CN114317536B - 基于CRISPR/Cas9构建uPA转基因小鼠的制备方法 - Google Patents
基于CRISPR/Cas9构建uPA转基因小鼠的制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN114317536B CN114317536B CN202111472651.7A CN202111472651A CN114317536B CN 114317536 B CN114317536 B CN 114317536B CN 202111472651 A CN202111472651 A CN 202111472651A CN 114317536 B CN114317536 B CN 114317536B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- mice
- grna
- seq
- plasmid
- pcr
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
- 108091033409 CRISPR Proteins 0.000 title claims abstract description 36
- 238000010354 CRISPR gene editing Methods 0.000 title claims abstract description 16
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title claims description 12
- 238000011830 transgenic mouse model Methods 0.000 title claims description 10
- 241000699660 Mus musculus Species 0.000 title description 5
- 239000013612 plasmid Substances 0.000 claims abstract description 60
- 108020005004 Guide RNA Proteins 0.000 claims abstract description 33
- 238000010172 mouse model Methods 0.000 claims abstract description 16
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 claims abstract description 14
- 238000011579 SCID mouse model Methods 0.000 claims abstract description 8
- 206010067125 Liver injury Diseases 0.000 claims abstract description 7
- 238000012216 screening Methods 0.000 claims abstract description 4
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 claims description 50
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 claims description 37
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 19
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 claims description 13
- 238000011577 humanized mouse model Methods 0.000 claims description 12
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 claims description 8
- 102000016928 DNA-directed DNA polymerase Human genes 0.000 claims description 7
- 108010014303 DNA-directed DNA polymerase Proteins 0.000 claims description 7
- 238000002347 injection Methods 0.000 claims description 6
- 239000007924 injection Substances 0.000 claims description 6
- 231100000753 hepatic injury Toxicity 0.000 claims description 5
- 238000012163 sequencing technique Methods 0.000 claims description 5
- 238000000520 microinjection Methods 0.000 claims description 4
- 238000003205 genotyping method Methods 0.000 claims description 3
- 230000003321 amplification Effects 0.000 claims description 2
- 229940079593 drug Drugs 0.000 claims description 2
- 239000003814 drug Substances 0.000 claims description 2
- 230000013011 mating Effects 0.000 claims description 2
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 claims description 2
- 230000002194 synthesizing effect Effects 0.000 claims description 2
- 230000014509 gene expression Effects 0.000 abstract description 22
- 210000004185 liver Anatomy 0.000 abstract description 22
- 108090000435 Urokinase-type plasminogen activator Proteins 0.000 abstract description 18
- 102100031358 Urokinase-type plasminogen activator Human genes 0.000 abstract description 17
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 abstract description 12
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 abstract description 8
- 206010019799 Hepatitis viral Diseases 0.000 abstract description 7
- 238000011160 research Methods 0.000 abstract description 7
- 201000001862 viral hepatitis Diseases 0.000 abstract description 7
- 230000008685 targeting Effects 0.000 abstract description 6
- 230000009385 viral infection Effects 0.000 abstract description 6
- 239000003443 antiviral agent Substances 0.000 abstract description 5
- 230000008506 pathogenesis Effects 0.000 abstract description 5
- 208000035473 Communicable disease Diseases 0.000 abstract description 4
- 238000009509 drug development Methods 0.000 abstract description 3
- 231100000234 hepatic damage Toxicity 0.000 abstract description 2
- 230000008818 liver damage Effects 0.000 abstract description 2
- 239000013598 vector Substances 0.000 description 24
- 241000699666 Mus <mouse, genus> Species 0.000 description 23
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 20
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 15
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 14
- 238000003776 cleavage reaction Methods 0.000 description 13
- 230000006798 recombination Effects 0.000 description 13
- 238000005215 recombination Methods 0.000 description 13
- 230000007017 scission Effects 0.000 description 13
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 12
- 238000010367 cloning Methods 0.000 description 11
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 11
- 210000003494 hepatocyte Anatomy 0.000 description 10
- 238000001962 electrophoresis Methods 0.000 description 9
- 238000007490 hematoxylin and eosin (H&E) staining Methods 0.000 description 8
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 8
- 108091032973 (ribonucleotides)n+m Proteins 0.000 description 7
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 7
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 7
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 7
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 7
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 7
- 238000002054 transplantation Methods 0.000 description 7
- 229920000742 Cotton Polymers 0.000 description 6
- 238000012408 PCR amplification Methods 0.000 description 6
- 238000000246 agarose gel electrophoresis Methods 0.000 description 6
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 6
- 239000000047 product Substances 0.000 description 6
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 6
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 6
- SGKRLCUYIXIAHR-AKNGSSGZSA-N (4s,4ar,5s,5ar,6r,12ar)-4-(dimethylamino)-1,5,10,11,12a-pentahydroxy-6-methyl-3,12-dioxo-4a,5,5a,6-tetrahydro-4h-tetracene-2-carboxamide Chemical compound C1=CC=C2[C@H](C)[C@@H]([C@H](O)[C@@H]3[C@](C(O)=C(C(N)=O)C(=O)[C@H]3N(C)C)(O)C3=O)C3=C(O)C2=C1O SGKRLCUYIXIAHR-AKNGSSGZSA-N 0.000 description 5
- 241000711549 Hepacivirus C Species 0.000 description 5
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 5
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 5
- 229960003722 doxycycline Drugs 0.000 description 5
- 208000006454 hepatitis Diseases 0.000 description 5
- 210000005228 liver tissue Anatomy 0.000 description 5
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 5
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 4
- 108700005075 Regulator Genes Proteins 0.000 description 4
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 4
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 4
- 231100000283 hepatitis Toxicity 0.000 description 4
- 230000006698 induction Effects 0.000 description 4
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 4
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 4
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 4
- 238000013518 transcription Methods 0.000 description 4
- 230000035897 transcription Effects 0.000 description 4
- FGUUSXIOTUKUDN-IBGZPJMESA-N C1(=CC=CC=C1)N1C2=C(NC([C@H](C1)NC=1OC(=NN=1)C1=CC=CC=C1)=O)C=CC=C2 Chemical compound C1(=CC=CC=C1)N1C2=C(NC([C@H](C1)NC=1OC(=NN=1)C1=CC=CC=C1)=O)C=CC=C2 FGUUSXIOTUKUDN-IBGZPJMESA-N 0.000 description 3
- 238000011746 C57BL/6J (JAX™ mouse strain) Methods 0.000 description 3
- 238000011789 NOD SCID mouse Methods 0.000 description 3
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 3
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 3
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 3
- 238000007664 blowing Methods 0.000 description 3
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 3
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 3
- 235000019441 ethanol Nutrition 0.000 description 3
- 230000006801 homologous recombination Effects 0.000 description 3
- 238000002744 homologous recombination Methods 0.000 description 3
- 210000000987 immune system Anatomy 0.000 description 3
- 210000005229 liver cell Anatomy 0.000 description 3
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 3
- 241000724675 Hepatitis E virus Species 0.000 description 2
- 208000037262 Hepatitis delta Diseases 0.000 description 2
- 241000724709 Hepatitis delta virus Species 0.000 description 2
- 241000709721 Hepatovirus A Species 0.000 description 2
- KFZMGEQAYNKOFK-UHFFFAOYSA-N Isopropanol Chemical compound CC(C)O KFZMGEQAYNKOFK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 235000011449 Rosa Nutrition 0.000 description 2
- 102000003929 Transaminases Human genes 0.000 description 2
- 108090000340 Transaminases Proteins 0.000 description 2
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 2
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 2
- 238000009395 breeding Methods 0.000 description 2
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 description 2
- 101150038500 cas9 gene Proteins 0.000 description 2
- 208000019425 cirrhosis of liver Diseases 0.000 description 2
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 2
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 2
- 238000011049 filling Methods 0.000 description 2
- 210000003958 hematopoietic stem cell Anatomy 0.000 description 2
- 208000002672 hepatitis B Diseases 0.000 description 2
- 210000002865 immune cell Anatomy 0.000 description 2
- 239000012212 insulator Substances 0.000 description 2
- 108020004999 messenger RNA Proteins 0.000 description 2
- 210000003101 oviduct Anatomy 0.000 description 2
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 2
- 229940127126 plasminogen activator Drugs 0.000 description 2
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 description 2
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 2
- 102100027211 Albumin Human genes 0.000 description 1
- 108010088751 Albumins Proteins 0.000 description 1
- 102000009027 Albumins Human genes 0.000 description 1
- USFZMSVCRYTOJT-UHFFFAOYSA-N Ammonium acetate Chemical compound N.CC(O)=O USFZMSVCRYTOJT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000005695 Ammonium acetate Substances 0.000 description 1
- 101100460704 Aspergillus sp. (strain MF297-2) notI gene Proteins 0.000 description 1
- 102100021943 C-C motif chemokine 2 Human genes 0.000 description 1
- 101710155857 C-C motif chemokine 2 Proteins 0.000 description 1
- 238000010453 CRISPR/Cas method Methods 0.000 description 1
- 206010068051 Chimerism Diseases 0.000 description 1
- 108020004635 Complementary DNA Proteins 0.000 description 1
- 206010011409 Cross infection Diseases 0.000 description 1
- 102000053602 DNA Human genes 0.000 description 1
- 238000012270 DNA recombination Methods 0.000 description 1
- 108010008532 Deoxyribonuclease I Proteins 0.000 description 1
- 102000007260 Deoxyribonuclease I Human genes 0.000 description 1
- 206010064571 Gene mutation Diseases 0.000 description 1
- 108010017213 Granulocyte-Macrophage Colony-Stimulating Factor Proteins 0.000 description 1
- 102000004457 Granulocyte-Macrophage Colony-Stimulating Factor Human genes 0.000 description 1
- 241000700721 Hepatitis B virus Species 0.000 description 1
- 208000005176 Hepatitis C Diseases 0.000 description 1
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 1
- 102000004157 Hydrolases Human genes 0.000 description 1
- 108090000604 Hydrolases Proteins 0.000 description 1
- 102000003812 Interleukin-15 Human genes 0.000 description 1
- 108090000172 Interleukin-15 Proteins 0.000 description 1
- 108010002386 Interleukin-3 Proteins 0.000 description 1
- 102000000646 Interleukin-3 Human genes 0.000 description 1
- 108010046938 Macrophage Colony-Stimulating Factor Proteins 0.000 description 1
- 102000007651 Macrophage Colony-Stimulating Factor Human genes 0.000 description 1
- 101710163270 Nuclease Proteins 0.000 description 1
- 241000282579 Pan Species 0.000 description 1
- 208000037581 Persistent Infection Diseases 0.000 description 1
- 102000001938 Plasminogen Activators Human genes 0.000 description 1
- 108010001014 Plasminogen Activators Proteins 0.000 description 1
- 238000012181 QIAquick gel extraction kit Methods 0.000 description 1
- 238000011530 RNeasy Mini Kit Methods 0.000 description 1
- 102000006382 Ribonucleases Human genes 0.000 description 1
- 108010083644 Ribonucleases Proteins 0.000 description 1
- 206010042573 Superovulation Diseases 0.000 description 1
- 230000005867 T cell response Effects 0.000 description 1
- 101710137500 T7 RNA polymerase Proteins 0.000 description 1
- 239000004098 Tetracycline Substances 0.000 description 1
- 208000007536 Thrombosis Diseases 0.000 description 1
- 108091023040 Transcription factor Proteins 0.000 description 1
- 102000003990 Urokinase-type plasminogen activator Human genes 0.000 description 1
- 208000036142 Viral infection Diseases 0.000 description 1
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 1
- 239000011543 agarose gel Substances 0.000 description 1
- 229940043376 ammonium acetate Drugs 0.000 description 1
- 235000019257 ammonium acetate Nutrition 0.000 description 1
- 210000001130 astrocyte Anatomy 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 1
- 230000008827 biological function Effects 0.000 description 1
- 230000033228 biological regulation Effects 0.000 description 1
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 1
- 210000000349 chromosome Anatomy 0.000 description 1
- 208000037976 chronic inflammation Diseases 0.000 description 1
- 230000006020 chronic inflammation Effects 0.000 description 1
- 230000001143 conditioned effect Effects 0.000 description 1
- 230000009260 cross reactivity Effects 0.000 description 1
- 230000001351 cycling effect Effects 0.000 description 1
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 1
- 230000034994 death Effects 0.000 description 1
- 238000004925 denaturation Methods 0.000 description 1
- 230000036425 denaturation Effects 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 1
- 206010012601 diabetes mellitus Diseases 0.000 description 1
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 description 1
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 1
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 1
- 239000012154 double-distilled water Substances 0.000 description 1
- 238000007877 drug screening Methods 0.000 description 1
- 239000003480 eluent Substances 0.000 description 1
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 description 1
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 description 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 1
- 230000006870 function Effects 0.000 description 1
- 230000004927 fusion Effects 0.000 description 1
- 238000010353 genetic engineering Methods 0.000 description 1
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 1
- 208000005252 hepatitis A Diseases 0.000 description 1
- 210000005260 human cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000012606 in vitro cell culture Methods 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 210000001865 kupffer cell Anatomy 0.000 description 1
- 208000018191 liver inflammation Diseases 0.000 description 1
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 description 1
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 1
- 230000005012 migration Effects 0.000 description 1
- 238000013508 migration Methods 0.000 description 1
- 230000035772 mutation Effects 0.000 description 1
- 210000000822 natural killer cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000004940 nucleus Anatomy 0.000 description 1
- 230000003950 pathogenic mechanism Effects 0.000 description 1
- 230000010412 perfusion Effects 0.000 description 1
- 239000007793 ph indicator Substances 0.000 description 1
- 230000005180 public health Effects 0.000 description 1
- 238000005086 pumping Methods 0.000 description 1
- 239000008213 purified water Substances 0.000 description 1
- 108091008146 restriction endonucleases Proteins 0.000 description 1
- 238000005070 sampling Methods 0.000 description 1
- 230000001568 sexual effect Effects 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
- 238000006467 substitution reaction Methods 0.000 description 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 1
- 229960002180 tetracycline Drugs 0.000 description 1
- 229930101283 tetracycline Natural products 0.000 description 1
- 235000019364 tetracycline Nutrition 0.000 description 1
- 150000003522 tetracyclines Chemical class 0.000 description 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 1
- 230000009466 transformation Effects 0.000 description 1
- 230000007704 transition Effects 0.000 description 1
- 238000011144 upstream manufacturing Methods 0.000 description 1
- 210000003934 vacuole Anatomy 0.000 description 1
- 108700026220 vif Genes Proteins 0.000 description 1
- 238000009736 wetting Methods 0.000 description 1
- 239000012224 working solution Substances 0.000 description 1
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明涉及一条能有效将该打靶质粒编辑至ROSA26基因的gRNA,利用该gRNA采用CRISPR/Cas9系统通过显微注射到NOD/SCID小鼠的受精卵中,成功构建肝脏中限制表达uPA的小鼠模型,利用该限制表达uPA造成肝损伤的小鼠模式可进一步构建人源化肝脏小鼠模型,以及使用人源化肝脏小鼠模型为深入研究病毒性肝炎及嗜肝病毒感染的传染病发病机制及筛选抗病毒药物开发奠定基础。
Description
技术领域
本发明属于生物基因工程技术领域,涉及一种基于CRISPR/Cas9构建uPA转基因小鼠的制备方法,还涉及构建人源化小鼠的CRISPR/Cas9系统。
背景技术
病毒性肝炎是危及全球公共卫生的主要问题之一,其传染性强、死亡率高。尤其以甲型肝炎病毒(HAV)、乙型肝炎病毒(HBV)、丙型肝炎病毒(HCV)、丁型肝炎病毒(HDV)和戊型肝炎病毒(HEV)五种嗜肝性病毒引起的病毒性肝炎的流行呈现局部突发性增加之势。目前尽管拥有预防甲型和乙型肝炎病毒的疫苗及治疗乙肝、丙型肝炎病毒的一些方法,但病毒感染尚未得到完全控制。这是由于这些病原体对属主的取向性,严重限制了对它们的研究。
虽然对黑猩猩的研究一直是破译病原体致病机制和验证疫苗效率以及抗病毒药物筛选方面唯一的手段;但很低的慢性感染率和缺乏肝纤维化,成本高、队列规模小等因素和出于道德考虑限制了它们的使用。廉价小动物模型如小鼠是最适合于这些研究的选项。小鼠体内的某些组成部分与人类不尽相同,特别是其免疫系统。携带人肝细胞合并功能良好的人免疫系统小鼠模型是肝炎病毒研究亟需的模型。这种双系统重建的人源化小鼠可通过向免疫缺陷小鼠体内共同注射人CD34+造血干细胞(HSC)和成人肝细胞来实现重建,同时还能提高肝脏嵌合程度。最新的研究表明:共同移植有利于嵌合肝中人免疫系统的重建,包括Kupffer细胞,DC细胞和NK细胞在内的人免疫细胞与人肝细胞紧密共定位;人肝细胞可产生IL-3,IL-15,GM-CSF,M-CSF,MCP-1,CXCL-1和CXCL-10,这些因子对于人免疫细胞的迁移、发育、分化非常重要,并且这些细胞与小鼠之间没有交叉反应。这种具有肝脏中重建的人免疫系统非常适合于病毒性肝炎发病机理的研究。
现在可供选择的人源化小鼠构建模式包括:尿纤溶酶原激活剂(uPA+/+)小鼠模式、富马酰乙酰乙酸水解酶(Fah-/-)小鼠模式、TK-NOG转基因小鼠模式和AFC 8模式。白蛋白-尿纤溶酶原激活物(Alb-uPA)转基因小鼠是最早被用于构建人源化小鼠模式,可用于肝炎病毒感染研究,uPA在肝细胞中的表达可引起肝细胞损伤,从而允许小鼠或人肝细胞在移植后选择性扩增实现生长优势,但由于其肝损伤不受控制,限制了它的广泛应用。AFC 8模式建立的双嵌合小鼠(AFC8-Hu HSC/Hep),该支持HCV在肝脏中的感染,并产生人T细胞对HCV的应答;HCV感染引发肝脏炎症,转化成慢性炎症后,星状细胞的活化诱发人成纤维基因的表达、肝脏纤维化。但该模型操作极为复杂,小鼠死亡率很高,也未见进一步的报道。
课题组前期首次成功构建具有生物学功能的慢病毒质粒;实现了在细胞水平上对Alb-uPA基因表达的有效控制。虽然取得了上述这些研究成果,但其实验数据主要来自于体外细胞培养模型,是否能用于动物模型尚待进一步的验证。我们曾尝试随机地用原核注射的方式将目的基因质粒注入小鼠受精卵中;也通过重新优化慢病毒质粒中目的基因与调控基因的排列顺序,再通过原核注射的方式注入到小鼠受精卵中。小鼠要么不表达,要么随机表达不受控制、更无法传代,都没有取得良好的效果。
本发明在继续深入研究创建一种全新的极大的实现人肝替代和无小鼠免疫成分的嵌合小鼠模型,以期为深入研究病毒性肝炎及嗜肝病毒感染的传染病发病机制及抗病毒药物开发奠定基础。
发明内容
有鉴于此,本发明的目的在于提供一种基于CRISPR/Cas9构建人源化小鼠的gRNA,还提供一种构建人源化小鼠的CRISPR/Cas9系统。
为达到上述目的,本发明提供如下技术方案:
1.一种基于CRISPR/Cas9构建人源化小鼠的gRNA,所述gRNA由5’-3’的序列如SEQID No.7所示。
进一步,用于制备gRNA的引物对序列如SEQ ID No.8和SEQ ID No.9所示。
2.一种构建人源化小鼠的CRISPR/Cas9系统,该系统由cas9 mRNA、gRNA和donorDNA重组质粒组成,所述gRNA由5’-3’的序列如SEQ ID No.7所示,所述donor DNA重组质粒为R26-e(CN362)-1,该重组质粒包含Rosa26位点5’同源臂、PTight启动子、尿激酶型纤溶酶原激活剂基因、第一ployA、白蛋白启动子Alb promoter、四环素反式作用因子、第二ployA和Rosa26位点3’同源臂,具体结构见说明书附图的图5所示。
3.基于CRISPR/Cas9系统构建pTight-uPA-Alb-rtTA转基因小鼠的制备方法,所述制备方法的步骤如下:
a.分别在体外合成cas9 mRNA、gRNA和donor DNA重组质粒;
b.再将cas9 mRNA、gRNA和donor DNA重组质粒共同显微注射到C57BL/6J小鼠受精卵中,得到F0代小鼠;
c.将步骤b得到的F0代小鼠与NOD-SCID小鼠交配获得F1代小鼠即可。
进一步,b步骤还包括将得到F0代小鼠用PCR和测序的方法进行基因型鉴定。
进一步,PCR反应体系50μl:ddH2O 31μl,PrimeStar GXL PCR Buffer 10μl,2.5mMdNTP 4μl,Forward Primer 1μl,Reverse Primer 1μl,PrimeStar GXL DNA Polymerase
2μl,genomic DNA 1μl。
进一步,5’同源臂扩增用Forward Primer如SEQ ID No.10所示,Reverse Primer如SEQ ID No.11所示;3’同源臂扩增用Forward Primer如SEQ ID No.12所示,ReversePrimer如SEQ ID No.13所示。
进一步,显微注射时按cas9 mRNA 5ng/μl、gRNA 2ng/μl和donor DNA重组质粒20ng/μl注射。
4.利用前述基于CRISPR/Cas9系统构建pTight-uPA-Alb-rtTA转基因小鼠的制备方法得到的小鼠模型。
5.利用前述基于CRISPR/Cas9系统构建pTight-uPA-Alb-rtTA转基因小鼠的制备方法得到的小鼠模型在筛选肝损伤药物中的应用。
本发明的有益效果在于:本发明通过PCR和Infusion的技术将原有慢病毒质粒CN362中目的片段pTight-UPA-bgh ploya-ALB Promoter-Tet-on-WPRE-included-bghploya连接到Rosa26-Ins-Ins载体上,构建用于CRISPR/Cas9技术在Rosa26位点knockin小鼠的打靶质粒。该打靶质粒包含3.3kb 5’同源臂;3.3kb 3’同源臂,能实现Rosa26位点染色体两端序列的融合和稳定遗传。利用该打靶质粒,本发明还公开了制备ROSA26基因突变及富含tet-on调控ALB启动增强子限制表达的uPA表达动物的部分方法,可以在ROSA26位点上成功定点敲入uPA基因。本发明还公开了一条能有效将该打靶质粒编辑至ROSA26基因的gRNA,利用该gRNA采用CRISPR/Cas9系统通过显微注射到NOD/SCID小鼠的受精卵中,成功构建肝脏中限制表达uPA的小鼠模型,利用该限制表达uPA造成肝损伤的小鼠模式可进一步构建人源化肝脏小鼠模型,以及使用人源化肝脏小鼠模型为深入研究病毒性肝炎及嗜肝病毒感染的传染病发病机制及筛选抗病毒药物开发奠定基础。
附图说明
为了使本发明的目的、技术方案和有益效果更加清楚,本发明提供如下附图进行说明:
图1为载体CN362质粒图谱。
图2为重组后得到CN362-polyA1质粒图谱。
图3为重组后得到CN362-polyA2质粒图谱。
图4为Rosa26-Ins-Ins质粒图谱。
图5为重组后得到Rosa26-Ins-CN362-Ins质粒图谱。
图6为PCR扩增获得目的片段polyA1和polyA2的1%琼脂糖凝胶电泳图。
图7为CN362-polyA2目的片段PCR电泳图。
图8为NotI酶切CN362质粒结果电泳图。
图9为KpnI酶切CN362-polyA1质粒结果电泳图。
图10为XhoI酶切Rosa26-Ins-Ins质粒结果电泳图。
图11为uPA表达检测结果。
图12为ALT表达检测结果。
图13为ALb表达检测结果。
图14为F0代小鼠鉴定策略示意图。
图15为F1代小鼠5’和3’同源臂PCR鉴定电泳结果。
图16为体外转录gRNA、Cas9电泳结果。
图17为小鼠强力霉素诱导以后,未经治疗的小鼠肝脏HE染色图片。
图18为小鼠强力霉素诱导以后,未经治疗的小鼠肝脏HE染色图片。
图19为移植人肝细胞后小鼠肝脏切片HE染色图。
图20为移植人肝细胞后小鼠肝脏切片HE染色图。
具体实施方式
下面将结合附图,对本发明的优选实施例进行详细的描述。实施例中未注明具体条件的实验方法,通常按照常规条件或按照制造厂商所建议的条件。
实施例1
试剂:限制性内切酶NotI、XhoI、KpnI购自Takara公司;克隆重组试剂In-Fusion®;HD Cloning Kit User Manual购自TakaRa公司;PCR相关试剂购自TakaRa公司;常规化学试剂主要购自Sigma;通用Rosa位点载体Rosa26-Ins-Ins来源于上海南方模式生物科技股份有限公司;CN362质粒在本单位(陆军军医大学第一附属医院感染科)留存,为申请号201210102188.1中JGY-PLV载体。胶回收KitQIAquick胶回收试剂盒购买于上海玉博生物科技有限公司。引物:合成自生工生物工程(上海)股份有限公司。
1、用CN36-NotI-PA-F和CN36-NotI-PA-R引物配对,以含bgh polyA元件的质粒为模板PCR扩增获得目的片段polyA1;用CN36-KpnI-PA-F和CN36-KpnI-PA-R引物配对,以含bgh polyA元件的质粒为模板PCR扩增获得目的片段polyA2,引物表如表1所示。
表1.引物表
引物名称(编号) | 序列 | 序列号 |
CN36-NotI-PA-F(I) | tccaccggtgcggccctagagctcgctgatcagcc | SEQ ID No.1 |
CN36-NotI-PA-R(II) | gaagctagagcggcctccccagcatgcctgctatt | SEQ ID No.2 |
CN36-KpnI-PA-F(III) | ccagtcacacctcagctagagctcgctgatcagcc | SEQ ID No.3 |
CN36-KpnI-PA-R(IV) | tcattggtcttaaagctcgagtccccagcatgcctgctatt | SEQ ID No.4 |
Rosa26-CN362-P-F | ggggctgtccctcgaattacagggacagcagagatccagtttggttagta | SEQ ID No.5 |
Rosa26-CN362-P-R | gaggatggggctcgagtggctaagatctacagctgccttgtaagt | SEQ ID No.6 |
2、重组载体构建方法
DNA重组方法参考In-Fusion®;HD Cloning Kit试剂盒说明书,通过NotI酶切将载体CN362质粒切开产生粘性末端,将通过PCR扩增得到目的片段polyA1,通过In-Fusion®;HD Cloning Kit酶将所得目的片段和酶切后的载体进行重组。慢病毒载体CN362质粒示意图如图1所示。通过In-Fusion®;HD Cloning Kit酶将所得目的片段和酶切后的载体进行重组,重组后得到CN362-polyA1质粒图谱如图2所示。载体重组中所用到的NotI酶切体系(50μl):5μl 10×H Buffer,3.0μl NotI,15μl CN362(约200ng/ul),27μlddH2O。PCR反应体系(20μl):ddH2O 11.4μl;5×PrimeStar GXL PCR Buffer 4μl,2.5mMdNTP2μl,Primer I(10pmol/μl)0.4μl,Primer II(10pmol/μl)0.4μl,PrimeStar GXL DNAPolymerase(TaKaRa,Code No:R050A)0.8μl,ES cell genomic DNA 1μl。PCR反应条件如表2所示。NotI酶切CN362质粒结果如图8所示。
按NotI酶切体系配制好后,在37℃水浴锅中酶切2.5小时后,加入5ul的10×Loading Buffer,进行1%琼脂糖凝胶电泳。
胶块纯化后测浓度,QIAquick胶回收试剂盒的使用。实验前准备:将120ml无水乙醇加入Buffer PE中混匀,做好标记。100mg胶块换算体积约为100ul,加入的溶胶液BufferQG的体积约为胶块体积的3倍,溶解后观察体系颜色,其颜色为pH指示剂,在合适范围内表示体系正常,若pH不符合则调整溶胶液用量。56℃水浴锅中溶胶后摇匀,过套有收集管的回收柱,短离心后弃收集管中液体,将剩余溶胶液体系按照此步骤直至全部过柱,接下来利用700ul的之前加入过无水乙醇的Buffer PE洗涤一次,弃收集管中液体后13000rpm空离心1min,离心后将收集柱放入新的EP管中,在柱子中的滤膜上方按需求量加入洗脱液(水),13000rpm离心1min后弃回收柱,测EP管中液体浓度,胶回收完成。
表2 PCR反应条件:
Step# | Temp(℃) | Time | Note |
1 | 98 | 5min | - |
2 | 98 | 20sec | - |
3 | 50-70 | 20sec | - |
4 | 68 | 30sec | repeat steps 2-4for 35cycles |
5 | 68 | 5min | - |
6 | 12 | - | hold |
In-Fusion®;HD Cloning Kit User Manual中In-Fusion体系(10ul):NotI酶切CN362质粒(20ng/ul)4.0ul,polyA1(200ng/ul)0.4ul,5×In-Fusion 2ul,ddH2O 3.6ul。将上述体系混匀后置入PCR仪中50℃反应15min,产物直接转化。
实施例2
再通过KpnI酶切将构建完成载体CN362-polyA1质粒切开产生粘性末端,通过PCR扩增得到目的片段polyA2,通过In-Fusion®;HD Cloning Kit酶将所得目的片段和酶切后的载体进行重组。重组后得到CN362-polyA2质粒图谱如图3所示。载体重组中所用到的KpnI酶切体系(50μl):10×L Buffer 5μl,KpnI 3.0μl,CN362-polyA1质粒(约200ng/ul)15μl,ddH2O 27μl。PCR反应体系(20μl):ddH2O 11.4μl;5×PrimeStar GXL PCR Buffer 4μl,2.5mMdNTP 2μl,Primer III(10pmol/μl)0.4μl,Primer IV(10pmol/μl)0.4μl,PrimeStarGXL DNA Polymerase(TaKaRa,Code No:R050A)0.8μl,ES cell genomic DNA 1μl。PCR反应条件同实施例1的表2所示。按表中所示配好体系后,在37℃水浴锅中酶切2.5小时后,加入5ul的10×Loading Buffer,进行1%琼脂糖凝胶电泳。胶块纯化后测浓度:方法同上,不再赘述。PCR扩增获得目的片段polyA1和polyA2的1%琼脂糖凝胶电泳图如图6所示,试剂厂商提供的数据参考:0.5ug/lane,8cm length gel,1×TAE,7V/cm,45min,后同,也可以根据实际操作进行调整。CN362-polyA2目的片段PCR电泳结果如图7所示。KpnI酶切CN362-polyA1质粒电泳结果如图9所示。
In-Fusion®;HD Cloning Kit User Manual中In-Fusion体系(10ul):KpnI酶切CN362质粒(25ng/ul)3.2ul,polyA2(200ng/ul)0.4ul,5×In-Fusion 2ul,ddH2O 4.4ul。将上述体系混匀后置入PCR仪中50℃反应15min,产物直接转化。
实施例3
通过XhoI酶切将载体Rosa26-Ins-Ins质粒切开产生粘性末端,用Rosa26-CN362-P-F引物和Rosa26-CN362-P-R引物配对,通过PCR以构建完成的质粒CN362-polyA2为模板扩增得到目的片段CN362-polyA2,再通过In-Fusion®;HD Cloning Kit酶将所得目的片段和酶切后的载体进行重组。Rosa26-Ins-Ins质粒图谱如图4所示。载体重组中所用到的XhoI酶切体系(50μl):5μl 10×H Buffer,3.0μl XhoI,15μl Rosa26-Ins-Ins(约200ng/ul),27μl ddH2O。PCR反应体系(20μl):ddH2O 11.4μl;5×PrimeStar GXL PCR Buffer 4μl,2.5mMdNTP 2μl,Rosa26-CN362-P-F(10pmol/μl)0.4μl,Rosa26-CN362-P-R(10pmol/μl)0.4μl,PrimeStar GXL DNA Polymerase(TaKaRa,Code No:R050A)0.8μl,ES cell genomicDNA 1μl。PCR反应条件同实施例1的表2所示。重组后得到Rosa26-Ins-CN362-Ins(R26-e(CN362)-1)质粒图谱如图5所示。XhoI酶切Rosa26-Ins-Ins质粒结果如图10所示。质粒序列如SEQ ID No.15所示,其中Location/Qualifiers:90..3389/note="5arm";3390..3410/note="nRosa-test-r2";3417..4620/note="Ins";4625..4684/note="60";4685..5008/vntifkey="21"/label=pTight;5021..6322/vntifkey="21"/label=UPA;6473..6704/note="bghploya";6712..9054/vntifkey="21";/label=ALB\Promoter9058..9804/vntifkey="21"/label=Tet-on;9973..10801/vntifkey="21"/label=WPRE-included;11041..11041/note="KpnI-R";11035..11040/note="XhoI";11065..11084/note="1";10803..11034/note="bghploya";11089..12292/note="Ins";12299..15598/note="3arm";14086..15123/note="exon2";20359..21219/note="Amp"。
按表中所示配好体系后,在37℃水浴锅中酶切2.5小时后,加入5ul的10×LoadingBuffer,进行1%琼脂糖凝胶电泳。胶块纯化后测浓度:方法同上,不再赘述。
In-Fusion®;HD Cloning Kit User Manual中In-Fusion体系(10ul):XhoI酶切Rosa26-Ins-Ins质粒(25ng/ul)3.2ul,CN362-polyA2(100ng/ul)0.8ul,5×In-Fusion2ul,ddH2O 4ul。将上述体系混匀后置入PCR仪中50℃反应15min,产物直接转化。
实施例4
质粒纯化:测序正确的克隆接种400ml LB,使用NucleoBond Xtra Midi Plus EFkit抽提质粒,溶于Nuclease-Free Water中,-30℃保存,NucleoBond Xtra Midi Plus EFkit大抽质粒步骤如下:
实验前准备:将棕色瓶的Rnase加入Buffer RES EF,做好标记4℃存放。
(1)400ml的菌液分装8管装入50ml的离心管中,4℃下4800rpm离心10min,弃干净上清液;(2)每管加入4ml配置好的RES EF溶液,用1ml移液枪吹打至无块状均匀体系,每4管溶液合并成一管,最后共两管,每管16ml;(3)每管加入16ml的Buffer Lys EF(蓝色),及时的盖上盖子后缓慢颠倒摇晃约4至5次,静置,计时,从倒入Lys EF溶液至加入溶液NEU EF中间不得超过5分钟;(4)反应接近5分钟时,小心打开盖子,每管加入16ml的NEU EF溶液,缓慢颠倒直至体系全部变成白色絮状,放置冰上15分钟,同时将试剂盒中的XtraMidi Filter放入/>Xtra Midi Columns,放入架子,柱子中加入适量(加满)EQUEF溶液,润湿中间的棉芯;(5)待EQU滴净(棉芯未干),将冰上的溶液取出,摇匀,倒入柱子,隔段时间上样一次,不可使棉芯变干;(6)待滴干后,向柱子加入5ml的FIL EF溶液,加液时均匀的滴在棉芯向上露出的位置,不可直接加入棉芯中间,滴干后弃棉芯;(7)柱子中加入35ml的ENDO EF溶液,滴干后加入15ml的WASH EF溶液;(8)滴干后每管中加入5ml的ELU EF洗脱,滴干后用枪吹打溶液,吹打时不可使溶液滴在壁上,反复吹打10次左右,每管平均分装成6管,约830ul/EP管;(9)每个EP管中加入0.7倍体积的异丙醇,约583ul/管,摇匀后12800rpm 4℃离心15分钟;(10)离心后会看到EP管底部有白色花瓣状物质即为质粒,小心(质粒略滑)弃净上清后,每管加入1ml的75%乙醇洗涤,常温13000rpm离心5min;(11)离心后弃净上清,盖好盖子后短离心20秒,平稳小心的取出,不可颠倒剧烈碰撞,打开盖子后用枪尽量吸去管底的残液,注意不可将质粒吸入枪头;(12)室温晾2min,每管加入20ul的Nuclease-free water,放入56℃烘箱溶解10分钟后取出,利用滤芯枪头合并为一管,吸取2ul定量,大抽质粒完成。
实施例5
在前期研究的基础上,多次用不同的方法将CN362(JGY-PLV)慢病毒载体构建人源化小鼠模式,以用于肝炎病毒感染研究,但都未取得成功效果。比如尝试随机地用原核注射的方式将目的基因质粒注入小鼠受精卵中;也通过重新优化慢病毒质粒中目的基因与调控基因的排列顺序,再通过原核注射的方式注入到小鼠受精卵中。小鼠要么不表达,要么随机表达不受控制、更无法传代,都没有取得良好的效果。因篇幅有限,在此不表,只记载与本发明相关的技术内容。
最终本发明采用CRISPR/Cas9技术,通过同源重组的方式,将CN362定点插入到Rosa26位点内,结构为Insulator-pTight-UPA-polyA-Alb promoter-M2rtTA-polyA-Insulator。如前所述先通过In-Fusion cloning的方法构建打靶载体,该载体包含3.3kb5’同源臂、pTight-UPA-polyA-Alb promoter-M2rtTA-polyA和3.3kb 3’同源臂。最后成功的将CN362慢病毒载体先构建小鼠肝损伤模型,再进一步构建人源化小鼠模式,以用于肝炎病毒感染研究。
·Knockin位点:Gt(ROSA)26Sor(ENSMUSG00000086429)
·基因在MGI网址的链接:http://www.informatics.jax.org/marker/MGI:104735
·Knocki方式:将CN362定点插入到Rosa26位点内,结构为Insulator-pTight-UPA-polyA1-Alb promoter-M2rtTA-polyA2-Insulator。
1.设计针对目的位点基因组的guideRNA(gRNA)靶序列,并根据序列将其进行体外转录获得针对该基因的gRNA;ggggacacactaagggagct(SEQ ID No.7,Sequence 5’-3’)
(1)gRNA的体外合成:gRNA支架被克隆到pmd19-T载体(TakaRa;cat#D102A)中(抗Amp)。使用下面的引物对用于特异性gRNA合成的双链DNA进行PCR扩增(Transgen;cat#AS211)。具体gRNA制备流程:
A.用于制备gRNA的引物序列如下:
Primer01:5’-gctaatacgactcactatagggggacacactaagggagctgttttagagctagaaatagcaag-3’(SEQ ID No.8)
Primer02:5’-aaaagcaccgactcggtgcc-3’(SEQ ID No.9)
B.Primer01和Primer02,13000rpm,离心1min。完成后Primer01管中加入75μLddH2O,Primer02管中加入256μL ddH2O,直接于常温静置备用。
按如下体系于PCR管中配制混合体系(150μL):
PrimeSTAR MAX 75μL,Primer01 3μL,Primer02 3μL,vector 3μL,ddH2O 66μL。
Max DNA Polymerase货号:R045A
C.150μl体系分装六管,每管25μL,于PCR仪中进行PCR反应,程序如下:
98℃,2min变性后,98℃10s,55℃15s,72℃5s,34个循环,最后72℃20s,结束。
D.产物进行琼脂糖凝胶电泳,1%琼脂糖凝胶,200V跑10min
E.割胶,使用QIAquick Gel Extraction Kit(QIAGEN Cat:No.28706)回收。
凝胶提取后,用T7 RNA聚合酶(NEB;cat#M0251S)合成gRNA。然后用DNase I(NEB;cat#M0303S)消化gRNA 30分钟,并用TRIzol(Sigma;T9424)纯化至最终体积为5~10μl。
F.使用T7Transcription Kit(Thermo,货号:AM1334)转录。
G.使用MEGAclearTM Transcription Clean-Up Kit(Thermo,货号:AM1908)纯化。保存于-80℃。
(2)Cas9 mRNA制备流程:
将人源化cas9 cDNAs全长克隆到pXT7载体(抗Amp)中,用XbaI(NEB;cat#R0145T)线性化。使用mMESSAGE mMACHINE mRNA转录合成试剂盒(Ambion;cat#AM1344)合成帽状的Cas9 mRNA。然后使用RNeasy迷你试剂盒(QIAGEN;cat#74106)纯化Cas9mRNA。具体Cas9mRNA制备流程:
A.将质粒pX-T7(Cas9)10μg,使用XbaI线性化。总体系100μl,酶加5μl,37℃反应2h。加10μl醋酸铵,混匀,加200μl无水乙醇,混匀,13000rpm离心5min;弃上清,13000rpm离心1min,吸干残液,加20μl无核酸酶水(DEPC)。体外mRNA转录(Ambion mMESSAGE mMACHINE试剂盒,包括10μL 2×NTP/安瓶,2μL 10×反应缓冲液,1μg线性模板DNA;2μl酶溶于20μl无核酸酶纯净水中。)
B.RNA纯化(QIAGEN RNeasy小试剂盒):RPE缓冲液中加入4体积的乙醇(96–100%)作为工作溶液。
a)用不含核糖核酸酶的水调节样品至100μl。加入350μl缓冲液RLT,混匀。
b)向稀释的RNA中添加250μl乙醇(96–100%),并通过移液管充分混合,不要离心,立即将样品(700μl)转移至置于2ml收集管(提供)中的RNeasy微型旋转柱,盖上盖子,在≥8000g的条件下,离心15s。丢弃通流管。
c)向RNeasy旋转柱中加入500μl缓冲RPE。盖上盖子。在≥8000g的条件下,离心15s,以清洗膜。丢弃通流管。
d)向RNeasy旋转柱中加入500μl缓冲RPE。盖上盖子。离心≥8000g 2分钟清洗膜。
e)可选:将RNeasy旋转柱放入新的2ml收集管(随附)中。盖上盖子,全速离心1分钟。
f)将RNeasy旋转柱放入新的1.5ml收集管(提供)中。直接向旋转柱膜中加入30–50μl不含RNase的水。盖上盖子,以≥8000×g离心1分钟以洗脱RNA。
g)如果预期的RNA产量大于30μg,则使用另外30–50μl的不含RNase的水重复步骤f;或者,使用步骤f中的洗脱液(如果需要高RNA浓度),重复使用步骤f中的收集管。保存于-80℃。体外转录gRNA、Cas9电泳结果如图16所示。
2.构建用于目的片段重组的donor DNA重组质粒R26-e(CN362)-1;(具体操作参见实施例1-4)
3.将体外转录的gRNA及构建的donor DNA重组质粒、cas9mRNA进行受精卵注射(C57BL/6J小鼠受精卵),获得F0代C57BL/6J小鼠;
受精卵显微注射:选择C57BL/6J雄性和超排卵C57BL/6J雌性(上海模式生物中心有限公司)作为原核胚胎的供体。选择6~8周大性成熟的雌性小鼠,间隔48h分别注射10IU的PMSG和hCG,并与雄性小鼠合笼,见栓小鼠采用输卵管灌流收集原核胚胎。随后采用原核注射方式将供体载体(donor vector,20ng/μl)、gRNA(2ng/μl)和cas9 mRNA(5ng/μl)的混合物注射到NOD/SCID小鼠的受精卵中。将受精卵注入假妊娠ICR雌性小鼠输卵管,获得活仔。所有小鼠发育正常,身体健康。小鼠被关在单独通风的笼子里,在一个特定的无病原体设施中,光/暗循环12小时,可以随意获得食物和水。所有动物实验均按照上海模式生物中心动物护理与使用委员会的指导原则进行。
将Cas9 mRNA、gRNA和donor vector显微注射到NOD/SCID小鼠的受精卵中,获得F0代小鼠。经长片段PCR鉴定,共获得2只正确同源重组的F0代小鼠;F0代小鼠与NOD/SCID小鼠交配获得3只阳性F1代小鼠。测序获得敲入位点上下游序列信息结果如SEQ ID No.14所示。
4.通过PCR及测序的方法对获得的F0代小鼠进行基因型鉴定;
1)同源重组阳性小鼠PCR鉴定方案,F0代小鼠鉴定策略示意图如图14所示:
5’同源臂重组阳性基因组应扩增出3.4kb和6.8kb片段,阴性基因组应扩增出6.8kb片段;3’同源臂重组阳性基因组应扩增出3.9kb片段,阴性基因组无产物。
2)5’同源臂重组阳性F0代小鼠PCR鉴定方法:
PCR反应体系(50μl):ddH2O 31μl,PrimeStar GXL PCR Buffer 10μl,2.5mM dNTP
4μl,Forward Primer(20pmol/μl)1μl,Reverse Primer(20pmol/μl)1μl,PrimeStar GXL DNA Polymerase 2μl,genomic DNA 1μl。
表3 PCR引物信息:
表4 PCR反应条件:
Step# | Temp℃ | Time | Note |
1 | 98 | 5min | - |
2 | 98 | 10sec | - |
3 | 68 | 15sec | - |
4 | 68 | 5min | repeat steps 2-4for 34cycles |
5 | 68 | 5min | - |
6 | 12 | - | hold |
5.F0代小鼠与NOD-scid小鼠繁殖,获得阳性F1代杂合子小鼠;
1)F1代小鼠获得及基因型鉴定
NOD/SCID小鼠是构建R26-e(CN362)IL2rg KO小鼠的中间过渡鼠(基础小鼠),该鼠具有在非肥胖型糖尿病小鼠(NOD)背景品系的基础上引入Prkdc-敲出SCID的特点,然后再与NSG小鼠杂交,获得IL2rg基因的突变,以为人源细胞移植及双人化嵌合小鼠构建奠定基础。F0代阳性小鼠与野生型NOD-SCID小鼠交配,繁育获得F1代小鼠。
2)F1代小鼠5’和3’同源臂PCR鉴定
PCR鉴定策略及方法同F0代小鼠鉴定部分,F1代小鼠5’和3’同源臂PCR鉴定电泳结果如图15所示,其中泳道数字:F1代小鼠编号;M:1kb DNA ladder。PCR鉴定阳性小鼠为:5,9,12号;经测序确认均为阳性。(M:1kb DNA ladder,thermo,SM0311)
实施例6
阳性F1代小鼠培育6-10代后小鼠相关检测结果:
1.小鼠强力霉素诱导uPA表达检测:
uPA表达检测结果如图11所示,其中左图为标准曲线ng/L/OD值,右图为样本血清uPA表达值;血清稀释了20倍,uPA均值:118.58±16.49ng/ml(M±SD)。
2.小鼠强力霉素诱导后,转氨酶表达:
转氨酶表达检测结果如图12所示,其中左图为标准曲线IU/L/OD值,右图为样本血清ALT表达值;血清稀释了20倍,ALT均值:26.94±1.49(IU/ml)(M±SD)。
3.小鼠双人原细胞移植后,Alb检测结果如图13所示,其中左图为标准曲线ng/ml/OD值,右图为样本血清Alb表达值;血清稀释了20倍,均值:218.19±121.067ng/ml(M±SD)ng/ml,最高能到480ng/ml。
图17和图18是小鼠强力霉素诱导以后,未经治疗的小鼠肝脏HE染色图片。如图所示,小鼠肝组织急性肝衰竭,局部坏死、组织溶解、脱落;肝细胞核固化,细胞空泡变。充分说明本发明成功构建人源化小鼠模型。
4、小鼠肝脏切片HE染色:
如图19所示:移植人肝细胞后小鼠肝脏切片HE染色,从片中可以看出肝脏组织中,存在不同来源的两种细胞,这些细胞在数量、大小、分布和HE染色都完全不同。A图×20;B、C图×50;D图×100。
如图20所示,人肝细胞移植后,对损伤小鼠肝组织进行了修复,图A、B为HE染色中明现可见异质型人肝细胞充斥在小鼠肝组织,在组织结构上修复了肝组织。图A、B×100。图C、D为抗人CK18单抗染色,肝细胞表面有明现的橙黄色着色,为阳性染色。图C×50;图D×100。
利用该限制表达uPA造成肝损伤的小鼠模式可进一步构建人源化肝脏小鼠模型,以及使用人源化肝脏小鼠模型深入进行后续研究病毒性肝炎及嗜肝病毒感染的传染病发病机制,为开发抗病毒药物提供可靠的动物模型。
最后说明的是,以上优选实施例仅用以说明本发明的技术方案而非限制,尽管通过上述优选实施例已经对本发明进行了详细的描述,但本领域技术人员应当理解,可以在形式上和细节上对其作出各种各样的改变,而不偏离本发明权利要求书所限定的范围。
序列表
<110> 中国人民解放军陆军军医大学第一附属医院
<120> 基于CRISPR/Cas9构建uPA转基因小鼠的制备方法
<160> 15
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 35
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
tccaccggtg cggccctaga gctcgctgat cagcc 35
<210> 2
<211> 35
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
gaagctagag cggcctcccc agcatgcctg ctatt 35
<210> 3
<211> 35
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
ccagtcacac ctcagctaga gctcgctgat cagcc 35
<210> 4
<211> 41
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
tcattggtct taaagctcga gtccccagca tgcctgctat t 41
<210> 5
<211> 50
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
ggggctgtcc ctcgaattac agggacagca gagatccagt ttggttagta 50
<210> 6
<211> 45
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
gaggatgggg ctcgagtggc taagatctac agctgccttg taagt 45
<210> 7
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 7
ggggacacac taagggagct 20
<210> 8
<211> 63
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 8
gctaatacga ctcactatag ggggacacac taagggagct gttttagagc tagaaatagc 60
aag 63
<210> 9
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 9
aaaagcaccg actcggtgcc 20
<210> 10
<211> 17
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 10
gccgggcctc gtcgtct 17
<210> 11
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 11
tttttggggg tgatggtggt c 21
<210> 12
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 12
acccaggccg ttctatgatt c 21
<210> 13
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 13
agttcttcct gcctgccttc t 21
<210> 14
<211> 344
<212> DNA/RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 14
actgtgaata taaaaatgat agcttttcct gagggutggt ctcactatgt atctctgcct 60
gatctgcaac aagatatgta gactaaagtt ctgcctgctt ttgtctcctg aatactaagg 120
ttaaaatgta gtaatacttt tggaacttgg utgtgutatt cttttatagg ggacacacta 180
agggagcttg ggtgatagtt ggtaaaatgt gtttcaagtg atgaaaactt gaattattat 240
caccgcaacc tactttttaa aaaaaaaagc gutgcctgtt agagcatgct taagggatcc 300
ctaggacttg ctgagcacac aagagtagtt acttgggutg ctcc 344
<210> 15
<211> 21426
<212> DNA/RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 15
gaattctcat gtttgacagc ttatcatcga taagctgcgg ccgcaaaggc cgcggtcgac 60
aagctgggga cacactaagg gagcttgggg ccagcggggg cggcgaggag gcgctcccag 120
gttccggccc tcccctcggc cccgcgccgc agagtctggc cgcgcgcccc tgcgcaacgt 180
ggcaggaagc gcgcgctggg ggcggggacg ggcagtaggg ctgagcggct gcggggcggg 240
tgcaagcacg tttccgactt gagttgcctc aagaggggcg tgctgagcca gacctccatc 300
gcgcactccg gggagtggag ggaaggagcg agggctcagt tgggctgttt tggaggcagg 360
aagcacttgc tctcccaaag tcgctctgag ttgttatcag taagggagct gcagtggagt 420
aggcggggag aaggccgcac ccttctccgg aggggggagg ggagtgttgc aatacctttc 480
tgggagttct ctgctgcctc ctggcttctg aggaccgccc tgggcctggg agaatccctt 540
ccccctcttc cctcgtgatc tgcaactcca gtctttctag aagatgggcg ggagtcttct 600
gggcaggctt aaaggctaac ctggtgtgtg ggcgttgtcc tgcaggggaa ttgaacaggt 660
gtaaaattgg agggacaaga cttcccacag attttcggtt ttgtcgggaa gttttttaat 720
aggggcaaat aaggaaaatg ggaggatagg tagtcatctg gggttttatg cagcaaaact 780
acaggttatt attgcttgtg atccgcctcg gagtattttc catcgaggta gattaaagac 840
atgctcaccc gagttttata ctctcctgct tgagatcctt actacagtat gaaattacag 900
tgtcgcgagt tagactatgt aagcagaatt ttaatcattt ttaaagagcc cagtacttca 960
tatccatttc tcccgctcct tctgcagcct tatcaaaagg tattttagaa cactcatttt 1020
agccccattt tcatttatta tactggctta tccaacccct agacagagca ttggcatttt 1080
ccctttcctg atcttagaag tctgatgact catgaaacca gacagattag ttacatacac 1140
cacaaatcga ggctgtagct ggggcctcaa cactgcagtt cttttataac tccttagtac 1200
actttttgtt gatcctttgc cttgatcctt aattttcagt gtctatcacc tctcccgtca 1260
ggtggtgttc cacatttggg cctattctca gtccagggag ttttacaaca atagatgtat 1320
tgagaatcca acctaaagct taactttcca ctcccatgaa tgcctctctc ctttttctcc 1380
atttataaac tgagctatta accattaatg gtttccaggt ggatgtctcc tcccccaata 1440
ttacctgatg tatcttacat attgccaggc tgatatttta agacattaaa aggtatattt 1500
cattattgag ccacatggta ttgattactg cttactaaaa ttttgtcatt gtacacatct 1560
gtaaaaggtg gttccttttg gaatgcaaag ttcaggtgtt tgttgtcttt cctgacctaa 1620
ggtcttgtga gcttgtattt tttctattta agcagtgctt tctcttggac tggcttgact 1680
catggcattc tacacgttat tgctggtcta aatgtgattt tgccaagctt cttcaggacc 1740
tataattttg cttgacttgt agccaaacac aagtaaaatg attaagcaac aaatgtattt 1800
gtgaagcttg gtttttaggt tgttgtgttg tgtgtgcttg tgctctataa taatactatc 1860
caggggctgg agaggtggct cggagttcaa gagcacagac tgctcttcca gaagtcctga 1920
gttcaattcc cagcaaccac atggtggctc acaaccatct gtaatgggat ctgatgccct 1980
cttctggtgt gtctgaagac cacaagtgta ttcacattaa ataaataaat cctccttctt 2040
cttctttttt ttttttttaa agagaatact gtctccagta gaatttactg aagtaatgaa 2100
atactttgtg tttgttccaa tatggtagcc aataatcaaa ttactcttta agcactggaa 2160
atgttaccaa ggaactaatt tttatttgaa gtgtaactgt ggacagagga gccataactg 2220
cagacttgtg ggatacagaa gaccaatgca gactttaatg tcttttctct tacactaagc 2280
aataaagaaa taaaaattga acttctagta tcctatttgt ttaaactgct agctttactt 2340
aacttttgtg cttcatctat acaaagctga aagctaagtc tgcagccatt actaaacatg 2400
aaagcaagta atgataattt tggatttcaa aaatgtaggg ccagagttta gccagccagt 2460
ggtggtgctt gcctttatgc ctttaatccc agcactctgg aggcagagac aggcagatct 2520
ctgagtttga gcccagcctg gtctacacat caagttctat ctaggatagc caggaataca 2580
cacagaaacc ctgttgggga ggggggctct gagatttcat aaaattataa ttgaagcatt 2640
ccctaatgag ccactatgga tgtggctaaa tccgtctacc tttctgatga gatttgggta 2700
ttattttttc tgtctctgct gttggttggg tcttttgaca ctgtgggctt tctttaaagc 2760
ctccttcctg ccatgtggtc tcttgtttgc tactaacttc ccatggctta aatggcatgg 2820
ctttttgcct tctaagggca gctgctgaga tttgcagcct gatttccagg gtggggttgg 2880
gaaatctttc aaacactaaa attgtccttt aatttttttt ttaaaaaatg ggttatataa 2940
taaacctcat aaaatagtta tgaggagtga ggtggactaa tattaaatga gtccctcccc 3000
tataaaagag ctattaaggc tttttgtctt atacttaact ttttttttaa atgtggtatc 3060
tttagaacca agggtcttag agttttagta tacagaaact gttgcatcgc ttaatcagat 3120
tttctagttt caaatccaga gaatccaaat tcttcacagc caaagtcaaa ttaagaattt 3180
ctgactttta atgttaattt gcttactgtg aatataaaaa tgatagcttt tcctgaggca 3240
gggtctcact atgtatctct gcctgatctg caacaagata tgtagactaa agttctgcct 3300
gcttttgtct cctgaatact aaggttaaaa tgtagtaata cttttggaac ttgcaggtca 3360
gattctttta taggggacac actaagggag accaccatca cccccaaaaa ctcgacgccc 3420
catcctcact gactccgtcc tggagttgga tgagagataa tggccttacg ttgtgccagg 3480
ggagggtcgg gctggattta gcaagattta ccttctccaa agagcggtgc tgcagtggca 3540
cagctgccca cggaggtggg ggggtcaccg tccctggagg tgatgaagaa ctgtggggat 3600
gtggcactga gggacatggc cagtgggcac ggtgggtggg ttggggttgg tcttggggat 3660
cttggagggc ttttccagcc ttcatgattt gacgattgta tgaacatcta catggcaatt 3720
ctccagctgc ctgtcccagt cctactgacc cagctgtatc tctccaggca agctcttcca 3780
ccccttctgc ttgcatccag acaccatcaa acatgcaggc tcagacacag ggaccagcag 3840
tgtctgtggc ctttttgtgc tcctctccat gctgggtttt aacttgctct ttgtccttct 3900
atcctatctt cttatcctta aggctgttct gaacgctgtg acttggagag tgtcccagag 3960
ccctcaacac ctgcatgtcc cacgtccatg ctgtcctgca cttccttatc cccaagatct 4020
gcctctccgt gatgcactga attggcaaac atgtgtcacc ccagaccaac aatgtcacag 4080
caaactcccc cttgatagga caagggggaa tggctttaca ctgagacagg ggaggtttgg 4140
gttggatatg aggaggcagt ttttccccca gagggtggtg acgcactgaa caggttgccc 4200
aaggaggctg tggatgcccc atccctgcag gcattcaagg ccaggctgga tgtggctctg 4260
ggcagcctgg gctgctggtt gatgaccctg cacatagcag ggggttggat ctggatgagc 4320
actgtgctcc tttgcaaccc aggccgttct atgattctgt cattctaaat ctctctttca 4380
gcctaaagct ttttccccgt atccccccag gtgtctgcag gctcaaagag cagcgagaag 4440
cgttcagagg aaagcgatcc cgtgccacct tccccgtgcc cgggctgtcc ccgcacgctg 4500
ccggctcggg gatgcggggg gagcgccgga ccggagcgga gccccgggcg gctcgctgct 4560
gccccctagc gggggaggga cgtaattaca tccctggggg ctttgggggg gggctgtccc 4620
tcgaattaca gggacagcag agatccagtt tggttagtac cgggcccatc cgaattcgga 4680
atcctcgagt ttactcccta tcagtgatag agaacgtatg tcgagtttac tccctatcag 4740
tgatagagaa cgatgtcgag tttactccct atcagtgata gagaacgtat gtcgagttta 4800
ctccctatca gtgatagaga acgtatgtcg agtttactcc ctatcagtga tagagaacgt 4860
atgtcgagtt tatccctatc agtgatagag aacgtatgtc gagtttactc cctatcagtg 4920
atagagaacg tatgtcgagg taggcgtgta cggtgggagg cctatataag cagagctcgt 4980
ttagtgaacc gtcagatcgc ctggagaagg atccgccacc atgaaagtct ggctggcgag 5040
cctgttcctc tgcgccttgg tggtgaaaaa ctctgaaggt ggcagtgtac ttggagctcc 5100
tgatgaatca aactgtggct gtcagaacgg aggtgtatgc gtgtcctaca agtacttctc 5160
cagaattcgc cgatgcagct gcccaaggaa attccagggg gagcactgtg agatagatgc 5220
atcaaaaacc tgctatcatg gaaatggtga ctcttaccga ggaaaggcca acactgatac 5280
caaaggtcgg ccctgcctgg cctggaatgc gcctgctgtc cttcagaaac cctacaatgc 5340
ccacagacct gatgctatta gcctaggcct ggggaaacac aattactgca ggaaccctga 5400
caaccagaag cgaccctggt gctatgtgca gattggccta aggcagtttg tccaagaatg 5460
catggtgcat gactgctctc ttagcaaaaa gccttcttcg tctgtagacc aacaaggctt 5520
ccagtgtggc cagaaggctc taaggccccg ctttaagatt gttgggggag aattcactga 5580
ggtggagaac cagccctggt tcgcagccat ctaccagaag aacaagggag gaagtcctcc 5640
ctcctttaaa tgtggtggga gtctcatcag tccttgctgg gtggccagtg ccgcacactg 5700
cttcattcaa ctcccaaaga aggaaaacta cgttgtctac ctgggtcagt cgaaggagag 5760
ctcctataat cctggagaga tgaagtttga ggtggagcag ctcatcttgc acgaatacta 5820
cagggaagac agcctggcct accataatga tattgccttg ctgaagatac gtaccagcac 5880
gggccaatgt gcacagccat ccaggtccat acagaccatc tgcctgcccc caaggtttac 5940
tgatgctccg tttggttcag actgtgagat cactggcttt ggaaaagagt ctgaaagtga 6000
ctatctctat ccaaagaacc tgaaaatgtc cgtcgtaaag cttgtttctc atgaacagtg 6060
tatgcagccc cactactatg gctctgaaat taattataaa atgctgtgtg ctgcggaccc 6120
agagtggaaa acagattcct gcaagggcga ttctggagga ccgcttatct gtaacatcga 6180
aggccgccca actctgagtg ggattgtgag ctggggccga ggatgtgcag agaaaaacaa 6240
gcccggtgtc tacacgaggg tctcacactt cctggactgg attcaatccc acattggaga 6300
agagaaaggt ctggccttct gatctagatc gcgaacgcgt gaattctacc gggtagggga 6360
ggcgcttttc ccaaggcagt ctggagcatg cgctttagca gccccgctgg gcacttggcg 6420
ctacacaagt ggcctctggc ctcgcacaca ttccacatcc accggtgcgg ccctagagct 6480
cgctgatcag cctcgactgt gccttctagt tgccagccat ctgttgtttg cccctccccc 6540
gtgccttcct tgaccctgga aggtgccact cccactgtcc tttcctaata aaatgaggaa 6600
attgcatcgc attgtctgag taggtgtcat tctattctgg ggggtggggt ggggcaggac 6660
agcaaggggg aggattggga agacaatagc aggcatgctg gggaggccgc tctagcttcc 6720
ttagcatgac gttccacttt tttctaaggt ggagcttact tctttgattt gatcttttgt 6780
gaaacttttg gaaattaccc atcttcctaa gcttctgctt ctctcagttt tctgcttgct 6840
cattccactt ttccagctga ccctgccccc taccaacatt gctccacaag cacaaattca 6900
tccagagaaa ataaattcta agttttatag ttgtttggat cgcataggta gctaaagagg 6960
tggcaaccca cacatcctta ggcatgagct tgattttttt tgatttagaa ccttcccctc 7020
tctgttccta gactacacta cacattctgc aagcatagca cagagcaatg ttctacttta 7080
attactttca ttttcttgta tcctcacagc ctagaaaata acctgcgtta cagcatccac 7140
tcagtatccc ttgagcatga ggtgacacta cttaacatag ggacgagatg gtactttgtg 7200
tctcctgctc tgtcagcagg gcactgtact tgctgatacc agggaatgtt tgttcttaaa 7260
taccatcatt ccggacgtgt ttgccttggc cagttttcca tgtacatgca gaaagaagtt 7320
tggactgatc aatacagtcc tctgccttta aagcaatagg aaaaggccaa cttgtctacg 7380
tttagtatgt ggctgtagaa agggtataga tataaaaatt aaaactaatg aaatggcagt 7440
cttacacatt tttggcagct tatttaaagt cttggtgtta agtacgctgg agctgtcaca 7500
gctaccaatc aggcatgtct gggaatgagt acacggggac cataagttac tgacattcgt 7560
ttcccattcc atttgaatac acacttttgt catggtattg cttgctgaaa ttgttttgca 7620
aaaaaaaccc cttcaaattc atatatatta ttttaataaa tgaattttaa tttatctcaa 7680
tgttataaaa aagtcaattt taataattag gtacttatat acccaataat atctaacaat 7740
catttttaaa catttgttta ttgagcttat tatggatgaa tctatctcta tatactctat 7800
atactctaaa aaagaagaaa gaccatagac aatcatctat ttgatatgtg taaagtttac 7860
atgtgagtag acatcagatg ctccatttct cactgtaata ccatttatag ttacttgcaa 7920
aactaactgg aattctagga cttaaatatt ttaagtttta gctgggtgac tggttggaaa 7980
attttaggta agtactgaaa ccaagagatt ataaaacaat aaattctaaa gttttagaag 8040
tgatcataat caaatattac cctctaatga aaatattcca aagttgagct acagaaattt 8100
caacataaga taattttagc tgtaacaatg taatttgttg tctattttct tttgagatac 8160
agttttttct gtctagcttt ggctgtcctg gaccttgctc tgtagaccag gttggtcttg 8220
aactcagaga tctgcttgcc tctgccttgc aagtgctagg attaaaagca tgtgccacca 8280
ctgcctggct acaatctatg ttttataaga gattataaag ctctggcttt gtgacattaa 8340
tctttcagat aataagtctt ttggattgtg tctggagaac atacagactg tgagcagatg 8400
ttcagaggta tatttgctta ggggtgaatt caatctgcag caataattat gagcagaatt 8460
actgacactt ccattttata cattctactt gctgatctat gaaacataga taagcatgca 8520
ggcattcatc atagttttct ttatctggaa aaacattaaa tatgaaagaa gcactttatt 8580
aatacagttt agatgtgttt tgccatcttt taatttctta agaaatacta agctgatgca 8640
gagtgaagag tgtgtgaaaa gcagtggtgc agcttggctt gaactcgttc tccagcttgg 8700
gatcgacctg caggcatgct tccatgccaa ggcccacact gaaatgctca aatgggagac 8760
aaagagatta agctcttatg taaaatttgc tgttttacat aactttaatg aatggacaaa 8820
gtcttgtgca tgggggtggg ggtggggtta gaggggaaca gctccagatg gcaaacatac 8880
gcaagggatt tagtcaaaca actttttggc aaagatggta tgattttgta atggggtagg 8940
aaccaatgaa atgcgaggta agtatggtta atgatctaca gttattggtt aaagaagtat 9000
attagagcga gtctttctgc acacagatca cctttcctat caaccccggg atccaccatg 9060
tctagactgg acaagagcaa agtcataaac ggcgctctgg aattactcaa tggagtcggt 9120
atcgaaggcc tgacgacaag gaaactcgct caaaagctgg gagttgagca gcctaccctg 9180
tactggcacg tgaagaacaa gcgggccctg ctcgatgccc tgccaatcga gatgctggac 9240
aggcatcata cccacttctg ccccctggaa ggcgagtcat ggcaagactt tctgcggaac 9300
aacgccaagt cattccgctg tgctctcctc tcacatcgcg acggggctaa agtgcatctc 9360
ggcacccgcc caacagagaa acagtacgaa accctggaaa atcagctcgc gttcctgtgt 9420
cagcaaggct tctccctgga gaacgcactg tacgctctgt ccgccgtggg ccactttaca 9480
ctgggctgcg tattggagga acaggagcat caagtagcaa aagaggaaag agagacacct 9540
accaccgatt ctatgccccc acttctgaga caagcaattg agctgttcga ccggcaggga 9600
gccgaacctg ccttcctttt cggcctggaa ctaatcatat gtggcctgga gaaacagcta 9660
aagtgcgaaa gcggcgggcc ggccgacgcc cttgacgatt ttgacttaga catgctccca 9720
gccgatgccc ttgacgactt tgaccttgat atgctgcctg ctgacgctct tgacgatttt 9780
gaccttgaca tgctccccgg gtaactagaa ttccgcccct ctccctcccc cccccctaac 9840
gttactggcc gaagccgctt ggaataaggc cggtgtgcgt ttgtctatat gttattttcc 9900
accatattgc cgtcttttgg caatgtgagg gcccggaaac ctggccctgt cttcttgacg 9960
agcattccta ggcgtcgagg gacctaataa cttcgtatag catacattat acgaagttat 10020
acatgtttaa gggttccggt tccactaggt acaattcgat atcaagctta tcgataatca 10080
acctctggat tacaaaattt gtgaaagatt gactggtatt cttaactatg ttgctccttt 10140
tacgctatgt ggatacgctg ctttaatgcc tttgtatcat gctattgctt cccgtatggc 10200
tttcattttc tcctccttgt ataaatcctg gttgctgtct ctttatgagg agttgtggcc 10260
cgttgtcagg caacgtggcg tggtgtgcac tgtgtttgct gacgcaaccc ccactggttg 10320
gggcattgcc accacctgtc agctcctttc cgggactttc gctttccccc tccctattgc 10380
cacggcggaa ctcatcgccg cctgccttgc ccgctgctgg acaggggctc ggctgttggg 10440
cactgacaat tccgtggtgt tgtcggggaa atcatcgtcc tttccttggc tgctcgcctg 10500
tgttgccacc tggattctgc gcgggacgtc cttctgctac gtcccttcgg ccctcaatcc 10560
agcggacctt ccttcccgcg gcctgctgcc ggctctgcgg cctcttccgc gtcttcgcct 10620
tcgccctcag acgagtcgga tctccctttg ggccgcctcc ccgcatcgat accgtcgacc 10680
tcgatcgaga cctagaaaaa catggagcaa tcacaagtag caatacagca gctaccaatg 10740
ctgattgtgc ctggctagaa gcacaagagg aggaggaggt gggttttcca gtcacacctc 10800
agctagagct cgctgatcag cctcgactgt gccttctagt tgccagccat ctgttgtttg 10860
cccctccccc gtgccttcct tgaccctgga aggtgccact cccactgtcc tttcctaata 10920
aaatgaggaa attgcatcgc attgtctgag taggtgtcat tctattctgg ggggtggggt 10980
ggggcaggac agcaaggggg aggattggga agacaatagc aggcatgctg gggactcgag 11040
ctttaagacc aatgacttac aaggcagctg tagatcttag ccactcgagc cccatcctca 11100
ctgactccgt cctggagttg gatgagagat aatggcctta cgttgtgcca ggggagggtc 11160
gggctggatt tagcaagatt taccttctcc aaagagcggt gctgcagtgg cacagctgcc 11220
cacggaggtg ggggggtcac cgtccctgga ggtgatgaag aactgtgggg atgtggcact 11280
gagggacatg gccagtgggc acggtgggtg ggttggggtt ggtcttgggg atcttggagg 11340
gcttttccag ccttcatgat ttgacgattg tatgaacatc tacatggcaa ttctccagct 11400
gcctgtccca gtcctactga cccagctgta tctctccagg caagctcttc caccccttct 11460
gcttgcatcc agacaccatc aaacatgcag gctcagacac agggaccagc agtgtctgtg 11520
gcctttttgt gctcctctcc atgctgggtt ttaacttgct ctttgtcctt ctatcctatc 11580
ttcttatcct taaggctgtt ctgaacgctg tgacttggag agtgtcccag agccctcaac 11640
acctgcatgt cccacgtcca tgctgtcctg cacttcctta tccccaagat ctgcctctcc 11700
gtgatgcact gaattggcaa acatgtgtca ccccagacca acaatgtcac agcaaactcc 11760
cccttgatag gacaaggggg aatggcttta cactgagaca ggggaggttt gggttggata 11820
tgaggaggca gtttttcccc cagagggtgg tgacgcactg aacaggttgc ccaaggaggc 11880
tgtggatgcc ccatccctgc aggcattcaa ggccaggctg gatgtggctc tgggcagcct 11940
gggctgctgg ttgatgaccc tgcacatagc agggggttgg atctggatga gcactgtgct 12000
cctttgcaac ccaggccgtt ctatgattct gtcattctaa atctctcttt cagcctaaag 12060
ctttttcccc gtatcccccc aggtgtctgc aggctcaaag agcagcgaga agcgttcaga 12120
ggaaagcgat cccgtgccac cttccccgtg cccgggctgt ccccgcacgc tgccggctcg 12180
gggatgcggg gggagcgccg gaccggagcg gagccccggg cggctcgctg ctgcccccta 12240
gcgggggagg gacgtaatta catccctggg ggctttgggg gggggctgtc ccgtcgaggc 12300
ttgggtgata gttggtaaaa tgtgtttcaa gtgatgaaaa cttgaattat tatcaccgca 12360
acctactttt taaaaaaaaa agccaggcct gttagagcat gcttaaggga tccctaggac 12420
ttgctgagca cacaagagta gttacttggc aggctcctgg tgagagcata tttcaaaaaa 12480
caaggcagac aaccaagaaa ctacagttaa ggttacctgt ctttaaacca tctgcatata 12540
cacagggata ttaaaatatt ccaaataata tttcattcaa gttttccccc atcaaattgg 12600
gacatggatt tctccggtga ataggcagag ttggaaacta aacaaatgtt ggttttgtga 12660
tttgtgaaat tgttttcaag tgatagttaa agcccatgag atacagaaca aagctgctat 12720
ttcgaggtct cttggtttat actcagaagc acttctttgg gtttccctgc actatcctga 12780
tcatgtgcta ggcctacctt aggctgattg ttgttcaaat aaacttaagt ttcctgtcag 12840
gtgatgtcat atgatttcat atatcaaggc aaaacatgtt atatatgtta aacatttgta 12900
cttaatgtga aagttaggtc tttgtgggtt tgatttttaa ttttcaaaac ctgagctaaa 12960
taagtcattt ttacatgtct tacatttggt ggaattgtat aattgtggtt tgcaggcaag 13020
actctctgac ctagtaaccc tacctataga gcactttgct gggtcacaag tctaggagtc 13080
aagcatttca ccttgaagtt gagacgtttt gttagtgtat actagtttat atgttggagg 13140
acatgtttat ccagaagata ttcaggacta tttttgactg ggctaaggaa ttgattctga 13200
ttagcactgt tagtgagcat tgagtggcct ttaggcttga attggagtca cttgtatatc 13260
tcaaataatg ctggcctttt ttaaaaagcc cttgttcttt atcaccctgt tttctacata 13320
atttttgttc aaagaaatac ttgtttggat ctccttttga caacaatagc atgttttcaa 13380
gccatatttt ttttcctttt tttttttttt tttggttttt cgagacaggg tttctctgta 13440
tagccctggc tgtcctggaa ctcactttgt agaccaggct ggcctcgaac tcagaaatcc 13500
gcctgcctct gcctcctgag tgccgggatt aaaggcgtgc accaccacgc ctggctaagt 13560
tggatatttt gttatataac tataaccaat actaactcca ctgggtggat ttttaattca 13620
gtcagtagtc ttaagtggtc tttattggcc cttcattaaa atctactgtt cactctaaca 13680
gaggctgttg gtactagtgg cacttaagca acttcctacg gatatactag cagattaagg 13740
gtcagggata gaaactagtc tagcgttttg tatacctacc agctttatac taccttgttc 13800
tgatagaaat atttcaggac atctagagtg tactataagg ttgatggtaa gcttataagg 13860
aacttgaaag tggagtaact actccatttc tctgagggga gaattaaaat ttttgaccaa 13920
gtgttgttga gccactgaga atggtctcag aacataactt cttaaggaac cttcccagat 13980
tgccctcaac actgcaccac atttggtcct gcttgaacat tgccatggct cttaaagtct 14040
taattaagaa tattaattgt gtaattattg tttttcctcc tttagatcat tccttgagga 14100
caggacagtg cttgtttaag gctatatttc tgctgtctga gcagcaacag gtcttcgaga 14160
tcaacatgat gttcataatc ccaagatgtt gccatttatg ttctcagaag caagcagagg 14220
catgatggtc agtgacagta atgtcactgt gttaaatgtt gctatgcagt ttggattttt 14280
ctaatgtagt gtaggtagaa catatgtgtt ctgtatgaat taaactctta agttacacct 14340
tgtataatcc atgcaatgtg ttatgcaatt accattttaa gtattgtagc tttctttgta 14400
tgtgaggata aaggtgtttg tcataaaatg ttttgaacat ttccccaaag ttccaaatta 14460
taaaaccaca acgttagaac ttatttatga acaatggttg tagtttcatg cttttaaaat 14520
gcttaattat tcaattaaca ccgtttgtgt tataatatat ataaaactga catgtagaag 14580
tgtttgtcca gaacatttct taaatgtata ctgtctttag agagtttaat atagcatgtc 14640
ttttgcaaca tactaacttt tgtgttggtg cgagcaatat tgtgtagtca ttttgaaagg 14700
agtcatttca atgagtgtca gattgttttg aatgttattg aacattttaa atgcagactt 14760
gttcgtgttt tagaaagcaa aactgtcaga agctttgaac tagaaattaa aaagctgaag 14820
tatttcagaa gggaaataag ctacttgctg tattagttga aggaaagtgt aatagcttag 14880
aaaatttaaa accatatagt tgtcattgct gaatatctgg cagatgaaaa gaaatactca 14940
gtggttcttt tgagcaatat aacagcttgt tatattaaaa attttcccca cagatataaa 15000
ctctaatcta taactcataa atgttacaaa tggatgaagc ttacaaatgt ggcttgactt 15060
gtcactgtgc ttgttttagt tatgtgaaag tttggcaata aacctatgtc ctaaatagtc 15120
aaactgtgga atgacttttt aatctattgg tttgtctaga acagttatgt tgccatttgc 15180
cctaatggtg aaagaaaaag tggggagtgc cttggcactg ttcatttgtg gtgtgaacca 15240
aagagggggg catgcactta cacttcaaac atccttttga aagactgaca agtttgggtc 15300
ttcacagttg gaattgggca tcccttttgt cagggaggga gggagggagg gaggctggct 15360
tgttatgctg acaagtgtga ttaaattcaa actttgaggt aagttggagg aacttgtaca 15420
ttgttaggag tgtgacaatt tggactctta atgatttggt catacaaaat gaacctagac 15480
caacttctgg aagatgtata taataactcc atgttacatt gatttcacct gactaatact 15540
tatcccttat caattaaata cagaagatgc cagccatctg ggccttttaa cccagaaacc 15600
caagctccct tagtgtgtcc ccgatcctct agagtcgagc agtgtggttt tcaagaggaa 15660
gcaaaaagcc tctccaccca ggcctggaat gtttccaccc aatgtcgagc agtgtggttt 15720
tgcaagagga agcaaaaagc ctctccaccc aggcctggaa tgtttccacc caatgtcgag 15780
caaaccccgc ccagcgtctt gtcattggcg aattcgaaca cgcagatgca gtcggggcgg 15840
cgcggtccca ggtccacttc gcatattaag gtgacgcgtg tggcctcgaa caccgagcga 15900
ccctgcagcg acccgcttaa cagcgtcaac agcgtgccgc agatcttggt ggcgtgaaac 15960
tcccgcacct cttcggccag cgccttgtag aagcgcgtat ggcttcgtac cccggccatc 16020
agcacgcgtc tgcgttcgac caggctgcgc gttctcgcgg ccatagcaac cgacgtacgg 16080
cgttgcgccc tcgccggcag caagaagcca cggaagtccg cccggagcag aaaatgccca 16140
cgctactgcg ggtttatata gacggtcccc acgggatggg gaaaaccacc accacgcaac 16200
tgctggtggc cctgggttcg cgcgacgata tcgtctacgt acccgagccg atgacttact 16260
ggcgggtgct gggggcttcc gagacaatcg cgaacatcta caccacacaa caccgccttg 16320
accagggtga gatatcggcc ggggacgcgg cggtggtaat gacaagcgcc cagataacaa 16380
tgggcatgcc ttatgccgtg accgacgccg ttctggctcc tcatatcggg ggggaggctg 16440
ggagctcaca tgccccgccc ccggccctca ccctcatctt cgaccgccat cccatcgccg 16500
ccctcctgtg ctacccggcc gcgcgatacc ttatgggcag catgaccccc caggccgtgc 16560
tggcgttcgt ggccctcatc ccgccgacct tgcccggcac aaacatcgtg ttgggggccc 16620
ttccggagga cagacacatc gaccgcctgg ccaaacgcca gcgccccggc gagcggcttg 16680
acctggctat gctggccgcg attcgccgcg tttacgggct gcttgccaat acggtgcggt 16740
atctgcaggg cggcgggtcg tggcgggagg attggggaca gctttcgggg acggccgtgc 16800
cgccccaggg tgccgagccc cagagcaacg cgggcccacg accccatatc ggggacacgt 16860
tatttaccct gtttcgggcc cccgagttgc tggcccccaa cggcgacctg tacaacgtgt 16920
ttgcctgggc cttggacgtc ttggccaaac gcctccgtcc catgcacgtc tttatcctgg 16980
attacgacca atcgcccgcc ggctgccggg acgccctgct gcaacttacc tccgggatga 17040
tccagaccca cgtcaccacc ccaggctcca taccgacgat ctgcgacctg gcgcgcacgt 17100
ttgcccggga gatgggggag gctaactgaa acacggaagg agacaatacc ggaaggaacc 17160
cgcgctatga cggcaataaa aagacagaat aaaacgcacg ggtgttgggt cgtttgttca 17220
taaacgcggg gttcggtccc agggctggca ctctgtcgat accccaccga gaccccattg 17280
gggccaatac gcccgcgttt cttccttttc cccaccccac cccccaagtt cgggtgaagg 17340
cccagggctc gcagccaacg tcggggcggc aggccctgcc atagccacgg gccccgtggg 17400
ttagggacgg ggtcccccat ggggaatggt ttatggttcg tgggggttat tattttgggc 17460
gttgcgtggg gtcagtccac gactggactg agcagacaga cccatggttt ttggatggcc 17520
tgggcatgga ccgcatgtac tggcgcgaca cgaacaccgg gcgtctgtgg ctgccaaaca 17580
cccccgaccc ccaaaaacca ccgcgcggat ttctggcgcc gccggacgaa ctaaacctga 17640
ctacggcatc tctgcccctt cttcgctggt acgaggagcg cttttgtttt gtattggtca 17700
ccacggccga gtttcctcga ccgatgccct tgagagcctt caacccagtc agctccttcc 17760
ggtgggcgcg gggcatgact atcgtcgccg cacttatgac tgtcttcttt atcatgcaac 17820
tcgtaggaca ggtgccggca gcgctctggg tcattttcgg cgaggaccgc tttcgctgga 17880
gcgcgacgat gatcggcctg tcgcttgcgg tattcggaat cttgcacgcc ctcgctcaag 17940
ccttcgtcac tggtcccgcc accaaacgtt tcggcgagaa gcaggccatt atcgccggca 18000
tggcggccga cgcgctgggc tacgtcttgc tggcgttcgc gacgcgaggc tggatggcct 18060
tccccattat gattcttctc gcttccggcg gcatcgggat gcccgcgttg caggccatgc 18120
tgtccaggca ggtagatgac gaccatcagg gacagcttca aggatcgctc gcggctctta 18180
ccagcctaac ttcgatcact ggaccgctga tcgtcacggc gatttatgcc gcctcggcga 18240
gcacatggaa cgggttggca tggattgtag gcgccgccct ataccttgtc tgcctccccg 18300
cgttgcgtcg cggtgcatgg agccgggcca cctcgacctg aatggaagcc ggcggcacct 18360
cgctaacgga ttcaccactc caagaattgg agccaatcaa ttcttgcgga gaactgtgaa 18420
tgcgcaaacc aacccttggc agaacatatc catcgcgtcc gccatctcca gcagccgcac 18480
gcggcgcatc tcgggcagcg ttgggtcctg gccacgggtg cgcatgatcg tgctcctgtc 18540
gttgaggacc cggctaggct ggcggggttg ccttactggt tagcagaatg aatcaccgat 18600
acgcgagcga acgtgaagcg actgctgctg caaaacgtct gcgacctgag caacaacatg 18660
aatggtcttc ggtttccgtg tttcgtaaag tctggaaacg cggaagtcag cgccctgcac 18720
cattatgttc cggatctgca tcgcaggatg ctgctggcta ccctgtggaa cacctacatc 18780
tgtattaacg aagcgctggc attgaccctg agtgattttt ctctggtccc gccgcatcca 18840
taccgccagt tgtttaccct cacaacgttc cagtaaccgg gcatgttcat catcagtaac 18900
ccgtatcgtg agcatcctct ctcgtttcat cggtatcatt acccccatga acagaaatcc 18960
cccttacacg gaggcatcag tgaccaaaca ggaaaaaacc gcccttaaca tggcccgctt 19020
tatcagaagc cagacattaa cgcttctgga gaaactcaac gagctggacg cggatgaaca 19080
ggcagacatc tgtgaatcgc ttcacgacca cgctgatgag ctttaccgca gctgcctcgc 19140
gcgtttcggt gatgacggtg aaaacctctg acacatgcag ctcccggaga cggtcacagc 19200
ttgtctgtaa gcggatgccg ggagcagaca agcccgtcag ggcgcgtcag cgggtgttgg 19260
cgggtgtcgg ggcgcagcca tgacccagtc acgtagcgat agcggagtgt atactggctt 19320
aactatgcgg catcagagca gattgtactg agagtgcacc atatgcggtg tgaaataccg 19380
cacagatgcg taaggagaaa ataccgcatc aggcgctctt ccgcttcctc gctcactgac 19440
tcgctgcgct cggtcgttcg gctgcggcga gcggtatcag ctcactcaaa ggcggtaata 19500
cggttatcca cagaatcagg ggataacgca ggaaagaaca tgtgagcaaa aggccagcaa 19560
aaggccagga accgtaaaaa ggccgcgttg ctggcgtttt tccataggct ccgcccccct 19620
gacgagcatc acaaaaatcg acgctcaagt cagaggtggc gaaacccgac aggactataa 19680
agataccagg cgtttccccc tggaagctcc ctcgtgcgct ctcctgttcc gaccctgccg 19740
cttaccggat acctgtccgc ctttctccct tcgggaagcg tggcgctttc tcatagctca 19800
cgctgtaggt atctcagttc ggtgtaggtc gttcgctcca agctgggctg tgtgcacgaa 19860
ccccccgttc agcccgaccg ctgcgcctta tccggtaact atcgtcttga gtccaacccg 19920
gtaagacacg acttatcgcc actggcagca gccactggta acaggattag cagagcgagg 19980
tatgtaggcg gtgctacaga gttcttgaag tggtggccta actacggcta cactagaagg 20040
acagtatttg gtatctgcgc tctgctgaag ccagttacct tcggaaaaag agttggtagc 20100
tcttgatccg gcaaacaaac caccgctggt agcggtggtt tttttgtttg caagcagcag 20160
attacgcgca gaaaaaaagg atctcaagaa gatcctttga tcttttctac ggggtctgac 20220
gctcagtgga acgaaaactc acgttaaggg attttggtca tgagattatc aaaaaggatc 20280
ttcacctaga tccttttaaa ttaaaaatga agttttaaat caatctaaag tatatatgag 20340
taaacttggt ctgacagtta ccaatgctta atcagtgagg cacctatctc agcgatctgt 20400
ctatttcgtt catccatagt tgcctgactc cccgtcgtgt agataactac gatacgggag 20460
ggcttaccat ctggccccag tgctgcaatg ataccgcgag acccacgctc accggctcca 20520
gatttatcag caataaacca gccagccgga agggccgagc gcagaagtgg tcctgcaact 20580
ttatccgcct ccatccagtc tattaattgt tgccgggaag ctagagtaag tagttcgcca 20640
gttaatagtt tgcgcaacgt tgttgccatt gctgcaggca tcgtggtgtc acgctcgtcg 20700
tttggtatgg cttcattcag ctccggttcc caacgatcaa ggcgagttac atgatccccc 20760
atgttgtgca aaaaagcggt tagctccttc ggtcctccga tcgttgtcag aagtaagttg 20820
gccgcagtgt tatcactcat ggttatggca gcactgcata attctcttac tgtcatgcca 20880
tccgtaagat gcttttctgt gactggtgag tactcaacca agtcattctg agaatagtgt 20940
atgcggcgac cgagttgctc ttgcccggcg tcaacacggg ataataccgc gccacatagc 21000
agaactttaa aagtgctcat cattggaaaa cgttcttcgg ggcgaaaact ctcaaggatc 21060
ttaccgctgt tgagatccag ttcgatgtaa cccactcgtg cacccaactg atcttcagca 21120
tcttttactt tcaccagcgt ttctgggtga gcaaaaacag gaaggcaaaa tgccgcaaaa 21180
aagggaataa gggcgacacg gaaatgttga atactcatac tcttcctttt tcaatattat 21240
tgaagcattt atcagggtta ttgtctcatg agcggataca tatttgaatg tatttagaaa 21300
aataaacaaa taggggttcc gcgcacattt ccccgaaaag tgccacctga cgtctaagaa 21360
accattatta tcatgacatt aacctataaa aataggcgta tcacgaggcc ctttcgtctt 21420
caagaa 21426
Claims (8)
1.一种构建人源化小鼠的CRISPR/Cas9系统,其特征在于,该系统由cas9mRNA、gRNA和donor DNA重组质粒组成,所述gRNA由5’-3’的序列如SEQ ID No.7所示,所述donor DNA重组质粒为R26-e(CN362)-1,具体序列如SEQ ID No.15所示。
2.基于权利要求1所述CRISPR/Cas9系统构建pTight-uPA-Alb-rtTA转基因小鼠的制备方法,其特征在于,所述制备方法的步骤如下:
a.分别在体外合成cas9mRNA、gRNA和donor DNA重组质粒;
b.再将cas9mRNA、gRNA和donor DNA重组质粒共同显微注射到NOD/SCID小鼠受精卵中,得到F0代小鼠;
c.将步骤b得到的F0代小鼠与NOD/SCID小鼠交配获得F1代小鼠即可。
3.根据权利要求2所述的制备方法,其特征在于,b步骤还包括将得到F0代小鼠用PCR和测序的方法进行基因型鉴定。
4.根据权利要求3所述的制备方法,其特征在于,PCR反应体系50μl:
ddH2O 31μl,PrimeStar GXL PCR Buffer 10μl,2.5mM dNTP 4μl,Forward
Primer 1μl,Reverse Primer 1μl,PrimeStar GXL DNA Polymerase 2μl,
genomic DNA 1μl。
5.根据权利要求4所述的制备方法,其特征在于,5’同源臂扩增用Forward Primer如SEQ ID No.10所示,Reverse Primer如SEQ ID No.11所示;3’同源臂扩增用ForwardPrimer如SEQ ID No.12所示,Reverse Primer如SEQ IDNo.13所示。
6.根据权利要求2-5任一项所述的制备方法,其特征在于,显微注射时按cas9mRNA5ng/μl、gRNA 2ng/μl和donor DNA重组质粒20ng/μl注射。
7.根据权利要求2-6任一项所述的制备方法得到的小鼠模型。
8.根据权利要求2-6任一项所述的制备方法得到的小鼠模型在筛选肝损伤药物中的应用。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202111472651.7A CN114317536B (zh) | 2021-11-30 | 2021-11-30 | 基于CRISPR/Cas9构建uPA转基因小鼠的制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202111472651.7A CN114317536B (zh) | 2021-11-30 | 2021-11-30 | 基于CRISPR/Cas9构建uPA转基因小鼠的制备方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN114317536A CN114317536A (zh) | 2022-04-12 |
CN114317536B true CN114317536B (zh) | 2024-03-19 |
Family
ID=81049658
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN202111472651.7A Active CN114317536B (zh) | 2021-11-30 | 2021-11-30 | 基于CRISPR/Cas9构建uPA转基因小鼠的制备方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN114317536B (zh) |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102628063A (zh) * | 2012-04-10 | 2012-08-08 | 中国人民解放军第三军医大学第一附属医院 | PAlb-uPA慢病毒载体及其制备方法和应用 |
CN108424930A (zh) * | 2018-03-13 | 2018-08-21 | 西安交通大学 | 一种HBeAg转基因小鼠模型的构建方法和用途 |
CN111733183A (zh) * | 2020-08-03 | 2020-10-02 | 江苏集萃药康生物科技有限公司 | 用于构建肝损伤小鼠模型的打靶载体、核酸组合物和构建方法 |
CN113493807A (zh) * | 2021-06-22 | 2021-10-12 | 青岛大学 | 基因位点定点插入基因条件性过表达模型构建方法 |
Family Cites Families (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP3222718A4 (en) * | 2014-11-20 | 2018-05-30 | Kyoto University | Method for knock-in of dna into target region of mammalian genome, and cell |
US20190201551A1 (en) * | 2016-05-23 | 2019-07-04 | Washington University | Pulmonary targeted cas9/crispr for in vivo editing of disease genes |
WO2019140064A1 (en) * | 2018-01-10 | 2019-07-18 | The Regents Of The University Of California | Method to implement a crispr gene drive in mammals |
-
2021
- 2021-11-30 CN CN202111472651.7A patent/CN114317536B/zh active Active
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102628063A (zh) * | 2012-04-10 | 2012-08-08 | 中国人民解放军第三军医大学第一附属医院 | PAlb-uPA慢病毒载体及其制备方法和应用 |
CN108424930A (zh) * | 2018-03-13 | 2018-08-21 | 西安交通大学 | 一种HBeAg转基因小鼠模型的构建方法和用途 |
CN111733183A (zh) * | 2020-08-03 | 2020-10-02 | 江苏集萃药康生物科技有限公司 | 用于构建肝损伤小鼠模型的打靶载体、核酸组合物和构建方法 |
CN113493807A (zh) * | 2021-06-22 | 2021-10-12 | 青岛大学 | 基因位点定点插入基因条件性过表达模型构建方法 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
病毒性肝炎遗传修饰动物模型研究进展;范昌发;貌盼勇;王佑春;;传染病信息(第06期);全文 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN114317536A (zh) | 2022-04-12 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN107557388B (zh) | 一种用于car-t制备的慢病毒载体及其构建方法和应用 | |
CN109706185B (zh) | 基于碱基编辑系统突变起始密码子实现基因敲除的方法及应用 | |
CN101720332B (zh) | 生产促卵泡激素的细胞克隆 | |
CN108410787A (zh) | 一种合成乳酰-n-新四糖的重组枯草芽孢杆菌及其构建方法与应用 | |
CN113403294B (zh) | 一种融合蛋白、碱基编辑工具及其应用 | |
CN108949693A (zh) | 一种对t细胞免疫检测点通路进行基因敲除的方法及应用 | |
CN113943720A (zh) | 一种绿盲蝽GRK基因、其dsRNA及其合成方法和应用 | |
CN114196705A (zh) | 一种重组腺相关病毒包装质粒、重组腺相关病毒及其应用 | |
CN113046255B (zh) | 大规模基因重排的酵母菌及其构建方法 | |
CN109929847B (zh) | 一种pex26基因、蛋白及其应用 | |
CN114317536B (zh) | 基于CRISPR/Cas9构建uPA转基因小鼠的制备方法 | |
CN114736308B (zh) | 球虫抗原肽/il5的融合蛋白基因工程菌的制备及用途 | |
CN114231566B (zh) | 一种R26-e(CN362-1)载体及其制备方法 | |
WO2000058483A9 (en) | Protozoan expression system | |
CN114410559B (zh) | 一种钝化重金属的地杆菌工程菌株及其构建方法 | |
CN101899465A (zh) | 一种重组j亚群禽白血病病毒感染性克隆质粒及其制备方法和应用 | |
KR20090119283A (ko) | 녹색형광단백질을 이용한 단백질 과발현 시스템의 향상 | |
US20030182668A1 (en) | Transgenic non-human mammals expressing constitutively activated tyrosine kinase receptors | |
CN113293155A (zh) | 一种几丁二糖脱乙酰酶突变体及应用 | |
KR101446388B1 (ko) | B형 간염 바이러스의 preS1 W4P 변이 단백질을 발현하는 형질전환 동물 및 이의 용도 | |
CN112852651B (zh) | 一种提高酿酒酵母生物转化生产氢化可的松产量的方法 | |
CN114181939B (zh) | 一种表达na4蛋白和荧光标签的重组球虫载体及其检测方法 | |
CN109852589A (zh) | 一种建兰花叶病毒株系的克隆及其转录载体构建 | |
CN112626029B (zh) | 一种转基因修饰的Daudi细胞及其制备方法、应用 | |
CN116672442B (zh) | 藁本内酯与her2-car-t细胞联合制备治疗骨肉瘤的药物 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |