CN112011434A - 一种用于富集循环肿瘤细胞的红细胞仿生涂层 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种富集循环肿瘤细胞的红细胞仿生涂层。通过红细胞在基底上的致密排布，避免白细胞在基底表面非特异性吸附，同时红细胞表面修饰有叶酸(FA)或抗体可直接靶向CTCs，所述功能化红细胞仿生涂层凭借其具有流动性的细胞膜表面，可以实现更牢固更高效地捕获循环肿瘤细胞，捕获效率最高达到了90％以上，CTCs俘获纯度实现80％以上。红细胞源自同一供体，避免了异物引入，利用红细胞裂解液即可分离得到高纯度的CTCs。

Description

一种用于富集循环肿瘤细胞的红细胞仿生涂层
技术领域
本发明属于生物医药技术领域，具体涉及一种用于富集循环肿瘤细胞的红细胞仿生涂层。
背景技术
循环肿瘤细胞(CTCs)是从原始或转移性肿瘤中脱落后在血流中循环的癌细胞。它可以通过血液到达远处器官，引发癌症转移导致90％的癌症相关死亡。对外周血中这些CTC的分离和分析(液体活检)已经引起了人们的注意，因为它对早期癌症诊断，治疗监测，预后评估和转移诊断具有重要意义。但是，外周血中CTCs的数量极少，通常一毫升血液中只有个位数的CTCs，这对CTCs分离富集检测带来了极大的挑战。
一种出色的分离富集CTCs方法要具有极高的灵敏度以及高选择性，而且还需保持CTCs的活性。目前已经开发了众多CTCs分离富集方法，其中一类重要的分离方法是基于CTCs与血细胞的表面标志物不同的分选方法。这类方法遇到的主要挑战是由白细胞的非特异吸附导致的CTCs分离纯度低。目前解决的思路在捕获基底上修饰一层生物惰性涂层，例如聚乙二醇，聚(羧基甜菜碱丙烯酰胺)等聚合物涂层，或细胞膜与类细胞膜的仿生涂层，用于尽可能降低白细胞的非特异性吸附。但其效果并不理想。
发明内容
为了解决现有技术中存在的问题，本发明的目的是提供一种用于富集循环肿瘤细胞的红细胞仿生涂层。通过红细胞在基底上的致密排布，避免白细胞在基底表面非特异性吸附，同时红细胞表面修饰有叶酸(FA)可直接靶向CTCs，实现对CTCs的高效高纯度捕获。红细胞源自同一供体，避免了异物引入，利用红细胞裂解液即可分离得到高纯度的CTCs。
为了实现上述目的，本发明采用如下技术方案：
第一方面，提供一种用于富集循环肿瘤细胞的红细胞仿生涂层，由以下制备方法获得：
(1)、红细胞表面修饰上CTC靶向的叶酸或抗体
第一类：叶酸修饰，将10μL～50μL健康人新鲜红细胞与100μL～1000μL浓度为1mg/mL的DSPE-PEG-FA的PBS溶液混合均匀，在4℃～25℃下静置孵育30min～2h，PBS离心洗涤三次后即可获得表面修饰叶酸的红细胞；或者，
第二类：可特异性识别CTCs表面生物标记物的抗体修饰，将10μL～50μL健康人新鲜红细胞与100μL～1000μL浓度为1mg/mL的DSPE-PEG-Biotin的PBS溶液混合均匀，4℃～25℃下静置孵育30min～2h，PBS离心洗涤三次后即可获得表面修饰Biotin的红细胞；将Biotin修饰的红细胞与100μL～1000μL浓度为100μg/mL的SA溶液混合均匀，4℃～25℃下静置孵育30min～2h，用PBS离心洗涤三次即获得表面修饰SA的红细胞；最后将SA修饰的红细胞与100μL～1000μL浓度为5μg/mL生物素化的CTCs靶向抗体溶液混合均匀，4℃～25℃下静置孵育30min～2h，用PBS离心洗涤三次即获得表面修饰CTCs靶向抗体的红细胞；
(2)红细胞表面聚凝胺的修饰
将步骤(1)表面修饰上FA或CTC靶向的抗体的红细胞与1～10mg/mL的聚凝胺PBS溶液混合，在4℃～25℃下静置孵育30min～2h，用PBS离心洗涤三次即获得表面修饰聚凝胺与FA或CTCs靶向抗体的红细胞，将其分散至PBS溶液中备用；
(3)红细胞仿生涂层的制备
将过量的步骤(2)的红细胞滴加在黏附载玻片上，4℃～25℃下静置孵育30min～1h，最后用PBS冲洗掉表面未能吸附的红细胞，即可得到可用于特异性捕获CTCs的红细胞仿生涂层。
优选地，上述红细胞仿生涂层的制备方法的步骤(1)所述的CTCs表面生物标记物为CTCs的表面生物标记物为上皮标记物细胞角蛋白、上皮细胞粘附分子、肿瘤胚胎抗原、人类表皮生长因子受体2、静脉内皮细胞分子、附膜蛋白、唾液酸化的路易斯寡糖-X、乙醛脱氢酶1、波形蛋白、尿激酶受体、乙酰肝素酶、前列腺特异性膜抗原、CD44、CK18、CD133、CD90、CD45或CD146。
优选地，上述红细胞仿生涂层的制备方法的步骤(1)所述的CTCs靶向的抗体选自上皮标记物细胞角蛋白抗体、上皮细胞粘附分子抗体、肿瘤胚胎抗体、人类表皮生长因子受体2抗体、静脉内皮细胞分子抗体、附膜蛋白抗体、唾液酸化的路易斯寡糖-X抗体、乙醛脱氢酶1抗体、波形蛋白抗体、尿激酶受体抗体、乙酰肝素酶抗体、前列腺特异性膜抗体、anti-CD44、anti-CK18、anti-CD133、anti-CD90、anti-CD45或anti-CD146中的任意一种。
上述红细胞仿生涂层的制备方法的步骤(1)-(3)所述修饰反应温度为4℃。
优选地，上述红细胞仿生涂层的制备方法的步骤(3)所述的黏附载玻片为氨基载玻片。
第二方面，提供上述红细胞仿生涂层在制备识别、捕获或富集循环肿瘤细胞的试剂盒中的应用。
优选地，上述应用中红细胞仿生涂层用于富集循环肿瘤细胞的方法，主要包括以下步骤：1)用红细胞裂解液处理血液样本，以去除血液样本中的红细胞，避免样本中的红细胞对功能化红细胞仿生涂层对捕获CTCs的干扰；2)将不含红细胞的血液样本滴加在本发明的功能化红细胞仿生涂层上，将其置于37℃下，通过1-2小时的孵育使CTCs与红细胞仿生涂层发生特异性结合；3)通过PBS荡洗红细胞仿生涂层，可去除不能黏附的其他细胞，即实现了对循环肿瘤细胞的高纯度富集；4)常温下将步骤3)得到的捕获了循环肿瘤细胞的红细胞仿生涂层浸入至红细胞裂解液配置的浓度为4％的枸橼酸钠溶液中，在基底表面大部分红细胞脱落的基础上实现循环肿瘤细胞的释放过程；荡洗几次，确保红细胞破碎并脱离载玻片，收集所有清洗液，在1000rpm/min的水平离心机中离心去除上清后，再在同样转速下离心清洗三次即可得到释放的循环肿瘤细胞。
优选地，上述应用中红细胞仿生涂层用于富集循环肿瘤细胞的方法，主要包括以下步骤：1)获取术后或化疗后肿瘤病人的血液样本，经percoll细胞分离液获取淋巴细胞层；2)将淋巴细胞层滴加在本发明功能化红细胞仿生涂层上共孵育开始捕获，孵育温度为37℃；3)通过PBS荡洗红细胞仿生涂层，可去除不能黏附的其他细胞，即实现了对循环肿瘤细胞的高纯度富集；4)将步骤3)得到的捕获了循环肿瘤细胞的红细胞仿生涂层浸入至红细胞裂解液配置的浓度为4％的枸橼酸钠溶液中，在基底表面大部分红细胞脱落的基础上实现循环肿瘤细胞的释放过程；5)对从步骤4)仿生涂层上捕获到的细胞进行三荧光染色之后，通过流式定量分析其捕获CTCs数目，激光共聚焦分析其捕获情况。
本发明上述用于富集循环肿瘤细胞的红细胞仿生涂层的技术方案的原理如下(见图1)：
1、红细胞修饰原理：
为了使致密红细胞仿生涂层能够捕获CTCs，红细胞还需要修饰捕获分子。修饰方法按捕获分子的不同分为修饰小分子(叶酸分子)以及修饰蛋白(抗体)：
第一类是在红细胞表面修饰上可特异性识别和结合CTCs表面叶酸受体(FAacceptor)的叶酸分子(FA)。叶酸的修饰是利用亲疏水作用力将二硬脂酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇-叶酸(DSPE-PEG-FA)嵌入红细胞膜内。DSPE-PEG-FA是一种两亲嵌段共聚物，DSPE端通过亲疏水相互作用嵌入疏水性的红细胞膜内部，DSPE端的成功嵌入标志着红细胞表面叶酸的修饰成功。
第二类是在红细胞表面修饰上可特异性识别和结合CTCs表面生物标记物的抗体蛋白，具体方法为：首先，在红细胞膜表面通过亲疏水作用力嵌入功能分子二硬脂酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇-生物素(DSPE-PEG-Biotin)，DSPE端通过亲疏水相互作用嵌入疏水性的红细胞膜内部，DSPE端的成功嵌入标志着红细胞表面Biotin的修饰成功。Biotin端为可特异性结合链酶亲和素(streptavidin，简称SA)，SA可以作为修饰CTCs靶向的抗体的桥联分子；最后，在SA的基础上修饰生物素化的CTCs靶向的抗体，该抗体可特异性识别和结合CTCs表面的生物标记物。所描述的CTCs靶向的抗体包括但不限于上皮标记物细胞角蛋白抗体、上皮细胞粘附分子抗体、肿瘤胚胎抗体、人类表皮生长因子受体2抗体、静脉内皮细胞分子抗体、附膜蛋白抗体、唾液酸化的路易斯寡糖-X抗体、乙醛脱氢酶1抗体、波形蛋白抗体、尿激酶受体抗体、乙酰肝素酶抗体、前列腺特异性膜抗体、anti-CD44、anti-CK18、anti-CD133、anti-CD90、anti-CD45或anti-CD146。以上抗体可特异性识别的CTCs表面生物标记物为CTCs的表面生物标记物为上皮标记物细胞角蛋白、上皮细胞粘附分子、肿瘤胚胎抗原、人类表皮生长因子受体2、静脉内皮细胞分子、附膜蛋白、唾液酸化的路易斯寡糖-X、乙醛脱氢酶1、波形蛋白、尿激酶受体、乙酰肝素酶、前列腺特异性膜抗原、CD44、CK18、CD133、CD90、CD45或CD146。
2、平面致密红细胞仿生涂层设计原理：
红细胞与氨基载玻片可通过膜蛋白与载玻片表面氨基之间的氢键作用黏附在载玻片上，而由于红细胞之间存在静电斥力，因此难以在载玻片表面形成致密层状状态。对红细胞进行聚凝胺溶液浸泡处理后，可以大大减小这种静电斥力。这是由于红细胞均带有负电荷，在经过聚凝胺溶液浸泡后，表面可以吸附一层聚阳离子聚合物聚凝胺，从而实现电中性，使得红细胞之间的静电斥力消失。经过聚凝胺处理后的红细胞可以在氨基载玻片上形成致密的单细胞层状结构。
通过聚凝胺的修饰可以让红细胞在氨基载玻片上致密排布，那么加入解凝剂枸橼酸钠则可以中和聚凝胺的电荷，使得聚凝胺从红细胞表面脱落，红细胞表面电荷恢复至修饰前的状态，导致大量红细胞从载玻片上脱落。不仅如此，加入红细胞裂解液可通过破坏红细胞结构进一步使红细胞从基底表面脱落。因此，通过将致密红细胞仿生涂层浸入至红细胞裂解液配置的枸橼酸钠溶液中可以实现基底表面大部分红细胞的脱落。
3、红细胞仿生涂层特异性捕获分离CTCs的原理：
由于红细胞表面修饰了靶向CTCs的抗体，因此可与含CTCs血液样本中的CTCs发生特异性结合，同时由于红细胞本身的作用，防止白细胞非特异性吸附，使得仿生涂层上只有被特异性捕获的CTCs。(原理图如图1所示)
本发明中的粘附载玻片，是指经过表面处理而对生物样本具有强烈粘附力的一类载玻片。因能防止已粘附样本脱落，故又称防脱载玻片。粘附载玻片不仅应用于各种组织切片的防脱，还能用于粘附人体脱落细胞、培养的动物细胞和微生物细胞等。疏水性粘附载玻片、亲水性粘附载玻片、多聚赖氨酸粘附载玻片和液基细胞学粘附载玻片。
本发明的有益效果在于：(1)本发明提供了一种高效高特异性识别捕获循环肿瘤细胞的功能化红细胞仿生涂层，可用体外对模拟血液样本和临床病人血液样本中微量CTCs进行特异性识别和捕获，从而有望在癌症转移的预警和预防领域发挥重要作用；(2)本发明提供了一种高效高特异性识别捕获循环肿瘤细胞的功能化红细胞仿生涂层，所述功能化红细胞仿生涂层凭借其具有流动性的细胞膜表面，可以实现更牢固更高效地捕获循环肿瘤细胞，捕获效率最高达到了90％以上，并且由于红细胞仿生涂层是由红细胞组成，因而其能避免白细胞的非特异吸附，只需简单的荡洗，就能在含有大量白细胞的模拟血液样本或者临床病人血液样本中，实现80％以上的CTCs俘获纯度。
附图说明
图1为红细胞仿生涂层特异性捕获CTCs示意图；
图2为红细胞仿生涂层在明场显微镜下的照片；
图3
a)为红细胞仿生涂层捕获MCF7在明场显微镜下的照片；
b)为图a)的局部放大图；
图4
a)为红细胞仿生涂层在PBS中捕获MCF-7的效率统计；
b)为红细胞仿生涂层在白膜层细胞中捕获MCF-7的纯度统计；
图5
a)为用PBS荡洗红细胞仿生涂层前的荧光显微镜照片；
b)为用PBS荡洗红细胞仿生涂层后的荧光显微镜照片；
图6为未经过聚凝胺修饰的功能化红细胞在黏附载玻片上形成的不完美仿生涂层结构；
图7
a)为用PBS荡洗对比例1的仿生涂层前的荧光显微镜照片；
b)为用PBS荡洗后的荧光显微镜照片；
图8
a)为明场显微镜下对比例1仿生涂层的照片；
b)为荧光显微镜下对比例1仿生涂层的照片。
具体实施方式
通过以下详细说明结合附图可以进一步理解本发明的特点和优点。所提供的实施例仅是对本发明方法的说明，而不以任何方式限制本发明揭示的其余内容。【实施例1】使用多聚赖氨酸粘附载玻片制备的红细胞仿生涂层
红细胞的修饰过程：将30μL健康人新鲜红细胞与100μL的DSPE-PEG-FA(1mg/mL)的PBS溶液混合均匀，在4℃下静置孵育30min，用PBS离心洗涤三次即可获得叶酸修饰的红细胞。再将表面修饰叶酸的红细胞与10mg/mL的聚凝胺PBS溶液混合，在4℃下静置孵育30min，用PBS离心洗涤三次即获得表面修饰聚凝胺与叶酸的红细胞，将其分散至PBS溶液中备用。
红细胞仿生涂层的制备：将修饰好的红细胞滴加在黏附载玻片上置于4℃下静置孵育30min，最后将未能吸附上的红细胞用PBS荡洗干净，在光学显微镜下拍摄的明场照片如图2所示。
【实施例2】红细胞仿生涂层在PBS中捕获MCF-7细胞
将10μL的MCF-7细胞悬液(密度为5×105个/mL)，滴加到制备好的红细胞仿生涂层上置于4℃下静置孵育120min，用PBS荡洗三次，洗去未能捕获的MCF-7细胞，在光学显微镜下拍摄的明场照片如图3所示。
红细胞仿生涂层在PBS中捕获MCF-7细胞的效率评估。总共进行三组实验，每组包含五个样品，准备五个制备好的功能化红细胞仿生涂层，每个红细胞仿生涂层上分别滴加10μL、20μL、30μL、40μL、50μL的预先用FDA染色的MCF-7细胞悬液(密度为5×105个/mL)，即相当于加入了5000、10000、15000、20000、25000个MCF-7细胞，每组的样品混合均匀后将其置于37℃下静置孵育120min。孵育结束后，取1mL的PBS荡洗仿生涂层，取10μL的荡洗液在荧光显微镜下观察计数，直接数出游离的MCF-7细胞的数量，即可换算得到红细胞团簇在PBS中捕获MCF-7细胞的效率接近90％，结果如图4a)所示。
【实施例3】红细胞仿生涂层抗白细胞黏附能力评估
对提取得到的白膜层细胞进行FDA染色。滴加在制备好的功能化红细胞仿生涂层上，在37℃下孵育2h，取1mL的PBS荡洗仿生涂层，用荧光显微镜拍摄清洗前后仿生涂层的荧光照片，结果如图5所示。说明白细胞完全不能在红细胞仿生涂层上黏附，红细胞仿生涂层拥有较强的抗白细胞黏附能力。
【实施例4】红细胞仿生涂层在白膜层中捕获MCF-7细胞的纯度评估
总共进行三组实验，每组包含五个样品，每个样品均加入100μL的预先用FDA染色的白膜层细胞悬浮液(密度为2×106个/mL)，每组五个样品分别加入400μL、80μL、40μL、20μL、10μL的预先用Hoechst染色的MCF-7细胞悬液(密度为5×105个/mL)，即相当于加入了200000、40000、20000、10000、5000个MCF-7细胞，每组的样品混合均匀后白膜层细胞与肿瘤细胞的比值分别为1：1、5：1、10：1、20：1、40：1。将其分别滴加在制备好的五个仿生涂层上置于37℃下静置孵育120min。孵育结束后，荡洗仿生涂层，将未能吸附的细胞去除，将仿生涂层直接放在荧光显微镜下观察，直接数出滤膜表面Hoechst染色的MCF-7细胞数与FDA染色的白细胞数之间的比值，即可换算得到红细胞仿生涂层在白膜层细胞中捕获MCF-7细胞的纯度，整体结果在70％以上，如图4b)所示。
【对比例1】
此对比例为使用未修饰聚凝胺的红细胞制备红细胞仿生涂层。
制备过程除了所用的红细胞并未经过聚凝胺修饰以外，其他实验条件与实施例1完全相同，最终并未获得致密的红细胞仿生涂层，黏附载玻片上的红细胞之间空隙较大。如图6所示。
对比例1制备红细胞仿生涂层的抗白细胞黏附能力评估：对提取得到的白膜层细胞进行FDA染色。滴加在对比例1的红细胞仿生涂层上，在37℃下孵育2h，取1mL的PBS荡洗仿生涂层，用荧光显微镜拍摄清洗前后仿生涂层的荧光照片，结果如图7所示。清洗后的仿生涂层上依然有大量属于白细胞的绿色荧光，这说明对比例1的抗白细胞黏附能力较差。图8a)中红圈标记的为对比例1仿生涂层上非特异性吸附的白细胞。对比图8b)可以看出由于未经聚凝胺修饰的红细胞所形成的仿生涂层并不致密，导致大量白细胞在缝隙处非特异性黏附。

Claims (7)

1.一种用于富集循环肿瘤细胞的红细胞仿生涂层，其特征在于，由以下制备方法获得：
(1)、红细胞表面修饰上CTC靶向的叶酸或抗体
第一类：叶酸修饰，将10μL～50μL健康人新鲜红细胞与100μL～1000μL浓度为1mg/mL的DSPE-PEG-FA的PBS溶液混合均匀，在4℃～25℃下静置孵育30min～2h，PBS离心洗涤三次后即可获得表面修饰叶酸的红细胞；或者，
第二类：可特异性识别CTCs表面生物标记物的抗体修饰，将10μL～50μL健康人新鲜红细胞与100μL～1000μL浓度为1mg/mL的DSPE-PEG-Biotin的PBS溶液混合均匀，4℃～25℃下静置孵育30min～2h，PBS离心洗涤三次后即可获得表面修饰Biotin的红细胞；将Biotin修饰的红细胞与100μL～1000μL浓度为100μg/mL的SA溶液混合均匀，4℃～25℃下静置孵育30min～2h，用PBS离心洗涤三次即获得表面修饰SA的红细胞；最后将SA修饰的红细胞与100μL～1000μL浓度为5μg/mL生物素化的CTCs靶向抗体溶液混合均匀，4℃～25℃下静置孵育30min～2h，用PBS离心洗涤三次即获得表面修饰CTCs靶向抗体的红细胞；
(2)红细胞表面聚凝胺的修饰
将步骤(1)获得的表面修饰上FA或CTC靶向的抗体的红细胞与1～10mg/mL的聚凝胺PBS溶液混合，在4℃～25℃下静置孵育30min～2h，用PBS离心洗涤三次即获得表面修饰聚凝胺与FA或CTCs靶向抗体的红细胞，将其分散至PBS溶液中备用；
(3)红细胞仿生涂层的制备
将过量的步骤(2)的红细胞滴加在黏附载玻片上，4℃～25℃下静置孵育30min～1h，最后用PBS冲洗掉表面未能吸附的红细胞，即可得到用于特异性捕获CTCs的红细胞仿生涂层。
2.根据权利要求1所述的用于富集循环肿瘤细胞的红细胞仿生涂层，其特征在于，所述红细胞仿生涂层的制备方法的步骤(1)所述的CTCs表面生物标记物为CTCs的表面生物标记物为上皮标记物细胞角蛋白、上皮细胞粘附分子、肿瘤胚胎抗原、人类表皮生长因子受体2、静脉内皮细胞分子、附膜蛋白、唾液酸化的路易斯寡糖-X、乙醛脱氢酶1、波形蛋白、尿激酶受体、乙酰肝素酶、前列腺特异性膜抗原、CD44、CK18、CD133、CD90、CD45或CD146。
3.根据权利要求1所述的用于富集循环肿瘤细胞的红细胞仿生涂层，其特征在于，所述红细胞仿生涂层的制备方法的步骤(1)所述的CTCs靶向的抗体选自上皮标记物细胞角蛋白抗体、上皮细胞粘附分子抗体、肿瘤胚胎抗体、人类表皮生长因子受体2抗体、静脉内皮细胞分子抗体、附膜蛋白抗体、唾液酸化的路易斯寡糖-X抗体、乙醛脱氢酶1抗体、波形蛋白抗体、尿激酶受体抗体、乙酰肝素酶抗体、前列腺特异性膜抗体、anti-CD44、anti-CK18、anti-CD133、anti-CD90、anti-CD45或anti-CD146中的任意一种。
4.根据权利要求1-3任一项所述的用于富集循环肿瘤细胞的红细胞仿生涂层，其特征在于，所述红细胞仿生涂层的制备方法的步骤(1)-(3)的修饰反应温度为4℃。
5.权利要求1-3任一项所述的红细胞仿生涂层在制备识别、捕获或富集循环肿瘤细胞的试剂盒中的应用。
6.根据权利要求5所述的应用，其特征在于，所述应用中红细胞仿生涂层用于富集循环肿瘤细胞的方法，包括以下步骤：1)用红细胞裂解液处理血液样本，以去除血液样本中的红细胞；2)将不含红细胞的血液样本滴加在权利要求1-3所述的红细胞仿生涂层上，将其置于37℃下，通过1-2小时的孵育使CTCs与红细胞仿生涂层发生特异性结合；3)通过PBS荡洗红细胞仿生涂层，去除不能黏附的其他细胞；4)常温下将步骤3)得到的捕获了循环肿瘤细胞的红细胞仿生涂层浸入至红细胞裂解液配置的浓度为4％的枸橼酸钠溶液中，在基底表面大部分红细胞脱落的基础上实现循环肿瘤细胞的释放过程；荡洗几次，确保红细胞破碎并脱离载玻片，收集所有清洗液，在1000rpm/min的水平离心机中离心去除上清后，再在同样转速下离心清洗三次即可得到释放的循环肿瘤细胞。
7.根据权利要求6所述的应用，其特征在于，所述应用中红细胞仿生涂层用于富集循环肿瘤细胞的方法，包括以下步骤：1)获取术后或化疗后肿瘤病人的血液样本，经percoll细胞分离液获取淋巴细胞层；2)将淋巴细胞层滴加在权利要求1-3所述的红细胞仿生涂层上共孵育开始捕获，孵育温度为37℃；3)通过PBS荡洗红细胞仿生涂层，去除不能黏附的其他细胞；4)将步骤3)得到的捕获了循环肿瘤细胞的红细胞仿生涂层浸入至红细胞裂解液配置的浓度为4％的枸橼酸钠溶液中，在基底表面大部分红细胞脱落的基础上实现循环肿瘤细胞的释放过程；5)对从步骤4)仿生涂层上捕获到的细胞进行三荧光染色之后，通过流式定量分析其捕获CTCs数目，激光共聚焦分析其捕获情况。
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