CN114350654A - 一种rna提取试剂盒及rna提取方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及生物技术领域,尤其涉及一种用于血液RNA提取的裂解结合液、RNA提取试剂盒及RNA提取方法。利用该裂解结合液直接对血样样本中的RNA进行提取,无需裂解离心分离红细胞,获得的RNA质量较高,满足各种实验需要,可直接用于RT‑qPCR等实验或保存于‑70℃。
Description
技术领域
本发明涉及生物技术领域,尤其涉及一种RNA提取试剂盒及RNA提取方法。
背景技术
随着分子生物学技术的发展,以RNA为靶标进行的组织及细胞的分子生物学研究更为广泛,其中分离出纯度高且完整的RNA是进行基因表达分析及RNA结构功能研究的基础。在所有RNA实验中,最关键的步骤是分离得到纯度高且完整的RNA。血液中含有核白细胞,因此从血液中抽提RNA比较方便,但是血液中的红细胞富含核糖核酸酶,所以从血液中分离RNA有其特殊的难度。
常见的RNA提取方法有苯酚法、阴离子去污剂法、热硼酸法或改良热硼酸法、LiCl-尿素法、改良的Gomez法、异硫氰酸胍法、TRIzol试剂快速提取法、CTAB(十六烷基三甲基溴化铵)法。
随着生物技术的不断发展,很多生物技术公司着手RNA提取的研究并取得丰硕成果,将科研人员从繁琐的提取、纯化工作中解放出来。目前,RNA提取中常用的试剂盒主要分为3种:TRIzol试剂一步法、TRIzol LS试剂一步法和PAXgene试剂盒法,前两者均使用苯酚和异硫氰酸胍的单相溶液,而PAXgene法需根据试剂生产商说明书操作。
Trizol法不可避免会使用氯仿,然而氯仿是一种有毒试剂,不利于实验操作人员的身体健康。而其它试剂盒方法中均需要先对红细胞进行裂解,然后离心取沉淀的细胞再进行下一步的提取,这些试剂盒方法操作繁琐耗时较长,不适合大批量提取。
发明内容
有鉴于此,本发明提供了一种RNA提取试剂盒及RNA提取方法,该方法无需裂解离心分离红细胞,可直接对血样样本中的RNA进行提取,获得RNA满足各种实验需要,可直接用于RT-qPCR等实验或保存于-70℃。为了实现上述发明目的,本发明提供以下技术方案:
一种用于血液RNA提取的裂解结合液,包括DEPC水和如下浓度的组分:
作为优选,所述裂解结合液包括DEPC水和如下浓度的组分:
一些具体实施例中,所述裂解结合液包括DEPC水和如下浓度的组分:
一些具体实施例中,所述裂解结合液包括DEPC水和如下浓度的组分:
本发明还提供了所述的裂解结合液在提取血液RNA中的应用。
本发明还提供一种提取血液RNA的试剂盒,包括本发明所述的裂解结合液,以及清洗液、洗脱液和磁珠。
作为优选,所述清洗液包括第一清洗液和第二清洗液。
其中,所述第一清洗液包括以下组分:
0.1-2M盐酸胍;
0.1-2M氯化钠;
1-5vol%Triton X-100;
10-50vol%异丙醇;
第二清洗液为80%乙醇。
作为优选,所述洗脱液为DEPC水。
作为优选,所述磁珠为超顺磁性二氧化硅磁珠。
本发明还提供一种提取血液RNA的方法,利用本发明所述的试剂盒提取血液样本中的RNA。
作为优选,本发明提供的提取血液RNA的方法,包括如下步骤:
1)将磁珠进行羧基改性后悬浮于缓冲液中,得到第一混合液;
3)在血液样本中加入裂解结合液得到第二混合液;
4)第一混合液与第二混合,得到含有核酸-磁珠的第三混合液;
5)利用磁力吸附第三混合液的中核酸-磁珠,去除上清液;收集磁珠,依次用第一清洗液和第二清洗液洗涤,干燥,DNaseⅠ消化;消化结束后加入第二清洗液洗涤,磁吸去上清液;
7)将洗涤后的磁珠与洗脱液混合,收集洗脱液,获得血液RNA。
作为优选,所述第一混合液中,磁珠的浓度为10-100mg/mL。
本发明中,所述DNaseⅠ购自Omega、诺唯赞、罗氏、生工;优选为DNaseⅠ-Omega。
本发明提供了一种用于血液RNA提取的裂解结合液、RNA提取试剂盒及RNA提取方法。利用该裂解结合液直接对血样样本中的RNA进行提取,无需裂解离心分离红细胞,获得的RNA质量较高,满足各种实验需要,可直接用于RT-qPCR等实验或保存于-70℃
附图说明
图1示本发明血液RNA提取的试剂盒的操作流程图;
图2示不同磁珠对提取的RNA的影响;2-a为电泳分析结果,从左到右依次为SC磁珠、PC磁珠和70108磁珠的结果;2-a为Agilent 4150TapeStation检测分析的70108磁珠实验组的RNA电泳图,代表RNA条带的片段分布与完整性;
图3示不同DNaseⅠ对提取的RNA的影响;3-a为电泳分析结果,从左到右依次为DNaseⅠ-Omega、DNaseⅠ-诺唯赞、DNaseⅠ-罗氏和DNaseⅠ-生工的结果;3-b为Agilent4150TapeStation检测分析DNaseⅠ-Omega实验组的RNA电泳图,代表RNA条带的片段分布与完整性;
图4示不同反应温度下的DNaseⅠ消化对RNA提取的影响;4-a为电泳分析结果,从左到右依次为生工DNaseⅠ37℃、生工DNaseⅠRT、诺唯赞DNaseⅠ37℃和诺唯赞DNaseⅠRT的结果;4-b为Agilent 4150TapeStation检测分析诺唯赞DNaseⅠRT实验组的RNA电泳图,代表RNA条带的片段分布与完整性;
图5示不同磁珠加入量对提取的RNA的影响;5-a为电泳分析结果,从左到右依次为SC20210714-0.25mg、SC20210714-0.5mg、SC20210714-1mg、70108-0.25mg、70108-0.5mg和70108-1mg的结果;5-b为Agilent4150TapeStation检测70108-1mg实验组的RNA电泳图,代表RNA条带的片段分布与完整性;
图6示实施例7的裂解液对RNA提取的检测结果;6-a为电泳分析结果,从左到右依次为1#和2#样本检测结果;6-bAgilent 4150TapeStation检测分析新鲜兔血实验组的RNA电泳图,代表RNA条带的片段分布与完整性。
具体实施方式
本发明提供了一种用于血液RNA提取的裂解结合液、RNA提取试剂盒及RNA提取方法。本领域技术人员可以借鉴本文内容,适当改进工艺参数实现。特别需要指出的是,所有类似的替换和改动对本领域技术人员来说是显而易见的,它们都被视为包括在本发明。本发明的方法及应用已经通过较佳实施例进行了描述,相关人员明显能在不脱离本发明内容、精神和范围内对本文的方法和应用进行改动或适当变更与组合,来实现和应用本发明技术。
本发明采用的试材皆为普通市售品,皆可于市场购得。
下面结合实施例,进一步阐述本发明:
实施例1裂解结合液及试剂盒
试剂盒组成:
第一清洗液(0.1-2M盐酸胍;0.1-2M氯化钠;1-5%Triton X-100;10-50%异丙醇;
第二清洗液为80%乙醇;
洗脱液为DEPC水;
裂解结合液由如下组分组成:
1M硫氰酸胍;
1M盐酸胍;
0.5vol%吐温-20;
1vol%Triton X-100;
0.5M氯化钠;
1wt%聚乙烯醇PEG 2000;
1wt%聚乙烯醇PEG 6000;
40vol%异丙醇;
DEPC水。
RNA提取包括以下步骤,具体步骤参见图1:
1)超顺磁性二氧化硅磁珠表面通过羧基改性;
2)改性后超顺磁性二氧化硅磁珠悬浮于缓冲液中,得到第一混合液(超顺磁性二氧化硅磁珠的含量为50mg/mL);
3)在0.2mL血液样本中加入0.4mL裂解结合液得到第二混合液;
4)第一混合液与第二混合得到第三混合液;
5)通过磁力对第三混合液的有核酸磁珠吸附,去除上清液,磁性吸附的有核酸磁珠通过第一清洗液洗涤,再去除上清液,然后通过第二清洗液洗涤;
6)洗涤后的磁珠进行干燥
7)磁珠干燥后加入DNaseⅠ对DNA进行消化
8)磁珠消化完毕后加入第二清洗液洗涤并磁性吸附去除上清液
9)洗涤后的磁珠进行干燥并与洗脱液混合,对磁珠进行洗脱处理,得到纯化的血液RNA。
实施例2不同磁珠对RNA提取的影响
采用实施例1的试剂盒和提取方法提取血液样本的RNA。新采购来的血液样本(未冷冻,EDTA抗凝剂),200μL样本,100μL洗脱。
测试三种磁珠:SC、PC、70108磁珠的效果。实验结果如图2和表1所示:
表1
结果分析:
1.血液样本不是新鲜样本,根据上次使用O品牌试剂盒提取结果也可知样本中RNA已有部分降解。
2使用70108磁珠效果最好,提取的RNA浓度可达Omega品牌提取量的90%左右。
3.SC磁珠与70108磁珠两组安捷伦4150检测的RNA峰形一致,浓度略低。
实施例3不同品牌DNaseⅠ对RNA提取的影响
采用实施例1的试剂盒和提取方法提取血液样本的RNA。新采购来的血液样本(未冷冻,EDTA抗凝剂),200μL样本,100μL洗脱。
测试四种DNaseⅠ:Omega、诺唯赞、罗氏、生工。
实验结果如图3和表2:
表2
结果分析:
DNaseⅠ-Omega提取获得的RNA浓度和质量明显高于其他三种酶。
实施例4不同反应温度下的DNaseⅠ消化对RNA提取的影响
采用实施例1的试剂盒和提取方法提取血液样本的RNA。新采购的血液样本(未冷冻,EDTA抗凝剂),200μL样本,50μL洗脱。磁珠为70108磁珠。
测试采用两种DNaseⅠ:生工、诺唯赞。
酶反应体系为:酶加入量10U(1U/μL),10×Buffer加入量10μL,补水至100μL。
测试温度:室温(RT,约25℃)、37℃。
反应时间:静置10min。
实验结果如图4和表3:
表3
结果显示,在室温和37℃下进行DNaseⅠ消化对RNA的浓度和质量没有明显影响。
实施例5血液RNA提取试剂盒裂解结合液
血液样本(未冷冻,EDTA抗凝剂),200μL样本,50μL洗脱。
酶反应体系为:诺唯赞DNaseⅠ加入量10U(1U/μL),10×Buffer加入量10μL,补水至100μL。酶反应温度时间:室温(约24℃)静置15min。
测试磁珠70108、SC20210506磁珠。
裂解液组成:
1M硫氰酸胍;
1M盐酸胍;
0.5%吐温-20;
2%TritonX-100;
0.5M氯化钠;
1%聚乙烯醇PEG 2000;
1%聚乙烯醇PEG 6000;
30%异丙醇;
DEPC水。
试剂盒其他组分与实施例1相同,提取方法同实施例1。
结果显示,洗涤过程不发生团聚现象,磁珠呈分散状态不团聚
实施例6不同磁珠加入量对RNA提取的影响
目的:测试不同的磁珠加入量对血液RNA提取试剂盒的影响,减少磁珠量是否会改善洗涤过程团聚的现象、
采用实施例5的试剂盒和提取方法提取血液样本的RNA。血液样本为新采购的EDTA抗凝血(4℃保存了约2周),200μL样本,60μL洗脱。
酶反应体系为:诺唯赞DNaseⅠ加入量10U(1U/μL),10×Buffer加入量10μL,补水至100μL。
酶反应温度时间:室温(约24℃)静置15min。
测试磁珠70108、SC20210714磁珠。
Qubit检测浓度结果见图5和表4。
表4
结果分析:磁珠加入量1mg/样时,RNA的提取效果较优;70108磁珠提取效果较SC磁珠更好。
实施例7裂解结合液及试剂盒的制备
裂解液组成如下,其他试剂盒组分同实施例1:
2M硫氰酸胍;
2M盐酸胍;
1%吐温-20;
1%TritonX-100;
0.5M氯化钠;
1%聚乙烯醇PEG 2000;
1%聚乙烯醇PEG 6000;
50%异丙醇;
DEPC水。
然后进行血液样本的提取:
RNA提取包括以下步骤:
1)超顺磁性二氧化硅磁珠表面通过羧基改性;
2)改性后超顺磁性二氧化硅磁珠悬浮于缓冲液中,得到第一混合液(每个血液样本加入1mg超顺磁性二氧化硅磁珠);
3)在0.2mL血液样本中加入0.4mL裂解结合液得到第二混合液;
4)第一混合液与第二混合得到第三混合液;
5)通过磁力对第三混合液的有核酸磁珠吸附,去除上清液,磁性吸附的有核酸磁珠通过第一清洗液洗涤,再去除上清液,然后通过第二清洗液洗涤;
6)洗涤后的磁珠进行干燥;
7)磁珠干燥后加入DNaseⅠ对DNA进行消化;
8)磁珠消化完毕后加入第二清洗液洗涤并磁性吸附去除上清液;
9)洗涤后的磁珠进行干燥并与洗脱液混合,对磁珠进行洗脱处理,得到纯化的血液RNA。
取新鲜兔血加入采血管EDTA抗凝剂混匀,然后使用上述试剂盒按照上述方法进行提取,其中,样本加入量为200μL,100μL洗脱液洗脱。
使用不同仪器检测提取的RNA浓度、片段情况。
结果如表5~6和图6所示:
表5
表6
注:1#、2#表示两个平行试验,RIN值表示RNA完整情况,10.0为最好。“/”是因为浓度低于10ng/μL时,仪器检测不输出RIN值。
结果显示,采用该裂解结合液组成的试剂盒提取获得的RNA浓度符合要求,DNA残留未检出,片段大小符合要求,RNA的RIN值为10.0,说明RNA没有降解,RNA完整性符合要求,提取效果理想。
对比例1裂解结合液及试剂盒
裂解结合液组成如下,其他试剂盒组成同实施例1:
5M硫氰酸胍;
0.5M盐酸胍;
2%吐温-20;
5%TritonX-100;
0.5M月桂基酰胺酸钠;
0.5%十二烷基硫酸钠
1%聚乙烯醇PEG 6000;
40%异丙醇;
DEPC水。
然后进行血液样本的提取:
血液样本(未冷冻,EDTA抗凝剂,按照实施例1的方法进行提取,其中;
200μL样本,50μL洗脱。
酶反应体系为:诺唯赞DNaseⅠ加入量10U(1U/μL),10×Buffer加入量10μL,补水至100μL。酶反应温度时间:室温(约24℃)静置15min。
测试磁珠为70108、SC20210506磁珠。
实验结果见表7:
表7
结果分析:该裂解结合液下,提取的RNA浓度偏低,提取效果不理想。
Claims (10)
4.权利要求1~3任一项所述的裂解结合液在提取血液RNA中的应用。
5.一种提取血液RNA的试剂盒,包括权利要求1~3任一项所述的裂解结合液,以及清洗液、洗脱液和磁珠。
6.根据权利要求5所述的试剂盒,其特征在于,所述清洗液包括第一清洗液和第二清洗液;
所述第一清洗液包括以下组分:
0.1-2M盐酸胍;
0.1-2M氯化钠;
1-5vol%TritonX-100;
10-50%vol异丙醇;
第二清洗液为80%乙醇;
所述洗脱液为DEPC水。
7.根据权利要求5所述的试剂盒,其特征在于,所述磁珠为超顺磁性二氧化硅磁珠。
8.一种提取血液RNA的方法,其特征在于,利用权利要求5~7任一项所述的试剂盒提取血液样本中的RNA。
9.根据权利要求8所述的方法,其特征在于,包括如下步骤:
1)将磁珠进行羧基改性后悬浮于缓冲液中,得到第一混合液;
3)在血液样本中加入裂解结合液得到第二混合液;
4)第一混合液与第二混合,得到含有核酸-磁珠的第三混合液;
5)利用磁力吸附第三混合液的中核酸-磁珠,去除上清液;收集磁珠,依次用第一清洗液和第二清洗液洗涤,干燥,DNaseⅠ消化;消化结束后加入第二清洗液洗涤,磁吸去上清液;
7)将洗涤后的磁珠与洗脱液混合,收集洗脱液,获得血液RNA。
10.根据权利要求9所述的方法,其特征在于,所述第一混合液中,磁珠的浓度为10-100mg/mL。
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