CN112062835A - 一种比伐芦定的制备方法 - Google Patents

一种比伐芦定的制备方法 Download PDF

Info

Publication number
CN112062835A
CN112062835A CN202010858578.6A CN202010858578A CN112062835A CN 112062835 A CN112062835 A CN 112062835A CN 202010858578 A CN202010858578 A CN 202010858578A CN 112062835 A CN112062835 A CN 112062835A
Authority
CN
China
Prior art keywords
fmoc
coupled
diea
hobt
gly
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN202010858578.6A
Other languages
English (en)
Other versions
CN112062835B (zh
Inventor
曹康平
叶鑫发
杨柱柱
张丽君
谢义鹏
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Sichuan Haihui Pharmaceutical Co ltd
Sichuan Hairong Pharmaceutical Co Ltd Yangtze River Pharmaceutical Group
Original Assignee
Sichuan Haihui Pharmaceutical Co ltd
Sichuan Hairong Pharmaceutical Co Ltd Yangtze River Pharmaceutical Group
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Sichuan Haihui Pharmaceutical Co ltd, Sichuan Hairong Pharmaceutical Co Ltd Yangtze River Pharmaceutical Group filed Critical Sichuan Haihui Pharmaceutical Co ltd
Priority to CN202010858578.6A priority Critical patent/CN112062835B/zh
Publication of CN112062835A publication Critical patent/CN112062835A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN112062835B publication Critical patent/CN112062835B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/81Protease inhibitors
    • C07K14/815Protease inhibitors from leeches, e.g. hirudin, eglin
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02PCLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
    • Y02P20/00Technologies relating to chemical industry
    • Y02P20/50Improvements relating to the production of bulk chemicals
    • Y02P20/55Design of synthesis routes, e.g. reducing the use of auxiliary or protecting groups

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

本发明提供了一种比伐芦定的制备方法,属于多肽药物制备方法技术领域。该方法以2‑CTC树脂为载体,采用固相法合成三肽片段Boc‑D‑Phe‑Pro‑Arg(Pbf)‑OH和六肽片段Fmoc‑Pro‑Gly‑Gly‑Gly‑Gly‑Asn(Dod)‑OH;再以Wang树脂或2‑CTC树脂为载体,通过逐步法偶联Fmoc保护氨基酸,获得中间体(10‑20)‑肽树脂,脱除Fmoc保护基后,依次逐个偶联以上的六肽片段和三肽片段,经裂解获得比伐芦定粗品,最后经纯化获得比伐芦定精品。此方法极大地提高了产品收率和纯度,精品纯度达99.89%,单杂均控制在0.1%以下,也降低了成本,利于大规模、产业化生产。

Description

一种比伐芦定的制备方法
技术领域
本发明属于多肽药物制备方法技术领域,具体涉及一种比伐芦定的制备方法。
背景技术
比伐芦定,英文通用名称为Bivalirudin,商品名为Angiomax,氨基酸序列如下:
H-D-Phe1-Pro2-Arg3-Pro4-Gly5-Gly6-Gly7-Gly8-Asn9-Gly10-Asp11-Phe12-Glu13-Glu14-Ile15-Pro16-Glu17-Glu18-Tyr19-Leu20-OH(SEQ ID NO.1)
分子式:C98H138N24O33,分子量:2180.32,CAS:128270-60-0。
比伐芦定是一种人工合成的抗凝血药物,为凝血酶(thrombin)直接的、特异的、可逆性抑制剂,是水蛭素的20肽类似物(线性肽)。比伐芦定能与凝血酶催化位点和阴离子外结合位点发生特异性结合,直接抑制凝血酶的活性,从而抑制凝血酶所催化和诱导的反应;比伐芦定与凝血酶的结合过程是可逆的,凝血酶通过缓慢的酶解比伐芦定Arg3-Pro4之间的肽键可使凝血酶恢复原来的生物活性。1990年Maraganore,Feton和Kline在美国专利US5196404中,据此设计了凝血酶二价抑制剂比伐芦定。C-端12肽为水蛭素片段,能够结合阴离子结合位点;N-端四肽D-Phe1-Pro2-Arg3-Pro4(SEQ ID NO.2)与活性位点结合;中间用四个连续的甘氨酸Gly5-Gly6-Gly7-Gly8(SEQ ID NO.3)连接。因其Arg3-Pro4会被凝血酶缓慢水解而游离出活性位点,故为可逆性二价凝血酶直接抑制剂。比伐芦定于2000年获准在美国上市,其注射剂为白色疏松状物或无定形固体比伐芦定主要作为抗凝剂,用于成人择期经皮冠状动脉介入治疗(PCI)。
基于比伐芦定的结构特征,在其制备过程中涉及的主要技术难点及其现有的解决方案情况如下:
(1)多苷和缺苷杂质(Bivalirudin±1Gly和Bivalirudin±2Gly):一直以来这类杂质都是比伐芦定的最大技术难点,因其结构中含有Gly-Gly-Gly-Gly片段,由于Gly自身特性,极易产生Bivalirudin±1Gly和Bivalirudin±2Gly的杂质,这类杂质与比伐芦定的极性很接近,分离度小,在后续纯化中很难去除。为此,杭州诺泰制药技术有限公司专利CN102260323A通过液相合成Fmoc-Gly-Gly-Gly-Gly-OH四肽片段,然后将其接到肽树脂上,但由于该四肽片段在各类溶剂中的溶解性较差,常规的柱层析、调酸碱和重结晶等纯化手段都难以获得较好纯度的四肽片段,多苷和缺苷杂质会一直保留到比伐芦定产品中。济南康和医药科技有限公司专利CN109134615A使用液相法合成三肽片段Fmoc-Pro-Gly-Gly-OH和二肽片段Fmoc-Gly-Gly-OH,再逐个接入比伐芦定肽序列中,虽然降低了Bivalirudin±1Gly和Bivalirudin±2Gly杂质,但是三肽片段和二肽片段在接入肽链时溶解度差,反应活性低,导致该三肽和二肽缺失肽杂质增多。济南康和医药科技有限公司专利CN104031127A(CN104031127B)和兰州大学专利CN102532274A(CN102532274B)都报道了通过液相合成Fmoc-Arg(Pbf)-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-OH(SEQ ID NO.4)六肽片段,降低了Bivalirudin±1Gly和Bivalirudin±2Gly杂质,但是该六肽无法通过重结晶或萃取等方式提纯,而且末端的Arg在接入肽链脱Fmoc保护基时,容易消旋,产生消旋杂质D-Arg-Bivalirudin。齐鲁制药有限公司专利CN103242431A采取液相中合成Fmoc-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-OH(SEQ IDNO.5)五肽片段,有效避免Bivalirudin±1Gly和Bivalirudin±2Gly的杂质产生。虽然该五肽片段的溶解性比Fmoc-Gly-Gly-Gly-Gly-OH有所改善,但是五肽片段的提纯难度较大,无法通过萃取而只能从水中获得,可操作性差,不易工业生产;同时,需用DMF重结晶,但其中的多苷和缺苷杂质无法除去,纯度较低,质量可控性较差。哈尔滨吉象隆生物技术有限公司专利201510005428.X中使用Fmoc-Gly-Gly-OH为原料直接偶联到比伐芦定序列中,但是研究发现原料Fmoc-Gly-Gly-OH中存在游离的H-Gly-OH及H-Gly-Gly-OH氨基酸,将增加产生Bivalirudin±1Gly、Bivalirudin±2Gly杂质产生的风险。成都圣诺生物制药有限公司专利CN102286076A和CN102532274A使用了Fmoc-Gly-Gly-Gly-Gly-Asn(R)-Gly-Asp(OtBu)-OH(SEQ ID NO.6)作为片段,减少了Bivalirudin±1Gly和Bivalirudin±2Gly杂质,但是,该片段合成工艺复杂,收率低,片段在接入肽链时溶解度差,反应活性低,质量可控性差,不易工业生产。
(2)Asn9引起的降解杂质:Fmoc-Asn(Trt)9-Gly10-肽树脂在脱Fmoc保护基接后续氨基酸时,Asn易与Gly在碱性条件下发生五元重排副反应,并加速Asn降解为Asp和β-Asp。专利通过先合成九肽片段Fmoc-D-Phe-Pro-Arg(Pbf)-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-Asn(Trt)-OH(SEQ ID NO.7),再接到主链(10-20)-肽树脂上,这样减少了Asn接入肽链后重复经历脱Fmoc保护基的次数,从而达到降低Asn降解杂质。但Fmoc-Asn(Trt)-OH本身由于Trt保护基的空间结构问题,容易发生β折叠而促进Asn降解和消旋,不仅难以控制Asn降解,还能导致消旋杂质D-Asn9-Bivalirudin的增多;此外,该九肽片段的合成中仍无法避免(1)中的多苷和缺苷杂质,同时该片段的溶解性差,反应活性低,反应时该片段的投料量需大大过量,成本较高,不利于工业化生产。
综上所述,需要一种适合工业化生产、质量可控的比伐芦定制备方法。
发明内容
为了解决上述技术问题,本发明提供了一种新的比伐芦定的制备方法,它包括以下步骤:
(1)使用2-CTC树脂,采用多肽固相合成法逐一偶联Fmoc保护氨基酸,分别合成三肽片段Boc-D-Phe-Pro-Arg(Pbf)-OH和六肽片段Fmoc-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-Asn(Dod)-OH;
(2)使用Wang树脂或2-CTC树脂,采用多肽固相合成法,按比伐芦定序列从C端向N端偶联,逐一偶联Fmoc保护氨基酸,得到中间体(10-20)-肽树脂,所述中间体(10-20)-肽树脂的结构为:
Fmoc-Gly-Asp(OtBu)-Phe-Glu(OtBu)-Glu(OtBu)-Ile-Pro-Glu(OtBu)-Glu(OtBu)-Tyr(tBu)-Leu-树脂;
(3)采用多肽固相合成法,在中间体(10-20)-肽树脂上依次逐个偶联六肽片段Fmoc-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-Asn(Dod)-OH和三肽片段Boc-D-Phe-Pro-Arg(Pbf)-OH,得到侧链全保护的比伐芦定肽树脂;
(4)侧链全保护的比伐芦定肽树脂经TFA体系裂解后,得到比伐芦定粗品;
(5)比伐芦定粗品经粗分、反相HPLC纯化,再经等电点沉淀,得到比伐芦定精品。
进一步地,
所述2-CTC树脂或Wang树脂采用多肽固相合成法逐一偶联Fmoc保护氨基酸时,先偶联一个Fmoc保护氨基酸;
优选地,
所述2-CTC树脂偶联Fmoc保护氨基酸的方法如下:在2-CTC树脂中加入二氯甲烷、Fmoc保护氨基酸和DIEA反应,再加入甲醇继续反应,洗涤,干燥,即得;
更优选地,所述2-CTC树脂、Fmoc保护氨基酸和DIEA的摩尔比为(1~5):(1~5):(1~5);
和/或,所述2-CTC树脂、二氯甲烷、甲醇的质量体积比为1g:(1~10)mL:(1~10)mL;
和/或,所述加入缩合剂DIEA的反应温度为20~25℃,反应时间为1~3h;
和/或,所述加入甲醇后的反应温度为20~25℃,反应时间为30~60min;
和/或,所述2-CTC树脂为2-CTC Resin树脂;
进一步优选地,所述2-CTC树脂、Fmoc保护氨基酸和DIEA的摩尔比为1:(0.8~1.5):(2~3);
和/或,所述2-CTC树脂、二氯甲烷、甲醇的质量体积比为1g:10mL:1mL;
和/或,所述2-CTC Resin树脂的替代度为0.1~0.9mmol/g;
和/或,所述洗涤为用二氯甲烷洗涤;
更进一步优选地,
步骤(1)中,合成三肽片段Boc-D-Phe-Pro-Arg(Pbf)-OH时,2-CTC树脂偶联的Fmoc保护氨基酸为Fmoc-Arg(Pbf)-OH;合成六肽片段Fmoc-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-Asn(Dod)-OH时,2-CTC树脂偶联的Fmoc保护氨基酸为Fmoc-Asn(Dod)-OH;
步骤(2)中,2-CTC树脂偶联的Fmoc保护氨基酸为Fmoc-Leu-OH;
更进一步优选地,
所述2-CTC树脂偶联Fmoc-Leu-OH得到的Fmoc-Leu-CTC替代度为0.35~0.75mmol/g。
进一步地,
所述Wang树脂偶联Fmoc保护氨基酸的方法如下:在Wang树脂中加入二氯甲烷;将Fmoc保护氨基酸、HOBT、DMF、DIEA和DMAP混合后倒入Wang树脂中反应,加入醋酸酐继续反应,洗涤,干燥,即得;
优选地,所述Wang树脂和二氯甲烷的质量体积比为1g:(1~10)mL;
和/或,所述Wang树脂、Fmoc保护氨基酸、HOBT、DIEA和DMAP的摩尔比为(1~5):(1~5):(1~5):(1~5):(0.1~1);
和/或,所述Wang树脂、DMF和醋酸酐的质量体积比为1g:(1~10)mL:(0.1~1)mL;
和/或,所述倒入Wang树脂中反应的反应温度为20~25℃,反应时间为1~5h;
和/或,所述加入醋酸酐后反应温度为20~25℃,反应时间为1~5h;
更优选地,所述Wang树脂和二氯甲烷的质量体积比为1g:10mL;
和/或,所述Wang树脂、Fmoc保护氨基酸、HOBT、DIEA和DMAP的摩尔比为1:2:2:2:(0.25~0.3);
和/或,所述Wang树脂、DMF和醋酸酐的质量体积比为1g:10mL:0.1mL;
进一步优选地,所述Wang树脂的替代度为0.1~0.7mmol/g;
和/或,所述洗涤为用DMF洗涤;
更进一步优选地,所述Wang树脂偶联的Fmoc保护氨基酸为Fmoc-Leu-OH;
更进一步优选地,
所述Wang树脂偶联Fmoc-Leu-OH得到的Fmoc-Leu-Wang替代度为0.25~0.65mmol/g。
进一步地,
步骤(1)中,所述合成三肽片段Boc-D-Phe-Pro-Arg(Pbf)-OH时,2-CTC树脂先采用多肽固相合成法偶联Fmoc-Pro-OH,再采用多肽固相合成法偶联Boc-D-Phe-OH,最后切割,即得;
优选地,
所述偶联Fmoc-Pro-OH时,使用的缩合剂选择Cl-HOBt/DIC、HOBt/DIC、PyBOP/HOBt/DIEA、BOP-Cl/HOBt/DIEA、HATU/HOBt/DIEA、TBTU/HOBt/DIEA、HBTU/HOBt/DIEA、COMU/DIEA;
和/或,所述偶联Fmoc-Pro-OH时,偶联的溶剂选自DMF、DCM、NMP、DMSO中的一种或多种组合;
和/或,所述偶联Boc-D-Phe-OH时,使用的缩合剂选自Cl-HOBt/DIC、HOBt/DIC、COMU/DIEA;
和/或,所述偶联Boc-D-Phe-OH时,偶联的溶剂选自DMF、DCM、NMP、DMSO中的一种或多种组合;
更优选地,
所述偶联Fmoc-Pro-OH时,使用的缩合剂选自TBTU/HOBt/DIEA;
和/或,所述偶联Fmoc-Pro-OH时,偶联的溶剂选自DMF和DCM混合溶液;
和/或,所述偶联Boc-D-Phe-OH时,使用的缩合剂选自COMU/DIEA;
和/或,所述偶联Boc-D-Phe-OH时,偶联的溶剂选自DMF和DCM混合溶液;
进一步优选地,
所述偶联Fmoc-Pro-OH时,Fmoc-Pro-OH以及缩合剂中TBTU、HOBt、DIEA的摩尔比为(1~5):(1~5):(1~5):(1~5);
和/或,所述偶联Fmoc-Pro-OH时,DMF和DCM混合溶液中DMF和DCM的体积比为(1~5):(1~5);
和/或,所述偶联Boc-D-Phe-OH时,Boc-D-Phe-OH以及缩合剂中COMU、DIEA的摩尔比为(1~5):(1~5):(1~5);
和/或,所述偶联Boc-D-Phe-OH时,DMF和DCM混合溶液中DMF和DCM的体积比为(1~5):(1~5);
更进一步优选地,
所述偶联Fmoc-Pro-OH时,Fmoc-Pro-OH以及缩合剂中TBTU、HOBt、DIEA的摩尔比为1∶1∶1∶1;
和/或,所述偶联Fmoc-Pro-OH时,DMF和DCM混合溶液中DMF和DCM的体积比为3:1;
和/或,所述偶联Boc-D-Phe-OH时,Boc-D-Phe-OH以及缩合剂中COMU、DIEA的摩尔比为1:1:1;
和/或,所述偶联Boc-D-Phe-OH时,DMF和DCM混合溶液中DMF和DCM的体积比为3:1。
进一步地,所述切割为将偶联后的树脂加入溶剂中,反应后,洗涤,浓缩,在浓缩液中加入甲叔醚,析出固体后过滤,洗涤滤渣、干燥,即得;
优选地,所述溶剂为三氟乙醇和DCM的混合溶液;
和/或,所述反应为25~30℃下反应2~5h;
和/或,所述洗涤为用DCM洗涤;
和/或,所述甲叔醚的温度在10℃以下;
更优选地,所述三氟乙醇和DCM的混合溶液中,三氟乙醇和DCM的体积比为1:(3~5)。
进一步地,
步骤(1)中,所述合成六肽片段Fmoc-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-Asn(Dod)-OH时,2-CTC树脂采用多肽固相合成法依次偶联Fmoc保护氨基酸,最后切割,即得;所述Fmoc保护氨基酸依次为Fmoc-Gly-OH、Fmoc-Gly-OH、Fmoc-Gly-OH、Fmoc-Gly-OH、Fmoc-Pro-OH;
优选地,合成六肽片段Fmoc-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-Asn(Dod)-OH时,使用的缩合剂选自Cl-HOBt/DIC、HOBt/DIC、PyBOP/HOBt/DIEA、BOP-Cl/HOBt/DIEA、HATU/HOBt/DIEA、TBTU/HOBt/DIEA、HBTU/HOBt/DIEA、COMU/DIEA;
和/或,偶联的溶剂选自DMF和DCM的混合溶剂与NMP或DMSO中的一种或两种,组合成三相或四相溶剂体系;
和/或,反应溶剂中加入以下表面活性剂:20~40%(v/v)的曲拉通或5-10%(v/v)的硫氢化钾;反应温度采用33-38℃,反应时间采用2-4h;
和/或,所述切割的方法如前述;
更优选地,
合成六肽片段Fmoc-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-Asn(Dod)-OH时,使用的缩合剂选自BOP-Cl/HOBt/DIEA;
和/或,偶联的溶剂选自DMF、DCM、NMP、DMSO混合溶液;
和/或,反应溶剂中加入以下表面活性剂:20~40%(v/v)的曲拉通;和/或,反应温度采用35℃;和/或,反应时间采用3h;
进一步优选地,
所述Fmoc保护氨基酸以及缩合剂中的BOP-Cl、HOBt、DIEA的摩尔比为(1~5):(1~5):(1~5):(1~5);
和/或,所述溶剂中DMF、DCM、NMP、DMSO的体积比(1~5):(1~5):(1~5):(1~5);
和/或,所述表面活性剂为25%(v/v)的曲拉通;
更进一步优选地,
所述Fmoc保护氨基酸以及缩合剂中BOP-Cl、HOBt、DIEA的摩尔比为1:1:1:1;
和/或,所述溶剂中DMF、DCM、NMP、DMSO的体积比4:2:2:2。
进一步地,
步骤(2)中,所述偶联Fmoc保护氨基酸时,使用的缩合剂选自Cl-HOBt/DIC、HOBt/DIC、PyBOP/HOBt/DIEA、BOP-Cl/HOBt/DIEA、HATU/HOBt/DIEA、TBTU/HOBt/DIEA、HBTU/HOBt/DIEA、COMU/DIEA;
和/或,步骤(2)中,所述偶联Fmoc保护氨基酸时,偶联的溶剂选自DMF、DCM、NMP、DMSO中的一种或多种组合;
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,使用的缩合剂选自Cl-HOBt/DIC、HOBt/DIC、PyBOP/HOBt/DIEA、BOP-Cl/HOBt/DIEA、HATU/HOBt/DIEA、TBTU/HOBt/DIEA、HBTU/HOBt/DIEA、COMU/DIEA;
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,偶联的溶剂选自DMF和DCM的混合溶剂与NMP或DMSO中的一种或两种,组合成三相或四相溶剂体系;
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,反应溶剂中加入以下表面活性剂:20~40%(v/v)的曲拉通或5-10%(v/v)的硫氢化钾;反应温度采用33-38℃,反应时间采用2-4h;
和/或,步骤(3)中,所述偶联三肽片段时,使用的缩合剂选自Cl-HOBt/DIC、HOBt/DIC、PyBOP/HOBt/DIEA、BOP-Cl/HOBt/DIEA、HATU/HOBt/DIEA、TBTU/HOBt/DIEA、HBTU/HOBt/DIEA、COMU/DIEA;
和/或,步骤(3)中,所述偶联三肽片段时,偶联的溶剂选自DMF、DCM、NMP、DMSO中的一种或多种组合;
优选地,
步骤(2)中,所述偶联Fmoc保护氨基酸时,使用的缩合剂选自TBTU/HOBt/DIEA;
和/或,步骤(2)中,所述偶联Fmoc保护氨基酸时,偶联的溶剂选自DMF和DCM的混合溶液;
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,使用的缩合剂选自Cl-HOBt/DIC;
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,偶联的溶剂选自DMF、DCM、NMP、DMSO混合溶液;
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,反应溶剂中加入以下表面活性剂:20~40%(v/v)的曲拉通;和/或,反应温度采用35℃;和/或,反应时间采用3h;
和/或,步骤(3)中,所述偶联三肽片段时,使用的缩合剂选自COMU/DIEA;
和/或,步骤(3)中,偶联三肽片段时,偶联的溶剂选自DMF和DCM的混合溶液;
更优选地,
步骤(2)中,所述偶联Fmoc保护氨基酸时,Fmoc保护氨基酸以及缩合剂中的TBTU、HOBt、DIEA的摩尔比为(1~5):(1~5):(1~5):(1~5);
和/或,步骤(2)中,所述偶联Fmoc保护氨基酸时,偶联的溶剂中DMF和DCM的体积比(1~5):(1~5);
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,六肽片段以及缩合剂中的Cl-HOBt和DIC的摩尔比为(1~5):(1~5):(1~5);
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,偶联的溶剂中DMF、DCM、NMP、DMSO的体积比为(1~5):(1~5):(1~5):(1~5);
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,所述表面活性剂为25%(v/v)的曲拉通;
和/或,步骤(3)中,所述偶联三肽片段时,三肽片段以及缩合剂中的COMU和DIEA的摩尔比为(1~5):(1~5):(1~5);
和/或,步骤(3)中,偶联三肽片段时,偶联的溶剂中DMF和DCM的体积比(1~5):(1~5);
进一步优选地,
步骤(2)中,所述偶联Fmoc保护氨基酸时,Fmoc保护氨基酸以及缩合剂中的TBTU、HOBt、DIEA的摩尔比为1:1:1:1;
和/或,步骤(2)中,所述偶联Fmoc保护氨基酸时,偶联的溶剂中DMF和DCM的体积比3:1;
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,六肽片段以及缩合剂中的Cl-HOBt和DIC的摩尔比为1:1:1;
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,偶联的溶剂中DMF、DCM、NMP、DMSO的体积比为4:2:2:2;
和/或,步骤(3)中,所述偶联三肽片段时,三肽片段以及缩合剂中的COMU和DIEA的摩尔比为1:1:1;
和/或,步骤(3)中,偶联三肽片段时,偶联的溶剂中DMF和DCM的体积比3:1。
进一步地,
所述多肽固相合成法中,脱保护时使用的脱保护液为哌啶和DMF混合溶液;所述混合溶液中,哌啶浓度为10~30%;所述脱保护液中加入1~3wt%的HOBT;
和/或,所述多肽固相合成法中,脱保护的条件为20~30℃下反应5~10min;
和/或,所述多肽固相合成法中,偶联反应的条件为30~35℃反应2~5h;
优选地,所述混合溶液中,哌啶浓度为20%;所述脱保护液中加入1.35wt%的HOBT;
和/或,所述多肽固相合成法中,脱保护后使用DMF洗涤;
和/或,所述偶联反应结束后使用DMF洗涤,干燥。
进一步地,步骤(4)中,所述TFA体系为裂解液;所述裂解液由TFA、甲硫醚、苯酚、1,2-乙二硫醇、三异丙基硅烷和水中一种或多种组成;
和/或,所述裂解温度为20-30℃;
和/或,所述裂解时间为2-4h;
优选地,裂解液由TFA、甲硫醚、苯酚、1,2-乙二硫醇、三异丙基硅烷和水组成;
和/或,所述裂解温度为25℃;
更优选地,所述TFA、甲硫醚、苯酚、1,2-乙二硫醇、三异丙基硅烷和水的体积比为(50~100):(1~5):(1~5):(1~5):(1~5):(1~5);
进一步优选地,所述TFA、甲硫醚、苯酚、1,2-乙二硫醇、三异丙基硅烷和水的体积比为85:2:2:5:4:2。
进一步地,步骤(5)中,所述粗分为将比伐芦定粗品溶于溶剂后,过滤,用聚合物填料进行粗分;
和/或,所述反相HPLC纯化采用梯度洗脱方法;
和/或,所述等电点沉淀时pH为3~4;
优选地,
所述粗分时,溶剂为20%的乙腈水溶液;其中,所述水为0.1%的TFA水溶液;
和/或,所述粗粉采用等度洗脱的方法;
和/或,所述等电点沉淀时pH为3.7±0.1。
本发明中v/v代表体积与体积的比,m/v代表质量与体积的比。
本发明中“多肽固相合成法”为本领域常用的方法,即为将前一步反应得到的Fmoc保护氨基酸-树脂脱去Fmoc保护基后,再与下一个保护氨基酸偶联反应。
本发明中“-氨基酸(Rx)-”括号里的Rx为氨基酸的侧链保护基团;本发明中“Fmoc-氨基酸(Rx)-OH”为保护氨基酸,Fmoc为氨基酸的氨基保护基团。
与现有技术相比,本发明具有下述有益效果:
(1)解决多苷和缺苷杂质(Bivalirudin±1Gly和Bivalirudin±2Gly)的项目技术难点:因比伐芦定结构中含有Gly-Gly-Gly-Gly片段,由于Gly自身特性,极易产生多苷和缺苷杂质,这类杂质与比伐芦定的极性很接近,分离度小,在后续纯化中很难去除。本发明采取固相合成六肽片段,在使用Gly合成该片段时,加入表面活性剂和强溶解性溶剂并控制温度,解决了多个Gly偶联时反应活性差,容易多苷和缺苷的技术难点;同时,该六肽片段的溶解性较好,解决了-Gly-Gly-Gly-Gly-序列引起的溶解性差和反应活性低的技术难点,以及解决了现有专利报道的与-Gly-Gly-Gly-Gly-相关片段溶解性差、难以纯化的问题,此外,在偶联该六肽片段时加入了表面活性剂和强溶解性溶剂,极大地提高了反应活性,有效控制了多苷和缺苷杂质,提高了比伐芦定的纯度和收率,降低合成成本。
(2)解决Asn降解杂质问题:Fmoc-Asn(Trt)9-Gly10-肽树脂在脱Fmoc保护基接后续氨基酸时,Asn易与Gly在碱性条件下发生五元重排副反应,并加速Asn降解为Asp和β-Asp。本发明突破常规的氨基酸,将Asn的Trt保护基换为Dod,Dod保护基为4,4′-二甲氧基二苯甲基,对碱稳定,可以抑制Asn在碱性条件下的重排和降解,可以有效控制水解杂质Asp-Bivalirudin和β-Asp-Bivalirudin。
(3)等电点沉淀法提纯:本发明提出等电点沉淀法除杂以提纯。根据氨基酸和多肽具有两性的特征,等电点也是氨基酸和多肽的固有属性,不同氨基酸或不同的多肽,其等电点均不同。等电点沉淀法对酸碱度敏感,因此,在相同PH下,不同分子量的氨基酸或多肽的溶解度都不同。利用这一特性,可以有效控制多聚体杂质和多苷/缺苷杂质(Bivalirudin±1Gly和Bivalirudin±2Gly)。多聚体杂质作为多肽不可避免的杂质,国家药品评审中心对该杂质也有明确的要求。其它专利对多聚体杂质少有报道。
此外,使用三肽片段和COMU缩合剂可以避免消旋杂质L-Phe-Bivalirudin。
综上,本发明使用了三肽和六肽片段合成工艺,所得比伐芦定精品收率较高(大于78.0%),纯度较高(大于99.80%);解决了多苷/缺苷、水解杂质、消旋杂质和多聚体等技术问题,每个杂质占比均低于0.05%,等电点沉淀法将片段中多苷杂质从0.14%降低至0.05%以下;解决了4个Gly偶联时易多苷/缺苷和反应活性差等问题;结合国家药品评审中心对药品申报的要求,关注并解决了多聚体杂质难题。本发明降低了成本,利于大规模、产业化生产。
显然,根据本发明的上述内容,按照本领域的普通技术知识和惯用手段,在不脱离本发明上述基本技术思想前提下,还可以做出其它多种形式的修改、替换或变更。
以下通过实施例形式的具体实施方式,对本发明的上述内容再作进一步的详细说明。但不应将此理解为本发明上述主题的范围仅限于以下的实例。凡基于本发明上述内容所实现的技术均属于本发明的范围。
附图说明
图1为本发明合成比伐芦定的工艺路线图。
图2为本发明制备的比伐芦定的HPLC图谱。
图3为本发明制备的比伐芦定的高分辨质谱图。
具体实施方式
本发明具体实施方式中使用的原料、设备均为已知产品,通过购买市售产品获得。
本发明中涉及的英文缩写所对应的中文名称见表1所示:
表1.本发明中涉及的英文缩写所对应的中文名称
Figure BDA0002647322840000101
Figure BDA0002647322840000111
比伐芦定肽脂树为:
X-Y-Gly10-Asp(OtBu)11-Phe12-Glu(OtBu)13-Glu(OtBu)14-Ile15-Pro16-Glu(OtBu)17-Glu(OtBu)18-Tyr(tBu)19-Leu20-树脂(SEQ ID NO.8),其中,X为三肽Boc-D-Phe1-Pro2-Arg(Pbf)3-,Y为六肽-Pro4-Gly5-Gly6-Gly7-Gly8-Asn(Dod)9-(SEQ ID NO.9)。
本实施例使用的保护氨基酸如表2所示:
表2.使用的保护氨基酸
Figure BDA0002647322840000112
Figure BDA0002647322840000121
图1为本发明合成比伐芦定的工艺路线图。
具体制备方法如下:
实施例一、三肽片段Boc-D-Phe-Pro-Arg(Pbf)-OH的制备
(1)Fmoc-Arg(Pbf)-CTC的制备:将100g(90mmol)替代度为0.9mmol/g的2-CTCResin树脂,加入1000ml二氯甲烷,混合40min后,再加入31.8g(90mmol)的Fmoc-Arg(Pbf)-OH,最后加入23.2g(180mmol)的DIEA,于20-25℃条件下混合反应1h后,加入甲醇100ml,继续混合反应30min后,抽滤,树脂用二氯甲烷洗5次,每次1000ml。即得到Fmoc-Arg(Pbf)-CTC,经紫外检测替代度为0.85mmol/g,共90mmol。
(2)偶联Fmoc-Pro-OH:①去保护,去保护液为20%哌啶/DMF溶液(v/v),该溶液中含有1.35%的HOBT(m/v)。即在105.88g(90mmol)Fmoc-Arg(Pbf)-CTC中加入该去保护液1000ml,于20-30℃条件下混合5min后,抽滤,加入DMF1000ml,混合3min后,抽滤;再加入以上去保护液1000ml,于20-30℃条件下混合10min后,抽滤,加入DMF1000ml,混合洗涤3min后,抽滤,再重复用DMF洗涤8次。②偶联,即在2L反应瓶中,依次加入60.7g(180mmol)的Fmoc-Pro-OH、57.8g(180mmol)的TBTU和24.3g(180mmol)的HOBT,加入3:1的DMF/DCM(v/v)溶液1000ml,于0-5℃条件下加入23.2g(180mmol)的DIEA,激活5min。将以上激活液缓慢加入到去保护后的树脂中,于30-35℃条件下混合2h。待反应结束后,Kaiser Test检测呈阴性后,抽滤,加入DMF1000ml,混合3min后,抽滤。重复用DMF洗涤6次,即得Fmoc-Pro-Arg(Pbf)-CTC树脂。
(3)偶联Boc-D-Phe-OH:①先对步骤(2)制得的Fmoc-Pro-Arg(Pbf)-CTC树脂去保护,去保护操作方法及用量与(2)相同。②偶联,即在2L反应瓶中,依次加入47.8g(180mmol)的Boc-D-Phe-OH、77.1g(180mmol)的COMU,加入3:1的DMF/DCM(v/v)溶液1000ml,于0-5℃条件下加入23.2g(180mmol)的DIEA,激活5min。将以上激活液缓慢加入到去保护后的树脂中,于30-35℃条件下混合反应2h。待反应结束后,Kaiser Test检测呈阴性后,抽滤,加入DMF1000ml,混合3min后,抽滤,如此重复洗涤6次。再用DCM抽洗3次,每次1000ml。最后用甲醇收缩抽洗2次,每次加入甲醇1000ml。于20-30℃条件下真空干燥箱中干燥4h。即得Boc-D-Phe-Pro-Arg(Pbf)-CTC。
(4)切割:将(3)中的Boc-D-Phe-Pro-Arg(Pbf)-CTC肽树脂全部加入到1000ml三氟乙醇/DCM溶液(v/v=1:3)中,在25℃条件下搅拌反应2h后,过滤,滤饼用DCM溶液抽洗3次,每次300ml,合并滤液,于30℃条件下浓缩至剩余体积约200ml。将该浓缩液缓慢倒入冷冻的甲叔醚(-10℃以下)中,搅拌30min充分析固体后,过滤,滤渣用甲叔醚抽洗3次后,将该固体真空干燥(25℃,4h),即得到65.6g三肽片段(FW:756.35),收率为96.41%,HPLC纯度为99.42%,其中,消旋杂质Boc-L-Phe-Pro-Arg(Pbf)-OH低于0.1%。
实施例二、六肽片段Fmoc-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-Asn(Dod)-OH的制备
(1)Fmoc-Asn(Dod)-CTC的制备:将100g(90mmol)替代度为0.9mmol/g的2-CTCResin树脂,加入1000ml二氯甲烷,混合40min后,再加入78.5g(135mmol)的Fmoc-Asn(Dod)-OH,最后加入34.8g(270mmol)的DIEA,于20-25℃条件下混合反应1h后,加入甲醇100ml,继续混合反应30min。30min后,抽滤,树脂用二氯甲烷洗5次,每次1000ml。即得到Fmoc-Asn(Dod)-CTC,经紫外检测替代度为0.71mmol/g,共80mmol。
(2)去保护和偶联氨基酸:①去保护,操作方法及用量完全与实施例一中(2)的去保护相同。②偶联,即在2L反应瓶中,依次加入71.4g的Fmoc-Gly-OH(240mmol)、61.1g的BOP-Cl(240mmol)和32.4g的HOBt(240mmol),溶于1000ml的DMF/DCM/NMP/DMSO(v:v:v:v=4:2:2:2)混合溶液中,加入250ml(25%,v/v)的曲拉通,于0-5℃条件下加入30.3g的DIEA(240mmol),激活5min。将以上激活液缓慢加入到去保护后的树脂中,于35℃条件下混合3h。待反应结束后,Kaiser Test检测呈阴性后,抽滤,加入DMF1000ml,混合3min后,抽滤。重复用DMF洗涤6次。按照比伐芦定序列继续偶联剩余的Fmoc保护氨基酸,重复以上去保护和偶联操作(投料倍数及缩合剂用量一致),依次逐个偶联的氨基酸为:Fmoc-Gly-OH、Fmoc-Gly-OH、Fmoc-Gly-OH、Fmoc-Pro-OH。偶联结束后,先用DCM抽洗3次,每次1000ml,再用甲醇收缩两次,每次加入甲醇1000ml,于20-30℃条件下真空干燥箱中干燥4h。即得Fmoc-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-Asn(Dod)-CTC。
(3)切割:操作方法及用量完全与实施例一中(4)的切割相同,即得到68.55g六肽片段(FW:905.35),收率为94.69%,HPLC纯度为98.65%,其中,多苷/缺苷杂质Bivalirudin±2Gly未检出,Bivalirudin+1Gly占比0.14%,Bivalirudin-1Gly占比0.03%。
实施例三、Fmoc-Leu-树脂的制备
(1)Fmoc-Leu-CTC的制备:将60g(54mmol)替代度为0.9mmol/g的2-CTC Resin树脂,加入600ml二氯甲烷,混合40min后,再加入15.3g(43.2mmol)的Fmoc-Leu-OH,最后加入21g(162mmol)的DIEA,于20-25℃条件下混合反应1h后,加入甲醇60ml,继续混合反应30min。30min后,抽滤,树脂用二氯甲烷洗5次,每次600ml,再用甲醇收缩两次,每次加入甲醇600ml,于20-30℃条件下真空干燥箱中干燥4h。即得到74g的Fmoc-Leu-CTC,经紫外检测替代度为0.60mmol/g,共44.4mmol。
(2)Fmoc-Leu-Wang的制备:将80g(56mmol)替代度为0.7mmol/g的Wang Resin树脂,加入800ml二氯甲烷,混合40min后,抽滤。称取40.1g(112mmol)的Fmoc-Leu-OH和15.1g(112mmol)的HOBT于反应瓶中,加入800ml的DMF,于0-5℃下搅拌溶清,再加入14.5g的DIEA(112mmol)和2g(16mmol)的DMAP,保持0-5℃下搅拌激活5min后,倒入上述Wang树脂中,于20-25℃条件下混合反应2h后,加入醋酸酐8ml,继续混合反应1h后,抽滤,树脂用DMF洗5次,每次800ml,再用甲醇收缩两次,每次加入甲醇800ml,于20-30℃条件下真空干燥箱中干燥4h。即得到98.2g的Fmoc-Leu-Wang,经紫外检测替代度为0.51mmol/g,共50.0mmol。
实施例四、侧链全保护比伐芦定-CTC肽树脂的制备
(1)中间体(10-20)的制备
即Fmoc-Gly10-Asp(OtBu)11-Phe12-Glu(OtBu)13-Glu(OtBu)14-Ile15-Pro16-Glu(OtBu)17-Glu(OtBu)18-Tyr(tBu)19-Leu20-CTC的制备。
称取61.6g(37mmol)实施例三中(1)制备的Fmoc-Leu-CTC,加入600ml二氯甲烷,混合40min后,抽滤。①先去保护,去保护液为20%哌啶/DMF溶液(v/v),该溶液中含有1.35%的HOBT(m/v)。即在61.6g的Fmoc-Leu-CTC中加入该去保护液600ml,于20-30℃条件下混合5min后,抽滤,加入DMF600ml,混合3min后,抽滤;再加入以上去保护液600ml,于20-30℃条件下混合10min后,抽滤,加入DMF600ml,混合洗涤3min后,抽滤,重复用DMF洗涤8次。②然后偶联,即在1L反应瓶中,依次加入51g(111mmol)的Fmoc-Tyr(tBu)-OH、35.6g(111mmol)的TBTU和15g(111mmol)的HOBT,加入3:1的DMF/DCM(v/v)溶液600ml,于0-5℃条件下加入14.5g(111mmol)的DIEA,激活5min。将以上激活液缓慢加入到去保护后的树脂中,于30-35℃条件下混合2h。待反应结束后,Kaiser Test检测呈阴性后,抽滤,加入DMF600ml,混合3min后,抽滤,重复用DMF洗涤6次。按照比伐芦定序列继续偶联剩余的Fmoc保护氨基酸,重复以上去保护和偶联操作(投料倍数及缩合剂用量一致),依次逐个偶联的氨基酸为:Fmoc-Glu(OtBu)-OH、Fmoc-Glu(OtBu)-OH、Fmoc-Pro-OH、Fmoc-Ile-OH、Fmoc-Glu(OtBu)-OH、Fmoc-Glu(OtBu)-OH、Fmoc-Phe-OH、Fmoc-Asp(OtBu)-OH、Fmoc-Gly-OH,即得到中间体(10-20)的肽树脂。
(2)中间体(4-20)的制备
即Fmoc-Pro4-Gly5-Gly6-Gly7-Gly8-Asn(Dod)9-Gly10-Asp(OtBu)11-Phe12-Glu(OtBu)13-Glu(OtBu)14-Ile15-Pro16-Glu(OtBu)17-Glu(OtBu)18-Tyr(tBu)19-Leu20-CTC(SEQID NO.10)的制备。
将(1)中的中间体(10-20)肽树脂去保护,去保护操作及用量与(1)相同。然后偶联六肽片段Fmoc-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-Asn(Dod)-OH,即在1L反应瓶中,依次加入67g(74mmol)的六肽片段、12.6g(74mmol)的Cl-HOBt,加入DMF/DCM/NMP/DMSO(v:v:v:v=4:2:2:2)溶液600ml,再加入150ml(25%,v/v)的曲拉通,于0-5℃条件下加入9.3g(74mmol)的DIC,激活5min。将以上激活液缓慢加入到去保护的中间体(10-20)肽树脂中,于35℃条件下混合3h。待反应结束后,Kaiser Test检测呈阴性后,抽滤,加入DMF600ml,混合3min后,抽滤。重复用DMF洗涤6次。即得到中间体(4-20)的肽树脂。
(3)侧链全保护比伐芦定-CTC肽树脂的制备
将(2)中的中间体(4-20)肽树脂去保护,去保护操作及用量与(1)相同。然后偶联三肽片段Boc-D-Phe-Pro-Arg(Pbf)-OH,即在1L反应瓶中,依次加入56g(74mmol)的三肽片段、31.7g(74mmol)的COMU,加入3:1的DMF/DCM(v/v)溶液600ml,于0-5℃条件下加入9.5g(74mmol)的DIEA,激活5min。将以上激活液缓慢加入到去保护的中间体(4-20)肽树脂中,于30-35℃条件下混合反应2h。待反应结束后,Kaiser Test检测呈阴性后,抽滤,加入DMF600ml,混合3min后,抽滤,如此重复洗涤6次。再用DCM抽洗3次,每次600ml。最后用甲醇收缩2次,每次加入甲醇600ml。于20-30℃条件下真空干燥箱中干燥4h。即得到160.4g侧链全保护比伐芦定-CTC肽树脂。
实施例五、侧链全保护比伐芦定-Wang肽树脂的制备
称取72.5g(37mmol)实施例三中(2)的Fmoc-Leu-Wang,加入600ml二氯甲烷,混合40min后,抽滤。按照比伐芦定序列继续偶联剩余的Fmoc保护氨基酸,去保护和偶联操作与实施例四完全相同(投料倍数及缩合剂用量一致),依次逐个偶联的氨基酸或片段为:Fmoc-Tyr(tBu)-OH、Fmoc-Glu(OtBu)-OH、Fmoc-Glu(OtBu)-OH、Fmoc-Pro-OH、Fmoc-Ile-OH、Fmoc-Glu(OtBu)-OH、Fmoc-Glu(OtBu)-OH、Fmoc-Phe-OH、Fmoc-Asp(OtBu)-OH、Fmoc-Gly-OH、六肽片段、三肽片段,经干燥得到164.7g侧链全保护比伐芦定-Wang肽树脂。
实施例六、比伐芦定粗品的制备
于0-5℃条件下,将实施例四中的侧链全保护比伐芦定-CTC肽树脂160.4g全部加入到1.6L裂解试剂中,裂解液的体积比为TFA:甲硫醚:苯酚:1,2-乙二硫醇:三异丙基硅烷:水=85:2:2:5:4:2,裂解温度为25℃,裂解时间为2h。反应混合物使用砂芯漏斗过滤,收集滤液,树脂再用少量TFA洗涤3次,合并滤液和洗涤液后进行减压浓缩,浓缩至旋转瓶内浓缩液的重量约为浓缩前总重量的30%,然后将浓缩液缓慢加入到预冷的5L甲基叔丁基醚中,沉降过夜后离心5次,每次用甲基叔丁基醚800mL,得到白色固体粉末,先用氮气吹干4h后,再用真空干燥箱干燥10小时,取出称重,即得比伐芦定粗品80.12g,收率为99.33%,HPLC纯度为95.98%。
实施例七、比伐芦定粗品的制备
于0-5℃条件下,将实施例五中的侧链全保护比伐芦定-Wang肽树脂164.7g全部加入到1.65L裂解试剂中,裂解液的体积比为TFA:甲硫醚:苯酚:1,2-乙二硫醇:三异丙基硅烷:水=85:2:2:5:4:2,裂解温度为25℃,裂解时间为2h。反应混合物使用砂芯漏斗过滤,收集滤液,树脂再用少量TFA洗涤3次,合并滤液后减压浓缩,减压浓缩至滤液体积约为原始体积的30%,然后将浓缩液缓慢加入到预冷的5L甲基叔丁基醚中,沉降过夜后离心5次,每次用甲基叔丁基醚800mL,得到白色固体粉末,先用氮气吹干4h后,再用真空干燥箱干燥10小时,取出称重,即得比伐芦定粗品80.37g,收率为99.64%,HPLC纯度为96.51%。
实施例八、比伐芦定精品的制备
(1)粗分:将实施例六的80.12g比伐芦定粗品溶于20%的乙腈/水溶液(v/v),其中,水溶液为0.1%的TFA水溶液(v/v)。用0.45μm滤膜过滤,用聚合物填料进行粗分,粗分条件如下:
色谱柱:UniPs 30-100,30μm,
Figure BDA0002647322840000162
150×250mm;
流动相:A相:20mM甲酸铵水溶液
B相:乙腈
流速:300ml/min
检测波长:220nm。
采用等度洗脱,即45%乙腈,循环进样纯化。取粗品溶液上样于色谱柱中,启动流动相洗脱,收集主峰,得到粗分样品溶液。
(2)反相HPLC纯化:
色谱柱:Kromasil-C18 10-100,10μm,
Figure BDA0002647322840000161
150×250mm
流动相:A相:0.15%TFA水溶液
B相:乙腈
流速:300ml/min
检测波长:220nm
将(1)中得到的粗分样品溶液在30℃条件下浓缩,浓缩至乙腈的体积占比在5%以下后,直接进样。采用梯度洗脱,循环上样方法,先用10%的乙腈平衡30min,再将B相的体积比在60min之内由10%上升至80%,并保持15min。采集图谱,观测吸收度的变化,收集主峰并合并合格的样品溶液。
(3)等电点沉淀法:
将(2)中得到的样品溶液在25℃条件下浓缩,除去乙腈后,搅拌状态下,使用0.5%的TFA水溶液(v/v)调节PH至3.7±0.1时,析出白色固体。固体用pH3.7的TFA水溶液洗涤三次后,收集固体并真空干燥,得到63.17g比伐芦定精品,收率78.32%,纯度99.82%,其中,水解杂质Asp-Bivalirudin占比0.01%,杂质β-Asp-Bivalirudin未检出,多苷杂质Bivalirudin+1Gly占比0.04%,其余多苷/缺苷杂质未检出,消旋杂质L-Phe-Bivalirudin占比0.02%,多聚体杂质占比0.02%。
实施例九:比伐芦定精品的制备
将实施例七的80.37g比伐芦定粗品按实施例八的方法制备,经粗分、反相HPLC纯化和等电点沉淀法,干燥后,得到63.53g比伐芦定精品,收率78.76%,纯度99.89%,其中,水解杂质Asp-Bivalirudin占比0.01%,杂质β-Asp-Bivalirudin未检出,多苷杂质Bivalirudin+1Gly占比0.03%,其余多苷/缺苷杂质未检出,消旋杂质L-Phe-Bivalirudin占比0.01%,多聚体杂质占比0.02%。
对本发明制备得到的比伐芦定精品高效液相色谱测定,HPLC图谱如图2所示。
对实施例九制备得到比伐芦定精品进行高分辨质谱测定,比伐芦定的理论分子量为2180.29,其高分辨质谱图如图3所示,分子量显示为1091.00400[M+2H]2+,与理论值相符。
综上,本发明使用了三肽和六肽片段合成工艺,所得比伐芦定精品收率较高(大于78.0%),纯度较高(大于99.80%);解决了多苷/缺苷、水解杂质、消旋杂质和多聚体等技术问题,每个杂质占比均低于0.05%,等电点沉淀法将片段中多苷杂质从0.14%降低至0.05%以下;解决了4个Gly偶联时易多苷/缺苷和反应活性差等问题;结合国家药品评审中心对药品申报的要求,关注并解决了多聚体杂质难题。本发明降低了成本,利于大规模、产业化生产。
SEQUENCE LISTING
<110> 扬子江药业集团四川海蓉药业有限公司
四川海汇药业有限公司
<120> 一种比伐芦定的制备方法
<130> GY191-2020P0110544CC
<160> 10
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 20
<212> PRT
<213> 人工序列
<400> 1
Phe Pro Arg Pro Gly Gly Gly Gly Asn Gly Asp Phe Glu Glu Ile Pro
1 5 10 15
Glu Glu Tyr Leu
20
<210> 2
<211> 4
<212> PRT
<213> 人工序列
<400> 2
Phe Pro Arg Pro
1
<210> 3
<211> 4
<212> PRT
<213> 人工序列
<400> 3
Gly Gly Gly Gly
1
<210> 4
<211> 6
<212> PRT
<213> 人工序列
<400> 4
Arg Pro Gly Gly Gly Gly
1 5
<210> 5
<211> 5
<212> PRT
<213> 人工序列
<400> 5
Pro Gly Gly Gly Gly
1 5
<210> 6
<211> 7
<212> PRT
<213> 人工序列
<400> 6
Gly Gly Gly Gly Asn Gly Asp
1 5
<210> 7
<211> 9
<212> PRT
<213> 人工序列
<400> 7
Phe Pro Arg Pro Gly Gly Gly Gly Asn
1 5
<210> 8
<211> 11
<212> PRT
<213> 人工序列
<400> 8
Gly Asp Phe Glu Glu Ile Pro Glu Glu Tyr Leu
1 5 10
<210> 9
<211> 6
<212> PRT
<213> 人工序列
<400> 9
Pro Gly Gly Gly Gly Asn
1 5
<210> 10
<211> 17
<212> PRT
<213> 人工序列
<400> 10
Pro Gly Gly Gly Gly Asn Gly Asp Phe Glu Glu Ile Pro Glu Glu Tyr
1 5 10 15
Leu

Claims (10)

1.一种比伐芦定的制备方法,其特征在于:它包括如下步骤:
(1)使用2-CTC树脂,采用多肽固相合成法逐一偶联Fmoc保护氨基酸,分别合成三肽片段Boc-D-Phe-Pro-Arg(Pbf)-OH和六肽片段Fmoc-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-Asn(Dod)-OH;
(2)使用Wang树脂或2-CTC树脂,采用多肽固相合成法,按比伐芦定序列从C端向N端偶联,逐一偶联Fmoc保护氨基酸,得到中间体(10-20)-肽树脂,所述中间体(10-20)-肽树脂的结构为:
Fmoc-Gly-Asp(OtBu)-Phe-Glu(OtBu)-Glu(OtBu)-Ile-Pro-Glu(OtBu)-Glu(OtBu)-Tyr(tBu)-Leu-树脂;
(3)采用多肽固相合成法,在中间体(10-20)-肽树脂上依次逐个偶联六肽片段Fmoc-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-Asn(Dod)-OH和三肽片段Boc-D-Phe-Pro-Arg(Pbf)-OH,得到侧链全保护的比伐芦定肽树脂;
(4)侧链全保护的比伐芦定肽树脂经TFA体系裂解后,得到比伐芦定粗品;
(5)比伐芦定粗品经粗分、反相HPLC纯化,再经等电点沉淀,得到比伐芦定精品。
2.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于:
所述2-CTC树脂或Wang树脂采用多肽固相合成法逐一偶联Fmoc保护氨基酸时,先偶联一个Fmoc保护氨基酸;
优选地,
所述2-CTC树脂偶联Fmoc保护氨基酸的方法如下:在2-CTC树脂中加入二氯甲烷、Fmoc保护氨基酸和DIEA反应,再加入甲醇继续反应,洗涤,干燥,即得;
更优选地,所述2-CTC树脂、Fmoc保护氨基酸和DIEA的摩尔比为(1~5):(1~5):(1~5);
和/或,所述2-CTC树脂、二氯甲烷、甲醇的质量体积比为1g:(1~10)mL:(1~10)mL;
和/或,所述加入缩合剂DIEA的反应温度为20~25℃,反应时间为1~3h;
和/或,所述加入甲醇后的反应温度为20~25℃,反应时间为30~60min;
和/或,所述2-CTC树脂为2-CTC Resin树脂;
进一步优选地,所述2-CTC树脂、Fmoc保护氨基酸和DIEA的摩尔比为1:(0.8~1.5):(2~3);
和/或,所述2-CTC树脂、二氯甲烷、甲醇的质量体积比为1g:10mL:1mL;
和/或,所述2-CTC Resin树脂的替代度为0.1~0.9mmol/g;
和/或,所述洗涤为用二氯甲烷洗涤;
更进一步优选地,
步骤(1)中,合成三肽片段Boc-D-Phe-Pro-Arg(Pbf)-OH时,2-CTC树脂偶联的Fmoc保护氨基酸为Fmoc-Arg(Pbf)-OH;合成六肽片段Fmoc-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-Asn(Dod)-OH时,2-CTC树脂偶联的Fmoc保护氨基酸为Fmoc-Asn(Dod)-OH;
步骤(2)中,2-CTC树脂偶联的Fmoc保护氨基酸为Fmoc-Leu-OH;
更进一步优选地,
所述2-CTC树脂偶联Fmoc-Leu-OH得到的Fmoc-Leu-CTC替代度为0.35~0.75mmol/g。
3.根据权利要求2所述的制备方法,其特征在于:
所述Wang树脂偶联Fmoc保护氨基酸的方法如下:在Wang树脂中加入二氯甲烷;将Fmoc保护氨基酸、HOBT、DMF、DIEA和DMAP混合后倒入Wang树脂中反应,加入醋酸酐继续反应,洗涤,干燥,即得;
优选地,所述Wang树脂和二氯甲烷的质量体积比为1g:(1~10)mL;
和/或,所述Wang树脂、Fmoc保护氨基酸、HOBT、DIEA和DMAP的摩尔比为(1~5):(1~5):(1~5):(1~5):(0.1~1);
和/或,所述Wang树脂、DMF和醋酸酐的质量体积比为1g:(1~10)mL:(0.1~1)mL;
和/或,所述倒入Wang树脂中反应的反应温度为20~25℃,反应时间为1~5h;
和/或,所述加入醋酸酐后反应温度为20~25℃,反应时间为1~5h;
更优选地,所述Wang树脂和二氯甲烷的质量体积比为1g:10mL;
和/或,所述Wang树脂、Fmoc保护氨基酸、HOBT、DIEA和DMAP的摩尔比为1:2:2:2:(0.25~0.3);
和/或,所述Wang树脂、DMF和醋酸酐的质量体积比为1g:10mL:0.1mL;
进一步优选地,所述Wang树脂的替代度为0.1~0.7mmol/g;
和/或,所述洗涤为用DMF洗涤;
更进一步优选地,所述Wang树脂偶联的Fmoc保护氨基酸为Fmoc-Leu-OH;
更进一步优选地,
所述Wang树脂偶联Fmoc-Leu-OH得到的Fmoc-Leu-Wang替代度为0.25~0.65mmol/g。
4.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于:
步骤(1)中,所述合成三肽片段Boc-D-Phe-Pro-Arg(Pbf)-OH时,2-CTC树脂先采用多肽固相合成法偶联Fmoc-Pro-OH,再采用多肽固相合成法偶联Boc-D-Phe-OH,最后切割,即得;
优选地,
所述偶联Fmoc-Pro-OH时,使用的缩合剂选择Cl-HOBt/DIC、HOBt/DIC、PyBOP/HOBt/DIEA、BOP-Cl/HOBt/DIEA、HATU/HOBt/DIEA、TBTU/HOBt/DIEA、HBTU/HOBt/DIEA、COMU/DIEA;
和/或,所述偶联Fmoc-Pro-OH时,偶联的溶剂选自DMF、DCM、NMP、DMSO中的一种或多种组合;
和/或,所述偶联Boc-D-Phe-OH时,使用的缩合剂选自Cl-HOBt/DIC、HOBt/DIC、COMU/DIEA;
和/或,所述偶联Boc-D-Phe-OH时,偶联的溶剂选自DMF、DCM、NMP、DMSO中的一种或多种组合;
更优选地,
所述偶联Fmoc-Pro-OH时,使用的缩合剂选自TBTU/HOBt/DIEA;
和/或,所述偶联Fmoc-Pro-OH时,偶联的溶剂选自DMF和DCM混合溶液;
和/或,所述偶联Boc-D-Phe-OH时,使用的缩合剂选自COMU/DIEA;
和/或,所述偶联Boc-D-Phe-OH时,偶联的溶剂选自DMF和DCM混合溶液;
进一步优选地,
所述偶联Fmoc-Pro-OH时,Fmoc-Pro-OH以及缩合剂中TBTU、HOBt、DIEA的摩尔比为(1~5):(1~5):(1~5):(1~5);
和/或,所述偶联Fmoc-Pro-OH时,DMF和DCM混合溶液中DMF和DCM的体积比为(1~5):(1~5);
和/或,所述偶联Boc-D-Phe-OH时,Boc-D-Phe-OH以及缩合剂中COMU、DIEA的摩尔比为(1~5):(1~5):(1~5);
和/或,所述偶联Boc-D-Phe-OH时,DMF和DCM混合溶液中DMF和DCM的体积比为(1~5):(1~5);
更进一步优选地,
所述偶联Fmoc-Pro-OH时,Fmoc-Pro-OH以及缩合剂中TBTU、HOBt、DIEA的摩尔比为1:1:1:1;
和/或,所述偶联Fmoc-Pro-OH时,DMF和DCM混合溶液中DMF和DCM的体积比为3:1;
和/或,所述偶联Boc-D-Phe-OH时,Boc-D-Phe-OH以及缩合剂中COMU、DIEA的摩尔比为1:1:1;
和/或,所述偶联Boc-D-Phe-OH时,DMF和DCM混合溶液中DMF和DCM的体积比为3:1。
5.根据权利要求4所述的制备方法,其特征在于:所述切割为将偶联后的树脂加入溶剂中,反应后,洗涤,浓缩,在浓缩液中加入甲叔醚,析出固体后过滤,洗涤滤渣、干燥,即得;
优选地,所述溶剂为三氟乙醇和DCM的混合溶液;
和/或,所述反应为25~30℃下反应2~5h;
和/或,所述洗涤为用DCM洗涤;
和/或,所述甲叔醚的温度在10℃以下;
更优选地,所述三氟乙醇和DCM的混合溶液中,三氟乙醇和DCM的体积比为1:(3~5)。
6.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于:
步骤(1)中,所述合成六肽片段Fmoc-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-Asn(Dod)-OH时,2-CTC树脂采用多肽固相合成法依次偶联Fmoc保护氨基酸,最后切割,即得;所述Fmoc保护氨基酸依次为Fmoc-Gly-OH、Fmoc-Gly-OH、Fmoc-Gly-OH、Fmoc-Gly-OH、Fmoc-Pro-OH;
优选地,合成六肽片段Fmoc-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-Asn(Dod)-OH时,使用的缩合剂选自Cl-HOBt/DIC、HOBt/DIC、PyBOP/HOBt/DIEA、BOP-Cl/HOBt/DIEA、HATU/HOBt/DIEA、TBTU/HOBt/DIEA、HBTU/HOBt/DIEA、COMU/DIEA;
和/或,偶联的溶剂选自DMF和DCM的混合溶剂与NMP或DMSO中的一种或两种,组合成三相或四相溶剂体系;
和/或,反应溶剂中加入以下表面活性剂:20~40%(v/v)的曲拉通或5-10%(v/v)的硫氢化钾;反应温度采用33-38℃,反应时间采用2-4h;
和/或,所述切割的方法如权利要求5所述;
更优选地,
合成六肽片段Fmoc-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-Asn(Dod)-OH时,使用的缩合剂选自BOP-Cl/HOBt/DIEA;
和/或,偶联的溶剂选自DMF、DCM、NMP、DMSO混合溶液;
和/或,反应溶剂中加入以下表面活性剂:20~40%(v/v)的曲拉通;和/或,反应温度采用35℃;和/或,反应时间采用3h;
进一步优选地,
所述Fmoc保护氨基酸以及缩合剂中的BOP-Cl、HOBt、DIEA的摩尔比为(1~5):(1~5):(1~5):(1~5);
和/或,所述溶剂中DMF、DCM、NMP、DMSO的体积比(1~5):(1~5):(1~5):(1~5);
和/或,所述表面活性剂为25%(v/v)的曲拉通;
更进一步优选地,
所述Fmoc保护氨基酸以及缩合剂中BOP-Cl、HOBt、DIEA的摩尔比为1:1:1:1;
和/或,所述溶剂中DMF、DCM、NMP、DMSO的体积比4:2:2:2。
7.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于:
步骤(2)中,所述偶联Fmoc保护氨基酸时,使用的缩合剂选自Cl-HOBt/DIC、HOBt/DIC、PyBOP/HOBt/DIEA、BOP-Cl/HOBt/DIEA、HATU/HOBt/DIEA、TBTU/HOBt/DIEA、HBTU/HOBt/DIEA、COMU/DIEA;
和/或,步骤(2)中,所述偶联Fmoc保护氨基酸时,偶联的溶剂选自DMF、DCM、NMP、DMSO中的一种或多种组合;
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,使用的缩合剂选自Cl-HOBt/DIC、HOBt/DIC、PyBOP/HOBt/DIEA、BOP-Cl/HOBt/DIEA、HATU/HOBt/DIEA、TBTU/HOBt/DIEA、HBTU/HOBt/DIEA、COMU/DIEA;
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,偶联的溶剂选自DMF和DCM的混合溶剂与NMP或DMSO中的一种或两种,组合成三相或四相溶剂体系;
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,反应溶剂中加入以下表面活性剂:20~40%(v/v)的曲拉通或5-10%(v/v)的硫氢化钾;反应温度采用33-38oC,反应时间采用2-4h;
和/或,步骤(3)中,所述偶联三肽片段时,使用的缩合剂选自Cl-HOBt/DIC、HOBt/DIC、PyBOP/HOBt/DIEA、BOP-Cl/HOBt/DIEA、HATU/HOBt/DIEA、TBTU/HOBt/DIEA、HBTU/HOBt/DIEA、COMU/DIEA;
和/或,步骤(3)中,所述偶联三肽片段时,偶联的溶剂选自DMF、DCM、NMP、DMSO中的一种或多种组合;
优选地,
步骤(2)中,所述偶联Fmoc保护氨基酸时,使用的缩合剂选自TBTU/HOBt/DIEA;
和/或,步骤(2)中,所述偶联Fmoc保护氨基酸时,偶联的溶剂选自DMF和DCM的混合溶液;
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,使用的缩合剂选自Cl-HOBt/DIC;
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,偶联的溶剂选自DMF、DCM、NMP、DMSO混合溶液;
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,反应溶剂中加入以下表面活性剂:20~40%(v/v)的曲拉通;和/或,反应温度采用35℃;和/或,反应时间采用3h;
和/或,步骤(3)中,所述偶联三肽片段时,使用的缩合剂选自COMU/DIEA;
和/或,步骤(3)中,偶联三肽片段时,偶联的溶剂选自DMF和DCM的混合溶液;
更优选地,
步骤(2)中,所述偶联Fmoc保护氨基酸时,Fmoc保护氨基酸以及缩合剂中的TBTU、HOBt、DIEA的摩尔比为(1~5):(1~5):(1~5):(1~5);
和/或,步骤(2)中,所述偶联Fmoc保护氨基酸时,偶联的溶剂中DMF和DCM的体积比(1~5):(1~5);
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,六肽片段以及缩合剂中的Cl-HOBt和DIC的摩尔比为(1~5):(1~5):(1~5);
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,偶联的溶剂中DMF、DCM、NMP、DMSO的体积比为(1~5):(1~5):(1~5):(1~5);
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,所述表面活性剂为25%(v/v)的曲拉通;
和/或,步骤(3)中,所述偶联三肽片段时,三肽片段以及缩合剂中的COMU和DIEA的摩尔比为(1~5):(1~5):(1~5);
和/或,步骤(3)中,偶联三肽片段时,偶联的溶剂中DMF和DCM的体积比(1~5):(1~5);
进一步优选地,
步骤(2)中,所述偶联Fmoc保护氨基酸时,Fmoc保护氨基酸以及缩合剂中的TBTU、HOBt、DIEA的摩尔比为1:1:1:1;
和/或,步骤(2)中,所述偶联Fmoc保护氨基酸时,偶联的溶剂中DMF和DCM的体积比3:1;
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,六肽片段以及缩合剂中的Cl-HOBt和DIC的摩尔比为1:1:1;
和/或,步骤(3)中,所述偶联六肽片段时,偶联的溶剂中DMF、DCM、NMP、DMSO的体积比为4:2:2:2;
和/或,步骤(3)中,所述偶联三肽片段时,三肽片段以及缩合剂中的COMU和DIEA的摩尔比为1:1:1;
和/或,步骤(3)中,偶联三肽片段时,偶联的溶剂中DMF和DCM的体积比3:1。
8.根据权利要求1~7任一项所述的制备方法,其特征在于:
所述多肽固相合成法中,脱保护时使用的脱保护液为哌啶和DMF混合溶液;所述混合溶液中,哌啶浓度为10~30%;所述脱保护液中加入1~3wt%的HOBT;
和/或,所述多肽固相合成法中,脱保护的条件为20~30℃下反应5~10min;
和/或,所述多肽固相合成法中,偶联反应的条件为30~35℃反应2~5h;
优选地,所述混合溶液中,哌啶浓度为20%;所述脱保护液中加入1.35wt%的HOBT;
和/或,所述多肽固相合成法中,脱保护后使用DMF洗涤;
和/或,所述偶联反应结束后使用DMF洗涤,干燥。
9.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于:步骤(4)中,所述TFA体系为裂解液;所述裂解液由TFA、甲硫醚、苯酚、1,2-乙二硫醇、三异丙基硅烷和水中一种或多种组成;
和/或,所述裂解温度为20-30℃;
和/或,所述裂解时间为2-4h;
优选地,裂解液由TFA、甲硫醚、苯酚、1,2-乙二硫醇、三异丙基硅烷和水组成;
和/或,所述裂解温度为25℃;
更优选地,所述TFA、甲硫醚、苯酚、1,2-乙二硫醇、三异丙基硅烷和水的体积比为(50~100):(1~5):(1~5):(1~5):(1~5):(1~5);
进一步优选地,所述TFA、甲硫醚、苯酚、1,2-乙二硫醇、三异丙基硅烷和水的体积比为85:2:2:5:4:2。
10.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于:步骤(5)中,所述粗分为将比伐芦定粗品溶于溶剂后,过滤,用聚合物填料进行粗分;
和/或,所述反相HPLC纯化采用梯度洗脱方法;
和/或,所述等电点沉淀时pH为3~4;
优选地,
所述粗分时,溶剂为20%的乙腈水溶液;其中,所述水为0.1%的TFA水溶液;
和/或,所述粗粉采用等度洗脱的方法;
和/或,所述等电点沉淀时pH为3.7±0.1。
CN202010858578.6A 2020-08-24 2020-08-24 一种比伐芦定的制备方法 Active CN112062835B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010858578.6A CN112062835B (zh) 2020-08-24 2020-08-24 一种比伐芦定的制备方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010858578.6A CN112062835B (zh) 2020-08-24 2020-08-24 一种比伐芦定的制备方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN112062835A true CN112062835A (zh) 2020-12-11
CN112062835B CN112062835B (zh) 2022-04-26

Family

ID=73660766

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202010858578.6A Active CN112062835B (zh) 2020-08-24 2020-08-24 一种比伐芦定的制备方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN112062835B (zh)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110204611A (zh) * 2019-06-26 2019-09-06 海南中和药业股份有限公司 一种固相片段法合成比伐卢定
CN114981285A (zh) * 2020-12-26 2022-08-30 深圳市健元医药科技有限公司 肽的c端保护片段合成法

Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102532274A (zh) * 2012-02-13 2012-07-04 成都圣诺生物制药有限公司 一种比伐卢定的制备方法
CN103242431A (zh) * 2013-05-20 2013-08-14 齐鲁制药有限公司 一种比伐卢定的制备方法
CN104530224A (zh) * 2015-01-07 2015-04-22 哈尔滨吉象隆生物技术有限公司 一种固相合成比伐芦定的方法
CN105273062A (zh) * 2015-11-13 2016-01-27 兰州大学 片段缩合制备比伐卢定的方法
US20170029467A1 (en) * 2015-07-30 2017-02-02 Ambiopharm, Inc. Method of producing bivalirudin
CN107344967A (zh) * 2017-06-06 2017-11-14 牡丹江友搏药业有限责任公司 一种比伐卢定的制备及纯化方法
CN110183532A (zh) * 2019-06-06 2019-08-30 济南爱思医药科技有限公司 一种大批量高效液相法合成比伐卢定保护五肽片段的工艺方法
CN110204611A (zh) * 2019-06-26 2019-09-06 海南中和药业股份有限公司 一种固相片段法合成比伐卢定

Patent Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102532274A (zh) * 2012-02-13 2012-07-04 成都圣诺生物制药有限公司 一种比伐卢定的制备方法
CN103242431A (zh) * 2013-05-20 2013-08-14 齐鲁制药有限公司 一种比伐卢定的制备方法
CN104530224A (zh) * 2015-01-07 2015-04-22 哈尔滨吉象隆生物技术有限公司 一种固相合成比伐芦定的方法
US20170029467A1 (en) * 2015-07-30 2017-02-02 Ambiopharm, Inc. Method of producing bivalirudin
CN105273062A (zh) * 2015-11-13 2016-01-27 兰州大学 片段缩合制备比伐卢定的方法
CN107344967A (zh) * 2017-06-06 2017-11-14 牡丹江友搏药业有限责任公司 一种比伐卢定的制备及纯化方法
CN110183532A (zh) * 2019-06-06 2019-08-30 济南爱思医药科技有限公司 一种大批量高效液相法合成比伐卢定保护五肽片段的工艺方法
CN110204611A (zh) * 2019-06-26 2019-09-06 海南中和药业股份有限公司 一种固相片段法合成比伐卢定

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110204611A (zh) * 2019-06-26 2019-09-06 海南中和药业股份有限公司 一种固相片段法合成比伐卢定
CN110204611B (zh) * 2019-06-26 2023-11-07 海南中和药业股份有限公司 一种固相片段法合成比伐卢定
CN114981285A (zh) * 2020-12-26 2022-08-30 深圳市健元医药科技有限公司 肽的c端保护片段合成法
CN114981285B (zh) * 2020-12-26 2023-08-29 深圳市健元医药科技有限公司 肽的c端保护片段合成法

Also Published As

Publication number Publication date
CN112062835B (zh) 2022-04-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN102286076B (zh) 比伐卢定的制备方法
CN112062835B (zh) 一种比伐芦定的制备方法
CN107573408B (zh) 一种高纯度亮丙瑞林的合成方法
CN103497245A (zh) 一种合成胸腺法新的方法
CN106589111A (zh) 一种布雷默浪丹的合成方法
CN102924575B (zh) 一种比伐卢定的制备方法
CN104788546A (zh) 一种含有24个氨基酸残基的线性直链肽的制备方法
CN110698553A (zh) 芋螺抗皱素的制备方法
CN103980357B (zh) 一种合成胸腺法新的方法
CN113748125A (zh) 胰高血糖素样肽-1(glp-1)受体激动剂及其类似物的制备方法
CN104530224A (zh) 一种固相合成比伐芦定的方法
CN110204611A (zh) 一种固相片段法合成比伐卢定
CN112679602A (zh) 索马鲁肽的固相合成方法
CN109306366B (zh) 一种合成pt141的方法
CN113412272A (zh) 制备普卡那肽的改进方法
Dalcol et al. Convergent solid phase peptide synthesis: an efficient approach to the synthesis of highly repetitive protein domains
CN110642936B (zh) 一种制备特立帕肽的方法
CN109134615B (zh) 一种比伐芦定的制备方法
CN108047323B (zh) 一种固相片段法合成GpTx-1及其类似物和合成方法
CN102241746B (zh) 恩夫韦肽的制备方法
CN111808169B (zh) 一种美拉诺坦i的固相合成法
CN114230653A (zh) 一种氯毒素的制备方法
CN110845600B (zh) 一种制备利拉鲁肽的方法
CN111944040A (zh) 一种固相合成阿巴帕肽的方法
CN110981939A (zh) 一种普利卡那肽的制备方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant