性。已经证明了MesI参与针对肠膜菌素Y105的保护。可以假设skgI编码sakacin G免疫蛋白。
最后一种基因skgDc编码727个氨基酸的蛋白质。依照数据库,SkgDc与ABC转运蛋白家族的蛋白质高度同源,尤其是与片球菌素PA-1:PedD或PapD(Marugg等人,1992,Appl.Environ.Microbiol.,58:2360-2367;Motlagh等人,1994,Lett.Appl.Microbiol.,18:305-312)、sakacin P:SppT(Huhne等人,1996,Microbiology,142:1437-1448)、sakacin A:SapT(Axelsson和Holck,1995,J.Bacteriol.,177:2125-2137)和肠膜菌素Y105:MesD(Fremaux等人,1995,Microbiology,141:1637-1645)的转运蛋白高度同源。
实施例3:抑制谱
通过孔试法(见材料和方法)测试了17种细菌菌株对sakacin G的敏感性。下文表1显示了结果。
表1 |
菌株 |
抑菌圈半径(mm) |
乳酸乳球菌(Lactococcus lactis)ATCC 11454 |
0 |
类肠膜明串珠菌(Leuconostoc paramesenteroides)DSM 20288 |
0 |
肠膜明串珠菌(Leuconostoc mesenteroides)DSM20484 |
0 |
肠膜明串珠菌DSM 20240 |
0 |
德氏乳杆菌DSM 20081 |
0 |
植物乳杆菌DSM 20174 |
0 |
短乳杆菌DSM 20054 |
0 |
干酪乳杆菌DSM 20011 |
0 |
清酒乳杆菌2515 |
1 |
乳酸片球菌(Pediococcus acidilactic)ENSAIA 583 |
0 |
啤酒片球菌IP 5492 |
1 |
屎肠球菌ENSAIA 631 |
0 |
粪肠球菌IP 5430 |
2 |
粪肠球菌ENSAIA 636 |
1 |
耐久肠球菌ENSAIA 630 |
2 |
无害李斯特菌(Listeria innocua)8811 |
3 |
伊氏李斯特菌BUG 496 |
6 |
这种细菌素的抑制谱显得相当窄,而且对于乳酸菌仅限于菌株清酒乳杆菌和啤酒片球菌。与其它IIa型细菌素一样,这种肽显得对测试的所有李斯特菌菌株以及粪肠球菌和耐久肠球菌有活性,而对屎肠球菌无活性。序列表<110>RHODIA CHIMIE<120>抗李斯特菌细菌素<130><140><141><160>17<170>PatentIn Ver.2.1<210>1<211>196<212>DNA<213>清酒乳杆菌(Lactobacillus sake)<220><221>CDS<222>(20)..(187)<400>1ttaacaggag gtattcaaa atg aag aat aca cgt agc tta acg atc caa gaa 52
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45 50 55<210>2<211>55<212>PRT<213>清酒乳杆菌(Lactobacillus sake)<400>2Met Lys Asn Thr Arg Ser Leu Thr Ile Gln Glu Ile Lys Ser Ile Thr1 5 10 15Gly Gly Lys Tyr Tyr Gly Asn Gly Val Ser Cys Asn Ser His Gly Cys
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35 40 45Asn Gly Gly His Gly Val Cys
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