CN113667652A - 一种提高sod3可溶性表达及酶活性的方法 - Google Patents
一种提高sod3可溶性表达及酶活性的方法 Download PDFInfo
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Abstract
本发明涉及基因表达技术领域。本发明提供了一种提高SOD3可溶性表达及酶活性的方法,包括如下步骤:在培养基中添加Fe3+,培养SOD3宿主细胞。结果表明通过在培养基中添加的铁离子,诱导SOD3可溶性表达,虽然表达量没有显著增加,但酶活性提高7倍左右。采用本发明方法,可实现拟南芥SOD3可溶性表达及酶活性增强,达到理想的SOD3产量和活性,为后续的SOD3使用提供物质基础。
Description
技术领域
本发明涉及基因表达技术领域,尤其涉及一种提高SOD3可溶性表达及酶活性的方法。
背景技术
生物体内低浓度超氧阴离子自由基(O2-)是维持生命活动所必需的,其浓度过高时,可引起机体组织细胞氧化损伤,导致机体发生疾病,甚至死亡。超氧化物歧化酶(superoxide dismutase;SOD)是生物体内存在的一种抗氧化金属酶,它能够催化超氧阴离子自由基歧化生成氧和过氧化氢,在机体氧化与抗氧化平衡中起到至关重要的作用,与很多疾病的发生、发展密不可分。SOD复合酶是唯一能清除细胞中自由基的酶,自由基是带有不成对电子、原子或离子,其化学性质活泼,有极高的氧化性能,以夺取核酸、氨基酸等生物分子的电子,使这些物质性质演化成毒性更强的羟自由基,可导致机体的多种疾病。研究表明,机体的衰老、病变及辐射伤害都同自由基的形式有关,故SOD有抗衰老、抗辐射、消炎、抑制肿瘤和癌症的功能。研究还表明,SOD对胃病、气管炎、皮肤病、烧伤、脚气等都有独特疗效,对醒酒、亢奋精神、抗疲劳、恢复体力、减肥也有很好的效果,目前在化妆品、食品、保健品、医药、酒类、饮料等行业也已开始使用SOD,其发展前景十分广阔。
利用大肠杆菌生产蛋白质的主要优点在于易于培养,可降低生产成本;能够经过大量培养从而获得高产量的重组蛋白,但大肠杆菌的表达产物容易形成无生物学活性的包涵体,纯化后还需进行复性处理,影响了产物的回收率和活性。包涵体的形成是一个由许多蛋白质参与的极端复杂的动力学过程,依赖于蛋白质的折叠速率和聚集速率,并且与蛋白质的合成和降解程度相关。强的表达系统,高的诱导剂浓度,相对较高的培养温度常常造成包涵体的形成。当高水平表达时,由于大肠杆菌细胞质是一个偏还原性的环境,蛋白质容易形成错配的二硫键,这常常是包涵体形成的主要原因。
因此,在利用大肠杆菌生产蛋白时,如何在增加SOD3可溶性表达的同时提高酶活性就显得尤为重要。
发明内容
本发明的目的在于提供一种提高SOD3可溶性表达及酶活性的方法,实现拟南芥SOD3可溶性表达及酶活性增强。
为了实现上述发明目的,本发明提供以下技术方案:
本发明提供了一种提高SOD3可溶性表达及酶活性的方法,包括如下步骤:在培养基中添加Fe3+,培养SOD3宿主细胞。
作为优选,所述培养基为LB液体培养基。
作为优选,所述培养基中Fe3+的浓度为500~1000μM,所述Fe3+添加时采用FeCl3。
作为优选,所述培养的过程为:将SOD3宿主细胞在23~27℃下培养至OD600为0.38~0.42,加入IPTG诱导剂,继续培养4~6h。
作为优选,所述SOD3宿主细胞为含有原核表达载体的大肠杆菌BL21,所述IPTG诱导剂在培养基中的浓度为0.15~0.25mM。
作为优选,所述原核表达载体为含有SOD3基因的重组质粒。
作为优选,所述质粒为pET-28a(+)质粒。
作为优选,所述SOD3基因提取自拟南芥。
作为优选,所述SOD3基因通过上下游引物扩增得到,所述上游引物的序列如SEQID NO:1所示,所述下游引物的序列如SEQ ID NO:2所示。
本发明还提供了Fe3+在增加SOD3可溶性表达及提高酶活性中的应用。
本发明提供了一种提高SOD3可溶性表达及酶活性的方法,包括如下步骤:在培养基中添加Fe3+,培养SOD3宿主细胞。结果表明通过在培养基中添加的铁离子,诱导SOD3可溶性表达,虽然表达量没有显著增加,但酶活性提高7倍左右。采用本发明方法,可实现拟南芥SOD3可溶性表达及酶活性增强,达到理想的SOD3产量和活性。通过选择合适的表达载体和宿主细胞,且在培养基中添加Fe3+诱导培养,高效可溶性表达拟南芥SOD3,同时酶活性显著提高,使大规模制备SOD3成为可能,为后续的SOD3使用提供物质基础。
附图说明
图1为拟南芥SOD3重组质粒pET28a(+)的PCR鉴定结果;
图2为拟南芥SOD3重组质粒Hind Ⅲ和XhoⅠ双酶切鉴定结果;
图3为37℃诱导重组SOD3的SDS-PAGE结果;
图4为25℃低温诱导重组SOD3的SDS-PAGE结果;
图5为25℃低温诱导转染重组SOD3质粒细胞不同组分SDS-PAGE结果;
图6为镍柱纯化的SOD3的Western blotting结果;
图7为不同浓度的Fe3+诱导SOD3表达的SDS-PAGE分析;
图8为SOD3活性受不同浓度的Fe3+影响。
具体实施方式
本发明提供了一种提高SOD3可溶性表达及酶活性的方法,包括如下步骤:在培养基中添加Fe3+,培养SOD3宿主细胞。
在本发明中,所述培养基优选为LB液体培养基。
在本发明中,所述培养基中Fe3+的浓度优选为500~1000μM,进一步优选为600~900μM,再进一步优选为750μM。
在本发明中,所述Fe3+添加时优选采用FeCl3。
在本发明中,所述培养的过程为:将SOD3宿主细胞在23~27℃下培养至OD600为0.38~0.42,加入IPTG诱导剂,继续培养4~6h。
在本发明中,所述培养的温度优选为24~26℃,进一步优选为25℃。
在本发明中,所述OD600优选为0.4。
在本发明中,加入IPTG诱导剂后培养的时间优选为5h。
在本发明中,所述SOD3宿主细胞优选为含有原核表达载体的大肠杆菌BL21。
在本发明中,所述IPTG诱导剂在培养基中的浓度优选为0.15~0.25mM,进一步优选为0.18~0.22mM,再进一步优选为0.2mM。
在本发明中,所述原核表达载体优选为含有SOD3基因的重组质粒。
在本发明中,所述质粒优选为pET-28a(+)质粒。
在本发明中,所述SOD3基因优选提取自拟南芥。
在本发明中,所述SOD3基因优选通过上下游引物扩增得到。
在本发明中,所述上游引物的序列如SEQ ID NO:1所示,所述下游引物的序列如SEQIDNO:2所示。
本发明还提供了Fe3+在增加SOD3可溶性表达及提高酶活性中的应用
下面结合实施例对本发明提供的技术方案进行详细的说明,但是不能把它们理解为对本发明保护范围的限定。
实施例1重组质粒构建
从GenBankDatabase中检索得到编码的拟南芥SOD3的基因序列(GenBank,NP_194240.1)。根据检索到的SOD的基因序列设计一对特异性引物SOD-F与SOD-R。SOD-F中引入HindШ位点,SOD-R中引入XhoI位点,如下用横线标出。引物由生物技术公司合成。
上游引物SOD3-F:5’CCCAAGCTTGCATGGCTGCTTCAAGTGCTGTC3’,
下游引物SOD3-R:5’CCGCTCGAGTTAAGCAGAAGCAGCCTT3’。
以拟南芥的基因组(cDNA)作为模板,以SOD3-F、SOD3-R引物进行PCR扩增。回收PCR产物,并与克隆载体pMD18-T连接,构建了重组质粒pMD18-T/SOD3。
实施例2酶切鉴定
重组质粒pMD18-T/SOD3和空质粒pET28a(+)经限制性内切酶HindШ和XhoΙ消化,两者的消化产物经T4DNA连接酶的作用进行连接,目的基因SOD3最终被克隆到表达载体pET-28a(+)上,连接产物转化DH5α涂板37℃过夜培养,挑取单克隆在含卡纳抗性的液体LB培养基中37℃过夜培养约16h后提质粒。提取质粒用HindШ和XhoI双酶切和测序进行验证,验证正确的质粒为表达载体质粒SOD3-pET28a(+)。
实施例3重组蛋白可溶性表达
含重组质粒的表达菌株在大肠杆菌细胞中诱导表达。验证正确的SOD3-pET28a(+)质粒转化BL21(DE3)中,涂板37℃过夜培养,挑取单克隆在含卡纳抗性的液体LB培养基中37℃过夜培养16~18h后,按照1%的体积比分别转接到30、100、500、750、1000uM的Fe3+的100mL的培养基中扩大培养,25℃下摇至OD600约为0.4。取出培养菌液,先取出1mL菌液作为0h的对照,剩余菌液在冰上静置20min后,LB培养基中再加入终浓度为0.2mM的IPTG诱导剂,25℃下200rpm条件继续培养。5h后于4℃低温离心机4500g离心15min后弃上清,收集菌体,菌体用50mM pH8.0的Tris-HCl缓冲液洗涤两次去除残留的LB培养基。
