CN117417886A - 一种负载肿瘤抗原的树突状细胞激活的t淋巴细胞的培养方法 - Google Patents

一种负载肿瘤抗原的树突状细胞激活的t淋巴细胞的培养方法 Download PDF

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Abstract

本发明提供了一种负载肿瘤抗原的树突状细胞激活的T淋巴细胞的培养方法,属于DC‑T细胞培养技术领域。本发明提供的培养方法,包括如下步骤:(1)将肿瘤细胞抗原与树突状细胞在诱导培养基Ⅰ中共孵育,得到负载肿瘤抗原的树突状细胞;(2)将所述负载肿瘤抗原的树突状细胞与T淋巴细胞在诱导培养基Ⅱ中共孵育,诱导得到负载肿瘤抗原的树突状细胞激活的T淋巴细胞。本发明提供的培养方法提高了负载肿瘤抗原的DC‑T细胞对肿瘤细胞的杀伤作用,提高了对小鼠体内肿瘤的抑制作用。

Description

一种负载肿瘤抗原的树突状细胞激活的T淋巴细胞的培养 方法
技术领域
本发明涉及DC-T细胞培养技术领域,尤其涉及一种负载肿瘤抗原的树突状细胞激活的T淋巴细胞的培养方法。
背景技术
树突状细胞(也称DC细胞)是由加拿大学者Steinman于1973年发现的,是功能最强的抗原提呈细胞,因其成熟时伸出许多树突样或伪足样突起而得名。DC起源自骨髓多能造血干细胞,分化主要有两条途径:①髓样干细胞在GM-CSF的刺激下分化为DC,称为髓样DC(myeloid dendritic cells,MDC),也称DC1,与单核细胞和粒细胞有共同的前体细胞;②来源于淋巴样干细胞,与T细胞和NK细胞有共同的前体细胞,称为淋巴样DC(Lymphoiddendritic cells,LDC)或浆细胞样DC(plasmacytoid dendritic cells,pDC),即DC2。因为树突状细胞能够刺激T细胞并启动早期免疫反应,因此,可以用于肿瘤的免疫治疗,例如DC疫苗。
人体内大部分DC处于非成熟状态,表达低水平的共刺激因子和粘附因子,体外激发同种混合淋巴细胞增殖反应的能力较低,但未成熟DC具有极强的抗原吞噬能力,在摄取抗原(包括体外加工)或受到某些因素刺激时即分化为成熟DC,而成熟的DC表达高水平的共刺激因子和粘附因子。DC在成熟的过程中,由接触抗原的外周组织迁移进入次级淋巴器官,与T细胞接触并激发免疫应答。
DC作为目前发现的功能最强的APC,能够诱导特异性的细胞毒性T淋巴细胞(cytotoxic T lymphocyte,CTL)生成。研究表明,应用肿瘤相关抗原或抗原多肽体外冲击致敏DC,回输或免疫接种于载瘤宿主,可诱发特异性CTL的抗肿瘤免疫反应。但是,目前所得的负载肿瘤抗原DC-T细胞在肿瘤治疗中还存在一定的局限定,因此有必要对肿瘤相关抗原冲击致敏DC过程和负载肿瘤抗原的DC刺激T淋巴细胞的过程进行研究,从而提高负载肿瘤抗原的DC-T细胞对肿瘤的抑制作用。
发明内容
本发明的目的在于提供一种负载肿瘤抗原的树突状细胞激活的T淋巴细胞的培养方法,对肿瘤相关抗原冲击致敏DC过程和负载肿瘤抗原的DC刺激T淋巴细胞的过程进行优化,从而提高负载肿瘤抗原的DC-T细胞对肿瘤的治疗作用。
为了实现上述发明目的,本发明提供以下技术方案:
本发明提供了一种负载肿瘤抗原的树突状细胞激活的T淋巴细胞的培养方法,包括如下步骤:
(1)将肿瘤细胞抗原与树突状细胞在诱导培养基Ⅰ中共孵育,得到负载肿瘤抗原的树突状细胞;
(2)将所述负载肿瘤抗原的树突状细胞与T淋巴细胞在诱导培养基Ⅱ中共孵育,诱导得到负载肿瘤抗原的树突状细胞激活的T淋巴细胞;
所述所述诱导培养基Ⅰ以RPMI-1640完全培养基为基础培养基,含有如下浓度的刺激因子:rhGM-CSF 400~600U/mL、rhIL-4800~1200U/mL、rhIL-15800~1200U/mL、TNF-α80~120U/mL。
优选的,所述肿瘤细胞抗原按照制备前肿瘤细胞的数量计,与树突状细胞的混合细胞数之比为5~10:1。
优选的,步骤(1)中所述共孵育的时间为4~5d。
优选的,所述诱导培养基Ⅱ以RPMI-1640完全培养基为基础培养基,含有如下浓度的成分:rhIL-2800~1200U/mL、rhIL-6800~1200U/mL、TNF-α800~1200U/mL。
优选的,所述负载Hep-2肿瘤抗原的树突状细胞与T淋巴细胞的混合细胞数之比为9~10:1。
优选的,步骤(2)中所述共孵育的时间为3~4d。
优选的,所述肿瘤为喉癌。
本发明提供了一种负载肿瘤抗原的树突状细胞激活的T淋巴细胞的培养方法,本发明通过对肿瘤相关抗原冲击致敏DC过程的诱导培养基成分和负载肿瘤抗原的DC刺激T淋巴细胞过程的诱导培养基成分进行优化,提高了负载肿瘤抗原的DC-T细胞对肿瘤细胞的杀伤作用,提高了对小鼠体内肿瘤的抑制作用。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明提供的技术方案进行详细的说明,但是不能把它们理解为对本发明保护范围的限定。
实施例1
以喉癌肿瘤为例
(1)制备Hep-2肿瘤细胞冻融抗原
收集处于对数生长期的Hep-2肿瘤细胞,用生理盐水洗3次,然后用RPMI-1640完全培养基重悬,浓度为2×107个/mL。在-80℃/37℃下反复冻融3次,然后2000rpm离心45min取上清,过滤除菌,得到Hep-2肿瘤细胞冻融抗原。4℃保存备用。
(2)制备树突状细胞
取健康人新鲜外周抗凝血,采用Ficoll不连续密度梯度离心法分离获得单个核细胞,低渗裂解红细胞,PBS洗去血小板,以含20%PBS的RPMI-1640完全培养基调整细胞浓度至1×107个/mL,取5mL加入T-25塑料培养瓶,37℃、5%CO2条件下培养2h,培养2h后吸去未贴壁细胞和培养基,然后加入含有rhGM-CSF 500U/mL、rhIL-41000U/mL、rhIL-151000U/mL、TNF-α100U/mL的RPMI-1640完全培养基(诱导培养基Ⅰ)继续在相同条件下培养,每2d换液一次,培养4d。得到待诱导的树突状细胞(DC)。
(3)DC的诱导和鉴定
取待诱导的贴壁DC(5×105个/瓶),每瓶加入1mL Hep-2肿瘤细胞冻融抗原,浓度为5×106个/mL(以肿瘤细胞冻融前的浓度计)。同时以未加Hep-2肿瘤细胞冻融抗原的作为对照,继续培养4d后,收集悬浮细胞,即为负载肿瘤抗原的DC。取部分细胞进行观察和小鼠抗人CD83McAb以S-P免疫细胞化学染色法进行鉴定。观察鉴定结果表明,诱导组和对照组的DC在形态上无明显区别,均具有树突状突起且大部分悬浮生长。染色结果显示,阳性率达到80%以上,已经分化成熟。
(4)制备T淋巴细胞以及体外诱导
取上述健康人新鲜外周抗凝血,同步骤(2)采用Ficoll不连续密度梯度离心法分离获得单个核细胞,然后用含20%PBS的RPMI-1640完全培养基调整单个核细胞的浓度至1×108个/mL,注入T细胞尼龙毛柱,37℃温育1h后用RPMI-1640完全培养基冲洗,收集含T淋巴细胞的冲洗液。然后与上述制备的负载肿瘤抗原的DC按照10:1的细胞数量比混合,置于含有rhIL-21000U/mL、rhIL-61000U/mL、TNF-α1000U/mL的RPMI-1640完全培养基(诱导培养基Ⅱ)中孵育,37℃、5%CO2孵育72h,得到负载Hep-2肿瘤抗原的DC激活的T淋巴细胞(AgDC-T细胞)。
同时按照上述步骤(4)将步骤(3)制备的未负载Hep-2肿瘤抗原的DC与T淋巴细胞共孵育,得到未负载Hep-2肿瘤抗原的DC激活的T淋巴细胞(DC-T细胞)。
用含10%PBS的RPMI-1640完全培养基重悬AgDC-T细胞、DC-T细胞,与处于对数生长期的Hep-2肿瘤细胞(5×103个/孔),按照细胞数量比10:1加入96孔板中(共0.2ml/孔);同时设置T淋巴细胞与Hep-2肿瘤细胞混合孵育(10:1,浓度同上)的孔,作为对照,每组设置5个重复。37℃、5%CO2孵育72h,然后加入5mg/mL MTT溶液0.2ml/孔继续培养4h,离心沉淀、去上清、无水乙醇溶解,用酶联免疫检测仪在570nm下测光密度值(OD),计算各组对靶细胞的杀伤率,结果如表1所示。
杀伤率(%)=[1-(效靶细胞OD值-效应细胞OD值)]/靶细胞OD值*100%
其中,效靶细胞OD值指的是AgDC-T细胞或DC-T细胞组测定的OD值;效应细胞OD值指的是T淋巴细胞组测定的OD值;靶细胞OD值指的是Hep-2肿瘤细胞单独培养的OD值。
表1AgDC-T细胞对Hep-2肿瘤细胞的杀伤率
