CN112710858A - 试剂盒及其制备方法和应用 - Google Patents

试剂盒及其制备方法和应用 Download PDF

Info

Publication number
CN112710858A
CN112710858A CN202011480594.2A CN202011480594A CN112710858A CN 112710858 A CN112710858 A CN 112710858A CN 202011480594 A CN202011480594 A CN 202011480594A CN 112710858 A CN112710858 A CN 112710858A
Authority
CN
China
Prior art keywords
human chorionic
chorionic gonadotropin
reagent
monoclonal antibody
beta human
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN202011480594.2A
Other languages
English (en)
Inventor
黄美玲
黄金浪
唐灿
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Shenzhen Tianchen Medical Technology Co ltd
Original Assignee
Shenzhen Tianchen Medical Technology Co ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Shenzhen Tianchen Medical Technology Co ltd filed Critical Shenzhen Tianchen Medical Technology Co ltd
Priority to CN202011480594.2A priority Critical patent/CN112710858A/zh
Publication of CN112710858A publication Critical patent/CN112710858A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/74Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving hormones or other non-cytokine intercellular protein regulatory factors such as growth factors, including receptors to hormones and growth factors
    • G01N33/76Human chorionic gonadotropin including luteinising hormone, follicle stimulating hormone, thyroid stimulating hormone or their receptors

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Reproductive Health (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明公开一种试剂盒及其制备方法和应用,涉及药物检测技术领域,所述试剂盒用于检测β人绒毛膜促性腺激素的含量,包括:R1试剂,包括包被有链霉亲和素的磁珠以及pH值为7.2~7.6的第一缓冲液;R2试剂,包括酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体以及pH值为6.3~6.7的第二缓冲液;以及,R3试剂,包括生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体以及pH值为7.2~7.6的第三缓冲液。本发明提出的试剂盒,在检测β人绒毛膜促性腺激素的含量时,灵敏度高、稳定性和重复性好。

Description

试剂盒及其制备方法和应用
技术领域
本发明涉及药物检测技术领域,特别涉及一种试剂盒及其制备方法和应 用。
背景技术
人绒毛膜促性腺激素(HCG)是胎盘合体滋养层细胞分泌的一种糖蛋白 激素,HCG从胎盘滋养层通过血循环进入卵巢,刺激黄体分泌孕酮维持黄体 功能,使子宫内膜保持适合胚胎着床发育的状态。血清β-HCG在受精后6~7 天可检测出,是女性妊娠激素中最早分泌的激素之一,妊娠正常孕妇的血清 β-HCG在随孕周的增加而成倍递增,是早孕检测的可靠指标,同时也是判定 妊娠是否正常的重要指标。不同的妊娠个体血清β-HCG水平存在差异,停经 时间、滋养细胞数量和质量、受精卵着床部位等是主要影响因素,其差异高 达20倍。有研究证明宫外孕患者血清β-HCG增长速度慢于正常宫内妊娠孕 妇,这对于宫外孕的早期诊断具有极高的指导意义。足量的血清β-HCG是胚 囊正常发育的保证,可使妊娠黄体不断退化。宫内妊娠血清β-HCG不足往往 提示妊娠黄体发育不良,从而影响到绒毛的发育和胎盘形成,容易导致流产。 除此之外血清β-HCG还可以作为是临床诊断葡萄胎和滋养细胞肿瘤等疾病及 治疗后随访的重要指标。
目前用于检测β-HCG的方法主要有胶体金试纸检测法、荧光免疫层析法、 酶联免疫法、化学发光等非均相免疫分析法。胶体金试纸检测法与荧光免疫 层析法均属层析法,两者都有方便快捷,试剂稳定等特点,但胶体金试纸检 测法目前无法实现定量测试,荧光免疫层析法可通过用两条测试线的比值或 测试线与控制线的比值来确定被检测物的量,但二者均有灵敏度低,线性范 围窄的缺点。酶联免疫法操作繁琐,定量检测效果不佳,线性范围窄,测试 结果易受人为因素影响;也有使用均相化学发光免疫分析定量测试β-HCG,但其灵敏度与重复性较非均相化学发光免疫分析来说还是较差的。
发明内容
本发明的主要目的是提出一种试剂盒及其制备方法和应用,旨在提供一 种灵敏度高、稳定性和重复性好的用于检测β人绒毛膜促性腺激素的含量的 试剂盒。
为实现上述目的,本发明提出一种试剂盒,用于检测β人绒毛膜促性腺 激素的含量,所述试剂盒包括:
R1试剂,包括包被有链霉亲和素的磁珠以及pH值为7.2~7.6的第一缓冲 液;
R2试剂,包括酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体以及pH值为 6.3~6.7的第二缓冲液;以及,
R3试剂,包括生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体以及pH 值为7.2~7.6的第三缓冲液。
可选地,所述第一缓冲液的pH值为7.4;和/或,
所述第二缓冲液的pH值为6.5;和/或,
所述第三缓冲液的pH值为7.4。
可选地,所述第一缓冲液包括:50mM Tris、0.1%吐温-20(v/v)、0.1%Proclin300(v/v)、0.9%NaCl(w/v)及1.2%BSA(w/v);和/或,
所述第二缓冲液包括:50mM MES、0.1%吐温-20(v/v)、0.1%Proclin300 (v/v)、0.9%NaCl(w/v)及1.2%BSA(w/v);和/或,
所述第三缓冲液包括:50mM Tris、1%B-环糊精(w/v)、1%BSA(w/v)、 0.1%吐温-20(v/v)、0.9%NaCl(w/v)及0.05%Proclin300(v/v)。
可选地,所述R1试剂中所述包被有链霉亲和素的磁珠的浓度为0.05%~ 0.1%(w/v);和/或,
所述R2试剂的酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体中,酶包括碱 性磷酸酶。
可选地,所述R2试剂的酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体中, 所述β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体与酶的质量之比为5:(6~10)。
可选地,所述R3试剂的生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体 中,所述β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体与生物素的质量之比为5:(6~10)。
可选地,所述试剂盒还包括β人绒毛膜促性腺激素校准品,所述β人绒 毛膜促性腺激素校准品包括浓度分别为1.2mIU/mL、400mIU/mL、800mIU/mL、 1200mIU/mL、1600mIU/mL、2000mIU/mL的β人绒毛膜促性腺激素溶液。
可选地,所述的试剂盒还包括发光底物液,所述发光底物液包括AMPPD。
本发明进一步提出一种如上所述的试剂盒的制备方法,包括如下步骤:
将包被有链霉亲和素的磁珠加入到第一缓冲液中混合均匀,得到R1试 剂;
将活化后的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体与酶溶液混合反应制得酶 标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体,将酶标记的β人绒毛膜促性腺激 素单克隆抗体加入到第二缓冲液中混合均匀,得到R2试剂;
将活化后的生物素与β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体混合反应制得生 物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体,将所述生物素标记的β人绒 毛膜促性腺激素单克隆抗体加入到第三缓冲液中混合均匀,得到R3试剂。
本发明进一步提出一种β人绒毛膜促性腺激素的含量的检测方法,采用 如上所述的试剂盒,所述β人绒毛膜促性腺激素的含量的检测方法包括以下 步骤:
将待测样本与R2试剂混合均匀,孵育4~6min,再依次加入R3试剂和 R1试剂,继续孵育4~6min后,得到混合液体;
将所述混合液体磁分离得含磁珠物,将含磁珠物清洗后,加入发光底物 液,混合均匀,得到待测液;
检测所述待测液的发光强度;
根据发光强度计算β人绒毛膜促性腺激素的含量。
本发明提供的技术方案中,采用酶促化学发光法,选用包被有链霉亲和 素的磁珠、酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体和生物素标记的β人 绒毛膜促性腺激素单克隆抗体,一方面,链霉亲和素偶联时不存在位阻效应, 可均匀连接至磁珠表面,同时链霉亲和素与生物素结合,消除抗体与磁珠的 位阻效应,使得抗体可均匀连接至磁珠表面,易于控制试剂批间差,此外, 亲和素与生物素间的结合呈高度特异性,在具有多层次放大作用提高灵敏度 的同时,并不会增加特异性干扰;另一方面,在检测待测样本的过程中,抗原与抗体结合,样本的β人绒毛膜促性腺激素夹在酶标记的β人绒毛膜促性 腺激素单克隆抗体和生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体之间, 形成“双抗体夹心”结构,只需加入发光底物液并检测发光强度,发光强度 与待测抗原含量呈正比,使用相应的计算方法即可计算出样本中待测抗原的 浓度。本发明通过酶促化学发光法,具有很高的检测灵敏度、检测结果稳定、 重复性好。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案,下面将对实 施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍,显而易见地,下面 描述中的附图仅仅为本发明的一些实施例,对于本领域普通技术人员来讲, 在不付出创造性劳动的前提下,还可以根据这些附图获得其他相关的附图。
图1为本发明实施例1试剂盒的线性范围检测图;
图2为本发明实施例1试剂盒的临床样本测试比对图。
具体实施方式
下面将对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述,显然,所 描述的实施例仅仅是本发明的一部分实施例,而不是全部的实施例。基于本 发明中的实施例,本领域普通技术人员在没有作出创造性劳动前提下所获得 的所有其他实施例,都属于本发明保护的范围。
另外,各个实施例之间的技术方案可以相互结合,但是必须是以本领域 普通技术人员能够实现为基础,当技术方案的结合出现相互矛盾或无法实现 时应当认为这种技术方案的结合不存在,也不在本发明要求的保护范围之内。
实施例中未注明具体条件者,按照常规条件或制造商建议的条件进行。 所用试剂或仪器未注明生产厂商者,均为可以通过市售购买获得的常规产品。
目前用于检测β-HCG的方法主要有胶体金试纸检测法、荧光免疫层析法、 酶联免疫法、化学发光等非均相免疫分析法。胶体金试纸检测法与荧光免疫 层析法均属层析法,两者都有方便快捷,试剂稳定等特点,但胶体金试纸检 测法目前无法实现定量测试,荧光免疫层析法可通过用两条测试线的比值或 测试线与控制线的比值来确定被检测物的量,但二者均有灵敏度低,线性范 围窄的缺点。酶联免疫法操作繁琐,定量检测效果不佳,线性范围窄,测试 结果易受人为因素影响;也有使用均相化学发光免疫分析定量测试β-HCG,但其灵敏度与重复性较非均相化学发光免疫分析来说还是较差的。
鉴于此,本发明提出一种试剂盒及其制备方法和应用,旨在提供一种灵 敏度高、稳定性和重复性好的用于检测β人绒毛膜促性腺激素的含量的试剂 盒。
在本发明提供的试剂盒的一实施例中,所述试剂盒,用于检测β人绒毛 膜促性腺激素的含量,所述试剂盒包括:R1试剂、R2试剂、R3试剂及发光 底物液,其中,R1试剂包括包被有链霉亲和素的磁珠以及pH值为7.2~7.6的 第一缓冲液;R2试剂包括酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体以及pH 值为6.3~6.7的第二缓冲液;R3试剂包括生物素标记的β人绒毛膜促性腺激 素单克隆抗体以及pH值为7.2~7.6的第三缓冲液。
本发明提供的技术方案中,采用酶促化学发光法,选用包被有链霉亲和 素的磁珠、酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体和生物素标记的β人 绒毛膜促性腺激素单克隆抗体,一方面,链霉亲和素为小分子物质,偶联时 不存在位阻效应,可均匀连接至磁珠表面,同时链霉亲和素与生物素结合, 消除抗体与磁珠的位阻效应,使得抗体可均匀连接至磁珠表面,易于控制试 剂批间差,此外,亲和素与生物素间的结合呈高度特异性,在具有多层次放 大作用提高灵敏度的同时,并不会增加特异性干扰,而且其结合特性不会因 反应试剂的高度稀释而受影响,以此很好的避免了易出现的HOOK效应;另 一方面,在检测待测样本的过程中,抗原与抗体结合,样本的β人绒毛膜促 性腺激素夹在酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体和生物素标记的β 人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体之间,形成“双抗体夹心”结构,只需加入 发光底物液并检测发光强度,发光强度与待测抗原含量呈正比,使用相应的 计算方法即可计算出样本中待测抗原的浓度。本发明通过酶促化学发光法,具有很高的检测灵敏度、检测结果稳定、重复性好、检测线性范围宽。
酶促化学发光法相对于其他类型发光来说,反应速度快,在很短时间内 提供正确可靠的结果,有利于信号的检测,提供了试剂盒的灵敏度和特异性 性能。本发明的试剂盒结构简单,成本低廉,大大降低了生产成本。且其操 作简单,更能提高检测效率。此外,亲和素结合生物素的亲和常数可为抗原- 抗体反应的百万倍,二者结合形成复合物的解离常数很小,呈不可逆反应性; 而且酸、碱、变性剂、蛋白水解酶以及有机溶剂均不影响其结合。因此,在 此应用中,产物的稳定性高,从而可降低操作误差,提高测定的精确度。
进一步地,为了提升试剂盒的灵敏度,优选地,第一缓冲液的pH值为 7.4;第二缓冲液的pH值为6.5;第三缓冲液的pH值为7.4。可以理解的是, 上述三个pH值可以只满足其中一个,也可以同时满足,而作为本发明的优选 实施例,上述三个pH值同时满足,得到的试剂盒的灵敏度最高。
优选地,第一缓冲液包括:50mM Tris(三羟甲基氨基甲烷)、0.1%吐 温-20(v/v)、0.1%Proclin300(v/v)、0.9%NaCl(w/v)及1.2%BSA(w/v); 其中,BSA为牛血清蛋白。
第二缓冲液包括:50mM MES(2-吗啉乙磺酸)、0.1%吐温-20(v/v)、 0.1%Proclin300(v/v)、0.9%NaCl(w/v)及1.2%BSA(w/v)。
第三缓冲液包括:50mM Tris、1%B-环糊精(w/v)、1%BSA(w/v)、 0.1%吐温-20(v/v)、0.9%NaCl(w/v)及0.05%Proclin300(v/v)。
对于R1试剂中所述包被有链霉亲和素的磁珠的浓度,本发明不做限制, 优选地,R1试剂中所述包被有链霉亲和素的磁珠的浓度为0.05%~0.1% (w/v),其中,包被有链霉亲和素的磁珠的质量的单位取mg,R1试剂的体 积的单位取ml,也就是说,每100ml的R1试剂中中含有链霉亲和素的磁珠 的质量为0.05~0.1mg。
此外,优选地,R2试剂的酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体中, 酶包括碱性磷酸酶。碱性磷酸酶是一种能够将对应底物去磷酸化的酶,即通 过水解磷酸单酯将底物分子上的磷酸基团除去,并生成磷酸根离子和自由的 羟基,这类底物包括核酸、蛋白、生物碱等。而该脱去磷酸基团的过程被称 为去磷酸化或脱磷酸化。碱性磷酸酶是磷酸酶的一种,磷酸酶的作用与激酶 的作用正相反,激酶是磷酸化酶,可以利用能量分子,如ATP,将磷酸基团 加到对应底物分子上。碱性磷酸酶在碱性环境有最大活力,对来源于细菌中 的ALP来说,其最适pH是8.0,而对来源于牛的ALP则是8.5。
在R2试剂中,本发明对于酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体中 两者的质量比,也不做限制,优选地,所述β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗 体与酶的质量之比为5:(6~10)。
类似地,在R3试剂中,生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体 中,两者的质量比,本发明也不做限制,优选地,所述β人绒毛膜促性腺激 素单克隆抗体与生物素的质量之比为5:(6~10)。
进一步地,本发明实施例提出的试剂盒还包括β人绒毛膜促性腺激素校 准品,β人绒毛膜促性腺激素校准品包括浓度分别为1.2mIU/mL、400mIU/mL、 800mIU/mL、1200mIU/mL、1600mIU/mL、2000mIU/mL的β人绒毛膜促性腺 激素溶液。
此外,本发明实施例提出的试剂盒还包括发光底物液,所述发光底物液 包括AMPPD。AMPPD为1,2-二氧环已烷衍生物,它是一种生物化学领域 中最新的超灵敏的碱性磷酸酶底物,其特点是反应速度快,在很短时间内提 供正确可靠的结果。在它的分子结构中有两个重要部分,一个是联接苯环和 金刚烷的二氧四节环,它可以断裂并发射光子;另一个是磷酸根基团,它维持 着整个分子结构的稳定。在通常情况下,这种化合物很稳定。
本发明进一步提出一种如上所述的试剂盒的制备方法,包括如下步骤:
S10、将包被有链霉亲和素的磁珠加入到第一缓冲液中混合均匀,得到 R1试剂。
本步骤用以制备R1试剂,以下给出本步骤的一具体实施方式:
取50mM Tris、0.1%吐温-20、0.1%Proclin300、0.9%NaCl、1.2%BSA混 合,得到pH值为7.4的第一缓冲液,用第一缓冲液将链霉亲和素磁珠稀释得 到0.05%~0.1%的包被有链霉亲和素的磁珠溶液,即为R1试剂。
S20、将活化后的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体与酶溶液混合反应制 得酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体,将酶标记的β人绒毛膜促性 腺激素单克隆抗体加入到第二缓冲液中混合均匀,得到R2试剂。
具体地,在本发明实施例中,酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗 体的制备方法如下:
向β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体中依次加入PBS缓冲液和EDC水溶 液,活化后加入酶溶液并混匀,避光静置后,在封闭条件下加入Tris缓冲液 进行反应,再加入磷酸二乙脂继续反应,得混合液,将所述混合液除盐纯化 后,加入甘油,得到酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体。
其中,磷酸二乙脂作为封闭剂,作用是终止反应。
以下给出本步骤的一具体实施方式:
取100ul的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体,加入250ul浓度为0.1M, pH值为7.0的PBS(磷酸缓冲盐溶液)缓冲液,混匀,加入20ul新配置的 10.0mg/ml EDC水溶液,活化30min,然后加入200ul浓度为5mg/ml的碱性 磷酸酶溶液混匀,室温避光保存2小时后取出,用含1%BSA的0.1M,pH值 为7.4的Tris缓冲液室温封闭反应30min,再加入0.5%磷酸二乙脂于室温下 继续反应30min,用30KD的超滤柱除盐纯化,收集的剩余体积溶液加一半甘油,保存于-20℃,得到酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体。
取制备的酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体,用第二缓冲液按 酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体与第二缓冲液的体积比为1:500 混合后,即得R2试剂。
S30、将活化后的生物素与β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体混合反应制 得生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体,将所述生物素标记的β 人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体加入到第三缓冲液中混合均匀,得到R3试 剂。
具体地,在本发明实施例中,生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克 隆抗体的制备方法如下:
向活化生物素中依次加入PBS缓冲液和β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗 体水溶液,混合均匀后,静置后离心纯化,得液体,向所述液体中加入甘油, 得到生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体。
以下给出本步骤的一具体实施方式:
取100μL浓度为5.0mg/ml的活化生物素,加入200μL浓度为0.1M,pH 值为8.5的PBS缓冲液,混匀,加入10μL新配置的5.0mg/ml总β人绒毛膜 促性腺激素单克隆抗体水溶液,室温避光反应2小时后取出,脱盐柱离心纯 化,收集离心得到的液体,加一半甘油,保存于-20℃,得到生物素标记的β 人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体。
取制备的生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体,用第三缓冲 液按生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体与第三缓冲液的体积比 为1:1000混合后,即得R3试剂。
可以理解的是,上述R1试剂、R2试剂及R3试剂的制备步骤不分先后顺 序,也即本发明对于步骤S10、S20及S30的先后顺序不做限制。
本发明进一步提出一种β人绒毛膜促性腺激素的含量的检测方法,采用 如上所述的试剂盒,所述β人绒毛膜促性腺激素的含量的检测方法包括以下 步骤:
S100、将待测样本与R2试剂混合均匀,孵育4~6min,再依次加入R3 试剂和R1试剂,继续孵育4~6min后,得到混合液体;
S200、将所述混合液体磁分离得含磁珠物,将含磁珠物清洗后,加入发 光底物液,混合均匀,得到待测液;
S300、检测所述待测液的发光强度;
S400、根据发光强度计算β人绒毛膜促性腺激素的含量。
本发明提出的上述β人绒毛膜促性腺激素的含量的检测方法,在外加磁 场作用下,通过生物素-亲和素系统,并结合酶标记的β人绒毛膜促性腺激素 单克隆抗体,与人绒毛膜促性腺激素形成“双抗体夹心”结构,将免疫反应 形成的复合物与未结合的其他物质分离。去上清后清洗磁微粒复合物,加入 发光底物液,通过发光仪检测反应的发光强度,发光强度与待测抗原含量呈 正比,使用相应的计算方法即可计算出样本中待测抗原的浓度。通过这种酶 促化学发光法,提供一种具有很高的检测灵敏度,检测结果稳定、重复性好、检测线性范围宽的检测方法。
以下给出β人绒毛膜促性腺激素的含量的检测方法的一实施例:
取血清为待测样本,以全自动化学发光仪(CL-2000)为检测工具,加入 20μL的待测样本与100μL R2试剂孵育5min、再加入50μL R3试剂及50 μL R1试剂孵育5min,进行磁分离清洗,清洗完后仪器自动加入底物300μ L后,将反应杯移到光电模块中采集光电强度,仪器自动转换为浓度,显示测 试结果。
以下结合具体实施例和附图对本发明的技术方案作进一步详细说明,应 当理解,以下实施例仅仅用以解释本发明,并不用于限定本发明。
实施例1试剂盒
R1试剂:包被有链霉亲和素的磁珠、第一缓冲液[50mM Tris、0.1%吐温 -20(v/v)、0.1%Proclin300(v/v)、0.9%NaCl(w/v)及1.2%BSA(w/v)], 其中,第一缓冲液的pH值为7.4,包被有链霉亲和素的磁珠的浓度为0.05% mg/ml;
R2试剂:酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体、第二缓冲液[50mM MES、0.1%吐温-20(v/v)、0.1%Proclin300(v/v)、0.9%NaCl(w/v)及 1.2%BSA(w/v)],其中,第二缓冲液的pH值为6.5,β人绒毛膜促性腺激 素单克隆抗体与酶的质量之比为5:6;
R3试剂:生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体,第三缓冲液 [50mMTris、1%B-环糊精(w/v)、1%BSA(w/v)、0.1%吐温-20(v/v)、 0.9%NaCl(w/v)及0.05%Proclin300(v/v)],其中,第三缓冲液的pH值为 7.4,β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体与生物素的质量之比为5:6;
发光底物液:AMPPD;
β人绒毛膜促性腺激素校准品:浓度分别为1.2mIU/mL、400mIU/mL、 800mIU/mL、1200mIU/mL、1600mIU/mL、2000mIU/mL的β人绒毛膜促性腺 激素溶液。
实施例2试剂盒
R1试剂:包被有链霉亲和素的磁珠、第一缓冲液[50mM Tris、0.1%吐温 -20(v/v)、0.1%Proclin300(v/v)、0.9%NaCl(w/v)及1.2%BSA(w/v)], 其中,第一缓冲液的pH值为7.4,包被有链霉亲和素的磁珠的浓度为0.1% mg/ml;
R2试剂:酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体、第二缓冲液[50mM MES、0.1%吐温-20(v/v)、0.1%Proclin300(v/v)、0.9%NaCl(w/v)及 1.2%BSA(w/v)],其中,第二缓冲液的pH值为6.5,β人绒毛膜促性腺激 素单克隆抗体与酶的质量之比为5:10;
R3试剂:生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体,第三缓冲液 [50mMTris、1%B-环糊精(w/v)、1%BSA(w/v)、0.1%吐温-20(v/v)、 0.9%NaCl(w/v)及0.05%Proclin300(v/v)],其中,第三缓冲液的pH值为7.4,β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体与生物素的质量之比为5:10;
发光底物液:AMPPD。
实施例3试剂盒
R1试剂:包被有链霉亲和素的磁珠、第一缓冲液[50mM Tris、0.1%吐温 -20(v/v)、0.1%Proclin300(v/v)、0.9%NaCl(w/v)及1.2%BSA(w/v)], 其中,第一缓冲液的pH值为7.4,包被有链霉亲和素的磁珠的浓度为0.075% mg/ml;
R2试剂:酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体、第二缓冲液[50mM MES、0.1%吐温-20(v/v)、0.1%Proclin300(v/v)、0.9%NaCl(w/v)及 1.2%BSA(w/v)],其中,第二缓冲液的pH值为6.5,β人绒毛膜促性腺激 素单克隆抗体与酶的质量之比为5:8;
R3试剂:生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体,第三缓冲液 [50mMTris、1%B-环糊精(w/v)、1%BSA(w/v)、0.1%吐温-20(v/v)、 0.9%NaCl(w/v)及0.05%Proclin300(v/v)],其中,第三缓冲液的pH值为 7.4,β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体与生物素的质量之比为5:8;
发光底物液:AMPPD;
β人绒毛膜促性腺激素校准品:浓度分别为1.2mIU/mL、400mIU/mL、 800mIU/mL、1200mIU/mL、1600mIU/mL、2000mIU/mL的β人绒毛膜促性腺 激素溶液。
实施例4试剂盒
R1试剂:包被有链霉亲和素的磁珠、第一缓冲液[50mM Tris、0.1%吐温 -20(v/v)、0.1%Proclin300(v/v)、0.9%NaCl(w/v)及1.2%BSA(w/v)], 其中,第一缓冲液的pH值为7.4,包被有链霉亲和素的磁珠的浓度为0.08%;
R2试剂:酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体、第二缓冲液[50mM MES、0.1%吐温-20(v/v)、0.1%Proclin300(v/v)、0.9%NaCl(w/v)及 1.2%BSA(w/v)],其中,第二缓冲液的pH值为6.5,β人绒毛膜促性腺激 素单克隆抗体与酶的质量之比为5:9;
R3试剂:生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体,第三缓冲液[50mMTris、1%B-环糊精(w/v)、1%BSA(w/v)、0.1%吐温-20(v/v)、 0.9%NaCl(w/v)及0.05%Proclin300(v/v)],其中,第三缓冲液的pH值为 7.4,β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体与生物素的质量之比为5:7;
发光底物液:AMPPD;
β人绒毛膜促性腺激素校准品:浓度分别为1.2mIU/mL、400mIU/mL、 800mIU/mL、1200mIU/mL、1600mIU/mL、2000mIU/mL的β人绒毛膜促性腺 激素溶液。
实施例5试剂盒的制备
根据实施例1至4对应的各配比的物质制备试剂盒,包括以下步骤:
(1)R1试剂的制备:取Tris、吐温-20、Proclin300、NaCl、BSA混合, 得到pH值为7.4的第一缓冲液,用第一缓冲液将链霉亲和素磁珠稀释得到包 被有链霉亲和素的磁珠溶液,即为R1试剂。
(2)R2试剂的制备:取β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体,加入pH值 为7.0的PBS(磷酸缓冲盐溶液)缓冲液,混匀,加入新配置的EDC水溶液, 活化,然后加入碱性磷酸酶溶液混匀,室温避光保存2小时后取出,用含BSA 的pH值为7.4的Tris缓冲液室温封闭反应30min,再加入磷酸二乙脂于室温 下继续反应30min,用30KD的超滤柱除盐纯化,收集的剩余体积溶液加一半 甘油,保存于-20℃,得到酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体。取制 备的酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体,用第二缓冲液按酶标记的 β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体与第二缓冲液的体积比为1:500混合后,即 得R2试剂。
(3)R3试剂的制备:取活化生物素,加入pH值为8.5的PBS缓冲液, 混匀,加入β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体水溶液,室温避光反应2小时 后取出,脱盐柱离心纯化,收集离心得到的液体,加一半甘油,保存于-20℃, 得到生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体。取制备的生物素标记 的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体,用第三缓冲液按生物素标记的β人绒 毛膜促性腺激素单克隆抗体与第三缓冲液的体积比为1:1000混合后,即得R3 试剂。
实施例5β人绒毛膜促性腺激素的含量的检测
取血清为待测样本,以全自动化学发光仪(CL-2000)为检测工具,加入 20μL的待测样本与100μL实施例1中的试剂盒的R2试剂孵育5min、再加 入50μL R3试剂及50μL R1试剂孵育5min,进行磁分离清洗,清洗完后仪 器自动向含磁珠物中加入发光底物液300μL后,将反应杯移到光电模块中采 集光电强度,仪器自动转换为浓度,显示测试结果,为31.37mIU/mL。
1、灵敏度的检测
参照CLSI EP17-A文件推荐的实验方案,计算实施例1的试剂盒的灵敏 度,得出试剂盒的灵敏度为1.2mIU/mL,灵敏度较高。
2、线性范围
对实施例1中试剂盒的β人绒毛膜促性腺激素校准品中浓度分别为 1.2mIU/mL、400mIU/mL、800mIU/mL、1200mIU/mL、1600mIU/mL、 2000mIU/mL的β人绒毛膜促性腺激素溶液做线性分析,分别得表1和图1所 示。
表1实施例1试剂盒的线性范围检测结果
浓度(mIU/mL) 发光强度(RLU值)
0 4581
400 691366
800 1197846
1200 1832984
1600 2578413
2000 3148743
计算得线性相关系数r=0.9979,该试剂盒的线性范围为1.2-2000mIU/mL, 具体地,图1中横坐标为样本浓度值(mIU/mL),纵坐标为相对发光强度 (RLU),线性方程为y=1572.6x+3006.3,线性良好。
3、临床样本测试比对
用实施例1的试剂盒与雅培公司试剂盒同时检测临床血清。其检测结果 见图2。以雅培试剂盒测得的β人绒毛膜促性腺激素的含量(雅培Total-βhCG 测值)为横坐标X,浓度为mIU/mL,以实施例1测定的测得的β人绒毛膜促 性腺激素的含量(本试剂盒Total-βhCG测值)为纵坐标y,浓度单位为mIU/mL,作回归方程,得图2,请参阅图2,两者的相关方程为: y=1.0036x+0.2055,相关系数为0.9989,K值为1.0036,其相关性很好。
4、准确度测定
取实施例1的试剂盒测定浓度为31.09mIU/mL和1016.44mIU/mL的样本, 平行测定3次,取均值,测试结果如下表2,
表2实施例1的试剂盒的准确度测定
测定样品的浓度(mIU/mL) 测定结果均值(mIU/mL) 相对偏差(%)
31.09 29.52 -5.05
1016.44 1023.71 0.72
由表2可以看出,实施例1的试剂盒相对偏差<10%。
5、批间差测定
取三个批次的实施例1的试剂盒分别测试浓度为31.09mIU/mL和 1016.44mIU/mL的样本,各重复10次,计算其变异系数CV,得表3,可以看 出,两个的CV<15%,表明稳定性良好。
表3实施例1的试剂盒的批间差测定
Figure BDA0002836724040000141
Figure BDA0002836724040000151
综上所述,本发明提出的试剂盒,在检测β人绒毛膜促性腺激素的含量 时,灵敏度和准确度高、稳定性和重复性好,可广泛应用于β人绒毛膜促性 腺激素的含量的检测中。
以上仅为本发明的优选实施例,并非因此限制本发明的专利范围,对于 本领域的技术人员来说,本发明可以有各种更改和变化。凡在本发明的精神 和原则之类,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包括在本发明的专 利保护范围内。

Claims (10)

1.一种试剂盒,其特征在于,用于检测β人绒毛膜促性腺激素的含量,其特征在于,所述试剂盒包括:
R1试剂,包括包被有链霉亲和素的磁珠以及pH值为7.2~7.6的第一缓冲液;
R2试剂,包括酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体以及pH值为6.3~6.7的第二缓冲液;以及,
R3试剂,包括生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体以及pH值为7.2~7.6的第三缓冲液。
2.如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于,所述第一缓冲液的pH值为7.4;和/或,
所述第二缓冲液的pH值为6.5;和/或,
所述第三缓冲液的pH值为7.4。
3.如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于,所述第一缓冲液包括:50mM Tris、0.1%吐温-20(v/v)、0.1%Proclin300(v/v)、0.9%NaCl(w/v)及1.2%BSA(w/v);和/或,
所述第二缓冲液包括:50mM MES、0.1%吐温-20(v/v)、0.1%Proclin300(v/v)、0.9%NaCl(w/v)及1.2%BSA(w/v);和/或,
所述第三缓冲液包括:50mM Tris、1%B-环糊精(w/v)、1%BSA(w/v)、0.1%吐温-20(v/v)、0.9%NaCl(w/v)及0.05%Proclin300(v/v)。
4.如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于,所述R1试剂中所述包被有链霉亲和素的磁珠的浓度为0.05%~0.1%(w/v);和/或,
所述R2试剂的酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体中,酶包括碱性磷酸酶。
5.如权利要求4所述的试剂盒,其特征在于,所述R2试剂的酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体中,所述β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体与酶的质量之比为5:(6~10)。
6.如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于,所述R3试剂的生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体中,所述β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体与生物素的质量之比为5:(6~10)。
7.如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括β人绒毛膜促性腺激素校准品,所述β人绒毛膜促性腺激素校准品包括浓度分别为1.2mIU/mL、400mIU/mL、800mIU/mL、1200mIU/mL、1600mIU/mL、2000mIU/mL的β人绒毛膜促性腺激素溶液。
8.如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于,所述的试剂盒还包括发光底物液,所述发光底物液包括AMPPD。
9.一种如权利要求1-8任意一项所述的试剂盒的制备方法,其特征在于,包括如下步骤:
将包被有链霉亲和素的磁珠加入到第一缓冲液中混合均匀,得到R1试剂;
将活化后的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体与酶溶液混合反应制得酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体,将酶标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体加入到第二缓冲液中混合均匀,得到R2试剂;
将活化后的生物素与β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体混合反应制得生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体,将所述生物素标记的β人绒毛膜促性腺激素单克隆抗体加入到第三缓冲液中混合均匀,得到R3试剂。
10.一种β人绒毛膜促性腺激素的含量的检测方法,其特征在于,采用如权利要求1至8任意一项所述的试剂盒,所述β人绒毛膜促性腺激素的含量的检测方法包括以下步骤:
将待测样本与R2试剂混合均匀,孵育4~6min,再依次加入R3试剂和R1试剂,继续孵育4~6min后,得到混合液体;
将所述混合液体磁分离得含磁珠物,将含磁珠物清洗后,加入发光底物液,混合均匀,得到待测液;
检测所述待测液的发光强度;
根据发光强度计算β人绒毛膜促性腺激素的含量。
CN202011480594.2A 2020-12-15 2020-12-15 试剂盒及其制备方法和应用 Pending CN112710858A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202011480594.2A CN112710858A (zh) 2020-12-15 2020-12-15 试剂盒及其制备方法和应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202011480594.2A CN112710858A (zh) 2020-12-15 2020-12-15 试剂盒及其制备方法和应用

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN112710858A true CN112710858A (zh) 2021-04-27

Family

ID=75543305

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202011480594.2A Pending CN112710858A (zh) 2020-12-15 2020-12-15 试剂盒及其制备方法和应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN112710858A (zh)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN114002444A (zh) * 2021-11-09 2022-02-01 南京岚煜生物科技有限公司 β-人绒毛膜促性腺激素检测试剂盒及其制备方法
CN114544973A (zh) * 2022-02-23 2022-05-27 深圳天辰医疗科技有限公司 试剂盒及其制备方法和应用

Citations (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101377490A (zh) * 2007-08-30 2009-03-04 北京科美东雅生物技术有限公司 用于检测疾病相关标志物的磁微粒分离化学发光免疫分析测定试剂盒及其制备方法
CN102998467A (zh) * 2012-11-20 2013-03-27 博奥赛斯(天津)生物科技有限公司 β人绒毛膜促性腺激素磁微粒化学发光免疫定量检测试剂盒及其制备方法
CN103048475A (zh) * 2012-12-18 2013-04-17 苏州浩欧博生物医药有限公司 游离人绒毛膜促性腺激素β亚单位的纳米磁微粒化学发光测定试剂盒及其制备和检测方法
CN103076458A (zh) * 2012-12-16 2013-05-01 北京利德曼生化股份有限公司 游离人绒毛膜促性腺激素β亚单位磁微粒化学发光法定量测定试剂盒及其制备方法
CN103443626A (zh) * 2011-02-15 2013-12-11 协和梅迪克斯株式会社 链霉亲和素结合磁性粒子及其制造方法
CN107796803A (zh) * 2017-11-03 2018-03-13 太原瑞盛生物科技有限公司 一种游离β人绒毛膜促性腺激素的磁微粒化学发光检测试剂盒及制备方法
WO2018140719A1 (en) * 2017-01-26 2018-08-02 Confer Health, Inc. Magnetic particle-based immunoassay and methods of using the same
CN109001471A (zh) * 2018-08-03 2018-12-14 迪瑞医疗科技股份有限公司 游离人绒毛膜促性腺激素β亚单位化学发光检测试剂盒及其制备方法和使用方法
CN110887969A (zh) * 2019-12-10 2020-03-17 宁波奥丞生物科技有限公司 游离人绒毛膜促性腺激素β亚单位的检测试剂盒
CN110967493A (zh) * 2018-09-29 2020-04-07 深圳天辰医疗科技有限公司 一种维生素b12测定试剂盒及其制备方法

Patent Citations (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101377490A (zh) * 2007-08-30 2009-03-04 北京科美东雅生物技术有限公司 用于检测疾病相关标志物的磁微粒分离化学发光免疫分析测定试剂盒及其制备方法
CN103443626A (zh) * 2011-02-15 2013-12-11 协和梅迪克斯株式会社 链霉亲和素结合磁性粒子及其制造方法
CN102998467A (zh) * 2012-11-20 2013-03-27 博奥赛斯(天津)生物科技有限公司 β人绒毛膜促性腺激素磁微粒化学发光免疫定量检测试剂盒及其制备方法
CN103076458A (zh) * 2012-12-16 2013-05-01 北京利德曼生化股份有限公司 游离人绒毛膜促性腺激素β亚单位磁微粒化学发光法定量测定试剂盒及其制备方法
CN103048475A (zh) * 2012-12-18 2013-04-17 苏州浩欧博生物医药有限公司 游离人绒毛膜促性腺激素β亚单位的纳米磁微粒化学发光测定试剂盒及其制备和检测方法
WO2018140719A1 (en) * 2017-01-26 2018-08-02 Confer Health, Inc. Magnetic particle-based immunoassay and methods of using the same
CN107796803A (zh) * 2017-11-03 2018-03-13 太原瑞盛生物科技有限公司 一种游离β人绒毛膜促性腺激素的磁微粒化学发光检测试剂盒及制备方法
CN109001471A (zh) * 2018-08-03 2018-12-14 迪瑞医疗科技股份有限公司 游离人绒毛膜促性腺激素β亚单位化学发光检测试剂盒及其制备方法和使用方法
CN110967493A (zh) * 2018-09-29 2020-04-07 深圳天辰医疗科技有限公司 一种维生素b12测定试剂盒及其制备方法
CN110887969A (zh) * 2019-12-10 2020-03-17 宁波奥丞生物科技有限公司 游离人绒毛膜促性腺激素β亚单位的检测试剂盒

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN114002444A (zh) * 2021-11-09 2022-02-01 南京岚煜生物科技有限公司 β-人绒毛膜促性腺激素检测试剂盒及其制备方法
CN114544973A (zh) * 2022-02-23 2022-05-27 深圳天辰医疗科技有限公司 试剂盒及其制备方法和应用

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE3115115C2 (de) Immunologisches Verfahren
USRE29169E (en) Process for the demonstration and determination of reaction components having specific binding affinity for each other
CA1294870C (en) Method to achieve a standard linear curve in a sandwich immunoassay
CN112710858A (zh) 试剂盒及其制备方法和应用
CN113433318A (zh) 一种检测甲胎蛋白异质体afp-l3含量的试剂盒及其检测方法和应用
JPH083489B2 (ja) 免疫学的検定法
CN109001471A (zh) 游离人绒毛膜促性腺激素β亚单位化学发光检测试剂盒及其制备方法和使用方法
CN111175496A (zh) 妊娠相关蛋白a磁微粒化学发光检测试剂盒及其使用方法
EP0249357A2 (en) Methods of immunoassay
CN109085343B (zh) 一种测定抗Jo-1抗体的试剂盒及检测方法
CN115436632A (zh) 一种胃蛋白酶原ii检测试剂盒及其应用
Vankrieken et al. Rapid, automated quantification of total human chorionic gonadotropin in serum by a chemiluminescent enzyme immunometric assay
CN116027051A (zh) 一种β-HCG化学发光免疫检测试剂盒及其制备方法和检测方法
EP0389301A2 (en) Reagent complex for immunoassay
Zhang et al. A new method for broadening the detection range of immunoassay and its application in β-hCG quantitative detection
CN114316016B (zh) 一种Jo-1抗原生物素化的方法及抗Jo-1抗体检测试剂盒
CN114814247A (zh) 一种胎盘生长因子的检测试剂盒及其制备方法
CN114544973A (zh) 试剂盒及其制备方法和应用
CN114924065A (zh) 胃蛋白酶原ⅰ的检测试剂盒及其制备方法与应用
CN112730853A (zh) 抑制素b检测试剂盒和抑制素b的检测方法
CN112710857A (zh) f-β-hCG蛋白检测试剂盒和检测方法
CN112198321A (zh) 抗缪勒氏管激素检测试剂盒及其制备方法和使用方法
Tissot et al. Polyclonal antibody-based enzyme-linked immunosorbent assay of alpha 1-acid glycoprotein
CN114740194A (zh) 一种试剂盒、以及胃蛋白酶原ii的检测方法
CN117250341A (zh) 一种抗甲状腺过氧化物酶抗体测定试剂盒及其制备方法和检测方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20210427