实施例4细胞破碎及蛋白收集
收集菌体在超声波细胞破碎仪上进行超声破碎,每100mL培养基收集的菌体最终悬浮成总体积为2.5mL,其中各组分的体积为:100mM PMSF 25μL、50mM pH8.0 Tris-HCl2.475mL。工作参数设置为:破碎功率130W,破碎时间10s,间隔时间10s,超声破碎总时间40min,整个反应在冰水浴条件下进行。超声结束后,样品在低温离心机内4℃,19000g离心20min,移出上清液至新的EP管中,再将上清离心一次,保证上清和沉淀分离彻底。
实施例5镍柱(Ni-resin)亲和纯化
纯化过程在4℃层析冷柜中进行,在10mL空柱子中加入约2mL的Ni-resin,首先用5倍柱体积的超纯水过柱三次以清洗树脂,再用10倍柱体积的Ni-resin平衡Buffer(50mMTris-HCl,150mM NaCl,pH8.0)过柱,用于平衡树脂。将柱子下方出口关闭,并将准备好的蛋白样品加入到柱体中,与树脂充分接触,上方盖上盖并轻轻混合,在4℃条件下混合2h,每隔一段时间混匀一次。打开下方出口,收集流出液并标记为镍柱流过液。柱中加入5~10倍柱体积的Ni-resin Wash Buffer(50mM Tris-HCl,300mM NaCl,20mM imidazole,pH8.0)过柱,收集流出液并标记为清洗液。在柱中加入2~3倍柱体积的不同咪唑浓度的Elution Buffer I(50mMTris-HCl,300mM NaCl,50mM imidazole,pH8.0)和ElutionBuffer II(50mMTris-HCl,300mM NaCl,100mM imidazole,pH8.0),将结合在树脂上的目的蛋白洗脱下来,分别收集流出液,标记对应浓度下的洗脱情况。将收集液各取出80μL,每管加入20μL的5×SDS loading buffer(含β-巯基乙醇),加热煮沸10min后,用于SDS-PAGE电泳检测,看蛋白纯化情况。
实施例6Western bloting鉴定
将纯化的蛋白分别以10ul的量上样,以10%SDS-PAGE胶电泳,电泳结束后将凝胶转膜至PVDF膜,转膜时间1h将PVDF膜置于含5%脱脂奶粉的PBS封闭液,4℃封闭过夜,PBST洗膜3次,每次10min以鼠抗HIS标签单克隆抗体为一抗(1:5000),孵育2h,PBST洗膜3次,每次l0min,以HRP标记的羊抗兔IgG抗体为二抗(1:5000),孵育2h,PBST洗膜3次,每次l0min,观察结果。
实施例7蛋白生物学活性检测
采用SOD活性检测试剂盒,购自碧云天生物技术公司,根据试剂盒的说明书进行检测。试剂盒采用经典的氮蓝四唑(NBT)显色法。通过试剂盒通过黄嘌呤(Xanthine)及黄嘌呤氧化酶(Xanthine Oxidase)反应系统产生超氧阴离子(O2-),将氮蓝四唑还原为蓝色的甲臜(formazan),后者在560nm处有强吸收。而SOD可清除超氧阴离子,从而抑制了甲臜的形成。反应液蓝色愈深,说明超氧化物岐化酶活性愈低,反之则酶活性愈高。据此通过比色分析就可以计算出超氧化物岐化酶活性水平。
实验结果:
1、重组质粒的鉴定结果如图1和图2所示,图1中M为DL 2000DNA标记;1为拟南芥叶片cDNA的PCR扩增产物。图2中M1为1kbDNA标记;M2为DL 2000DNA标记;1~4为挑取的SOD3-pET28a(+)四个不同菌落双酶切电泳图。
2、37℃诱导重组SOD3的SDS-PAGE和Western blotting结果如图3所示。其中,1、2为空载体(pET28a(+))诱导0和5小时表达的全菌蛋白。3、4为空载体(pET28a(+))诱导5小时沉淀和上清。5、6、7为SOD3-pET28a诱导5小时上清、沉淀和全菌蛋白。
3、25℃低温诱导重组SOD3的SDS-PAGE和Western blotting结果如图4~6所示。图4中1、2为空载体(pET28a(+))诱导0和5小时表达的全菌蛋白;3、4为空载体(pET28a(+))诱导5小时沉淀和上清;5、6为SOD3-pET28a(+)诱导0和5小时表达的全菌蛋白;7、8为SOD3-pET28a诱导5小时沉淀和上清。图5中1为SOD3细胞超声离心裂粗液;2为镍柱纯化后的hSOD3粗酶剩余物;3为溶解液I(50mM Tris,pH8.0,300mM NaCl,50mM咪唑)洗脱镍柱收集液;4为溶解液II(50mM Tris,pH8.0,300mM NaCl,100mM咪唑)洗脱镍柱收集液;5为透析纯化hSOD3。图6为镍柱纯化的SOD3的Western blotting,M为PageRuler Plus欲染蛋白标记。
4、不同浓度的Fe3+诱导SOD3的SDS-PAGE分析结果如图7所示。M为蛋白质分子量标记;EP为质粒pET-28a(+)。
5、SOD3活性受不同浓度的Fe3+影响如图8所示。X轴代表不同浓度的离子,Y轴表示酶活,对照被定义为1。数据表示为中值的来自三个独立实验的平均值(SD),**表示P<0.01。
由以上实施例可知,本发明提供了一种提高SOD3可溶性表达及酶活性的方法,包括如下步骤:在培养基中添加Fe3+,培养SOD3宿主细胞。结果表明通过在培养基中添加的铁离子,诱导SOD3可溶性表达,虽然表达量没有显著增加,但酶活性提高7倍左右。采用本发明方法,可实现拟南芥SOD3可溶性表达及酶活性增强,达到理想的SOD3产量和活性,为后续的SOD3使用提供物质基础。
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
序列表
<110> 常州市第二人民医院
<120> 一种提高SOD3可溶性表达及酶活性的方法
<160> 2
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 32
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
cccaagcttg catggctgct tcaagtgctg tc 32
<210> 2
<211> 27
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
ccgctcgagt taagcagaag cagcctt 27
Claims (10)
1.一种提高SOD3可溶性表达及酶活性的方法,其特征在于,包括如下步骤:在培养基中添加Fe3+,培养SOD3宿主细胞。
2.根据权利要求1所述的一种提高SOD3可溶性表达及酶活性的方法,其特征在于,所述培养基为LB液体培养基。
3.根据权利要求2所述的一种提高SOD3可溶性表达及酶活性的方法,其特征在于,所述培养基中Fe3+的浓度为500~1000μM,所述Fe3+添加时采用FeCl3。
4.根据权利要求3所述的一种提高SOD3可溶性表达及酶活性的方法,其特征在于,所述培养的过程为:将SOD3宿主细胞在23~27℃下培养至OD600为0.38~0.42,加入IPTG诱导剂,继续培养4~6h。
5.根据权利要求4所述的一种提高SOD3可溶性表达及酶活性的方法,其特征在于,所述SOD3宿主细胞为含有原核表达载体的大肠杆菌BL21,所述IPTG诱导剂在培养基中的浓度为0.15~0.25mM。
6.根据权利要求5所述的一种提高SOD3可溶性表达及酶活性的方法,其特征在于,所述原核表达载体为含有SOD3基因的重组质粒。
7.根据权利要求6所述的一种提高SOD3可溶性表达及酶活性的方法,其特征在于,所述质粒为pET-28a(+)质粒。
8.根据权利要求7所述的一种提高SOD3可溶性表达及酶活性的方法,其特征在于,所述SOD3基因提取自拟南芥。
9.根据权利要求1~8任意一项所述的一种提高SOD3可溶性表达及酶活性的方法,其特征在于,所述SOD3基因通过上下游引物扩增得到,所述上游引物的序列如SEQ ID NO:1所示,所述下游引物的序列如SEQ ID NO:2所示。
10.Fe3+在增加SOD3可溶性表达及提高酶活性中的应用。
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CN114940981A (zh) * | 2022-06-08 | 2022-08-26 | 四川省草原科学研究院 | 一种体外表达牦牛胞外超氧化物歧化酶sod3的方法 |
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