组别 杀伤率/%
AgDC-T细胞 89.62%
DC-T细胞 10.06%
可见,本发明制备的AgDC-T细胞对Hep-2肿瘤细胞具有明显的体外杀伤作用。
对比例1
本对比例是按照传统诱导培养基对树突状细胞和T淋巴细胞进行培养和诱导,具体的是将实施例1中的两种诱导培养基中的细胞因子进行替换:
将其中的诱导培养基Ⅰ替换成含有rhGM-CSF 1000U/mL、rhIL-41000U/mL的RPMI-1640完全培养基;将诱导培养基Ⅱ替换成含有TNF-α1000U/mL的RPMI-1640完全培养基。其他操作同实施例1。培养得到负载Hep-2肿瘤抗原的DC激活的T淋巴细胞后,对其对Hep-2肿瘤细胞的杀伤率进行测定,结果其对Hep-2肿瘤细胞的杀伤率为72.15%,显著低于实施例1培养的AgDC-T细胞。
实验例1
取实施例1和对比例1培养至对数生长期的AgDC-T细胞和处于对数生长期的Hep-2肿瘤细胞,用PBS洗涤2次后用PBS(pH=7.2)重悬,检测细胞活性大于95%后,调整细胞浓度5×106个/mL,备用。
取雌性裸鼠BALA/C,4~6周龄,体重在(20±2)g之间,将其中的30只随机分为3组,实验组、对照组和空白对照组,每组10只。剔除背部左右两侧的被毛,分别作如下处理:
实验组:于背部右侧皮下接种0.2mL实施例1培养的AgDC-T细胞(1×106个/mL),3天后,于背部左侧皮下接种0.2mLHep-2肿瘤细胞(1×106个/mL)。
对照组:于右侧皮下接种0.2mL对比例1培养的AgDC-T细胞(1×106个/mL),3天后,于背部左侧皮下接种0.2mL Hep-2肿瘤细胞(1×106个/mL)。
空白对照组:于右侧皮下接种0.2mL生理盐水,3天后,于背部左侧皮下接种0.2mLHep-2肿瘤细胞(1×106个/mL)。
以上3组处理完后每天统计肿瘤发生情况,结果:空白对照组与接种Hep-2肿瘤细胞的第7天发现1只裸鼠发生肿瘤,第15天所有裸鼠都发现肿瘤,肿瘤发生率为100%。对照组观察至第10天有1只裸鼠发生肿瘤,观察至第15天有3只裸鼠发生肿瘤,肿瘤发生率为30%。实验组观察至第20天暂未发现肿瘤,肿瘤发生率为0。可见,实施例1培养的AgDC-T细胞对于预防肿瘤发生具有更好的效果。
实验例2
按照实验例1的方法准备AgDC-T细胞和Hep-2肿瘤细胞,并按照空白对照组的处理方式,15天后得到携带肿瘤鼠。
将肿瘤鼠分为3组,实验组、对照组和空白组,每组10只。分别作如下处理:
实验组:于肿瘤鼠背部右侧注射0.2mL实施例1培养的AgDC-T细胞(1×106个/mL),进行治疗。
对照组:于肿瘤鼠背部右侧注射0.2mL对比例1培养的AgDC-T细胞(1×106个/mL),进行治疗。
空白组:于肿瘤鼠背部右侧注射0.2mL生理盐水。
观察肿瘤生长情况,记录肿瘤体积(mm3),统计结果如表2。
表2不同处理下肿瘤体积(mm3)随治疗时间的变化
记录天数 空白组 对照组 实验组
第5天 2.30±1.0 1.5±1.1 0.9±0.02
第10天 7.2±2.5 6.2±2.6 5.3±1.3
第15天 15.2±8.4 13.8±3.8 11.4±2.6
第18天 25.4±11.2 21.3±3.9 18.6±5.5
第21天 46.8±13.5 39.8±10.3 26.7±7.4
第24天 66.3±20.8 48.4±12.2 35.2±10.1
第27天 110.4±21.1 76.8±15.9 46.6±13.5
第30天 167.5±29.7 110.6±21.6 65.8±16.9
第33天 228.3±31.8 159.5±22.9 85.3±23.5
第35天 282.2±56.4 220.8±36.5 110.7±36.5
第37天 356.4±63.5 289.3±45.8 145.8±33.8
第39天 426.8±66.4 364.8±52.3 198.4±47.1
由表2可知,实验组对于肿瘤的抑制效果要明显好于对照组和空白组,表明本发明实施例1培养的AgDC-T细胞具有更强的肿瘤杀伤作用。
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。

Claims (7)

1.一种负载肿瘤抗原的树突状细胞激活的T淋巴细胞的培养方法,其特征在于,包括如下步骤:
(1)将肿瘤细胞抗原与树突状细胞在诱导培养基Ⅰ中共孵育,得到负载肿瘤抗原的树突状细胞;
(2)将所述负载肿瘤抗原的树突状细胞与T淋巴细胞在诱导培养基Ⅱ中共孵育,诱导得到负载肿瘤抗原的树突状细胞激活的T淋巴细胞;
所述所述诱导培养基Ⅰ以RPMI-1640完全培养基为基础培养基,含有如下浓度的刺激因子:rhGM-CSF 400~600U/mL、rhIL-4800~1200U/mL、rhIL-15800~1200U/mL、TNF-α80~120U/mL。
2.如权利要求1所述的培养方法,其特征在于,所述肿瘤细胞抗原按照制备前肿瘤细胞的数量计,与树突状细胞的混合细胞数之比为5~10:1。
3.如权利要求2所述的培养方法,其特征在于,步骤(1)中所述共孵育的时间为4~5d。
4.如权利要求1所述的培养方法,其特征在于,所述诱导培养基Ⅱ以RPMI-1640完全培养基为基础培养基,含有如下浓度的刺激因子:rhIL-2800~1200U/mL、rhIL-6800~1200U/mL、TNF-α800~1200U/mL。
5.如权利要求4所述的培养方法,其特征在于,所述负载Hep-2肿瘤抗原的树突状细胞与T淋巴细胞的混合细胞数之比为9~10:1。
6.如权利要求5所述的培养方法,其特征在于,步骤(2)中所述共孵育的时间为3~4d。
7.如权利要求1~6任一项所述的培养方法,其特征在于,所述肿瘤为喉癌。
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