CN115772531A - 一种果胶酸裂解酶基因突变体及其克隆方法和应用 - Google Patents

一种果胶酸裂解酶基因突变体及其克隆方法和应用 Download PDF

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CN115772531A CN202211410687.7A CN202211410687A CN115772531A CN 115772531 A CN115772531 A CN 115772531A CN 202211410687 A CN202211410687 A CN 202211410687A CN 115772531 A CN115772531 A CN 115772531A
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杨美英
吴雷
杨雪
赵合美
朱原
武志海
魏晓双
田平
王东超
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Jilin Agricultural University
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Abstract

本发明公开了一种果胶酸裂解酶基因突变体及其克隆方法和应用,从细菌菌株FY1中克隆得到野生型果胶酸裂解酶基因BaPel,并测序获得完整野生型果胶酸裂解酶基因序列;通过Discovery Studio软件将野生型果胶酸裂解酶基因序列的155位的甘氨酸Gly突变成丙氨酸Ala或缬氨酸Val,并克隆出果胶酸裂解酶基因突变体G155A或果胶酸裂解酶基因突变体G155V。与现有技术相比,本发明克隆的果胶酸裂解酶基因突变体G155A可以增加酶在30‑40℃的热稳定性,克隆的果胶酸裂解酶基因突变体G155V可增加3倍的酶活,酶活可达756U/mg,这要明显高于目前报道的细菌果胶酸裂解酶酶活性。该方法简便快捷,可有效提高酶的活性及热稳定性,有利于生产实践的应用。

Description

一种果胶酸裂解酶基因突变体及其克隆方法和应用
技术领域
本发明涉及基因工程技术领域,特别是一种果胶酸裂解酶基因突变体及其克隆方法和应用。
背景技术
果胶酸裂解酶(Pectate lyase)属于果胶酶的一种,可有效降解果胶类物质。果胶酸裂解酶可用于多种工业加工,如食品业的果蔬汁澄清,纺织业的植物纤维脱胶和棉织物精炼等。近年来,随着酶工程的迅猛发展,因其高效、安全、经济等优点,在能源开发,环境保护,水质净化与石油污染净化方面的应用日益扩大。其中,果胶酸裂解酶就曾被利用进行污水处理且有效地降低了环境污染。
微生物产酶是果胶酸裂解酶的主要来源方式。根据文献报道来自微生物的果胶酸裂解酶的比活力一般为45-600U/mg,野生型酶比活力相对较低且温度稳定性较差,不能有效的满足工业的要求。
发明内容
本发明是要解决现有技术中存在的不足,提供一种果胶酸裂解酶基因突变体及其克隆方法和应用,以达到改变果胶酸裂解酶基因结构达到提高酶活或热稳定性的目的。
为达到上述目的,本发明是按照以下技术方案实施的:
本发明的第一个目的是要提供一种果胶酸裂解酶基因突变体克隆方法,包括以下步骤:
S1、从细菌菌株FY1中克隆得到野生型果胶酸裂解酶基因BaPel,并测序获得完整野生型果胶酸裂解酶基因序列;
S2、通过Discovery Studio软件将野生型果胶酸裂解酶基因序列的155位的甘氨酸Gly突变成丙氨酸Ala或缬氨酸Val,并克隆出果胶酸裂解酶基因突变体G155A或果胶酸裂解酶基因突变体G155V。
进一步地,所述步骤S1中克隆野生型果胶酸裂解酶基因BaPel具体方法如下:
利用同源克隆的方法,将FY1菌株16Sr DNA序列与NCBI上nucleartide数据库进行比对,以同源性最高的Bacillus altitudinis果胶酸裂解酶基因为模板设计引物,F1:5’-ATGTTGAAGAAAAAAGTTCCAATGTT-3’,R1:5’-TTAAGGATTTACTTTTCCTACACCCG-3’;用FY1基因组DNA作为模板进行PCR扩增,PCR扩增体系:94℃-4min,94℃-30S,60℃-30S,72℃-2min,30个循环,72℃-10min;即得野生型果胶酸裂解酶基因BaPel。
进一步地,所述步骤S2中克隆出果胶酸裂解酶基因突变体G155A或果胶酸裂解酶基因突变体G155V具体包括:
通过Discovery Studio软件对蛋白进行虚拟氨基酸突变,确定突变位点后;利用野生型果胶酸裂解酶基因序列为模板进行突变,并获得果胶酸裂解酶基因突变体G155A或果胶酸裂解酶基因突变体G155V。用野生型果胶酸裂解酶BaPel基因为模板,使用设计的引物:
引物名称 引物序列(5’—3’)
G155A-F1 CGGGATCCATGTTGAAGAAAAAAGTTCCAATGTT
G155A-R1 GTTTTTAGAGCCGCCTTCGATTGCGATGGCATCTTTATCACCGA
G155A-F2 ATCGAAGGCGGCTCTAAAAAC
G155A-R2 CCCAAGCTTTTAAGGATTTACTTTTCCTACACCCG
G155V-F1 CGGGATCCATGTTGAAGAAAAAAGTTCCAATGTT
G155V-R1 GTTTTTAGAGCCGCCTTCGATTACGATGGCATCTTTATCACCGA
G155V-F2 ATCGAAGGCGGCTCTAAAAAC
G155V-R2 CCCAAGCTTTTAAGGATTTACTTTTCCTACACCCG
进行重叠PCR扩增,第一轮PCR扩增体系:94℃-1min,98℃-10S,60℃-40S,72℃-1min,30个循环;产物经试剂盒回收后作为第二轮PCR的模板,第二轮PCR扩增体系:94℃-4min,94℃-30S,60℃-30S,72℃-2min,30个循环,72℃-10min;即得果胶酸裂解酶基因突变体G155A或果胶酸裂解酶基因突变体G155V。
本发明的第二个目的是要提供一种如权利要求1所述的克隆方法克隆得到的果胶酸裂解酶基因突变体G155A或果胶酸裂解酶基因突变体G155V。
本发明的第三个目的是要提供一种果胶酸裂解酶基因突变体G155A或果胶酸裂解酶基因突变体G155V在微生物产果胶酸裂解酶中的应用。
与现有技术相比,本发明本发明从一株溶藻菌基因组DNA中克隆获得果胶酸裂解酶基因,将该酶155位的甘氨酸(Gly)突变成丙氨酸(Ala)可以增加酶在30-40℃的热稳定性,而将155位的甘氨酸(Gly)突变成缬氨酸(Val)可增加3倍的酶活,酶活可达756U/mg,这要明显高于目前报道的细菌果胶酸裂解酶酶活性。该方法简便快捷,可有效提高酶的活性及热稳定性,有利于生产实践的应用。
附图说明
图1为野生型和突变体酶活比较。
图2为野生型果胶酸裂解酶基因与其突变体的热稳定性对比图。
图3为野生型果胶酸裂解酶基因、果胶酸裂解酶基因突变体G155A、果胶酸裂解酶基因突变体G155V对铜绿微囊藻培养液降解后的颜色变化图:a、铜绿微囊藻培养液;b、野生型果胶酸裂解酶基因的降解结果;c、果胶酸裂解酶基因突变体G155A的降解结果;d、果胶酸裂解酶基因突变体G155V的降解结果。
图4为野生型果胶酸裂解酶基因、果胶酸裂解酶基因突变体G155A、果胶酸裂解酶基因突变体G155V对铜绿微囊藻的降解曲线。
具体实施方式
为使本发明的目的、技术方案及优点更加清楚明白,以下结合实施例,对本发明进行进一步的详细说明。此处所描述的具体实施例仅用于解释本发明,并不用于限定发明。
实施例1
从细菌菌株FY1中克隆得到野生型果胶酸裂解酶基因BaPel,并测序获得完整野生型果胶酸裂解酶基因序列;
细菌菌株FY1是从扶余地区稻田水样中分离得到的,具体地:从稻田取得水样后在LB平板上进行分离纯化,获得单一菌株,将该菌株与铜绿微囊藻进行共培养,发现在培养3d后,藻类开始死亡,到7d时死亡率可达70%以上,说明该菌具有降解有害藻类-铜绿微囊藻的作用。通过16S rDNA测序,细菌菌株FY1的16S rDNA序列为:
