CN113862397A - 检测新型阿卡斑病毒s基因的荧光定量rt-pcr引物及其试剂盒 - Google Patents
检测新型阿卡斑病毒s基因的荧光定量rt-pcr引物及其试剂盒 Download PDFInfo
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Abstract
本发明公开了检测新型阿卡斑病毒S基因的荧光定量RT‑PCR引物,包括引物AKAVSF1和引物AKAVSR1,它们分别具有序列表SEQ.ID.No.1和SEQ.ID.No.2的碱基序列。据此,发明人还建立相应的荧光定量RT‑PCR检测方法并制备相应的荧光定量RT‑PCR试剂盒。实验表明,本发明具有特异、敏感、快速、简便的特点,而且检测灵敏度高,在标准品为1.0×101~1.0×109copies/μL范围内都有较好的线性关系。本发明检测限低至1.0×101copies/μL、检测范围宽至8个数量级,可以从拷贝数低的样品中快速、高效检测新型阿卡斑病毒,满足动物疫病监测、防控的需求。此外,本发明填补了目前临床新型阿卡斑病毒荧光定量检测方法空白,具有较好的应用前景。
Description
技术领域
本发明属于新型阿卡斑病毒检测领域,尤其涉及检测新型阿卡斑病毒S基因的荧光定量RT-PCR引物及其试剂盒。
背景技术
阿卡斑病毒(Akabane vrius,AKAV)是阿卡斑病(又称赤羽病)病原,该病是一种虫媒性传染病,可导致牛、羊流产、死胎、胎儿畸形,并通过垂直传播,侵害胎儿中枢神经,造成积水性无脑综合症和新生胎儿关节弯曲;主要流行于热带、亚热带及温带地区,如亚洲、非洲的部分国家和大洋洲,并在我国多省广泛流行,严重威胁动物健康,因此被列为国际动物贸易的重点检疫对象、我国二类动物疫病和我国进口牛、羊必检7种疫病之一。
AKAV属于布尼亚病毒科(Bunyaviridae)正布尼亚病毒属(Orthobunyavirus)辛波(Simbu)病毒血清群,为分节段单股负链RNA病毒,基因组全长12kb,由S、M、L共3个基因节段构成。S基因编码核衣壳蛋白,高度保守;M基因编码病毒囊膜糖蛋白,高度变异;L基因编码具有RNA酶活性的L蛋白,变异程度仅次于M蛋白。根据S、M基因进化分析,可将全球分离到的AKAV分为4个基因型,其中基因I型可分为Ia、Ib两个亚型。
除牛、羊外,AKAV可以感染马、水牛、骆驼,还可以在猪、兔、野牛、河马、长颈鹿、大象、大羚羊甚至灵长动物等十几种家畜、野生动物中检出AKAV抗体。2016年申请人在竹鼠中分离到新型阿卡斑病毒并申请中国专利(“用于检测新型竹鼠源阿卡斑病毒的RT-PCR引物及其试剂盒”,专利号ZL201710372744.X,公开日2017.05.24),该研究首次证实AKAV可以感染啮齿动物,而且与传统毒株相比,该毒株发生一定程度变异,临床症状也有变化,说明新型阿卡斑病毒在宿主范围和致病力上发生改变。随后,云南、广东、湖南、海南等省相继在牛、蠓虫、中华按蚊、致倦库蚊中发现与新型阿卡斑病毒同源性高的AKAV毒株,说明该毒株可能已在一定范围内流行,十分有必要加强对新型阿卡斑病毒的监控。
前述专利公开了采用普通RT-PCR检测新型阿卡斑病毒,其最低检测限109copies/μL。而蚊虫中病毒拷贝数往往较低,低于传统PCR方法检测限。因此,有必要开发一种敏感性更高的新型阿卡斑病毒检测技术。
孟锦昕等研究了阿卡斑病毒荧光定量RT-PCR检测(阿卡斑病毒qRT-PCR检测方法的建立及应用[J].云南畜牧兽医,2020(4):1-4.),其中使用的AKAV毒株为云南分离株,与前述专利及本发明使用毒株GXLCH16-70同属Ia亚型。然而,二者NSs蛋白氨基酸序列中存在两处氨基酸位点差异,分别是S22N、F70S,这两个重要位点的差异可能影响蛋白结构,进而影响蛋白功能。
发明内容
本发明要解决的技术问题是提供一种特异、敏感、快速且可定量的检测新型阿卡斑病毒S基因的荧光定量RT-PCR引物及其试剂盒。
为解决上述技术问题,本发明采用以下技术方案:
检测新型阿卡斑病毒S基因的荧光定量RT-PCR引物,包括引物AKAVSF1和引物AKAVSR1,它们分别具有序列表SEQ.ID.No.1和SEQ.ID.No.2的碱基序列。
引物AKAVSF1和引物AKAVSR1的摩尔比为1:1。
上述荧光定量RT-PCR引物在扩增新型阿卡斑病毒S基因中的应用。
扩增反应条件为:95℃30s 1个循环;95℃30s、64℃30s、72℃30s共40个循环。
检测新型阿卡斑病毒S基因的荧光定量RT-PCR试剂盒,含有引物AKAVSF1和引物AKAVSR1,它们分别具有序列表SEQ.ID.No.1至SEQ.ID.No.2的碱基序列。
引物AKAVSF1和引物AKAVSR1浓度均为10μM。
该试剂盒还包括以下试剂:RNA提取试剂、反转录试剂、荧光定量RT-PCR扩增试剂、新型阿卡斑病毒阳性对照和阴性对照。
RNA提取试剂、反转录试剂分别为Takara的MiniBEST Universal RNA Extraction试剂盒(9767)和PrimeScript RT Master Mix(RR036Q),荧光定量RT-PCR扩增试剂为SYBRPremix Ex Taq II(RR820A);阳性对照为新型阿卡斑病毒S基因片段的质粒,阴性对照为新型阿卡斑病毒阴性的昆明小鼠血清。
上述荧光定量RT-PCR试剂盒在扩增新型阿卡斑病毒S基因中的应用。
扩增反应条件为:95℃30s 1个循环;95℃30s、64℃30s、72℃30s共40个循环。
针对目前新型阿卡斑病毒PCR检测存在的问题,结合新型阿卡斑病毒S基因的特点,发明人设计并制备了检测新型阿卡斑病毒S基因的荧光定量RT-PCR引物,包括引物AKAVSF1和引物AKAVSR1,它们分别具有序列表SEQ.ID.No.1和SEQ.ID.No.2的碱基序列。据此,发明人还建立相应的荧光定量RT-PCR检测方法并制备相应的荧光定量RT-PCR试剂盒。实验表明,本发明具有特异、敏感、快速、简便的特点,而且检测灵敏度高,在标准品为1.0×101~1.0×109copies/μL范围内都有较好的线性关系。与前述专利相比,本发明检测限低至1.0×101copies/μL、检测范围宽至8个数量级,可以从拷贝数低的样品中快速、高效检测新型阿卡斑病毒,满足动物疫病监测、防控的需求。此外,在保证检测方法灵敏、准确的前提下,发明人基于云南分离株与毒株GXLCH16-70差异区域,成功筛选得到的引物,填补了目前临床新型阿卡斑病毒荧光定量检测方法空白,具有较好的应用前景。
附图说明
图1是新型阿卡斑病毒S基因荧光定量RT-PCR标准曲线,图中:横轴为重组质粒标准品拷贝数的对数值,纵轴为Ct值。
图2是新型阿卡斑病毒S基因荧光定量RT-PCR特异性检测结果图,图中:1-3是新型阿卡斑病毒细胞培养上清(3个重复),4-15分别是蓝舌病、鹿流行性出血热、竹鼠圆环病毒和布鲁氏杆菌(各3个重复)。
具体实施方式
实施例1引物设计
根据Genbank的新型阿卡斑病毒GXLCH16-70毒株的S基因保守区(登录号KY381274),用Primer 5.0等软件设计引物AKAVSF1和AKAVSR1、AKAVSF2和AKAVSR2(SEQ.ID.NO.1-SEQ.ID.NO.4),由南宁捷尼斯生物科技有限公司合成,用DEPC ddH2O溶解,-20℃保存。
表1引物序列
实施例2荧光定量RT-PCR检测方法的建立
(1)标准品的制备
以感染新型阿卡斑病毒的Vero细胞培养提取物为模板,分别采用AKAVSF1和AKAVSR1、AKAVSF2和AKAVSR2分别扩增新型阿卡斑病毒基因组S基因129bp、135bp扩增产物(SEQ.ID.NO.5、SEQ.ID.NO.6),按经典分子克隆方法,将其连接pMD-18T载体,进行克隆。抽提阳性克隆质粒pMD-AKAVS1、pMD-AKAVS2,利用分光光度计测定质粒浓度,分别制备1.0×1011copies/μL标准品,并对其10倍梯度稀释,制备1.0×100~1.0×109copies/μL的荧光定量RT-PCR标准样品。
(2)荧光定量RT-PCR反应条件优化
对引物AKAVSF1和AKAVSR1、AKAVSF2和AKAVSR2的荧光定量RT-PCR反应条件进行优化探索,在不同引物用量(0.2μL、0.4μL、0.6μL和1.0μL)、退火温度(58℃、60℃、62℃、64℃和66℃)、添加Mg2+浓度(0μmol/L、0.5μmol/L和1μmol/L)、两步法或三步法等条件下反应,以Ct值、标准曲线斜率、相关系数、扩增效率及扩增准确性等标准,确定最佳反应条件:SYBRPremix Ex Taq II 10μL、上下游引物(10μM)各0.4μL,标准品或反转录产物2μL,双蒸水补齐至20μL;反应条件:95℃30s 1个循环;95℃30s、64℃30s、72℃30s共40个循环,敏感性、检测效果最好。
(3)荧光定量RT-PCR反应体系的建立
以各浓度标准品为模板,配置荧光定量RT-PCR反应液(表2),置于荧光定量PCR仪中进行反应,反应条件:95℃30s 1个循环;95℃30s、64℃30s、72℃30s共40个循环。每浓度标准品3个平行重复。
根据标准品浓度的对数值和Ct值为坐标,分别绘制标准曲线,如图1所示,引物AKAVSF1和AKAVSR1荧光定量RT-PCR标准曲线的回归方程为y=-3.3556x+38.072,R2=0.9902,曲线在1.0×101~1.0×109copies/μL之间呈现良好的线性关系,扩增效率为98.61%;而引物AKAVSF2和AKAVSR2荧光定量RT-PCR标准曲线的回归方程为y=-3.0865x+42.921,R2=0.9954,曲线在1.0×104~1.0×109copies/μL之间呈现良好的线性关系,扩增效率为110.86%;引物AKAVSF1和AKAVSR1灵敏性较好,检测范围较宽,更适用于临床检测。
(4)检测结果的判定
根据荧光定量RT-PCR反应收集荧光信号,若待测样品荧光信号超过阈值且Ct≤35,同时扩增曲线为平滑的“S”型,则可判定待测样品中含有新型阿卡斑病毒。
同时,根据荧光定量RT-PCR的标准曲线,可以对样品中新型阿卡斑病毒进行定量测定。
表2荧光定量RT-PCR反应液组份
(4)荧光定量RT-PCR的评价
1)特异性试验
应用建立的荧光定量RT-PCR方法,分别对蓝舌病、鹿流行性出血热、竹鼠圆环病毒和布鲁氏杆菌进行检测,结果发现,蓝舌病、鹿流行性出血热、竹鼠圆环病毒和布鲁氏杆菌均不能有效扩增,只有新型阿卡斑病毒能够有效扩增(图2)。
以上试验结果表明,本发明具有较强的特异性,引物与新型阿卡斑病毒特异性结合,与其他牛源和竹鼠源病原都没有交叉反应,方法特异性好。
2)灵敏性和检测范围试验
应用建立的荧光定量RT-PCR方法,分别以浓度为1.0×100~1.0×109copies/μL的AKAV S基因质粒标准品为模板,测定各浓度标准品的Ct值,绘制标准曲线,用于评价本方法的灵敏度。结果发现浓度1.0×101~1.0×109copies/μL的S基因标准品为模板时,绘制的标准曲线线性关系较好,扩增效率分别为98.61%,因此确定本方法可准确检测到最低1.0×101copies/μL、最高1.0×109copies/μL的AKAV S基因。
3)重复性试验
应用建立的荧光定量RT-PCR方法,分别以浓度为1.0×101~1.0×109copies/μL的AKAV S基因质粒标准品为模板,进行3次批内和3次批间重复试验,即每个样品3个重复、并分别进行3次实验。计算每个稀释度标准品的平均Ct、标准差(SD)和变异系数(CV),用于评价本方法的可重复性,结果见表3。每个浓度标准品的批内、批间试验Ct值的SD都在0.5以内,CV都在5%以内,说明针对新型阿卡斑病毒S基因的荧光定量RT-PCR方法具有较好的重复性。
表3 AKAV S基因荧光定量RT-PCR检测方法重复性实验结果
实施例3荧光定量RT-PCR试剂盒组成及评价
(1)荧光定量RT-PCR试剂盒组成
特异性引物AKAVSF1和AKAVSR1,浓度均为10μM;
RNA提取试剂:Takara的MiniBEST Universal RNA Extraction试剂盒(9767);
RNA反转录试剂:Takara的PrimeScript RT Master Mix(RR036Q);
扩增试剂:Takara的SYBR Premix Ex Taq II(RR820A)以及Rnase-Free ddH2O;
阴阳性对照:阳性对照为实施例2中制备的标准品,即新型阿卡斑病毒S基因质粒,阴性对照为新型阿卡斑病毒阴性的昆明小鼠血清。
(2)试剂盒反应条件
根据RNA提取试剂盒说明书操作,抽提正常Ver细胞和接种新型阿卡斑病毒的Vero细胞总RNA,并去除其中基因组DNA,用实施例2中建立的荧光定量RT-PCR进行检测并分析结果。
若待测样品荧光信号超过阈值且Ct≤35,同时扩增曲线为平滑的“S”型,则可判定待测样品中含有新型阿卡斑病毒。
同时,根据荧光定量RT-PCR的标准曲线,可以对样品中新型阿卡斑病毒进行定量测定。
(3)荧光定量RT-PCR试剂盒与普通RT-PCR灵敏性比较
将新型阿卡斑病毒S基因标准品稀释成1.0×101~1.0×109copies/μL,采用上述试剂盒进行检测,结果显示,试剂盒能检测1.0×101copies/μL的新型阿卡斑病毒S基因标准品,而且在1.0×101~1.0×109copies/μL范围内均有较好的线性关系,检测范围可达9个数量级。对比前述专利中新型阿卡斑病毒RT-PCR检测方法,发现RT-PCR最低只能检测到109copies/μL。这表明本发明新型阿卡斑病毒荧光定量RT-PCR试剂盒的灵敏度是RT-PCR的108倍,具有较高的灵敏性。
(4)荧光定量RT-PCR试剂盒的应用
用经过鉴定的新型阿卡斑病毒感染Vero细胞为实验组,同时以PBS接种Vero细胞为对照组,待实验组Vero细胞出现明显细胞病变后收毒。抽提实验组和对照组Vero细胞总RNA,并去除其中基因组DNA,应用上述试剂盒及实施例2中建立的荧光定量RT-PCR进行检测并分析结果。
结果发现,实验组Vero细胞中检出新型阿卡斑病毒S基因,符合预期,表明本发明的检测方法准确、可靠。
序列表
<110> 广西壮族自治区兽医研究所
<120> 检测新型阿卡斑病毒S基因的荧光定量RT-PCR引物及其试剂盒
<160> 6
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
acataagacg ccacaaccaa gt 22
<210> 2
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
gaaatgcgat ggagcgtaaa 20
<210> 3
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
ctcctggtgc cgagatgttt 20
<210> 4
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
cagtcagctg cccatacctc 20
<210> 5
<211> 129
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
acataagacg ccacaaccaa gtgtcgatct tacttttgca ggggtcaaat ttacagtggt 60
taataaccat tttccccagt acactgcaaa cccagtgtca gacactgcct ttacgctcca 120
tcgcatttc 129
<210> 6
<211> 135
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
ctcctggtgc cgagatgttt ctggaaactt ttgagtttta cccactggtt atcgacatgc 60
accgtgtgat aaaggacggg atggatgtta acttcatgag gaaagtctta cgccagaggt 120
atgggcagct gactg 135
Claims (10)
1.检测新型阿卡斑病毒S基因的荧光定量RT-PCR引物,其特征在于包括引物AKAVSF1和引物AKAVSR1,它们分别具有序列表SEQ.ID.No.1和SEQ.ID.No.2的碱基序列。
2.根据权利要求1所述的荧光定量RT-PCR引物,其特征在于所述引物AKAVSF1和引物AKAVSR1的摩尔比为1:1。
3.权利要求1所述的荧光定量RT-PCR引物在扩增新型阿卡斑病毒S基因中的应用。
4.根据权利要求3所述的应用,其特征在于:所述扩增反应条件为:95℃30s 1个循环;95℃30s、64℃30s、72℃30s共40个循环。
5.一种检测新型阿卡斑病毒S基因的荧光定量RT-PCR试剂盒,其特征在于含有引物AKAVSF1和引物AKAVSR1,它们分别具有序列表SEQ.ID.No.1至SEQ.ID.No.2的碱基序列。
6.根据权利要求5所述的荧光定量RT-PCR试剂盒,其特征在于:所述引物AKAVSF1和引物AKAVSR1浓度均为10μM。
7.根据权利要求5所述的荧光定量RT-PCR试剂盒,其特征在于该试剂盒还包括以下试剂:RNA提取试剂、反转录试剂、荧光定量RT-PCR扩增试剂、新型阿卡斑病毒阳性对照和阴性对照。
8.根据权利要求7所述的荧光定量RT-PCR试剂盒,其特征在于:所述RNA提取试剂、反转录试剂分别为Takara的MiniBEST Universal RNA Extraction试剂盒和PrimeScript RTMaster Mix,荧光定量RT-PCR扩增试剂为SYBR Premix Ex Taq II;所述阳性对照为新型阿卡斑病毒S基因片段的质粒,阴性对照为新型阿卡斑病毒阴性的昆明小鼠血清。
9.权利要求5所述的荧光定量RT-PCR试剂盒在扩增新型阿卡斑病毒S基因中的应用。
10.根据权利要求9所述的应用,其特征在于:所述扩增反应条件为:95℃30s 1个循环;95℃30s、64℃30s、72℃30s共40个循环。
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H. KAMATA 等: "Encephalomyelitis of cattle caused by Akabane virus in southern Japan in 2006", J. COMP. PATH., vol. 140, no. 2, pages 188 * |
张吉红 等: "赤羽病病毒Real-time RT-PCR检测方法的建立与初步应用", 黑龙江畜牧兽医, no. 13, pages 119 - 120 * |
陈圣军 等: "赤羽病SYBR GreenⅠ实时荧光PCR方法的建立和应用", 中国动物检疫, vol. 30, no. 8, pages 71 - 72 * |
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