GCAGTCGAGCGGACAGAAGGGAGCTTGCTCCCGGATGTTAGCGGCGGACGGGTGAGTAACACGTGGGTAACCTGCCTGTAAGACTGGGATAACTCCGGGAAACCGGAGCTAATACCGGATAGTTCCTTGAACCGCATGGTTCAAGGATGAAAGACGGTTTCGGCTGTCACTTACAGATGGACCCGCGGCGCATTAGCTAGTTGGTGAGGTAACGGCTCACCAAGGCGACGATGCGTAGCCGACCTGAGAGGGTGATCGGCCACACTGGGACTGAGACACGGCCCAGACTCCTACGGGAGGCAGCAGTAGGGAATCTTCCGCAATGGACGAAAGTCTGACGGAGCAACGCCGCGTGAGTGATGAAGGTTTTCGGATCGTAAAGCTCTGTTGTTAGGGAAGAACAAGTGCAAGAGTAACTGCTTGCACCTTGACGGTACCTAACCAGAAAGCCACGGCTAACTACGTGCCAGCAGCCGCGGTAATACGTAGGTGGCAAGCGTTGTCCGGAATTATTGGGCGTAAAGGGCTCGCAGGCGGTTTCTTAAGTCTGATGTGAAAGCCCCCGGCTCAACCGGGGAGGGTCATTGGAAACTGGGAAACTTGAGTGCAGAAGAGGAGAGTGGAATTCCACGTGTAGCGGTGAAATGCGTAGAGATGTGGAGGAACACCAGTGGCGAAGGCGACTCTCTGGTCTGTAACTGACGCTGAGGAGCGAAAGCGTGGGGAGCGAACAGGATTAGATACCCTGGTAGTCCACGCCGTAAACGATGAGTGCTAAGTGTTAGGGGGTTTCCGCCCCTTAGTGCTGCAGCTAACGCATTAAGCACTCCGCCTGGGGAGTACGGTCGCAAGACTGAAACTCAAAGGAATTGACGGGGGCCCGCACAAGCGGTGGAGCATGTGGTTTAATTCGAAGCAACGCGAAGAACCTTACCAGGTCTTGACATCCTCTGACAACCCTAGAGATAGGGCTTTCCCTTCGGGGACAGAGTGACAGGTGGTGCATGGTTGTCGTCAGCTCGTGTCGTGAGATGTTGGGTTAAGTCCCGCAACGAGCGCAACCCTTGATCTTAGTTGCCAGCATTTAGTTGGGCACTCTAAGGTGACTGCCGGTGACAAACCGGAGGAAGGTGGGGATGACGTCAAATCATCATGCCCCTTATGACCTGGGCTACACACGTGCTACAATGGACAGAACAAAGGGCTGCGAGACCGCAAGGTTTAGCCAATCCCACAAATCTGTTCTCAGTTCGGATCGCAGTCTGCAACTCGACTGCGTGAAGCTGGAATCGCTAGTAATCGCGGATCAGCATGCCGCGGTGAATACGTTCCCGGGCCTTGTACACACCGCCCGTCACACCACGAGAGTTTGCAACACCCGAAGTCGGTGAGGTAACCTTTATGGAGCCAGCCGC。获得的序列在NCBI进行比对,结果显示该菌株与高地芽孢杆菌41KF2BT的16S rDNA相似性为100%,因此细菌菌株FY1被鉴定为高地芽孢杆菌。
利用同源克隆的方法,将FY1菌株16Sr DNA序列与NCBI上nucleartide数据库进行比对,以同源性最高的Bacillus altitudinis果胶酸裂解酶基因(CP054136.1)为模板设计引物,F1:5’-ATGTTGAAGAAAAAAGTTCCAATGTT-3’,R1:5’-TTAAGGATTTACTTTTCCTACACCCG-3’。用FY1基因组DNA作为模板进行PCR扩增。PCR扩增体系:94℃-4min,94℃-30S,60℃-30S,72℃-2min,30个循环,72℃-10min。通过电泳检测结果,目的条带用试剂盒(大连宝生物有限公司)回收。将目的片段与pMD18-T载体连接,转化DH5α感受态细胞后,在带有氨苄抗性的平板上筛出阳性克隆,挑取单菌落进行摇菌,提取质粒进行酶切验证后送往库美生物科技有限公司(长春)进行序列测定。测序结果经NCBI比对,与目的序列同源性达100%,表明FY1的果胶酸裂解酶BaPel基因克隆成功。
野生型果胶酸裂解酶BaPel基因序列:
ATGTTGAAGAAAAAAGTTCCAATGTTAGCTGGTGTGTTAGCGGTTGGTCTCGTGACTTCATTATTTGCGCCAAATGGAGAGGCAAAAGCAGCAACGAAATATCCAGAAAGCCCTTCGATTATGGCCAATTTTAATCAGCAAGGATTCTCCACATTAAATGGCGGTACAACAGGCGGTGAAGGCGGTAAAACGGTGACGGTGAAAACCGGAAATGAACTATTAGCTGCCCTCAAAAGCAAAGGAACAAATGAAAAATTGAAAATCGTGGTAGACGGAACGATTACTCCTTCTAATACTTCAGCCAATAAAATTGATGTGAAAGATACAAACAATGTCTCCATCGTCGGTAAAGGGACAAACGGCGAATTTAACGGGATTGGTATTAAAGTATGGCGCGCCAATAACGTCATCATCCGCAACCTCAAAATCCATCACAGCAAAATCGGTGATAAAGATGCCATCGGAATCGAAGGCGGCTCTAAAAACGTATGGGTCGACCATAATGAACTCTACAACACTTTGAACTCTGGGAAAGATGACTATGATGGGTTATTCGATGTGAAAAATGACTCCGATTACATTACGTTCTCATGGAACTATGTCCATGACAGCTGGAAAACAATGCTGATGGGCAGCTCCGATAACGATAACTACAACAGAAAAATCACGTTCCACAACAACCGTTTTGAAAACTTGAACTCTCGTGTACCGTCTATGCGCTTCGGGGAAGGCCATGTGTATAACAACTATTACAAAAACATCCTAACAACAGCGATTAATTCACGTATGGGCGCGAAAATGAGAATTGAGCACAACGTATTTGAAAACACGAAAAATGCCATCGGGAGCTGGGACAGCAGTAAAGTTGGTACTTGGCATGTCATCAACAACTCTTATATTAACAGCACAGGTAGCCTGCCAACGTCTTCAACAGGTACGTACAACCCTCCTTATAACTACTCTTTGCTTAACGTGAACAATGTGAAATCAGAAGTTGTATCAAATGCGGGTGTAGGAAAAGTAAATCCTTAA。
通过Discovery Studio软件对蛋白进行虚拟氨基酸突变,确定突变位点后利用野生型果胶酸裂解酶基因序列为模板进行突变,并获得果胶酸裂解酶基因突变体G155A或果胶酸裂解酶基因突变体G155V,具体操作如下:
设计带突变位点的引物进行突变,引物序列如下表:
引物名称 引物序列(5’—3’)
G155A-F1 CGGGATCCATGTTGAAGAAAAAAGTTCCAATGTT
G155A-R1 GTTTTTAGAGCCGCCTTCGATTGCGATGGCATCTTTATCACCGA
G155A-F2 ATCGAAGGCGGCTCTAAAAAC
G155A-R2 CCCAAGCTTTTAAGGATTTACTTTTCCTACACCCG
G155V-F1 CGGGATCCATGTTGAAGAAAAAAGTTCCAATGTT
G155V-R1 GTTTTTAGAGCCGCCTTCGATTACGATGGCATCTTTATCACCGA
G155V-F2 ATCGAAGGCGGCTCTAAAAAC
G155V-R2 CCCAAGCTTTTAAGGATTTACTTTTCCTACACCCG
用野生型果胶酸裂解酶BaPel基因为模板,进行重叠PCR扩增。第一轮PCR扩增体系:94℃-1min,98℃-10S,60℃-40S,72℃-1min,30个循环。产物经试剂盒回收后作为第二轮PCR的模板。第二轮PCR扩增体系:94℃-4min,94℃-30S,60℃-30S,72℃-2min,30个循环,72℃-10min。产物为完整基因序列,其他步骤同BaPel基因克隆步骤相同。结果经DNAMAN比对,突变位点位置正确。
果胶酸裂解酶基因突变体G155A基因序列为:
ATGTTGAAGAAAAAAGTTCCAATGTTAGCTGGTGTGTTAGCGGTTGGTCTCGTGACTTCATTATTTGCGCCAAATGGAGAGGCAAAAGCAGCAACGAAATATCCAGAAAGCCCTTCGATTATGGCCAATTTTAATCAGCAAGGATTCTCCACATTAAATGGCGGTACAACAGGCGGTGAAGGCGGTAAAACGGTGACGGTGAAAACCGGAAATGAACTATTAGCTGCCCTCAAAAGCAAAGGAACAAATGAAAAATTGAAAATCGTGGTAGACGGAACGATTACTCCTTCTAATACTTCAGCCAATAAAATTGATGTGAAAGATACAAACAATGTCTCCATCGTCGGTAAAGGGACAAACGGCGAATTTAACGGGATTGGTATTAAAGTATGGCGCGCCAATAACGTCATCATCCGCAACCTCAAAATCCATCACAGCAAAATCGGTGATAAAGATGCCATCGCAATCGAAGGCGGCTCTAAAAACGTATGGGTCGACCATAATGAACTCTACAACACTTTGAACTCTGGGAAAGATGACTATGATGGGTTATTCGATGTGAAAAATGACTCCGATTACATTACGTTCTCATGGAACTATGTCCATGACAGCTGGAAAACAATGCTGATGGGCAGCTCCGATAACGATAACTACAACAGAAAAATCACGTTCCACAACAACCGTTTTGAAAACTTGAACTCTCGTGTACCGTCTATGCGCTTCGGGGAAGGCCATGTGTATAACAACTATTACAAAAACATCCTAACAACAGCGATTAATTCACGTATGGGCGCGAAAATGAGAATTGAGCACAACGTATTTGAAAACACGAAAAATGCCATCGGGAGCTGGGACAGCAGTAAAGTTGGTACTTGGCATGTCATCAACAACTCTTATATTAACAGCACAGGTAGCCTGCCAACGTCTTCAACAGGTACGTACAACCCTCCTTATAACTACTCTTTGCTTAACGTGAACAATGTGAAATCAGAAGTTGTATCAAATGCGGGTGTAGGAAAAGTAAATCCTTAA。
果胶酸裂解酶基因突变体G155V基因序列为:
ATGTTGAAGAAAAAAGTTCCAATGTTAGCTGGTGTGTTAGCGGTTGGTCTCGTGACTTCATTATTTGCGCCAAATGGAGAGGCAAAAGCAGCAACGAAATATCCAGAAAGCCCTTCGATTATGGCCAATTTTAATCAGCAAGGATTCTCCACATTAAATGGCGGTACAACAGGCGGTGAAGGCGGTAAAACGGTGACGGTGAAAACCGGAAATGAACTATTAGCTGCCCTCAAAAGCAAAGGAACAAATGAAAAATTGAAAATCGTGGTAGACGGAACGATTACTCCTTCTAATACTTCAGCCAATAAAATTGATGTGAAAGATACAAACAATGTCTCCATCGTCGGTAAAGGGACAAACGGCGAATTTAACGGGATTGGTATTAAAGTATGGCGCGCCAATAACGTCATCATCCGCAACCTCAAAATCCATCACAGCAAAATCGGTGATAAAGATGCCATCGTAATCGAAGGCGGCTCTAAAAACGTATGGGTCGACCATAATGAACTCTACAACACTTTGAACTCTGGGAAAGATGACTATGATGGGTTATTCGATGTGAAAAATGACTCCGATTACATTACGTTCTCATGGAACTATGTCCATGACAGCTGGAAAACAATGCTGATGGGCAGCTCCGATAACGATAACTACAACAGAAAAATCACGTTCCACAACAACCGTTTTGAAAACTTGAACTCTCGTGTACCGTCTATGCGCTTCGGGGAAGGCCATGTGTATAACAACTATTACAAAAACATCCTAACAACAGCGATTAATTCACGTATGGGCGCGAAAATGAGAATTGAGCACAACGTATTTGAAAACACGAAAAATGCCATCGGGAGCTGGGACAGCAGTAAAGTTGGTACTTGGCATGTCATCAACAACTCTTATATTAACAGCACAGGTAGCCTGCCAACGTCTTCAACAGGTACGTACAACCCTCCTTATAACTACTCTTTGCTTAACGTGAACAATGTGAAATCAGAAGTTGTATCAAATGCGGGTGTAGGAAAAGTAAATCCTTAA。
实施例2
上述实施例的果胶酸裂解酶基因突变体G155A或果胶酸裂解酶基因突变体G155V可应用到微生物产果胶酸裂解酶,以下进行具体实验。
将果胶酸裂解酶基因突变体G155A和野生型蛋白分别连接到ΔpET-30a表达载体上,然后将重组表达质粒ΔpET-30a-BaPel转化到感受态细胞BL21中,加入0.5mM IPTG,在16℃诱导16h,进行蛋白的原核表达。表达的重组蛋白分子量约38.5KDa;进一步进行重组蛋白的分离纯化,结合SDS-PAGE和Western blot结果,确定蛋白纯化效果。以多聚半乳糖醛酸(PGA)为底物,对野生型和突变体的酶比活力进行测定,确定G155V在酶比活力方面有所提高,具体结果如表1、图1所示。
表1野生型与突变体酶活性比较
Figure BDA0003938405580000101
比活力值是三次测定的平均值±标准误(SE)。
以多聚半乳糖醛酸(PGA)为底物,对野生型和突变体的热稳定性进行测定,确定突变体G155A在热稳定性上有所提高,具体结果如图2所示,从图2中可以看出,在30℃和40℃条件下,突变体G155A在120min时明显高于野生型,在40℃条件下,突变体G155A的活性要显著高于野生型及其他突变体。
铜绿微囊藻是引起水华的一种有害藻类,但由于藻类细胞壁果胶含量较高,不易被裂解。利用生物降解方式解决藻华问题近年来备受关注。图3、图4为利用果胶酸裂解酶处理铜绿微囊藻的结果。从图3可以看出,与CK相比,果胶酸裂解酶处理的铜绿微囊藻培养液颜色明显变浅(b,c,d),说明果胶酸裂解酶可以使铜绿微囊藻细胞降解并死亡。图4进一步证明了这一结果,CK的藻细胞的OD值一直升高,但果胶酸裂解酶处理的藻细胞3d内没有增加,5d或7d时明显下降。其中突变体G155A下降最为明显。
本发明的技术方案不限于上述具体实施例的限制,凡是根据本发明的技术方案做出的技术变形,均落入本发明的保护范围之内。

Claims (5)

1.一种果胶酸裂解酶基因突变体克隆方法,其特征在于,包括以下步骤:
S1、从细菌菌株FY1中克隆得到野生型果胶酸裂解酶基因BaPel,并测序获得完整野生型果胶酸裂解酶基因序列;
S2、通过Discovery Studio软件将野生型果胶酸裂解酶基因序列的155位的甘氨酸Gly突变成丙氨酸Ala或缬氨酸Val,并克隆出果胶酸裂解酶基因突变体G155A或果胶酸裂解酶基因突变体G155V。
2.根据权利要求1所述的果胶酸裂解酶基因突变体克隆方法,其特征在于,所述步骤S1中克隆野生型果胶酸裂解酶基因BaPel具体方法如下:
利用同源克隆的方法,将FY1菌株16Sr DNA序列与NCBI上nucleartide数据库进行比对,以同源性最高的Bacillus altitudinis果胶酸裂解酶基因为模板设计引物,F1:5’-ATGTTGAAGAAAAAAGTTCCAATGTT-3’,R1:5’-TTAAGGATTTACTTTTCCTACACCCG-3’;用FY1基因组DNA作为模板进行PCR扩增,PCR扩增体系:94℃-4min,94℃-30S,60℃-30S,72℃-2min,30个循环,72℃-10min;即得野生型果胶酸裂解酶基因BaPel。
3.根据权利要求1所述的果胶酸裂解酶基因突变体克隆方法,其特征在于,所述步骤S2中克隆出果胶酸裂解酶基因突变体G155A或果胶酸裂解酶基因突变体G155V具体包括:
通过Discovery Studio软件对蛋白进行虚拟氨基酸突变,确定突变位点后;利用野生型果胶酸裂解酶基因序列为模板进行突变,并获得果胶酸裂解酶基因突变体G155A或果胶酸裂解酶基因突变体G155V;用野生型果胶酸裂解酶BaPel基因为模板,使用设计的引物
Figure FDA0003938405570000011
Figure FDA0003938405570000021
进行重叠PCR扩增,第一轮PCR扩增体系:94℃-1min,98℃-10S,60℃-40S,72℃-1min,30个循环;产物经试剂盒回收后作为第二轮PCR的模板,第二轮PCR扩增体系:94℃-4min,94℃-30S,60℃-30S,72℃-2min,30个循环,72℃-10min;即得果胶酸裂解酶基因突变体G155A或果胶酸裂解酶基因突变体G155V。
4.一种如权利要求1所述的克隆方法克隆得到的果胶酸裂解酶基因突变体G155A或果胶酸裂解酶基因突变体G155V。
5.一种如权利要求4所述的果胶酸裂解酶基因突变体G155A或果胶酸裂解酶基因突变体G155V在微生物产果胶酸裂解酶中的应用。
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